JP6882186B2 - スニチニブ製剤及び眼の障害の治療におけるその使用に対する方法 - Google Patents
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Description
本出願は、それらの開示の全体が引用することにより本明細書の一部をなす、2014年12月15日付出願の米国仮特許出願第62/092,118号「徐放性スニチニブ製剤(Controlled Release Sunitinib Formulations)」、及び2015年3月27日付出願の米国仮特許出願第62/139,306号「角膜血管新生の予防方法(Method Of Prevention Of Corneal Neovascularization)」の優先権及び利益を主張する。
本明細書で使用される「活性剤」は、身体で局所的に及び/又は全身に作用する生理学的又は薬理学的な有効成分を指す。活性剤は、疾患又は障害の治療(例えば治療剤)、予防(例えば予防剤)、又は診断(例えば診断剤)のため患者に投与される物質である。本明細書で使用される「眼科薬物」又は「眼科活性剤」は、眼の疾患若しくは障害の1つ以上の症状を緩和するため、発症を遅延するため、若しくは予防するため患者に投与される薬剤、又は画像化若しくはそれ以外の方法で眼を評価するのに有用な診断剤を指す。
R1は、水素、ハロ、アルキル、シクロアルキル、アリール、ヘテロアリール、ヘテロ脂環式、ヒドロキシ、アルコキシ、−(CO)R15、−N−NR13R14、−(CH2)rR16及び−C(O)NR8R9からなる群から選択され、
R2は、水素、ハロ、アルキル、トリハロメチル、ヒドロキシ、アルコキシ、シアノ、−NR13R14、−NR13C(O)R14、−C(O)R15、アリール、ヘテロアリール、−S(O)2NR13R14及び−SO2R20(ここで、R20はアルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール、及びヘテロアラルキルである)からなる群から選択され、
R3は、水素、ハロゲン、アルキル、トリハロメチル、ヒドロキシ、アルコキシ、−(CO)R15、−NR13R14、アリール、ヘテロアリール、−NR13S(O)2R14、−S(O)2NR13R14、−NR13C(O)R14、−NR13C(O)OR14、及び−SO2R20(ここで、R20はアルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール、及びヘテロアラルキルである)からなる群から選択され、
R4は、水素、ハロゲン、アルキル、ヒドロキシ、アルコキシ、及び−NR13R14からなる群から選択され、
R5は、水素、アルキル、及び−C(O)R10からなる群から選択され、
R6は、水素、アルキル、及び−C(O)R10からなる群から選択され、
R7は、水素、アルキル、アリール、ヘテロアリール、−C(O)R17、及び−C(O)R10からなる群から選択されるか、又は、
R6とR7とが結合して−(CH2)4−、−(CH2)5−、及び−(CH2)6−からなる群から選択される基を形成してもよく(但し、R5、R6、又はR7の少なくとも1つが−C(O)R10でなくてはならない)、
R8及びR9は、水素、アルキル、及びアリールからなる群から独立して選択され、
R10は、ヒドロキシ、アルコキシ、アリールオキシ、−N(R11)(CH2)nR12、及び−NR13R14からなる群から選択され、
R11は、水素及びアルキルからなる群から選択され、
R12は、−NR13R14、ヒドロキシ、−C(O)R15、アリール、ヘテロアリール、−N+(O−)R13R14、−N(OH)R13、及び−NHC(O)Ra(ここで、Raは非置換のアルキル、ハロアルキル、又はアラルキルである)からなる群から選択され、
R13及びR14は、水素、アルキル、シアノアルキル、シクロアルキル、アリール、及びヘテロアリールからなる群から独立して選択されるか、又は、
R13とR14とが結合して複素環基を形成してもよく、
R15は、水素、ヒドロキシ、アルコキシ、及びアリールオキシからなる群から選択され、
R16は、ヒドロキシ、−C(O)R15、−NR13R14、及び−C(O)NR13R14からなる群から選択され、
R17は、アルキル、シクロアルキル、アリール、及びヘテロアリールからなる群から選択され、
R20は、アルキル、アリール、アラルキル、又はヘテロアリールであり、
n及びrは独立して1、2、3、又は4である)を有するか、又はその薬学的に許容可能な塩である。
ポリマービヒクル中1つ以上の薬物の送達に対する制御放出投薬製剤が、本明細書に記載される。ポリマーマトリクスは、非生分解性又は生分解性のポリマーから形成され得るが、該ポリマーマトリクスは生分解性であることが好ましい。上記ポリマーマトリクスは、送達のため、インプラント(例えば、ロッド、ディスク、ウェファー等)、ミクロ粒子、ナノ粒子、又はそれらの組合せに形成され得る。投与により、スニチニブ、又はその類縁体若しくは薬学的に許容可能な塩は、ポリマーマトリクスの分解、ポリマーマトリクスからの1つ以上の阻害剤の拡散、又はそれらの組合せのいずれかにより、長期間に亘って放出される。上記薬物は、ポリマー中に分散されるか若しくは封入され、又はマトリクスを形成するのに使用されるポリマーに共有結合され得る。1つ以上のポリマーの分解プロファイルは、in vivoでの活性剤の放出速度に影響を及ぼすように選択されてもよい。
スニチニブ若しくは薬学的に許容可能な塩((−)−リンゴ酸塩を含む)、又はスニチニブ類縁体若しくはその薬学的に許容可能な塩を使用して、本明細書に記載される粒子を作製することができる。遊離塩基はより疎水性であり、リンゴ酸塩等の塩形態はより親水性である。スニチニブの形態の変化により薬物装荷を増加させることができる。例えば、アルカリを添加すること(有機相及び水相の両方)は、スニチニブリンゴ酸塩の装荷を増加する。スニチニブ遊離塩基は非常に疎水性であり、容易に結晶化される。酸を添加すること、又は水相のpHを制御することにより、結晶化を回避し、より良好な粒子を形成することができる。
A.ミクロ粒子及びナノ粒子の形成
ミクロ粒子及びナノ粒子は、当該技術分野で知られているポリマーミクロ粒子、又はナノ粒子の形成に適した任意の方法を使用して形成され得る。粒子形成に使用される方法は、所望の粒子径及び粒度分布と共に、薬物又はポリマーマトリクス中に存在するポリマーの特性を含む様々な要因に依存する。いくつかの薬物が或る特定の溶媒の存在下、或る特定の温度範囲、及び/又は或る特定のpH範囲で不安定であることから、粒子中に組み込まれる薬物の種類(複数の場合がある)もまた要因となる可能性がある。
薬物の放出は、ポリマーの分子量、ポリマーの親水性又は疎水性、薬物の割合、粒子の作製方法を含む様々な要因によって影響を受ける。スニチニブ及びその薬学的に許容可能な塩、又はスニチニブ類縁体若しくはその薬学的に許容可能な塩の両方を使用して粒子を作製することができる。遊離塩基はより疎水性であり、スニチニブ遊離塩基放出はスニチニブリンゴ酸塩よりも更に遅い。また、放出媒質も薬物放出に影響する。放出は、媒質pHの増加に伴って増加する。
ミクロ粒子及びナノ粒子を作製する一般的な技法として、限定されないが、溶媒蒸発、溶媒除去、噴霧乾燥、転相、コアセルベーション、及び低温焼結(low temperature casting)が挙げられる。粒子製剤化の好適な方法を以下に簡潔に記載する。pH調節剤、崩壊剤、防腐剤、及び抗酸化剤を含む薬学的に許容可能な賦形剤を粒子形成の間に粒子に組み込んでもよい。
この方法では、薬物(又はポリマーマトリクス及び1つ以上の薬物)を、塩化メチレン等の揮発性有機溶媒に溶解する。その後、薬物を含有する有機溶液を、ポリ(ビニルアルコール)等の界面活性剤を含む水溶液中に懸濁する。得られるエマルジョンを大半の有機溶媒が蒸発して固体ナノ粒子を残すまで撹拌する。得られたナノ粒子を水で洗浄し、凍結乾燥器で一晩乾燥させる。種々のサイズ及び形態のナノ粒子をこの方法によって得ることができる。
また、溶媒除去を使用して加水分解に不安定な薬物から粒子を作製することができる。この方法では、薬物(又はポリマーマトリクス、及び1つ以上の薬物)を塩化メチレン等の揮発性有機溶媒中に分散させるか、又は溶解させる。その後、この混合物を有機性油(シリコンオイル等)中に撹拌することによって懸濁させ、エマルジョンを形成する。エマルジョンから形成される固体粒子は、その後上清から単離され得る。この技法により製造された球体の外部の形態は、薬物のアイデンティティに大きく依存する。
この方法では、薬物(又はポリマーマトリクス及び1つ以上の薬物)を、塩化メチレン等の有機溶媒に溶解する。圧縮ガスの流れによって制御される微細化ノズルにより溶液を噴出させ、得られたエアロゾルを加熱された気体のサイクロンに漂わせて、微小滴から溶媒を蒸発させて粒子を形成させる。この方法を使用して、0.1ミクロン〜10ミクロンの範囲の粒子を得ることができる。
粒子を転相法(phase inversion method)を使用して、薬物から形成することができる。この方法では、薬物(又はポリマーマトリクス及び1つ以上の薬物)を「良好な」溶媒に溶解し、好ましい条件下で、薬物が自発的にミクロ粒子又はナノ粒子を生じるように、該溶液を強い非溶媒(non solvent)へと注ぐ。上記方法を使用して、例えば、典型的には狭い粒度分布で、約100ナノメートル〜約10ミクロンを含む広範囲のサイズのナノ粒子をもたらすことができる。
コアセルベーションを使用する粒子形成技法は、当該技術分野で、例えば英国特許第929406号、英国特許第929401号、並びに米国特許第3,266,987号、同第4,794,000号、及び同第4,460,563号において知られている。コアセルベーションは、2つの非混和液相への薬物(又はポリマーマトリクス、及び1つ以上の薬物)溶液の分離を含む。1つの相は、高濃度の薬物を含有する濃厚なコアセルベート相であるのに対し、第2相は低濃度の薬物を含む。濃厚なコアセルベート相内では、薬物はナノスケール又はマイクロスケールの小滴を形成し、それらは硬化して粒子となる。コアセルベーションは、温度変化、非溶媒の添加若しくはミクロ塩(micro-salt)の添加(単純コアセルベーション)により、又は別のポリマーの添加により誘導されて高分子間錯体を形成することができる(複合コアセルベーション)。
制御放出ミクロスフェアの極低温焼結に関する方法は、Gombotz et al.に対する米国特許第5,019,400号に記載される。この方法では、薬物(又はポリマーマトリクス及びスニチニブ)は溶媒中に溶解される。その後、混合物を、薬物小滴を凍結する薬液の氷点を下回る温度で液状の非溶媒の入った容器に微粒化する。薬物に対する小滴及び非溶媒が温められるにつれて、小滴中の溶媒は溶けて、非溶媒中に抽出されてミクロスフェアを硬化する。
薬物を封入する、及び/又は分散させるインプラントが形成され得る。好ましい実施形態では、インプラントは眼内インプラントである。好適なインプラントとして、限定されないが、ロッド、ディスク、及びウェファーが挙げられる。マトリクスは、上に記載されるいずれかの非生分解性又は生分解性の高分子で形成され得るが、生分解性高分子が好ましい。ポリマーマトリクスの組成は、in vivoでの安定性に必要な時間、すなわち、送達が望まれる部位への分布に必要なその時間、及び送達に望ましい時間に基づいて選択される。
インプラントは、当該技術で知られている任意の好適な技法を使用して製造され得る。インプラントの作製に適した技法の例として、溶媒蒸発法、相分離法、界面法、成型法、射出成型法、押出法、共押出方法、カーバープレス法、打抜き法、熱圧縮、及びそれらの組合せが挙げられる。インプラントの製造に適した方法は、インプラント中に存在するポリマー(単数/複数)の特性、インプラント中に存在する1つ以上の薬物の特性、及びインプラントの所望の形状及びサイズを含む多くの因子を考慮して選択され得る。インプラントの作製に適した方法が、例えば、米国特許第4,997,652号、及び米国特許出願公開第2010/0124565号に記載されている。
A.薬学的賦形剤
医薬製剤は、1つ以上の薬学的に許容可能な賦形剤と組み合わせてスニチニブを含む。代表的な賦形剤として、溶媒、希釈剤、pH調整剤、防腐剤、抗酸化剤、懸濁化剤、湿潤剤、粘度調整剤、等張化剤、安定剤及びそれらの組合せが挙げられる。好適な薬学的に許容可能な賦形剤は、例えば、一般に安全であると認定され(GRAS)、望ましくない生物学的副作用又は不要な相互作用を生じることなく個体に投与され得る材料から選択される。
上記ポリマー粒子中に存在するスニチニブ、又はその類縁体若しくは薬学的に許容可能な塩に加えて、上記製剤は、1つ以上の追加の治療剤、診断剤、及び/又は予防剤を含んでもよい。活性剤は、酵素若しくはタンパク質、ポリペプチド又は核酸等の低分子活性剤又は生体分子であってもよい。好適な低分子活性剤として、有機化合物、及び有機金属化合物が挙げられる。いくつかの例では、低分子活性剤は、約2000g/mol未満、例えば約1500g/mol未満、例えば約1200g/mol未満の分子量を有する。低分子の活性剤は、親水性、疎水性、又は両親媒性の化合物であってもよい。
スニチニブ、又はその類縁体若しくはその薬学的に許容可能な塩の送達のための制御放出投薬製剤は、癌及び肥満を含む血管化と関連する患者の疾患又は障害を治療するために使用され得る。好ましい実施形態では、上記医薬組成物を、眼の血管新生に関連する患者の疾患又は障害を治療又は予防するために投与する。投与により、治療の利益をもたらすのに十分に高いが、細胞毒性を回避するため十分に低い濃度で、長期間に亘って、1つ以上の薬物が放出される。
眼に投与された場合、上記粒子は、例えば、3日超、7日超、10日超、15日超、21日超、25日超、30日超、45日超、又は少なくとも最長約2ヶ月、3ヶ月、4ヶ月、5ヶ月、若しくは6ヶ月以上の長期間に亘って低用量の1つ以上の活性剤を放出する。暗順応ERG b波振幅の減少、及び/又は網膜変性等の副作用を最小化しながら、長期間に亘って眼に治療的有効量の1つ以上の活性剤を投与するため、薬物の構造又はポリマーマトリクスの構成、粒子の形態、及び投与する粒子の用量を適合させることができる。
本明細書に記載される製剤は、硝子体内注射(例えば、前部、中部、又は後部の硝子体注射)、結膜下注射、前房内注射、側頭部角膜輪部を介する前眼房への注射、角膜実質内注射、脈絡膜下腔への注射、角膜間注射、網膜下注射、及び眼内注射によって眼に局所的に投与され得る。好ましい実施形態では、上記医薬組成物は硝子体内注射によって投与される。
上記粒子は、長期間に亘って、有効量のスニチニブ、又はその類縁体若しくはその薬学的に許容可能な塩を放出することが好ましい。好ましい実施形態では、粒子は、少なくとも2週の期間に亘り、少なくとも4週の期間に亘り、少なくとも6週の期間に亘り、少なくとも8週の期間に亘り、3ヶ月の期間に亘り、4ヶ月の期間に亘り、5ヶ月の期間に亘り、又は6ヶ月の期間に亘り有効量のスニチニブを放出する。いくつか実施形態では、粒子は、3ヶ月以上の期間に亘って有効量のスニチニブを放出する。
実施例は、様々な動物モデルにおける治療有効性を評価する方法を実証する。ヒト及びイヌ等の動物の場合、眼科分野の当業者によって十分に技法が確立されており、細隙灯評価、網膜の目視検査、視野、視力及び眼内圧の測定を含み得る。
材料及び方法
材料−2つの形態のスニチニブ
2つの形態のスニチニブ、すなわち、いずれもLC Lab(米国マサチューセッツ州ウーバン)から入手したスニチニブリンゴ酸塩及びスニチニブ遊離塩基を使用した。
2つの形態のスニチニブ(リンゴ酸塩又は遊離塩基のいずれか)で装荷したポリマーミクロ粒子をシングルo/w又はs/o/wのエマルジョン、溶媒蒸発法を使用して作製した。簡潔には、塩化メチレン(ジクロロメタン、DCMとしても知られる)中に溶解したPLGAと、DMSO中に溶解した薬物又は塩化メチレン中に懸濁した薬物を混合することによって溶液を作製した(O/W)。該混合物を、1%のポリビニルアルコール(PVA)を含有する水溶液中に1分間に亘ってホモジナイズした(英国バッキンガムシャー州チェサムのSilverson製ホモジナイザー、モデルL4RT)。その後、粒子を2時間に亘って撹拌して硬化させ、遠心分離によって収集し、再蒸留水で洗浄して凍結乾燥した。
識別を容易にするため、種々の処方に従って作製された粒子にそれぞれID、例えばMP−n(nは1〜20の番号)を付与した。スニチニブリンゴ酸塩をMP−1〜MP−10、MP−14、MP−15、及びMP−18に使用し、一方、スニチニブ遊離塩基をMP−11〜MP−13、MP−16、MP−17、MP−19、及びMP−20に使用した。
MP−1:100mgのPEG−PLGA(5K、45K)を1mLの塩化メチレンに溶解し、20mgのスニチニブリンゴ酸塩を0.5mLのDMSO及びトリエチルアミンに溶解した。その後、それらを共に混合し、1%のポリビニルアルコール(PVA)を含有する水溶液中に1分間、5000rpmでホモジナイズし、2時間に亘って撹拌して粒子を収集し、再蒸留水で洗浄し、凍結乾燥した。
MP−14:90mgのPLGA(4A、Lakeshore biomaterials)及び10mgのPEG−PLGA(5K、45K))を2mLの塩化メチレンに溶解し、20mgのスニチニブリンゴ酸塩を添加して超音波処理した後、1%PVAに注いで4300rpmで1分間ホモジナイズし、2時間撹拌して粒子を収集し、再蒸留水で洗浄して凍結乾燥した。
MP−18:90mgのPLGA(4A、Lakeshore biomaterials)及び10mgのPEG−PLGA(5K、45K))を1mLの塩化メチレンに溶解し、20mgのスニチニブリンゴ酸塩を100μlのDMSO及び200μlの水に添加し、超音波処理した後、PBS中1%PVAに注ぎ、3000rpmで1分間ホモジナイズし、2時間に亘って撹拌して粒子を収集し、再蒸留水で洗浄して凍結乾燥した。
MPのサイズをCoulter Multisizer VI(カリフォルニア州フラートンのBeckman-Coulter Inc.)を使用して特定した。およそ2mLのisoton II溶液を5mg〜10mgのミクロ粒子に添加した。溶液に短時間ボルテックスを行ってミクロ粒子を懸濁させた後、粒子の同時発生が8%〜10%になるまで100mLのisoton II溶液に滴加した。ミクロ粒子の各バッチについて100000超の粒子をサイズで分類し、平均粒子径を特定した。in vitroでの薬物放出速度を特定するため、5mgの薬物装荷粒子を1mLのリン酸緩衝生理食塩水(pH7.4)に懸濁し、ロテーター上37℃でインキュベートした。選択された時間点において、ミクロ粒子を遠心分離によって沈澱させ、上清を除去し、新たなリン酸バッファーで交換した。
放出結果の要約
およそ30日間に亘り、PBS(pH7.4)中において、F127によって作製されたPLGAスニチニブ粒子から全てのスニチニブ(F127)が直線的に放出された。
カチオン性及びイオン性の両方の界面活性剤は、極端に低い装荷、例えばSDSで0.20%、及びHDTAブロミドで0.27%をもたらした。PVAを代用することにより最大1.1%まで装荷を増加した。スニチニブ遊離塩基は結晶化し、より高い装荷を得るために利用することはできなかった。溶媒へのDMSOの添加は、より一層、最大およそ5%まで装荷を増加した。しかしながら、アルカリを添加しないわずか1%の装荷能力と比較して、スニチニブ溶液のアルカリ度を増加することによってPEG−PLGAによる最大16.1%の装荷能力までの装荷の増加が達成され、これはDMFを添加することによって更に増加可能であった。
材料及び方法
製剤ID
識別しやすいように、種々の処方に従ってPBS(pH7.4)中1%のPVAを含む水相に作製されたナノ粒子に、それぞれID、例えばNP−n(nは21〜27の番号)を付与した。
材料及び方法
スニチニブリンゴ酸塩を含む又は含まない、PLGA及び/又はPLGAと、PLGA(分子量45kDa)に共有結合的にコンジュゲートしたPEG(PLGA45k−PEG5k)とのジブロックコポリマーのポリマーミクロ粒子を、シングルエマルジョン溶媒蒸発法を使用して作製した。簡潔には、PLGA及び/又はPLGA−PEGを最初にジクロロメタン(DCM)に溶解し、所定の濃度でスニチニブリンゴ酸塩をジメチルスルホキシド(DMSO)に溶解した。ポリマー溶液及び薬液を混合して均質な溶液(有機相)を形成した。有機相を1%ポリビニルアルコール(PVA)(Polysciences、分子量25kDa、88%加水分解)の水溶液に添加し、L5M−A実験室用ミキサー(マサチューセッツ州イーストロングメドーのSilverson Machines Inc.)を使用して5000rpmで1分間ホモジナイズしてエマルジョンを得た。
UV−Vis分光光度法を使用して薬物装荷を特定した。スニチニブを含むミクロ粒子(総重量10mg)を無水DMSO(1mL)中に溶解し、薬物の濃度が薬物のUV吸光度の標準曲線の比例領域に含まれるまで更に希釈した。UV吸光度を標準曲線と比較することにより、薬物の濃度を特定した。薬物装荷は、ミクロ粒子に対する薬物の重量比として定義される。
数ミリグラムのミクロ粒子を最初に水に懸濁し、ISOTON(商標)希釈剤中に分散させた。COULTER MULTISIZER IV(カリフォルニア州ブレアのBeckman Coulter, Inc.)を使用して平均粒子径及び分布を特定した。
表4は、表3の処方に従って作製されたMPの装荷及び封入効率を示す。薬物装荷及び封入の効率は、水性pHが4から7.4、より実質的には6から7.4に増加した場合に著しく増加した。しかしながら、pHを10に調整して水溶液がより塩基性になると、多くの粒子の形態は球形から不規則な形状へと変化し、一部の粒子は凝集塊を形成し、高pHの水溶液もまたスニチニブの高装荷及び高品質の粒子を生産するのに不利であることを示唆した。したがって、水性pHの好ましい範囲は6〜10であり、より好ましくは6〜8である。
材料及び方法
表5に示されるように、リン酸緩衝生理食塩水(PBS、pH7.4)中にスニチニブを封入するミクロ粒子(MP)製剤を作製した。
表6は、表5の処方に従って作製されたMPの装荷及び封入効率を示す。薬物装荷及び封入効率は、ポリマーPLGA 7525 4Aの濃度が50.5mg/mLから202mg/mLに増加するにつれて増加した(図1、図2B、及び表5)。これはおそらく、より高い濃度では、ポリマー溶液はより粘性であり、薬物分子が水相へと拡散するのを防ぐバリアとして有効に機能するという事実に起因する。特に、封入効率は100mg/mLのポリマー濃度で50%超まで増加した。DMSO中スニチニブリンゴ酸塩溶液と混合する前のこのDCM(塩化メチレン)中のポリマー溶液の動粘度は、およそ350cPsと推定された。DCM中のポリマー溶液の好ましい最小粘度は約350cPsと考えられ、ポリマー粘度は計算上およそ720cPsであることが好ましい(DCM中140mg/mLのポリマー濃度と相関する)。また、ミクロ粒子の平均径は、ポリマー濃度の関数として増加した。ポリマー濃度200mg/mL、及び水性pH7.4において、封入効率は92%と高かった。
材料及び方法
製剤
以下のミクロ粒子(MP)製剤、すなわち、表5に従って製剤ID:DC−1−53−1、DC−1−53−2、及びDC−1−53−3を作製し、また表7に従って製剤を作製した。表7の製剤の薬物装荷及び封入効率を先の実施例3に記載される通りアッセイした。
6mLのガラスバイアル中でスニチニブを含有するMP(全重量10mg)を1%TWEEN(商標)20を含有するPBS 4mLに懸濁し、150rpmで振蕩しながら37℃でインキュベートした。所定の時間点において、バイアルの底に粒子が沈殿した後、3mLの上清を取り出し、3mLの新たな放出媒質と交換した。上清中の薬物含有量をUV−Vis分光光度法又はHPLCによって特定した。
表8は、表7の処方に従って作製されたMPの装荷及び封入効率を示す。
序論
無血管及び透明性を特徴とする角膜は、眼の機械的バリア及び前部の屈折面としてはたらく。角膜血管新生(NV)は、感染症、化学的又は外傷による損傷、自己免疫疾患及び角膜移植を含む様々な病的状況において起こり、治療せずに放置すれば視力を損なうことになる場合がある。したがって、角膜NVの効果的な阻害は、視覚を守るために重要である。角膜NVの治療として、局所のコルチコステロイド、非ステロイド、抗炎症の医薬、及び光凝固が挙げられるが、いずれの治療法も根治はせず、いくつかの望ましくない副作用を伴う。
材料
ポリ(D,L−乳酸−co−グリコール酸 LA:GA 50:50、分子量約5.6kDa、酸末端)(PLGA)をLakeshore Biomaterials(アラバマ州バーミンガムのEvonik)から購入し、スニチニブリンゴ酸塩をLC laboratories(マサチューセッツ州ウーバン)から購入した。Sunb−リンゴ酸塩遊離薬液をリン酸緩衝溶液(PBS、pH7.4)に0.5%の濃度でSunb−リンゴ酸塩を溶解することによって作製した。分子量約25kDaのポリビニルアルコール(PVA)をPolysciences, Inc.(ペンシルベニア州ワーリントン)から購入した。他の有機溶媒はSigma-Aldrich(ミズーリ州セントルイス)によって提供された。
全ての実験プロトコルはジョンズホプキンズ実験動物委員会によって承認された。6週齢〜8週齢の雄性Sprague DawleyラットをHarlan社(インディアナ州インディアナポリス)から購入した。眼科研究における動物の使用に関する視覚と眼科学研究協会会議(ARVO)に従って全てのラットを飼育し、処理した。実験手順の間、ケタミン(50mg/kg)及びキシラジン(5mg/kg)の混合物の筋肉内注射によって動物を麻酔した。局所麻酔及び散瞳のため、それぞれ0.5%プロパラカイン及び0.5%トピカミドの局所点眼を使用した。
エマルジョン法を使用して、Sunb−リンゴ酸塩装荷PLGAミクロスフェア(Sunb−リンゴ酸塩MS)を作製した。簡潔には、250mgのPLGAを含む2.5mLのジクロロメタン(DCM)溶液と混合する前に、50mgのSunb−リンゴ酸塩を0.625mLのジメチルスルホキシド(DMSO)に溶解した。L4RT高剪断ミキサー(マサチューセッツ州イーストロングメドーのSilverson)を使用して5000rpmでホモジナイズしながら、上記混合物を60mLの1%PVA溶液に注いだ。1時間に亘って700rpmで磁気撹拌しながら、形成されたエマルジョンを追加の0.3%PVA溶液100mLに添加した。撹拌しながら上記懸濁液を真空チャンバーに更に3時間入れてDCMを更に除去した。Sunb−リンゴ酸塩MSを40μmのストレーナーで濾過し、脱イオン水で洗浄し、500×gで10分間遠心分離によって収集した。薬物の添加を行わずに同じ手順でプラセボミクロ粒子(プラセボMS)を作製した。
特定の量の凍結乾燥Sunb−リンゴ酸塩MSをDMSOに可溶化して溶解し(dissolved in solubilized in DMSO)、該溶液をBioTek Microplate Reader(バーモント州ウィヌーキー)上、441nmでUV−Visにより測定した。sunb−リンゴ酸塩濃度をsunb−リンゴ酸塩の確立された標準曲線を使用して計算した。薬物装荷(DL)及び封入効率(EE)を以下の通り計算した。
PBS中5mgのsunb−リンゴ酸塩/mLの濃度の30マイクロリットルのSunb−リンゴ酸塩MS又はsunb−リンゴ酸塩遊離薬液を、27ゲージ針を使用してSC注射によってラットに投与した。注射の後(PI)0日目、1日目、3日目、7日目、14日目、及び28日目において、動物を死亡させた後、全眼球(n=4)を採取した。Sunb−リンゴ酸塩は自己蛍光を示すため、摘出された眼球をXenogen IVIS Spectrum光学結像システム(マサチューセッツ州ホプキントンのCaliper Life Sciences Inc.)を使用し、励起及び発光の波長それぞれ420nm及び510nmで画像化した。Living Image 3.0ソフトウェア(Caliper Lifesciences, Inc.)を使用して蛍光画像を分析し、SC注射を経た直後の眼の蛍光カウントと比較することによりスニチニブの保持を定量した。SC注射を伴わないラットの眼をベースラインとして使用した。
SC注射後のSunb−リンゴ酸塩MSの眼毒性を特定するため、Sprague Dawleyラットの両眼に5mg及び0.5mgのSunb−リンゴ酸塩/mLの濃度の30μLのSunb−リンゴ酸塩MSを投与した。生理食塩水及びプラセボMS(1つの眼当たり2.5mgの粒子)のSC注射を対照として使用した。PI 7日目及び14日目の両方において2匹の動物を死亡させ、組織学的検査のため結膜組織と共に全眼球を採取した。6−0ナイロン縫合糸によって注射部位に印をした。眼球をホルマリン中で固定し、パラフィンに包埋し、SC注射部位を切断するため背腹軸に沿って(角膜から視神経へ)切片作製を行い、ヘマトキシリン及びエオシン(H&E)で染色した。スライドを観察し、病理学者が採点した。
基質内縫合によって角膜NVを誘発した。簡潔には、ラットに麻酔して散瞳させた後、手術用顕微鏡のもと、10−0ナイロン(テキサス州フォートワースのAlcon Laboratories)を用いて角膜上部に2つの基質内の縫合の縫い目を作った。縫い目と角膜輪部との間の距離はおよそ2mmであり、2つの縫い目の間は1mmの距離があった。縫合の後、すぐに動物を30μLの(1)PBS、(2)プラセボMP、(3)Sunb−リンゴ酸塩MS(5mg sunb−リンゴ酸塩/mL)、及び(4)Sunb−リンゴ酸塩遊離薬液(5mg sunb−リンゴ酸塩/mL)の1回のSC注射で処理した。エリスロマイシン抗生物質軟膏を塗布して可能性のある感染及び角膜の乾燥を予防した。ラットを2週間経過観察した。
全てのラットの角膜を、細隙灯顕微鏡(SL120;ドイツ国オーバーコッヘンのCarl Zeiss AG)により検査し、デジタルカメラで角膜の写真を撮影した。Photoshop CS3.0により血管化角膜の面積及び長さを定量した。角膜輪部に沿って弧を描き、血管化面積のピクセルを測定し、角膜NV面積を以下の等式を使用して計算した。
手術後(PO)7日目及び14日目において、ラットを死亡させ、角膜を収集した。mRNA単離用に同じ条件の3つの角膜を合わせてプールした。トータルmRNAをTRIzol(商標)試薬(米国、Invitrogen)を用い、製造業者の指示書に従って単離し、High Capacity cDNA Reverse Transcription Kit(米国、Applied Biosystems)を使用して逆転写を行った。VEGF、VEGFR1、VEGFR2、PDGFa、PDGFb、PDGFRα、PDGFRβ、VE−カドヘリン、Ang1、MMP2、MMP9、bFGF、及びPECAM1を含む血管形成因子及び抗血管形成因子のmRNA発現レベルを定量するため、7100 Real Time PCR System(カリフォルニア州のApplied Biosystems)を使用して、Fast SYBR(商標)Green Master MixによりRT−PCRを行った。更なる複数の群比較のため、mRNA発現レベルをGAPDHに対して正規化した。
眼球を摘出し、4℃にて1時間、4%パラホルムアルデヒド(PFA)で固定した。その後、角膜を切り取り、PBSで洗浄し、15%スクロースPBS溶液中で凍害を防止し、OCTコンパウンドに包埋した。角膜の連続切片(厚さ30μm)をクライオスタットによる切片作製で収集した後、以下の抗体、マウス血小板内皮細胞接着分子−1(PECAM−1、1:500;Abcam)、ウサギ神経/グリア抗原−2(NG2、1:500;Millipore)、10%ロバ血清及び0.1%Triton X−100を含むPBS中に希釈したロバ抗マウスCy2及びロバ抗ウサギCy3を使用して免疫染色を行った。4℃での一晩のインキュベーションの後、角膜切片をPBSで3回洗浄し、室温で2時間、二次抗体とインキュベートした。マウントした角膜切片をZeiss LSM 710共焦点顕微鏡(ドイツ国、Carl Zeiss)を使用して画像化した。角膜のパノラマ画像を保証するため、本発明者らは、Reconstruct 1.1.0(NIHのJ.C. Fiala)を使用して背腹軸に沿って角膜切片を順に並べ、最大値投影法を行った。
定量結果を、複数の繰り返しの平均±平均の標準誤差(SEM)として提示する。収集した全てのデータをt検定及び複数の比較検定(one-way ANOVA、ボンフェローニ検定)を使用して群間で比較した。P<0.05のレベルで差を統計学的に有意とした。複数の比較に対する有意性:*P<0.05;**P<0.01;***P<0.001。
Sunb−リンゴ酸塩MSの作製及び特性評価
Sunb−リンゴ酸塩MSは、SEMにより多孔性であり、15±9μmの粒子径、及び−0.7mVの表面電荷を有する(表4)。Sunb−リンゴ酸塩MSは6重量%の薬物装荷を示し、sunb−リンゴ酸塩は、明確な初期の急速な薬物放出フェーズを伴わずにin vitroにおいて37℃で無限の沈下条件下で最長25日まで一様に放出された(図3)。
Sunb−リンゴ酸塩遊離薬物は、SC注射後1日以内に急速に除去される。図4に示されるように、sunb−リンゴ酸塩のPLGA MSへの封入は、眼の薬物保持を著しく延長し、本来の薬物のおよそ50%がPI 14日目までに保持され、sunb−リンゴ酸塩はPI 28日目までに徐々に消滅した。
プラセボMS及びSunb−リンゴ酸塩MSのSC注射後の眼安全性を特定するため、本発明者らは眼の組織学的検査を行った。プラセボMSのSC注射は生理食塩水のSC注射のように安全である。SC注射後、低用量及び高用量のSunb−リンゴ酸塩MS(0.5mg及び5mgのsunb−リンゴ酸塩/ml)はいずれも注射部位の結膜組織及び角膜における炎症を誘導しなかった。
Sunb−リンゴ酸塩MS、Sunb−リンゴ酸塩遊離薬物、及びプラセボMPの治療の下、角膜NVを評価するため、手術後(POD)5日目、7日目、及び14日目に細隙灯顕微鏡検査によって全ての動物を検査した。放射状に方向づけられた新生血管は、プラセボMS処理ラットについて、POD5までに角膜輪部から縫合の縫い目に向かって角膜へと侵入し、POD14までにさらに成長して縫い目に達した。Sunb−リンゴ酸塩遊離薬物のSC注射は、角膜NVの阻害に対して無視できるほどの効果を示し、POD5においてプラセボMSと比較すると角膜NV領域のわずかな阻害があったものの、統計学的に有意ではなかった。対照的に、角膜NVの長さ(図5A)及び面積(図5B)の定量は、Sunb−リンゴ酸塩MSがPOD5において新生血管の出芽を有意に抑制し、経時的に更なる成長を失速させたことを明らかにした。組織病理学的分析は、Sunb−リンゴ酸塩及びプラセボMSで処理された角膜で観察された新生血管の内殖が、POD7及びPOD14の両方においてSunb−リンゴ酸塩MSのSC注射によって著しく失速されたことを更に確認した。角膜炎症及び角膜浮腫は、5mg/mlのSunb−リンゴ酸塩MSのSC注射の処理の下では観察されなかった。したがって、Sunb−リンゴ酸塩MSは、角膜血管形成に対して安全で効率的な阻害を提供した。
血管形成因子、内皮細胞マーカー、及びマトリクスメタロプロテアーゼのmRNA発現を、POD7及びPOD14においてRT−PCRにより特定した。POD7における定量分析は、角膜におけるVEGF、VEGFR1、PDGFb、PDGFRs、VE−カドヘリン、bFGF、MMP、及びAng1の発現が、プラセボMP及びSunb−リンゴ酸塩遊離薬物と比較して、Sunb−リンゴ酸塩MSのSC注射によって有意に減少されたが、Sunb−リンゴ酸塩MSとSunb−リンゴ酸塩遊離薬物の治療群との間でVEGFR2及びPDGFaのmRNAレベルに統計学的有意差はなかったことを示した(図6A〜図6M)。POD14において類似の結果は、Sunb−リンゴ酸塩MSのSC注射による血管形成関連遺伝子発現の持続可能な抑制を示した。
血管内皮細胞の内殖、及び毛細血管の周りの周皮細胞、及び大きな血管の周りの平滑筋細胞を含む血管壁細胞のその後の動員に対するSunb−リンゴ酸塩MSのSC注射の影響を調べるため、免疫組織化学分析のためSunb−リンゴ酸塩MSのSC注射の後、角膜を収集した。角膜のパノラマ画像は、角膜脈管構造の成長が、プラセボMSのSC注射と比較した場合、Sunb−リンゴ酸塩MSのSC注射によって著しく抑制されたことを示した。NG2−陽性壁細胞の動員は、Sunb−リンゴ酸塩MSのSC注射によるPECAM陽性内皮細胞よりも更に軽減された。
材料及び方法
C57BL/6マウス(n=5)のコホートは、スニチニブミクロ粒子(全薬物量10μg)のIVT注射を受け、注射から0週間、2週間、4週間、又は8週間の後、ブルッフ膜のレーザー誘発性傷害を受けた。レーザー処理の1週間後(すなわち、1週目、3週目、5週目、及び9週目)にCNVの面積を測定した。直後、又は2週間後、4週間後、若しくは8週間後に、マウス(n=5)をブルッフ膜のレーザー傷害に供し、1週間後、CNV病変のサイズを定量した。
ミクロ粒子は、3.4(重量)%の薬物装荷、及び約13μmの平均径を有した。対照と比較してスニチニブミクロ粒子で治療された全ての動物において、CNV面積の著しい減少が観察された。重要なことには、保護効果は、ミクロ粒子のIVT注射に続いて少なくとも9週間に亘って持続した。
加齢黄斑変性(AMD)は、高齢者の間で重篤で不可逆的な視力喪失の主な原因である。Bressler, et al. JAMA, 291:1900-1901(2004)。AMDは、ドルーゼンとして知られる淡黄色のスポット、網膜色素上皮(RPE)の傷害、脈絡膜血管新生(CNV)、及び円板状黄斑変性等の幅広い臨床上の及び病的な所見を特徴とする。AMDは、萎縮型(すなわち、非滲出型)又は滲出型(すなわち、滲出型)のいずれかに分類される。萎縮型AMDは、ドルーゼンと呼ばれる病変の存在を特徴とする。滲出型AMDは、視野の中心の血管新生を特徴とする。
先の実施例に記載されるようにスニチニブの持続送達のため、生分解性ポリマーミクロ粒子を作製した。平均サイズ、粒度分布、薬物装荷、及び薬物放出プロファイルを含む特性評価をin vitroでミクロ粒子に行った。
病原体感染のないC57BL/6マウス(マサチューセッツ州ウィルミントンのCharles River)を、米国視覚眼科研究学会の眼科視覚研究における動物実験指針、及びジョンズホプキンズ大学実験動物委員会のガイドラインに従って処理した。
ミクロ粒子は、3.4(重量)%の薬物装荷、及び約13μmの平均径を有した。
Claims (18)
- ポリ(ラクチド−co−グリコリド)(PLGA)と、ポリエチレングリコール(PEG)にコンジュゲートされたPLGA(PLGA−PEG)とのブレンド中に封入又は分散されたスニチニブ又はその薬学的に許容可能な塩を含むポリマーミクロ粒子であって、
スニチニブ又はその薬学的に許容可能な塩が、5重量%超の装荷で存在し、スニチニブ又はその薬学的に許容可能な塩の少なくとも2週間の持続放出を提供する、ポリマーミクロ粒子。 - スニチニブがリンゴ酸塩の形態で存在する、請求項1に記載のポリマーミクロ粒子。
- 10重量%以上のスニチニブ又はその薬学的に許容可能な塩を装荷する、請求項1又は2に記載のポリマーミクロ粒子。
- 1ミクロン〜50ミクロンの平均径を有する、請求項1〜3のいずれか一項に記載のポリマーミクロ粒子。
- PLGA及びPLGA−PEGが、99重量%PLGA及び1重量%PLGA−PEGの混合物の形態で存在する、請求項1又は2に記載のポリマーミクロ粒子。
- PLGA−PEGが、45kDaの分子量のPLGA及び5kDaの分子量のPEGで形成される、請求項1、2、又は5に記載のポリマーミクロ粒子。
- PLGA及びPLGA−PEGが、50重量%:50重量%〜99重量%:1重量%のPLGA及びPLGA−PEGの混合物の形態で存在する、請求項1〜6のいずれか一項に記載のポリマーミクロ粒子。
- 薬学的に許容可能な担体中に、請求項1〜7のいずれか一項に記載のポリマーミクロ粒子を有効量含む眼送達のための医薬組成物。
- スニチニブがリンゴ酸塩の形態で存在する、請求項8に記載の医薬組成物。
- 1ミクロン〜30ミクロンの平均径を有する前記ポリマーミクロ粒子を含む、請求項8又は9に記載の医薬組成物。
- スニチニブ又はその薬学的に許容可能な塩が、少なくとも10重量%の量で前記ポリマーミクロ粒子に封入されている、請求項8〜10のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- スニチニブ又はその薬学的に許容可能な塩が、少なくとも15重量%の量で前記ポリマーミクロ粒子に封入されている、請求項11に記載の医薬組成物。
- PLGA及びPLGA−PEGが、約99重量%のPLGA及び約1重量%のPLGA−PEGの混合物の形態で存在する、請求項8〜10のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- PLGA及びPLGA−PEGが、50重量%:50重量%〜99重量%:1重量%のPLGA及びPLGA−PEGの混合物の形態で存在する、請求項8〜13のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- PLGA−PEGコポリマーが、45kDaの分子量のPLGA及び5kDaの分子量のPEGを有する、請求項14に記載の医薬組成物。
- 前記ポリマーミクロ粒子が、眼の硝子体腔に少なくとも3ヶ月の持続期間に亘ってスニチニブ又はその薬学的に許容可能な塩を放出する、請求項8〜15のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 1ミクロン〜50ミクロンの平均径を有する前記ポリマーミクロ粒子を含む、請求項8〜16のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 硝子体内注射用である、請求項8〜17のいずれか一項に記載の医薬組成物。
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JP2021119183A (ja) * | 2014-12-15 | 2021-08-12 | ザ ジョーンズ ホプキンズ ユニバーシティThe Johns Hopkins University | スニチニブ製剤及び眼の障害の治療におけるその使用に対する方法 |
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