JP6944886B2 - フコシル化オリゴ糖の生産における使用に適したアルファ(1,2)フコシルトランスフェラーゼ - Google Patents
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Description
本願は、2012年7月25日出願の米国特許出願第13/557,655号からの優先権および恩典を主張し、その内容の全体を参照により本明細書に組み入れる。
本発明は、精製されたオリゴ糖、特に、典型的にはヒト乳中で見出される特定のフコシル化オリゴ糖を生産するための組成物および方法を提供する。
ヒト乳は、多種で豊富な中性および酸性オリゴ糖群を含んでいる。130を超える異なる複合オリゴ糖がヒト乳において同定されており、それらの構造の多様さおよび豊富さは、ヒトに特有である。これらの分子は、栄養分としては乳児によって直接利用されないかもしれないが、そうであったとしてもそれらは健康な腸内微生物環境の確立、疾患の予防および免疫機能において重要な役割を果たしている。本明細書に記載される本発明より以前は、ヒト乳オリゴ糖(HMOS)を安価で生産する能力に問題があった。例えば、化学合成を通じたそれらの生産は立体特異性の問題、前駆体の入手性、生産物の不純度およびかさむ総費用によって制限されていた。そのため、多量のHMOSを安価で生産する新しい戦略が切に求められている。
1)配列データベースのコンピュータ検索を行い、任意の公知のラクトース利用性α(1,2)フコシルトランスフェラーゼの単純配列ホモログ(simple sequence homolog)の大グループを定義する工程;
2)工程(1)からのリストを使用して、リストのメンバーによって共有されている共通配列および/または構造モチーフを含む検索プロフィールを導出する工程;
3)工程(2)で導出された共通配列または構造モチーフに基づく検索プロフィールをクエリーとして使用して配列データベースを検索し、参照ラクトース利用性α(1,2)フコシルトランスフェラーゼに対する配列相同性が40%またはそれ未満である候補配列を同定する工程;
4)自然状態でα(1,2)フコシル-グリカンを発現することで特徴づけられる候補生物のリストをコンパイルする工程;
5)候補生物由来である候補配列を選択し、候補ラクトース利用性酵素のリストを生成する工程;
6)宿主生物において候補ラクトース利用性酵素を発現させる工程;ならびに
7)ラクトース利用性α(1,2)フコシルトランスフェラーゼ活性について試験する工程であって、生物における2'-FLの検出が、候補配列が非FutCラクトース利用性α(1,2)フコシルトランスフェラーゼを含むことを示す、工程。例えば、参照ラクトース利用性α(1,2)フコシルトランスフェラーゼに対する配列相同性は、40%またはそれ未満である。
いくつかの研究はヒト乳グリカンが抗菌性抗接着剤として使用され得ることを示唆しているが、ヒトが消費するのに適した品質のこれらの剤を十分量生産する困難さおよび費用の高さがそれらのフルスケールの試験および想定されている用途を制限している。必要とされていることは、妥当な費用で十分量の適当なグリカンを生産する適切な方法である。本明細書に記載される本発明より以前に、グリカン合成に関して様々な異なる合成アプローチを使用する試みがなされていた。いくつかの化学的アプローチは、オリゴ糖を合成することができる(Flowers,H.M. Methods Enzymol 50, 93-121 (1978); Seeberger,P.H. Chem Commun (Camb) 1115-1121 (2003))が、これらの方法のための試薬は高価でありかつ潜在的に毒性である(Koeller,K.M. & Wong,C.H. Chem Rev 100, 4465-4494 (2000))。改変された生物から発現される酵素(Albermann,C., Piepersberg,W. & Wehmeier,U.F. Carbohydr Res 334, 97-103 (2001); Bettler,E., Samain,E., Chazalet,V., Bosso,C., et al. Glycoconj J 16, 205-212 (1999); Johnson,K.F. Glycoconj J 16, 141-146 (1999); Palcic,M.M. Curr Opin Biotechnol 10, 616-624 (1999); Wymer,N. & Toone,E.J. Curr Opin Chem Biol 4, 110-119 (2000))は正確かつ効率的な合成を提供する(Palcic,M.M. Curr Opin Biotechnol 10, 616-624 (1999); Crout,D.H. & Vic,G. Curr Opin Chem Biol 2, 98-111 (1998))が、試薬、特に糖ヌクレオチドの費用の高さが、低費用大規模生産におけるそれらの利用を制限している。微生物は、その細菌の生まれつきのヌクレオチド糖プールからオリゴ糖を合成するのに必要とされるグリコシルトランスフェラーゼを発現するよう遺伝子改変される(Endo,T., Koizumi,S., Tabata,K., Kakita,S. & Ozaki,A. Carbohydr Res 330, 439-443 (2001); Endo,T., Koizumi,S., Tabata,K. & Ozaki,A. Appl Microbiol Biotechnol 53, 257-261 (2000); Endo,T. & Koizumi,S. Curr Opin Struct Biol 10, 536-541 (2000); Endo,T., Koizumi,S., Tabata,K., Kakita,S. & Ozaki,A. Carbohydr Res 316, 179-183 (1999); Koizumi,S., Endo,T., Tabata, K. & Ozaki,A. Nat Biotechnol 16, 847-850 (1998))。しかし、本明細書に記載される本発明より以前には、代謝的に改変された細菌宿主におけるHMOS合成に有用なさらなるグリコシルトランスフェラーゼを同定および特徴づける要望が高まっていた。
ヒト乳は、多種で豊富な中性および酸性オリゴ糖群を含んでいる(Kunz,C., Rudloff,S., Baier,W., Klein,N., and Strobel,S. (2000). Annu Rev Nutr 20, 699-722; Bode,L. (2006). J Nutr 136, 2127-130)。130を超える異なる複合オリゴ糖がヒト乳において同定されており、それらの構造の多様さおよび豊富さは、ヒトに特有である。これらの分子は、栄養分としては乳児によって直接利用されないかもしれないが、そうであったとしてもそれらは健康な腸内微生物環境の確立(Marcobal,A., Barboza,M., Froehlich,J.W., Block,D.E., et al. J Agric Food Chem 58, 5334-5340 (2010))、疾患の予防(Newburg,D.S., Ruiz-Palacios,G.M. & Morrow,A.L. Annu Rev Nutr 25, 37-58 (2005))および免疫機能(Newburg,D.S. & Walker,W.A. Pediatr Res 61, 2-8 (2007))において重要な役割を果たしている。ヒト乳オリゴ糖(HMOS)との接触が数百年に及んでいるにもかかわらず、病原体は今もなお、標的細胞への接着を妨げ感染を阻害するHMOSの能力を回避する方法を開発しなければならない。病原体接着阻害物質としてHMOSを利用する能力は、現在の急増する抗生物質耐性の危機に取り組む上で有用である。生合成により生産されたヒト乳オリゴ糖は、社会の最も対処困難な問題のいくつかに対する新規クラスの治療剤のリード化合物となる。
非結合オリゴ糖およびそれらの複合多糖の両方を含むヒト乳グリカンは、乳児の胃腸(GI)管の保護および発達において重要な役割を果たしている。2'-フコシルラクトース(2'-FL)を含む中性フコシル化オリゴ糖は、様々な重要な病原体から乳児を保護する。様々な哺乳動物において見出される乳オリゴ糖は大きく異なっており、ヒトの組成は特有である(Hamosh M., 2001 Pediatr Clin North Am, 48:69-86; Newburg D.S., 2001 Adv Exp Med Biol, 501:3-10)。さらに、ヒト乳におけるグリカンレベルは、授乳期を通じて変化し、個体間でも大きく異なる(Morrow A.L. et al., 2004 J Pediatr, 145:297-303; Chaturvedi P et al., 2001 Glycobiology, 11:365-372)。およそ200個の異なるヒト乳オリゴ糖が同定されており、単エピトープの組み合わせがこの多様性を担っている(Newburg D.S., 1999 Curr_Med Chem, 6:117-127; Ninouevo M. et al., 2006 J Agric Food Chem, 54:7471-74801)。
ヒト乳グリカンは、腸管病原体の細胞受容体に対する構造的相同性を有し、受容体のデコイとして機能する。例えば、カンピロバクター(Campylobacter)の病原性株は、H-2を含むグリカン、すなわち2'-フコシル-N-アセチルラクトサミンまたは2'-フコシルラクトース(2'FL)に特異的に結合し;カンピロバクターの結合性および感染性は2'-FLおよびこのH-2エピトープを含む他のグリカンによって阻害される。同様に、いくつかの下痢性大腸菌病原体は、インビボで、2結合型フコース部分を含むヒト乳オリゴ糖によって強く阻害される。ヒトカリシウイルスのいくつかの主要株、特にノロウイルスもまた2結合型フコシル化グリカンに結合し、そしてこの結合はヒト乳2結合型フコシル化グリカンによって阻害される。これらの2結合型フコシルオリゴ糖を高レベルで有するヒト乳の摂取は、ノロウイルス、カンピロバクター、大腸菌関連下痢のSTおよびメキシコ人乳児集団におけるすべての原因の中等度〜重度の下痢の危険の低下に関連した(Newburg D.S. et al., 2004 Glycobiology, 14:253-263; Newburg D.S. et al., 1998 Lancet, 351:1160-1164)。いくつかの病原体、例えばインフルエンザ(Coucerio,J.N., Paulson,J.C. & Baum,L.G. Virus Res 29, 155-165 (1993))、パラインフルエンザ(Amonsen,M., Smith,D.F., Commings,R.D. & Air,G.M. J Virol 81, 8341-8345 (2007))およびロタウイルス(rotovirus)(Kuhlenschmidt,T.B., Hanafin,W.P., Gelberg,H.B. & Kuhlenschmidt,M.S. Adv Exp Med Biol 473, 309-317 (1999))は、それらの宿主受容体としてシアル化グリカンを利用する。シアリル-ルイスXエピトープは、ヘリコバクター・ピロリ(Mahdavi,J., Sonden,B., Hurtig,M., Olfat,F.O., et al. Science 297, 573-578 (2002))、シュードモナス・アエルギノーサ(Scharfman,A., Delmotte,P., Beau,J., Lamblin,G., et al. Glycoconj J 17, 735-740 (2000))およびノロウイルスのいくつかの株(Rydell,G.E., Nilsson,J., Rodriguez-Diaz, J., Ruvoen-Clouet,N., et al. Glycobiology 19, 309-320 (2009))によって使用される。
本明細書には、代謝的に改変された大腸菌におけるフコシル結合オリゴ糖の合成のために新規のα(1,2)フコシルトランスフェラーゼ(α(1,2)FT)を同定するのに使用した遺伝子スクリーニングアプローチが記載されている。HMOS 2'-フコシルラクトース(2'-FL)を合成することができるα(1,2)FTが、特に関心対象である。2'-FLは、ヒト乳中に存在する最も豊富なフコシル化オリゴ糖であり、このオリゴ糖は、細菌病原体、例えばカンピロバクター・ジェジュニにより引き起こされる感染性下痢に対する保護を新生児に提供する(Ruiz-Palacious,G.M., et al. (2003). J Biol Chem 278, 14112-120; Morrow,A.L. et al. (2004). J Pediatr 145, 297-303; Newburg,D.S. et al. (2004). Glycobiology 14, 253-263)。
ΔampC::Ptrp BcI, Δ(lacI-lacZ)::FRT, PlacIqlacY+, ΔwcaJ::FRT, thyA::Tn10, Δlon:(npt3,lacZ+), ΔlacA
大腸菌K-12は、微生物生理学および遺伝学における幅広い研究の対象であり、様々な工業利用において商業的に利用されている、よく研究された細菌である。その親種である大腸菌の自然生息場所は、哺乳動物の大腸である。大腸菌K-12は、安全使用の歴史があり、その派生株は、ヒトに投与およびヒトが消費するための化合物および薬物の生産を含む多くの工業用途で使用されている。大腸菌K-12は、1922年に、回復期のジフテリア患者から最初に単離された。それは毒性を有さず、一般的な研究用培地で容易に成長し、そして微生物生理学および遺伝学の研究において広く使用されているので、微生物学の研究、教育ならびに工業用および医薬用製品の生産において使用される標準的な細菌株となっている。大腸菌K-12は、現在、実験環境で70年を超えて維持された結果として弱体化された生物であるとみなされている。その結果、K-12株は、通常の条件下でヒトおよび他の動物の腸にコロニーを形成することができない。この周知の菌株に関するさらなる情報は、http://epa.gov/oppt/biotech/pubs/fra/fra004.htmで入手可能である。大腸菌K12に加えて、他の細菌株も生産宿主株として使用され、例えば、様々な細菌種、例えばエルウィニア・ヘルビコラ(パントエア・アグロメランス)、シトロバクター・フロインディ、パントエア・シトレア、ペクトバクテリウム・カロトボルムまたはザントモナス・カンペストリス、がオリゴ糖生合成法において使用され得る。バチルス・サブチリス、バチルス・リケニフォルミス、バチルス・コアグランス、バチルス・サーモフィルス、バチルス・ラテロスポールス、バチルス・メガテリウム、バチルス・ミコイデス、バチルス・プミルス、バチルス・レンタス、バチルス・セレウスおよびバチルス・サーキュランスを含むバチルス属の細菌もまた使用され得る。同様に、ラクトバチルス・アシドフィルス、ラクトバチルス・サリバリウス、ラクトバチルス・プランタルム、ラクトバチルス・ヘルベティクス、ラクトバチルス・デルブリュッキイ、ラクトバチルス・ラムノサス、ラクトバチルス・ブルガリクス、ラクトバチルス・クリスパータス、ラクトバチルス・ガセリ、ラクトバチルス・カゼイ、ラクトバチルス・ロイテリ、ラクトバチルス・イエンセニイおよびラクトコッカス・ラクティスを含むがこれらに限定されないラクトバチルスおよびラクトコッカス属の細菌が、本発明の方法を用いて修飾され得る。ストレプトコッカス・サーモフィルスおよびプロピオニバクテリウム・フロイデンライシイもまた、本明細書に記載される発明に適した細菌種である。本明細書に記載されるように修飾された、エンテロコッカス(例えば、エンテロコッカス・フェシウムおよびエンテロコッカス・サーモフィルス)、ビフィドバクテリウム(例えば、ビフィドバクテリウム・ロングム、ビフィドバクテリウム・インファンティスおよびビフィドバクテリウム・ビフィダム)属、スポロラクトバチルス種、ミクロモノスポラ種、ミクロコッカス種、ロドコッカス種およびシュードモナス(例えば、シュードモナス・フルオレッセンスおよびシュードモナス・アエルギノーサ)由来の株もまた本発明の一部として含まれる。
40g (NH4)2HPO4
100g KH2PO4
10g MgSO4.7H2O
40g NaOH
微量元素:
1.3g NTA(ニトリロ三酢酸)
0.5g FeSO4.7H2O
0.09g MnCl2.4H2O
0.09g ZnSO4.7H2O
0.01g CoCl2.6H2O
0.01g CuCl2.2H2O
0.02g H3BO3
0.01g Na2MoO4.2H2O(pH 6.8)
水で10リットルに
DF204消泡剤(0.1ml/L)
150g グリセロール(初期バッチ生育)、その後に様々な時間、様々な速度で90%グリセロール-1% MgSO4-1X 微量元素を供給する流加モード。
本発明はその詳細な説明に関連して説明されているが、これまでの説明は例示を意図したものであり、発明の範囲を限定するものではなく、発明の範囲は添付の特許請求の範囲によって定義されるものである。他の局面、利点および変更も添付の特許請求の範囲に包含される。
Claims (15)
- 2'-FLを含む大腸菌細胞または大腸菌細胞溶解産物であって、該細胞または溶解産物は、該細胞または溶解産物からの2'-FLの精製の前に1,3フコシル化ラクトースを実質的に含まず、該大腸菌細胞は、ラクトース利用性α(1,2)フコシルトランスフェラーゼ酵素をコードする単離された核酸を含む核酸コンストラクトを含み、該核酸は、宿主細菌生産株において該酵素の産生を誘導する1つまたは複数の異種制御配列に機能的に連結されており、該核酸によってコードされる該酵素のアミノ酸配列がSEQ ID NO:3、5、10または12に記載の配列を含む、大腸菌細胞または大腸菌細胞溶解産物。
- ラクトース利用性α(1,2)フコシルトランスフェラーゼ酵素をコードする単離された核酸を含む核酸コンストラクトを含む単離された大腸菌であって、該核酸は、宿主細菌生産株において該酵素の産生を誘導する1つまたは複数の異種制御配列に機能的に連結されており、該核酸によってコードされる該酵素のアミノ酸配列がSEQ ID NO:3、5、10または12に記載の配列を含む、大腸菌。
- 低減されたレベルのβ-ガラクトシダーゼ活性、不完全なコラン酸(colonic acid)合成経路、アデノシン-5'-三リン酸(ATP)依存性細胞内プロテアーゼの変異、lacA遺伝子の変異、及びthyA遺伝子の変異に特徴づけられ、SEQ ID NO:3、5、10または12に記載のアミノ酸配列を含む外因性ラクトース受容性α(1,2)フコシルトランスフェラーゼ酵素をコードする核酸を含む、大腸菌。
- 前記大腸菌の内因性lacZ遺伝子および内因性lacI遺伝子が欠失または機能的に不活性化されている、請求項3記載の単離された大腸菌。
- lacY遺伝子の上流にlacIq遺伝子プロモーターを含む、請求項4記載の単離された大腸菌。
- 大腸菌の内因性wcaJ遺伝子が欠失または機能的に不活性化されている、請求項3記載の単離された大腸菌。
- ATP依存性細胞内プロテアーゼの変異が、lon遺伝子の変異である、請求項3記載の単離された大腸菌。
- 外因性ラクトースの存在下で細胞内ラクトースを蓄積する、請求項3記載の単離された大腸菌。
- 細胞内グアノシン二リン酸(GDP)-フコースを蓄積する、請求項3記載の単離された大腸菌。
- 遺伝子型ΔampC::Ptrp BcI, Δ(lacI-lacZ)::FRT, PlacIqlacY+, ΔwcaJ::FRT, thyA::Tn10, Δlon:(npt3,lacZ+)を有する、請求項3記載の単離された大腸菌。
- 大腸菌でフコシル化オリゴ糖を生産する方法であって、
請求項2〜10のいずれかに記載の大腸菌を提供する工程、
ラクトースの存在下で該大腸菌を培養する工程、および
該大腸菌または該大腸菌の培養上清からフコシル化オリゴ糖を回収する工程、
を含む、方法。 - (a)前記大腸菌をトリプトファンの存在下およびチミジンの非存在下で培養する工程をさらに含む、
(b)ATP依存性細胞内プロテアーゼの変異が、lon遺伝子のヌル変異である、または
(c)前記大腸菌が、細胞内GDP-フコースを蓄積する、請求項11記載の方法。 - 前記大腸菌の内因性lacZ遺伝子および内因性lacI遺伝子が欠失している、任意で、前記大腸菌が、lacY遺伝子のすぐ上流にlacIq遺伝子プロモーターを含む、または、前記大腸菌の内因性wcaJ遺伝子が欠失している、請求項11記載の方法。
- 前記大腸菌が、外因性ラクトースの存在下で細胞内ラクトースを蓄積する、請求項11記載の方法。
- フコシル化オリゴ糖が、2'-フコシルラクトース(2'-FL)またはラクトジフコテトラオース(LDFT)、ラクト-N-フコペンタオースI(LNF I)もしくはラクト-N-ジフコヘキサオースI(LDFH I)を含む、請求項11記載の方法。
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