JP7029729B2

JP7029729B2 - 血管障害の予防又は治療剤

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Publication number: JP7029729B2
Application number: JP2018530413A
Authority: JP
Inventors: 佳克齋木; 真理出澤; 勝寛細山
Original assignee: Tohoku University NUC; Life Science Institute Inc
Current assignee: Tohoku University NUC; Life Science Institute Inc
Priority date: 2016-07-29
Filing date: 2017-07-28
Publication date: 2022-03-04
Anticipated expiration: 2037-07-28
Also published as: EP3492091B1; US11419899B2; CN109843308A; SG11201900796UA; EP3492091A1; KR102360990B1; ES2882702T3; AU2017303905A1; AU2017303905B2; US20190175662A1; WO2018021515A1; CA3032358A1; KR20190035726A; JPWO2018021515A1; EP3492091A4

Description

本発明は、再生医療における細胞製剤に関する。より具体的には、障害が生じた血管の修復及び再生に有効な多能性幹細胞を含有する細胞製剤に関する。

動脈瘤は動脈壁の弱くなった部分が膨らむ病態で、動脈が内膜・中膜・外膜の３層構造を保ったまま拡大する真性動脈瘤と、動脈壁の中膜が裂け動脈解離を来した後に拡大する解離性動脈瘤が知られている。これらの障害は直接死に繋がる危険のある疾患である。特に、大動脈瘤は、動脈硬化や高血圧による血管壁の障害が原因で生じると長年考えられてきたが、近年の研究により、血管壁、特に中膜、外膜に引き起こされる炎症、酸化ストレスなどもその要因であると考えられている（例えば、非特許文献１～３）。

上記要因により、動脈壁へリンパ球、単球／マクロファージを中心とした炎症細胞が浸潤し、マトリックスメタロプロテアーゼ（MMPｓ：Matrix metalloproteinases）などの各種タンパク質分解酵素が活性化される結果、中膜、外膜のエラスチン線維やコラーゲン線維からなる細胞外基質の分解・断裂が起こり、また同時に血管内皮細胞の減少及び機能障害、平滑筋細胞のアポトーシスなどにより大動脈壁の菲薄化・脆弱化を来し、不可逆的に拡張し瘤化するものと考えられている（例えば、非特許文献４～７）。

また、大動脈解離も、動脈硬化や高血圧等によって生じた動脈壁の劣化を一因として大動脈壁内膜に亀裂を生じることにより、その裂け目に血流が流れ込み、中膜のレベルで真腔と偽腔の２腔に解離することにより生じる。慢性期には大動脈壁の脆弱性や背景とする動脈硬化の様々なリスク因子から，多くの症例で瘤化を来す。

大動脈瘤は、動脈の破裂や解離が生じるまでは症状が現れず、定期健康診断や別の目的で行われた健診や画像診断で見いだされることが多い。通常、大動脈瘤の直径が約５センチメートル以上である場合は、動脈瘤を修復するため、手術により人工血管で置換されるか、ステントグラフト内挿術（鼠径部の小さな切開創から大動脈へ折り畳み式のグラフトを挿入する方法）を行うなどの治療が行われている。

しかし、真性動脈瘤や解離性動脈瘤は早期に発見することは難しく、また、大動脈瘤も直径が約５センチメートル未満の場合破裂することはめったにないため、このような初期の病態の場合には、降圧剤を使用して心拍数と血圧を下げ、また禁煙する等により動脈瘤の進行や破裂のリスクを低減するための予防的な治療がなされているに過ぎない。
したがって、真性動脈瘤や解離性動脈瘤、及びそれに繋がる血管障害の初期段階での血管再生等の根本的な治療が望まれている。

近年、大動脈瘤においては、血管再生による根治を目的として、各種細胞による動脈瘤の治療が行われている。例えば、非特許文献８では、ラット異種移植モデルにおける血管平滑筋細胞を用いた血管内治療が開示され、経カテーテル的投与８週間で動脈瘤の縮小効果が見られたことが示されている。また、非特許文献９では、ラットエラスターゼ・モデルにおける組換えトロポエラスチン遺伝子を含むアデノウイルス・ベクターを用いた治療が開示され、エラスチン線維増生を伴う動脈瘤径の縮小が見られたことが示されている。さらに、非特許文献１０では、ラット異種移植モデルにおける内皮細胞を用いた治療が開示され、経カテーテル的投与８週間で動脈瘤の縮小効果が見られたことが示されている。しかしながら、これらはいずれも血管細胞の移植や遺伝子治療に関するものであり、その効果も十分なものではない。

また、近年、自己増殖能と多分化能を有する間葉系幹細胞（MSC:mesenchymal stem cells）が、血管内皮細胞に分化するのみならず、血管内皮細胞成長因子（VEGF：vascular endothelial growth factor）を分泌することが見いだされ（例えば、非特許文献１１～１３）、間葉系幹細胞（MSC）を用いた再生医療による動脈瘤の治療も試みられている（例えば、非特許文献１４～１７）。しかしながら、MSCによる動脈瘤の再生医療による治療効果は、現在、まだ十分なものではなく、特に、少ない投与量で、障害部位の血管中膜等に当該MSCが侵入し、定着し、さらに当該障害部位で血管細胞に分化して、動脈瘤の血管再生による根本的な予防・治療を行うことができる方法が望まれている。

一方、本発明者らの一人である出澤の研究により、間葉系細胞画分に存在し、遺伝子導入やサイトカイン等による誘導操作なしに得られる、ＳＳＥＡ－３（Ｓｔａｇｅ－ＳｐｅｃｉｆｉｃＥｍｂｒｙｏｎｉｃＡｎｔｉｇｅｎ－３）を表面抗原として発現している多能性幹細胞（Ｍｕｌｔｉｌｉｎｅａｇｅ－ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｎｇＳｔｒｅｓｓＥｎｄｕｒｉｎｇｃｅｌｌｓ；Ｍｕｓｅ細胞）が間葉系細胞画分の有する多能性を担っており、組織再生を目指した疾患治療に応用できる可能性があることが分かってきた（例えば、特許文献１；非特許文献１８～２０）。しかしながら、血管障害の予防及び／又は治療にＭｕｓｅ細胞を使用し、期待される治療効果が得られることを明らかにした例はない。

特許第5185443号明細書

Petersen E, et al. J Vasc Endovasc Surg 2000:457-461. Crowther M, et al. J Vasc Surg 2000:575-583. Freestone T, et al. Arterioscler Thromb Vasc Biol 1995:1145-1151. Traub O, et al. Arterioscler Thromb Vasc Biol 1998:677-685. Visse R, et al. Circ Res 2003:827-39. Kazi M, et al. J Vasc Surg 2003:1283-1292. Fontain V, et al. Am J Pathol 2004:2077-2087. Allaire E, et al. Annals of Surgery 2004: 239(3): 417-427. Xiong J, et al. J Vasc Surg 2008: 48(4): 965-973 Franck G, et al. Circulation 2013: 127:1877-1887 Nagaya, N, et .al. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2004: 287(6), 2670-2676. Nagaya N, et. al. Circulation, 2005: 112, 1128-1135. Kagiwada H, et. al. J Tissue Eng Regen Med, 2008: 2(4), 184-189. Schneider F, et al. Eur J Vasc Endovasc Surg, 2013: 45(6):666-672 Hashizume R, et al. J Vasc Surg, 2011: 54(6):1743-1752 Fu X M, et al. J Transl Med, 2013: 11: 175. Yamawaki A, et al. Eur J Cardiothorac Surg, 2014: 45(5):e156-165. Kuroda Y et al. Proc Natl Acad Sci USA，2010: 107: 8639-8643. Wakao S et al. Proc Natl Acad Sci USA，2011: 108: 9875-9880. Kuroda Y et al. Nat Protc, 2013: 8: 1391-1415.

本発明は、血管障害の予防及び／又は治療のための細胞製剤を提供することを目的とする。

本発明者らは、ヒト細胞を拒絶しない免疫不全マウスの血管障害モデルにおいて、ヒトＭｕｓｅ細胞を血管等から投与、あるいは対象の血管障害部位及びその周辺に直接投与することにより、Ｍｕｓｅ細胞が傷害された血管に集積・生着して障害血管を再建及び修復し、血管障害の改善又は回復をもたらすことを見出し、それにより、Ｍｕｓｅ細胞が大動脈瘤をはじめとした血管障害の治療や予防に好適に使用できることを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、以下の通りである。
［１］生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞を含む、血管障害を予防及び／又は治療するための細胞製剤。
［２］血管障害が、動脈瘤である、［１］に記載の細胞製剤。
［３］動脈瘤が、大動脈瘤である、［２］に記載の細胞製剤。
［４］大動脈瘤が、腹部大動脈瘤又は胸部大動脈瘤である、［３］に記載の細胞製剤。
［５］動脈瘤が、内臓器動脈瘤、末梢動脈瘤、脳動脈瘤又は冠動脈瘤である、［２］に記載の細胞製剤。
［６］動脈瘤が、紡錘状動脈瘤又は嚢状動脈瘤である、［２］に記載の細胞製剤。
［７］動脈瘤が、真性動脈瘤、解離性動脈瘤又は仮性動脈瘤である、［２］に記載の細胞製剤。
［８］動脈瘤が、動脈硬化性動脈瘤、炎症性動脈瘤又は感染性動脈瘤である、［２］に記載の細胞製剤。
［９］前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する多能性幹細胞である、上記［１］～［８］のいずれかに記載の細胞製剤：
（ｉ）テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
（ｉｉ）三胚葉のいずれの胚葉の細胞に分化する能力を持つ；
（ｉｉｉ）腫瘍性増殖を示さない；及び
（ｉｖ）セルフリニューアル能を持つ。
［１０］生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞の有効量を、予防または治療を必要とする対象に投与する工程を含む、血管障害を予防及び／又は治療する方法。
［１１］血管障害を予防及び／又は治療するために使用される、生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞を含む細胞製剤。

本発明では、血管障害を患っている対象に対し、Ｍｕｓｅ細胞を血管等から投与あるいは対象の血管障害部位及びその周辺に直接投与することにより、障害を有する血管を再建及び修復し、血管障害の機能を改善又は回復させることができる。本発明の細胞製剤は血管障害の急性期だけでなく、慢性期においても効果を発揮することができるので、長期にわたって治療効果を持続させることができる。

Ｍｕｓｅ細胞は、障害を受けた血管へ効率的に遊走して生着することができ、生着した部位で血管細胞等の構成細胞へと自発的に分化するので移植に先立って治療対象細胞への分化誘導が不要である。また、非腫瘍形成性であり安全性にも優れる。さらに、Ｍｕｓｅ細胞は免疫拒絶を受けないことから、ドナーから製造された他家製剤による治療も可能である。従って、上記に示す優れた性能を有するＭｕｓｅ細胞によって、血管障害を有する患者の治療に対する容易に実行可能な手段を提供することができる。

図１は８週間後の各群のマウスから摘出された大動脈瘤の写真である。スケールバーは３ｍｍを示す。図２は顕微鏡測定により３週間後及び８週間後の各群の大動脈瘤直径を測定した結果を示すグラフである。＊はＰ＜０．０５を示し、＊＊はＰ＜０．０１を示す。図３は各群のマウスの大動脈瘤の直径を超音波測定法により測定した結果を示すグラフである。縦軸は大動脈瘤径(mm)を示す。図４は３週間後の各群のマウスの大動脈瘤組織のElastica-Masson染色の結果を示す顕微鏡写真である。スケールバーは２００μｍを示す。図５は３週間後及び８週間後の各群において、弾性線維（Ｅｌａｓｔｉｎ）面積を、弾性線維面積と総血管壁断面積の比で定量化した結果を示すグラフである。＊はＰ＜０．０５を示し、＊＊はＰ＜０．０１を示す。図６の左図はＭｕｓｅ細胞投与３週間後におけるalpha-smooth muscle actin（αＳＭＡ）／ＧＦＰの免疫染色結果を示す顕微鏡写真（スケールバーは５０μｍを示す）であり、図６の右図は３週間後及び８週間後の各群のαＳＭＡ／ＧＦＰ両陽性細胞の単位面積当たりの数を示すグラフである。図７の左図はＭｕｓｅ細胞投与３週間後におけるＣＤ３１／ＧＦＰの免疫染色結果を示す顕微鏡写真（スケールバーは５０μｍを示す）であり、図７の右図は３週間後及び８週間後の各群のＣＤ３１／ＧＦＰ両陽性細胞の単位面積当たりの数を示すグラフである。図８の左図はＭｕｓｅ細胞投与３週間後におけるＦ４/８０の免疫染色結果を示す顕微鏡写真であり、図８の右図は３週間後及び８週間後の各群のＦ４/８０陽性細胞の単位面積当たりの数を示すグラフである。図９の左図はＭｕｓｅ細胞投与３週間後におけるＫｉ６７／ＧＦＰの免疫染色結果を示す顕微鏡写真（スケールバーは５０μｍを示す）であり、図９の右図は３週間後及び８週間後のＭｕｓｅ細胞投与群のＫｉ６７陽性細胞の割合を示すグラフである。図１０は８週間後のＭｕｓｅ細胞投与群及び非Ｍｕｓｅ細胞投与群の各臓器におけるＡｌｕ配列の検出結果を示すグラフである。非Ｍｕｓｅ細胞投与群の大動脈由来のＡｌｕ配列検出濃度を1としてその他の臓器及びＭｕｓｅ細胞投与群のそれぞれの値との比を表している。図１１はヒトＭｕｓｅ細胞、内皮前駆細胞（ＥＰＣ）、ＣＤ３４^＋前駆細胞における、初期内皮細胞マーカー（Ａ～Ｃ）、脱分化平滑筋細胞マーカー（Ｄ～Ｆ）およびストレス耐性関連マーカー（Ｇ～Ｉ）の定量ＰＣＲによる発現解析の結果を示す図である。それぞれβアクチンの発現量で標準化した相対的発現量を示す。図１２Ａは、Ｍｕｓｅ細胞と共培養されたマウス動脈瘤の代表的な多光子レーザー顕微鏡像を示す（写真）。左のカラムは、腔側から外側へ２０μｍごとにキャプチャーされた各軸方向の像（破線１～４）の位置を示す動脈サンプルの３次元再構成イメージを示す。スケールバーは１００μｍを示す。図１２Ｂは、ＣＤ３１またはＣＤ３４で染色された凍結切片の代表的な矢状断面を示す（写真）。矢頭はＧＦＰと両陽性の細胞を示す。スケールバーは５０μｍを示す。図１３Ａは、Ｍｕｓｅ細胞を投与したインビボ動脈瘤モデルにおいて、３日目及び５日目に得られた動脈瘤の代表的な多光子レーザー顕微鏡像を示す（写真）。左のカラムは、腔側から外側へ２０μｍごとにキャプチャーされた各軸方向の像（破線１～４）の位置を示す動脈サンプルの３次元再構成イメージを示す。スケールバーは１００μｍを示す。図１３Ｂは、Ｍｕｓｅ細胞による動脈瘤治療の模式図を示す。

本発明は、ＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞（Ｍｕｓｅ細胞）を含む、血管障害を予防及び／又は治療するための細胞製剤に関する。本発明を以下に詳細に説明する。

１．適用疾患
本発明のＳＳＥＡ－３陽性の多能性幹細胞（Ｍｕｓｅ細胞）を含む細胞製剤は、血管障害の予防及び／又は治療に使用される。
本発明において、「血管障害」とは、動脈硬化や高血圧により、又は血管壁、特に中膜、外膜に引き起こされた炎症、酸化ストレスなどにより生じ、また、まれに、刺傷、動脈壁への細菌や真菌の感染症などにより生じる血管の障害が挙げられ、具体的には、例えば、血管障害により動脈壁の弱くなった部分が膨らむ動脈瘤が挙げられる。

また、本発明において、「血管障害」は、上記原因により動脈壁が弱くなり結果的に動脈瘤に至るものであるが、動脈瘤に至る前の初期段階の血管障害も含まれる。
本発明において、動脈瘤とは、その発生部位による分類により、胸部大動脈瘤、腹部大動脈瘤、内臓器動脈瘤、末梢動脈瘤、脳動脈瘤、冠動脈瘤などが挙げられ、その形による分類により、紡錘状動脈瘤、嚢状動脈瘤などが挙げられ、その血管壁の状態による分類により、真性動脈瘤、解離性動脈瘤、仮性動脈瘤などが挙げられ、原因による分類により、動脈硬化性動脈瘤、炎症性動脈瘤、感染性動脈瘤などが挙げられる。

２．細胞製剤
（１）多能性幹細胞（Ｍｕｓｅ細胞）
本発明の細胞製剤に使用される多能性幹細胞は、本発明者らの一人である出澤が、ヒト生体内にその存在を見出し、「Ｍｕｓｅ（Ｍｕｌｔｉｌｉｎｅａｇｅ－ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｎｇＳｔｒｅｓｓＥｎｄｕｒｉｎｇ）細胞」と命名した細胞である。Ｍｕｓｅ細胞は、骨髄液、脂肪組織（Ｏｇｕｒａ，Ｆ．，ｅｔａｌ．，ＳｔｅｍＣｅｌｌｓＤｅｖ．，Ｎｏｖ２０，２０１３（Ｅｐｕｂ）（ｐｕｂｌｉｓｈｅｄｏｎＪａｎ１７，２０１４））や皮膚の真皮結合組織等から得ることができるほか、広く組織や臓器の結合組織に存在することが知られている。また、この細胞は、多能性幹細胞と間葉系幹細胞の両方の性質を有する細胞であり、例えば、細胞表面マーカーである「ＳＳＥＡ－３（Ｓｔａｇｅ－ｓｐｅｃｉｆｉｃｅｍｂｒｙｏｎｉｃａｎｔｉｇｅｎ－３）」陽性細胞、好ましくはＳＳＥＡ－３陽性かつＣＤ－１０５陽性の二重陽性細胞として同定される。したがって、Ｍｕｓｅ細胞又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団は、例えば、ＳＳＥＡ－３単独又はＳＳＥＡ－３及びＣＤ－１０５の発現を指標として生体組織から分離することができる。Ｍｕｓｅ細胞の分離法、同定法、及び特徴などの詳細は、国際公開第ＷＯ２０１１／００７９００号に開示されている。また、Ｍｕｓｅ細胞が様々な外的ストレスに対する耐性が高いことを利用して、蛋白質分解酵素処理や、低酸素条件、低リン酸条件、低血清濃度、低栄養条件、熱ショックへの暴露、有害物質存在下、活性酸素存在下、機械的刺激下、圧力処理下など各種外的ストレス条件下での培養によりＭｕｓｅ細胞を選択的に濃縮することができる。なお、本明細書においては、血管障害を治療するための細胞製剤として、ＳＳＥＡ－３を指標として用いて、生体の間葉系組織又は培養間葉系組織から調製された多能性幹細胞（Ｍｕｓｅ細胞）又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団を単に「ＳＳＥＡ－３陽性細胞」と記載することがある。また、本明細書においては、「非Ｍｕｓｅ細胞」とは、生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に含まれる細胞であって、「ＳＳＥＡ－３陽性細胞」以外の細胞を指すことがある。

Ｍｕｓｅ細胞又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団は、細胞表面マーカーであるＳＳＥＡ－３又はＳＳＥＡ－３及びＣＤ－１０５を指標として生体組織（例えば、間葉系組織）から調製することができる。ここで、「生体」とは、哺乳動物の生体をいう。本発明において、生体には、受精卵や胞胚期より発生段階が前の胚は含まれないが、胎児や胞胚を含む胞胚期以降の発生段階の胚は含まれる。哺乳動物には、限定されないが、ヒト、サル等の霊長類、マウス、ラット、ウサギ、モルモット等のげっ歯類、ネコ、イヌ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ウマ、ロバ、ヤギ、フェレット等が挙げられる。本発明の細胞製剤に使用されるＭｕｓｅ細胞は、生体の組織から直接マーカーを持って分離される点で、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）やｉＰＳ細胞と明確に区別される。また、「間葉系組織」とは、骨、滑膜、脂肪、血液、骨髄、骨格筋、真皮、靭帯、腱、歯髄、臍帯、臍帯血、羊膜などの組織及び各種臓器に存在する組織をいう。例えば、Ｍｕｓｅ細胞は、骨髄や皮膚、脂肪組織、血液、歯髄、臍帯、臍帯血、羊膜などから得ることができる。例えば、生体の間葉系組織を採取し、この組織からＭｕｓｅ細胞を調製し、利用することが好ましい。また、上記調製手段を用いて、線維芽細胞や骨髄間葉系幹細胞などの培養間葉系細胞からＭｕｓｅ細胞を調製してもよい。

また、本発明の細胞製剤に使用されるＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団は、生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に外的ストレス刺激を与えることにより、該外的ストレスに耐性の細胞を選択的に増殖させてその存在比率を高めた細胞を回収することを含む方法によっても調製することができる。
前記外的ストレスは、プロテアーゼ処理、低酸素濃度での培養、低リン酸条件下での培養、低血清濃度での培養、低栄養条件での培養、熱ショックへの暴露下での培養、低温での培養、凍結処理、有害物質存在下での培養、活性酸素存在下での培養、機械的刺激下での培養、振とう処理下での培養、圧力処理下での培養又は物理的衝撃のいずれか又は複数の組み合わせであってもよい。
前記プロテアーゼによる処理時間は、細胞に外的ストレスを与えるために合計０．５～３６時間行うことが好ましい。また、プロテアーゼ濃度は、培養容器に接着した細胞を剥がすとき、細胞塊を単一細胞にばらばらにするとき、又は組織から単一細胞を回収するときに用いられる濃度であればよい。
前記プロテアーゼは、セリンプロテアーゼ、アスパラギン酸プロテアーゼ、システインプロテアーゼ、金属プロテアーゼ、グルタミン酸プロテアーゼ又はＮ末端スレオニンプロテアーゼであることが好ましい。更に、前記プロテアーゼがトリプシン、コラゲナーゼ又はジスパーゼであることが好ましい。

なお、本発明の細胞製剤においては、使用されるＭｕｓｅ細胞は、細胞移植を受けるレシピエントに対して自家であってもよく、又は他家であってもよい。

上記のように、Ｍｕｓｅ細胞又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団は、例えば、ＳＳＥＡ－３陽性又はＳＳＥＡ－３及びＣＤ－１０５の二重陽性を指標にして生体組織から調製することができるが、ヒト成人皮膚には、種々のタイプの幹細胞及び前駆細胞を含むことが知られている。しかしながら、Ｍｕｓｅ細胞は、これらの細胞と同じではない。このような幹細胞及び前駆細胞には、皮膚由来前駆細胞（ＳＫＰ）、神経堤幹細胞（ＮＣＳＣ）、メラノブラスト（ＭＢ）、血管周囲細胞（ＰＣ）、内皮前駆細胞（ＥＰ）、脂肪由来幹細胞（ＡＤＳＣ）が挙げられる。これらの細胞に固有のマーカーの「非発現」を指標として、Ｍｕｓｅ細胞を調製することができる。より具体的には、Ｍｕｓｅ細胞は、ＣＤ３４（ＥＰ及びＡＤＳＣのマーカー）、ＣＤ１１７（ｃ－ｋｉｔ）（ＭＢのマーカー）、ＣＤ１４６（ＰＣ及びＡＤＳＣのマーカー）、ＣＤ２７１（ＮＧＦＲ）（ＮＣＳＣのマーカー）、ＮＧ２（ＰＣのマーカー）、ｖＷＦ因子（フォンビルブランド因子）（ＥＰのマーカー）、Ｓｏｘ１０（ＮＣＳＣのマーカー）、Ｓｎａｉ１（ＳＫＰのマーカー）、Ｓｌｕｇ（ＳＫＰのマーカー）、Ｔｙｒｐ１（ＭＢのマーカー）、及びＤｃｔ（ＭＢのマーカー）からなる群から選択される１１個のマーカーのうち少なくとも１個、例えば、２個、３個、４個、５個、６個、７個、８個、９個、１０個又は１１個のマーカーの非発現を指標に分離することができる。例えば、限定されないが、ＣＤ１１７及びＣＤ１４６の非発現を指標に調製することができ、さらに、ＣＤ１１７、ＣＤ１４６、ＮＧ２、ＣＤ３４、ｖＷＦ及びＣＤ２７１の非発現を指標に調製することができ、さらに、上記の１１個のマーカーの非発現を指標に調製することができる。

また、本発明の細胞製剤に使用される上記特徴を有するＭｕｓｅ細胞は、以下：
（ｉ）テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
（ｉｉ）三胚葉のいずれの胚葉の細胞に分化する能力を持つ；
（ｉｉｉ）腫瘍性増殖を示さない；及び
（ｉｖ）セルフリニューアル能を持つ
からなる群から選択される少なくとも１つの性質を有してもよい。好ましくは、本発明の細胞製剤に使用されるＭｕｓｅ細胞は、上記性質を全て有する。
ここで、上記（ｉ）について、「テロメラーゼ活性が低いか又は無い」とは、例えば、ＴＲＡＰＥＺＥＸＬｔｅｌｏｍｅｒａｓｅｄｅｔｅｃｔｉｏｎｋｉｔ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社）を用いてテロメラーゼ活性を検出した場合に、低いか又は検出できないことをいう。テロメラーゼ活性が「低い」とは、例えば、体細胞であるヒト線維芽細胞と同程度のテロメラーゼ活性を有しているか、又はＨｅｌａ細胞に比べて１／５以下、好ましくは１／１０以下のテロメラーゼ活性を有していることをいう。
上記（ｉｉ）について、Ｍｕｓｅ細胞は、ｉｎｖｉｔｒｏ及びｉｎｖｉｖｏにおいて、三胚葉（内胚葉系、中胚葉系、及び外胚葉系）に分化する能力を有し、例えば、ｉｎｖｉｔｒｏで誘導培養することにより、肝細胞（肝芽細胞又は肝細胞マーカーを発現する細胞を含む）、神経細胞、骨格筋細胞、平滑筋細胞、骨細胞、脂肪細胞等に分化し得る。また、ｉｎｖｉｖｏで精巣に移植した場合にも三胚葉に分化する能力を示す場合がある。さらに、静注により生体に移植することで傷害を受けた臓器（心臓、皮膚、脊髄、肝、筋肉等）に遊走及び生着し、組織に応じた細胞に分化する能力を有する。
上記（ｉｉｉ）について、Ｍｕｓｅ細胞は、増殖速度約１．３日で増殖するが、浮遊培養では１細胞から増殖し、胚様体様細胞塊を作り一定の大きさになると１４日間程度で増殖が止まる、という性質を有するが、これらの胚様体様細胞塊を接着培養に移行すると、再び細胞増殖が開始され、細胞塊から増殖した細胞が約１．３日の増殖速度で広がっていく。さらに精巣に移植した場合、少なくとも半年間は癌化しないという性質を有する。
また、上記（ｉｖ）について、Ｍｕｓｅ細胞は、セルフリニューアル（自己複製）能を有する。ここで、「セルフリニューアル」とは、１個のＭｕｓｅ細胞から浮遊培養で培養することにより得られる胚様体様細胞塊に含まれる細胞から３胚葉性の細胞への分化が確認できると同時に、胚様体様細胞塊の細胞を再び１細胞で浮遊培養に持っていくことにより、次の世代の胚様体様細胞塊を形成させ、そこから再び３胚葉性の分化と浮遊培養での胚様体様細胞塊が確認できることをいう。セルフリニューアルは１回又は複数回のサイクルを繰り返せばよい。

（２）細胞製剤の調製及び使用
本発明の細胞製剤は、限定されないが、上記（１）で得られたＭｕｓｅ細胞又はＭｕｓｅ細胞を含む細胞集団を生理食塩水や適切な緩衝液（例えば、リン酸緩衝生理食塩水）に懸濁させることによって得られる。この場合、自家又は他家の組織から分離したＭｕｓｅ細胞数が少ない場合には、細胞移植前に細胞を培養して、所定の細胞数が得られるまで増殖させてもよい。なお、すでに報告されているように（国際公開第ＷＯ２０１１／００７９００号パンフレット）、Ｍｕｓｅ細胞は、腫瘍化しないため、生体組織から回収した細胞が未分化のまま含まれていても癌化の可能性が低く安全である。また、回収したＭｕｓｅ細胞の培養は、特に限定されないが、通常の増殖培地（例えば、１０％仔牛血清を含むα－最少必須培地（α－ＭＥＭ）など）において行うことができる。より詳しくは、上記国際公開第ＷＯ２０１１／００７９００号パンフレットを参照して、Ｍｕｓｅ細胞の培養及び増殖において、適宜、培地、添加物（例えば、抗生物質、血清）等を選択し、所定濃度のＭｕｓｅ細胞を含む溶液を調製することができる。ヒト対象に本発明の細胞製剤を投与する場合には、ヒトの腸骨から骨髄液を採取し、例えば、骨髄液からの接着細胞として骨髄間葉系幹細胞を培養して有効な治療量のＭｕｓｅ細胞が得られる細胞量に達するまで増やした後、Ｍｕｓｅ細胞をＳＳＥＡ－３の抗原マーカーを指標として分離し、自家又は他家のＭｕｓｅ細胞を細胞製剤として調製することができる。あるいは、例えば、骨髄液から得られた骨髄間葉系幹細胞を外的ストレス条件下で培養して有効な治療量に達するまでＭｕｓｅ細胞を増殖、濃縮した後、自家又は他家のＭｕｓｅ細胞を細胞製剤として調製することができる。

また、Ｍｕｓｅ細胞の細胞製剤への使用においては、該細胞を保護するためにジメチルスルフォキシド（ＤＭＳＯ）や血清アルブミン等を、細菌の混入及び増殖を防ぐために抗生物質等を細胞製剤に含有させてもよい。さらに、製剤上許容される他の成分（例えば、担体、賦形剤、崩壊剤、緩衝剤、乳化剤、懸濁剤、無痛化剤、安定剤、保存剤、防腐剤、生理食塩水など）を細胞製剤に含有させてもよい。当業者は、これら因子及び薬剤を適切な濃度で細胞製剤に添加することができる。このように、Ｍｕｓｅ細胞は、各種添加物を含む医薬組成物として使用することも可能である。

上記で調製される細胞製剤中に含有するＭｕｓｅ細胞数は、血管障害の治療において所望の効果が得られるように、対象の性別、年齢、体重、患部の状態、使用する細胞の状態等を考慮して、適宜、調整することができる。なお、対象とする個体はヒトなどの哺乳動物を含むがこれに限定されない。また、本発明の細胞製剤は、所望の治療効果が得られるまで、複数回（例えば、２～１０回）、適宜、間隔（例えば、１日に２回、１日に１回、１週間に２回、１週間に１回、２週間に１回、１カ月に１回、２カ月に１回、３カ月に１回、６カ月に１回）をおいて投与されてもよい。したがって、対象の状態にもよるが、治療上有効量としては、例えば、一個体あたり一回につき１×１０^３細胞～１×１０^１０細胞で１～１０回の投与量が好ましい。一個体における投与総量としては、限定されないが、１×１０^３細胞～１×１０^１１細胞、好ましくは１×１０^４細胞～１×１０^１０細胞、さらに好ましくは１×１０^５細胞～１×１０^９細胞などが挙げられる。

本発明の細胞製剤に使用されるＭｕｓｅ細胞は、傷害を受けた臓器へと遊走し、生着する性質を有する。したがって、細胞製剤の投与において、細胞製剤の投与部位、投与される血管の種類（静脈及び動脈）は限定されない。

本発明の細胞製剤は、血管障害を有する患者の障害が生じた血管の修復及び再生することができる。

以下の実施例により、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれら実施例により何ら限定されるものではない。

実施例１：マウス動脈瘤モデルの作製
本実施例におけるマウスを用いた実験プロトコールは、「国立大学法人東北大学動物実験等に関する規定」を遵守し、実験動物は、東北大学動物実験センターの監督下において該規定に沿って作製された。より具体的には、非特許文献：- Bi Y, et al. PLoS ONE 2013．“Rabbit AAA Model via Periaortic CaCl₂ and Elastase Incubation”を参照し、以下の手順により作製した。
８週齢の雄性ＳＣＩＤマウス（日本クレア）をイソフルランの吸入により麻酔（誘導時：4%、維持時：1-1.5%）した。腹部を切開し、実体顕微鏡（Leica MZ6）下で、左腎静脈直下から大動脈分岐部までを全周性に剥離した。１～２本の腰動脈分岐を認める場合には10-0ナイロン糸で結紮し切離した。剥離した動脈の周囲を浸漬溶液（エラスターゼ：0.5ユニット／μL、CaCl₂：０．５ｍｏｌ／Ｌを含む生理食塩水５０μＬ）に浸漬したガーゼ片(4x8mm)で覆った。２０分後にガーゼを取り除きその部分を生理食塩水で２度洗浄した。対照群（Ｓｈａｍ群）には生理食塩水を含ませたガーゼ片により処置した。このようにして作製されたマウスをマウス動脈瘤モデルとして以下の実験に使用した。

実施例２：ヒトＭｕｓｅ細胞の調製
ヒトＭｕｓｅ細胞の分離及び同定に関する国際公開第ＷＯ２０１１／００７９００号に記載された方法に準じて、Ｍｕｓｅ細胞を得た。Ｍｕｓｅ細胞のソースとしては市販の間葉系幹細胞（ＭＳＣ、Lonza社）を用いた。移植に使用されるＭｕｓｅ細胞は、大動脈組織に生着したことを確認するために、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を発現し、細胞がこれにより標識されるように、予めレンチウイルス－ＧＦＰ遺伝子をＭｕｓｅ細胞に導入した。ＧＦＰで標識されたＭｕｓｅ細胞をＧＦＰとＳＳＥＡ－３の二重の陽性細胞としてＦＡＣＳにて分離した。またＭＳＣからＭｕｓｅ細胞を分離した残りの細胞を非Ｍｕｓｅ細胞として使用した。また、ＧＦＰ陽性ＭＳＣもＦＡＣＳにて単離し、ＭＳＣ群として使用した。

実施例３：マウス動脈瘤モデルへの各細胞投与
実施例１で作製したマウス動脈瘤モデルを４群に分け、モデル作製後、３日目、１０日目、１７日目の３回にわたり、各群のマウスにＭｕｓｅ細胞（２×１０^４個、２００μＬ）（M）、非Ｍｕｓｅ細胞（２×１０^４個、２００μＬ）（N）、ＭＳＣ（２×１０^４個、２００μＬ）（MSC）あるいはＶｅｈｉｃｌｅ（リン酸緩衝液）（V）を尾静脈内に投与した。またモデル作製後、３日目のみにＭｕｓｅ細胞（２×１０^４個、２００μＬ）あるいは非Ｍｕｓｅ細胞（２×１０^４個、２００μＬ）を単回投与する群（それぞれ、M’、N’）を設けた。さらに、動脈瘤非作製群をＳｈａｍ群（S）として用い比較した。一群の動物数は８匹とした(Ｍｕｓｅ群及び非Ｍｕｓｅ群の３回細胞投与モデルでは１１匹、Ｓｈａｍ群は４匹)。

実施例４：動脈瘤の肉眼的観察
動脈瘤作製後８週の時点で動物をイソフルラン過鎮静の方法により安楽死させ、大動脈を肉眼的に観察した。図１に示す通り、Ｖｅｈｉｃｌｅ群ではＳｈａｍ群に比べて顕著に動脈が拡大しており大動脈瘤が形成されていることが確認された。Ｍｕｓｅ細胞群ではＶｅｈｉｃｌｅ群に比べて動脈はほとんど拡大しておらず、外観はＳｈａｍ群と類似していた。非Ｍｕｓｅ細胞群やＭＳＣ群ではＶｅｈｉｃｌｅ群よりも程度が軽いものの動脈の拡大が認められた。

実施例５：顕微鏡下での大動脈瘤径の測定
実体顕微鏡（Leica MZ6）下に顕微鏡用デジタルカメラ(Leica MC120HD)を用いて大動脈瘤径を測定した。動脈瘤径は（解剖時の瘤径－モデル作製前の瘤径）／モデル作製前の瘤径）の比により評価した。図２に示すように、モデル作製後３週目（急性期）にはＭｕｓｅ細胞群は３回投与群、単回投与群ともＶｅｈｉｃｌｅ群に比べて統計学的に有意に瘤径が小さかった。一方、非Ｍｕｓｅ細胞群やＭＳＣ群ではＶｅｈｉｃｌｅ群との間に有意な差は認められなかった。モデル作製後８週目（慢性期）においても同様にＭｕｓｅ細胞群は３回投与群、単回投与群ともＶｅｈｉｃｌｅ群に比べて統計学的に有意に瘤径が小さかったが、非Ｍｕｓｅ細胞群やＭＳＣ群ではＶｅｈｉｃｌｅ群との間に有意な差は認められなかった。以上のように、Ｍｕｓｅ細胞の３回あるいは単回投与によって、動脈瘤径が縮小することが示された。

実施例６：超音波による動脈瘤径の経時的測定
細胞投与後３、１０、１７、２４、３１、３８、４５、５２及び５９日に、小動物用超音波画像診断装置（SonoScape S6V）を用いて動脈瘤径を経時的に測定した。図３に示すように、Ｍｕｓｅ細胞投与群の３回投与群、単回投与群は１０日以降に動脈瘤径が小さい傾向を示し、２４日目および５２日目にはＶｅｈｉｃｌｅ群に比べて統計学的有意差が認められた。一方、非Ｍｕｓｅ細胞群やＭＳＣ群ではＶｅｈｉｃｌｅ群との間に統計学的な有意差は認められなかった。以上のように、Ｍｕｓｅ細胞の３回あるいは単回投与によって、動脈瘤径が縮小することが示された。

実施例７：大動脈弾性線維の病理組織学的評価
モデル作製後３週あるいは８週の大動脈を４％パラホルムアルデヒド（Paraformaldehyde :ＰＦＡ）によって固定し、凍結切片を作製した後、Ｅｌａｓｔｉｃａ－Ｍａｓｓｏｎ染色後に観察した。図４に示すように、細胞投与後３週においてＭｕｓｅ細胞群では非Ｍｕｓｅ群やＭＳＣ群、Ｖｅｈｉｃｌｅ群と比べて波状の弾性線維構造が保持される傾向にあった。弾性線維（Ｅｌａｓｔｉｎ）面積を、弾性線維面積と総血管壁断面積の比で定量化したものを図５に示す。細胞投与後３週目にはＶｅｈｉｃｌｅ群ではＳｈａｍ群と比べて有意に弾性線維面積の減少が認められた。Ｍｕｓｅ細胞群では３回投与群、単回投与群ともＶｅｈｉｃｌｅ群に比べて有意に弾性線維面積が大きく保たれていた。一方、非Ｍｕｓｅ細胞群やＭＳＣ群ではこのような効果は認められなかった。細胞投与後８週目においても、Ｍｕｓｅ細胞群では３回投与群、単回投与群ともＶｅｈｉｃｌｅ群に比べて有意に弾性線維面積が大きく保たれていた。一方、非Ｍｕｓｅ細胞群やＭＳＣ群ではこのような効果は認められなかった。以上のことから、Ｍｕｓｅ細胞投与によって大動脈の弾性線維が保持されることが示された。

実施例８：Ｍｕｓｅ細胞の血管平滑筋への分化
細胞投与後３週あるいは８週の大動脈標本を用いてＭｕｓｅ細胞の血管平滑筋への分化を評価した。４％ＰＦＡ固定した大動脈を一次抗体としてマウス抗αＳＭＡ抗体（Thermo社製、２００倍希釈で使用）及びウサギ抗ＧＦＰ抗体（abcam社製、５００倍希釈で使用）、二次抗体としてロバ抗マウスＩｇＧ抗体（ライフテクノロジー社製、５００倍希釈で使用）あるいはロバ抗ウサギＩｇＧ抗体（ライフテクノロジー社製、５００倍希釈で使用）を用いて免疫組織化学の手法で染色した。図６左の写真に示すように、Ｍｕｓｅ細胞投与後３週において、αＳＭＡを発現する血管平滑筋は細胞質が赤色に、ＧＦＰを発現するＭｕｓｅ細胞は細胞質が緑色に染色された。Ｍｅｒｇｅに示すようにαＳＭＡとＧＦＰの両方が染色される細胞が観察され、投与したMuse細胞が血管平滑筋に分化したことが確認された。図６右のグラフには各群における単位面積あたりのαＳＭＡ／ＧＦＰ共陽細胞数を示す。Ｍｕｓｅ細胞の３回投与群では細胞投与後３週および８週に共陽性細胞が最も多く観察され、単回投与群においても共陽性細胞が認められた。一方、非Ｍｕｓｅ細胞投与群やＭＳＣ投与群では共陽性細胞はわずかであった。

実施例９：Ｍｕｓｅ細胞の血管内皮細胞への分化
細胞投与後３週あるいは８週の大動脈標本を用いてＭｕｓｅ細胞の血管内皮細胞への分化を評価した。４％ＰＦＡ固定した大動脈を一次抗体としてヤギ抗ＣＤ３１抗体（Santa Cruz社製、５０倍希釈で使用）あるいはウサギ抗GFP抗体（abcam社製、２００倍希釈で使用）、二次抗体としてロバ抗ヤギIgG抗体（ライフテクノロジー社製、５００倍希釈で使用）あるいはロバ抗ウサギIgG抗体（ライフテクノロジー社製、５００倍希釈で使用）を使用した。図７左の写真に示すように、Ｍｕｓｅ細胞投与後３週において、ＣＤ３１を発現する血管内皮細胞は細胞質が赤色に、ＧＦＰを発現するＭｕｓｅ細胞は細胞質が緑色に染色された。Ｍｅｒｇｅに示すようにＣＤ３１とＧＦＰの両方が染色される細胞が観察され、投与したＭｕｓｅ細胞が血管内皮細胞に分化したことが確認された。図７右のグラフには単位面積あたりのＣＤ３１／ＧＦＰ共陽細胞数を示す。Ｍｕｓｅ細胞の３回投与群では細胞投与後３週および８週に共陽性細胞が最も多く観察され、単回投与群においても共陽性細胞が認められた。一方、非Ｍｕｓｅ細胞投与群やＭＳＣ投与群では共陽性細胞はわずかであった。

実施例１０：大動脈へのマクロファージの遊走
細胞投与後３週あるいは８週の大動脈標本を用いてマクロファージの検出を試みた。一次抗体としてラット抗Ｆ４／８０抗体（AbD社製、１００倍希釈で使用）、二次抗体としてはヤギ抗ラット抗体（ライフテクノロジー社製、５００倍希釈で使用）を使用した。図８に示すように細胞質が赤く染色される細胞をマクロファージと同定した。Ｖｅｈｉｃｌｅ群では３週および８週ともＳｈａｍ群に比べて多くのマクロファージが検出された。Ｍｕｓｅ細胞の３回投与群では３週および８週ともにマクロファージの数が少なく、血管傷害に伴う炎症性細胞浸潤が抑制されていることが示唆された。その他の細胞投与群においても、Ｍｕｓｅ細胞の３回投与群ほどではないがマクロファージ数の減少が認められた。

実施例１１：Ｍｕｓｅ細胞の細胞分裂の確認
細胞投与後３週あるいは８週の大動脈標本を用いて大動脈に生着したＭｕｓｅ細胞が分裂しているかどうかを評価した。一次抗体としてウサギ抗Ｋｉ６７抗体（Thermo社製、１００倍希釈で使用）およびヤギ抗ＧＦＰ抗体（abcam社製、１０００倍希釈で使用）、二次抗体としてはロバ抗ウサギ抗体（ライフテクノロジー社製、５００倍希釈で使用）およびロバ抗ヤギ抗体（ライフテクノロジー社製、５００倍希釈で使用）を使用した。図９に示すように、細胞分裂している細胞は核が赤色に染色され、分裂しているＭｕｓｅ細胞は核が赤に、細胞質が緑色に染色された。細胞投与後３週には約８．５％のＭｕｓｅ細胞が分裂しており、組織に生着したＭｕｓｅ細胞の一部が細胞分裂により増殖していることが示された。一方、投与後８週には分裂を示すＭｕｓｅ細胞は約２．１％に減少しており、生着したＭｕｓｅ細胞は次第に分化にシフトすることが示された。このことは、急性期にはＭｕｓｅ細胞が遊走・増殖・分化して治療効果を発揮し、その後徐々に増殖が終了し、障害部位で癌化を生じないように働いていることが示唆された。

実施例１２：Ｍｕｓｅ細胞及び非Ｍｕｓｅ細胞の分布
細胞投与後８週におけるＭｕｓｅ細胞又は非Ｍｕｓｅ細胞の分布を、ヒトＤＮＡに特異的なＡｌｕ配列を標的としたリアルタイムＰＣＲによって調べた。結果を図１０に示す。Ｍｕｓｅ細胞は肺にも見られたものの、大部分は大動脈瘤部位（Abd Ao）に分布していた。

実施例１３：Ｍｕｓｅ細胞の各種血管細胞への分化能およびストレス耐性の解析
ヒトＭｕｓｅ細胞の各種血管細胞への分化能と、ストレス耐性について、定量ＰＣＲによるマーカー発現解析で調べた。対照として、内皮細胞に分化することが知られている内皮前駆細胞（ＥＰＣ）、ならびに内皮細胞および血管平滑筋細胞に分化することが知られているＣＤ３４^＋前駆細胞（造血幹細胞と血管前駆細胞を含む）を用いた。なお、Ｍｕｓｅ細胞は、動脈瘤を誘発した重症複合免疫不全（ＳＣＩＤ）マウス由来の血清（術後３日目）の存在下で培養した。
結果を図１１に示す。
上皮マーカーとしては、ＦＯＸＣ１の発現がＭｕｓｅ細胞において最も高かった（ＥＰＣおよびＣＤ３４^＋細胞に対してそれぞれｐ＜０．００１）。一方、ＫＬＦ２の発現はＣＤ３４^＋細胞で最も高く（ＥＰＣに対してｐ＜０．０１、Ｍｕｓｅに対してｐ＝０．３４）、ＭＥＦ２Ｃの発現もＣＤ３４^＋細胞で最も高かった（ＥＰＣに対してｐ＜０．０１、Ｍｕｓｅに対してｐ＜０．００１）。Ｍｕｓｅ細胞におけるＫＬＦ２とＭＥＦ２Ｃの発現は中程度であった。
脱分化血管平滑筋細胞のマーカーであるＥＬＫ１、ＭＹＨ１０およびＣＡＭＫ２δの発現はＭｕｓｅ細胞において最も高かった（ＥＰＣおよびＣＤ３４^＋細胞に対してそれぞれｐ＜０．００１）。
ストレス耐性に関わる因子であるＨＳＰＡ８、ＰＤＩＡ３およびＭＤＨ１の発現はＭｕｓｅ細胞において顕著に高かった（ＥＰＣおよびＣＤ３４^＋細胞に対してそれぞれｐ＜０．００１）。
これらの結果から、Ｍｕｓｅ細胞は内皮細胞および血管平滑筋細胞に分化する能力を有し、かつ高ストレス耐性であることが分かった。

実施例１４：インビトロ動脈瘤モデルでのＭｕｓｅ細胞の動態解析
Ｍｕｓｅ細胞が動脈瘤の微小環境下で分化能を有するかを調べるため、ヒトＭｕｓｅ細胞と動脈瘤組織を共培養した。具体的には、J Vasc Surg. 2015;62:1054-1063に記載された方法に基づき、ブタ膵臓エラスターゼ（0.5unit/μl）を含む0.5 mol/LのＣａＣｌ_２溶液を含ませたガーゼで免疫不全マウス(ＳＣＩＤ)の腹部大動脈を約２０分間包んでインキュベートすることで、腹部動脈瘤のモデルを作製した。動脈瘤組織を切り出して縦方向に切開・展開し動脈の内腔側を上に向けて培養皿に置き、１００００個のＧＦＰ^＋Ｍｕｓｅ細胞を添加した。その結果、図１２Ａに示すように、７日目にはＭｕｓｅ細胞は動脈瘤壁の表層の内膜にしか局在しなかったが、２週目および３週目においては、Ｍｕｓｅ細胞は動脈組織内に侵入し、中膜と外膜層内層にも確認された。７日目の免疫染色においては、図１２Ｂに示すように、内膜におけるＭｕｓｅ細胞(ＧＦＰ標識されている)は血管内皮細胞のマーカーである、ＣＤ３１およびＣＤ３４陽性細胞として観察された。

実施例１５：インビボモデルでのＭｕｓｅ細胞の動態解析
Ｍｕｓｅ細胞が動脈瘤組織に遊走し、結合するかどうかを調べるため、動脈瘤モデルマウスに２００００個のＧＦＰ^＋Ｍｕｓｅ細胞を静脈から投与し、投与から３日目と５日目にマウスを解剖し、多光子レーザー顕微鏡にてＭｕｓｅ細胞遊走の動態を解析した。
その結果、Ｍｕｓｅ細胞がまず動脈瘤の内腔側に生着し、徐々に中膜・外膜層まで深く浸透していく結果となった実施例１４のインビトロ共培養実験とは異なり、図１３Ａに示すように、３日目ではＧＦＰ^＋Ｍｕｓｅ細胞は血管系の外膜でしか検出されず、その一部は、外膜にある「血管の栄養血管（vasa vasorum）」の周りに集積した（矢印）。５日目には、ＧＦＰ^＋Ｍｕｓｅ細胞はまだ外膜にとどまっていたが、中膜及び内膜に向かって増殖した。これらの結果から、インビトロのモデルとは異なり、静脈から投与されたＭｕｓｅ細胞は血管の内腔側からではなく、外膜の「血管の栄養血管」を介して動脈瘤組織に侵入し、中膜および内膜側に向かって遊走することが示唆された（図１３Ｂ）。

本発明の細胞製剤は、血管障害を有する患者に投与することにより、傷害部位において組織を再建及び修復し、機能を回復させることができ、血管障害の予防や治療に応用することができる。

Claims

生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するＳＳＥＡ－３陽性及びＣＤ－１０５陽性の多能性幹細胞が濃縮された細胞画分を含む、
動脈瘤を、予防及び／又は治療するための細胞製剤であって、
前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する、細胞製剤：
（ｉ）テロメラーゼ活性が低いか又は無い；
（ｉｉ）三胚葉のいずれの胚葉の細胞に分化する能力を持つ；
（ｉｉｉ）腫瘍性増殖を示さない；及び
（ｉｖ）セルフリニューアル能を持つ。
動脈瘤が、大動脈瘤である、請求項１に記載の細胞製剤。
大動脈瘤が、腹部大動脈瘤又は胸部大動脈瘤である、請求項２に記載の細胞製剤。
動脈瘤が、内臓器動脈瘤、末梢動脈瘤、脳動脈瘤又は冠動脈瘤である、請求項１に記載の細胞製剤。
動脈瘤が、紡錘状動脈瘤又は嚢状動脈瘤である、請求項１に記載の細胞製剤。
動脈瘤が、真性動脈瘤、解離性動脈瘤又は仮性動脈瘤である、請求項１に記載の細胞製剤。
動脈瘤が、動脈硬化性動脈瘤、炎症性動脈瘤又は感染性動脈瘤である、請求項１に記載の細胞製剤。