JP7001686B2 - 多価肺炎球菌多糖体-タンパク質コンジュゲート組成物 - Google Patents
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Description
本出願は、2016年8月5日付で出願された米国仮特許出願第62/371,529号の利益を主張し、その出願日に依拠し、その開示全体が引用することにより本明細書の一部をなす。
本開示のより容易な理解のために、幾つかの用語を初めに下記に規定する。以下の用語及び他の用語の付加的な定義は本明細書を通して示され得る。
開示する実施形態(複数の場合もある)及び実施例の下記の説明は、事実上、単なる例示的なものであり、本発明、その用途、又は使用を限定すると意図されるものではない。
1つの態様において、本開示は、16個の異なる肺炎球菌莢膜多糖体-タンパク質コンジュゲートを含み、肺炎球菌莢膜多糖体-タンパク質コンジュゲートはそれぞれ、異なる血清型のストレプトコッカス・ニューモニエ由来の莢膜多糖体にコンジュゲートされたタンパク質担体を含み、該ストレプトコッカス・ニューモニエ血清型は、1、3、4、5、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33Fであり、該タンパク質担体は、CRM197又は破傷風トキソイドであり、該莢膜多糖体のうちの2つは、破傷風トキソイドにコンジュゲートされ、残りの莢膜多糖体は、CRM197にコンジュゲートされ、破傷風トキソイドにコンジュゲートされる該2つの莢膜多糖体は、血清型1、3及び5からなる群から選択される、混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物を提供する。
1つの態様において、本開示は、混合担体の16価肺炎球菌コンジュゲート組成物と薬学的に許容可能な賦形剤とを含むワクチンを提供する。幾つかの実施形態において、薬学的に許容可能な賦形剤は、少なくとも、コハク酸塩緩衝液等の緩衝液、塩化ナトリウム等の塩、及び/又はポリオキシエチレンソルビタンエステル(例えば、ポリソルベート80)等の界面活性剤を含む。幾つかの実施形態において、血清型1及び5由来の莢膜多糖体は、破傷風トキソイドにコンジュゲートされ、血清型3、4、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33F由来の莢膜多糖体は、CRM197にコンジュゲートされる。別の実施形態において、血清型1及び3由来の莢膜多糖体は、破傷風トキソイドにコンジュゲートされ、血清型4、5、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33F由来の莢膜多糖体は、CRM197にコンジュゲートされる。更に別の実施形態において、血清型3及び5由来の莢膜多糖体は、破傷風トキソイドにコンジュゲートされ、血清型1、4、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33F由来の莢膜多糖体は、CRM197にコンジュゲートされる。
S.ニューモニエの培養及び莢膜多糖体の精製は、当業者に既知であるように実施した。S.ニューモニエ血清型は、American Type Culture Collection(ATCC)から入手した(血清型1:ATCC番号6301、血清型3:ATCC番号6303、血清型4:ATCC番号6304;血清型5:ATCC番号6305;血清型6A:ATCC番号6306;血清型6B:ATCC番号6326;血清型7F:ATCC番号10351;血清型9V:ATCC番号10368;血清型12F:ATCC番号6312;血清型14:ATCC番号6314;血清型18C:ATCC番号10356;血清型19A:ATCC番号10357;血清型19F:ATCC番号6319;血清型22F:ATCC番号6322;血清型23F:ATCC番号6323;血清型33F:ATCC番号10370)。S.ニューモニエは、莢膜及び非運動性、グラム陽性のランセット型双球菌、及び血液寒天培地におけるアルファ溶血を特徴とした。血清型は、特異的な抗血清を使用して膨化試験によって同定された(米国特許第5,847,112号)。
株を増殖させて、動物起源の構成成分を除去するために、数世代の種ストックを生成した(世代F1、F2、及びF3)。2つの更なる世代の種ストックを生産した。第1の更なる世代は、F3バイアルから培養し、続く世代は、第1の更なる世代のバイアルから培養した。種バイアルは、凍結保存料として合成グリセロールを用いて凍結保管した(-70℃未満)。細胞バンク作製に関して、培養物は全て、大豆ベースの培地中で成長させた。凍結に先立って、細胞を遠心分離によって濃縮して、使用済みの培地を除去して、細胞ペレットを、凍結保存料(合成グリセロール等)を含有する新鮮な培地中に再懸濁させた。
研究中の細胞バンク由来の培養物を、大豆ベースの培地を含有する種ボトルに接種して、培養した。標的光学密度(吸光度)に到達した後、種ボトルを使用して、大豆ベースの培地を含有する発酵槽に接種した。光学密度値が一定に維持され始めたら、培養を終結させた。培養を終結した後、デオキシコール酸ナトリウムを培養物に添加して、細胞を溶解させた。得られた発酵槽の内容物を冷却して、タンパク質沈殿を誘導した。続いて、混合物を遠心分離して、沈殿したタンパク質及び細胞残屑を除去した。
遠心分離から得られた溶液を、デプスフィルターに通して濾過して、遠心分離で沈殿されなかったタンパク質及び細胞残屑を除去した。濾液を、100kDaのMW膜上で濃縮して、10倍容量の25mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.2)を用いて、濃縮液をダイアフィルトレーションして、試料を得た。試料を濾過して、上清を収集し、そこから、多糖体を沈殿及び濾過した。濾液を、30kDaの膜上で濃縮して、約10倍容量の三重蒸留水を使用して、濃縮液をダイアフィルトレーションした。ダイアフィルトレーションを実施した後、残存した溶液を、0.2μmのフィルターに通して濾過した。インプロセス管理試験を濾液に対して実施した(外観、残存タンパク質、残存核酸、エンドトキシン、分子量、及び多糖体の総量)。濃縮液を滅菌濾過して、-20℃で保管した。
異なる血清型の多糖体を、下記の異なる経路で活性化した後、担体タンパク質であるCRM197又はTTにコンジュゲートした。具体的には、コンジュゲートは、全ての血清型の莢膜多糖体それぞれを、CRM197にコンジュゲートすることによって、また血清型1、3及び5の莢膜多糖体それぞれを、TTにコンジュゲートすることによって作製した。活性化プロセスは、各莢膜多糖体のサイズを標的分子量へ低減すること、化学的活性化及び限外濾過による緩衝液交換を含む。コンジュゲートを、限外濾過を使用して精製し、最終的に0.2μmのフィルターに通して濾過した。pH、温度、濃度、及び時間等のプロセスパラメーターは下記の通りであった。
工程1:加水分解
還元的アミノ化は、ポリマーをコンジュゲートする既知の方法であり、還元的アミノ化において、タンパク質の第一級アミン(-NH2)基と糖類のアルデヒドとの間で、アミド結合が形成される。しかしながら、S.ニューモニエ多糖体は、いかなるアルデヒド基も有さないため、アルデヒド基を肺炎球菌莢膜多糖体に付加する。単糖類のジオール構造は、過ヨウ素酸ナトリウム(NaIO4)によって酸化されて、アルデヒド基を形成することができる。血清型1、3、4、6A、12F、14、18C、22F、及び33F由来の莢膜多糖体を、下記の通りに前処理した。
各肺炎球菌糖類活性化に対してモル当量の過ヨウ素酸ナトリウムを、総糖類含有量を使用して決定した。完璧に混合して、酸化反応を、1、7F及び19Fを除く全ての血清型に関して21℃~25℃で16時間~20時間進行させ、1、7F及び19Fに関しては、温度は、10℃以下にした。コンジュゲーションプロセス中、適切なレベルでアルデヒド濃度を維持することによって、コンジュゲートの一貫した、かつ安定な生産が行われる。アルデヒドの生産度は、生産されるアルデヒドの濃度と、糖類の濃度との間の比によって決定され、この度合いは、表2及び表3に示すように、各血清型に関して設定される酸化度(Do)に関連する。
酸化した糖類を濃縮して、100kDa MWCO限外濾過膜(血清型1に関しては30kDaの限外濾過膜及び血清型18Cに関しては5kDaの限外濾過膜)上で、WFIを用いてダイアフィルトレーションした。血清型1に関しては0.9%塩化ナトリウム溶液、血清型7F及び23Fに関しては0.01M酢酸ナトリウム緩衝液(pH4.5)、並びに血液型19Fに関しては0.01Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH6.0)を使用して、ダイアフィルトレーションを実施した。透過液を廃棄して、残余分を、0.2μmのフィルターに通して濾過した。
担体タンパク質にコンジュゲートされる血清型3、4、5、9V、14、22F、及び33Fの莢膜多糖体に関して、水性溶媒を使用することによって、多糖体及び担体タンパク質の混合溶液を、スクロースを添加せずに作製して、凍結乾燥させた後、-25℃±5℃で保管した。
水性コンジュゲーションは、血清型1、3、4、5、9V、14、18C、22F、及び33Fに関して行われ、DMSOコンジュゲーションは、血清型6A、6B、7F、12F、19A、19F、及び23Fに関して行われた。莢膜多糖体はそれぞれ、0.2~2:1の比で、担体タンパク質にコンジュゲートされた。
水性コンジュゲーション
血清型1、3、4、5、9V、14、18C、22F、及び33Fに関して、凍結乾燥した試料を、解凍して、室温で平衡化した。凍結乾燥した試料は、各血清型に関して設定された比で、23℃±2℃で、リン酸ナトリウム緩衝液溶液を使用することによって、反応濃度に再構成させた。
血清型6A、6B、7F、12F、19A、19F、及び23Fに関して、凍結乾燥した試料を解凍して、室温で平衡化して、DMSO中に再構成させた。
水性コンジュゲーション
CRM197にコンジュゲートされる血清型1、3、4、5、9V、14、18C、22F、及び33Fに関して、コンジュゲーション反応は、シアノ水素化ホウ素ナトリウム溶液(100mg/mL)を、糖類1モルにつき1.0モル~1.4モルのシアノ水素化ホウ素ナトリウムになるように添加することによって開始した。しかしながら、血清型1及び3に関しては、反応は、シアノ水素化ホウ素ナトリウム溶液を、糖類1モルにつき0.5モルのシアノ水素化ホウ素ナトリウムになるように添加することによって開始した。
血清型6A、6B、7F、12F、19A、19F、及び23Fの莢膜多糖体に関して、コンジュゲーション反応は、シアノ水素化ホウ素ナトリウム溶液(100mg/mL)を、活性化した糖類1モルにつき0.8モル当量~1.2モル当量のシアノ水素化ホウ素ナトリウムの比になるように添加することによって開始した。WFIを、標的濃度1%(v/v)になるように反応混合物に添加して、混合物を、23℃±2℃で12時間~26時間インキュベートした。100mg/mLの水素化ホウ素ナトリウム溶液(通常、活性化した糖類1モルにつき1.8モル当量~2.2モル当量の水素化ホウ素ナトリウム)及びWFI(標的5%v/v)を反応物に添加して、混合物を、23℃±2℃で3時間~6時間インキュベートした。この手順により、糖類上に存在する任意の未反応アルデヒドが低減された。続いて、反応混合物を塩化ナトリウム0.9%で希釈して、希釈したコンジュゲーション混合物を、0.8μm又は0.45μmのプレフィルターを使用して濾過した。
希釈したコンジュゲート混合物を濃縮して、最低15倍容量の0.9%塩化ナトリウム又は緩衝液を用いて、100kDaのMWCO限外濾過フィルター又は300kDaのMWCO限外濾過フィルター上でダイアフィルトレーションした。また、プロセスで使用する緩衝液のタイプ及びpHは、血清型それぞれに応じて多様であった。
限外濾過後の残余分を滅菌濾過して(0.2μm)、インプロセス管理(外観、遊離タンパク質、遊離糖類、分子サイズ分布、滅菌性、糖類含有量、タンパク質含有量、pH、エンドトキシン、残留シアン化物、残留DMSO、糖類アイデンティティ(identity:同一性)、TTアイデンティティ、及びCRM197アイデンティティ)を、濾過したコンジュゲートに対して実施した。最終濃縮液を冷蔵して、2℃~8℃で保管した。
実施例2から得られる最終的なバルク濃縮液の望ましい容量は、バッチ容量及びバルク糖類濃度に基づいて算出した。0.85%塩化ナトリウム(生理食塩水)、ポリソルベート80、及びコハク酸塩緩衝液を、予めラベルをした配合容器に添加した後、バルク濃縮液を添加した。次に、調製物を完全に混合して、0.2μmの膜に通して滅菌濾過した。配合したバルクを、バルクリン酸アルミニウムの添加中及び後に、穏やかに混合した。pHを確認して、必要に応じて調節した。配合したバルク生成物を、2℃~8℃で保管した。下記の4つのタイプの多価肺炎球菌コンジュゲートワクチン製剤を作製して、それぞれ、PCV16-CRM197、PCV16-13TT、PCV16-15TT、及びPCV16-35TTと名付けた。
PCV16-13TTは、血清型1及び3の多糖体それぞれをTTに、また血清型4、5、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33Fの多糖体それぞれをCRM197にコンジュゲートすることによって作製される多糖体-コンジュゲートを含んでおり、
PCV16-15TTは、血清型1及び5の多糖体それぞれをTTに、また血清型3、4、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33Fの多糖体それぞれをCRM197にコンジュゲートすることによって作製される多糖体-コンジュゲートを含んでおり、
PCV16-35TTは、血清型3及び5の多糖体それぞれをTTに、また血清型1、4、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33Fの多糖体それぞれをCRM197にコンジュゲートすることによって作製される多糖体-コンジュゲートを含んでいた。
混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲートワクチンである実施例3で作製したPCV16-CRM197、PCV16-13TT、PCV16-15TT、及びPCV16-35TTを、ウサギにおいて免疫原性応答を誘導する能力に関して検査した。これらの免疫原性効果は、血清IgG濃度に関しては抗原特異的ELISAによって、また抗体機能に関してはオプソニン作用アッセイ(opsonophagocytic assay)(OPA)によって特性化した。計画的なヒト臨床用量よりも5%高い用量の製剤中の各多糖体(各多糖体 2.31μg、但し、4.62μgの6Bは除く)又はヒト用量(各多糖体 2.2μg、但し、4.4μgの6Bは除く)で、0週及び3週にニュージーランドホワイトウサギの筋内に免疫付与した。免疫付与後の3週毎に、血清を試料採取した。濃度はともに、同じ結果を示した。
血清型特異的なIgG濃度測定
各血清型に関する莢膜多糖体(PnP)を、96ウェルプレート上で、0.5μg/ウェル~1μg/ウェルでコーティングした。等価量の血清を、各対象から試料採取して、群毎にプールした。血清プールを、Tween20及びCWPS 5μg/mLを含む抗体希釈緩衝液にて2.5倍で段階希釈して、続いて、室温で30分間反応させた。プレートを洗浄緩衝液で5回洗浄した後、前吸着させて、希釈した血清50μlを、コーティングしたウェルプレートに添加して、続いて室温で2時間~18時間インキュベートした。ウェルプレートを同じ方法で洗浄した後、ヤギ抗ウサギIgG-アルカリホスファターゼコンジュゲートを各ウェルに添加して、続いて室温で2時間インキュベートした。プレートを上述するように洗浄して、基質として1mg/mLのp-ニトロフェニルアミン緩衝液を各ウェルに添加して、続いて室温で2時間反応させた。3M NaOH 50μlを添加することによって、反応をクエンチして、405nm及び690nmでの吸光度を測定した。比較例として、市販の13価ワクチン(PREVNAR13)を同じ手順に付した。結果を表4に示す。
抗体機能は、MOPAアッセイにおいて血清を検査することによって評価した。-70℃以下で保管したS.ニューモニエMOPA株を、各株の濃度が、約50000CFU/mLになるように、相当する最終希釈倍数に希釈した。等価量の血清を各対象から試料採取して、群毎にプールして、血清20μlがU底プレート中に残るように2倍で段階希釈した。試料を希釈した後、各血清型に関して作製された株10μlを、希釈した試料と混合して、混合物を室温で30分間反応させて、その結果、S.ニューモニエ及び抗体は良好に混合された。予め分化させたHL-60細胞及び補体の混合物を添加して、CO2インキュベーター(37℃)中で45分間反応させた。温度を低減させて、食作用を停止させて、反応溶液10μlを、30分~60分間予め乾燥させた寒天プレート上にスポッティングして、続いて、乾燥するまで20分間、プレート上に吸収させた。25mg/mLのTTCストック溶液を、作製したオーバーレイ寒天に添加して、そこに、相当する株に適した抗体を添加した。混合物を完全に混合した後、混合物 約25mLをプレート上に添加して、約30分間硬化させた。完全に硬化したプレートを、CO2インキュベーター(37℃)中で12時間~18時間インキュベートして、続いてコロニーを計数した。MOPA力価は、50%死滅が観察される希釈率として表した。比較例として、市販の13価ワクチン(PREVNAR13)を同じ手順に付した。結果を表5に示す。
血清型特異的なIgG濃度及び機能性免疫原性力価を、4-1と同じように測定したが、但し、PCV16-13TTを、PCV16-CRM197に代わって使用し、結果を下記の通りに示す。
血清型特異的なIgG濃度及び機能性免疫原性力価を、4-1と同じように測定したが、但し、PCV16-15TTを、PCV16-CRM197に代わって使用し、結果を下記の通りに示す。
血清型特異的なIgG濃度及び機能性免疫原性力価を、4-1と同じように測定したが、但し、PCV16-35TTを、PCV16-CRM197に代わって使用し、結果を下記の通りに示す。
下記の参照文献は、本出願において引用され、当該技術分野に関する一般的な情報を提供し、本出願で論述するアッセイ及び他の詳細を提供する。下記の参照文献は、それらの全体が引用することにより本明細書の一部をなす。
[1] Prymula et al., Lancet, 367:740-48 (2006).
[2] Vesikari et al., PIDJ, 28(4):S66-76 (2009).
[3] Dagan et al. Infection & Immunity, 5383-91 (2004).
[4] Juergens et al., Clinical and Vaccine Immunology, 21(9):1277-1281 (2014).
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[9] Didierlaurent et al., J. Immunol., 183: 6186-6197 (2009).
Claims (17)
- 16個の異なる肺炎球菌莢膜多糖体-タンパク質コンジュゲートを含み、
肺炎球菌莢膜多糖体-タンパク質コンジュゲートはそれぞれ、異なる血清型のストレプトコッカス・ニューモニエ由来の莢膜多糖体にコンジュゲートされたタンパク質担体を含み、
該ストレプトコッカス・ニューモニエ血清型は、1、3、4、5、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33Fであり、
該タンパク質担体は、CRM197又は破傷風トキソイドであり、
該莢膜多糖体のうちの2つは、破傷風トキソイドにコンジュゲートされ、残りの莢膜多糖体は、CRM197にコンジュゲートされ、
破傷風トキソイドにコンジュゲートされる該2つの莢膜多糖体は、血清型1、3及び5からなる群から選択される、混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物。 - 血清型1及び5由来の前記莢膜多糖体は、破傷風トキソイドにコンジュゲートされ、血清型3、4、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33F由来の前記莢膜多糖体は、CRM197にコンジュゲートされる、請求項1に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物。
- 血清型1及び3由来の前記莢膜多糖体は、破傷風トキソイドにコンジュゲートされ、血清型4、5、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33F由来の前記莢膜多糖体は、CRM197にコンジュゲートされる、請求項1に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物。
- 血清型3及び5由来の前記莢膜多糖体は、破傷風トキソイドにコンジュゲートされ、血清型1、4、6A、6B、7F、9V、12F、14、18C、19A、19F、22F、23F、及び33F由来の前記莢膜多糖体は、CRM197にコンジュゲートされる、請求項1に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物。
- アジュバントを更に含む、請求項1~4のいずれか一項に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物。
- 前記アジュバントは、アルミニウムベースのアジュバントである、請求項5に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物。
- 前記アジュバントは、リン酸アルミニウム、硫酸アルミニウム、及び水酸化アルミニウムからなる群から選択される、請求項6に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物。
- 前記アジュバントは、リン酸アルミニウムである、請求項7に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物。
- 対象におけるストレプトコッカス・ニューモニエ感染又は疾患に対する予防のための、請求項1~8のいずれか一項に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物。
- 請求項1~8のいずれか一項に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物と薬学的に許容可能な賦形剤とを含むワクチン。
- 対象におけるストレプトコッカス・ニューモニエ感染又は疾患の予防のための、請求項10に記載のワクチン。
- 前記対象は、少なくとも50歳のヒトであり、前記疾患は、肺炎又は侵襲性肺炎球菌感染症(IPD)である、請求項9に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物又は請求項11に記載のワクチン。
- 前記対象は、少なくとも6週齢のヒトであり、前記疾患は、肺炎、侵襲性肺炎球菌感染症(IPD)、又は急性中耳炎(AOM)である、請求項9に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物又は請求項11に記載のワクチン。
- 前記対象は、6週齢から5歳、2ヵ月齢から15ヵ月齢、又は6歳から17歳である、請求項13に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物又はワクチン。
- 前記対象はヒトである、請求項9に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物又は請求項11に記載のワクチン。
- 前記混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物又は前記ワクチンは、筋内注射によって投与される、請求項9に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物又は請求項11に記載のワクチン。
- 前記混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物又は前記ワクチンは、一連の免疫付与の一部として投与される、請求項9に記載の混合担体の多価肺炎球菌コンジュゲート組成物又は請求項11に記載のワクチン。
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