JP7189024B2 - 組成物およびその使用 - Google Patents
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Description
細菌細胞培養
ラクトバチルス・ラムノサスGG(ATCC53103)を、37℃にてWilkins-Chalgrenブロス中で嫌気的に培養し、黄色ブドウ球菌を、Mohammedsaeedら(2014)およびPrinceら(2011)(Mohammedsaeed M.ら、(2014). Appl.Environ.Microbiol.80(18):5773およびPrince T.ら、(2011) Appl Environ. Microbiol. 78(15):5119-26)に記載されるように栄養ブロス(Oxoid)中で好気的に培養した。LGG SpaCノックアウトを、Lebeerら(2012)(Lebeer S.ら、(2012). Appl Environ. Microbiol. 78:185-193)に記載されるように生成した。LGG溶解物を、Mohammedsaeedら、(2014)に公表されたプロトコルに従って生成した。タンパク質の関与を調べるいくつかの実験において、溶解物を沸騰水浴に5分間入れるか、またはリン酸緩衝生理食塩水中のトリプシン(tryspin)(0.2%w/v)で37℃にて1時間処理してタンパク質を変性させた。
LGG溶解物の30ml調製物を、0.1%トリフルオロ酢酸を使用してpH5.8に調整し、Strata XLカラム(細孔径100μm、Phenomenex Ltd、Cheshire、UK)に適用した。結合したタンパク質を、pH2の90%メタノール60ml中でカラムから溶出した。試料を、3時間、遠心分離蒸発システム(Biotek、Bedfordshire、UK)において回転させ、得られた試料(5ml)を、5mlのSep-Pak C18カートリッジ(細孔径37~55μm、Fischer Scientific、Loughborough、UK)に適用した。タンパク質を、0.1%(v/v)TFA溶液を含有する10~70%(v/v)アセトニトリルの漸増濃度の5mlアリコートを使用して溶出した。各5mlの画分を別々のチューブに集め、溶出した画分を遠心分離蒸発システム(Biotek、Bedfordshire、UK)において3時間蒸発させてアセトニトリルを除去した。得られたそれぞれの画分1mlをSDSページ分析に供し、Instant Blue(Harston、Cambridgeshire、UK)で染色してタンパク質バンドを可視化した。付着および生存率アッセイにおけるさらなる分析のために、画分を4℃に維持した。濃縮および精製を増加させるために、最も有効な画分を、50分にわたって適用した10~99%アセトニトリルの勾配でJupiter 90Aカラム(Phemonenex、Cheshire、UK)を使用するHPLCによってさらに分離した。
タンパク質のタンデム質量分析(MS/MS)同定を、「ゲルトップ(gel top)」法を使用して行った。タンパク質をSDS-PAGEにより150Vにて10分間電気泳動により分離し、次いでInstant Blueを使用して染色した。目的のバンドをゲルから切り出し、アセトニトリルを使用して脱水し、続いて真空遠心分離した。乾燥ゲル片を10mMジチオスレイトールで還元し、55mMヨードアセトアミドでアルキル化した。次いで、ゲル片を25mM重炭酸アンモニウム、続いてアセトニトリルで交互に洗浄した。これを繰り返し、ゲル片を真空遠心分離により乾燥させた。試料をトリプシンで一晩37℃にて消化した。消化した試料を、LTQ Velos Pro(Thermo Fisher Scientific、Waltham、MA)質量分析計に結合したUltiMate(登録商標)3000 Rapid Separation LC(RSLC、Dionex Corporation、Sunnyvale、CA)を使用して、LC-MS/MSにより分析した。ペプチド混合物を、75mm×250μm i.d.、1.7μM BEH C18、分析カラム(Waters)を使用して、300nL min-1にて44分間、92%A(水中の0.1%FA)および8%B(アセトニトリル中の0.1%FA)から33%Bまでの勾配を使用して分離した。ペプチドを、データ依存性分析による自動的断片化のために選択した。作成したデータを、Mascotデータベース検索エンジン(Matrix Science UK)を使用して検索した。データを、Scaffold(Proteome Software、Portland、OR)を使用して検証した。
初代ヒトケラチノサイトならびに関連する付着および生存率アッセイを、Mohammedsaeedら(2014)に記載されるように正確に実施した。
骨格(残基31~302)をコードするが、N末端シグナルペプチドおよびC末端分類モチーフ領域を欠くL.ラムノサスGG(ATCC53103)SpaC遺伝子からなる発現プラスミド構築物(pKTH5319)を、Kankainenら(2009)(Kankainen M.ら、(2009)Proc Natl Acad Sci USA 106(40):17193-8に記載されるプロトコルに従って生成した。組換えSpaC pilinをC末端においてヘキサヒスチジン標識化した。次いで大腸菌BL21細胞における組換えタンパク質発現を、1mMイソプロピル-d-1-チオガラクトピラノシドを加えることによって誘導し、その後、培養物を18℃にて一晩増殖させた。細胞を遠心分離によって回収し、40mMのNaH2PO4(pH7.4)、150mMのNaClおよびEDTAを含まないプロテアーゼ阻害剤カクテル錠剤(Roche Ltd、Sussex UK)からなる溶解緩衝液中に再懸濁した。次いで細胞溶解物を48、400×gにて20分間遠心分離し、無細胞溶解物を、40mMのNaH2PO4(pH7.4)、150mMのNaClを含有する緩衝液で予め平衡化した5mlのNiCl2を充填したHiTrap chelating HPカラム(GE Healthcare、Amersham、UK)にロードした。次いで樹脂が結合したSpaAタンパク質を、10カラム体積に等しい直線勾配を使用して40mMのNaH2PO4(pH7.4)、150mMのNaCl、250mMのイミダゾールを含有する緩衝液で溶出した。SpaCを含有する画分をSDS-PAGEによって決定し、プールし、20mMのHEPES(pH7.0)、150mMのNaCl、1mMのEDTAに対して透析した。次いで透析したタンパク質溶液を、10kDaの分子量カットオフを備えたAmicon限外濾過装置(Amicon technologies Ltd、Kent、UK)を使用して濃縮し、その後、透析緩衝液で平衡化したSephacryl S-200 26/60ゲル濾過カラム(GE Healthcare)によってさらに精製した。
SDS-PAGEおよび免疫染色を、Kankainenら(2009)(Kankainen M.ら、(2009) Proc Natl Acad Sci USA 106(40):17193-8)に記載されるSpaC抗血清を使用してSultannaら(2013)(Sultanna R.ら、(2013)Appl.Environ、Microbiol.79(16)4887-4894)に記載されるように実施した。
全てのデータは、各々の独立した実験内の3連の試料を用いた3回の独立した実験の平均±SEMとして提示した。生成したデータを、SPSS(IBM SPSS Statisticsバージョン16.0)プログラムを使用して一元配置分散分析(ANOVA)および事後Tukey検定によって分析した。P値が<0.05である場合、データは有意であるとみなした。
熱またはプロテアーゼ処理溶解物は、黄色ブドウ球菌の作用からケラチノサイトを保護しない。
黄色ブドウ球菌に対するその抗付着効果を媒介するLGG溶解物内の有効な分子の性質を最初に検出した。この目的のために、溶解物を熱またはプロテアーゼにより処理し、次いで黄色ブドウ球菌の存在下でケラチノサイト単層生存能を保護するその能力を調べた。ケラチノサイト単層の約30%のみが、黄色ブドウ球菌との24時間のインキュベーション後に生存可能であった。しかしながら、LGG溶解物の存在下では、単層生存率は約65%に増加した。熱またはプロテアーゼにより処理した溶解物は単層生存能を保護せず(図1aを参照のこと)、溶解物内のタンパク質が有効な分子であることを示唆した。
溶解物の30~60%画分がケラチノサイト結合部位から黄色ブドウ球菌を排除または移動させる能力を調べた。図2のデータは、50%画分が黄色ブドウ球菌の排除および移動の両方において最も有効であることを示す。重要なことに、「芝生上のスポット」アッセイで試験した場合、この画分は、以下の表1に示されるように、ケラチノサイトに保護を与える他の画分と比較して、黄色ブドウ球菌増殖に対して最小の活性を有した。
付着防止プロセスにおけるSpaCの関与を理解するために、50%画分を、抗SpaC抗体を使用したイムノブロッティングに供した。これはSpaCについての正確な分子量で単一のバンドを生成し、溶解物の50%画分がこのタンパク質を含有することを示唆している(図3aを参照のこと)。抗黄色ブドウ球菌付着機構としてのSpaCの関与を確認するために、組換えSpaCを産生し、その付着防止活性を粗溶解物のものと比較した。組換えSpaCは、用量依存的に黄色ブドウ球菌のケラチノサイトへの付着を阻害し、50μg/mlが最も有効であった(図3b)。対照的に、50μg/mlの対照タンパク質、ウシ血清アルブミンは、ケラチノサイトへのブドウ球菌付着を阻害しなかった(図3cを参照のこと)。しかしながら、SpaCは、病原体の後ではなく、前にケラチノサイトに添加した場合にのみ、ケラチノサイトへの黄色ブドウ球菌の付着を阻害することができた。
組換えSpaCを試験して、黄色ブドウ球菌の毒性作用からケラチノサイト単層を保護できるかどうかを確認した。50μg/mlの組換えSpaCに対する50μg/mlの粗溶解物の効果を比較した。組換えSpaCは実際にケラチノサイトを保護することができたが、粗溶解物よりも有効性が有意に低かった(図4aを参照のこと)。さらに、SpaC産生を欠損したLGG株は、ケラチノサイト生存能を依然として保護することができ(図4bを参照のこと)、黄色ブドウ球菌付着を阻害する能力の有意な低下を示さなかった。
LGG突然変異株におけるSpaCの欠失は、黄色ブドウ球菌に応答するケラチノサイト生存能に対する溶解物の効果をなくさなかったので、LGG溶解物中の他のタンパク質がまた、ブドウ球菌のケラチノサイトへの付着に影響を及ぼし得る可能性を評価した。LGG溶解物の50%画分内に含まれるタンパク質のタンデム質量分析(MS/MS)法を行った。データを以下の表2にまとめる。
本発明者らは、黄色ブドウ球菌感染の予防/処置を標的とする局所療法としてのLGG無細胞溶解物の可能性を研究してきた。局所適用に関して、無細胞溶解物は生存細菌の使用よりも多くの利点を有する。重要なことに、皮膚上での生きた細菌の使用に関する安全性は、生きた細菌を処方することに関連する潜在的な問題があるので、否定される。しかしながら、LGGのようなプロバイオティックが局所治療剤としてそれらの可能性を満たす場合、それらの効果を媒介する細菌分子の理解が必須条件である。
Claims (22)
- プロバイオティック抽出物を含む抗菌用組成物であって、前記抽出物が、L.ラムノサスGG(ATCC53103)の菌株に由来するタンパク質画分を含み、前記タンパク質画分中のタンパク質が50kDa以下の分子量のタンパク質からなり、トリオースリン酸イソメラーゼ(TPI)および/またはエノラーゼを含む、抗菌用組成物。
- 前記タンパク質画分が、1種または複数のエキソポリサッカライドを含む、請求項1に記載の組成物。
- SpaCタンパク質ならびに以下のタンパク質:トリオースリン酸イソメラーゼ(TPI);および/またはエノラーゼを含む請求項1に記載の組成物。
- 前記組成物が、1種または複数の薬学的または化粧品的に許容される成分または賦形剤をさらに含む、請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物。
- 微生物によるコロニー形成を阻害する際または再コロニー形成を阻止する際に使用するための、請求項1~4のいずれか一項に記載の組成物。
- 微生物感染またはコロニー形成の阻止、管理または処置に使用するための、請求項1~4のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記微生物感染またはコロニー形成がブドウ球菌による、請求項6に記載の使用のための組成物。
- 前記ブドウ球菌が黄色ブドウ球菌である、請求項7に記載の組成物。
- 前記黄色ブドウ球菌がメチシリン耐性黄色ブドウ球菌(MRSA)である、請求項8に記載の組成物。
- 前記感染またはコロニー形成が、皮膚感染または皮膚コロニー形成を含む、請求項6~9のいずれか一項に記載の組成物。
- 剤型がクリーム、ゲル、オイル、またはスプレーである、請求項4に記載の組成物。
- 細菌感染、コロニー形成または再コロニー形成の阻止、管理または処置のための医薬の製造に使用するための請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物の使用。
- 前記細菌感染またはコロニー形成がブドウ球菌による、請求項12に記載の使用。
- 前記感染またはコロニー形成が、黄色ブドウ球菌による感染またはコロニー形成である、請求項13に記載の使用。
- 前記黄色ブドウ球菌がメチシリン耐性黄色ブドウ球菌(MRSA)である、請求項14に記載の使用。
- 皮膚障害または創傷ケアの処置または管理に使用するための請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物。
- 皮膚用の化粧品として使用するための、請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物。
- ケラチノサイトに関与する状態の管理または処置のための医薬の製造に使用するための、請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物の使用。
- ケラチノサイトの増殖および/または移動の増強のための医薬または化粧品の製造に使用するための請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物の使用。
- ブドウ球菌の基質への付着を減少させるのに使用するための請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記基質が皮膚または粘膜を含む、請求項20に記載の組成物。
- ブドウ球菌の基質への付着を阻害または低減させる非治療的な方法であって、請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物を前記基質へ塗布することを含む、方法。
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ACTA BIOCHEMICA POLONICA,2014年,Vol. 61, No. 2,pp. 341-347 |
Applied and Environmental Microbiology,2014年,Vol. 80, No. 18,pp. 5773-5781 |
Pediatric RESEARCH,2015年,Vol. 77, No. 4,pp. 528-535 |
SCIENTIFIC REPORTS,2015年,Vol. 5, article number 16147,pp. 1-11 |
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