JP7341504B2 - 骨関節炎の関節の為の、生理活性潤滑剤としての脊索細胞マトリックス - Google Patents
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Description
動物ドナーの椎間板から脊索細胞(NC)に富んだ髄核(NP)組織を採取すること;
該NCに富んだNP組織を凍結乾燥して組織内の細胞を破壊し、それによって、乾燥した且つもろいNCマトリックスを得ること;
該乾燥した且つもろいマトリックスを粉砕して、乾燥した且つもろいNCマトリックス粉末を得ること;及び
該NCマトリックス粉末を溶媒中に溶解して、NCM溶液を得ること。
動物ドナーの椎間板から脊索細胞(NC:notochordal cell)に富んだ脊索髄性(NP:nucleus pulposus)組織を採取すること;
該NCに富んだNP組織を凍結乾燥して組織内の細胞を破壊し、それによって、乾燥した且つもろい第1のマトリックスを得ること;
該乾燥した且つもろいマトリックスを溶媒で戻し、そして、該戻されたマトリックスを脱細胞して細胞及び核酸残存物を取り除くこと;
該脱細胞されたマトリックスを凍結乾燥して、乾燥した且つもろい第2のマトリックスを得ること;
該乾燥した且つもろい第2のマトリックスを粉砕して、乾燥した且つもろいNCマトリックス粉末を得ること;及び
該NCマトリックス粉末を水性溶液に溶解して、NCM溶液を得ること。
脊索細胞を含有するブタ髄核組織を凍結乾燥して、組織内の細胞を破壊し、乾燥した且つもろい組織を作製すること;
乾燥した且つもろい組織を処理して、細胞及び核酸残存物を除去すること、ここで、該処理が、ブタ髄核組織内のブタのタンパク質含有物を実質的に維持しながら、ブタ髄核組織からブタ核酸の少なくとも80%除去を結果として生じる;
該処理された材料を更に凍結乾燥し、処理された材料を脊索細胞マトリックス粉末に粉砕すること;及び
該脊索細胞マトリックス粉末を溶液又はゲルに溶解することによって、該脊索細胞マトリックス粉末を可溶化すること
の工程を含む方法
を含む、骨関節炎の関節用の生理活性潤滑剤として脊索細胞マトリックスを作製する方法
によって得ることができる。
ブタNCMの製造
NCに富んだNP組織が、ブタドナーのIVDから採取された(n=5、生後約3カ月)。該組織は、一晩、凍結乾燥され(Labconco社、Kansas City、MO、米国)、乾燥した且つもろいマトリックスを結果として生じ、引き続き、それはマイクロディスメンブレーター(Sartorius社、Goetingen、ドイツ)を使用して粉砕された。該NCM粉末は、一定分量に小分けされ、そして更なる使用まで-80℃で保管された。
関節軟骨のフルデプススライス(Full-depth slices)が、ウシドナー(n=5、約3歳)の中手指節関節から収集され、そして15%ペニシリン-ストレプトマイシン(P/S)を含むリン酸緩衝化生理食塩水(PBS:phosphate-buffered saline)中に集められた。引き続き、軟骨フレークが、0.1%アンホテリシンBの存在下、37℃及び5%のCO2において20分間インキュベートされた。その後、PBS-P/S-アンホテリシン混合物が吸引され、そして軟骨フレークは、消化媒体(10%ウシ胎仔血清(FBS)、1%P/S、0.1%アンホテリシンB、及び0.5%コラゲナーゼII型が補充されたhgDMEM)中、37℃及び5%CO2において一晩で消化された。翌日、細胞懸濁物は70μmセルストレーナーを使用して濾し分けられ、そして軟骨細胞が新鮮なhgDMEM中で2回洗浄された。該軟骨細胞は、1.2%アルギネート(Sigma社、180947、Zwijndrecht、オランダ)中、細胞10百万個/mlで再懸濁され、そしてアルギン酸ビーズがこれまでのプロトコールに従い製造された(Guo等、1989年)。要するに、細胞10百万個が、18G混合針を使用して1mlのアルギネートと混合され、その後、該懸濁物はシリンジ内に吸引された。アルギン酸ビーズは、102mMの塩化カルシウム(Merck社、102378)溶液中に細胞懸濁物を滴下することによって製造された。引き続き、ビーズが0.9%塩化ナトリウム(Merck社、106404)溶液を用いて3回洗浄された後、培養培地に移された。
NCMの同化効果を試験する為に、軟骨細胞が播種されたアルギン酸ビーズが、基本媒体(BM:1%のP/S、1%のITS-1+(Corning社、354352、Lasne、ベルギー)、50mg/mlのアスコルビン酸-2-リン酸塩(Sigma社、A8960)、1.25mg/mlのウシ血清アルブミン(Roche社、10735078001)、及び40mg/mlのL-プロリン(Sigma社、P5607)が補充されたhgDMEM)、NCM(2mg/mlのNCMがBMに添加された)又は陽性対照としての10ng/mlのTGF-β1が添加されたBM中で培養された。更に、NCMが炎症性の環境において再生効果を有するか試験する為に、アルギン酸ビーズがまた5ng/mlのIL-1βの存在下、BM及びNCM中で培養された。アルギン酸ビーズは、1週間に2回、媒体を交換しながら、37℃及び5%CO2において3週間培養された。媒体を交換する毎に、NCM、TGF-β1及びIL-1βが添加された。培養後、アルギン酸ビーズは、生化学アッセイ(0日目及び21日目)若しくは遺伝子発現分析(3日目及び21日目)用として-80℃で保管され、又は(免疫)組織化学的染色(28日目)用としてパラフィン中に包埋された。
生化学的含有量を決定する為に、アルギン酸ビーズが、60℃で、パパイン消化バッファー(100mMのリン酸バッファー(Sigma社、P5244)、5mMのL-システイン(Sigma社、200-157-7)、5mMのエチレンジアミン四酢酸(Sigma社、03620)、及び140mg/mLのパパイン(Sigma社、P4762))中、一晩、消化された。該消化されたサンプルから、GAG含有量が、サメ軟骨コンドロイチン硫酸(Sigma社、C4384)が参照物質として使用された従前のプロトコール18から改変が施されたジメチルメチレンブルー(DMMB:dimethyl-methylene blue)アッセイ法を用いて決定された。ヒドロキシプロリン含有量が、トランス-4-ヒドロキシプロリン(Sigma社、H54409)参照物質を用いたChloramin-Tアッセイ19を使用して測定された。DNA含有量が、Qubit定量プラットフォーム(Invitrogen社)を使用して測定された。
遺伝子発現分析が、1群毎にプールされた3つのアルギン酸ビーズにおいて実施された。アルギン酸ビーズは、クエン酸ナトリウムバッファー(RNAseを含まない水に溶解された55mMのクエン酸三ナトリウム二水和物(Merck社、1064480500)、0.15Mの塩化ナトリウム、25mMのHEPES(Sigma社、H3375)、7.4にpH調整)中に、室温で5分間、溶解された。遠心分離後、細胞ペレットが、1%のβ-メルカプトエタノールを含む300μlのRLTバッファー(Qiagen社、74104、Venlo、オランダ)中に溶解された。RNAが抽出され、そしてオンカラムDNAse消化工程を含むQiagenミニキット(Qiagen社、74104)を使用して精製された。分光光度計(ND-1000、Isogen、de Meern、オランダ)が、単離されたRNAの量及び純度を試験するのに使用された。ゲノムDNAが存在しないことが、マイナス-RT反応(iCycler;Bio-Rad社、Veenendaal、オランダ)を用いて検証された。cDNAが、VILO-kit(Invitrogen社、11754050)を使用して合成された。試験された遺伝子及びその対応するプライマー対が表1に掲載されている。リボソームタンパク質L-13(RPL-13)が、その発現が全ての培養条件全体を通じて最も安定であったので参照遺伝子として選択された。遺伝子発現がリアルタイムqPCR(CFX384、Bio-Rad社)を使用して調査され、そして発現が、2-Ct法に従って報告される。統計比較が可能となるように、シグナルが得られなかったサンプルについてCt数値は40に設定された。
ウシ後膝関節(n=4、2歳、オス)が、Kroon Vlees b.v.,Groningen,オランダから得られた。過剰の皮膚が除去され、且つ関節が軟骨表面に損傷を与えないように慎重に開放された。直径12mmの骨軟骨プラグ合計14個が、中空のドリルビットを使用して大腿顆から穿孔された。穿孔期間中、軟骨は、サンプルの過熱を防止する為に、PBSを用いて継続的に保湿された。関節から骨軟骨プラグを除去した後、それらは、摩擦学試験(tribological tests)で使用されるまで氷上のPBS中に2時間を超えずに保管された。
摩擦学試験が、UMT-3(ユニバーサル・メカニカル・テスター、Bruker Corporation社、米国)を使用してレシプロ式スライディング法で実施された。ガラス表面は、加温した水盤(33℃、膝関節の温度)中に固定され、液体/潤滑剤のフィルムが表面を被覆するに任せた。骨軟骨プラグがロードセル上に取り付けられ、そしてレシプロ式の構成でガラス表面に対してスライドさせた。この試験では、骨軟骨プラグは、3群に分割された。第1群(n=5)の場合、ガラス表面は、最初PBS中に浸漬され、その後プラグは、正常負荷である4Nが測定されるまでガラスに押し付けられたが、それは最近の試験20で使用されたように、<0.25MPaの低い接触圧をもたらす。次にレシプロ式のスライディングが、一定した通常負荷の下、6mm/秒において20サイクル(55mm一方向)実施され、その直後に60mm/秒において20サイクルが続いた。その後、該プラグは、負荷解除され、そしてPBSが吸引され、及び5mg/mlのウシ血清アルブミンを含むPBS(PBS+BSA)により置換され、試験が反復された。その後、この手順は、4mg/mlのヒアルロン酸を含むPBS+BSA(PBS+BSA+HA)を用いて、及び4mg/mlのNCMを含むPBS+BSA+HA(PBS+BSA+HA+NCM)を用いてやはり反復された。第2群(n=5)の場合、同一の試験が、異なる媒体群:PBS、PBS+BSA、4mg/mlのNCMを含むPBS+BSA(PBS+BSA+NCMl)、及び10mg/mlのNCMを含むPBS+BSA(PBS+BSA+NCMh)を用いて実施された。試験期間中に、通常の力及び摩擦力がモニタリングされ、そしてデータをフィルターにかけて、試験スピードが設定スピードに近いデータポイントのみを取り込み(10%の誤差は許容された)、及び摩擦係数(CoF)を計算する為に、特注のMatlabスクリプトが使用された。測定毎に20回目のサイクルにおいて取得されたCoFが、接触面積の差異について補正する為に、PBS単独でのその各測定に対して標準化された。第3群(n=4)の骨軟骨プラグの場合、2つのスピードにおいて反復されたスライディングが、軟骨表面、従って測定されたCoF値に影響を及ぼさなかったことを検証する為に、同一の手順が、但し各ラウンド新鮮なPBS中で実施された。
社会科学用の統計パッケージを用いて統計解析が実施された(SPSS、バージョン22;IBM社、Armonk、NY)。正規性がシャピロウィルク検定を使用して検定された。生化学データ及び遺伝子発現データでは、一元配置分散分析(ANOVA)が実施され、そしてボンフェローニ補正を含め事後検定を行う独立したt検定が後続した。遺伝子発現データでは、時間的要因ではなく媒体群間の差異のみが興味の対象であったので、各時点において二元配置分散分析よりはむしろ一元配置分散分析が実施された。摩擦学的なデータの場合、異なる潤滑剤群に由来する標準化されたCoF値が、ボンフェローニ補正を含む事後的な方式で、対応のあるt検定(プラグ内比較の場合)又は独立t検定(プラグ間比較の場合)を用いて比較された。PBS対照測定の場合、反復測定分散分析が、それぞれ6及び60mm/秒において20サイクルからなる4つの連続的な試験から得られたCoF値を比較する為に使用された。
NCMの再生能力
NCM及びTGFの両方の添加は、BMと比較してGAG含有量の増加を結果として生じた(図1a)。その上、NCMを用いた場合のGAG含有量は、TGFと比較してそれより有意に高かった。類似したパターンがDNA含有量について認められ、BMと比較してTGFでは増加したが、しかしながらNCMを用いた場合よりも更に増加した(図1b)。これらのデータは、BMと比較して、NCM及びTGFにおいて、DNAに対するGAGの比について類似した増加に帰結する(図1c)。また、コラーゲン含有量に対する尺度としてのヒドロキシプロリンは、BMと比較してNCM及びTGFの両方について増加した(図1d)。アルシアンブルー染色は、NCM及びTGFについてGAG含有量の増加を確認した(図1e)。コラーゲン免疫染色から、II型コラーゲンの沈着は、BMと比較して、主にビーズの端部においてNCMによって、しかしながら特にTGFによって刺激を受けているようである。I型コラーゲンの沈着は、TGFによって影響を受けないように見えたが、NCM内で培養されたビーズはより強く染色された。
NCMもまた、炎症性刺激の存在下で再生能力を有するか決定する為に、軟骨細胞が播種されたアルギン酸ビーズが、IL-1βの添加有り及び添加無しで、BM及びNCMにおいて培養された。しかしながら、BM及びNCMにIL-1βを添加しても、IL-1βを含まないそのカウンターパートと比較して、GAG、DNA、DNAに対するGAG、及びヒドロキシプロリン含有量に影響を及ぼさなかった(図3a~図3d)。アルシアンブルー染色は、IL-1βを含む、及び含まないBMと比較して、IL-1βを含む、及び含まないNCMについて、GAG含有量の増加を確認した(図3e)。興味深いことに、免疫染色は、IL-1βをBMに添加すると、II型コラーゲンが減少することを示唆したが、一方、IL-1βをNCMに添加した場合には、これは明確に観測されなかった。更に、IL-1βを添加すると、BMにおいてI型コラーゲンの生成が増加するように思われたが、しかしながらNCMには当てはまらない。
6mm/秒及び60mm/秒の両方において(図5a及び図5b)、BSAのPBSへの添加は、相違をもたらさなかった、又はCoFに若干の増加をもたらした。6mm/秒では、HA及びより少量のNCM(NCMl)の添加は、20サイクルスライディングした後、BSAを含むPBSと比較して、CoFにおいて有意な減少(約27%)を結果として生じた(図5a)。NCMlとHAとの組み合わせの添加は、CoFにおいてより強い低下(45%)を結果として生じ、それはBSA単独と及びHAを含むBSAと比較して有意に低かったが、しかしながらNCMlを含むBSAと比較した場合には有意に低くなかった。CoFにおける最強の低下(53%)がNCMhの添加で観察されたが、その場合CoFは、BSAと、並びにHAを含むBSAとNCMlを含むBSAとの両方と比較して有意に低かった。
馴化培地の形態で適用されるNC分泌型因子は、NPC及びBMSCに対して同化作用性、増殖性、及び軟骨形成性の潜在能力を示した(12~17)。NPCと軟骨細胞との間の類似性に起因して、NC分泌型因子のIVD用途から軟骨細胞/軟骨の分野への置き換えは論理的と思われる。実際、NC馴化培地は、最近ヒトOA軟骨細胞に対する同化作用及び抗炎症効果も示した。NCMの直接適用は、NPCに対して、NC馴化培地と比較してそれよりも強い同化作用さえも有したので(de Vries、投稿済み)、NCMは軟骨細胞に対しても刺激性の効果をやはり有することは妥当と思われた。従って、本試験は、OA関節内に注射する際の関節痛みを最小限に抑えると同時に、常在性軟骨細胞に再生刺激を提供する、生理活性関節内補充療法用の潤滑剤としての新規NCMアプローチのフィージビリティーについて試験した。
BMと比較して、NCMの場合、GAG、DNA、単位DNA当たりのGAG、及びヒドロキシプロリン含有量の増加によって示されるように、NCMはウシ軟骨細胞に対して強力な同化作用を発揮したので、NC馴化培地及びNCMに関するこれまでの知見は最新の結果と整合している。NCMは、10ng/mlのTGF-β1の添加と比較して、単位ビーズ含有量当たりいっそうより高いGAG及びDNAを結果として生じた。しかしながら、コラーゲン免疫組織化学は、BM及びTGFと比較して、NCMについてI型コラーゲンの沈着の増加を明らかにしたが、それは21日目におけるNCMでのCOL-1の発現増加と整合する。培養群間のII型コラーゲン沈着における相違は、それほど識別可能ではなかったが、II型コラーゲンは主にNCMを含むビーズの端部に一貫して存在した一方、TGF-β1を添加すると、ビーズ全体を通じて沈着した。これは、TGF-β1は、NCMの1以上の活性成分よりも小さく、ビーズ中により容易に拡散することができることを示しうる。従って、TGF-β1は、その効果をより多数の細胞に対して発揮するものであり、NCMと比較してTGF-β1において、ACAN及びCOL-2遺伝子についてより高い発現レベルが観測されることを説明する。これと整合して、NCMの再生能力が、NPCが播種されたアルギン酸ビーズにおいて試験されたこれまでの試験成績において、NCMは、アルギン酸ビーズ全体を通じて、I型コラーゲンよりはむしろII型コラーゲンの沈着を増強するように思われた(De Vries、Stefan等(2018年6月)、前出)。当該試験では、細胞3百万個/mlの密度でNPCが播種されたが、本試験では軟骨細胞は細胞10百万個/mlで播種され、NCMの生理活性因子の限定された拡散が、本試験においてより大きな役割を演じうることを示している。代替的には、NPC及び軟骨細胞は、その類似性にもかかわらず、コラーゲンの沈着に関してNCM刺激に対して異なる応答を示す可能性、又はこれまでの試験で使用されたNPCは、本試験における軟骨細胞と比較してそれよりも健康な状態にある可能性がある。それにもかかわらず、NCMの刺激はII型コラーゲンではなくI型コラーゲンの刺激であるにもかかわらず、強いマトリックス同化作用を示し、そして疾患状態下でのそれらの効果について、より踏み込んだ特徴づけを行う為に、更なる試験が必要とされる。
炎症性サイトカインは、次に異化作用性の因子、例えばMMP及びADAMTS、の放出を刺激し、OAの発現及び進行において中心的役割を演ずる。それ故に、この試験は、NCMは炎症性刺激の存在下で軟骨細胞の再生応答も誘発することができるか試験した。遺伝子発現結果は、主に21日目において、IL-6及びIL-8発現レベルの増加によって明らかにされるように、BMにIL-1βを添加することで、実際、炎症性の環境を結果として生じたことを示唆する。その上、IL-1βは、BMにおいて21日目にMMP-13及びADAMTS-5発現レベルが増加したことによって明らかにされるように、遺伝子レベルで異化作用を誘発した。しかしながら、IL-1βを用いてNCM群を処置しても、BM又はNCM単独と比較してこれらの遺伝子の発現レベルの増加を引き起こさず、NPC上でNCMの効果について試験している、これまでのイン・ビトロ(in vitro)及びイン・ビボ(in vivo)での試験においても認められたように、NCMは抗炎症能力及び抗異化作用能力を有することを示唆する(de Vries、Stefan等(2018年6月)、前出;Bach FC等(2018年)、前出)。興味深いことに、IL-1βをBM又はNCMに添加しても、IL-1β及びTNFαはそれに応答しなかったが、それはこれまでの知見と整合しない(21)。これまでの実験は、炎症性刺激に対してより敏感である可能性がある比較的高齢のヒトドナーから得られた軟骨細胞を使用したので、これは、種及び/又は年齢の差異に起因しうる。それにもかかわらず、IL-1β遺伝子発現は、両BM群と比較して両方NCM群において有意に低く、それはNCMの抗炎症能力を際立たせる。
軟骨細胞に対するその再生効果に加えて、本試験は、低濃度(4及び10mg/ml)のNCM溶液は、軟骨CoFを低下させることができることを示す。従って、NCMは、HAを有し又は有しないで、OA関節潤滑剤として適用されうる。
結論として、この試験は、NCMがウシ軟骨細胞に対して再生効果を発揮し、且つ関節軟骨に対して強い潤滑特性を有することを実証する。それ故に、NCMはOAに対する療法として有望であり、ここで、NCMは、痛みを最小限に抑える為に、関節中に注射する際に直接適用されうる一方、同時に、常在性軟骨細胞に対して再生刺激(罹患した軟骨組織を健康な状態に向けて修復しうる)を誘発する。更なる試験が、より生理学的モデルにおけるNCMの再生効果、及びNCMを臨床的に応用する為の処置法に重点が置かれるべきである。
Claims (12)
- 骨関節炎(OA)の処置において使用される剤であって、脊索細胞マトリックス(NCM)溶液を含む前記剤。
- 前記剤が、OAを患う患者の関節炎の関節における痛みを処置する為に使用される、請求項1に記載の剤。
- 処置されることが出来る関節炎が、OAを患う患者の膝、肘、足関節、指、及び/又は股関節である、請求項1又は2に記載の剤。
- 前記剤が潤滑剤として使用される、請求項1~3のいずれか1項に記載の剤。
- 前記剤が、関節内補充療法における生理活性潤滑剤として使用される、請求項1~4のいずれか1項に記載の剤。
- 前記NCM溶液が、1~100mg/mlのNCマトリックス粉末の濃度を有する、請求項1~5のいずれか1項に記載の剤。
- 前記NCM溶液が、1~50mg/mlのNCマトリックス粉末の濃度を有する、請求項1~5のいずれか1項に記載の剤。
- 前記NCM溶液が、ヒアルロン酸を更に含む、請求項1~7のいずれか1項に記載の剤。
- 前記NCM溶液が水性溶液である、請求項1~8のいずれか1項に記載の剤。
- 請求項1~9のいずれか1項に記載の剤を調製する方法であって、該方法が該NCM溶液を調製する工程を含み、該NCM溶液が、
動物ドナーの椎間板から脊索細胞(NC:notochordal cell)に富んだ脊索髄性(NP:nucleus pulposus)組織を採取すること;
該NCに富んだNP組織を凍結乾燥して該組織内の細胞を破壊し、それによって、乾燥した且つもろいマトリックスを得ること;
該乾燥した且つもろいマトリックスを粉砕して、乾燥した且つもろいNCマトリックス粉末を得ること;及び
該NCマトリックス粉末を水性溶液中に溶解して、NCM溶液を得ること
の工程を含む方法によって得られうる、前記方法。 - 請求項1~9のいずれか1項に記載の剤を調製する方法であって、該方法が該NCM溶液を調製する工程を含み、該NCM溶液が、
動物ドナーの椎間板から脊索細胞(NC)に富んだ脊索髄性(NP)組織を採取すること;
該NCに富んだNP組織を凍結乾燥して組織内の細胞を破壊し、それによって、乾燥した且つもろい第1のマトリックスを得ること;
該乾燥した且つもろいマトリックスを溶媒で戻し、そして、該戻されたマトリックスを脱細胞して細胞及び核酸残存物を取り除くこと;
該脱細胞されたマトリックスを凍結乾燥して、乾燥した且つもろい第2のマトリックスを得ること;
該乾燥した且つもろい第2のマトリックスを粉砕して、乾燥した且つもろいNCマトリックス粉末を得ること;及び
該NCマトリックス粉末を水性溶液に溶解して、NCM溶液を得ること
の工程を含む方法によって得られうる、前記方法。 - 前記椎間板が、ブタの椎間板である、請求項10又は11に記載の方法。
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