JP7378509B2 - 抗tnfr2抗体およびその使用 - Google Patents
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Description
(1)CDR1-VH、CDR2-VH及びCDR3-VHの重鎖CDRの組み合わせ、
CDR1-VH、CDR2-VH、およびCDR3-VHは、以下の配列の組み合わせから選択されるか、または配列の組み合わせと比較して1、2、3またはそれ以上のアミノ酸の挿入、欠失、および/または置換を有する配列の組み合わせを有する。
CDR1-VL、CDR2-VL、およびCDR3-VLは、以下のいずれかの配列の組み合わせから選択される、または前記配列の組み合わせと比較して1、2、3又はそれ以上のアミノ酸の挿入、欠失、および/または置換を有する配列の組み合わせを有する。
1)重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号1及び配列番号2に示された配列、又は示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%又はそれ以上の同一性を有する配列を有し、
2)重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号3及び配列番号4に示された配列、又は示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%又はそれ以上の同一性を有する配列を有し、
3)重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号5及び配列番号6に示された配列、又は示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%又はそれ以上の同一性を有する配列を有し、
4)重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号7及び配列番号8に示された配列、又は示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%又はそれ以上の同一性を有する配列を有し、
5)重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号9及び配列番号10に示された配列、又は示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%又はそれ以上の同一性を有する配列を有し、
6)重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号11及び配列番号12に示された配列、又は示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%又はそれ以上の同一性を有する配列を有し
7)重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号13及び配列番号14に示された配列、又は示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%又はそれ以上の同一性を有する配列を有し、
8)重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号15及び配列番号16に示された配列、又は示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%又はそれ以上の同一性を有する配列を有し、
9)重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号17及び配列番号18に示された配列、又は示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%又はそれ以上の同一性を有する配列を有し、
10)重鎖可変領域および軽鎖可変領域はそれぞれ配列番号19および配列番号20に示された配列、または示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれ以上の同一性を有する配列を有し、または
11)重鎖可変領域および軽鎖可変領域は、それぞれ配列番号21および配列番号22に示された配列、または示された配列と70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれ以上の同一性を有する配列を有する。
1)細胞表面にTNFR2を発現している細胞へ、特異的に結合する、
2)Treg細胞に特異的に結合する、
3)TNFαとTNFR2タンパク質の結合を抑制する、
4)TNFαと細胞表面に発現されるTNFR2との結合を抑制する、
5)TNFαを介したTregの増殖および/またはTreg機能を抑制する、
6)TNFR2発現細胞に対するADCC機能を媒介する、又は/及び
別の好ましい実施形態において、本発明の抗原結合フラグメントは、F(ab)2、Fab’、Fab、Fv、scFv、二重特異抗体、ナノ抗体、および抗体最小認識単位からなる群から選択される。
1)卵巣がん、進行性表皮T細胞リンパ腫、第III/IV期転移性結腸直腸がん、トリプルネガティブ乳がんおよび/または膵臓がん、または、
2)CTLA-4およびPD-1療法に耐性の転移性黒色腫または他の可能性のある進行固形腫。
(i)Fabフラグメント、VL、VH、CLおよびCHドメインからなる1価のフラグメント、
(ii)F(ab)2フラグメントであって、ヒンジ領域においてジスルフィド結合により結合された二個のFabフラグメントを含む二価のフラグメント、
(iii)VHドメイン及びCHドメインからなるFabフラグメント、
(iv)抗体の片方のアームのVLドメインとVHドメインで構成されるFvフラグメント、
(V)VH及びVLドメインを含むdAb、
(vi)VHドメインからなるdAbフラグメント(Ward等、Nature 341:544-546、1989)、
(vii)VH又はVLドメインからなるdAb、
(viii)分離相補決定領域(CDR)、
(ix)任意に合成リンカーで結合することができる2つ以上の分離されたCDRの組み合わせ。
6-8週齢の雌SJLマウス(北京維通利華実験動物技術有限公司より購入)又はBalb/cマウス(上海斯莱克実験動物有限公司より購入)に対して、コンプリートフルアジュバント(completefreund‘sadjuvant,CFA,SIGMAより購入,商品番号:F5881)とヒトTNFR2組換え蛋白質(SinoBiological,10417-H08H及びNovoprotein,C830)を混合して第一次免疫注射用とし、フセリ不完全アジュバント(incompletefreund’sadjuvant、IFA、SIGMAから購入、商品番号:F5506)とCpGODN1826(上海生工生物から合成)を使用して、最後の3回の免疫注射のアジュバントとした。特に、1回目と2回目は後足パッドと背中を免疫注射し、3回目と4回目は尾部皮下と背中を免疫注射することにより、高力価、高親和性、高特異性の抗血清と特異性の免疫細胞を得た。最終免疫(4回目の免疫)後7日目に安楽死したマウスは無菌で脾臓を取り出し、マウス脾臓リンパ球を無菌分離して抽出し、後で使用する時に細胞を蘇生させるために、液体窒素中に分けて凍結保存した。免疫後のマウスの脾臓またはリンパ節中のTNFR2特異的な単一B細胞をBDAriaIIIフローソーターにより96ウェルプレートにて選別し、単一細胞のmRNAをcDNAに逆転写した。その後、cDNAを鋳型として巣PCRを行い、それぞれ抗体重鎖増幅と軽鎖増幅を行った。増幅して抗体重鎖可変領域と軽鎖可変領域を得て、それぞれ相同組換え法により重鎖発現ベクターと軽鎖発現ベクターにクローニングした。重鎖発現ベクターと軽鎖発現ベクターの定常領域はいずれもヒトIgG1に由来した。完全重鎖発現配列はシグナルペプチド-VH-CH1-ヒンジ領域-CH2-CH3であり、完全軽鎖発現配列はシグナルペプチド-Vκ-Cκであった。上記の単B細胞抗体のクローニングと発現はすべて96ウェルプレート内で高スループット方式で抗体の迅速な同定と発見を達成した。一連の理化学と機能スクリーニングを経て、523対クローン発現した抗体重鎖と軽鎖を得た後、計11個の陽性候補抗体分子を得て、それぞれ配列のCDRをIMGTおよびKABATソフトウェアで解析した。抗体候補分子のVH配列およびVL配列を表1に、抗体候補分子のIMGT解析結果を表2に、抗体候補分子のKABAT解析結果を表3にそれぞれ示している。
成長良好な細胞を収集し、計数した後、各種類の腫瘍細胞ごとに、2×106個の細胞を取得し、それぞれisotype対照群、TNFR2染色群(1×106 cells/test)に応用した。PBSで細胞を2回洗浄し、300g×5min遠心した後、上清を捨て、1×Live/Dead作動液(Zombie violet L/D,Biolegend,商品番号:423114)100μl/testを加え、室温で20分間染色した。20分後、FACS buffer(DPBS+2%FBS)で細胞を2回洗浄し、300g×5min遠心した後、上清を捨て,以下のように1×染色抗体作動液100μl/testを加え、4℃で30分間光を避けて培養した。
商用凍結保存したヒトPBMC(Hemacare)を蘇生し、anti-CD3/CD28 Dynabeads(Gibco,商品番号:11129D)で増幅活性化したTreg細胞を用いて一晩培養した。翌日、ヒトPBMCを300×g条件下で10min遠心分離し、上清に捨てた。計数後、2×106個のPBMC細胞を獲得し、それぞれisotype対照群、TNFR2染色群(1×106 cells/test)に用いた。PBSで細胞を2回洗浄し、300g×5min遠心した後、上清を捨て、1×Live/Dead作動液(Zombie violet L/D,Biolegend,品番:423114)100μl/testを加え、室温で20分間染色した。20分後、FACS buffer(DPBS+2%FBS)で細胞を2回洗浄し、300g×5min遠心した後、上清を捨て、以下のように1×染色抗体作動液100μl/testを加え、4℃で30分間光を避けて培養した。
酵素標識板にあらかじめ100μl/ウェルで0.5μg/mlヒトTNFR2またはカニクイザルTNFR2(実施例4と同じ抗原蛋白)をコーティングした。精製後の実施例1で得られた抗TNFR2抗体を28ng/ml(抗体#1結合曲線のEC80に対応する)になるように希釈し、100μl/ウェルに添加して、室温で1.5h振とう培養した。板を洗った後、マウス抗ヒト(mouse anti-human)IgG Fc-HRPワーキング溶液(1:10 000希釈)を加え、100μl/ウェルに添加して、室温で1.0h振とう培養した。プレートを再度洗浄し、HRPの基質TMBを添加して発色させ、停止液を添加して反応を停止させた後、酵素標識器で吸光値を読みとった。表6のデータから分かるように、11の抗体はすべてサルTNFR2タンパク質に特異的に結合したが、マウスTNFR2または対照のヒトCREG-Hisタンパク質には結合しなかった。
備考:1、002#はツール抗体(tool antibody、WO2017/083525 A1のSBT-002から由来)であった。
2、抗体は単一の濃度点のみが測定され、OD値で表し、その中、#088と#309抗体濃度は12ng/mLで、他の抗体濃度は28ng/mLであった。
TNFR2高発現プラスミドがトランスフェクションされたCHO安定化細胞を用いて、細胞密度が80%を超えない範囲で実験を行った。前記プラスミドはSino Biological(商品番号:HG10417-UT)から購入したものであった。細胞培地を捨て、PBSで洗浄し、パンクレアチン1mlを加えて2分間消化し、10%FBSを含むHamFBS培地で消化を停止させたことにより、細胞懸濁液を作製した。計数後、適量の細胞懸濁液を取り、350×g遠心分離し、上清を捨て、1×107細胞/mlの密度で、相応体積のブロッキング液 (10%FBS+PBS)を加えて細胞を重懸濁し、4℃で30分間培養した。培養終了後、350×g遠心分離して上清を除去し、染色緩衝液(2%FBS+PBS)で細胞を2×106細胞/mlの密度に重懸濁させ、1ウェルあたり50μlの細胞懸濁液を添加するように、96ウェルプレートに播種した。抗体をPBSで80ng/mlに希釈し、希釈した抗体を50μlの細胞懸濁液が含まれていたウェルに添加して、マイクロプレートシェーカー上で500rpmで1分間振とうさせ、抗体と細胞を十分に混合し、4℃で1時間培養した。培養終了後、染色緩衝液で細胞を2回洗浄した。ウェル当たり100μl、350×gで5分間遠心分離して上清を捨てた。PE goat anti-Human IgG Fc抗体(ebioscience,品番:12-4998-82)を染色緩衝液で250倍に希釈し、洗浄したウェルに1ウェル当たり100μlの体積で加え、均一に混合し、4℃で30分間染色した。染色終了後も同様に染色緩衝液で2回洗浄してから、200μl染色緩衝液で細胞を重懸濁させ、フローサイトメトリーでシグナル強度を測定し、シグナルが強いほど抗体とTNFR2の結合能が強いことを示した。図3Aに示すように、PE Rat-IgG2b PE Rat-IgG2b(Biolegend,商品番号:400636)とPE Rat anti-hTNFR2(BD Biosciences,商品番号:552418)で測定した結果、CHO-TNFR2細胞表面のTNFR2発現強度は、同型対照の約134倍であった。これに基づいて、実施例1の11個のTNFR2抗体と細胞表面のTNFR2との結合能力を測定した結果、図3Bに示すように、すべて陽性であった。
選別kit(Stemcell、商品番号:18063)によって、ヒトPBMCを単離してから、Dynabeads Human Treg Expander(Gibco、商品番号:11129D)での体外刺激により17日増幅した後、ヒトTreg細胞を得て、得られた細胞を分けて凍結保存した。体外で単離増幅したTreg細胞を取って一晩蘇生し、翌日300×gで5分間遠心分離し、DPBSで重懸濁して細胞懸濁液を得て、計数した。実験に必要な数の細胞を遠心管に加え、300×gで5min遠心し、上清を除去し、ブロッキング液 で細胞濃度を1×107個/mlに調整し、4°Cで30min培養した。ブロッキングされた細胞300×gを5min遠心分離し、上清を捨て、染色緩衝液で細胞密度を2×106/mlに調整し、96ウェルプレートに1ウェルあたり50μl播種した。実施例1の11個の被検抗体#001、#088、#125、#133、#219、#224、#226、#309、#352、#365、#395と対照抗体anti-Hel isotype(PBSでそれぞれ200ng/mlに希釈、総量100μl)を用いた。各試料をウェルごとに50μlずつ加えた。細胞懸濁液と抗体を加えたウェルプレートをマイクロプレートシェーカーに置き、500rpmの速度で1分間振とうし、細胞と抗体を十分に混合した。混合後、ウェルプレートを4°C冷蔵庫に置き、60分間培養した。培養終了後、ウェルごとに100μl染色緩衝液を加え、350×gで5min遠心分離し、上清を捨てた。1ウェル当たり200μl染色緩衝液を加えて細胞を重懸濁させ、350×gで5min遠心分離し、上清を捨てた。染色緩衝液を250:1(染色緩衝液:染料)の割合でPE goat anti-Human IgG Fcに加えて染色液を作製し、染色液を混合した後にウェルに100μlずつ加える。ウェルプレートをマイクロウェルプレート振とう器に載せて500rpmの速度で1分間振とうさせ、細胞と染色液を十分に混合した。混合した後、4°C冷蔵庫に置き、30分間培養した。細胞を2回洗浄し、最後に1ウェル当たり200μlのPBSを加えて細胞を重懸濁させ、シグナルを検出した。図4Aに示したCD25+FoxP3+の細胞がヒトTreg細胞であり、丸印のTreg細胞におけるTNFR2の発現割合は99.5%に達しており、ヒトTreg細胞がTNFR2を非常に高発現していることが分かった。図4Bが示しているように、対照抗体anti-Hel isotypeがTregに結合しなったが、実施例1の11個の抗体はすべてTreg細胞に有効に結合した。
酵素標識板にはあらかじめ1μg/ml 100μl/ウェルのヒトTNFR2(Novoprotein,商品番号C830)をコーティングし、実施例1の各TNFR2抗体を40nMと4nMに希釈し、希釈した抗体をそれぞれ15ng/mlヒトTNFa(Acro Biosystem,商品番号TNA-H82E3)と等体積混合し、100μl/ウェルごと酵素標識板に加え、室温振とう2.0h培養した。プレートを洗った後にStreptavidin-HRPワーキング溶液(1:10 000希釈)を加え、100μl/ウェル、室温で40分間振とう培養した。プレートを再度洗浄し、HRPの基質TMBを添加して発色させ、停止液を添加して反応を停止させた後、酵素標識器で吸光値を読み取った。OD値が低いほど、抗体がTNFaとTNFR2の結合を抑制する能力が高いことを意味した。最終的にすべての抗体のOD値を、ツール抗体002#のOD値に対して正規化し、パーセンテージ値が高いほど抑制能力が高いことを意味した。表7のデータから分かったように、実施例1の11抗体は、20nMと2nMの濃度でTNFaとTNFR2の結合を抑制する活性を示した。002#Abと比較して抑制活性に高低があった(表7)。
備考:1.002#はツール抗体であった。2.%to 002#OD=002#(20nM または 2nM)のELISA OD/抗体のELISA OD(20nM または 2nM)×100
ヒトTNFR2を高発現するCHO安定化細胞を用いて実験を行った。細胞を蘇生させ、状態が良好になるまで継代し、細胞のヒトTNFR2発現レベルを測定した。ホモタイプ対照を比較して平均蛍光強度(MFI)シフト倍数が100倍以上であれば検出できた。
備考:AUC%=002#のAUC÷抗体のAUC×100
細胞上清のsTNFR2の発現を測定したことで、TNFR2抗体によるTreg機能の抑制効果を判定した。TregとエフェクターT細胞を実施例1の抗体で処理して4日後に培養上清をサンプルとして採取し、上清を1ウェル当たり100μl採取した。上清を5倍希釈した後、sTNFR2の測定を行った。sTNFR2の測定方法はR&D社humanTNFRII/TNFRSF1Bキット(品番DRT200)を参照した。その結果、#001、#088、#125、#219、#224、#226と#309は、異なるTreg:Tconの比例でも細胞上清中sTNFR2の発現レベルを著しく低下させることができた(図7)。
TNFR2抗体の存在下でTNFαによるTreg細胞の増殖誘導を測定したことで、TNFαによるTreg細胞の増殖誘導に対する当該抗体の抑制作用を判断した(Zaragoza B et al.,Nat Med.2016 Jan;22(1):16-7)。体外増幅分離後に凍結保存したTreg細胞を取って一晩蘇生させ、翌日400×gで5分間遠心分離し、培地で重懸濁して細胞懸濁液を得て、計数した。TregをCFSEで染色し,4×106細胞ごとに1μlの貯留液を用いて染色液1mlに調製した。染色5min、同体積の血清で反応を中和し、静止5min、遠心400×g 5min。細胞を培地で重懸濁洗浄し、再度遠心分離して上清を取った。96ウェルプレートを1ウェルあたり1×10^5細胞密度で播種し、1×105細胞あたり50μl培地の密度で細胞を重懸濁させ、96ウェルプレートに移した。実施例1の被検抗体をウェル当たり12.5μg/mlの最終濃度で添加し、インキュベータで30分間培養した。その後、IL-2(終濃度300IU)が含まれた培地50μlとTNFα終濃度50ng/mlの培地50μlを1ウェル当たり添加し、1ウェル当たりの終体積を200μlとした。条件ごとに並列の3つのウェルを設定し、上記ウェルプレートを混合した後、37℃インキュベータで3日間培養してFACS検出を行った。Treg増殖の割合から、この抗体のTNFα誘導Treg増殖に対する抑制作用を判断した。図8に示すように、対照anti-Hel抗体と比較して、#001(17.1%抑制),#088(6.9%抑制),#125(5.2%抑制),#133(9.7%抑制),#219(13.6%抑制),#226(10.3%抑制),#365(11.0%抑制)の抗体はTNFα誘導Treg細胞増殖を効果的に抑制した。被測抗体が対照抗体と比較して、TNFαにより誘導されるTreg細胞増殖を抑制する割合の計算式:(被測抗体存在時のTNFαによるTreg増殖誘導割合-anti-Hel isotype抗体存在時のTNFαによるTreg増殖誘導割合)/anti-Hel isotype抗体存在時のTNFαによるTreg増殖誘導割合×100%。図8Aでは、TregはIL-2添加後に増殖が有意に高く(20%vs.4%),TNFα添加後に増加率がさらに高く(40%vs.20%)なった。図8Bに示したように、11個の抗体はIL-2とTNFα添加後のTregの増殖の誘導能に対する抑制作用を示し、#224,#352,#395を除く8個の候補抗体は、すべてIL-2とTNFαによるTregの増殖を抑制していた。
商用凍結保存ヒトPBMC細胞を蘇生し、一晩培養する。翌日、ヒトPBMCを300×g条件下で10min遠心分離し、上清を捨て、キット分離液Easybufferで細胞を2回洗浄した後、細胞を計数した。ヒトCD4+T細胞分離キット取扱説明書(Stemcell,EasySepTM Human CD4+T cell Isolation Kit,品番17952)によりヒトCD4+T細胞の分離を行った。分離したCD4+T細胞を再度計数し、適切な濃度まで懸濁させた後、96ウェルプレートに4×105細胞/ウェルを50μl/ウェルで接種した。抗体作動液(50μg/ml,4×)を調製し、50μl/ウェルをウェルプレートに加え、37°C,5%CO2条件下で30分間培養した。次に,IL-2作動液(800IU/ml,4×)とTNFα作動液(200ng/ml,4×)を調製し、それぞれ50μl/ウェルで添加した。実験群には、非刺激群,IL-2単独刺激群,TNFα単独刺激群,IL-2+TNFα共刺激群,抗体+IL-2+TNFα共刺激群(すなわち被検試料群)があった。播種完了のウェルプレートをインキュベータに入れ、37度C,5%CO2条件下で3日間培養した。3日後、培養上清を収集し、sTNFR2測定を行った。
1日に前もってPBMCと凍結保存したTreg細胞を完全培地(RPMI1640-Glutamax+10%FBS+1*P/S+1*ITS+50μlMPMメルカプトエタノール)で培養し、PBMCに100IU/mlのIL-2添加を必要とした。実験当日に分離キット(Stemcell,商品番号17955)の要求によりNK細胞をPBMCから分離し、完全培地で重懸濁(IL-2を含まない)させ、密度0.45×106/mlとした。Treg細胞をCell Trace violet試薬で標識し、標識終了後に密度を0.3×106/mlに調整した。11個の候補抗体を最終濃度の4倍まで完全培地で段階希釈しておいた。実験プレート分布図に従って標的細胞を50μl/ml細胞プレートに播種し、次に希釈した薬物を対応するウェルに播種し、標的細胞と30分間、37°Cで共培養した。培養終了後、エフェクター細胞を加える必要のあるウェルに100μlのエフェクター細胞懸濁液を加え、不要なウェルに100μlの培地を補充し、37°C4時間共培養した。1ウェル当たり1μlのPI染料を加えてから検出を行った。標的細胞中のPIシグナルが強いほどADCC作用が顕著であることを示した。ADCC実験結果(図10と表9)により、陰性対照anti-Hel isotypeは作用標的がないため、ADCC殺傷作用が現れなかった。陽性対照#52号サンプルは明らかなADCC作用曲線を示した。11個の抗体はすべて微弱なADCC活性作用を示した。図10AにヒトTregはTNFR2を高発現し、anti-Hel isotype対照抗体染色と比較して80倍のシフトを示した。図10Bに示された通り、キット分離前のPBMC中のNK細胞の割合が14.5%であり、キット分離後のNK細胞の純度は88.3%であった。図10Cは11抗体のADCC作用を示しており,#52抗体は陽性対照抗体,anti-Hel isotype抗体は陰性対照抗体、Target aloneはNK細胞がなく標的細胞Tregのみの細胞陰性対照である。
備考:被検抗体のADCC作用曲線のAUC値と上陽性対照#52抗体サンプルとを比較し、相対的なADCC活性を得た。
1日に前もってターゲット細胞(CHO-TNFR2)を透明底白色96ウェルプレート(Corning,商品番号:3610)に播種し、検出緩衝液(RPMI1640(Gibco,商品番号:22400105)+0.5%FBS(Gibco,商品番号:10099141)+1*P/S(Gibco,品番:15140-122))を用いて播種し,1ウェルあたり10000個の細胞を播種し、一晩で細胞を壁に貼り付けた。翌日には検出緩衝液を用いて最終濃度の2倍に段階希釈して置いた。プレート中の検出緩衝液を捨てて、1ウェル当たり25ulの新しい検出緩衝液を加えた後、希釈した薬物を対応するウェルに1ウェル当たり25ul添加し、標的細胞と1時間,37℃で共培養した。培養終了後、対応するウェルに2倍の薬物を25ul加え、ADCC細胞懸濁液(BPS,商品番号60541)を25ul、ウェル当たり75000細胞を指定のウェルに加えた。このとき各ウェル内に100ulの混合液を入れ、インキュベータで6時間培養した。培養終了後、ウェルプレートを室温で10分間放置し、あらかじめ室温まで融解したBright-Glo(Promega,商品番号:2620)試薬を1ウェル当たり100ul添加し,ウェルプレートをウェルプレートで500rpmで10分間振とうさせてから、発光値を検出した。発光信号が強いほどADCCの作用が顕著であることを示していた。ADCC実験の結果、陰性対照anti-Hel isotype同型対照抗体は作用標的がなかったため、ADCC殺傷作用を検出しなかった。一方、検出された#001、#219、#224の3つの抗TNFR2抗体はすべてADCC作用を有した(図11)。
ヒトTNFR2タンパク質に結合する際にTNFR2抗体が競合するか否かをBiacoreを用いて検出したことにより、いくつかの抗原エピトープボックス(epitope bin)(AbdicheYN et al.,PlosOne.Mar20,2014)に属することを事前に決定した。ヒトTNFR2はアミノ結合で固定され、選択された固定抗体を注射で結合させ、さらに他の抗体をそれぞれ注射で結合させ、その後固定抗体と他の抗体の注射順序を交互に行った。固定抗体と他の抗体との結合シグナルに前後2つの状態に差があるか否かを比較分析したことにより、ヒトTNFR2タンパク質上の抗体間のbinding epitopeの関係を判定した。具体的には、各サイクルにおいて、すべての抗体の測定に300nMの濃度で180s注入し、650mMのHCl溶液を用いて被測定抗体を溶出させた。
注:Y:エピトープ競合がある。N:エピトープ競合なし
例1の11個の抗ヒトTNFR2抗体はヒトとカニクイザルのTNFR2に特異的に結合し、いずれもマウスのTNFR2に結合しなかったため、抗mTNFR2抗体を代替抗体(surrogate antibody)としてBalb/cマウスにPD-1/PD-L1療法耐性CT26.WT大腸癌動物モデルを作成し、TNFR2標的に関する薬効実験を行った。代替抗体anti-mTNFR2はBioXcell(商品番号BE0247)から購入した。マウス右側皮下に1×105CT26結腸癌細胞を接種した(実験0日目とした)。腫瘍体積が~110mm3に達した場合には、個体の腫瘍体積が適度なマウスを群に選び、動物を腫瘍体積ごとにEXCEL乱数に基づくランダムグルーピング方法を用いて、4つの実験群(G1は対照群、G2はanti-mTNFR2代替抗体群、G3はanti-mPD-L1(BioXcell、商品番号BE0101)抗体群、G4はanti-mPD-1(BioXcell、商品番号BE0146)抗体群に8匹ずつ分配し、グルーピング(13日目)当日に投与を開始した。投与量は,anti-mTNFR2 5mg/kg(mpk),anti-mPD-L1 10mg/kg(mpk),anti-mPD-1 10mg/kg(mpk)で週2回腹腔内投与した。腫瘍の体積と体重は週に3回一定時間測定された。
マウス右側皮下に1×105 CT26.WT結腸癌細胞を接種した(実験0日目とした)。腫瘍体積が~100mm3に達した場合、個体の腫瘍体積が適度なマウスを群に選び、動物を腫瘍体積ごとにEXCEL乱数に基づくランダム群分け方法を用い、6つの実験群(G1は対照群、G2はanti-mTNFR2抗体群、G3はanti-mPD-1抗体群、G4はanti-mTNFR2+anti-mPD-1抗体群)に9匹ずつ分配し、体内薬効学研究に用いられた。グループ分け(14日目)当日に投与を開始した。投与量はanti-mTNFR2 5mpk,anti-mPD-1 10mpkで週2回腹腔内投与した。腫瘍の体積と体重は週に3回一定時間測定された。
Claims (17)
- CDR1-VHと、CDR2-VHと、CDR3-VHとの重鎖CDR組み合わせであって、IMGT解析によれば、CDR1-VHは配列番号74の配列を含み、CDR2-VHは配列番号75の配列を含み、CDR3-VHは配列番号76の配列を含む重鎖CDR組み合わせ、及び
CDR1-VLと、CDR2-VLと、CDR3-VLとの軽鎖CDR組み合わせであって、IMGT解析によれば、CDR1-VLは配列番号80の配列を含み、CDR2-VLは配列番号81の配列を含み、CDR3-VLは配列番号82の配列を含む軽鎖CDR組み合わせ、
を含むか、あるいは
CDR1-VHと、CDR2-VHと、CDR3-VHとの重鎖CDR組み合わせであって、KABAT解析によれば、CDR1-VHは配列番号71の配列を含み、CDR2-VHは配列番号72の配列を含み、CDR3-VHは配列番号73の配列を含む重鎖CDR組み合わせ、及び
CDR1-VLと、CDR2-VLと、CDR3-VLとの軽鎖CDR組み合わせであって、KABAT解析によれば、CDR1-VLは配列番号77の配列を含み、CDR2-VLは配列番号78の配列を含み、CDR3-VLは配列番号79の配列を含む軽鎖CDR組み合わせ、
を含む、TNFR2に特異的に結合する抗体またはその抗原結合フラグメント。 - 重鎖可変領域及び軽鎖可変領域はそれぞれ、配列番号9及び配列番号10に示された配列を有する、請求項1に記載の抗体又はその抗原結合フラグメント。
- ヒトTNFR2に結合する解離定数(KD)が5nM以下であり、カニクイザルTNFR2に結合する解離定数(KD)が5nM以下である、請求項1に記載の抗体又はその抗原結合フラグメント。
- 前記抗体又はその抗原結合フラグメントはキメラ抗体又はヒト化抗体である、請求項1に記載の抗体又はその抗原結合フラグメント。
- 前記抗体又はその抗原結合フラグメントは、ヒトIgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA、IgM、IgE、およびIgDからなる群から選択される定常領域を含む、請求項1から4のいずれか1項に記載の抗体またはその抗原結合フラグメント。
- 前記抗原結合フラグメントは、F(ab)2、Fab’、Fab、Fv、scFv、及び二重特異抗体からなる群から選択される、請求項1に記載の抗体又はその抗原結合フラグメント。
- 請求項1から6のいずれか1項に記載の抗体またはその抗原結合フラグメントをコードするポリヌクレオチド。
- 請求項7に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
- 原核細胞又は真核細胞である、請求項8に記載の発現ベクターを含む細胞。
- 前記細胞は、チャイニーズハムスター卵巣細胞、酵母細胞、昆虫細胞、大腸菌の細胞、及び枯草菌の細胞から選択される、請求項9に記載の細胞。
- 請求項1から6のいずれか1項に記載の抗体又はその抗原結合フラグメント、請求項7に記載のポリヌクレオチド、請求項8に記載の発現ベクター、又は請求項9に記載の細胞、及び、薬学上許容されるベクターを含む医薬組成物。
- 追加の抗腫瘍剤をさらに含む、請求項11に記載の医薬組成物。
- 前記抗腫瘍剤は、化学療法剤、標的治療剤、又は免疫治療剤である、請求項12に記載の医薬組成物。
- 前記免疫治療剤は抗PD-1/PD-L1抗体又は抗CTLA-4抗体である、請求項13に記載の医薬組成物。
- 請求項1から6のいずれか1項に記載の抗体又はその抗原結合フラグメント、請求項7に記載のポリヌクレオチド、請求項8に記載の発現ベクター、又は請求項9に記載の細胞、及び使用説明書を含むキット。
- 請求項1から11のいずれか1項に記載の抗体又はその抗原結合フラグメント、請求項7に記載のポリヌクレオチド、請求項8に記載の発現ベクター、請求項9に記載の細胞、又は請求項11に記載の医薬組成物を含む、免疫異常関連疾患を治療するための医薬であって、
前記免疫異常関連疾患は腫瘍である、前記医薬。 - 可溶性TNFR2を検出するための方法であって、
可溶性TNFR2(sTNFR2)を含む疑いがある試料を、請求項1~6のいずれか1項に記載の抗体又はその抗原結合フラグメントと接触させることを含む、方法。
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