JP6798601B2 - 農園芸用組成物及び植物の栽培方法 - Google Patents
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Description
(1)0.5mM〜75mMのイソロイシンを含有する溶液を、果菜、果樹若しくは穀物植物に散布することを含む、植物の栽培方法。
(2)イソロイシンがL−イソロイシンである、前記方法。
(3)前記イソロイシンを含有する溶液が、精製イソロイシン、イソロイシン発酵液もしくは発酵副生物、又はイソロイシンを含むそれらの分画物を含有する溶液である、前記方法。
(4)前記イソロイシン含有溶液の散布により、開花促進、着果促進、着果数向上、果実の着色促進、必須アミノ酸及び/又はγ-アミノ酪酸含量向上、カロテノイド合成促進、及び、抗酸化作用向上から選ばれる一つ以上の作用が奏される、前記方法。
(5)前記溶液を、果菜、又は果樹に散布する、前記方法。
(6)植物がナス科、ブドウ科、又はバラ科に属する植物である、前記方法。
(7)植物がトマト、トウガラシ、ブドウ、又はリンゴである、前記方法。
(8)前記溶液を、物の葉面及び/又は果実に散布する、前記方法。
(9)0.5mM〜75mMのイソロイシンを含有する溶液を、収穫された果実に散布する、果実の追熟を促進させる方法。
(10)イソロイシンがL−イソロイシンである、前記追熟促進方法。
(11)前記イソロイシンを含有する溶液が、精製イソロイシン、イソロイシン発酵液もしくは発酵副生物、又はイソロイシンを含むそれらの分画物を含有する溶液である、前記追熟促進方法。
(12)前記イソロイシン含有溶液の散布により、果実の着色促進、必須アミノ酸及び/又はγ-アミノ酪酸含量向上、カロテノイド合成促進、及び、抗酸化作用向上から選ばれる一つ以上の作用が奏される、前記追熟促進方法。
(13)果実が、ナス科、ブドウ科、又はバラ科に属する植物の果実である、前記追熟促進方法。
(14)果実がトマト、ブドウ、又はリンゴである、前記追熟促進方法。
(15)イソロイシンを有効成分として含み、イソロイシン濃度が0.5mM〜75mMの溶液として果菜、果樹若しくは穀物植物又は収穫されたそれらの果実に散布される、農園芸用組成物。
本発明の農園芸用組成物は、イソロイシンを有効成分として含む。イソロイシンはL−イソロイシンであることが好ましい。以下、本明細書において、アミノ酸は、特記しない限りL−体である。イソロイシンは、精製又は粗精製されたものであってもよく、イソロイシンを含む培養物(発酵液)もしくは発酵副生物、又はイソロイシンを含むそれらの分画物であってもよい。
の成分を含んでいてもよい。このような成分としては、担体、pH調整剤、肥効を高めるためのミネラル等の肥料成分、農薬成分、バインダー、増量剤等が挙げられる。これらの成分としては、本発明の効果を損なわない限り、通常農薬、肥料等に用いられている成分を用いることができる。
また、農園芸用組成物は、イソロイシン以外のアミノ酸を含んでいてもよい。
農園芸用組成物の施用時のイソロイシン濃度は、通常0.5mM〜75mM、好ましくは0.5mM〜50.0mM、より好ましくは1.0mM〜20.0mM、更に好ましくは5.0mM〜10.0mMである。農園芸用組成物中のイソロイシン含量は特に限定されないが、乾燥物換算で1重量%以上、好ましくは50%以上、さらに好ましくは70%以上であり、塩害など不純物による障害の回避及びイソロイシンの効果の顕在化の観点から、この範囲が好ましい。
果樹の品種は特に制限されないが、例えば、ブドウとしては、カベルネ・ソーヴィニヨン、シャルドネ、テンプラニーリョ、ピノ・ノワール、マスカット、甲州、甲斐路、巨峰、ピオーネ等が挙げられる。
リンゴとしてはつがる、ふじ、ゴールデンデリシャス、紅玉、国光、陸奥、王林、ジョナゴールド等が挙げられる。
0.5mM〜75mMのイソロイシンを含有する溶液は、本発明の農園芸用組成物を必要に応じて溶媒に溶解し、希釈することにより調製することができる。
本発明の農園芸用組成物を散布する植物体としては、葉又は果実が好ましい。特に好ましいのは葉面散布である。葉面散布は、少なくとも葉面に散布されればよいことを意味し、葉面と共に他の部位にも散布されてもよい。果実についても同様である。
また、農園芸用組成物は、収穫した果実に散布してもよい。果実に農園芸用組成物を散
布することによって、追熟を促進することができる。追熟の促進には、着色促進、リコピン含量増加、糖度増加、及びグルタミン酸などのアミノ酸含量の増加が含まれる。
また、本発明の他の形態は、本発明の農園芸用組成物を収穫した果実に施用する、果実の追熟を促進させる方法である。
含量が向上するアミノ酸としては、必須アミノ酸が挙げられる。必須アミノ酸としては、トリプトファン、リジン、スレオニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、及び、ヒスチジンの少なくとも1種が挙げられる。
収穫した果実に施用する場合は、イソロイシンの量として、通常、0.002g〜0.3g/g(果実)、好ましくは0.002g〜0.2g/g(果実)、より好ましくは0.004g〜0.08g/g(果実)、更に好ましくは0.02g〜0.04g/g(果実)であることが好ましい。
ミニトマト(マイクロトム(Micro-Tom))の種子3粒を、培養土を入れた直径10.5 cmのスリットポット(口径10.5cm×高さ8.8 cm)に播き、バイオトロン中で、温度23℃、明期14時間(6時〜20時)、暗期10時間(20時〜6時)で栽培した。培養土は、くみあいニッピ園芸培土1号(日本肥糧株式会社)とバーミキュライトを3:1(体積比)で混合したものを使用した。
図1に、植物の開花と着果の様子を示す。Ileを散布したトマトは、Con.に比べて開花と着果が早く、開花数と着果数も多かった。
トマトの着果後に、5日毎にオレンジ又は赤色に着色した果実の個数を調べた結果を図2に示す。Con.と比べてIleを散布したトマトの果実は着色が早く開始し、同時期における着色した果実の個数も多かった。これらの結果により、Ileの散布はトマト果実の着色を促進する効果があることが示され、トマトの生育促進ができた。
トマト果実の着果数の経時的な推移を調べた結果を図3に示す。播種から82日後にトマトの果実を収穫した。Ileを散布したトマトは、収穫した果実の個数がCon.に比べて20%増加した。これは、Ile散布により、トマトの開花数及び着果率が増加した結果であると考えられ、トマトの収穫量も向上した。
トマト(桃太郎ファイト)の種子3粒を、実施例1と同様にして、培養土を入れたスリットポットに播き、栽培を行った。但し、栽培は温室中(昼温度25℃(6時〜20時)、夜温度15度(20時〜6時))で行った。培養土および施肥は実施例1と同様とした。
図4に、各溶液を散布したトマト植物の第一着果日(初めて実をつけた日)を示す。Ile、GluNa、Urea、水、Pheを散布したトマトの順に着果した。水を散布したトマトでは、播種してから69日後に着果したのに対して、Ileを散布したトマトは播種から55日後に着果した。GluNaとUreaはそれぞれ播種から56日と63日後で、水(Con.)より早かった。一方、Pheを散布したトマトの着果は最も遅く、播種から83日後だった。このように、Ile散布が最もトマトの着果を早めた。
トマトの播種107日後に、オレンジ又は赤色に着色した果実数を、図5aに示した。Ile散布は4個、Urea及びGluNa散布はそれぞれ1個、水(Con.)及びPhe散布はゼロであり、Ileを散布したトマトは着色した果実数が最も多かった。また、水(Con.)とIleを散布したトマトで、開花日が同じ花からできた果実の色を比較したところ、水散布の方が緑色で、Ile散布の方が既に赤色になって、早く色づいた(図5b)。このように、Ileによる果実着色の促進効果は、桃太郎トマトでも認められた。
播種から3ヶ月栽培後にトマト果実を収穫し、その数を図6に示す。収穫された果実は、水(Con.)では8個、Ileでは16個、Pheでは8個、Ureaでは10個、GluNaでは14個であった。このように、Ile散布によりトマトの着果数を増加させる効果は、桃太郎トマトでも認められ、収穫量も向上した。
ミニトマト(サンチェリーピュア、(トキタ種苗(株)))の種子3粒を、実施例1と同様にして、培養土を入れたスリットポットに播き、栽培を行った。但し、栽培は実施例2と同様に温室中で行った。培養土および施肥は実施例1と同様とした。
図7に、着色した果実の個数を示す。着色した果実の個数は、Ile、Pro、Con.を散布したトマトの順に多かった。本実施例でも、Ile散布によるトマト果実の着色促進効果が確認された。
トマト着果数を経時的に調べた結果を図8に示す。初期段階では、果実の個数はPro、Ile、水を散布したトマトの順に多かったが、途中からIleを散布したトマトの果実数が増加し、Proを散布したトマトの果実数を超えた。最終の収穫量は水(Con.)と比べて、Ile散布では果実の個数が16%増加し、Pro散布では9%増加した。
水、Ile、又はProを散布したミニトマトから、それぞれ成熟したトマト果実を採って、アミノ酸の含量分析を行った。1試験区毎に、1株の植物の2段目の花房から2個ずつ、計8個の果実を採った。各々の果実から果汁を搾り出し、その果汁を0.02 NのHClで10倍希釈し、フィルターろ過を行った。得られたろ過液中のアミノ酸を測定した。アミノ酸の測定はL-8800高速アミノ酸分析計(Hitachi)を用い、当機器のマニュアルに従って行った
。各果汁のアミノ酸の量(μmol/mL)を計算し、8個の果実の平均値を、各試験区のアミノ酸量とした。
前記iii)と同様にして、各試験区のミニトマトから成熟したトマト果実を採り、各々の果実から果汁を搾り出した。各果汁中のグルコース、フルクトース、及び酸度を分析した。グルコース及びフルクトースの分析は、果汁の20倍希釈液について、食品分析試薬F-Kit(Saccharose(Sucrose)/D-Glucose/D-Fructose Kit(Roche))、及びDU800 Spectrophotometer(Beckman Coulter)を用い、同キット及び機器のマニュアルに従って行った。酸度分析は、ポケット酸度計(PAL-AC1、ATAGO)を用いて測定した。
また、酸度は、Proを散布したトマトでやや増加した。
トマト果実からポリフェノールを抽出して、それらの抗酸化作用を調べた。
前記iii)と同様にして、各試験区のミニトマトから成熟したトマト果実を採った。果実を液体窒素で凍結後に粉砕し、0.5 gの粉末を2 mLのチューブに入れ、1.0mLの70%メタノールで2回抽出した。抽出液から、遠心エバポレーターを用いて液体を完全に蒸発させた、残渣を500μLの70%メタノールに溶解させ、サンプルとした。そのサンプルの抗酸化作用を、Lamien-Meda, Aら(Molecules, 2008, 13(3):581-594)を参照し、DPPH(2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl)ラジカル法を使用して、フリーラジカル消去能を測定した。50μLのサンプルに700μLのメタノール、及び、750μLの0.02mg/mLのDPPH (ALFA AESAR)を加えて、よく混合した。その後、15分間室温でインキュベートし、517nmの吸光度を測定した。サンプルの代わりに0、0.2、1、2、及び4μg/mLのカテキン(Catechin)を用いて検量線を作成した。測定されたフリーラジカル消去能を、サンプル100g(新鮮重)中に同等なフリーラジカルの消去能を有するカテキンに相当する量(mg)として換算した。結果を図9に示す。その結果、Ileを散布したトマト果実は、水(Con.)又はProを散布したトマト果実よりも抗酸化作用が増加した。
Proを散布したトマトの葉には、葉焼けの黒い斑点が現れたが、Ileを散布したトマトは葉焼けが見られなかった(図10)。
以上から、早期にトマトの収穫量を向上させること及び品質を向上させることができることがわかった。
実施例3と同様にして栽培したトマトの同段の花房から採ったほぼ同じの大きさの未成熟の果実に10mMのイソロイシン水溶液(Ile)を散布して、果実の着色を調査した。
また、残りの3個の果実(図11b)については、試験開始27日後に、果実のカロテノイドの含量を、以下の方法により測定した。種子を取り出したトマトの果実を液体窒素で凍結し、乳鉢で粉砕した。粉砕したサンプル0.5 mgを2mLのチューブに入れ、1 mLのクロロホルムを加え、シェーカー(Micro& shaker, IUCHI)で10 分振動しながら抽出し
た。5分遠心分離し(8000 rpm)、下層のクロロホルム層を新しいチューブに移した。残ったチューブ中に再び0.5 mLのクロロホルムを加えて同様に抽出し、クロロホルム層を完全に取り出して上記のクロロホルム抽出液のチューブに移した。次に得られた抽出液から遠心エバポレーターを用いてクロロホルムを蒸発させた。その後、0.5 mLのクロロホルムを加えて溶解したサンプル液を用いカロテノイドを分析した。カロテノイドの測定は、抽出サンプルをクロロホルムで100倍希釈し、DU800 Spectrophotometer(Beckman Coulter)を用いてカロテノイドの吸光スペクトル(480 nm)における吸光度を測定した。結果を図11bに示す。
実施例3と同様にして栽培したミニトマト植物(サンチェリーピュア)に10 mMのイソロイシン水溶液(Ile)と水(Con.)を葉面散布して、ジャスモン酸に関連する遺伝子の発現を分析した。葉面散布3時間後に同じ部位の葉を採集し、SV Total RNA Isolation
System TM(Promega)を用いて、そのキットのマニュアルに従ってRNAを分離した。ReverTra Ace TM qPCR RT Master Mix(TOYOBO)を用いて、抽出したRNAから一次鎖cDNAを合成した。
ジャスモン酸の生合成経路の上流にある13-リポキシゲナーゼ(LOX)遺伝子、及び、JAとIleからJA-Ileを合成する遺伝子(JASMONATE RESISTANT 1(JAR1))の発現を分析した。上記のcDNAを鋳型とし、表3に示したプライマーを用いてリアルタイムPCRを行い、遺伝子の発現量はアクチン(Actin)遺伝子に対する相対的な発現量で表した。結果を図12に示す。
水(Con.)と比べて、Ileを散布したトマトの葉のLOX遺伝子とJAR1遺伝子の発現が有意に上昇した。
前記のcDNAを鋳型とする、ジャスモン酸の応答遺伝子Protease Inhibitor(PI)とMYC2のリアルタイムPCR解析の結果を図13に示す。使用したプライマーは表3に示す。Ile散布により、PI遺伝子及びMYC2遺伝子ともに発現が上昇した。
ミニトマト植物に10 mMのイソロイシン水溶液(Ile)とCon.(水)を葉面散布し、24時間後に葉から分離したRNAを用いて、カロテノイドの生合成に関与する遺伝子、フィトエンシンターゼ(Phytoene synthase、Psy)、フィトエンデサチュラーゼ(Phytoene desaturase、Pds)とζ-カロテンデサチュラーゼ(ζ-carotene desaturase、Zds)の発現を解析した。RNAの抽出、cDNAの合成、及びリアルタイムPCRの解析は、前記と同様にして行った。用いたプライマーは表3に示す。
結果を図14に示す。Ileを散布したトマトでは、Psy、Pds及びZds遺伝子の発現が上昇した。
実施例3と同様にしてミニトマトを栽培し、植物ごとに1 mM、4 mM、7 mM、又は10 mMのイソロイシン水溶液(Ile)20mLを葉面及び果実に散布した。1週間後に再度Ileを同様に散布し、その3時間後に植物から葉を採って、実施例5と同様にしてLOX、JAR1、PIとMYC2の発現を分析した。使用したプライマーは表3に示す。
結果を図15に示す。各遺伝子の発現は、ほぼIleの濃度に依存して増加した。
実施例1と同様な栽培方法でバイオトロン室にトマト(品種:キャデイー、トキタ種苗(株))を栽培した。播種後3週間の植物の葉面に水(Con.)、0.01mM、0.1mM、50mM、又は100mMのイソロイシン水溶液(Ile)を3mL散布して、第2本葉からサンプリングし、実施例5と同様にしてLOX、JAR1、PIとMYC2の発現を分析した。
結果を図16に示す。50mMのIleの散布で各遺伝子の発現が促進された。
実施例6の結果と併せて、Ile濃度は0.5mM以上、75mM以下が好ましいと考えられる。
トマトと同じナス科に属するトウガラシ(品種:アナハイム(Anaheim))に、10 mMのイソロイシン水溶液(Ile)を散布して遺伝子発現解析を行った。実施例2と同様の方法で、ビニルハウス中でトウガラシを栽培した。
1週間に1回Ileを散布し、2回目に散布した後にトウガラシ植物から葉を採って、実施例5と同様な方法でRNA抽出、cDNA合成、及びリアルタイムPCRを行い、遺伝子の発現を分析した。LOX遺伝子については、2回目の散布3時間後に採った葉を用い、Psy遺伝子については2回目の散布から24時間後に採った葉を用いて、各々発現を解析した。使用したプライマーは表3に示す。
トマトと同じナス科植物のトウガラシでも、Ile散布によりジャスモン酸経路とカロテノイド経路が活性化されたことから、Ile散布は少なくともナス科植物全般に同様な効果が期待できる。
試験には、温室で栽培した、12段目の果実が出た成長後半の中玉トマト(品種「つくつく枝」)を使用した。互いに近くの場所にある12株のトマト植物を選び、6株は無処理区(対照)とし、残りの6株はIle処理区とした。試験対象の果実として、無処理区とイソロイシン(Ile)処理区の植物の第9段目と第10段目からそれぞれ10房のほぼ未着色の果実を選んで標識した。Ile処理区には対象果実とその植物の全体の葉にIle水溶液(Ile 3 mM;展着剤(スカッシュ0.2%、丸和バイオケミカル)を散布し、無処理区には散布しなかった。6株の植物のトータルの散布量は600mlであった。処理後、11日、8日と27日にトマト果実の着色を確認し房ごとに収穫を行った。
り、Ile処理区では総個数の86個の中に8個の未成熟の果実があり、Ile散布は未着色の果実数を減少させた。
イソロイシン(Ile)発酵副生液を散布したトウガラシ(ピーマン、品種:フルーピーレッドEX)におけるジャスモン酸経路に関わるLOX遺伝子の発現を調べた。Ile発酵副生液(Ile濃度2.34%(W/V))の希釈液をピーマンの葉に散布し、実施例5と同様にしてLOX遺伝子の発現を調べた。Ile発酵副生液の散布濃度は3.8mMであった。結果を図19に示す。Ile発酵副生液でも、同様の濃度のIleと同様なLOX遺伝子発現誘導が見られた。
(1)イソロイシン及び各種アミノ酸のブドウ培養細胞着色に対する効果
ヨーロッパブドウ(Vitis vinifera L.)由来の理化学研究所バイオリソースセンター保有の細胞株(VR, 管理番号RPC00003)をMS寒天培地上で継代培養した。5 mMの各種アミノ酸溶液を含むMS寒天培地に継代培養したVRカルスを移植し、培養した。ポジティブコントロールには、着色促進効果が知られているアブシジン酸(ABA)100 μMを用いた(Jeong et al. Plant Science, 167:247-252, 2004)。移植後5日に、カルスを凍結乾燥し、破砕し、1% HCl/MeOH溶液を用いてアントシアニンを抽出した。抽出液の530nmにおける吸光度を測定し、シアニジン-3-グルコシドを標準物質としてアントシアニンの含量を測定した。ポジティブコントロール処理区のカルスから抽出されたアントシアニンの含量を100%とし、各アミノ酸処理区のカルスで蓄積されたアントシアニンの含量の相対値を測定した。
結果を表4に示す。イソロイシン(Ile)処理したカルスが最もアントシアニン含量が高かった。
試験には、試験畑で栽培している、べレゾーン期に入ったカベルネ・ソービニオンを使用した。1株あたり8房として、2株から合計16房のブドウを選び、それらに対照(0.1%アプローチBI、花王)、ポジテイブコントロール(1g/Lアブシジン酸(ABA)+0.1%アプローチBI)、又は、10mMイソロイシン(Ile)+0.1%アプローチBIを、1房あたりおよそ6.25mL散布した。サンプルは、各々4房ずつ、4回に分けて回収した。果皮のアントシアニンは、果皮から水:アセトン=1:2溶液で抽出
し、前記と同様にしてアントシアニン含量を測定した。結果を図21に示す。Ileでブド
ウ果実を処理すると、果皮のアントシアニン含量が高まることが示された。
成熟直前(着色開始前)のリンゴ(品種「つがる」)を収穫し、水道水、続いて蒸留水で洗浄した後、対照(水)と各濃度のイソロイシン(Ile)水溶液に15分浸漬させた。各処理液には、アプローチBI(花王)を0.1%添加した。処理区は以下のとおりである。
i)対照区(水)、
ii) 1mMIle
iii) 5mMIle
iv)10mMIle
v)0.4mMメチルジャスモン酸(MeJA)
vi)10mMIle + 1mM amisoft TM(アニオン界面活性剤ココイルグルタミン酸ナトリウム)
リンゴ果皮色は、アントシアニン含量を測定することで評価した。各処理区の果実から採取した0.5gの果皮を、5mLの2%蟻酸に4℃、24時間浸漬してアントシアニンを抽出した。その抽出液中のアントシアニンを液体クロマトグラフィーで解析した。リンゴのアントシアニンは、ほとんどがシアニジンガラクトシドであるので、アントシアニン濃度は、シアニジンガラクトシド濃度として算出した。
本発明の農園芸用組成物は、収穫した果実の着色を促進することができる。
以上から、本発明の農園芸用組成物は、早期に植物の収穫量を向上させること及び/又は品質を向上させることができる。
Claims (17)
- 0.5mM〜75mMのイソロイシンを含有する溶液を植物に散布することを含む、植物の栽培方法であって、
植物がナス科、ブドウ科、若しくはバラ科に属する果菜又は果樹であり、
ただし、前記溶液がアルファルファ緑葉脱タンパク質上澄液と酢酸を含有する組成物である場合は除く、方法。 - 0.5mM〜75mMのイソロイシンを含有する溶液を植物に散布することを含む、特定の作用を得るための方法であって、
植物がナス科、ブドウ科、若しくはバラ科に属する果菜又は果樹であり、
植物がナス科に属する植物である場合は、前記特定の作用が開花促進、着果促進、着果数向上、果実の着色促進、必須アミノ酸及び/又はγ-アミノ酪酸含量向上、カロテノイド合成促進、及び、抗酸化作用向上から選ばれる一つ以上の作用であり、
植物がブドウ科に属する植物である場合は、前記特定の作用が果実の着色促進、及び、カロテノイド合成促進から選ばれる一つ以上の作用であり、
植物がバラ科に属する植物である場合は、前記特定の作用が果実の着色促進、及び、カロテノイド合成促進から選ばれる一つ以上の作用であり、
ただし、前記溶液がアルファルファ緑葉脱タンパク質上澄液と酢酸を含有する組成物である場合は除く、方法。 - イソロイシンがL−イソロイシンである、請求項1または2に記載の方法。
- 前記イソロイシンを含有する溶液が、精製イソロイシン、イソロイシン発酵液もしくは発酵副生物、又はイソロイシンを含むそれらの分画物を含有する溶液である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記イソロイシン含有溶液の散布により特定の作用が奏される、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法であって、
植物がナス科に属する植物である場合は、前記特定の作用が開花促進、着果促進、着果数向上、果実の着色促進、必須アミノ酸及び/又はγ-アミノ酪酸含量向上、カロテノイド合成促進、及び、抗酸化作用向上から選ばれる一つ以上の作用であり、
植物がブドウ科に属する植物である場合は、前記特定の作用が果実の着色促進、及び、カロテノイド合成促進から選ばれる一つ以上の作用であり、
植物がバラ科に属する植物である場合は、前記特定の作用が果実の着色促進、及び、カロテノイド合成促進から選ばれる一つ以上の作用である、方法。 - 植物がトマト、トウガラシ、ブドウ、又はリンゴである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記溶液を、植物の葉面及び/又は果実に散布する、請求項1〜6のいずれか一項に記載の方法。
- 0.5mM〜75mMのイソロイシンを含有する溶液を、収穫された果実に散布する、果実の着色を促進させる方法であって、
果実がナス科又はバラ科に属する植物の果実である、方法。 - イソロイシンがL−イソロイシンである、請求項8に記載の方法。
- 前記イソロイシンを含有する溶液が、精製イソロイシン、イソロイシン発酵液もしくは発酵副生物、又はイソロイシンを含むそれらの分画物を含有する溶液である、請求項8又は9に記載の方法。
- 果実がトマト又はリンゴである、請求項8〜10のいずれか一項に記載の方法。
- イソロイシンを有効成分として含み、イソロイシン濃度が0.5mM〜75mMの溶液として植物に散布される、特定の作用を得るための、農園芸用組成物であって、
植物がナス科、ブドウ科、若しくはバラ科に属する果菜又は果樹であり、
植物がナス科に属する植物である場合は、前記特定の作用が開花促進、着果促進、着果数向上、果実の着色促進、必須アミノ酸及び/又はγ-アミノ酪酸含量向上、カロテノイド合成促進、及び、抗酸化作用向上から選ばれる一つ以上の作用であり、
植物がブドウ科に属する植物である場合は、前記特定の作用が果実の着色促進、及び、カロテノイド合成促進から選ばれる一つ以上の作用であり、
植物がバラ科に属する植物である場合は、前記特定の作用が果実の着色促進、及び、カロテノイド合成促進から選ばれる一つ以上の作用であり、
ただし、アルファルファ緑葉脱タンパク質上澄液と酢酸を含有する組成物は除く、組成物。 - 植物がトマト、トウガラシ、ブドウ、又はリンゴである、請求項12に記載の組成物。
- 前記溶液を、植物の葉面及び/又は果実に散布する、請求項12又は13に記載の組成物。
- イソロイシンを有効成分として含み、イソロイシン濃度が0.5mM〜75mMの溶液として収穫された果実に散布される、農園芸用組成物であって、
果実がナス科又はバラ科に属する植物の果実である、組成物。 - 果実がトマト又はリンゴである、請求項15に記載の組成物。
- 果実の着色を促進させるための組成物である、請求項15又は16に記載の組成物。
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