JP6810877B2 - 経口腫瘍ワクチンと免疫抑制阻害剤との併用によるがん治療 - Google Patents

Description

本発明は、抗原としてのWT1タンパク質を発現・提示しうる形質転換ビフィズス菌を含み、免疫抑制阻害剤を併用することを特徴とする抗腫瘍剤に関する。

本出願は、参照によりここに援用されるところの日本出願特願２０１６−２５０５６０号優先権を請求する。

WT1（Wilms tumor 1）遺伝子は、小児の腎腫瘍であるウィルムス（Wilms）腫瘍の原因遺伝子の1つとして単離された遺伝子である。Wilms腫瘍では、この遺伝子の欠損や突然変異があり、Wilms腫瘍由来の細胞株に正常なWT1遺伝子を導入すると細胞増殖が抑制され、WT1遺伝子はがん抑制遺伝子と考えられていた。しかしながらその後の研究により、WT1タンパク質は白血病や種々の固形がんで高発現していることが確認され、WT1遺伝子はがん抑制遺伝子というよりも、がん遺伝子の機能を果たしていると考えられている（非特許文献１：Jpn J Clin Oncol 2010; 40: 377-387）。固形がんのうち、例えば前立腺がんにおいては臨床上、約50％の腫瘍がWT1遺伝子を発現することが報告されている（非特許文献２：Modern Pathology 2006; 19: 804-814）。

がんの免疫療法は、1980年代に自然免疫によるLAK療法にはじまり、NK細胞療法などの自然免疫療法、がん抗原のタンパク質の断片を構成するペプチドを標的としたペプチド療法や、樹状細胞にがんペプチドを認識させて体内に戻す樹状細胞ワクチン療法など獲得免疫を利用した治療が行われている。

WT1ペプチドでマウスを免疫したりヒトの末梢血単核球より分化させた樹状細胞をWT1ペプチドで刺激すると、WT1特異的細胞障害性T細胞（CTL）を誘導し得る樹状細胞ワクチンとして利用できることが確認された。また、WT1ペプチドを用いた臨床試験も進められている。従来のWT1ペプチドは、ある特定のHuman Leukocyte Antigen（HLA）に適合するように作製されているため、DNAタイピングによって患者のHLAアリル確認する必要があった（特許文献１：特許第5714619号公報）。その後の研究により、WT1タンパク質の全配列をカバーする全配列型ワクチンを用いてのがんの治療が試みられている。当該ワクチンも様々なHLAタイプの患者に適応可能である。当該ワクチンは、がん抗原に特異的なキラーT細胞や免疫反応を促進するヘルパーT細胞も活性化する。

WT1ワクチンの投与経路としては皮下又は皮内注射が最も一般的であるが、これ以外にも様々な投与経路、例えば経皮投与、頬側投与、経鼻投与、舌下投与等の粘膜投与による免疫誘導が試みられている。しかしながら、経口投与については今まで報告されていない。

細胞の細胞膜は、細胞の内外を隔てる生体膜であり、細胞膜表面には細胞の情報を提供する機能や細胞内外の物質を輸送する機能を有する膜タンパク質が多数存在している。特定の抗原を膜蛋白と融合させて微生物の細胞表層に提示して、抗原抗体反応を人為的に誘導するための経口ワクチンとして使用するという概念が提唱されている。例えば、ポリ-γ-グルタミン酸合成酵素などの酵素蛋白の膜結合部をコードする遺伝子を有するベクターを利用して、宿主微生物の細胞表層に提示する例がある（特許文献２：特表2005-50054号公報）。また、感染症を起こす細菌に由来するフラジェリンタンパク質をワクチンとして使用する技術に関し、フラジェリンを発現する形質転換微生物をカプセル内容物として含有する経口ワクチンについて報告がある（特許文献３：5187642号公報）。ここでは、フラジェリンを生産させる菌としてビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する微生物（これらを総称して「ビフィズス菌」という）や乳酸菌などのいわゆる善玉菌といわれる腸内細菌を用いて形質転換微生物を調製することが報告されている。

ビフィズス菌は、ヒトや他の動物の小腸の下流又は大腸で見られる常在菌であり、偏性嫌気性のグラム陽性菌であるため、培養における選択性が高い。そして、生体親和性も高く、グラム陰性菌にあるエンドトキシンが存在しないため、安全性が高い。したがって、ビフィズス菌は食品の安全性に関する審査制度による基準によりGRAS認証されている。また、ビフィズス菌は腸管を覆うムチンからなる粘液との結合性を有しているとの報告もあるため、腸において他の菌より腸壁への付着性が高いと考えられている。係るビフィズス菌の表層にタンパク質又はペプチドを発現させ提示させる技術、及びこの技術を使用したビフィズス菌による新規ワクチンに関する技術が既に開発され、報告されている（特許文献４：特許第5561681号公報）。

近年、がんの免疫療法として、免疫抑制阻害剤である免疫チェックポイント阻害剤（Immune checkpoint inhibitors: CPI）の利用が注目されている。がんワクチンと免疫チェックポイント阻害剤との組み合わせについても、検証されてはいるものの、臨床上の報告は未だほとんどない（非特許文献３：Vaccines 2016, 4(4), 37）。がんワクチンとしては、ペプチド、DNA、細胞等の様々な形態のものがあるが、抗原としてのWT1タンパク質と免疫チェックポイント阻害剤の併用に関する報告はなく、経口ワクチンと免疫チェックポイント阻害剤との併用についても報告はない。

Jpn J Clin Oncol 2010; 40: 377-387 Modern Pathology 2006; 19: 804-814 Vaccines 2016, 4(4), 37

特許第5714619号公報 特表2005-500054号公報 特許第5187642号公報 特許第5561681号公報

本発明は、がん免疫治療において効果的な併用療法を提供することを課題とする。

本発明者らは、鋭意研究を重ねた結果、WT1タンパク質を発現・提示しうる形質転換ビフィズス菌と、当該形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤とを併用することにより、抗腫瘍効果が増強されることを見出し、本発明を完成した。

すなわち本発明は、以下よりなる。
１．WT1タンパク質をコードするDNAと、ビフィズス菌由来のGNB/LNB基質結合膜タンパク質をコードするDNAを含み、ビフィズス菌表層に抗原としてのWT1タンパク質を発現・提示するよう設計された形質転換ビフィズス菌を含み、免疫抑制阻害剤と併用して使用するための、抗腫瘍剤。
２．抗腫瘍剤が、固形がんに対する治療剤である、前項１に記載の抗腫瘍剤。
３．抗腫瘍剤が、前立腺がんに対する治療剤である、前項１又は２に記載の抗腫瘍剤。
４．免疫抑制阻害剤が、免疫チェックポイント阻害剤であり、抗PD1抗体、抗PD-L1抗体、及び抗CTLA4抗体からなる群から選択される少なくとも１つの抗体である、前項１〜３のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
５．免疫抑制阻害剤が、抗PD1抗体である、前項１〜４のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
６．形質転換ビフィズス菌の細胞表層に発現・提示されるタンパク質が、WT1タンパク質とGNB/LNB基質結合膜タンパク質との融合タンパク質（GL-BP-WT1融合タンパク質）である、前項１〜５のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
７．形質転換ビフィズス菌の細胞表層に発現・提示されるWT1タンパク質が、以下の１）〜３）のいずれかである、前項１〜６のいずれかに記載の抗腫瘍剤：
１）配列番号１で特定されるアミノ酸配列で特定されるタンパク質；
２）配列番号１で特定されるアミノ酸配列のうち、１個又は複数個のアミノ酸が置換、欠失、付加、導入されてなるアミノ酸配列を基にして特定されるタンパク質であって、ワクチンとして免疫原性を有するタンパク質；
３）配列番号１で特定されるアミノ酸配列と60％以上の相同性を有するアミノ酸配列を基にして特定されるタンパク質であって、ワクチンとして免疫原性を有するタンパク質。
８．形質転換ビフィズス菌の細胞表層に発現・提示されるWT1タンパク質をコードするDNAが、以下の１）〜４）のいずれかである、前項１〜７のいずれかに記載の抗腫瘍剤：
１）配列番号２で特定される塩基配列からなるDNA；
２）配列番号１で特定されるアミノ酸配列情報に基づいて得られるタンパク質をコードするDNA；
３）上記１）又は２）で特定される塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNA；
４）上記１）〜３）のいずれかで特定される塩基配列と60％以上の相同性を有する塩基配列からなるDNA。
９．形質転換ビフィズス菌の細胞表層に発現・提示されるWT1タンパク質が、配列番号１４又は配列番号１６で特定されるアミノ酸配列で特定されるタンパク質である、前項１〜８のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
１０．形質転換ビフィズス菌が、WT1タンパク質をコードするDNAとビフィズス菌由来のGNB/LNB基質結合膜タンパク質をコードするDNAの間に、アジュバント機能を有するタンパク質をコードするDNAを含む、前項１〜９のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
１１．形質転換ビフィズス菌が、腫瘍ワクチン製剤の有効成分である、前項１〜１０のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
１２．腫瘍ワクチン製剤が経口製剤である、前項１１に記載の抗腫瘍剤。

１３．ビフィズス菌表層に抗原としてのWT1タンパク質を発現・提示するよう設計された形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤とを併用することを特徴とする、がんの予防又は治療方法。
１４．がんが、WT1タンパク質が高発現し得るがんである、前項１３に記載のがんの予防又は治療方法。
１５．がんが、前立腺がん、肺がん、膀胱がん、胃がん、大腸がん、乳がん、胚細胞がん、肝がん、皮膚がん、子宮がん、子宮頸がん、卵巣がん、脳腫瘍、食道がん、悪性中皮腫、腎がん、白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫及び悪性リンパ腫より選択される１種または複数のがんである、前項１３に記載のがんの予防又は治療方法。
１６．がんが、前立腺がんである、前項１５に記載のがんの予防又は治療方法。

本発明のビフィズス菌表層に抗原としてのWT1タンパク質を発現・提示するよう設計された形質転換ビフィズス菌と、免疫抑制阻害剤との併用により、形質転換ビフィズス菌単独及び免疫抑制阻害剤単独と比較して、優れた抗腫瘍効果を発揮することができる。例えば前立腺がんでは形質転換ビフィズス菌単独投与でも優れた抗腫瘍効果が確認されるが、免疫抑制阻害剤と併用することにより、さらに抗腫瘍効果を増強することができる。

本発明における形質転換ビフィズス菌は、ビフィズス菌の細胞表層にWT1タンパク質を発現・提示することができ、WT1タンパク質を発現する腫瘍に対して利用できるものである。本発明における形質転換ビフィズス菌を経口ワクチン製剤とする場合、小児や高齢者でも摂取しやすく、また通常の注射によるワクチン接種に伴う痛みもない。特に、本発明の形質転換ビフィズス菌は、食経験のあるビフィズス菌を使用するため、安全性が高い。本発明の併用によれば、患者の負担を最小限に抑えながら高い抗腫瘍効果を期待することができ、投与スケジュールの設定等も柔軟に行うことができ便利である。

また、本発明の形質転換ビフィズス菌は、ある特定のHLAに拘束されるWT1ペプチドワクチンとは異なり、WT1タンパク質のほぼ全配列をカバーするタンパク質を発現・提示しうるビフィズス菌であり、HLAの拘束性は低い。従って、本発明の併用療法は、様々なHLAタイプの患者に対して適用が可能である。

GL-BP遺伝子の下流にWT1遺伝子を有するシャトルベクター及びビフィズス菌表面に発現したGL-BP-WT1融合タンパク質を示す概念図である。（実施例１） 形質転換ビフィズス菌に導入されたWT1をコードするDNAを確認した結果を示す写真図である。（実施例１） 本発明の形質転換ビフィズス菌の表面に発現したWT1タンパク質をウエスタンブロッティングにて確認した結果（図３Ａ）と、蛍光免疫染色にて確認した結果（図３Ｂ）を示す写真図である。（実施例２） 本発明の形質転換ビフィズス菌の細胞免疫応答誘導効果を、マウスを用いて確認するための実験プロトコールを示す図である。（実施例３） 本発明の形質転換ビフィズス菌を投与した場合のマウスの体重への影響を確認した結果を示す図である。（実施例３） 本発明の形質転換ビフィズス菌のサイトカイン産生能への影響を確認した結果を示す図である。（実施例３） 本発明の形質転換ビフィズス菌の活性化T細胞誘導能への影響を確認した結果を示す図である。（実施例３） 本発明の形質転換ビフィズス菌のWT1特異的CTL誘導能を確認した結果を示す図である。（実施例３） 本発明の形質転換ビフィズス菌のWT1特異的細胞傷害活性化能を確認した結果を示す図である（実施例３） 本発明の形質転換ビフィズス菌において、WT1タンパク質をコードするDNAを遺伝子レベルで確認した結果を示す図である。（実施例４） 本発明の形質転換ビフィズス菌の表面に発現したWT1タンパク質をウエスタンブロッティングにて確認した結果（図１１Ａ）と、蛍光免疫染色にて確認した結果（図１１Ｂ）を示す写真図である。（実施例５） 前立腺がん細胞について、フローサイトメトリー法にてPD-L1の発現量の解析を行った結果を示す。（参考例１） 本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤との併用による抗腫瘍効果を、マウスを用いて確認するための実験プロトコールを示す図である。（実施例６） 本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤との併用による抗腫瘍効果を確認した結果を示す図である。（実施例６） 本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤との併用による抗腫瘍効果を確認した結果を示す図である。（実施例６） 本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤との併用による抗腫瘍効果を、マウスを用いて確認するための実験プロトコールを示す図である。（実施例７） 本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤との併用による抗腫瘍効果を確認した結果を示す図である。移植80日までの腫瘍の大きさの経日変化（腫瘍曲線）を図１７Ａに示し、移植100日目までのマウスの生存曲線を図１７Ｂに示す。（実施例７）

本発明は、抗原としてのWT1タンパク質を発現・提示するよう設計された形質転換ビフィズス菌を含み、免疫抑制阻害剤と併用して使用するための、抗腫瘍剤に関する。免疫抑制阻害剤は、がん細胞による免疫抑制を阻害し得る薬剤であり、がん特異的T細胞がより正常に機能できるようにするために用いられる。本発明は、がん治療において形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤とを併用することによる併用療法を提供するものである。抗原としてのWT1タンパク質を発現・提示するよう設計された形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤について、以下詳細に説明する。

Ｉ．抗原としてのWT1タンパク質を発現・提示するよう設計された形質転換ビフィズス菌
本発明の形質転換ビフィズス菌は、WT1タンパク質をコードするDNAと、ビフィズス菌由来のGNB/LNB基質結合膜タンパク質をコードするDNAを含むことにより、ビフィズス菌表層に抗原としてのWT1タンパク質を発現・提示するよう設計される。
（WT1タンパク質）
WT1タンパク質は、小児の腎腫瘍であるウィルムス（Wilms）腫瘍の原因遺伝子の1つとして単離されたWT1遺伝子によりコードされるタンパク質である。WT1タンパク質には、種々のHLAタイプに対して複数のT細胞エピトープが確認されている。本発明のWT1タンパク質は、少なくとも２以上（好ましくは３以上、より好ましくは４以上）のT細胞エピトープを含むものであればよく、全長であってもよいし、N末端やC末端が欠失した部分ペプチドであってもよい。WT1タンパク質の全長として、以下のものが例示される。

WT1タンパク質の全長 GenBank Accession No.P22561.1（配列番号２２）：
MGSDVRDLNALLPAVSSLGGGGGGCGLPVSGARQWAPVLDFAPPGASAYGSLGGPAPPPAPPPPPPPPHSFIKQEPSWGGAEPHEEQCLSAFTLHFSGQFTGTAGACRYGPFGPPPPSQASSGQARMFPNAPYLPSCLESQPTIRNQGYSTVTFDGAPSYGHTPSHHAAQFPNHSFKHEDPMGQQGSLGEQQYSVPPPVYGCHTPTDSCTGSQALLLRTPYSSDNLYQMTSQLECMTWNQMNLGATLKGMAAGSSSSVKWTEGQSNHGIGYESENHTAPILCGAQYRIHTHGVFRGIQDVRRVSGVAPTLVRSASETSEKRPFMCAYPGCNKRYFKLSHLQMHSRKHTGEKPYQCDFKDCERRFSRSDQLKRHQRRHTGVKPFQCKTCQRKFSRSDHLKTHTRTHTGKTSEKPFSCRWHSCQKKFARSDELVRHHNMHQRNMTKLHVAL

WT1タンパク質の全長 GenBank Accession No.P19544.2（配列番号２３）：
MGSDVRDLNALLPAVPSLGGGGGCALPVSGAAQWAPVLDFAPPGASAYGSLGGPAPPPAPPPPPPPPPHSFIKQEPSWGGAEPHEEQCLSAFTVHFSGQFTGTAGACRYGPFGPPPPSQASSGQARMFPNAPYLPSCLESQPAIRNQGYSTVTFDGTPSYGHTPSHHAAQFPNHSFKHEDPMGQQGSLGEQQYSVPPPVYGCHTPTDSCTGSQALLLRTPYSSDNLYQMTSQLECMTWNQMNLGATLKGVAAGSSSSVKWTEGQSNHSTGYESDNHTTPILCGAQYRIHTHGVFRGIQDVRRVPGVAPTLVRSASETSEKRPFMCAYPGCNKRYFKLSHLQMHSRKHTGEKPYQCDFKDCERRFSRSDQLKRHQRRHTGVKPFQCKTCQRKFSRSDHLKTHTRTHTGKTSEKPFSCRWPSCQKKFARSDELVRHHNMHQRNMTKLQLAL

本明細書において、ビフィズス菌上に発現・提示されうる抗原としてのWT1タンパク質は、以下のいずれかで特定される。
１）配列番号１で特定されるアミノ酸配列で特定されるタンパク質。
２）配列番号１で特定されるアミノ酸配列のうち、1個又は複数個、例えば1〜120個、好ましくは1〜60個、1〜50個、1〜40個、1〜30個、1〜20個、より好ましくは1〜10個、さらに好ましくは1〜9個のアミノ酸が置換、欠失、付加、導入されてなるアミノ酸配列を基にして特定されるタンパク質であって、ワクチンとして免疫原性を有するタンパク質。
３）配列番号１で特定されるアミノ酸配列と60％以上、好ましくは80％以上、より好ましくは90%以上、さらに好ましくは95%以上、さらに好ましくは97%以上、最も好ましくは98%以上の相同性を有するアミノ酸配列を基にして特定されるタンパク質であって、ワクチンとして免疫原性を有するタンパク質。

WT1タンパク質（配列番号１）：
PSQASSGQARMFPNAPYLPSCLESQPTIRNQGYSTVTFDGAPSYGHTPSHHAAQFPNHSFKHEDPMGQQGSLGEQQYSVPPPVYGCHTPTDSCTGSQALLLRTPYSSDNLYQMTSQLECMTWNQMNLGATLKGMAAGSSSSVKWTEGQSNHGIGYESENHTAPILCGAQYRIHTHGVFRGIQDVRRVSGVAPTLVRSASETSEKRPFMCAYPGCNKRYFKLSHLQMHSRKHTGEKPYQCDFKDCERRFSRSDQLKRHQRRHTGVKPFQCKTCQRKFSRSDHLKTHTRTHTGKTSEKPFSCRWHSCQKKFARSDELVRHHNMHQ

上記WT1タンパク質（配列番号１）に含まれるT細胞エピトープを、以下の表１に示す。本発明のWT1タンパク質は、表１に示すnp332、np126、np187、np235に相当するT細胞エピトープを２以上含むことが好ましい。より好ましくは３以上、さらに好ましくは４個全てを含む。これらのT細胞エピトープは、T細胞により認識され細胞免疫応答を誘導し得るものであればよく、アミノ酸配列のうち1個又は複数個、例えば1〜5個、好ましくは1〜3個、より好ましくは1〜2個、最も好ましくは1個のアミノ酸が置換、欠失、付加、導入されてなるアミノ酸配列を有するものであってもよい。

また本明細書におけるWT1タンパク質として、以下の配列番号１４で特定されるWT1タンパク質であってもよい。
WT1タンパク質（配列番号１４）：
PSQASSGQARMFPNAPYLPSCLESQPAIRNQGYSTVTFDGTPSYGHTPSHHAAQFPNHSFKHEDPMGQQGSLGEQQYSVPPPVYGCHTPTDSCTGSQALLLRTPYSSDNLYQMTSQLECMTWNQMNLGATLKGVAAGSSSSVKWTEGQSNHSTGYESDNHTTPILCGAQYRIHTHGVFRGIQDVRRVPGVAPTLVRSASETSEKRPFMCAYPGCNKRYFKLSHLQMHSRKHTGEKPYQCDFKDCERRFSRSDQLKRHQRRHTGVKPFQCKTCQRKFSRSDHLKTHTRTHTGKTSEKPFSCRWPSCQKKFARSDELVRHHNMHQ

また上記WT1タンパク質（配列番号１４）において、HLA-A*2402拘束性CTLエピトープにおいて、M236Yの置換を導入したアミノ酸配列を有する変異型WT1タンパク質を以下に示す。本明細書におけるWT1タンパク質には、以下の変異型WT1タンパク質であってもよい。
変異型WT1タンパク質（配列番号１６）：
PSQASSGQARMFPNAPYLPSCLESQPAIRNQGYSTVTFDGTPSYGHTPSHHAAQFPNHSFKHEDPMGQQGSLGEQQYSVPPPVYGCHTPTDSCTGSQALLLRTPYSSDNLYQMTSQLECYTWNQMNLGATLKGVAAGSSSSVKWTEGQSNHSTGYESDNHTTPILCGAQYRIHTHGVFRGIQDVRRVPGVAPTLVRSASETSEKRPFMCAYPGCNKRYFKLSHLQMHSRKHTGEKPYQCDFKDCERRFSRSDQLKRHQRRHTGVKPFQCKTCQRKFSRSDHLKTHTRTHTGKTSEKPFSCRWPSCQKKFARSDELVRHHNMHQ

本明細書におけるWT1タンパク質には、改変型WT1タンパク質も包含される。ここにおいて改変型WT1タンパク質は、上記特定されたWT1タンパク質の全部又は一部のアミノ酸が置換や修飾等により改変されたタンパク質をいう。改変型WT1タンパク質には、例えば上記１）〜３）で特定されるアミノ酸配列において、全部又は一部のアミノ酸、例えば1個又は複数個、例えば1個、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個、11個又は12個のアミノ酸が修飾されたアミノ酸配列からなるタンパク質が含まれる。改変WT1タンパク質が有し得るアミノ酸の「修飾」としては、これらに限定されないが、例えば、アセチル化、メチル化などのアルキル化、グリコシル化、ヒドロキシル化、カルボキシル化、アルデヒド化、リン酸化、スルホニル化、ホルミル化、ミリストイル化やパルミトイル化やステアロイル化のような脂肪鎖付加修飾、オクタノイル化、エステル化、アミド化、脱アミド化、シスチン修飾やグルタチオン修飾やチオグリコール酸修飾のようなジスルフィド結合形成修飾、糖化、ユビキチン化、スクシンイミド形成、グルタミル化、プレニル化等が挙げられる。改変型WT1タンパク質は、1個以上のアミノ酸の置換、欠失又は付加と、1個以上のアミノ酸の修飾を組み合わせて含むものであってもよい。

（ビフィズス菌）
本明細書において、「ビフィズス菌」とは、ビフィドバクテリウム（Bifidobacterium）属に属する微生物をいう。ビフィズス菌としては、例えば、ビフィドバクテリウム・アドレスセンティス（Bifidobacterium adolescentis）、ビフィドバクテリウム・アングラタム（B. angulatum）、ビフィドバクテリウム・アニマリス・サブスピーシス・アニマリス（B. animalis subsp. animalis）、ビフィドバクテリウム・アニマリス・サブスピーシス・ラクティス（B. animalis subsp. lactis）、ビフィドバクテリウム・アステロイデス（B. asteroides）、ビフィドバクテリウム・ビフィダム（B. bifidum）、ビフィドバクテリウム・ボウム（B. boum）、ビフィドバクテリウム・ブレベ（B. breve）、ビフィドバクテリウム・カテヌラタム（B. catenulatum）、ビフィドバクテリウム・ケリナム（B. choerinum）、ビフィドバクテリウム・コリネフォーム（B. coryneforme）、ビフィドバクテリウム・クニクリ（B. cuniculi）、ビフィドバクテリウム・デンティコレンス（B. denticolens）、ビフィドバクテリウム・デンティウム（B. dentium）、ビフィドバクテリウム・ガリクム（B. gallicum）、ビフィドバクテリウム・ガリナラム（B. gallinarum）、ビフィドバクテリウム・グロボサム（B. globosum）、ビフィドバクテリウム・インディカム（B. indicum）、ビフィドバクテリウム・インファンティス（B. infantis）、ビフィドバクテリウム・イノピナタム（B. inopinatum）、ビフィドバクテリウム・ラクティス（B. lactis）、ビフィドバクテリウム・ロンガム（B. longum）、ビフィドバクテリウム・マグナム（B. magnum）、ビフィドバクテリウム・メリシカム（B. merycicum）、ビフィドバクテリウム・ミニマム（B. minimum）、ビフィドバクテリウム・パーブロラム（B. parvulorum）、ビフィドバクテリウム・シュードカテヌラタム（B. pseudocatenulatum）、ビフィドバクテリウム・シュードロンガム・サブスピーシス・グロボスム（B. pseudolongum subsp. globosum）、ビフィドバクテリウム・シュードロンガム・サブスピーシス・シュードロンガム（B. pseudolongum subsp. pseudolongum）、ビフィドバクテリウム・プロルム（B. pullorum）、ビフィドバクテリウム・ルミナル（B. ruminale）、ビフィドバクテリウム・ルミナンティアム（B. ruminantium）、ビフィドバクテリウム・セクラル（B. saeculare）、ビフィドバクテリウム・スカードビ（B. scardovii）、ビフィドバクテリウム・ズブチル（B. subtile）、ビフィドバクテリウム・スイス（B. suis）、ビフィドバクテリウム・サームアシドフィルム（B. thermacidophilum）、及びビフィドバクテリウム・サームフィルム（B. thermophilum）が挙げられる。

この中でも、ビフィドバクテリウム・アドレスセンティス（Bifidobacterium adolescentis）、ビフィドバクテリウム・アニマリス・サブスピーシス・アニマリス（B. animalis subsp. animalis）、ビフィドバクテリウム・アニマリス・サブスピーシス・ラクティス（B. animalis subsp. lactis）、ビフィドバクテリウム・ビフィダム（B. bifidum）、ビフィドバクテリウム・ブレベ（B. breve）、ビフィドバクテリウム・ラクティス（B. lactis）、ビフィドバクテリウム・ロンガム（B. longum）、及びビフィドバクテリウム・シュードロンガム・サブスピーシス・シュードロンガム（B. pseudolongum subsp. pseudolongum）が好ましく用いられる。

また、これらの耐性株又は変異株を用いてもよい。これらの菌株は、いずれも市販されているか、又は寄託機関等から容易に入手できる。例えば、B. longum JCM1217（ATCC15707）、B. bifidum ATCC11863等が挙げられる。

（GNB/LNB基質結合膜タンパク質）
GNB/LNB基質結合膜タンパク質（GL-BP：Galacto-n-biose-lacto-n-biose I-binding Protein）は、ビフィズス菌が有するラクト-N-ビオース（即ち、N-Acetyl-3-O-β-D-galactopyranosyl-D-glucosamine）及びガラクト-N-ビオース（即ち、N-Acetyl-3-O-(β-D-galactopyranosyl)-α-D-galactosamine）を輸送するABCタンパク質（ATP Binding Cassette protein）ファミリーに属する膜タンパク質である。以下、GNB/LNB基質結合膜タンパク質を単に「GL-BP」ともいう。ABCタンパク質とは、ATP（アデノシン３リン酸）をエネルギーとして使用し、すべての生物の細胞膜上で特異的な物質の輸送を能動的に行う重要な膜タンパク質であり、細胞膜上に多種のABCタンパク質が存在している。そのため、ABCタンパク質の一種であるGL-BPは、GL-BP表層発現のための細胞機能が備わっているビフィズス菌において、適切なプロモーターを利用すれば普遍的に発現する。本明細書において、GL-BPの構造は天然に存在するGL-BPに限定されず、ビフィズス菌の細胞表層に発現する能力を有していれば、当該GL-BPを構成するアミノ酸に1以上の置換、挿入、又は欠失を有していてもよい。

（ビフィズス菌表層提示融合タンパク質）
本発明において、ビフィズス菌の表層に発現・提示されるWT1タンパク質は、GL-BPとの融合タンパク質として発現される。この融合タンパク質は、N末端からGL-BP及びWT1タンパク質の順に連結されている。必要に応じて、GL-BPとWT1タンパク質との間に、アジュバント機能を有するタンパク質を含んでいてもよい。

（形質転換ビフィズス菌の調製）
抗原としてのWT1タンパク質を発現・提示しうる形質転換ビフィズス菌の調製手順について、操作の順に説明する。

１．各タンパク質をコードするDNAの取得
GL-BPをコードするDNA及びWT1タンパク質をコードするDNAは、各公知の遺伝子情報又はアミノ酸配列情報に基づいて入手可能である。例えば、任意のビフィズス菌から調製したゲノムDNA又はcDNAを鋳型とし、該ビフィズス菌のGL-BPの構造遺伝子のゲノム情報に基づいて作製したプライマー対を用いてポリメラーゼ連鎖反応（PCR）で増幅し、取得することができる。一般に1つのアミノ酸に対して複数種の遺伝暗号が存在するため、公知塩基配列又は公知アミノ酸配列に基づく塩基配列とは異なる塩基配列を有する遺伝子であってもよい。B. longumのGL-BPをコードするDNAは例えば、Acta Crystallographica Section F.，2007年，F63巻，p.751にて特定されるB. longumのGL-BPの遺伝子情報に基づいて入手することができる。B. longumの染色体DNA又はcDNAを鋳型とし、遺伝子情報に基づいて作製したプライマー対を用いてPCRで増幅し、B. longumのGL-BPをコードするDNAを入手することができる。WT1タンパク質をコードするDNAは、上記WT1タンパク質について特定したアミノ酸配列情報に基づいて、自体公知の方法又は今後開発されるあらゆる方法により作製することができ、入手することができる。上記のWT1タンパク質以外の各タンパク質をコードするDNAも同様に自体公知の方法又は今後開発されるあらゆる方法により作製することができ、入手することができる。

上記の各タンパク質をコードするDNAは、上記のようにして取得したDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAであってもよい。ストリンジェントな条件下でハイブリダイズ可能なDNAとは、上記DNAをプローブとして、コロニーハイブリダイゼーション法、プラークハイブリダイゼーション法、又はサザンブロットハイブリダイゼーション法などにより得られるDNAを意味する。具体的には、コロニー又はプラーク由来のDNAを固定化したフィルターを用いて、約0.7〜1.0Mの塩化ナトリウム存在下、約65℃にてハイブリダイゼーションを行った後、約0.1〜2倍濃度のSSC溶液（1倍濃度のSSC溶液の組成は、150mM塩化ナトリウム、15mMクエン酸ナトリウムよりなる）を用い、約65℃の条件下でフィルターを洗浄することにより同定できるDNAが挙げられる。上記ハイブリダイズ可能なDNAとして、具体的には、上記公知塩基配列情報又はアミノ酸配列情報に基づいて得られる各タンパク質をコードするDNAの塩基配列と、少なくとも約80％以上の相同性を有するDNA、好ましくは約90％以上の相同性を有するDNA、さらに好ましくは約95％以上の相同性を有するDNAが挙げられる。アミノ酸配列情報に基づいて得られる各タンパク質をコードするDNAは、アミノ酸をコードするのであれば、異なったコドンであってもよい。

具体的よりには、WT1タンパク質をコードするDNAは、以下のいずれかで特定される。
１）配列番号２で特定される塩基配列からなるDNA。
２）配列番号１で特定されるアミノ酸配列情報に基づいて得られるタンパク質をコードするDNA。
３）上記１）又は２）で特定される塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNA。
４）上記１）〜３）のいずれかで特定される塩基配列と60％以上、好ましくは80％以上の相同性を有するDNA。

WT1タンパク質をコードするDNA（配列番号２）
CTCGAGCCGTCCCAGGCGTCGTCGGGCCAGGCGAGGATGTTCCCGAACGCGCCCTACCTGCCCAGCTGCCTGGAGTCCCAGCCGACGATCCGCAACCAGGGCTACTCCACCGTGACGTTCGACGGCGCCCCGTCCTACGGCCACACGCCCAGCCACCACGCCGCCCAGTTCCCGAACCACAGCTTCAAGCACGAAGACCCCATGGGCCAGCAGGGCAGCCTCGGCGAACAGCAGTACAGCGTGCCGCCGCCGGTCTACGGCTGCCACACCCCGACCGACTCCTGCACGGGCTCCCAGGCCCTGCTCCTGCGTACGCCGTACTCCTCCGACAACCTCTACCAGATGACCTCCCAGCTGGAGTGCATGACCTGGAACCAGATGAACCTGGGCGCCACGCTGAAGGGAATGGCCGCGGGGTCGTCGAGCTCCGTCAAGTGGACCGAAGGCCAGTCCAACCACGGCATCGGCTACGAGTCCGAGAACCACACCGCGCCGATCCTGTGCGGAGCCCAGTACCGCATCCACACGCACGGCGTCTTCCGCGGCATCCAGGACGTCCGGCGCGTCTCCGGCGTCGCGCCGACCCTGGTGCGGTCCGCCTCCGAGACCTCCGAGAAGCGCCCGTTCATGTGCGCCTACCCGGGCTGCAACAAGCGCTACTTCAAGCTCTCGCACCTGCAGATGCACTCCCGGAAGCACACCGGCGAGAAGCCGTACCAGTGCGACTTCAAGGACTGCGAACGCCGCTTCTCGCGCAGCGACCAGCTGAAGCGCCACCAGCGTAGGCACACCGGCGTGAAGCCCTTCCAGTGCAAGACCTGCCAGCGCAAGTTCTCCCGCAGCGACCACCTCAAGACGCACACCCGCACCCACACCGGCAAGACGTCCGAGAAGCCGTTCTCGTGCCGCTGGCACAGCTGCCAGAAGAAGTTCGCCCGCAGCGACGAGCTCGTGCGCCACCACAACATGCACCAGTGAAGCATGC

また、WT1タンパク質をコードするDNAとして、以下の配列番号１５又は配列番号１７で特定される塩基配列からなるDNAが例示される。

WT1タンパク質をコードするDNA（配列番号１５）
CCGTCCCAGGCGTCGTCGGGCCAGGCGAGGATGTTCCCGAACGCGCCCTACCTGCCCAGCTGCCTGGAGTCCCAGCCGGCGATCCGCAACCAGGGCTACTCCACCGTGACGTTCGACGGCACCCCGTCCTACGGCCACACGCCCAGCCACCACGCCGCCCAGTTCCCGAACCACAGCTTCAAGCACGAAGACCCCATGGGCCAGCAGGGCAGCCTCGGCGAACAGCAGTACAGCGTGCCGCCGCCGGTCTACGGCTGCCACACCCCGACCGACTCCTGCACGGGCTCCCAGGCCCTGCTCCTGCGTACGCCGTACTCCTCCGACAACCTCTACCAGATGACCTCCCAGCTGGAGTGCATGACCTGGAACCAGATGAACCTGGGCGCCACGCTGAAGGGAGTCGCCGCGGGGTCGTCGAGCTCCGTCAAGTGGACCGAAGGCCAGTCCAACCACTCCACCGGCTACGAGTCCGACAACCACACCACGCCGATCCTGTGCGGAGCCCAGTACCGCATCCACACGCACGGCGTCTTCCGCGGCATCCAGGACGTCCGGCGCGTCCCCGGCGTCGCGCCGACCCTGGTGCGGTCCGCCTCCGAGACCTCCGAGAAGCGCCCGTTCATGTGCGCCTACCCGGGCTGCAACAAGCGCTACTTCAAGCTCTCGCACCTGCAGATGCACTCCCGGAAGCACACCGGCGAGAAGCCGTACCAGTGCGACTTCAAGGACTGCGAACGCCGCTTCTCGCGCAGCGACCAGCTGAAGCGCCACCAGCGTAGGCACACCGGCGTGAAGCCCTTCCAGTGCAAGACCTGCCAGCGCAAGTTCTCCCGCAGCGACCACCTCAAGACGCACACCCGCACCCACACCGGCAAGACGTCCGAGAAGCCGTTCTCGTGCCGCTGGCCCAGCTGCCAGAAGAAGTTCGCCCGCAGCGACGAGCTCGTGCGCCACCACAACATGCACCAGTGAA

WT1タンパク質をコードするDNA（配列番号１７）
CCGTCCCAGGCGTCGTCGGGCCAGGCGAGGATGTTCCCGAACGCGCCCTACCTGCCCAGCTGCCTGGAGTCCCAGCCGGCGATCCGCAACCAGGGCTACTCCACCGTGACGTTCGACGGCACCCCGTCCTACGGCCACACGCCCAGCCACCACGCCGCCCAGTTCCCGAACCACAGCTTCAAGCACGAAGACCCCATGGGCCAGCAGGGCAGCCTCGGCGAACAGCAGTACAGCGTGCCGCCGCCGGTCTACGGCTGCCACACCCCGACCGACTCCTGCACGGGCTCCCAGGCCCTGCTCCTGCGTACGCCGTACTCCTCCGACAACCTCTACCAGATGACCTCCCAGCTGGAGTGCTACACCTGGAACCAGATGAACCTGGGCGCCACGCTGAAGGGAGTCGCCGCGGGGTCGTCGAGCTCCGTCAAGTGGACCGAAGGCCAGTCCAACCACTCCACCGGCTACGAGTCCGACAACCACACCACGCCGATCCTGTGCGGAGCCCAGTACCGCATCCACACGCACGGCGTCTTCCGCGGCATCCAGGACGTCCGGCGCGTCCCCGGCGTCGCGCCGACCCTGGTGCGGTCCGCCTCCGAGACCTCCGAGAAGCGCCCGTTCATGTGCGCCTACCCGGGCTGCAACAAGCGCTACTTCAAGCTCTCGCACCTGCAGATGCACTCCCGGAAGCACACCGGCGAGAAGCCGTACCAGTGCGACTTCAAGGACTGCGAACGCCGCTTCTCGCGCAGCGACCAGCTGAAGCGCCACCAGCGTAGGCACACCGGCGTGAAGCCCTTCCAGTGCAAGACCTGCCAGCGCAAGTTCTCCCGCAGCGACCACCTCAAGACGCACACCCGCACCCACACCGGCAAGACGTCCGAGAAGCCGTTCTCGTGCCGCTGGCCCAGCTGCCAGAAGAAGTTCGCCCGCAGCGACGAGCTCGTGCGCCACCACAACATGCACCAGTGAA

２．ビフィズス菌形質転換用ベクターの調製
上記１．で調製された各タンパク質をコードするDNAを有する組換え体DNAの調製について説明する。本明細書において、組換え体DNAは、発現ベクター又は染色体組込み型ベクター（例えば、相同組換え型ベクター）を用いることができる。このようなベクターの調製に用いられるプラスミドとしては、ビフィズス菌で発現可能なプラスミドであれば特に制限なく、自体公知のプラスミド又は今後開発されるあらゆるプラスミドであっても良い。例えばビフィズス菌に由来するプラスミドとしては、pTB6、pBL67、pBL78、pNAL8H、pNAL8M、pNAC1、pBC1、pMB1、pGBL8bなどを使用することができる。これらのプラスミドと大腸菌のプラスミドとの複合プラスミドを用いてもよく、例えばpBLES100、pKKT427、pRM2などを用いることができる。発現の安定性及び形質転換株の調製のためのDNAの調製の容易さという観点から、上記プラスミドの中でも、B. longumのプラスミドと大腸菌のプラスミドとから合成された複合プラスミドが好適である。

発現ベクターは、形質転換株を選択する観点から、自体公知の方法により抗生物質耐性、アミノ酸要求性などの選択マーカーを有することが好適である。発現ベクターは、GL-BPとWT1タンパク質との融合タンパク質の発現のために、又は発現に有利となるように、調節配列を付加したものが好ましい。調節配列としては、例えば、プロモーター配列、リーダー配列、プロペプチド配列、エンハンサー配列、シグナル配列、ターミネーター配列などが挙げられる。これらの調節配列は、ビフィズス菌で発現するものであれば、その由来は特に制限はない。プロモーター配列としては、ビフィズス菌で発現するものであれば特に制限はない。発現効率の観点からは、B. longumのヒストン様蛋白（HU）のプロモーター配列、LDHプロモーターなどが好ましく用いられる。また、発現効率を高める観点からは、ターミネーター配列を有することが好ましい。ターミネーター配列としては、上記HU遺伝子のターミネーター配列が好ましく用いられる。また、GL-BPをコードするDNAとWT1タンパク質をコードするDNAとの間に適切な長さのリンカーをコードするDNAを配置してもよい。

このように、上記のプラスミドに、必要に応じて、プロモーター配列、ターミネーター配列などの調節配列、及び選択マーカー遺伝子を導入して、クローニングベクターが調製される。選択マーカーとしては、スペクチノマイシン（SPr）、アンピシリン（Ampr）、テトラサイクリン（TETr）、カナマイシン（KMr）、ストレプトマイシン（STr）、ネオマイシン（NEOr）などの抗生物質耐性マーカー；緑色蛍光タンパク質（GFP）、赤色蛍光タンパク質（REP）などの蛍光マーカー；LacZなどの酵素などが挙げられる。クローニングベクターのプロモーターの下流には、マルチクローニングサイトを有するリンカーなどを備えていることが好ましい。このようなリンカーを用いることにより、上記融合タンパク質をコードするDNAがプロモーターの下流に、かつ、インフレームで融合タンパク質を発現することができるように、組み込まれる。クローニングベクター用のプラスミドとしては、代表的には、pBLES100、pBLEM100などを使用することができる。

このプラスミドpBLES100に上記取得したHUプロモーター配列、GL-BPをコードするDNA、及びWT1タンパク質をコードするDNAをインフレームで組み込むことにより、融合タンパク質をビフィズス菌の表層に発現するベクターを作製することができる。このような方法で作製される発現ベクターは、ビフィズス菌の形質転換に用いられる。

３．融合タンパク質を発現する形質転換ビフィズス菌の調製
組換え体DNA、例えば、発現ベクターを、宿主であるビフィズス菌に導入する。形質転換方法は、自体公知の方法又は今後開発されるあらゆる方法を適用することができる。具体的には、例えば、電気穿孔法（エレクトロポレーション法）、リン酸カルシウム法、リポフェクション法、カルシウムイオン法、プロトプラスト法、マイクロインジェクション法、パーティクル・ガン法などが挙げられる。本発明においては、エレクトロポレーション法を用いるのが好ましい。エレクトロポレーション法による場合、0.5〜20kV／cm、0.5μsec〜10msecの条件で行うことが可能である。より好ましくは、2〜10kV／cm、50μsec〜5msecで行うことが望ましい。

形質転換株は、融合タンパク質発現ベクターが有する選択マーカーを指標として選択することができる。形質転換株を培養する培地としては、宿主微生物それぞれに適した培地、例えば、ブドウ糖血液肝臓（BL）寒天培地、デ・マン−ロゴサ−シャープ（MRS）寒天培地、岐阜大学嫌気性（GAM）寒天培地、改良GAM（TGAM）寒天培地、ブリッグス（Briggs）寒天培地、及び酵母エキスブドウ糖ペプトン（YGP）寒天培地が挙げられる。

形質転換体の培養は、ビフィズス菌が培養可能な嫌気培養条件で行うことが好ましい。嫌気性条件下で培養することにより、好気性菌の増殖を防ぐことができる。嫌気性条件とは、ビフィズス菌が増殖可能な程度の嫌気度を保てる密閉容器中での培養であり、例えば、嫌気チャンバー又は嫌気ボックスなどにおいて可能な条件が挙げられる。培養温度は、ビフィズス菌を培養可能な温度であればよく、通常、4℃〜45℃、好ましくは15℃〜40℃、より好ましくは24℃〜37℃である。

得られた形質転換ビフィズス菌表層に発現・提示された融合タンパク質は、遺伝子組み換え技術で適用される自体公知の方法又は今後開発されるあらゆる方法で確認することができ、例えば、ウエスタンブロッティング法により確認することができる。ウエスタンブロッティング法も自体公知の方法により行うことができる。特に、WT1タンパク質がビフィズス菌表層に発現・提示されていることは、形質転換ビフィズス菌に対して例えば、WT1タンパク質に対する抗体とFITC標識抗IgG抗体とを用いる免疫抗体法によって容易に確認することができる。なお、GL-BPとアジュバント機能を有するタンパク質とWT1タンパク質との融合タンパク質を発現する場合、アジュバント機能を有するタンパク質とWT1タンパク質とがビフィズス菌の表層に発現・提示されているため、確認に用いる抗体は、いずれのタンパク質に対する抗体であってもよい。

WT1タンパク質の表層発現・提示が確認された形質転換ビフィズス菌は、当業者が通常用いる方法により培養し、回収して、そのまま製剤の製造に用いてもよい。得られたビフィズス菌は加熱殺菌処理、あるいは放射線照射等により不活化して用いても良い。形質転換ビフィズス菌は、公知の方法で後処理を行ってもよい。例えば、遠心分離などにより粗精製を行ってもよい。また、所望により粗精製を行った後、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水（PBS）又は乳酸配合リンゲル液などの当該分野で従来から使用されている溶媒に溶解又は懸濁させてもよい。また、所望により凍結乾燥又は噴霧乾燥を行い、粉状物又は粒状物にしてもよい。

（形質転換ビフィズス菌含有製剤）
本発明のWT1タンパク質が発現・提示された形質転換ビフィズス菌を、疾患の治療又は予防目的で投与する場合、任意の製剤の形態で投与することができる。投与経路は特に限定されず、経口投与又は非経口投与を行うことができるが、経口投与が好適である。

経口投与に適する製剤の例としては、例えば、錠剤、顆粒剤、細粒剤、散剤、シロップ剤、溶液剤、カプセル剤又は懸濁剤などが挙げられる。非経口投与に適する製剤の例としては、例えば、注射剤、点滴剤、吸入剤、噴霧剤、坐剤、経皮吸収剤、経粘膜吸収剤などが挙げられる。

経口投与用の液体製剤の製造には、例えば、水、ショ糖、ソルビット、果糖などの糖類；ポリエチレングリコール、プロピレングリコールなどのグリコール類；ゴマ油、オリーブ油、大豆油などの油類；ｐ−ヒドロキシ安息香酸エステル類などの防腐剤などの製剤用添加物を用いることができる。また、カプセル剤、錠剤、散剤、又は顆粒剤などの固形製剤の製造には、例えば、乳糖、ブドウ糖、ショ糖、マンニットなどの賦形剤；澱粉、アルギン酸ソーダなどの崩壊剤；ステアリン酸マグネシウム、タルクなどの滑沢剤；ポリビニールアルコール、ヒドロキシプロピルセルロース、ゼラチンなどの結合剤；脂肪酸エステルなどの界面活性剤；グリセリンなどの可塑剤を用いることができる。

（経口ワクチン）
本発明のWT1タンパク質が発現・提示された形質転換ビフィズス菌は、経口ワクチンとして好適に利用することができる。例えば、WT1タンパク質が腸管壁で抗原として認識されて、抗体が産生される。したがって有効な経口ワクチンとなる。例えば、以下に記載の耐酸性カプセル製剤（シームレスカプセル製剤、軟カプセル製剤、及び硬カプセル製剤）は、経口投与されると、pH1〜3の胃内で溶解せずに通過して、腸に到達し、腸で溶解する。カプセルの溶解により製剤から放出された形質転換ビフィズス菌は、腸内環境でも大部分のタンパク構造を保持し、その表層にWT1タンパク質を発現・提示する。

本発明の形質転換ビフィズス菌が経口投与されることにより、当該ビフィズス菌の表層に発現するWT1タンパク質は、腸管関連リンパ組織（GALT）に取り込まれ、GALT内の抗原提示細胞（APC）により適切なエピトープで処理される。さらにGALT内でプロセッシングされたペプチドはMHCクラスII又はMHCクラスIと一緒にAPCに提示され、当該ペプチドに特異的なT細胞受容体を持つCTLを誘導すると考えられる。APCにより、CD8陽性T細胞、CD4陽性T細胞が活性化され、CD4陽性T細胞から放出されるIL-2等の各種サイトカインの作用により、腫瘍細胞に特異的なCD8陽性T細胞（細胞傷害性T細胞（CTL））が増殖すると考えられている。本発明のWT1タンパク質は、CD8陽性T細胞及びCD4陽性T細胞のいずれも活性化することから、効率良くWT1発現腫瘍細胞に対して抗腫瘍効果を発揮するものと考えられる。

また本発明の形質転換ビフィズス菌を有効成分として含む経口ワクチンは、アジュバントを含んでいてもよい。アジュバントはワクチンの効果を増強させる作用を有するものである。本発明の経口ワクチンに用いられるアジュバントとしては、粘膜免疫の誘導を増強し得るものが好ましく、水酸化アルミニウムとその無機塩類、スクワレンやオイルなどの炭化水素類、コレラトキシン、大腸菌易熱性毒素のＢサブユニット（LTB）、サルモネラからのリピドＡ（MPLA）などの細菌毒素、キトサンやイヌリンなどの多糖類、及びこれらの組合せがあげられるが、これらに限定されない。

（形質転換ビフィズス菌を含有する耐酸性カプセル製剤の製造）
本発明の経口ワクチンは、カプセル製剤の形態であることが好ましい。本明細書中では、内容物をその中に含むカプセルを「カプセル製剤」という。本発明におけるカプセル製剤は、カプセル皮膜とWT1タンパク質を表層に発現する形質転換ビフィズス菌とで構成され、このカプセル皮膜は耐酸性である。耐酸性であるカプセル皮膜とWT1タンパク質を表層に発現する形質転換ビフィズス菌とで構成されるカプセル製剤とは、耐酸性のカプセル皮膜を有し、そしてWT1タンパク質を表層に発現する形質転換ビフィズス菌をカプセル内容物として含有する限り、任意の構成及び形状をとり、当該カプセル製剤が、さらなる構成要素を含んでいることを除外しない。したがって、WT1タンパク質を表層に発現する形質転換ビフィズス菌が、耐酸性のカプセル皮膜によって包含されている、又は封じ込められている（すなわち、耐酸性の皮膜によって形成されるカプセルの内部領域に含有されている）。本発明の形質転換ビフィズス菌に適用可能なカプセル製剤は自体公知の方法又は今後開発されるあらゆる方法を製造することができる。

WT1タンパク質を表層に発現する形質転換ビフィズス菌が経口ワクチンとして機能するためには、この形質転換ビフィズス菌が胃を通過し、腸に到達し、そこでもWT1抗原タンパク質やビフィズス菌細胞壁のタンパク質が保持されている必要がある。ところで、胃のpHは1〜3であり、この著しく低いpHのため、経口摂取されたビフィズス菌は、その大部分のタンパク質が変性する。したがって、本発明で用いる形質転換ビフィズス菌がヒトの腸内に各種のタンパク構造を保持したまま到達し、WT1タンパク質を発現・提示するためには、形質転換ビフィズス菌が胃酸による影響を極力受けないようにすることが好ましい。

そのため、本発明において使用されるWT1タンパク質を表層に発現する形質転換ビフィズス菌を含む経口ワクチンは、耐酸性のカプセル皮膜によって形質転換ビフィズス菌が包含され又は封じ込められている、すなわち、耐酸性の皮膜のカプセルの内側に形質転換ビフィズス菌が含有されている、カプセル製剤が好適である。カプセル製剤の構成、形状などは、皮膜が胃酸に対して耐性を有する限り、特に制限がない。すなわち、胃酸がカプセル内に浸入し、形質転換ビフィズス菌と接触しないように構成することが望ましい。カプセル皮膜は、pH4以下、好ましくはpH1〜3で溶解しない皮膜であっても良い。カプセル化法も特に制限はない。

ＩＩ．免疫抑制阻害剤
本発明における免疫抑制阻害剤は、がん細胞による免疫抑制を阻害し得る薬剤を意味する。がん細胞には、T細胞の機能を制御し、生体内の免疫応答の低下を引き起こすものがある。がん抗原を認識し活性化したT細胞はがん組織内に入る。一方、がん細胞は様々な免疫抑制性の免疫チェックポイント分子を発現したり、免疫チェックポイント分子のリガンドを発現したりする。がん細胞により発現される免疫チェックポイント分子等は、次第にがん特異的T細胞の免疫抑制を引き起こす。免疫抑制阻害剤によりがん特異的T細胞が正常に機能し得るようになる。

本発明の免疫抑制阻害剤としては、好適には、免疫チェックポイント阻害剤を用いる。免疫チェックポイント阻害剤とは、がん細胞により発現される免疫チェックポイント分子の活性を阻害する薬剤である。免疫チェックポイント分子としては、PD1、PD-L1、CTLA4等が例示される。

免疫チェックポイント阻害剤の有効成分は、上述の免疫チェックポイント分子を認識するものであればよく、低分子化合物、抗体、核酸、ペプチド等のいずれであってもよい。好ましくは、免疫チェックポイント分子を特異的に認識する抗体を有効成分とする。免疫チェックポイント分子を特異的に認識する抗体は、上述の免疫チェックポイント分子のうち１種又は複数種に結合し得、その分子の活性を遮断又は阻害する。本発明における免疫チェックポイント阻害剤は、好ましくは抗PD1抗体、抗PD-L1抗体、抗CTLA-4抗体の少なくとも１つ以上、より好ましくは抗PD1抗体を有効成分とする。抗PD1抗体を有効成分とする免疫チェックポイント阻害剤の具体例としては、ニボルマブ（Nivolumab）、ペンブロリズマブ（Pembrolizumab）、ピジリズマブ（Pidilizumab）等が挙げられ、抗PD-L1抗体の具体例としては、トレメリムマブ、AMP-224、MDX-1105、BMS-936559、MPLDL3280A、MSB0010718C等、抗CTLA-4抗体の具体例としては、イピリムマブ（Ipilimumab）が挙げられる。

免疫抑制阻害剤は、任意の製剤の形態で投与することができる。投与経路は特に限定されず、経口投与又は非経口投与を行うことができる。非経口投与としては、皮下注射、筋肉内注射、嚢内注射、髄腔内注射、腹腔内注射、腫瘍内注射、経皮注射又は静脈内注射等が例示される。非経口投与に適する製剤の例としては、例えば、注射剤、点滴剤、吸入剤、噴霧剤、坐剤、経皮吸収剤、経粘膜吸収剤などが挙げられる。経口投与に適する製剤の例としては、例えば、錠剤、顆粒剤、細粒剤、散剤、シロップ剤、溶液剤、カプセル剤又は懸濁剤などが挙げられる。

免疫抑制阻害剤は、有効成分に加えて、医薬として許容される任意の添加剤を含有していてもよい。添加剤としては、医薬として許容される担体、賦形剤、安定化剤、懸濁化剤、乳化剤、増粘剤、分散剤、吸収促進剤、結合剤、滑沢剤、崩壊剤、湿潤剤、緩衝剤、矯味剤、保存剤、着色剤、糖類、油類、防腐剤、界面活性剤、可塑剤、希釈剤、酸化防止剤、キレート剤などが挙げられるが、これらに限定されない。

ＩＩＩ．本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤の併用の態様
本発明は、本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤を併用することによるがんの予防又は治療する方法にも及ぶ。本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤の併用による予防又は治療の対象となるがんは、WT1タンパク質が高発現し得るがんであればいずれであってもよく固形がんでも造血器がんでもよい。固形がんは、悪性の異常な細胞増殖塊状物であり、生体内のどこにでも発生し得、例えば、前立腺がん、膀胱がん、肺がん、胃がん、大腸がん、乳がん、胚細胞がん、肝がん、皮膚がん、子宮がん、子宮頸がん、卵巣がん、脳腫瘍、食道がん、悪性中皮腫、腎がんなどが挙げられる。造血器がんとしては、白血病、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫、悪性リンパ腫などが挙げられる。本発明の対象とする腫瘍は、固形がんであることが好ましく、前立腺がん、膀胱がん及び肺がんから選択されるいずれかであることがより好ましい。

本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤の併用において、形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤は同時又は別々に投与することができる。形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤は、単回投与であってもよいし、連続して投与することもできる。連続して投与するする場合に、形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤の各投与回数は、各々同回数であってもよいし、異なる回数であってもよい。あるいは形質転換ビフィズス菌を、免疫抑制阻害剤の前又は後に適当な時間間隔をおいて、免疫抑制阻害剤とは別に投与することもできる。また形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤の剤形及び投与経路は同一である必要はなく、それぞれ異なっていてもよい。例えば形質転換ビフィズス菌を経口投与し、免疫抑制阻害剤を非経口的に投与することもできる。併用される形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤は、各々単剤を用いることもできるし、各々を組み合わせたキット製剤として使用することもできる。

形質転換ビフィズス菌及び免疫抑制阻害剤の有効成分の投与量は、対象者の体重や年齢、症状、投与方法などにより変動するが、当業者であれば適宜選択することが可能である。また投与量は、形質転換ビフィズス菌及び免疫抑制阻害剤について別個に選択することができる。形質転換ビフィズス菌及び免疫抑制阻害剤の投与回数は、特に限定されないが、複数回投与されることが好ましい。本発明の併用療法では、形質転換ビフィズス菌が投与されることにより、腫瘍特異的なT細胞が誘導され、免疫抑制阻害剤により腫瘍特異的なT細胞の免疫抑制が解除されると考えられる。従って形質転換ビフィズス菌の投与が、免疫抑制阻害剤の投与に先行することが好ましい。「先行して投与」とは、免疫抑制阻害剤の前に、少なくとも１回以上、有効量の形質転換ビフィズス菌が投与されることを意味する。具体的には、形質転換ビフィズス菌の経口投与開始から１日〜３週間後、好ましくは１〜２週間程度後に、免疫抑制阻害剤の併用を開始することができる。両剤の投与は、がんが治療に抵抗性になるか、がんが消失するまで行うことができる。

以下に参考例と実施例に基づいて本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の参考例と実施例によって限定されるものではない。

（実施例１：GL-BP-WT1表層提示ビフィズス菌の作製）
Ａ．GL-BP遺伝子の単離
Bifidobacterium longum JCM1217（ATCC15707）ゲノム（Accession：EU193949）より、プライマーglt-f：5'-ggggtgctgatatattggtttg-3'（配列番号３）及び終止コドンがXhoIに置換されるようにしたglt-r：5'-gctcgagctcggaaacagacaggccgaagtt-3'（配列番号４）とKOD -Plus-（TOYOBO社製）とを用いてPCR反応を行ってGL-BP遺伝子を増幅させた。増幅させたGL-BP遺伝子を含むPCR産物についてアガロースゲル電気泳動を行い、1989bpのPCR産物を切り出し、Wizard SV Gel and PCR Clean-Up System（Promega社製）を用いてGL-BP遺伝子増幅断片のみを単離精製した。

Ｂ．単離したGL-BP遺伝子を有するpMW118プラスミドの構築
単離精製したGL-BP遺伝子増幅断片を、アンピシリン耐性遺伝子（Ampr）を有するpMW118（株式会社ニッポンジーン製）のSmaIサイトに導入し、プラスミドの構築を行った。なお、ライゲーションには、DNA Ligation kit Ver. 2（タカラバイオ株式会社製）を用いた。構築したプラスミドを、ヒートショック法（42℃、30秒）にて大腸菌DH5α（タカラバイオ株式会社製）に導入し、アンピシリン100μg/mlを含むLB寒天培地（Difco社製）に塗布し、37℃にて一晩培養し、GL-BP遺伝子を有するプラスミドを保持した形質転換大腸菌を得た。形質転換大腸菌からQuantum Prep Plasmid Miniprep Kit（Bio-Rad社製）を使用してプラスミドを抽出精製し、シーケンスによる配列確認を行い、GL-BP遺伝子の導入された組換えプラスミドを得た。得られた組換えプラスミドをpJT101と命名した。

Ｃ．WT1遺伝子の単離
マウスWT1の117番目から439番目までのアミノ酸配列をコードするDNA（配列番号２）を全合成した（フナコシ株式会社）。なお、合成の際にはビフィズス菌において使用頻度の高いコドンを用いた。また、N末端側にはXhoI認識配列（CTCGAG：配列番号５）を、C末端側には終止コドン及びそれに引き続いてSphI認識配列（GCATGC：配列番号６）を付加した。これをpUC18ベクターのSmaIサイトに導入し、プラスミドの構築を行った。ライゲーションには、DNA Ligation kit Ver. 2（タカラバイオ株式会社製）を用いた。構築したプラスミドを、ヒートショック法（42℃、30秒）にて大腸菌DH5α（タカラバイオ株式会社製）に導入し、アンピシリン100μg/mlを含むLB寒天培地（Difco社製）に塗布し、37℃にて一晩培養し、マウスWT1(117〜439)をコードするDNAを有するプラスミドを保持した形質転換大腸菌を得た。形質転換大腸菌からQuantum Prep Plasmid Miniprep Kit（Bio-Rad社製）を使用してプラスミドを抽出精製し、シーケンスによる配列確認を行った。得られた組換えプラスミドをpTK2875-1と命名した。

合成したマウスWT1遺伝子の配列（配列番号２）
CTCGAGCCGTCCCAGGCGTCGTCGGGCCAGGCGAGGATGTTCCCGAACGCGCCCTACCTGCCCAGCTGCCTGGAGTCCCAGCCGACGATCCGCAACCAGGGCTACTCCACCGTGACGTTCGACGGCGCCCCGTCCTACGGCCACACGCCCAGCCACCACGCCGCCCAGTTCCCGAACCACAGCTTCAAGCACGAAGACCCCATGGGCCAGCAGGGCAGCCTCGGCGAACAGCAGTACAGCGTGCCGCCGCCGGTCTACGGCTGCCACACCCCGACCGACTCCTGCACGGGCTCCCAGGCCCTGCTCCTGCGTACGCCGTACTCCTCCGACAACCTCTACCAGATGACCTCCCAGCTGGAGTGCATGACCTGGAACCAGATGAACCTGGGCGCCACGCTGAAGGGAATGGCCGCGGGGTCGTCGAGCTCCGTCAAGTGGACCGAAGGCCAGTCCAACCACGGCATCGGCTACGAGTCCGAGAACCACACCGCGCCGATCCTGTGCGGAGCCCAGTACCGCATCCACACGCACGGCGTCTTCCGCGGCATCCAGGACGTCCGGCGCGTCTCCGGCGTCGCGCCGACCCTGGTGCGGTCCGCCTCCGAGACCTCCGAGAAGCGCCCGTTCATGTGCGCCTACCCGGGCTGCAACAAGCGCTACTTCAAGCTCTCGCACCTGCAGATGCACTCCCGGAAGCACACCGGCGAGAAGCCGTACCAGTGCGACTTCAAGGACTGCGAACGCCGCTTCTCGCGCAGCGACCAGCTGAAGCGCCACCAGCGTAGGCACACCGGCGTGAAGCCCTTCCAGTGCAAGACCTGCCAGCGCAAGTTCTCCCGCAGCGACCACCTCAAGACGCACACCCGCACCCACACCGGCAAGACGTCCGAGAAGCCGTTCTCGTGCCGCTGGCACAGCTGCCAGAAGAAGTTCGCCCGCAGCGACGAGCTCGTGCGCCACCACAACATGCACCAGTGAAGCATGC

マウスWT1の117番目から350番目までのアミノ酸配列をコードするDNAを有するプラスミドの作製は、以下のように行った。すなわち上記で得られたpTK2875を鋳型にして、プライマーWT1-f （5'-CGCTCGAGCCGTCCCAGGCGTCGT-3'：配列番号７）及びプライマーWT1-r2（5'-GCGCATGCTCACTCGCCGGTGTGCTTCCGG-3'：配列番号８）とKOD -Plus-（TOYOBO社製）とを用いてPCR反応を行ってマウスWT1(117〜350)をコードするDNA断片を増幅させた。なお、C末端側には終止コドン及びそれに引き続いてSphI認識配列（GCATGC：配列番号６）を付加した。増幅させたPCR産物についてアガロースゲル電気泳動を行い、721bpのPCR産物を切り出し、Wizard SV Gel and PCR Clean-Up System（Promega社製）を用いて単離精製した。これをpUC18ベクターのSmaIサイトに導入し、プラスミドの構築を行った。ライゲーションには、DNA Ligation kit Ver. 2（タカラバイオ株式会社製）を用いた。構築したプラスミドを、ヒートショック法（42℃、30秒）にて大腸菌DH5α（タカラバイオ株式会社製）に導入し、アンピシリン100μg/mlを含むLB寒天培地（Difco社製）に塗布し、37℃にて一晩培養し、マウスWT1(117〜350)をコードするDNAを有するプラスミドを保持した形質転換大腸菌を得た。形質転換大腸菌からQuantum Prep Plasmid Miniprep Kit（Bio-Rad社製）を使用してプラスミドを抽出精製し、シーケンスによる配列確認を行った。得られた組換えプラスミドをpTK2875-2と命名した。

Ｄ．GL-BP遺伝子の下流にWT1遺伝子を有するプラスミドの構築
上記Ｃ．にて得られたWT1遺伝子を保持するプラスミドpTK2875-1及びpTK2875-2を制限酵素XhoI及びSphIで処理し、アガロースゲル電気泳動を行い、それぞれ986bp及び718bpのDNA断片を切り出し、Wizard SV Gel and PCR Clean-Up System（Promega社製）を用いて単離精製した。これらのWT1遺伝子増幅断片を、DNA Ligation kit Ver. 2を用いて、同じく制限酵素XhoI及びSphIで処理した上記pJT101プラスミドへそれぞれ導入し、プラスミドの構築を行った。構築したプラスミドをそれぞれ、ヒートショック法にて大腸菌DH5αに導入し、アンピシリン100μg/mlを含むLB寒天培地に塗布し、37℃にて一晩培養し、GL-BP遺伝子とWT1遺伝子との融合遺伝子（図１）を有するプラスミドを保持した形質転換大腸菌を得た。得られた形質転換大腸菌から、Quantum Prep Plasmid Miniprep Kitを使用してプラスミドを抽出精製し、シーケンスによる配列確認を行い、GL-BP遺伝子の下流にWT1遺伝子を連結した組換えプラスミドを得た。得られた組換えプラスミドをそれぞれpTK2895（GLBP-WT1(117〜439)）及びpTK2896（GLBP-WT1(117〜350)）と命名した。

Ｅ．大腸菌−ビフィズス菌シャトルベクターの構築
大腸菌−ビフィズス菌シャトルベクターとして、Vaccine. 28:6684-6691 (2010)に開示する大腸菌−ビフィズス菌シャトルベクターpJW241を使用した。

Ｆ．大腸菌−ビフィズス菌シャトルベクターpJW241へのGL-BP遺伝子とWT1遺伝子とが連結された遺伝子の組込み
GL-BP遺伝子とWT1遺伝子とが連結された融合遺伝子（以下「当該融合遺伝子」という。）を有するベクターpTK2895（GLBP-WT1(117〜439)）及びpTK2896（GLBP-WT1(117〜350)）をそれぞれテンプレートとして、プライマーInfusion-F（5'-ggaaaactgtccatagatggcgaggcgaacgccacg-3'：配列番号９） 及びプライマーInfusion-R（5'-tttcatctgtgcatagtgctgcaaggcgattaagtt-3'：配列番号１０）を用いてPCRを行った。PCR増幅産物についてアガロースゲル電気泳動を行って当該融合遺伝子を切り出し、Wizard SV Gel and PCR Clean-Up System（Promega社製）を用いて単離精製した。また、これとは別に、大腸菌−ビフィズス菌シャトルベクターpJW241（Vaccine. 28:6684-6691 (2010)）を制限酵素NdeIで処理した。精製した当該融合遺伝子とpJW241とを、それぞれIn-Fusion HD Cloning kit（Clontech社製）を用いてライゲートし、得られたプラスミドをヒートショック法にて大腸菌DH5αに導入し、スペクチノマイシン70μg/mlを含むLB寒天培地に塗布し、37℃にて一晩培養して、大腸菌複製開始点ori領域、スペクチノマイシン耐性遺伝子（SPr）、ビフィズス菌の複製開始点ori領域、及び当該融合遺伝子を有するプラスミドを保持した形質転換大腸菌を得た。形質転換大腸菌からQuantum Prep Plasmid Miniprep Kitを使用してプラスミドを抽出精製し、当該融合遺伝子の配列の存在を確認した。得られた組換えプラスミドをそれぞれpTK2897（GLBP-WT1(aa117〜439)）及びpTK2898（GLBP-WT1(aa117〜350)）と命名した。

Ｇ．宿主ビフィズス菌液の調製
Bifidobacterium longum 105-A（Matsumura H.ら，Biosci. Biotech. Biochem.，1997年，61巻，pp.1211-1212：東京大学名誉教授 光岡知足氏より供与）をGAM培地（日水製薬株式会社製）50mlに植菌し、アネロパック^(R)ケンキ（三菱ガス化学株式会社製）を用いて37℃にて培養した。培養中、波長600nmでの吸光度を測定し、吸光度が0.4〜0.8に達した時点で培養を止めた。培養終了後、高速遠心分離機で遠心分離（6000×g、10分間）し、菌体を集めた。集めた菌体に10％（v/v）グリセロール溶液10mlを加えて懸濁し、高速遠心分離機で遠心分離して、菌体を2〜3回洗浄した。

Ｈ．組換えプラスミドpTK2897及びpTK2898のビフィズス菌への形質転換によるGL-BP-WT1融合タンパク質表層提示ビフィズス菌の作製
上記Ｇ．で得た宿主ビフィズス菌液に、10％(v/v)グリセロール溶液500μlを加えて懸濁した。別のチューブに、この懸濁液200μlをとり、上記Ｆ．で得た組換えプラスミドpTK2897及びpTK2898をそれぞれ含む溶液5μlを加えて混合し、氷上に5分間放置した。次いで、エレクトロポレーション・キュベット0.2cm（Bio-Rad社製）に混合液を入れ、Gene Pulser Xcellエレクトロポレーションシステム（Bio-Rad社製）を用いて2kV、2.5μF、200Ωの条件でエレクトロポレーションを行った。エレクトロポレーション後直ちに、予め37℃にしておいたGAM培地0.8mlを加え、アネロパック^(R)ケンキを用いて37℃にて3時間培養した。次いで、スペクチノマイシン70μg/mlを含むGAM寒天培地（日水製薬株式会社製）に塗布し、アネロパック^(R)ケンキを用いて37℃にて培養し、形質転換ビフィズス菌を得た。得られた形質転換ビフィズス菌をスペクチノマイシン70μg/mlを含むGAM培地に植菌し、アネロパック^(R)ケンキを用いて37℃で培養した。培養終了後、1.5mlチューブに培養液を分注し、等量の50％(v/v)グリセロール溶液を加えて懸濁した。得られた懸濁液を-80℃で保存してフリーズストックを作製し、これを、GL-BP-WT1融合タンパク質表層提示ビフィズス菌（「形質転換ビフィズス菌」という場合がある）のマスターセルとした（それぞれTK2900（GLBP-WT1(aa117〜439)）及びTK2903（GLBP-WT1(aa117〜350)））。

図２は、組換えビフィズス菌の遺伝子（DNA）を、下記プライマーを用いてPCRにより増幅して得られた増幅断片の長さを電気泳動により確認した結果を示す図である。
フォワードプライマー410, 420：ACGATCCGCAACCAGGGCTACTC（配列番号１１）
リバースプライマー410：ggtgcgagagcttgaagtagcgc（配列番号１２）
リバースプライマー420：gtcgctgcgggcgaacttcttc（配列番号１３）
410とはB. longum 410であり、マウスWT1(aa170〜350)をコードするDNAを挿入したシャトルベクターで形質転換したビフィズス菌であり、上記TK2903（GLBP-WT1(aa117〜350)）に該当する。420とはB. longum 420であり、マウスWT1(aa117〜439)をコードするDNAを挿入したシャトルベクターで形質転換したビフィズス菌であり、上記TK2900（GLBP-WT1(aa117〜439)）に該当する。2012とはB. longum 2012であり、マウスWT1をコードするDNAが挿入されていないGLBP遺伝子のみを挿入したシャトルベクターで形質転換したビフィズス菌である。410と示すプライマーはマウスWT1(aa117〜350)をコードするDNAを増幅し、420と示すプライマーはマウスWT1(aa117〜439)をコードするDNAを増幅する。
図２の結果から、WT1をコードするDNAが確かに組換えビフィズス菌に導入されたことが確認された。

（実施例２：形質転換ビフィズス菌のGL-BP-WT1融合タンパク質表層提示の確認）
（１）上記実施例１で得た形質転換ビフィズス菌を高速遠心機で遠心し、菌体を集めた。集めた菌体にPBSを加えて懸濁し、高速遠心分離機での遠心分離による菌体洗浄を3回行った。菌体に、PBS、1MのTris-HCl（pH8.0）（株式会社ニッポンジーン製）、及びTriton X-100（和光純薬工業株式会社製）を含む溶液を加え、30分間氷上に放置した。この溶液に、等量の2×SDSゲル泳動緩衝液を加え、95℃で5分間放置して電気泳動用サンプルを得た。次いで、8％(w/v)アクリルアミドゲルを泳動装置（アトー株式会社製）にセットし、得られたサンプルをアプライし、分子量マーカーと共に20mAの電流にて1.5時間電気泳動を行った。電気泳動後のゲルをニトロセルロースメンブレン（アトー株式会社製）に重ね、ブロッティング装置（Bio-Rad社製）に20mAの電流をかけてブロッティングを行った。ブロッティング後、ニトロセルロースメンブレンを4％(w/v)スキムミルク（BD社製）を含む緩衝液であるTBS（株式会社ニッポンジーン製）に1時間浸漬してブロッキングを行った。ブロッキング後、ニトロセルロースメンブレンをTBSで2回洗浄した。洗浄後、ニトロセルロースメンブレンを、0.5％(w/v)の一次抗体（WT1 抗体(C-19): sc-192：SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY社製）を添加したTBSに1.5時間浸漬し、TBSで3回洗浄した。次いで、ニトロセルロースメンブレンを、0.5％(w/v)の二次抗体（goat anti-rabbit IgG-HRP: sc-2004：SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY社製）を添加したTBSに３時間浸漬した。次いで、ニトロセルロースメンブレンをTBSで3回洗浄し、1-Steptm NBT/BCIP plus Suppressorキット（PIERCE社製）を用いて遮光下で30分間発色させ、純水ですすいだ後、発色によりGL-BP-WT1融合タンパク質の表層発現を確認した。

ウエスタンブロッティングの結果を図３のＡに示した。図３のＡから明らかなように、B. longum 420にはWT1(aa117〜439)とGL-BPの融合タンパク質の分子量の合計に相当する82.9kDaに明確なバンドが認められた。したがって、形質転換ビフィズス菌（B. longum 420）が、GL-BP-WT1融合タンパク質を発現していることを確認した。

（２）培養した上記実施例１にて得た形質転換ビフィズス菌を高速遠心分離機で遠心分離し、菌体を集めた。集めた菌体に緩衝液であるPBS（株式会社ニッポンジーン製）を加えて懸濁し、高速遠心分離機での遠心分離により菌体洗浄を３回行った。次いで、1％(w/v)BSAを含むPBSに一次抗体（WT1 抗体(C-19): sc-192：SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY社製）を加え、これをビフィズス菌液に加えて懸濁し、37℃にて30分間放置した。30分間放置した菌液を高速遠心分離機で遠心分離し、菌体を集めた。集めた菌体にPBSを加えて懸濁し、高速遠心分離機での遠心分離による菌体洗浄を２回行った。次いで、1％(w/v)BSAを含むPBSに二次抗体Alexa Fluor^TM 488 Rabbit Anti-Mouse IgG antibody（Molecular Probes社製）を加え、これをビフィズス菌液に加えて懸濁し、37℃にて30分間放置した。30分間放置した菌液を、高速遠心分離機で遠心分離して菌体を集めた。集めた菌体にPBSを加えて懸濁し、高速遠心分離機での遠心分離による菌体洗浄を２回行った後、蛍光顕微鏡（KEYENCE社製）で観察した。

蛍光顕微鏡で観察した結果を図３のＢに示した。図３Ｂの左図は、上記実施例１で得た形質転換ビフィズス菌であるB. longum 420の蛍光顕微鏡写真であり、図３Ｂの右図は、B. longum 2012の蛍光顕微鏡写真である。蛍光顕微鏡写真から、B. longum 420の細胞表面にWT1が存在することを確認した。

（実施例３：形質転換ビフィズス菌のGL-BP-WT1融合タンパク質経口投与による細胞免疫応答誘導効果の確認）
上記実施例１で得たフリーズストックした形質転換ビフィズス菌をマウスに経口投与したときの細胞免疫応答誘導効果を確認した。実験プロトコールは、図４に示した。なお、Day0からDay29の観察期間中、B. longum 420投与群の平均体重は他の群と同様に推移し（図５）、B. longum 420投与による下痢、行動不良等の副作用は見られなかった。

（１）Day27にマウスから脾臓を回収して脾細胞を調製して培養し、脾細胞培養上清中の細胞性免疫系各種サイトカイン濃度を測定した。脾細胞を刺激する抗原として、マウスWT1タンパク質を発現するようにマウスWT1遺伝子の導入を行ったC1498マウス白血病細胞株（C1498-WT1細胞）、対照としてマウスWT1遺伝子を挿入していない空ベクターを導入したC1498細胞（C1498-Mock細胞）を用いた。
マイトマイシンC処理C1498-WT1細胞又はC1498-Mock細胞（各4×10⁴ cells/well）を用いて、4×10⁵ cells/wellのマウス脾細胞を96ウェルプレートで37℃、3日間刺激培養した（n=5）。培養後、細胞培養液を回収し、Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay（ELISA）法により各種サイトカイン（インターフェロンγ（IFN-γ）、インターロイキン2（IL-2）、腫瘍壊死因子α（TNF-α））の濃度を測定した。各種サイトカインの濃度の測定は、Mouse IFN-gamma Quantikine ELISA Kit (R&D Systems, Minneapolis, MN), Mouse TNF-alpha Quantikine (R&D Systems), 及び Mouse IL-2 ELISA Kit (Thermo Scientific, Waltham, MA)を用いて、キットのマニュアルに準拠した方法により行った。

結果を、図６に示す。B. longum 420投与群においては、C1498-WT1細胞による再刺激により、非刺激群と比較して、IFN-γ、IL-2、TNF-α産生量が有意に増加した（*：p<0.01）。B. longum 420投与群におけるIFN-γ産生量は、PBS投与群及びB. longum 2012投与群と比較し、有意に増加した（*：p<0.01）。従って、形質転換ビフィズス菌のGL-BP-WT1融合タンパク質経口投与により、WT1特異的抗腫瘍免疫に重要な各種サイトカイン産生がWT1タンパク質の刺激により増強されることが示された。

（２）上記（１）と同様にして調製した脾細胞について、細胞内サイトカイン染色(ICCS)を行い、CD4陽性T細胞又はCD8陽性T細胞中のサイトカイン産生T細胞の比率を確認した。
マウス脾細胞（2×10⁶ cells/well、n=5）を、2×10⁵ cells/wellのC1498-WT1細胞と混合し、24ウェルプレートにて37℃、5％ CO₂条件下で42時間培養した。ここでGolgiStop又はGolgiPlug（BD社）を各ウェルに添加し、さらに6時間培養した。細胞を回収し、BD/Cytofix/Cytoperm Plus Fixation/Permeabilization Kit（BD社）を用いて細胞内サイトカイン染色を行った。FITC標識抗CD3モノクローナル抗体、FITC標識抗CD8モノクローナル抗体、又はFITC標識抗CD4モノクローナル抗体を添加し、混合した。染色用バッファーで細胞を洗浄した。各種の抗サイトカイン抗体を細胞に加えて穏やかに懸濁した後、室温の暗所にて静置した。細胞を洗浄した後、染色用バッファーに再懸濁した。その後、細胞をフローサイトメーターを用いて付属の解析ソフトウェアを用いて解析した。具体的な方法はキットのマニュアルに準じて行った。

結果を図７に示す。B. longum 420投与群において、脾細胞中のIFN-γ、IL-2及びTNFを産生するCD4+T細胞、CD8+T細胞のいずれもが、他の投与群と比較して有意に増加した（*:p<0.05）。従って、形質転換ビフィズス菌のGL-BP-WT1融合タンパク質経口投与により、WT1特異的細胞性免疫に関与するサイトカインを産生するCD4⁺T細胞及びCD8⁺T細胞が増加することが示された。

（３）上記（１）と同様にして調製した脾細胞について、WT1テトラマーを用いて、CD8陽性T細胞中のWT1（Db126ペプチド）特異的CD8⁺T細胞の比率を確認した。
2×10⁶ cells/wellのマウス脾細胞（n=5）を2×10⁵ cells/wellのC1498-WT1細胞と混合し、24ウェルプレートにて37℃、5％ CO₂条件下で７日間培養した。培養１日目、３日目に20 IU/ml IL-2を添加し、CTLを誘導した。培養後、FITC標識抗CD3モノクローナル抗体、FITC標識抗CD8モノクローナル抗体を用いてCD8陽性T細胞を検出し、H-2Db WT1 Tetramer-RMFPNAPYL （MBL社） を用いてWT1ペプチド特異的CD8⁺T細胞（CTL）を検出した。細胞はフローサイトメーターを用いて付属の解析ソフトウェアを用いて解析した。

結果を図８に示す。形質転換ビフィズス菌が経口投与されることにより、当該ビフィズス菌の表層に発現するGL-BP-WT1融合タンパク質が腸管関連リンパ組織（GALT）に取り込まれ、GALT内の抗原提示細胞（APC）により適切なエピトープで処理される。さらにGALT内でプロセッシングされたペプチドはMHCクラスIIと一緒にAPCに提示され、当該ペプチドに特異的なT細胞受容体を持つCTLを誘導すると考えられる。H-2Db WT1 Tetramer-RMFPNAPYLは、WT1タンパク質に含まれるエピトープの１つであるCD8エピトープ（a.a.126-134：RMFPNAPYL（配列番号１９））に特異的なT細胞受容体に結合して蛍光を発することから、当該CD8エピトープに特異的なCTLの誘導を確認することができる。図８の結果から、B. longum 420投与群における脾細胞中のWT1テトラマー陽性CTLの比率が、他の投与群と比較して有意に増加したことがわかった（*;p<0.05）。したがって、経口投与した形質転換ビフィズス菌のGL-BP-WT1融合タンパクが適切に処理され、抗腫瘍効果に重要な役割を担うWT1ペプチド特異的CTLが誘導されることが示された。

（４）上記（１）と同様にして調製した脾細胞について、WT1特異的細胞傷害性T細胞（CTL）の活性の測定を行った。
3×10⁷ cells/wellのマウス脾細胞（n=5）を3×10⁶ cells/wellのC1498-WT1細胞と混合し、6ウェルプレートにて37℃、5％ CO₂条件下で６日間培養した。培養１日目、３日目に20 IU/ml IL-2を添加し、CTLを誘導した。脾細胞を回収し、96ウェルプレートにて脾細胞と、1×10⁴cells/ウェルのC1498-WT1細胞又はC1498-Mock細胞とを、20：1、10：1、又は5：1の比率で混合した後、37℃、5％CO₂条件下で8時間培養した。培養上清を回収し、Cytotox 96 Non-radioactive Citotoxicity Assay Kit（Promega社）を用いて、培養上清中の乳酸デヒドロゲナーゼ活性を測定し、これを基に細胞傷害活性を算出した。乳酸デヒドロゲナーゼは細胞質に存在する酵素で、通常は細胞膜を透過しないが、細胞膜が障害を受けると培地中に放出されることから、細胞傷害活性の指標として使用されている。

結果を図９に示す。全ての細胞混合比率において、B. longum 420投与群におけるWT1特異的な細胞傷害活性が有意に上昇した（p<0.01）。従って、形質転換ビフィズス菌のGL-BP-WT1融合タンパク質経口投与により、WT1特異的細胞傷害活性を有するCTLが誘導されることがわかった。

（実施例４：GL-BP-WT1表層提示ビフィズス菌の作製２）
Ａ．GL-BP遺伝子の単離、Ｂ．単離したGL-BP遺伝子を有するpMW118プラスミドの構築は、実施例１と同様の手法により行った。

Ｃ．WT1遺伝子の単離
ヒトWT1の117番目から439番目までのアミノ酸配列（配列番号１４）をコードするDNA（配列番号１５）を全合成した（フナコシ株式会社）。なお、合成の際にはビフィズス菌において使用頻度の高いコドンを用いた。また、N末端側にはXhoI認識配列（CTCGAG：配列番号５）を、C末端側には終止コドン及びそれに引き続いてSphI認識配列（GCATGC：配列番号６）を付加した。これをpUC18ベクターのSmaIサイトに導入し、プラスミドの構築を行った。ライゲーションには、DNA Ligation kit Ver. 2（タカラバイオ株式会社製）を用いた。構築したプラスミドを、ヒートショック法（42℃、30秒）にて大腸菌DH5α（タカラバイオ株式会社製）に導入し、アンピシリン100μg/mlを含むLB寒天培地（Difco社製）に塗布し、37℃にて一晩培養し、ヒトWT1タンパク質(117〜439)をコードするDNAを有するプラスミドを保持した形質転換大腸菌を得た。形質転換大腸菌からQuantum Prep Plasmid Miniprep Kit（Bio-Rad社製）を使用してプラスミドを抽出精製し、シーケンスによる配列確認を行った。

合成したヒトWT1遺伝子の配列（配列番号１５）
CCGTCCCAGGCGTCGTCGGGCCAGGCGAGGATGTTCCCGAACGCGCCCTACCTGCCCAGCTGCCTGGAGTCCCAGCCGGCGATCCGCAACCAGGGCTACTCCACCGTGACGTTCGACGGCACCCCGTCCTACGGCCACACGCCCAGCCACCACGCCGCCCAGTTCCCGAACCACAGCTTCAAGCACGAAGACCCCATGGGCCAGCAGGGCAGCCTCGGCGAACAGCAGTACAGCGTGCCGCCGCCGGTCTACGGCTGCCACACCCCGACCGACTCCTGCACGGGCTCCCAGGCCCTGCTCCTGCGTACGCCGTACTCCTCCGACAACCTCTACCAGATGACCTCCCAGCTGGAGTGCATGACCTGGAACCAGATGAACCTGGGCGCCACGCTGAAGGGAGTCGCCGCGGGGTCGTCGAGCTCCGTCAAGTGGACCGAAGGCCAGTCCAACCACTCCACCGGCTACGAGTCCGACAACCACACCACGCCGATCCTGTGCGGAGCCCAGTACCGCATCCACACGCACGGCGTCTTCCGCGGCATCCAGGACGTCCGGCGCGTCCCCGGCGTCGCGCCGACCCTGGTGCGGTCCGCCTCCGAGACCTCCGAGAAGCGCCCGTTCATGTGCGCCTACCCGGGCTGCAACAAGCGCTACTTCAAGCTCTCGCACCTGCAGATGCACTCCCGGAAGCACACCGGCGAGAAGCCGTACCAGTGCGACTTCAAGGACTGCGAACGCCGCTTCTCGCGCAGCGACCAGCTGAAGCGCCACCAGCGTAGGCACACCGGCGTGAAGCCCTTCCAGTGCAAGACCTGCCAGCGCAAGTTCTCCCGCAGCGACCACCTCAAGACGCACACCCGCACCCACACCGGCAAGACGTCCGAGAAGCCGTTCTCGTGCCGCTGGCCCAGCTGCCAGAAGAAGTTCGCCCGCAGCGACGAGCTCGTGCGCCACCACAACATGCACCAGTGAA

またヒトWT1の117番目から439番目までのアミノ酸配列において、HLA-A*2402拘束性CTLエピトープにM236Yの置換を導入したアミノ酸配列（配列番号１６）を有する変異型WT1タンパク質をコードするDNAを、上述と同様にして全合成して、組換えプラスミドを作製した。

合成したヒトWT1遺伝子の配列（配列番号１７）
CCGTCCCAGGCGTCGTCGGGCCAGGCGAGGATGTTCCCGAACGCGCCCTACCTGCCCAGCTGCCTGGAGTCCCAGCCGGCGATCCGCAACCAGGGCTACTCCACCGTGACGTTCGACGGCACCCCGTCCTACGGCCACACGCCCAGCCACCACGCCGCCCAGTTCCCGAACCACAGCTTCAAGCACGAAGACCCCATGGGCCAGCAGGGCAGCCTCGGCGAACAGCAGTACAGCGTGCCGCCGCCGGTCTACGGCTGCCACACCCCGACCGACTCCTGCACGGGCTCCCAGGCCCTGCTCCTGCGTACGCCGTACTCCTCCGACAACCTCTACCAGATGACCTCCCAGCTGGAGTGCTACACCTGGAACCAGATGAACCTGGGCGCCACGCTGAAGGGAGTCGCCGCGGGGTCGTCGAGCTCCGTCAAGTGGACCGAAGGCCAGTCCAACCACTCCACCGGCTACGAGTCCGACAACCACACCACGCCGATCCTGTGCGGAGCCCAGTACCGCATCCACACGCACGGCGTCTTCCGCGGCATCCAGGACGTCCGGCGCGTCCCCGGCGTCGCGCCGACCCTGGTGCGGTCCGCCTCCGAGACCTCCGAGAAGCGCCCGTTCATGTGCGCCTACCCGGGCTGCAACAAGCGCTACTTCAAGCTCTCGCACCTGCAGATGCACTCCCGGAAGCACACCGGCGAGAAGCCGTACCAGTGCGACTTCAAGGACTGCGAACGCCGCTTCTCGCGCAGCGACCAGCTGAAGCGCCACCAGCGTAGGCACACCGGCGTGAAGCCCTTCCAGTGCAAGACCTGCCAGCGCAAGTTCTCCCGCAGCGACCACCTCAAGACGCACACCCGCACCCACACCGGCAAGACGTCCGAGAAGCCGTTCTCGTGCCGCTGGCCCAGCTGCCAGAAGAAGTTCGCCCGCAGCGACGAGCTCGTGCGCCACCACAACATGCACCAGTGAA

Ｄ．GL-BP遺伝子の下流にWT1遺伝子を有するプラスミドの構築、Ｅ．大腸菌−ビフィズス菌シャトルベクターの構築、Ｆ．大腸菌−ビフィズス菌シャトルベクターpJW241へのGL-BP遺伝子とWT1遺伝子とが連結された遺伝子の組込み、Ｇ．宿主ビフィズス菌液の調製は実施例１と同様にして、２種類の形質転換ビフィズス菌を作製した。

図１０は、図１０右側に示す特異的プライマーを用いて、２種類の形質転換ビフィズス菌を遺伝子レベルで識別したことを示す図である。なお、430とはB. longum 430であり、ヒトWT1タンパク質(117〜439)をコードするDNAを挿入したシャトルベクターで形質転換したビフィズス菌である。440とはB. longum 440であり、アミノ酸置換M236YのあるヒトWT1タンパク質(117〜439)をコードするDNAを挿入したシャトルベクターで形質転換したビフィズス菌である。2012は、実施例１と同様にB. longum 2012であり、WT1をコードするDNAが挿入されていないGLBP遺伝子のみを挿入したシャトルベクターで形質転換したビフィズス菌である。430と示すプライマーはヒトWT1タンパク質(117〜439)をコードするDNAを増幅し、440と示すプライマーはアミノ酸置換M236YのあるヒトWT1タンパク質(117〜439)をコードするDNAを増幅する。

（実施例５：形質転換ビフィズス菌のGL-BP-WT1融合タンパク質表層提示の確認）
上記実施例４で得た形質転換ビフィズス菌について、実施例２と同様の手法により、GL-BP-WT1融合タンパク質の表層発現を確認した。

ウエスタンブロッティングの結果を図１１Ａ、蛍光免疫染色の結果を図１１Ｂに示した。図１１から明らかなように、B. longum 430及びB. longum 440には、B. longum 420と同様に、WT1とGL-BPの融合タンパク質の分子量の合計に相当する約82.5kDaのバンドが認められた。また、蛍光顕微鏡写真から、B. longum 430及びB. longum 440の細胞表面にWT1が存在することを確認した。したがって、形質転換ビフィズス菌が、GL-BP-WT1融合タンパク質を発現していることを確認した。

（参考例１：フローサイトメトリーによる前立腺がん細胞のPD-L1発現解析）
マウス前立腺がん細胞 TRAMP-C2株を6 well plateに5×10⁵ 個/wellで播種し、37℃、5%CO₂の条件下で24時間培養後、PD-L1発現誘導作用を有するIFN-γを0、5、10、20 ng/mL添加した培地に交換し、37℃、5%CO₂の条件下で48時間培養した。PBSにて細胞を洗浄し、細胞を回収後Purified anti-mouse CD16/32（BioLegend）を用いてブロッキングを10分間行った。PD-L1の検出は、FITC標識抗PD-L1モノクローナル抗体（PE anti-mouse CD274; BioLegend）を用いて30分反応させ、PBSで洗浄後、フローサイトメーター（Guava easycyte;メルクミリポア）を用いて行った。データ解析はInCyteソフトウェアにて行った。具体的な方法はキットのマニュアルに準じて行った。

結果を図１２に示す。マウス前立腺がん細胞TRAMP-C2株では、IFN-γの濃度の増加に依存して、PD-L1の発現量が増大することが確認された。IFN-γ添加が0ng/mlで0.24%、5ng/mlで65.49%、10ng/mlで91.92%、20ng/mlで91.31%の細胞でPD-L1を検出した。

（実施例６：形質転換ビフィズス菌と免疫チェックポイント阻害剤との併用による抗腫瘍効果の確認）
C57BL/6Nマウス（6-8週齢、雄、n=45）に 2×10⁶個/200μL RPMI-1640/マトリゲルで、マウス前立腺がん細胞TRAMP-C2を皮下接種して移植した。腫瘍形成確認後、マウスを次の７つの投与群に分類し、投与を開始した。
・PBS投与群 (n=9)
・B. longum 2012投与群 (n=8)
・B. longum 2012＋抗PD1抗体投与群 (n=5)
・B. longum 2012＋Isotype control投与群 (n=5)
・B. longum 420投与群 (n=8)
・B. longum 420＋抗PD1抗体投与群 (n=5)
・B. longum 420＋Isotype control投与群 (n=5)

投与スケジュールについて説明する（図１３）。各ビフィズス菌投与液1×10⁹ CFU/100 μL 又はPBS 100 μLを、ゾンデを用いてマウスに週５回経口投与した。経口投与開始から２週間後に、抗PD1抗体（Armenian hamster IgG2（clone: AP-MAB0839, Angioprotepmie社, Boston, MA））又はIsotype control（Hamster IgG2 isotype control（BioLegend 社））の併用を開始した。抗PD1抗体又はIsotype controlは、100 μg /dose in 100μL PBSで、週２回、合計５回腹腔内投与した。移植した日をDay0とし、腫瘍の大きさを確認した。

各投与群における腫瘍の大きさの経日変化を、図１４及び図１５に示す。図中、PBS投与群を「PBS」、B. longum 2012投与群を「B. longum 2012」、B. longum 2012＋抗PD1抗体投与群を「B. longum 2012 PD1」、B. longum 2012＋Isotype control投与群を「B. longum 2012 IC」、B. longum 420投与群を「B. longum 420」、B. longum 420＋抗PD1抗体投与群を「B. longum 420 PD1」、B. longum 420＋Isotype control投与群を「B. longum 420 IC」と表した。図１５は、図１４のうち、B. longum 420投与群、B. longum 420＋抗PD1抗体投与群、B. longum 420＋抗PD1抗体投与群の結果を抜粋したものである。

B. longum 420を投与した群はすべて、B. longum 420を投与していない群（PBS投与群、B. longum 2012投与群、B. longum 2012＋抗PD1抗体投与群、B. longum 2012＋Isotype control投与群）に対して有意な抗腫瘍効果を示した（p<0.01）（図１４）。また、Day56（図１５のグラフの最終日）に、B. longum 420投与群、B. longum 420＋抗PD1抗体投与群、B. longum 420＋Isotype control投与群の３群により比較を行ったところ、B. longum 420＋抗PD1抗体投与群が、B. longum 420単独投与群に対して有意に腫瘍が減少していることが確認された（ｐ＜0.05）（図１５）。従って、本発明の形質転換ビフィズス菌と抗PD1抗体の顕著な併用効果が確認された。

（実施例７：形質転換ビフィズス菌と免疫チェックポイント阻害剤との併用による抗腫瘍効果の確認）
C57BL/6Nマウス（6-8週齢、雄）に 2×10⁶個/200μL RPMI-1640/マトリゲルで、マウス前立腺がん細胞TRAMP-C2を皮下接種して移植した。腫瘍形成確認後、合計56匹のマウスを次の７つの投与群に分類し（各群7匹）、投与を開始した。
・PBS投与群（100μL）
・B. longum 2012（1×10⁹ CFU/100 μL）投与群
・B. longum 2012＋抗PD-1抗体（250μg; InvivoPlus anti-mouse PD-1: RMP1-14）投与群
・B. longum 2012＋Isotype control（250μg; InvivoPlus Rat IgG2a Isotype Control: 2A3）投与群
・B. longum 420（1×10⁹ CFU/100 μL）投与群
・B. longum 420＋抗PD-1 抗体（250μg; InvivoPlus anti-mouse PD-1: RMP1-14）投与群
・B. longum 420＋Isotype control（250μg; InvivoPlus Rat IgG2a Isotype Control: 2A3）投与群

投与スケジュールについて説明する（図１６）。各ビフィズス菌投与液1×10⁹ CFU/100 μL 又はPBS 100 μLを、ゾンデを用いてマウスに週５回経口投与した。経口投与開始から２週間後に、抗PD1抗体（InvivoPlus anti-mouse PD-1: RMP1-14（Bio X Cell社））又はIsotype control（InvivoPlus Rat IgG2a Isotype Control: 2A3（Bio X Cell社））の併用を開始した。抗PD1抗体又はIsotype controlは、250μg /dose in 100μL PBSで、週２回、合計５回腹腔内投与した。移植した日をDay0とし、腫瘍の大きさを確認した。

各投与群における、移植80日までの腫瘍の大きさの経日変化（腫瘍曲線）を図１７Ａに示し、移植100日目までのマウスの生存曲線を図１７Ｂに示す。図中、PBS投与群を「PBS」、B. longum 2012投与群を「B. longum 2012」、B. longum 2012＋抗PD1抗体投与群を「B. longum 2012 PD1」、B. longum 2012＋Isotype control投与群を「B. longum 2012 IC」、B. longum 420投与群を「B. longum 420」、B. longum 420＋抗PD1抗体投与群を「B. longum 420 PD1」、B. longum 420＋Isotype control投与群を「B. longum 420 IC」と表した。上記において420は、B. longum 420であり、マウスWT1(aa117〜439)をコードするDNAを挿入したシャトルベクターで形質転換したビフィズス菌であり、2012は、B. longum 2012であり、マウスWT1をコードするDNAが挿入されていないGLBP遺伝子のみを挿入したシャトルベクターで形質転換したビフィズス菌である（実施例１参照）。

B. longum 420を投与した群はすべて、B. longum 420を投与していない群（PBS投与群、B. longum 2012投与群、B. longum 2012＋抗PD1抗体投与群、B. longum 2012＋Isotype control投与群）に対して有意な抗腫瘍効果を示し、B. longum 420＋抗PD1抗体投与群が、B. longum 420単独投与群に対して有意に腫瘍が減少していることが確認された（図１７ＡＢ）。従って、本発明の形質転換ビフィズス菌と抗PD1抗体の顕著な併用効果が確認された。

以上詳述したように、本発明によれば、WT1タンパク質を発現・提示しうる形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤の併用により、優れた抗腫瘍効果を発揮することができる。本発明の形質転換ビフィズス菌と免疫抑制阻害剤の併用を継続することにより、がんを消滅させることも可能と考えられる。また本発明の形質転換ビフィズス菌は、安全性が高い経口ワクチンとして使用することができることから、患者の負担を最小限におさえることができる。さらに本発明の併用療法は、HLAの拘束性は低いことから、様々なHLAタイプの患者に対して広く適用可能である。

Claims (13)

1. ＷＴ１タンパク質をコードするＤＮＡと、ビフィズス菌由来のＧＮＢ／ＬＮＢ基質結合膜タンパク質をコードするＤＮＡを含み、ビフィズス菌表層に抗原としてのＷＴ１タンパク質を提示するよう設計された形質転換ビフィズス菌を含み、抗ＰＤ１抗体又は抗ＰＤ−Ｌ１抗体のいずれかの免疫チェックポイント阻害剤と併用して使用するための、固形がんに対する治療剤としての抗腫瘍剤。
2. 免疫チェックポイント阻害剤が抗ＰＤ１抗体である、請求項１に記載の抗腫瘍剤。
3. 抗腫瘍剤が、前立腺がんに対する治療剤である、請求項１又は２に記載の抗腫瘍剤。
4. 形質転換ビフィズス菌の細胞表層に提示されるタンパク質が、ＷＴ１タンパク質とＧＮＢ／ＬＮＢ基質結合膜タンパク質との融合タンパク質（ＧＬ−ＢＰ−ＷＴ１融合タンパク質）である、請求項１〜３のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
5. 形質転換ビフィズス菌の細胞表層に提示されるＷＴ１タンパク質が、配列番号１、配列番号１４、および配列番号１６に示されるアミノ酸配列のうちいずれかで特定されるタンパク質である、請求項１〜４のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
6. 形質転換ビフィズス菌の細胞表層に提示されるＷＴ１タンパク質をコードするＤＮＡが、以下の１）又は２）のいずれかである、請求項１〜５のいずれかに記載の抗腫瘍剤：
   １）配列番号２、配列番号１５および配列番号１７で特定されるいずれかの塩基配列からなるＤＮＡ；
   ２）配列番号１、配列番号１４、および配列番号１６に示されるアミノ酸配列のうちいずれかで特定されるアミノ酸配列情報に基づいて得られるタンパク質をコードするＤＮＡ。
7. 形質転換ビフィズス菌が、ＷＴ１タンパク質をコードするＤＮＡとビフィズス菌由来のＧＮＢ／ＬＮＢ基質結合膜タンパク質をコードするＤＮＡの間に、アジュバンド機能を有するタンパク質をコードするＤＮＡを含む、請求項１〜６のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
8. ビフィズス菌表層に抗原としてのＷＴ１タンパク質を提示するよう設計された形質転換ビフィズス菌が、ＷＴ１タンパク質が発現・提示された形質転換ビフィズス菌である、請求項１〜７のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
9. 形質転換ビフィズス菌が、腫瘍ワクチン製剤の有効成分である、請求項１〜８のいずれかに記載の抗腫瘍剤。
10. 腫瘍ワクチン製剤の有効成分である形質転換ビフィズス菌が、不活化された形質転換ビフィズス菌である、請求項９に記載の抗腫瘍剤。
11. 腫瘍ワクチン製剤が経口製剤である、請求項９又は１０に記載の抗腫瘍剤。
12. ＷＴ１タンパク質が発現・提示された形質転換ビフィズス菌を有効成分として含み、抗ＰＤ１抗体又は抗ＰＤ−Ｌ１抗体のいずれかの免疫チェックポイント阻害剤と併用して使用するための、固形がんに対する治療剤としての抗腫瘍剤。
13. 免疫チェックポイント阻害剤が、抗ＰＤ１抗体である、請求項１２に記載の抗腫瘍剤。