JP6956959B2 - アルブミン−糖鎖複合体 - Google Patents

Description

本願は2015年6月30日に出願した特願2015-132002の特許出願に基づき優先権を主張する。本願は、かかる基礎出願の内容及び引用した文献の内容を参照することにより本願に組み入れる。
本発明は、生体内で安定して存在し、１分子で糖鎖クラスター効果を発揮し得るアルブミン−糖鎖複合体に関する。

アスパラギン結合型糖鎖（以下、「Ｎ−型糖鎖」と略す場合がある。）は、アスパラギン（Ａｓｎ）の側鎖のアミド窒素原子に糖鎖が結合した構造からなり、糖鎖を構成する単糖類（単糖又はその誘導体）の種類や配列、分岐の有無等によって多種多様な構造がある。Ｎ−型糖鎖は、タンパク質や脂質等の他の分子と相互作用することにより、免疫応答調節、細胞の増殖、がん化やがん細胞の転移等、様々な生物学的機能に深く関与しており、さらに、タンパク質の生体内における安定性にも寄与している。このＮ−型糖鎖の機能は、診断や治療のための医薬品への応用が期待できるため、Ｎ−型糖鎖の生体内における動態の解析が進められている。Ｎ−型糖鎖のタンパク質等との相互作用は、主に糖鎖構造に依存しているため、Ｎ−型糖鎖の機能を解析する方法として、特定の糖鎖構造をもつＮ−型糖鎖を、アルブミン等のタンパク質に結合させた糖タンパク質を動物に投与し、動態解析や組織への蓄積の有無等を解析する方法が行われている（例えば、非特許文献１又は２参照。）。また、特定の糖鎖構造のＮ−型糖鎖をもつ糖タンパク質にさらに蛍光物質を導入し、動物の体内動態をバイオイメージング解析等により非侵襲的に調べることも行われている（例えば、非特許文献３参照。）。

１本の糖鎖とタンパク質の相互作用は弱いが、糖鎖が集積することにより、強い相互作用を発揮する（糖鎖クラスター効果）。このため、Ｎ−型糖鎖の機能解析に用いる糖タンパク質としては、糖鎖クラスター効果が得られるように、タンパク質１分子当たりにできるだけ多数のＮ−型糖鎖を結合させたものが好ましい。

本発明者らは、これまでに、ポリリジン骨格に１分子当たり４〜１６分子のＮ−型糖鎖を導入し、さらに末端に蛍光物質を修飾した糖鎖クラスターを合成し、これを動物に投与して動態解析を行ったことを報告している（非特許文献４参照。）。糖鎖は嵩高く、水酸基も多いことから、従来はタンパク質１分子当たりの糖鎖の結合分子数を増やすことは非常に困難であった。

国際公開第２００８／０９６７６０号 特開２０１５−０３０７０２号公報

Andre, et al., Bioconjugate Chemistry, 1997, Vol. 8, p.845-855 Unverzagt, et al., Journal of Medicinal Chemistry, 2002, Vol.45, p.478-491 Ogura, et al., Glycoconjugate Journal, 2014, Vol. 31, p.273-279 Tanaka, et al., Angewandte Chemie International Edition, 2010, Vol. 49，p.8195-8200

ポリリジンに１分子当たり１６分子のＮ−型糖鎖を導入した糖鎖クラスターは、生体に投与すると、分解されやすい。また、実際にヒトへの診断や治療のための医薬品として使用する場合には、できるだけ天然のタンパク質を用いることがより望ましい。

本発明は、糖鎖クラスター効果が得られるだけ充分な数の糖鎖が結合しており、かつ生体内で比較的安定的に存在し得るアルブミン−糖鎖複合体を提供することを目的とする。

本発明者等は、前記課題を解決すべく鋭意検討した結果、アルブミンは、糖鎖修飾に適したリジン残基を多く有しており、かつ糖鎖修飾されたものも生体内で比較的安定して存在し得ること、新たに開発したＲＩＫＥＮ−ＣＬＩＣＫ反応（共役イミンの６π−アザ電子環状反応）（特許文献１、２参照。）を利用することにより、アルブミン１分子当たり多数のＮ−型糖鎖を導入できることを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体、機能性分子用担体、及びバイオイメージングプローブは、下記［１］〜［１２］である。
［１］ アスパラギン結合型糖鎖が、アルブミン１分子当たり５分子以上結合していることを特徴とする、アルブミン−糖鎖複合体。
［２］ 前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端の糖が、Ｎ−アセチルグルコサミン、ガラクトース、マンノース、及びシアル酸からなる群から選択される糖を含む、前記［１］のアルブミン−糖鎖複合体。
［３］ 前記アスパラギン結合型糖鎖が、下記式（ａ’）〜（ｆ’）

［前記式中、Ｎｅｕ５ＡｃはＮ−アセチルノイラミン酸、Ｇａｌはガラクトース、ＧｌｃＮＡｃはＮ−アセチルグルコサミン、Ｍａｎはマンノースを意味する。］
からなる群より選択される１種以上である、前記［１］又は［２］のアルブミン−糖鎖複合体。
［４］ アスパラギン結合型糖鎖が、アルブミンのリジン残基に連結している、前記［１］〜［３］のいずれかのアルブミン−糖鎖複合体。
［５］ 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、前記［１］〜［４］のいずれかのアルブミン−糖鎖複合体を含む、機能性分子用担体。
［６］ 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、前記標的組織が肝臓の星細胞であり、前記［１］又は［２］のアルブミン−糖鎖複合体を含み、前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端がＮ−アセチルグルコサミンである、機能性分子用担体。
［７］ 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、前記標的組織が肝臓のクッパー細胞であり、前記［１］又は［２］のアルブミン−糖鎖複合体を含み、前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端がマンノースとＮ−アセチルノイラミン酸の２分岐型である、機能性分子用担体。
［８］ 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、前記標的組織が肝臓又は脾臓であり、前記［１］又は［２］のアルブミン−糖鎖複合体を含み、前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端がマンノースである、機能性分子用担体。
［９］ 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、前記標的組織ががん細胞であり、前記［１］又は［２］のアルブミン−糖鎖複合体を含み、前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端がα（２−３）シアル酸である、機能性分子用担体。
［１０］ 前記機能性分子が、蛍光物質又は薬剤である、前記［５］〜［９］のいずれかの機能性分子用担体。
［１１］ 前記［１］〜［４］のいずれかのアルブミン−糖鎖複合体を有効成分とし、動物の生体内に投与されることを特徴とする、バイオイメージングプローブ。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、生体内で比較的安定的に存在し得、かつ糖鎖クラスター効果が発揮され、タンパク質等の他の生体分子との相互作用が強い。このため、当該アルブミン−糖鎖複合体は、Ｎ−型糖鎖の機能解析ツールとして有用であり、さらに、機能性分子を特定の細胞や組織に送達する機能性分子用担体や、特定の細胞や組織を標識するバイオイメージングプローブ、特定の細胞等を標的とする医薬品の有効成分としても有用である。

式（ａ’）〜（ｆ’）で表される２分岐型糖鎖の模式図である。 試験例１において、ＨＬ７５０−ＨＳＡを投与したマウス（Ａ）、複合体２ａを投与したマウス（Ｂ）、複合体２ｂを投与したマウス（Ｃ）、及び複合体２ｃを投与したマウス（Ｄ）の投与後０．５〜３時間経過時点のマウス個体の蛍光画像である。 試験例１において、各マウスのアルブミン−糖鎖複合体又はＨＬ７５０−ＨＳＡの尿中排泄量の測定結果（Ａ）、各マウスのアルブミン−糖鎖複合体投与から３時間経過時点における胆嚢の蛍光強度の測定結果（Ｂ）、及び各マウスのアルブミン−糖鎖複合体投与から３時間経過時点における小腸の蛍光強度の測定結果（Ｃ）を、示した図である。 試験例１において、複合体２ｄを投与したマウス（Ａ）、複合体２ｅを投与したマウス（Ｂ）、及び複合体２ｆを投与したマウス（Ｃ）の投与後０．５〜３時間経過時点のマウス個体の蛍光画像である。 試験例１において、各複合体投与後３時間経過時点のマウス個体から切除された肝臓と脾臓の蛍光画像（Ａ）、肝臓の蛍光強度の測定結果を示した図（Ｂ）、及び脾臓の蛍光強度の測定結果を示した図（Ｃ）である。 試験例２において、各マウスのアルブミン−糖鎖複合体の尿中排泄量の測定結果（Ａ）、各マウスのアルブミン−糖鎖複合体投与から３時間経過時点における胆嚢の蛍光強度の測定結果（Ｂ）、及び各マウスのアルブミン−糖鎖複合体投与から３時間経過時点における小腸の蛍光強度の測定結果（Ｃ）を、示した図である。 試験例３において、複合体２ｂを投与したマウスの投与後１時間経過時点のマウス個体の蛍光画像である。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、Ｎ−型糖鎖が、アルブミン１分子当たり５分子以上結合していることを特徴とする。アルブミン１分子に１分子の糖鎖を結合させた糖鎖複合体では、当該糖鎖とタンパク質等の他の分子との相互作用が小さく、反応性が低い。これに対して、本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、１分子当たり５分子以上のＮ−型糖鎖を有しており、１分子のみで糖鎖クラスター効果が充分に発揮され、糖鎖と特定の生体分子との相互作用が強い。本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体としては、アルブミン１分子当たり、９分子以上のＮ−型糖鎖を有することが好ましい。Ｎ−型糖鎖の数の上限は特に限定されないが、Ｎ−型糖鎖の数は例えば３０分子以下とすることができ、好ましくは２０分子以下であり、より好ましくは１５分子以下、さらに好ましくは１１分子以下である。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、Ｎ−型糖鎖を結合させるタンパク質としてアルブミンを用いる。Ｎ−型糖鎖は、アルブミンのリジン残基に連結させる。アルブミンは、生体内での安定性に優れており、かつ糖鎖修飾に適したリジン残基が多数存在している。例えば、ヒト血清アルブミンには、１分子当たりリジン残基が６０個程度存在しており、このうち糖鎖修飾可能なリジン残基が１０〜３０個あると推察される。加えて、糖鎖修飾された場合でも、抗原性を獲得し難く、生体内で異物として代謝され難いという利点もある。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体を構成するアルブミンは、動物から精製された天然型のタンパク質であってもよく、組み換え体であってもよい。また、いずれかの動物が本来有している野生型のアルブミンであってもよく、野生型アルブミンのうち、リジン残基以外の１又は数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された変異型アルブミンであってもよい。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体を構成するアルブミンとしては、血清アルブミンが好ましく、哺乳動物由来の血清アルブミンがより好ましい。当該哺乳動物としては、ヒトや、マウス、ラット、ウサギ、モルモット、ハムスター、サル、ヒツジ、ウマ、ウシ、ブタ、ロバ、イヌ、ネコ等の家畜や実験動物が好ましく、ヒトが特に好ましい。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体を構成するＮ−型糖鎖は、１種類のみであってもよく、２種類以上であってもよい。また、１分子のＮ−型糖鎖を構成する糖類は、グリコシド結合によって鎖状態構造を形成し得る単糖類（単糖又はその誘導体）であれば特に限定されるものではなく、１種類の単糖類のみからなる糖鎖であってもよく、２種類以上の単糖類からなる糖鎖であってもよい。当該単糖類としては、例えば、グルコース（Ｇｌｕ）、ガラクトース（Ｇａｌ）、マンノース（Ｍａｎ）、Ｎ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）、Ｎ−アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）、フコース（Ｆｕｃ）、キシロース（Ｘｙｌ）、グルクロン酸（ＧｌｃＡ）、イズロン酸（ＩｄｏＡ）、Ｎ−アセチルノイラミン酸（Ｎｅｕ５Ａｃ）、Ｎ−グリコリルノイラミン酸（Ｎｅｕ５Ｇｃ）、デアミノノイラミン酸（ＫＤＮ；２−ケト−３−デオキシ−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−ノノン酸）、及びこれらの誘導体等が挙げられる。

グリコシド結合の形態は特に限定されず、α１，４結合、α１，６結合、α２，３結合、α２，６結合、β１，２結合、β１，４結合等であってよい。
本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体を構成するＮ−型糖鎖は、好ましくは、＊−Ｍａｎ−ＧｌｃＮＡｃ−ＧｌｃＮＡｃ−＊＊（**はアルブミン結合側を示す。）の共通配列を有する。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体において、アルブミン１分子に結合しているＮ−型糖鎖は、糖鎖部分が直鎖状であってもよく、分岐鎖状であってもよい。本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体を構成する糖鎖としては、動物の体内に比較的多く存在している２分岐型糖鎖であることが好ましく、図１に示す式（ａ’）〜（ｆ’）からなる群より選択される１種以上であることが好ましい。なお、式（ａ’）〜（ｆ’）の糖鎖は、ヒトをはじめとする動物の生体内で多く存在する糖鎖である。

例えば、特許文献１、２に記載の化合物を利用することにより、アルブミン１分子当たり５分子以上のＮ−型糖鎖を連結させることができる。具体的には、下記一般式（Ｉ−０）で表される、Ｎ−型糖鎖を含有するアルデヒド化合物を、下記反応によりアルブミンのリジン残基に連結させる。当該反応をアルブミン表面の少なくとも５個のリジン残基の側鎖に対して行う。こうして合成されたアルブミン−糖鎖複合体は、下記一般式（Ｉ）の構造を、アルブミン１分子当たり５個以上有する。

一般式（Ｉ）及び一般式（Ｉ−０）中、Ａ^１は、Ｎ−型糖鎖−Ａｓｎ−（Ａｓｎ残基の側鎖のアミド窒素原子にＮ−型糖鎖が結合した基）を表す。Ａ^１中の糖鎖としては、前記式（ａ’）〜（ｆ’）の糖鎖であることが好ましい。また、Ｌ^１は、Ａ^１中のＡｓｎ残基の糖鎖と結合していない窒素原子と結合する。

一般式（Ｉ）中、＊＊は、アルブミンのリジン残基の側鎖のアミノ基に結合する炭素原子に結合する部位を示す。また、Ａｌｂ−ＮＨ_２はアルブミンを表す。

一般式（Ｉ）及び一般式（Ｉ−０）中、Ｒ^１は炭素数１〜６のアルキル基を表す。当該アルキル基は、直鎖状であってもよく、分枝鎖状であってもよい。当該アルキル基としては、例えば、メチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、イソブチル基、ｔ−ブチル基、ペンチル基、イソアミル基、ヘキシル基等が挙げられる。本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体としては、一般式（Ｉ）中のＲ^１が、炭素数１〜３のアルキル基であることが好ましく、メチル基、エチル基、又はプロピル基であることがより好ましく、エチル基であることがさらに好ましい。

一般式（Ｉ）及び一般式（Ｉ−０）中、Ｚ^１は１，２−フェニレン基、１，３−フェニレン基、又は１，４−フェニレン基を表す。本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体としては、一般式（Ｉ）のＺ^１が１，４−フェニレン基であることが好ましい。

一般式（Ｉ）及び一般式（Ｉ−０）中、Ｌ^１は任意の連結基を表す。Ｌ^１は、ＲＩＫＥＮ−ＣＬＩＣＫ反応を阻害しない２価の基であれば特に限定されるものではないが、アルブミンに連結されたＮ−型糖鎖の動きの自由度が高いほうが、糖鎖クラスター効果が発揮されやすいことから、比較的長鎖である基や、環構造等の嵩高い基が好ましい。

一般式（Ｉ）及び一般式（Ｉ−０）中のＬ^１としては、下記一般式（ＩＩ）で表される基が好ましい。一般式（ＩＩ）中、Ｒ^２は炭素数１〜２０のアルキレン基を表し、Ｌ^２は任意の連結基を表す。一般式（ＩＩ）中、＊は、前記一般式（Ｉ）中のＡ^１と結合する部位を示し、＊＊は、前記一般式（Ｉ）中のＺ^１と結合する部位を示す。

Ｒ^２のアルキレン基は、直鎖状であってもよく、分枝鎖状であってもよい。アルブミンとＮ−型糖鎖を柔らかいアルキレン基によって連結することにより、Ｎ−型糖鎖の動きの自由度が高くなる結果、同じアルブミン分子に結合している複数のＮ−型糖鎖が互いに集積しやすくなる。当該アルキレン基としては、例えば、メチレン基、エチレン基、プロピレン基、イソプロピレン基、ｎ−ブチレン基、イソブチレン基、ペンチレン基、ヘキシレン基、ヘプチレン基、オクチレン基、ノニレン基、デシレン基、ウンデシレン基、ドデシレン基、トリデシレン基、テトラデシレン基、ペンタデシレン基、ヘキサデシレン基、ヘプタデシレン基、ノナデシレン基等が挙げられる。本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体としては、一般式（ＩＩ）のＲ^２が、炭素数３〜１０のアルキレン基であることが好ましく、炭素数３〜１０の直鎖状のアルキレン基であることがより好ましく、炭素数４〜８の直鎖状のアルキレン基であることがさらに好ましい。

一般式（ＩＩ）中のＬ^２は、ＲＩＫＥＮ−ＣＬＩＣＫ反応を阻害しない２価の基であれば特に限定されるものではない。具体的には、Ｌ^２としては、−Ｏ−ＣＯ−ＮＨ−（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−ＮＨ−、−Ｏ−ＣＯ−ＮＨ−（ＣＨ₂）_n−ＮＨ−ＣＯ−、−（ＣＨ₂）_n−、−（ＣＨ₂）_n−Ｏ−（ＣＨ₂）_m−、−（ＣＨ₂）_n−ＣＯ−ＮＨ−、又は−（ＣＨ₂）_n−ＮＨ−ＣＯ−（前記式中、ｎ及びｍは、それぞれ独立して１〜２０の整数である。）が挙げられる。

一般式（Ｉ−０）中のＬ^１が一般式（ＩＩ）で表される基であるアルデヒド化合物（Ｉ’−０）は、例えば、下記一般式（ＩＩＩ）で表されるアジドと、下記一般式（ＩＶ）で表されるアルデヒドとの環化反応（Alkyne -Azide Cyclization）により合成できる。一般式（ＩＩＩ）及び（ＩＶ）中、Ａ^１、Ｚ^１、及びＲ^１は一般式（Ｉ）と同じであり、Ｌ^２及びＲ^２は一般式（ＩＩ）と同じである。

当該環化反応は、例えば、両物質を、窒素雰囲気下、極性溶媒中で混合することにより行うことができる。極性溶媒としては、例えば、水、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、シアン化メチル（アセトニトリル）、プロピオニトリル、ジエトキシエタン（ＤＭＥ）、及びこれらの混合溶媒等が挙げられる。反応温度は、５０℃以上で行うことが好ましく、６０〜１００℃で行うことがより好ましく、６０〜８０℃で行うことがさらに好ましい。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体としては、下記一般式（Ｖ−１）〜（Ｖ−８）の構造を有するものが好ましい。一般式（Ｖ−１）〜（Ｖ−８）中、Ｒ^１は、前記一般式（Ｉ）のＲ^１と同じであり、Ｒ^２は、前記一般式（ＩＩ）のＲ^２と同じであり、ｎ１は１〜６の整数であり、「＊」は、糖鎖との結合部位であり、「＊＊」は、アルブミンのリジン残基の側鎖のアミノ基に結合する炭素原子に結合する部位である。「＊」で結合する糖鎖としては、前記式（ａ’）〜（ｆ’）のいずれかであることが好ましい。

下記一般式（Ｖ−１）〜（Ｖ−８）で表される化合物としては、Ｒ^１が炭素数１〜３のアルキル基であり、Ｒ^２が炭素数３〜１６のアルキレン基であり、ｎ１が１〜３の整数であり、＊において結合する糖鎖は前記式（ａ’）〜（ｆ’）のいずれかである化合物が好ましく、Ｒ^１が炭素数１〜３のアルキル基であり、Ｒ^２が炭素数３〜１０のアルキレン基であり、ｎ１が１〜３の整数であり、＊において結合する糖鎖は前記式（ａ’）〜（ｆ’）のいずれかである化合物がより好ましい。

前記一般式（Ｉ−０）で表されるアルデヒド化合物とアルブミンとのＲＩＫＥＮ−ＣＬＩＣＫ反応は、例えば、両物質を、極性溶媒中で混合することにより行うことができる。
極性溶媒としては、例えば、水、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、シアン化メチル、プロピオニトリル、ジエトキシエタン（ＤＭＥ）、及びこれらの混合溶媒等が挙げられる。反応温度は、アルブミンが変性しないよう、６０℃以下で行うことが好ましく、５０℃以下で行うことがより好ましく、１５〜４０℃で行うことがさらに好ましい。

前記ＲＩＫＥＮ−ＣＬＩＣＫ反応に供される前記一般式（Ｉ−０）で表されるアルデヒド化合物とアルブミンのモル比を調節することにより、アルブミン１分子に対して導入されるＮ−型糖鎖の分子数を調節することができる。アルブミンに対する前記アルデヒド化合物の量が多いほど、アルブミン１分子に対して導入されるＮ−型糖鎖の分子数を多くすることができる。

アルブミン１分子に対して、２種類以上のＮ−型糖鎖を導入する場合、各Ｎ−型糖鎖を含有する一般式（Ｉ−０）で表されるアルデヒド化合物を、順次アルブミンと反応させる。アルブミン表面の複数のリジン残基のうち、アルデヒド化合物と反応しやすいものから順にＮ−型糖鎖が導入される。このため、アルブミンと反応させる順番により、アルブミン１分子当たりに結合している各Ｎ−型糖鎖の分子数が同じであっても、他のタンパク質との反応性が異なるアルブミン−糖鎖複合体が得られる場合がある。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体としては、標識物質又は標識物質と結合するための結合部位を含有することも好ましい。標識物質により、アルブミン−糖鎖複合体を検出できる。標識物質としては、生体内に投与したアルブミン−糖鎖複合体を検出可能なものが好ましく、蛍光物質、放射性金属と配位する構造を有する物質、放射性同位体を含む物質、ＭＲＩ用の常磁性金属と配位する構造を有する物質等が挙げられる。これらの標識物質は、アルブミン−糖鎖複合体中のＮ−型糖鎖以外の部分に結合していることが好ましい。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体が有する蛍光物質としては、特に限定されるものではなく、タンパク質や糖等を蛍光標識する際に用いられる蛍光物質の中から適宜選択して用いることができる。タンパク質であってもよく、色素であってもよく、量子ドットであってもよい。本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体が含有する蛍光物質としては、生体内に比較的安全に投与可能なものが好ましく、生体内のアルブミン−糖鎖複合体を生体外からもより検出しやすいことから近赤外蛍光物質がより好ましい。近赤外蛍光物質としては、ＨｉＬｙｔｅ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ７５０、インドシアニングリーン、Ａｌeｘａ Ｆｌｏｒ（登録商標）６４７、ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ ６８０、ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ ７９０、Ｃｙ（登録商標）３．５、Ｃｙ５、 Ｃｙ５．５、Ｃｙ７等のインドシアニン骨格を有した有機蛍光色素、ブリリアントブルー、ブリリアントグリーン等のシアニン誘導体、Ｙ_２Ｏ_３蛍光ナノ粒子等の無機ナノ粒子等が挙げられる。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体が有する標識物質のうち、放射性金属と配位する構造を有する物質としては、ポルフォリン、ＤＯＴＡ(１，４，７，１０−テトラアザシクロデカン−１，４，７，１０−テトラ酢酸）、ＤＴＰＡ（ジエチレントリアミンペンタ酢酸）等が挙げられる。前記放射性同位体を含む物質としては、¹⁸Ｆ、¹¹Ｃ、¹³Ｎ、¹⁵Ｏ、及び^９９ｍＴｃからなる群より選択される１種以上を含む誘導体（例えば、トリフルオロ（¹⁸Ｆ）ボレート）等が挙げられる。前記ＭＲＩ用の常磁性金属と配位する構造を有する物質としては、例えばガドリニウム等が挙げられる。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、タグペプチドや、ビオチン等の低分子化合物を含有していてもよい。当該タグペプチドとしては、Ｈｉｓタグ、Ｆｌａｇタグ、ＨＡタグ等が挙げられる。特定の物質と特異的に結合するこれらの物質を含有することにより、混合物からの単離や精製を容易に行うことができる。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、１分子中に多数のＮ−型糖鎖を有しているため、糖鎖と他の物質との特異的な相互作用が、１分子中に１個のＮ−型糖鎖しかない糖鎖複合体よりも顕著に表れる。そこで、この糖鎖と他の物質との親和性を利用し、本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、含まれる糖鎖と親和性の高い物質が表面に存在する細胞や組織を検出するためのプローブとして用いることができる。特に、本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、動物の生体内で比較的安定であることから、細胞や組織、又は個体レベルでタンパク質等の生体分子の分布又は局在を捉え、その動態を画像として解析するため、動物の生体内に投与されるバイオイメージングプローブの有効成分として有用である。

例えば、本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体を動物に投与した場合、式（ｄ’）のように非還元末端がＮ−アセチルグルコサミンであるＮ−型糖鎖を含有する複合体は、肝臓に集積し、特にＤｅｓｍｉｎやＶｉｍｅｎｔｉｎとの相互作用により、星細胞に取り込まれる。このため、これらのアルブミン−糖鎖複合体は、肝臓、特に活性化された星細胞を検出するためのバイオイメージングプローブや、肝臓、特に星細胞へ選択的に機能性分子を送達するための機能性分子用担体として有用である。また、式（ｆ’）のように非還元末端がマンノースとＮ−アセチルノイラミン酸の２分岐型であるＮ−型糖鎖を含有する複合体は、肝臓に集積し、特にクッパー細胞に取り込まれる。このため、これらのアルブミン−糖鎖複合体は、肝臓、特にクッパー細胞を検出するためのバイオイメージングプローブや、肝臓、特にクッパー細胞へ選択的に機能性分子を送達するための機能性分子用担体として有用である。また、式（ｅ’）のように非還元末端がマンノースであるＮ−型糖鎖を含有する複合体は、クッパー細胞上のＣ−型レクチンとの相互作用により、主に肝臓や脾臓に集積する。このため、これらのアルブミン−糖鎖複合体は、肝臓や脾臓を検出するためのバイオイメージングプローブや、肝臓や脾臓へ選択的に機能性分子を送達するための機能性分子用担体として有用である。さらに、式（ｂ’）のように非還元末端がα（２−３）シアル酸（シアル酸−ガラクトース結合を持つ）であるＮ−型糖鎖を含有する複合体は、がん細胞表面に高発現しているセレクチンとの相互作用により、がん細胞に集積する。このため、アルブミン１分子当たり、少なくとも１分子以上のＮ−型糖鎖がα（２−３）シアロ糖鎖であるアルブミン−糖鎖複合体は、がんを検出するためのバイオイメージングプローブや、がん細胞へ選択的に機能性分子を送達するための機能性分子用担体として有用である。なお、機能性分子としては、放射線治療薬剤、診断薬等が挙げられる。本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体を機能性分子用担体として用いる場合には、機能性分子は、アルブミン−糖鎖複合体中のＮ−型糖鎖以外の部分に結合していることが好ましく、アルブミンのリジン残基以外に結合していることがより好ましい。

また、本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、医薬品の有効成分としても有用である。例えば、非還元末端がα（２−３）シアル酸であるＮ−型糖鎖を含有するアルブミン−糖鎖複合体中のアルブミンに抗がん剤を結合させたものは、がんの治療に用いる医薬品の有効成分とし得る。

本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体では、糖鎖クラスター効果により、糖鎖構造の違いによる生理活性の相違がより強調される。このため、本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体は、糖鎖の生命現象における認識シグナルとしての機能の解析にも有用である。標識物質を含有させたアルブミン−糖鎖複合体を動物に投与し、当該標識物質を検出することにより、体内における当該アルブミン−糖鎖複合体の動態、例えば排出経路等を解析することができる。例えば、血液中の糖タンパク質のうち、非還元末端がシアル酸ではないアシアロ糖タンパク質は、肝細胞表面に存在するアシアロ糖タンパク受容体（ＡＧＣＲ）と結合して肝細胞内に取り込まれるが、非還元末端がシアル酸であるシアロタンパク質はＡＧＣＲと結合するものの、肝細胞へは取り込まれない。実際に、後記実施例に示すように、式（ａ’）や（ｂ’）のように非還元末端が酸性シアル酸であるＮ−型糖鎖を含有するアルブミン−糖鎖複合体は、代謝を受けて腎臓を経て膀胱から速やかに排出されるが、式（ｃ’）のように非還元末端がガラクトースであるＮ−型糖鎖を含有するアルブミン−糖鎖複合体は、肝臓、胆嚢を経て腸管排泄されることが解明された。その他の糖鎖が物質の排泄経路に与える影響も、本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体を用いて同様にして解析することができる。

以下、実施例等を示して本発明を詳細に説明する。ただし、本発明は以下の記載によっては限定されない。

なお、以降の実験に使用したもののうち、下記式（ａ）〜（ｆ）で表されるＮ−型糖鎖のアジド誘導体は、いずれも株式会社糖鎖工学研究所によってAngew. Chem. Int. Ed. vol.49, p.8195-8200 (2010)に記載された方法で合成されたものであり、下記式（１）で表されるアルデヒド化合物は、Org. Biomol. Chem. vol.12, p.1412-1418 (2014)に記載された方法で合成されたものである。

また、以降の実験において、逆相ＨＰＬＣは、Ｃ１８カラム（製品名：５Ｃ１８−ＡＲ−３００、４．６×２５０ｍｍ、ナカライテスク社製）を備えた高速液体クロマトグラフ（装置名：Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ（登録商標）システム、島津製作所製）を用いて行った。高分解能マススペクトル（ＨＲＭＳ）は、質量分析器（製品名：ｍｉｃｒＯＴＯＦ−ＱＩＩＩ（登録商標） ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ、Ｂｒｕｋｅｒ社製）を用いたＥＳＩ−ＴＯＦ ＭＳにより得た。タンパク質のマススペクトルは、質量分析器（製品名：ａｕｔｏｆｌｅｘ（登録商標） ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ、Ｂｒｕｋｅｒ社製）を用いたＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより得た。

［製造例１］ＨＬ７５０−ＨＳＡの合成
ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ、ＳＩＧＭＡ社から購入）３．４ｍｇ（４８ｎｍｏｌ）を３００μＬのＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩水、ｐＨ７．４）に溶解させたＨＳＡ溶液に、近赤外蛍光色素ＨｉＬｙｔｅ Ｆｌｕｏｒ（登録商標） ７５０ ａｃｉｄ ＳＥ（２×テトラエチルアンモニウム塩）０．２５ｍｇ（０．１９μｍｏｌ）を１０μＬのＤＭＳＯに溶解させた溶液を添加して反応液を調製した。得られた反応液を３７℃で１０分間インキュベートしてＨＳＡに近赤外蛍光色素を結合させた後、Ａｍｉｃｏｎ（登録商標） １０Ｋ（メルクミリポア社製）により遠心分離処理（１５，０００ｒｐｍ、１０分間）を行った。残渣はさらに３回、リン酸バッファーで洗浄した。得られたＨＬ７５０−ＨＳＡ（近赤外蛍光色素と結合したＨＳＡ）を８００μＬの超純水に溶解したものを、ＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液とした。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成されたＨＬ７５０−ＨＳＡの平均質量は７０．５ｋＤａであり、１分子当たり３．１分子の近赤外蛍光色素が結合していた。

［実施例１］
式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（２，６−ＨＬＦ−ＨＳＡ、以下、「複合体２ａ」と称すことがある。）を合成した。

＜式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物の合成＞
式（ａ’）で表される糖鎖を有するＮ−型糖鎖のアジド誘導体（下記式（ａ）で表されるアジド誘導体）（株式会社糖鎖工学研究所作製）１．２４ｍｇ（０．５０μｍｏｌ）を１３９μＬのＤＭＳＯに溶解させた溶液に、窒素雰囲気下、シアン化メチルに溶解させた１０ｍＭの式（１）で表されるアルデヒド化合物の溶液を４５μＬ（０．４５μｍｏｌ）添加した。得られた反応液を７０℃で加熱し、ＨＰＬＣで反応物をチェックした。最初に添加したアルデヒド化合物が消費された後、反応液を室温まで冷却し、下記式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物がＤＭＳＯに溶解しているストック溶液（３．８ｍＭ）を得た。合成された式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物は、ＥＳＩ−ＴＯＦ ＭＳで検出できた（Ｃ_１２８Ｈ_１８３Ｎ_１３Ｏ_７１ ［Ｍ−２Ｈ］^−２／２の検出値：１５１８．０５０９、算出値：１５１８．０４８２）。

＜複合体２ａの合成＞
製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液１３２μＬ（７．５ｎｍｏｌ）に、１３２μＬの水、６６μＬのＤＭＳＯ、及び３２μＬ（０．１２μｍｏｌ、１６ｅｑ）の式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて複合体２ａを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ（登録商標） ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で１５０μＬに希釈し、複合体２ａ溶液を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ａの平均質量は９８．０ｋＤａであり、１分子当たり９．２分子のＮ−型糖鎖（式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

［実施例２］
式（ｂ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（２，３−ＨＬＦ−ＨＳＡ、以下、「複合体２ｂ」と称すことがある。）を合成した。

＜式（１ｂ）で表されるアルデヒド化合物の合成＞
式（ｂ’）で表される糖鎖を有するＮ−型糖鎖のアジド誘導体（下記式（ｂ）で表されるアジド誘導体）（株式会社糖鎖工学研究所作製）１．４８ｍｇ（０．５９μｍｏｌ）を１４４μＬのＤＭＳＯに溶解させた溶液に、窒素雰囲気下、シアン化メチルに溶解させた１０ｍＭの式（１）で表されるアルデヒド化合物の溶液を５４μＬ（０．５４μｍｏｌ）添加した。得られた反応液を７０℃で加熱し、ＨＰＬＣで反応物をチェックした。最初に添加したアルデヒド化合物が消費された後、反応液を室温まで冷却し、下記式（１ｂ）で表されるアルデヒド化合物がＤＭＳＯに溶解しているストック溶液（３．８ｍＭ）を得た。合成された式（１ｂ）で表されるアルデヒド化合物は、ＥＳＩ−ＴＯＦ ＭＳで検出できた（Ｃ_１２８Ｈ_１８３Ｎ_１３Ｏ_７１ ［Ｍ−２Ｈ］^−２／２の検出値：１５１８．０４６０、算出値：１５１８．０４８２）。

＜複合体２ｂの合成＞
製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液５２．５μＬ（３．０ｎｍｏｌ）に、５２．５μＬの水、２６．２μＬのＤＭＳＯ、及び２４μＬ（９０ｎｍｏｌ、３０ｅｑ）の式（１ｂ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて複合体２ｂを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で６０μＬに希釈し、複合体２ｂ溶液を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ｂの平均質量は１０２．１ｋＤａであり、１分子当たり１０．５分子のＮ−型糖鎖（式（１ｂ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

［実施例３］
式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（ａｓｉａｌｏ−ＨＬＦ−ＨＳＡ、以下、「複合体２ｃ」と称すことがある。）を合成した。

＜式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液の調製＞
式（ｃ’）で表される糖鎖を有するＮ−型糖鎖のアジド誘導体（下記式（ｃ）で表されるアジド誘導体）（株式会社糖鎖工学研究所作製）１．０９ｍｇ（０．５７μｍｏｌ）を１３９μＬのＤＭＳＯに溶解させた溶液に、窒素雰囲気下、シアン化メチルに溶解させた１０ｍＭの式（１）で表されるアルデヒド化合物の溶液を５２μＬ（０．５２μｍｏｌ）添加した。得られた反応液を７０℃で加熱し、ＨＰＬＣで反応物をチェックした。最初に添加したアルデヒド化合物が消費された後、反応液を室温まで冷却し、下記式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物がＤＭＳＯに溶解しているストック溶液（３．８ｍＭ）を得た。合成された式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物は、ＥＳＩ−ＴＯＦ ＭＳで検出できた（Ｃ_１０６Ｈ_１４７Ｎ_１１Ｏ_５５ ［Ｍ−２Ｈ］^−２／２の検出値：１２２６．９５４５、算出値：１２２６．９５２７）。

＜複合体２ｃの合成＞
前記式（ｃ）で表されるアジド誘導体（株式会社糖鎖工学研究所作製）０．２９ｍｇ（０．１５μｍｏｌ）を２０μＬのＤＭＳＯに溶解させた溶液に、窒素雰囲気下、シアン化メチルに溶解させた５ｍＭの式（１）で表されるアルデヒド化合物の溶液を３０μＬ（０．１５μｍｏｌ）添加した。得られた反応液を７０℃で加熱し、ＨＰＬＣで反応物をチェックした。最初に添加したアルデヒド化合物が消費された後、反応液を室温まで冷却し、４４μＬのＤＭＳＯと８８μＬの水を添加して希釈した。次いで、製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液８８μＬ（５．０ｎｍｏｌ）を添加して充分に混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて複合体２ｂを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で１００μＬに希釈し、複合体２ｃ溶液を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ｂの平均質量は９２．６ｋＤａであり、１分子当たり９．１分子のＮ−型糖鎖（式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

［実施例４］
式（ｄ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（ＧｌｃＮＡｃ−ＨＬＦ−ＨＳＡ、以下、「複合体２ｄ」と称すことがある。）を合成した。

＜式（１ｄ）で表されるアルデヒド化合物の合成＞
式（ｄ’）で表される糖鎖を有するＮ−型糖鎖のアジド誘導体（下記式（ｄ）で表されるアジド誘導体）（株式会社糖鎖工学研究所作製）０．２４ｍｇ（０．１５μｍｏｌ）を２０μＬのＤＭＳＯに溶解させた溶液に、窒素雰囲気下、シアン化メチルに溶解させた５ｍＭの式（１）で表されるアルデヒド化合物の溶液を３０μＬ（０．１５μｍｏｌ）添加した。得られた反応液を７０℃で加熱し、ＨＰＬＣで反応物をチェックした。最初に添加したアルデヒド化合物が消費された後、反応液を室温まで冷却し、下記式（１ｄ）で表されるアルデヒド化合物を合成した。合成された式（１ｄ）で表されるアルデヒド化合物は、ＥＳＩ−ＴＯＦ ＭＳで検出できた（Ｃ_９４Ｈ_１２９Ｎ_１１Ｏ_４５ ［Ｍ−２Ｈ］^−２／２の検出値：１０６４．９０４１、算出値：１０６４．８９９９）。

＜複合体２ｄの合成＞
次いで、室温に冷却した反応液に、４４μＬのＤＭＳＯと８８μＬの水を添加して希釈した。次いで、製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液８８μＬ（５．０ｎｍｏｌ）を添加して充分に混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて複合体２ｄを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で１００μＬに希釈し、複合体２ｄ溶液を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ｄの平均質量は９１．９ｋＤａであり、１分子当たり１０．１分子のＮ−型糖鎖（式（１ｄ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

［実施例５］
式（ｅ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（Ｍａｎ−ＨＬＦ−ＨＳＡ、以下、「複合体２ｅ」と称すことがある。）を合成した。

＜式（１ｅ）で表されるアルデヒド化合物の合成＞
式（ｅ’）で表される糖鎖を有するＮ−型糖鎖のアジド誘導体（下記式（ｅ）で表されるアジド誘導体）（株式会社糖鎖工学研究所作製）０．１８ｍｇ（０．１５μｍｏｌ）を２０μＬのＤＭＳＯに溶解させた溶液に、窒素雰囲気下、シアン化メチルに溶解させた５ｍＭの式（１）で表されるアルデヒド化合物の溶液を３０μＬ（０．１５μｍｏｌ）添加した。得られた反応液を７０℃で加熱し、ＨＰＬＣで反応物をチェックした。最初に添加したアルデヒド化合物が消費された後、反応液を室温まで冷却し、下記式（１ｅ）で表されるアルデヒド化合物を合成した。合成された式（１ｅ）で表されるアルデヒド化合物は、ＥＳＩ−ＴＯＦ ＭＳで検出できた（Ｃ_７８Ｈ_１０１Ｎ_９Ｏ_３５ ［Ｍ−２Ｈ］^−２／２の検出値：８６１．８１７６、算出値：８６１．８２０６）。

＜複合体２ｅの合成＞
次いで、室温に冷却した反応液に、４４μＬのＤＭＳＯと８８μＬの水を添加して希釈した。次いで、製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液８８μＬ（５．０ｎｍｏｌ）を添加して充分に混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて複合体２ｅを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で１００μＬに希釈し、複合体２ｅ溶液を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ｅの平均質量は８８．５ｋＤａであり、１分子当たり１０．４分子のＮ−型糖鎖（式（１ｅ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

［実施例６］
式（ｆ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（Ｈａｌｆ−ＨＬＦ−ＨＳＡ、以下、「複合体２ｆ」と称すことがある。）を合成した。

＜式（１ｆ）で表されるアルデヒド化合物の合成＞
式（ｆ’）で表される糖鎖を有するＮ−型糖鎖のアジド誘導体（下記式（ｅ）で表されるアジド誘導体）（株式会社糖鎖工学研究所作製）０．２８ｍｇ（０．１５μｍｏｌ）を２０μＬのＤＭＳＯに溶解させた溶液に、窒素雰囲気下、シアン化メチルに溶解させた５ｍＭの式（１）で表されるアルデヒド化合物の溶液を３０μＬ（０．１５μｍｏｌ）添加した。得られた反応液を７０℃で加熱し、ＨＰＬＣで反応物をチェックした。最初に添加したアルデヒド化合物が消費された後、反応液を室温まで冷却し、下記式（１ｆ）で表されるアルデヒド化合物を合成した。合成された式（１ｆ）で表されるアルデヒド化合物は、ＥＳＩ−ＴＯＦ ＭＳで検出できた（Ｃ_１０３Ｈ_１４３Ｎ_１１Ｏ_５３ ［Ｍ−２Ｈ］^−２／２の検出値：１１８９．９３１６、算出値：１１８９．９３４４）。

＜複合体２ｆの合成＞
次いで、室温に冷却した反応液に、４４μＬのＤＭＳＯと８８μＬの水を添加して希釈した。次いで、製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液８８μＬ（５．０ｎｍｏｌ）を添加して充分に混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて複合体２ｆを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で１００μＬに希釈し、複合体２ｆ溶液を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ｆの平均質量は９４．０ｋＤａであり、１分子当たり９．９分子のＮ−型糖鎖（式（１ｆ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

［実施例７］
式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖と式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（Ｈｅｔｅｒｏ３−ＨＳＡ、以下、「複合体２ｇ」と称すことがある。）を合成した。

製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液１７５μＬ（１０ｎｍｏｌ）に、１７５μＬの水及び８８μＬのＤＭＳＯを添加した溶液に、実施例１で製造した式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）４６．７μＬ（１７５ｎｍｏｌ、１７．５ｅｑ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて、ＨＬ７５０−ＨＳＡに式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合した中間体を合成した。当該反応液０．５μＬを分取し、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋにより精製し、水で２回洗浄した後、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された中間体の平均質量は９６．９ｋＤａであり、１分子当たり８．３分子の式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖（式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

次いで、残りの反応液（４４μＬ、１．０ｎｍｏｌ）に、実施例３で製造した式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）２．０μＬ（７．５ｎｍｏｌ、７．５ｅｑ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて、前記中間体に式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合した複合体２ｇを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で希釈し、複合体２ｇ溶液（５０μＭ）を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ｇの平均質量は１０３．９ｋＤａであり、１分子当たり２．６分子の式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖（式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。つまり、複合体２ｇは、アルブミンに対して式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖と式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が約８：２で結合したヘテロ型のアルブミン−糖鎖複合体であった。

［実施例８］
式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖と式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（Ｈｅｔｅｒｏ２−ＨＳＡ、以下、「複合体２ｈ」と称すことがある。）を合成した。

製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液２１０μＬ（１２ｎｍｏｌ）に、２１０μＬの水及び１０５μＬのＤＭＳＯを添加した溶液に、実施例１で製造した式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）４３．４μＬ（１６３ｎｍｏｌ、１３．６ｅｑ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて、ＨＬ７５０−ＨＳＡに式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合した中間体を合成した。当該反応液０．５μＬを分取し、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋにより精製し、水で２回洗浄した後、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された中間体の平均質量は８７．１ｋＤａであり、１分子当たり５．３分子の式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖（式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

次いで、残りの反応液のうち２１５μＬ（５．０ｎｍｏｌ）に、実施例３で製造した式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）１４．２μＬ（５２ｎｍｏｌ、１０．４ｅｑ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて、前記中間体に式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合した複合体２ｇを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で希釈し、複合体２ｈ溶液（５０μＭ）を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ｈの平均質量は９８．７ｋＤａであり、１分子当たり４．７分子の式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖（式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。つまり、複合体２ｈは、アルブミンに対して式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖と式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が約５：５で結合したヘテロ型のアルブミン−糖鎖複合体であった。

［実施例９］
式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖と式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（Ｈｅｔｅｒｏ１−ＨＳＡ、以下、「複合体２ｉ」と称すことがある。）を合成した。

製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液１７５μＬ（１０ｎｍｏｌ）に、１７５μＬの水及び８８μＬのＤＭＳＯを添加した溶液に、実施例１で製造した式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）１３．３μＬ（５０ｎｍｏｌ、５．０ｅｑ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて、ＨＬ７５０−ＨＳＡに式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合した中間体を合成した。当該反応液０．５μＬを分取し、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋにより精製し、水で２回洗浄した後、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された中間体の平均質量は７８．９ｋＤａであり、１分子当たり２．８分子の式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖（式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

次いで、残りの反応液のうち１１９μＬ（２．８ｎｍｏｌ）に、実施例３で製造した式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）１５．３μＬ（５０ｎｍｏｌ、２０．９ｅｑ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて、前記中間体に式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合した複合体２ｉを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で希釈し、複合体２ｉ溶液（５０μＭ）を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ｉの平均質量は９７．２ｋＤａであり、１分子当たり６．３分子の式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖（式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。つまり、複合体２ｉは、アルブミンに対して式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖と式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が約３：７で結合したヘテロ型のアルブミン−糖鎖複合体であった。

［実施例１０］
式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖と式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（Ｈｅｔｅｒｏ４−ＨＳＡ、以下、「複合体２ｊ」と称すことがある。）を合成した。

製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡストック溶液１７５μＬ（１０ｎｍｏｌ）に、１７５μＬの水及び８８μＬのＤＭＳＯを添加した溶液に、実施例３で製造した式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）４３μＬ（１６ｎｍｏｌ、１６ｅｑ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて、ＨＬ７５０−ＨＳＡに式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合した中間体を合成した。当該反応液０．５μＬを分取し、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋにより精製し、水で２回洗浄した後、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された中間体の平均質量は８３．５ｋＤａであり、１分子当たり５．２分子の式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖（式（１ｃ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。

次いで、残りの反応液のうち８８μＬ（２．０ｎｍｏｌ）に、実施例１で製造した式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物のストック溶液（３．８ｍＭ）４．３μＬ（１６ｎｍｏｌ、８．０ｅｑ）を混合して反応液を調製した。得られた反応液を、大気雰囲気下、３７℃で一晩、穏やかに振とうさせながらインキュベートして反応させて、前記中間体に式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖が結合した複合体２ｊを合成した。得られた反応物を、Ａｍｉｃｏｎ １０Ｋによりフィルター処理した後、水で３回洗浄した。その後、反応液をＤｕｒａｐｏｒｅ ＰＶＤＦ膜（０．４５μｍ）によりフィルター処理した後、水で希釈し、複合体２ｊ溶液（５０μＭ）を調製した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳで分析したところ、合成された複合体２ｊの平均質量は９７．６ｋＤａであり、１分子当たり４．７分子の式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖（式（１ａ）で表されるアルデヒド化合物）が結合していた。つまり、複合体２ｊは、アルブミンに対して式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖と式（ｃ’）で表されるＮ−型糖鎖が約５：５で結合したヘテロ型のアルブミン−糖鎖複合体であった。

［試験例１］
実施例１〜６で製造したアルブミン−糖鎖複合体をマウスに投与した場合の動態を、ＨＬ７５０から発される近赤外蛍光を検出することにより非侵襲的に調べた。

＜バイオイメージング画像の取得＞
まず、３０μＬ（１．５ｎｍｏｌ）の各アルブミン−糖鎖複合体溶液又は製造例１で合成したＨＬ７５０−ＨＳＡに、７０μＬの生理食塩水を添加して希釈した注射用溶液を調製した。当該注射用溶液を、８〜１２週齢の雌のＢＡＬＢ／ｃヌードマウス（ＢＡＬＢ／ｃＡＪｃｌ−ｎｕ／ｎｕマウス）の尾静脈へ注射した（ｎ＝４）。注射後のマウスは、ペントバルビタールで麻酔をかけた後、生体蛍光イメージング装置ＩＶＩＳ（登録商標） Ｋｉｎｅｔｉｃｓ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｍａｇｅｒ（Ｃａｌｉｐｅｒ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）に静置し、アルブミン−糖鎖複合体投与後３時間までの間３０分ごとに、個体全体の蛍光画像を取得した。取得した蛍光画像は、７１０ｎｍの励起光画像から、バックグラウンド蛍光（６４０ｎｍ励起光）を除いた画像である。

＜尿中排泄量＞
取得された蛍光画像中、膀胱及びその周囲の任意の関心領域について蛍光強度を測定し、膀胱及びその周囲の蛍光強度の増加から、半定量分析により、各アルブミン−糖鎖複合体及びＨＬ７５０−ＨＳＡの尿中排泄量（蛍光強度値［count］）を測定した。図中の尿中排泄量は、投与直後から３時間後までにおける単位時間当たりの膀胱への排出の平均値を示す。

＜各組織に蓄積したアルブミン−糖鎖複合体の蛍光強度＞
アルブミン−糖鎖複合体投与から３時間経過した後のマウスから小腸を切除し、胆嚢と小腸の蛍光強度を測定し、アルブミン−糖鎖複合体の蓄積量（蛍光強度値［count］）を測定した。
また、アルブミン−糖鎖複合体投与から３時間経過した後のマウスから肝臓と脾臓を切除して蛍光強度を測定し、アルブミン−糖鎖複合体の蓄積量（蛍光強度値［count］）を測定した。

＜測定結果＞
図２（Ａ）〜（Ｄ）に、それぞれ、ＨＬ７５０−ＨＳＡ、複合体２ａ、複合体２ｂ、及び複合体２ｃを注射した各マウスの投与後０．５〜３時間経過時点のマウス個体の蛍光画像を示す。この結果、糖鎖を導入していないＨＬ７５０−ＨＳＡは、投与後３時間経過時点においても、血管内を通じてマウス体内全体に拡散していた。これに対して、非還元末端が酸性のシアル酸である糖鎖が、アルブミン１分子当たり１０分子程度も導入されている複合体２ａ及び複合体２ｂは、腎臓及び膀胱への蓄積が確認され、速やかに尿中に排泄されることがわかった。また、複合体２ａを投与したマウスと複合体２ｂを投与したマウスでは、マウス個体全体の蛍光強度は徐々に低下し、投与から１２時間経過時点では、蛍光強度はほとんど検出されなかった（結果は図示せず。）。また、式（ａ’）で表されるＮ−型糖鎖が、アルブミン１分子当たり１．８分子結合したＨＬ７５０−ＨＳＡ（２，６−ｆｅｗ−ＨＬＦ−ＨＳＡ、以下、「複合体２ＳＩａ」と称すことがある。）を同様にマウスに投与した場合には、糖鎖を導入していないＨＬ７５０−ＨＳＡは、投与後３時間経過時点においても、血管内を通じてマウス体内のほぼ全体に拡散していた（結果は図示せず。）。一方で、非還元末端がシアル酸ではないアシアロ糖鎖がアルブミン１分子当たり１０分子程度も導入されている複合体２ｃは、腎臓や膀胱ではなく、腸への蓄積が観察され、肝臓や胆嚢を経て腸管に排出されていることが確認された。

図３（Ａ）に、各マウスのアルブミン−糖鎖複合体又はＨＬ７５０−ＨＳＡの尿中排泄量の測定結果を示す。この結果、腎臓及び膀胱から排出される量は、ＨＬ７５０−ＨＳＡが最も多かった。また、複合体２ａのほうが複合体２ｂよりも尿中排泄量が多く、尿中への排出速度が速かった。

図３（Ｂ）に、投与から３時間経過時点における各マウスの胆嚢の蛍光強度の測定結果を、図３（Ｃ）に、投与から３時間経過時点における各マウスの小腸の蛍光強度の測定結果を、それぞれ示す。この結果、複合体２ｃが投与されたマウスでは、胆嚢と小腸の蛍光強度が極めて高く、複合体２ｃが、肝細胞表面のＡＧＣＲと結合し、肝臓や胆嚢を経て腸管排泄されることが確認された。また、複合体２ａと複合体２ｂは、ほとんど腸管排泄されず、膀胱から選択的に排出されていた。

図４（Ａ）〜（Ｃ）に、それぞれ、複合体２ｄ、複合体２ｅ、及び複合体２ｆを注射した各マウスの投与後０．５〜３時間経過時点のマウス個体の蛍光画像を示す。図に示すように、これらの複合体は、主に肝臓や脾臓に蓄積することが確認された。

図５（Ａ）に、各複合体投与後３時間経過時点のマウス個体から切除された肝臓と脾臓の蛍光画像を示す。また、図５（Ｂ）に、投与から３時間経過時点における各マウスの肝臓の蛍光強度の測定結果を、図５（Ｃ）に、投与から３時間経過時点における各マウスの脾臓の蛍光強度の測定結果を、それぞれ示す。この結果、複合体２ａを投与したマウスに比べて、複合体２ｄ、複合体２ｅ、及び複合体２ｆを投与したマウスはいずれも、肝臓と脾臓の蛍光強度が極めて高く、これらのアルブミン−糖鎖複合体は肝臓と脾臓に選択的に集積することがわかった。

複合体２ｄ、複合体２ｅ、及び複合体２ｆが、肝臓のどの部分に集積しているかを調べるために、マウスから切除した肝臓を組織染色した。具体的には、マウスから切除した肝臓を、４％ＰＦＡ溶液に４℃で２４時間浸漬させて固定した後、１５％ショ糖含有ＰＢＳに４℃で２４時間浸漬させ、次いで３０％ショ糖含有ＰＢＳに４℃で２４時間浸漬させた。固定化された肝臓をＯＣＴ ｃｏｍｐｏｕｎｄ（登録商標）中、−７８℃で凍結させた後、６〜８μｍの切片を作製した。これらの切片は、ブロッキングバッファー（３％ ＢＳＡ、１０％ ヤギ血清、及び０．１Ｍ グリシンを含有するＰＢＳＴバッファー）中で３０分間インキュベートした後、一次抗体液として、ラット抗Ｄｅｓｍｉｎ抗体（製品番号：ＲＢ−９０１４、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）の３００倍希釈液、ラット抗ＬＹＶＥ−１抗体（製品番号：ａｂ１４９１７、ａｂｃａｍ社製）の２００倍希釈液、又はラット抗Ｆ４／８０抗体（製品番号：ＭＣＡ４９７ＧＡ、ＡｂＤ ｓｅｒｏｔｅｃ社製）の２００倍希釈液に浸漬させて４℃で一晩インキュベートし、次いで二次抗体液として、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８標識抗ラットＩｇＧ抗体とＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ５５５標識抗ラットＩｇＧ抗体の両方を含有する２００倍希釈液に浸漬させて室温で２時間インキュベートした。これらの切片は、その後さらに、Ｈｏｅｃｈｓｔ ３３２５８の２５００倍希釈液（同仁化学研究所社製）に浸漬させて室温で１０分間インキュベートした後、マウント液（製品名：Ｆｌｕｏｒｏｍｏｕｎｔ（登録商標）、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ ＢｉｏＳｙｓｔｅｍｓ社製）でスライドにマウントした。切片を載せたスライドを、蛍光顕微鏡（製品名：ＢＺ−Ｘ７１０ Ａｌｌ−ｉｎ−ｏｎｅ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ（登録商標）、Ｋｅｙｅｎｃｅ社製）に設置し、観察した。

この結果、複合体２ｄと複合体２ｆは、肝臓のうち、実質細胞ではなく、非実質細胞に取り込まれていた。組織染色の結果、星細胞を特異的に染色する抗Ｄｅｓｍｉｎ抗体と、類洞内皮細胞を特異的に染色する抗ＬＹＶＥ−１抗体は、複合体２ｄとよく共局在しており、クッパー細胞を特異的に染色する抗Ｆ４／８０抗体は、複合体２ｄとはあまり共局在していなかった。これらの結果から、複合体２ｄは、ＤｅｓｍｉｎやＶｉｍｅｎｔｉｎとの相互作用により、活性化した星細胞に特異的に取り込まれている可能性が示唆された。
また、複合体２ｄと同様に、抗Ｄｅｓｍｉｎ抗体及び抗ＬＹＶＥ−１抗体とよく共局在していることから、複合体２ｆも、星細胞に特異的に取り込まれている可能性が示唆された。一方で、複合体２ｅは、抗Ｆ４／８０抗体とよく共局在しており、クッパー細胞に特異的に取り込まれている可能性が示唆された。

このように、物質表面の糖鎖の種類により、当該物質の生体内における排出機構や、生体内における蓄積部位が変化することは、従来のバイオイメージングプローブでは解析できず、糖鎖を結合させるタンパク質としてアルブミンを用い、かつ一分子当たり複数の糖鎖を結合させた本発明に係るアルブミン−糖鎖複合体をバイオイメージングプローブとすることによって初めて解明された。

［試験例２］
試験例２において、複合体２ａは主に腎臓から排泄され、複合体２ｃは主に腸管から排出されていたことから、複合体２ａを構成するＮ−型糖鎖（式（１ａ））と複合体２ｃを構成するＮ−型糖鎖（式（１ｃ））とを様々な割合で有するヘテロ複合体を用い、糖鎖の存在比と排出経路に対する影響を調べた。
具体的には、実施例１、３、７〜９で製造された複合体２ａ、２ｃ、２ｇ〜２ｊについて、試験例１と同様にしてマウスに投与した後、投与後３時間までの間３０分ごとに、マウス個体全体の蛍光画像を取得した。さらに、試験例１と同様にして 各複合体の尿中排泄量と、胆嚢と小腸への蓄積量を調べた。なお、各複合体中の糖鎖の存在比（モル比）を表１に示す。

図６（Ａ）に、各マウスのアルブミン−糖鎖複合体の尿中排泄量の測定結果を、図６（Ｂ）に、投与から３時間経過時点における各マウスの胆嚢の蛍光強度の測定結果を、図６（Ｃ）に、投与から３時間経過時点における各マウスの小腸の蛍光強度の測定結果を、それぞれ示す。この結果、非還元末端がシアル酸ではない式（１ｃ）の糖鎖の存在比が高くなるほど、複合体の排出経路は、腎臓よりも、胆嚢と小腸腸管へとシフトする傾向が観察された。これらの結果から、物質表面の糖鎖の種類、特に非還元末端がシアル酸か否かにより、生体内における物質の排出経路が影響されること、よって物質を生体に投与する場合に、物質表面の糖鎖を調節することにより、当該物質の動態を制御し得ることがわかった。

なお、複合体２ｈと複合体２ｊは、いずれも式（１ａ）の糖鎖と式（１ｃ）の糖鎖を１：１（モル比）で含有しているが、複合体２ｈは腎臓から排出されやすく、複合体２ｊは小腸へ排出されやすい、という差があった。これは、アルブミンに対して糖鎖修飾する順番が異なることから、アルブミン分子表面のいずれのリジン残基にどの糖鎖を連結させるかが重要であることが示唆された。

［試験例３］
α（２−３）シアロタンパク質は、セクレチンとの相互作用により、がん細胞に特異的に取り込まれる。
そこで、実施例２で製造された複合体２ｂを、癌細胞由来の培養株Ａ４３１細胞を移植したがんモデルマウスに投与し、個体内における動態を観察した。
８週齢の雌のＢＡＬＢ／ｃヌードマウスに、３×１０^６個のＡ４３１細胞を、右肩付近に移植した後、２週間が経過したマウスをがんモデルとした。このがんモデルマウスに、試験例１と同様にして投与した後、投与後５時間までの間３０分ごとに、マウス個体全体の蛍光画像を取得した。

図７に、複合体２ｂを注射した各マウスの投与後１時間経過時点のマウス個体の蛍光画像を示す。図中の矢印で示した部分は、Ａ４３１細胞を移植した位置である。複合体２ｂは、投与後１時間で速やかにＡ４３１細胞に取り込まれていた。また、投与後５時間ではほとんどが排泄されていた（図示せず。）。

Claims (10)

1. アスパラギン結合型糖鎖が、アルブミン１分子当たり５分子以上結合しており、
   下記一般式（Ｉ）
   

   

   ［一般式（Ｉ）中、Ａ^１は、アスパラギン残基の側鎖のアミド窒素原子にアスパラギン結合型糖鎖が結合した基を表し；Ｚ^１は、１，２−フェニレン基、１，３−フェニレン基、又は１，４−フェニレン基を表し；Ｌ^１は、前記Ａ^１中のアスパラギン残基の糖鎖と結合していない窒素原子と結合する２価の連結基であり；Ｒ^１は炭素数１〜６のアルキル基を表し；＊＊は、アルブミンのリジン残基の側鎖のアミノ基に結合する炭素原子に結合する部位を示す。］
   で表される構造を有しており、
   前記Ｌ ^１ が、下記一般式（ＩＩ）
   

   

   ［一般式（ＩＩ）中、Ｒ ^２ は炭素数１〜２０のアルキレン基を表し；Ｌ ^２ は任意の連結基を表し；＊は、前記一般式（Ｉ）中のＡ ^１ と結合する部位を示し；＊＊は、前記一般式（Ｉ）中のＺ ^１ と結合する部位を示す。］
   で表される基であることを特徴とする、アルブミン−糖鎖複合体。
2. 前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端の糖が、Ｎ−アセチルグルコサミン、ガラクトース、マンノース、及びシアル酸からなる群から選択される糖を含む、請求項１に記載のアルブミン−糖鎖複合体。
3. 前記アスパラギン結合型糖鎖が、下記式（ａ’）〜（ｆ’）
   

   

   ［前記式中、Ｎｅｕ５ＡｃはＮ−アセチルノイラミン酸、Ｇａｌはガラクトース、ＧｌｃＮＡｃはＮ−アセチルグルコサミン、Ｍａｎはマンノースを意味する。］
   からなる群より選択される１種以上の糖鎖である、請求項１又は２に記載のアルブミン−糖鎖複合体。
4. 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、請求項１〜３のいずれか一項に記載のアルブミン−糖鎖複合体を含む、機能性分子用担体。
5. 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、前記標的組織が肝臓の星細胞であり、請求項１又は２に記載のアルブミン−糖鎖複合体を含み、前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端がＮ−アセチルグルコサミンである、機能性分子用担体。
6. 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、前記標的組織が肝臓のクッパー細胞であり、請求項１又は２に記載のアルブミン−糖鎖複合体を含み、前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端がマンノースとＮ−アセチルノイラミン酸の２分岐型である、機能性分子用担体。
7. 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、前記標的組織が肝臓又は脾臓であり、請求項１又は２に記載のアルブミン−糖鎖複合体を含み、前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端がマンノースである、機能性分子用担体。
8. 生体内において標的組織へ選択的に機能性分子を送達するための担体であって、前記標的組織ががん細胞であり、請求項１又は２に記載のアルブミン−糖鎖複合体を含み、前記アスパラギン結合型糖鎖の非還元末端がα（２−３）シアル酸である、機能性分子用担体。
9. 前記機能性分子が、蛍光物質又は薬剤である、請求項４〜８のいずれか一項に記載の機能性分子用担体。
10. 請求項１〜３のいずれか一項に記載のアルブミン−糖鎖複合体を有効成分とし、動物の生体内に投与されることを特徴とする、バイオイメージングプローブ。

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