JP7333081B2 - 病的タンパク質凝集の検出 - Google Patents
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Description
(a)対象から細胞外小胞サンプルを用意する工程;および
(b)細胞外小胞サンプル中の病的プリオン様タンパク質の存在を判定する工程。場合によっては、タンパク質ミスフォールディング神経変性障害は、アルファシヌクレイノパチーであり、病的プリオン様タンパク質は、アルファ-シヌクレインである。
a)タンパク質ミスフォールディング神経変性障害は、パーキンソン病、レビー小体型認知症、および多系統萎縮症からなる群から選択されるアルファシヌクレイノパチーであり;病的プリオン様タンパク質は、病的アルファ-シヌクレインであり;
b)タンパク質ミスフォールディング神経変性障害は、クロイツフェルト・ヤコブ病であり;病的プリオン様タンパク質は、プリオンタンパク質であり;
c)タンパク質ミスフォールディング神経変性障害は、アルツハイマー病であり;病的プリオン様タンパク質は、病的アミロイドベータであり;
d)タンパク質ミスフォールディング神経変性障害は、アルツハイマー病、前頭側頭葉変性症、進行性核上性麻痺、または皮質基底核変性症からなる群から選択されるタウオパチーであり;病的プリオン様タンパク質は、病的タウタンパク質であり;
e)タンパク質ミスフォールディング神経変性障害は、ハンチントン病であり;病的プリオン様タンパク質は、病的ハンチンチンタンパク質(huntingtin protein)であり;
f)タンパク質ミスフォールディング神経変性障害は、運動ニューロン疾患であり;病的プリオン様タンパク質は、病的スーパーオキシドジスムターゼ、c9orf72、およびバロシン、ならびに運動ニューロン疾患に関連する他のプリオン様タンパク質からなる群から選択され;
g)タンパク質ミスフォールディング神経変性障害は、デンタトパリドルブロルイジアン萎縮症であり;病的プリオン様タンパク質は、病的アトロフィンタンパク質であり;または
h)タンパク質ミスフォールディング神経変性障害は、脊髄小脳失調症であり;病的プリオン様タンパク質は、病的アタキシンであり、場合によっては、病的アタキシンは、アタキシン-1、アタキシン-2、およびアタキシン-3からなる群から選択される。
i)対象由来の生体サンプルを用意する工程;および
ii)サイズ排除クロマトグラフィを使用して、生体サンプルから細胞外小胞サンプルを得る工程。
a)対象の細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程;
b)少なくとも1つのセラミド種の評価量を、少なくとも1つのセラミド種についての参照値と比較する工程;
ここで、少なくとも1つのセラミド種についての参照値よりも大きい少なくとも1つのセラミド種の評価量が、アルファシヌクレイノパチーを示す。
a)対象の細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程;
b)少なくとも1つのセラミド種の評価量を、少なくとも1つのセラミド種についての参照値と比較する工程;
ここで、少なくとも1つのセラミド種についての参照値よりも大きい少なくとも1つのセラミド種の評価量が、対象がアルファシヌクレイノパチーを発症するリスクが高いことを示す。
(a)対象から細胞外小胞サンプルを用意する工程;および
(b)細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程。
a)対象の細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程;
b)少なくとも1つのセラミド種の評価量を、少なくとも1つのセラミド種についての参照値と比較する工程;
ここで、少なくとも1つのセラミド種についての参照値よりも大きい少なくとも1つのセラミド種の評価量が、対象がアルファシヌクレイノパチー用の処置から利益を得ることとなることを示す。
i)対象由来の生体サンプルを用意する工程;および
ii)サイズ排除クロマトグラフィを使用して、生体サンプルから細胞外小胞サンプルを得る工程。
これにより、疾患の進行の初期段階での早期の介入および/または処置の開始が可能となる。また、高リスクの個体(すなわち、疾患を発症する可能性が非常に高い、または可能性がより高い個体)を監視して、処置または予防措置を、最も早い機会に実施できるようにする手段を提供する。この文脈において、本発明者らは、本明細書中に記載される方法を使用して、臨床症状が発生する前であっても、前駆アルファシヌクレイノパチーを首尾よく検出することができることを示した。したがって、本明細書中に記載される方法は、疾患(または疾患のリスク)の初期段階を検出、監視、かつ識別するのに使用することができる。したがって、パーキンソン病等のアルファシヌクレイノパチー患者の早期臨床評価のための、疾患の特徴を検出するより感度の高い手段を提供する。
本明細書中の他の場所で説明されているように、病的アルファ-シヌクレインは、ベータ-シートフィブリルに凝集する傾向があり、そして二量体および三量体の形成を開始してから、フィブリルとして沈着し、かつ凝集体として成熟する可溶性オリゴマーおよびプロトフィブリルを形成する場合がある。したがって、病的アルファ-シヌクレインは、アルファ-シヌクレイン凝集体/アルファ-シヌクレイン凝集の存在によって直接検出することができる。当該タンパク質の凝集を検出するいくつかの方法が周知であり、immunoEM、RT-QuIC、およびPMCAが挙げられる。
i)対象由来の生体サンプルを用意する工程;および
ii)サイズ排除クロマトグラフィを使用して、生体サンプルから細胞外小胞サンプルを得る工程。次に、細胞外小胞サンプルを、本明細書中の他の場所に記載されているように、病的プリオン様タンパク質の存在についてアッセイする。
immunoEM、RT‐QuIC、およびPMCAが挙げられるがこれらに限定されない、適切な種々のアッセイタイプが当業者に知られている。これらのアッセイのそれぞれについての詳細な方法論が、Fairfoul et al.,2016およびAtarashi et al.,2011(RT-QuICについて);ならびにHerva et al.,2014、Gonzalez-Montalban et al.,2011、およびSalvadore et al.,2014(PMCAについて)からわかるように、当該技術分野において十分に確立されている。
特定の例において、Fairfoul et al.,2016のRT-QuIC法を使用して、本明細書中に記載されるEVサンプル中の病的プリオン様タンパク質の存在について、特にEVサンプル(CSF、脳組織ホモジェネート、血漿、血清、血小板、またはバフィーコートから選択される生体サンプルから得られるEVサンプル等)中の病的アルファ-シヌクレインの存在についてアッセイする。
(a)対象から細胞外小胞サンプルを用意する工程;および
(b)細胞外小胞サンプル中の病的プリオン様タンパク質の存在を判定する工程。
a)病的プリオン様タンパク質の存在について、対象由来の細胞外小胞サンプルをアッセイする工程;
b)処置後に対象から得られる細胞外小胞サンプルを使用して、工程a)を、ある時間間隔で(for a time interval)繰り返す工程;および
c)工程a)において判定された病的プリオン様タンパク質のレベルを、工程b)において判定されたレベルと比較して、処置後に病的プリオン様タンパク質のレベルが低下していれば、処置レジメンが治療効果を有すると確認する工程。
a)病的プリオン様タンパク質の存在について、対象由来の細胞外小胞サンプルをアッセイする工程;
b)処置レジメンの所定の開始後に対象から得られる細胞外小胞サンプルを使用して、工程a)を繰り返す工程;および
c)工程a)において判定された病的プリオン様タンパク質のレベルを、工程b)において判定されたレベルと比較して、処置後に病的プリオン様タンパク質のレベルが低下していれば、対象は所定の治療レジメンを順守または厳守してきたと確認する工程。
a)対象の細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程;ならびに
b)少なくとも1つのセラミド種の評価量を、少なくとも1つのセラミド種についての参照値と比較する工程;
ここで、少なくとも1つのセラミド種についての参照値よりも大きい少なくとも1つのセラミド種の評価量が、アルファシヌクレイノパチーを示す。
a)対象の細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程;
b)少なくとも1つのセラミド種の評価量を、少なくとも1つのセラミド種についての参照値と比較する工程;
ここで、少なくとも1つのセラミド種についての参照値よりも大きい少なくとも1つのセラミド種の評価量が、対象がアルファシヌクレイノパチーを発症するリスクが高いことを示す。
i)対象由来の生体サンプルを用意する工程;および
ii)サイズ排除クロマトグラフィを使用して、生体サンプルから細胞外小胞サンプルを得る工程。
(a)対象から細胞外小胞サンプルを用意する工程;および
(b)細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程。
a)対象の細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程;
b)少なくとも1つのセラミド種の評価量を、少なくとも1つのセラミド種についての参照値と比較する工程;
ここで、少なくとも1つのセラミド種についての参照値よりも大きい少なくとも1つのセラミド種の評価量が、対象がアルファシヌクレイノパチー用の処置から利益を得ることとなることを示す。
a)対象の細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程;
b)処置後に対象から得られる細胞外小胞サンプルを使用して、工程a)を、ある時間間隔で繰り返す工程;および
c)工程a)において判定された少なくとも1つのセラミド種の量を、工程b)において判定された量と比較して、処置後に少なくとも1つのセラミド種の量が低下していれば、処置レジメンが治療効果を有すると確認する工程。
a)対象の細胞外小胞サンプル中の、Cer 32:1、Cer 33:1、Cer 34:1、Cer 34:2、Cer 37:1、Cer 38:1、Cer 38:2、Cer 39:1、Cer 39:2、Cer 40:1、Cer 40:2、Cer 41:1、Cer 41:2、Cer 40:1(OH)、およびCer 40:2(OH)からなる群から選択される少なくとも1つのセラミド種の量を評価する工程;
b)処置レジメンの所定の開始後に対象から得られる細胞外小胞サンプルを使用して、工程a)を繰り返す工程;ならびに
c)工程a)において判定された少なくとも1つのセラミド種の量を、工程b)において判定された量と比較して、処置後に少なくとも1つのセラミド種の量が低下していれば、対象は所定の治療レジメンを順守または厳守してきたと確認する工程。
初期分析
死後の脳脊髄液の15のサンプル(11がパーキンソン病+レビー小体型認知症(シヌクレイノパチー)、そして4が対照)。全ての症例を、臨床的かつ神経病理学的に検証した。
本発明者らは、Perez-Gonzalez(2012)によって大幅に変更されたプロトコルを使用して、脳組織からEVを精製した。品質チェック分析を、前述のCSF EVに従って、すなわち、小胞の純度、濃度、およびサイズを検証するためにTRPSおよび透過型電子顕微鏡を使用して、実行した(図8)。小胞マーカーを、ウエスタンブロッティングによって判定した(図9および図10)。カルネキシンの不在は、小胞の純度、および細胞物質による夾雑の欠如を証明している。本発明者らは、いくつかの神経小胞タンパク質の形態、すなわちシナプトフィジンおよびsnap25、ならびに小胞と付随すると思われるごく少量のミトコンドリアタンパク質TFAM(小胞内のミトコンドリア全体の不在を証明する、ミトコンドリア膜マーカーであるポリンの不在に注目)を検出した。免疫電子顕微鏡法を使用して、EVに関する位置(小胞内または結合)を判定することができる。本発明者らは、患者および対照において、小胞画分中のアルファ-シヌクレインを検出して、ELISAを使用して定量化した(図11)。アルファ-シヌクレインレベルの有意な変化は検出されなかった。
RTQUICアッセイを、精製したCSF小胞およびプロセシング未処理のCSFを使用して実行した。精製した小胞を使用した場合、アッセイは、100%の感度および100%の特異性を示した。さらに、疾患の前駆症状を検出した(臨床的には、パーキンソン症候群も記憶障害もない対照。しかし、軽度の神経病理学的変化が脳に見られ得、これは経時的に、臨床的に明らかな疾患に進行することが示唆されている)。以前にFairfoul 2016に発表されたRTQUICのプロトコル。アッセイの陽性対照を、図13に示す。
RTQUICを使用した以前の研究では、プロセシング未処理の血漿、血小板、またはバフィーコートを使用した場合に、アルファ-シヌクレインの病理は検出されなかった(図13)。本発明者らは今般、血漿および血小板に由来する精製したEVサンプルにRTQUICを使用した。代表的なデータを図14および図15に示す。血漿由来の細胞外小胞を使用すると、疾患シグナルの検出が大幅に向上した。有利には、本明細書中に記載する方法を使用して、本発明者らは、疾患の臨床前症状であり得る、サンプル由来の陽性シグナルを検出することができる。
以下の臨床的かつ神経病理学的診断を受けた個体由来の、死後CSFの6つのサンプルを試験した:パーキンソン病(PD、1サンプル)、レビー小体型認知症(DLB、3サンプル)、および健康対照(2サンプル)。また、パーキンソン病の脳ホモジェネート、ならびにDLBおよび対照の、前頭皮質から単離した細胞外小胞を試験した。
1 死後CSFサンプル-サンプル毎に分析した全4反復における、レビー小体の病変を検出する際の100%の特異性(図18、図19、および図20)。
2 尿サンプル-病状を盲検化して、サンプルを分析した(図21および図22)。結果は、本発明者らが、双方の反復においてMSAの症例を明確に識別することができたことを示している。
死後のCSFおよび血漿からの細胞外小胞の精製:
凍結したCSF、血漿、および血小板を氷上で解凍して、激しくボルテックスして、チューブの壁に付着した可能性のあるものを全て、溶液中に戻した。CSFおよび血漿を、遠心分離によってプレクリアリングする;CSF 1500g、3000g、および10,000g、各工程10分;血漿1500g、3000g、3000g、10分の各工程。
細胞外小胞を、Perez-Gonzalez et al.2012から大幅に変更されたプロトコルに従って、凍結組織から精製した。最低600mgの凍結した前頭皮質を氷上で解凍して、切開した。組織を、5 mM L-システイン(Sigma)およびパパイン(Sigma、最終濃度20ユニット/ml)を補充したHibernate E(Gibco、ThermoFisher)中で37℃にて15分間、振盪しながら解離させた。プロテアーゼインヒビタカクテル(Roche)を含むHibernate Eを、総容量10mlにまで加えて、10mlセロロジカルピペットに通過させることによって、組織を穏やかにホモジェナイズした。解離した組織を、40μmメッシュフィルタを使用して濾過して、濾液を300g-10分、2000g-10分、そして10,000g-30分にて遠心分離した。各工程で上清を収集した。最終の上清を、0.45μmフィルターを使用してさらに濾過して、VivaSpin Turbo 4遠心濃縮機(Sartorius)を使用して500μlに濃縮した。このサンプルを、SEC qEVカラムにアプライして、EV単離について、CSF EVに従ってプロセシングした。
PBS中5μlの小胞懸濁液を、グロー放電させた炭素被覆銅グリッドに数秒間アプライした。グリッドを、濾紙に接触させることによって乾燥させて、2%酢酸ウラニルで数秒間染色した。グリッドを乾燥させた。グリッドを、Philips CM 100 Compustage(FEI)透過型電子顕微鏡を使用して調査して、デジタル画像を、AMT CCDカメラ(Deben)を使用して収集した。
18μlのエキソソーム抽出物を、メーカーの説明書に従って、Invitrogen NuPAGE 4-12% Bis-Trisゲル電気泳動システムを使用して、ウエスタンブロット分析にかけた。CD63およびCD81を、非還元条件下で試験した。全ての抗体をAbcamから購入したが、Alix(Cell Signalling)およびSNAP25(Sigma)を除く。抗体をメンブレンと共に4℃にて一晩、続いて適切な二次抗体(Dako)と室温にて1時間インキュベートして、Pierce ECL Plusウエスタンブロッティング基質またはSuperSignal West Femto Maximum Sensitivity Substrateを使用して現像した。シグナルを、Amersham Imager 600で検出した。
EV脂質を、クロロホルム/メタノール(2/1、v/v)中に抽出した。C18カラムおよびHILICカラムを使用する高解像度のThermo Orbitrap Exactiveシステムを、ポジティブイオンモードおよびネガティブイオンモードで使用して、包括的(非ターゲット)リピドーム分析を、液体クロマトグラフィ質量分析(LC-MS)によって実行した。データセットを、Non-Linear Dynamics Progenesis QIソフトウェアを使用してプロセシング(アライン、デコンボリューション、および正規化)した。SIMCA-Pソフトウェアを使用して、データセットを多変量データ分析(主成分分析(PCA)および直交部分最小二乗法-判別分析(OPLS-DA))にかけることによって、脂質プロファイルの乱れ(相対変化)を判定した。脂質の識別は、LIPID MAPS(www.lipidmaps.org/)、HMDB(http://www.hmdb.ca/)データベースを検索することによって行った。脂質クラスを、主要な脂質クラスの代表である内部標準との比較によって定量化した。統計分析には、データセットに従って、Shapiro-Wilk正規性検定に続く、一元配置Anova、対応のないt検定、またはノンパラメトリック検定を含めた。
St Andrews UniversityのEM施設内で実行した。
ELISAプレートを、抗アルファ-シヌクレイン10D2抗体(Analitik Jena、1:2000)(コーティングバッファー(炭酸-重炭酸バッファー:50mlの0.2M重炭酸ナトリウム+5mlの0.2M炭酸ナトリウム)中)で、ウェルあたり100μlの総容量で4℃にて一晩コーティングした。ウェルを、リン酸緩衝生理食塩水+0.2%Tween(PBST)で3回洗浄した。プレートを、ウェルあたりPBST中1%BSAの200μlでブロックして、ロッキングプレート上で1時間撹拌した。その後、PBSTで1回洗浄した。組換えアルファ-シヌクレイン標準(Sigma-Aldrich;40~0.001ng/μl)およびサンプルを、PBS+0.2%Tween中で調製して、ウェルあたり100μlをロードして、ロッキングプレート上で2時間撹拌した。ウェルをPBSTで3回洗浄した。検出抗体αβシヌクレイン(Abcam、1:1500)(PBST中1%BSA中)を加えて(ウェルあたり100μl)、ロッキングプレート上で1時間撹拌してから、PBSTで3回洗浄した。コンジュゲートヤギ抗ウサギAP(Santa Cruz、1:1000)(PBST中1%BSA中)を、ウェルあたり100μlの総量で加えて、ロッキングプレート上で1時間撹拌してから、PBST中で3回洗浄した。pNPP(p-ニトロフェニルホスファート;Sigma-Aldrich)基質を、基質バッファー(0.05M炭酸ナトリウム+0.001M MgCl2(dH2O中))中1mg/mlにて加えて、ウェルあたり100μlをロードした。プレートを37℃にて30分間インキュベートして、吸光度を412nmにて記録した。
RTQUICを、Fairfoul at al.2016において以前に発表されたように実行した。
超遠心分離を用いた、死後の脳脊髄液サンプルからの細胞外小胞の精製。
凍結した尿サンプル(35ml~100ml)を解凍して、激しくボルテックスして、4℃での、1500×gにて10分間、3000×gにて10分間、そして4600×gにて30分間の遠心分離によって、プレクリアリングした(上清を毎回遠心分離にかけた)。最終の上清を、分子量カットオフ100kDaのAmicon限外濾過ユニット(Merck Millipore)を使用して、500μlに濃縮した。濾液を、16100×gにて4℃にて10分間遠心分離して、上清を、メーカーの推奨に従って、qEVオリジナル70nm SECカラム(Izon)を使用したサイズ排除クロマトグラフィ(SEC)にかけた。1500μlの小胞画分を収集して、分子量カットオフ3kDaのAmicon限外濾過ユニット(Merck Millipore)を使用して濃縮した。サンプルを、ネガティブ染色、およびHitachi HT7800 120kV電子顕微鏡による透過型電子顕微鏡法を使用して、画像化した。
タンパク質凝集アッセイを、Fairfoul et al.(2016)に以前に記載されるように実行した。ThermoFisher VarioskanLUX Multimodeプレートリーダーを使用して反応を走らせて、蛍光シグナルの測定を、115時間にわたって15時間毎に行った。死後CSFサンプルを、2つの異なる量の小胞を試験する二反復で2回分析した。データを、SkanItソフトウェア(ThermoFisher)を使用して分析した。
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Claims (13)
- 対象におけるアルファシヌクレイノパチーを識別または監視するためのインビトロ方法であって、病的アルファ-シヌクレインタンパク質の存在について、Real Time Quaking Induced Conversion(RT-QUIC)法、Protein Misfolding Cyclic Amplification(PMCA)法、又は、それらの変更バージョンを用いて、前記対象由来の細胞外小胞サンプルをアッセイする工程を含み、病的アルファ-シヌクレインタンパク質の前記存在は、前記アルファシヌクレイノパチーを示す、方法。
- 対象がアルファシヌクレイノパチーを発症するリスクを判定するためのインビトロ方法であって、病的アルファ-シヌクレインタンパク質の存在について、RT-QUIC法、PMCA法、又は、それらの変更バージョンを用いて、前記対象由来の細胞外小胞サンプルをアッセイする工程を含み、病的アルファ-シヌクレインタンパク質の前記存在は、前記対象が前記アルファシヌクレイノパチーを発症する高いリスクを示す、方法。
- アルファシヌクレイノパチーを患っている疑いがある、またはアルファシヌクレイノパチーの発症リスクが高い対象におけるアルファシヌクレイノパチーの存在を判定するためのインビトロ方法であって:
(a)前記対象から細胞外小胞サンプルを用意する工程と;
(b)RT-QUIC法、PMCA法、又は、それらの変更バージョンを用いて、前記細胞外小胞サンプル中の病的アルファ-シヌクレインタンパク質の存在を判定する工程と
を含む、方法。 - 疾患がある対象について処置を選択するためのインビトロ方法であって、RT-QUIC法、PMCA法、又は、それらの変更バージョンを用いて、前記対象由来の細胞外小胞サンプル中の病的アルファ-シヌクレインタンパク質の存在を判定する工程を含み、病的アルファ-シヌクレインタンパク質の前記存在は、前記対象がアルファシヌクレイノパチー用の処置から利益を得ることとなることを示す、方法。
- 前記アルファシヌクレイノパチーは、パーキンソン病、レビー小体型認知症、および多系統萎縮症からなる群から選択される、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象はヒトである、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象は、アルファシヌクレイノパチーを患っている、または患っている疑いがある、請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象は、アルファシヌクレイノパチーを患っている、請求項7に記載の方法。
- 前記対象は、初期段階のアルファシヌクレイノパチーを患っている、請求項8に記載の方法。
- 前記細胞外小胞サンプルは、CSF、血液、脳組織ホモジェネート、尿、唾液、またはそれらの組合せから選択される生体サンプルから得られる、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。
- 前記血液サンプルは、血漿、血清、血小板、およびバフィーコートからなる群から選択される、請求項10に記載の方法。
- 前記細胞外小胞サンプルは、サイズ排除クロマトグラフィ、分画遠心分離、又は、密度勾配超遠心分離を使用して得られる、請求項10または11に記載の方法。
- 前記方法はさらに:
i)前記対象由来の生体サンプルを用意する工程と;
ii)サイズ排除クロマトグラフィを使用して、前記生体サンプルから細胞外小胞サンプルを得る工程と
を含む、請求項12に記載の方法。
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