JP6782085B2 - 白毛化抑制剤、細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ｄｎａ損傷抑制剤、ミトコンドリア損傷抑制剤 - Google Patents
白毛化抑制剤、細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ｄｎａ損傷抑制剤、ミトコンドリア損傷抑制剤 Download PDFInfo
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Description
本発明は、毛髪、髭等の体毛の白毛化を抑制する白毛化抑制剤、細胞の細胞死を抑制する細胞死抑制剤、細胞内の活性酸素の発生を抑制する活性酸素発生抑制剤、細胞のＤＮＡの損傷を抑制するＤＮＡ損傷抑制剤、及び、細胞内のミトコンドリアの損傷を抑制するミトコンドリア損傷抑制剤に関する。
毛髪、髭等の体毛は、ケラチノサイトが筒状の構造を形作って構成された毛包に包まれており、体毛の色の形成は、毛包に存在するメラノサイトによってメラニンが産生され、そのメラニンがケラチノサイトに転送されて毛全体に広がることによるとされる。そして、白髪等の白毛化は、老化等によりメラノサイトが分化、死滅することにより起こることが知られている。
特許文献１には、フラボノイド類のステルビン、ヤーバサンタ抽出物、ヨモギ抽出物がメラノサイト幹細胞の維持・増加、メラニン合成の増加を促進することを見出し、これらの物質を含む白毛数抑制剤が記載されている。
特許文献１には、フラボノイド類のステルビン、ヤーバサンタ抽出物、ヨモギ抽出物がメラノサイト幹細胞の維持・増加、メラニン合成の増加を促進することを見出し、これらの物質を含む白毛数抑制剤が記載されている。
また、放射線（ＩＲ）の照射により白髪が引き起こされることが知られている。非特許文献１では、放射線の照射による毛包細胞への影響に関する研究について、放射線照射後の最初のターゲットは色素幹細胞ではなく、ケラチノサイト幹細胞であることが報告された。
そして、特許文献２には、フラボノイド類のステルビン、ルテオリン、ディオスメチン及びヤーバサンタ抽出物が毛包ケラチノサイト幹細胞のＤＮＡ損傷を抑制することによって、白毛化を抑制することが記載されている。
そして、特許文献２には、フラボノイド類のステルビン、ルテオリン、ディオスメチン及びヤーバサンタ抽出物が毛包ケラチノサイト幹細胞のＤＮＡ損傷を抑制することによって、白毛化を抑制することが記載されている。
Hitomi. A, et al, Keratinocyte Stem Cells but Not Melanocyte Stem Cells Are the Primary Target for Radiation-Induced Hair Graying, Journal of Investigative Dermatology, 2013, 133(9), p.2143-2151
これまで種々のフラボノイド類について、白毛化の抑制効果が認められてきたが、本発明は、更に優れた白毛化抑制剤を提供することを目的とする。
また、本発明は、放射線や紫外線、酸化ストレス等によって誘発される細胞死、細胞内の活性酸素の発生、ＤＮＡの損傷、又は、ミトコンドリアの損傷を抑制することを目的とする。
本発明者は、上記課題について鋭意検討した結果、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、白毛化を抑制することを見出し、本発明の白毛化抑制剤を完成した。
更には、その作用機序を解明する過程において、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、細胞死、細胞内の活性酸素の発生、ＤＮＡの損傷、及び、ミトコンドリアの損傷を抑制することを見出し、本発明の細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ＤＮＡ損傷抑制剤、及び、ミトコンドリア損傷抑制剤を完成した。
すなわち、本発明は、以下の白毛化抑制剤、細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ＤＮＡ損傷抑制剤、ミトコンドリア損傷抑制剤を提供するものである。
（第１発明）
上記課題を解決するための第１発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とする白毛化抑制剤である。
（第２発明）
上記課題を解決するための第２発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とする細胞死抑制剤である。
（第３発明）
上記課題を解決するための第３発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とする細胞内の活性酸素発生抑制剤である。
（第４発明）
上記課題を解決するための第４発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とするＤＮＡ損傷抑制剤である。
（第５発明）
上記課題を解決するための第５発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とするミトコンドリア損傷抑制剤である。
（第１発明）
上記課題を解決するための第１発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とする白毛化抑制剤である。
（第２発明）
上記課題を解決するための第２発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とする細胞死抑制剤である。
（第３発明）
上記課題を解決するための第３発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とする細胞内の活性酸素発生抑制剤である。
（第４発明）
上記課題を解決するための第４発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とするＤＮＡ損傷抑制剤である。
（第５発明）
上記課題を解決するための第５発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とするミトコンドリア損傷抑制剤である。
（第６発明）
上記課題を解決するための第６発明は、第１発明の毛髪の白毛化抑制剤、第２発明の細胞死抑制剤、第３発明の細胞内の活性酸素発生抑制剤、第４発明のＤＮＡ損傷抑制剤、又は、第５発明のミトコンドリア損傷抑制剤の1種以上を有効成分として含有することを特徴とする医薬品、化粧料又は飲食品である。
（第７発明）
上記課題を解決するための第７発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを０．０００１〜１．０質量％（ｗ／ｗ）含有することを特徴とする第６発明に記載の医薬品、化粧料又は飲食品である。
（第８発明）
上記課題を解決するための第８発明は、外用剤であることを特徴とする第６又は第７発明に記載の医薬品又は化粧料である。
（第９発明）
上記課題を解決するための第９発明は、前記外用剤を頭皮へ適用することを特徴とする、第８発明に記載の化粧料の使用方法である。
上記課題を解決するための第６発明は、第１発明の毛髪の白毛化抑制剤、第２発明の細胞死抑制剤、第３発明の細胞内の活性酸素発生抑制剤、第４発明のＤＮＡ損傷抑制剤、又は、第５発明のミトコンドリア損傷抑制剤の1種以上を有効成分として含有することを特徴とする医薬品、化粧料又は飲食品である。
（第７発明）
上記課題を解決するための第７発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを０．０００１〜１．０質量％（ｗ／ｗ）含有することを特徴とする第６発明に記載の医薬品、化粧料又は飲食品である。
（第８発明）
上記課題を解決するための第８発明は、外用剤であることを特徴とする第６又は第７発明に記載の医薬品又は化粧料である。
（第９発明）
上記課題を解決するための第９発明は、前記外用剤を頭皮へ適用することを特徴とする、第８発明に記載の化粧料の使用方法である。
第１発明によれば、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の白毛化を誘発する因子から毛包ケラチノサイト幹細胞を保護し、白毛化を抑制することができる。
第２発明によれば、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の細胞死を誘発する因子から細胞を保護し、細胞死を抑制することができる。
第３発明によれば、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の細胞内の活性酸素を発生させる因子から細胞を保護し、細胞内の活性酸素の発生を抑制することができる。
第４発明によれば、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等のＤＮＡの損傷を誘発する因子から細胞を保護し、ＤＮＡの損傷を抑制することができる。
第５発明によれば、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等のミトコンドリアの損傷を誘発する因子から細胞を保護し、ミトコンドリアの損傷を抑制することができる。
第２発明によれば、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の細胞死を誘発する因子から細胞を保護し、細胞死を抑制することができる。
第３発明によれば、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の細胞内の活性酸素を発生させる因子から細胞を保護し、細胞内の活性酸素の発生を抑制することができる。
第４発明によれば、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等のＤＮＡの損傷を誘発する因子から細胞を保護し、ＤＮＡの損傷を抑制することができる。
第５発明によれば、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンが、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等のミトコンドリアの損傷を誘発する因子から細胞を保護し、ミトコンドリアの損傷を抑制することができる。
第６発明〜第９発明によれば、第１発明の白毛化抑制剤、第２発明の細胞死抑制剤、第３発明の活性酸素発生抑制剤、第４発明のＤＮＡ損傷抑制剤、第５発明のミトコンドリア損傷抑制剤について、好適な利用方法を提供することができる。
次に、本発明を実施するための形態を、その最良の形態を含めて説明する。
本発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボン（以下、「ＴＨＭＦ」という。）を含有する白毛化抑制剤、細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ＤＮＡ損傷抑制剤、ミトコンドリア損傷抑制剤である。
本発明は、３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボン（以下、「ＴＨＭＦ」という。）を含有する白毛化抑制剤、細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ＤＮＡ損傷抑制剤、ミトコンドリア損傷抑制剤である。
［３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボン（ＴＨＭＦ）］
本発明のＴＨＭＦは、以下の化（１）に示す有機化合物である（CAS Number：２０２４３−５９−８）。
本発明のＴＨＭＦは、以下の化（１）に示す有機化合物である（CAS Number：２０２４３−５９−８）。
［白毛化抑制剤］
本発明の白毛化抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の白毛化を誘発する因子から毛包ケラチノサイト幹細胞を保護し、ヒトを含む動物の体毛の白毛化を抑制するものである。
本発明の白毛化抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の白毛化を誘発する因子から毛包ケラチノサイト幹細胞を保護し、ヒトを含む動物の体毛の白毛化を抑制するものである。
ここで、体毛とは、ヒトを含む動物の任意の毛を意味する。体毛は頭に生える毛髪、口髭や顎鬚を含むひげ、眉毛、睫毛、鼻毛、腕・脚・胸等の胴体に生える毛を好ましく例示することができ、毛髪、ひげ、眉毛、鼻毛を更に好ましく例示することができ、毛髪、ひげを特に好ましく例示することができる。
本発明の白毛化抑制剤の適用において、白毛化を誘発する因子としては、特に制限されないが、例えば、Ｘ線、α線、β線、γ線、中性子線等の放射線照射、紫外線照射、老化、酸化ストレス等が挙げられる。本発明の白毛化抑制剤は、老化、放射線照射又は紫外線照射による白毛化に対して使用することが好ましい。
［細胞死抑制剤］
本発明の細胞死抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、酸化ストレス等の細胞死を誘発する因子から細胞を保護し、細胞死を抑制するものである。
本発明の細胞死抑制剤を適用する細胞としては、どの組織の細胞であるかは制限されないが、例えば、毛包ケラチノサイト幹細胞、メラノサイト等の表皮組織の細胞や、角膜、結膜等の細胞等に適用して細胞死の発生を抑制する。
本発明の細胞死抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、酸化ストレス等の細胞死を誘発する因子から細胞を保護し、細胞死を抑制するものである。
本発明の細胞死抑制剤を適用する細胞としては、どの組織の細胞であるかは制限されないが、例えば、毛包ケラチノサイト幹細胞、メラノサイト等の表皮組織の細胞や、角膜、結膜等の細胞等に適用して細胞死の発生を抑制する。
本発明の細胞死抑制剤の適用において、細胞死を誘発する因子としては、特に制限されないが、例えば、Ｘ線、α線、β線、γ線、中性子線等の放射線照射、紫外線照射、老化、酸化ストレス等が挙げられる。本発明の細胞死抑制剤は、老化、放射線照射又は紫外線照射により誘発される細胞死に対して使用することが好ましい。
［活性酸素発生抑制剤］
本発明の活性酸素発生抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の細胞内の活性酸素の発生を誘発する因子から細胞を保護し、細胞内の活性酸素の発生を抑制するものである。
本発明の活性酸素発生抑制剤を適用する細胞としては、どの組織の細胞であるかは制限されないが、例えば、毛包ケラチノサイト幹細胞、メラノサイト等の表皮組織の細胞や、角膜、結膜等の細胞等に適用して活性酸素の発生を抑制する。
本発明の活性酸素発生抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の細胞内の活性酸素の発生を誘発する因子から細胞を保護し、細胞内の活性酸素の発生を抑制するものである。
本発明の活性酸素発生抑制剤を適用する細胞としては、どの組織の細胞であるかは制限されないが、例えば、毛包ケラチノサイト幹細胞、メラノサイト等の表皮組織の細胞や、角膜、結膜等の細胞等に適用して活性酸素の発生を抑制する。
本発明の活性酸素発生抑制剤の適用において、活性酸素の発生を誘発する因子としては、特に制限されないが、例えば、Ｘ線、α線、β線、γ線、中性子線等の放射線照射、紫外線照射、老化、酸化ストレス等が挙げられる。本発明の活性酸素発生抑制剤は、老化、放射線照射又は紫外線照射により誘発される活性酸素の発生に対して使用することが好ましい。
［ＤＮＡ損傷抑制剤］
本発明のＤＮＡ損傷抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等のＤＮＡの損傷を誘発する因子から細胞を保護し、ＤＮＡの損傷を抑制するものである。
本発明のＤＮＡ損傷抑制剤を適用する細胞としては、どの組織の細胞であるかは制限されないが、例えば、毛包ケラチノサイト幹細胞、メラノサイト等の表皮組織の細胞や、角膜、結膜等の細胞等に適用してＤＮＡの損傷を抑制する。
本発明のＤＮＡ損傷抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等のＤＮＡの損傷を誘発する因子から細胞を保護し、ＤＮＡの損傷を抑制するものである。
本発明のＤＮＡ損傷抑制剤を適用する細胞としては、どの組織の細胞であるかは制限されないが、例えば、毛包ケラチノサイト幹細胞、メラノサイト等の表皮組織の細胞や、角膜、結膜等の細胞等に適用してＤＮＡの損傷を抑制する。
本発明のＤＮＡ損傷抑制剤を適用する細胞において、ＤＮＡの損傷を誘発する因子としては、特に制限されないが、例えば、Ｘ線、α線、β線、γ線、中性子線等の放射線照射、紫外線照射、老化、酸化ストレス等が挙げられる。本発明のＤＮＡ損傷抑制剤は、老化、放射線照射又は紫外線照射により誘発されるＤＮＡの損傷に対して使用することが好ましい。
［ミトコンドリア損傷抑制剤］
本発明のミトコンドリア損傷抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等のミトコンドリアの損傷を誘発する因子から細胞を保護し、細胞内のミトコンドリアの損傷を抑制するものである。
本発明のミトコンドリア損傷抑制剤を適用する細胞としては、どの組織の細胞であるかは制限されないが、例えば、毛包ケラチノサイト幹細胞、メラノサイト等の表皮組織の細胞や、角膜、結膜等の細胞等に適用してミトコンドリアの損傷を抑制する。
本発明のミトコンドリア損傷抑制剤とは、上記のＴＨＭＦを含有し、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等のミトコンドリアの損傷を誘発する因子から細胞を保護し、細胞内のミトコンドリアの損傷を抑制するものである。
本発明のミトコンドリア損傷抑制剤を適用する細胞としては、どの組織の細胞であるかは制限されないが、例えば、毛包ケラチノサイト幹細胞、メラノサイト等の表皮組織の細胞や、角膜、結膜等の細胞等に適用してミトコンドリアの損傷を抑制する。
本発明のミトコンドリア損傷抑制剤を適用する細胞において、ミトコンドリアの損傷を誘発する因子としては、特に制限されないが、例えば、Ｘ線、α線、β線、γ線、中性子線等の放射線照射、紫外線照射、老化、酸化ストレス等が挙げられる。本発明のミトコンドリア損傷抑制剤は、老化、放射線照射又は紫外線照射により誘発されるミトコンドリアの損傷に対して使用することが好ましい。
［用途］
上記の本発明の白毛化抑制剤、細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ＤＮＡ損傷抑制剤、ミトコンドリア損傷抑制剤は、これらを有効成分として１種以上含有する医薬品、化粧料又は飲食品として利用される。医薬品とは、医薬部外品等も含む概念であり、飲食品とは、特定保健用食品、栄養機能食品、健康食品等も含む概念である。
上記の本発明の白毛化抑制剤、細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ＤＮＡ損傷抑制剤、ミトコンドリア損傷抑制剤は、これらを有効成分として１種以上含有する医薬品、化粧料又は飲食品として利用される。医薬品とは、医薬部外品等も含む概念であり、飲食品とは、特定保健用食品、栄養機能食品、健康食品等も含む概念である。
また、化粧料は、化粧水、乳液、リップクリーム、日焼け止め、洗顔フォーム、メイク落とし、シェービングフォーム、クレンジングオイル等のフェイスケア剤や、石鹸、ボディソープ、ハンドクリーム、ハンドソープ、制汗剤、入浴剤等のボディケア剤や、シャンプー、コンディショナー、整髪料、育毛剤、発毛剤、ヘアカラー等のヘアケア剤等が挙げられる。
ＴＨＭＦの投与形態としては、特に制限されないが、例えば、経口や経鼻により摂取する内用剤、手や塗布具等によって皮膚の目的部位に塗布する外用剤、注射により皮下、皮内、血管内に注入する注射剤等が挙げられる。
なお、投与対象としては、ヒトを含む動物一般であり、好ましくは、ヒト及び非ヒト哺乳動物であり、特に好ましくは、ヒトである。
なお、投与対象としては、ヒトを含む動物一般であり、好ましくは、ヒト及び非ヒト哺乳動物であり、特に好ましくは、ヒトである。
内用剤は、例えば、錠剤、カプセル剤、液剤、散剤、シロップ剤等の医薬品や、加工食品、飲料等の飲食品が挙げられ、外用剤は、例えば、軟膏、湿布、消毒薬、点鼻薬、目薬、坐薬等の医薬品、フェイスケア剤、ボディケア剤、ヘアケア剤等の化粧料が挙げられ、注射剤は、例えば、注射、点滴等の医薬品が挙げられる。
放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等から直接的に細胞を保護するという観点から、外用剤が好ましい。外用剤を塗布する部位は、特に制限されず、頭、顔、体、手、腕、脚、足等のいずれの皮膚でもよい。
頭髪の白毛化を抑制するという観点では、ヘアケア剤等の頭皮へ適用する外用剤が好ましく、髭の白毛化を抑制するという観点では、フェイスケア剤等の顔の皮膚へ適用する外用剤が好ましい。
頭髪の白毛化を抑制するという観点では、ヘアケア剤等の頭皮へ適用する外用剤が好ましく、髭の白毛化を抑制するという観点では、フェイスケア剤等の顔の皮膚へ適用する外用剤が好ましい。
上記の医薬品、化粧料又は飲食品に含まれるＴＨＭＦの含有量は、特に制限されないが、好ましくは０．０００１〜１．０質量％（ｗ／ｗ）であり、更に好ましくは０．００１〜０．５質量％（ｗ／ｗ）であり、特に好ましくは０．０１〜０．１質量％（ｗ／ｗ）である。
上記の医薬品、化粧料又は飲食品の剤型は限定されないが、例えば液状、乳液状、クリーム状又はゲル状が好適である。その他、粉末状、固体状、シロップ状、顆粒剤、糖衣剤、カプセル剤、吸入剤としてもよい。これらの剤型は、周知の方法や常法に従って実現可能である。
剤型に応じて、その他の成分を添加してもよい。その他の成分としては、例えば、水、低級アルコール、多価アルコール等の溶剤、界面活性剤、油脂、ロウ、炭化水素、脂肪酸、高級アルコール、シリコーン等の油剤、アラビアガム等の増粘剤、アミノ酸類、でんぷん、デキストリン等の多糖類、乳糖、ぶどう糖等の糖類、ソルビトール、マルトース等の糖アルコール類、パラベン、安息香酸ナトリウム等の防腐成分、ＥＤＴＡ−２Ｎａ等のキレート成分、フェナセチン、８−ヒドロキシキノリン、アセトアニリド、ピロリン酸ナトリウム、バルビツール酸、尿酸、タンニン酸等の安定成分、リン酸、クエン酸、硫酸、酢酸、乳酸、酒石酸等のｐＨ調整成分、生薬抽出物、ビタミン類、香料、紫外線吸収成分、美白成分、皮膚用柔軟化成分、殺菌成分等が挙げられる。
［使用方法］
医薬品、化粧料又は飲食品の使用方法としては、ＴＨＭＦを、ヒトを含む動物一般に投与する方法であれば、特に制限されないが、例えば、経口や経鼻により摂取する方法、手や塗布具等によって皮膚の目的部位に塗布する方法、注射により皮下、皮内、血管内に注入する方法等により投与すればよい。
医薬品、化粧料又は飲食品の使用方法としては、ＴＨＭＦを、ヒトを含む動物一般に投与する方法であれば、特に制限されないが、例えば、経口や経鼻により摂取する方法、手や塗布具等によって皮膚の目的部位に塗布する方法、注射により皮下、皮内、血管内に注入する方法等により投与すればよい。
また、本発明の化粧料の使用方法とは、ＴＨＭＦを皮膚へ適用する方法である。当該方法は、白毛化の予防又は改善や、シミやそばかす、シワの予防又は改善等の美容を目的とするものであり、手術、治療又は診断する方法を含まない。
化粧料の使用方法は、皮膚へ塗布する手段であれば、特に制限されないが、例えば、手や塗布具等によって化粧料を塗布する手段や、布等の貼付部材に含浸して目的部位に貼付する手段等が挙げられる。
化粧料の使用方法は、皮膚へ塗布する手段であれば、特に制限されないが、例えば、手や塗布具等によって化粧料を塗布する手段や、布等の貼付部材に含浸して目的部位に貼付する手段等が挙げられる。
ヒトの皮膚に塗布する場合、皮膚２０〜４０ｃｍ2あたり、ＴＨＭＦが０．００２５〜２５ｍｇ／回が皮膚に適用されることが好ましく、適用間隔は少なくとも１日１〜２回塗布とすることが好ましい。
非ヒト哺乳動物の皮膚に塗布する場合、皮膚４〜５ｃｍ2あたり、ＴＨＭＦが０．００２〜２０ｍｇ／回が皮膚に適用されることが好ましく、適用間隔は少なくとも１日１回塗布とすることが好ましい。
非ヒト哺乳動物の皮膚に塗布する場合、皮膚４〜５ｃｍ2あたり、ＴＨＭＦが０．００２〜２０ｍｇ／回が皮膚に適用されることが好ましく、適用間隔は少なくとも１日１回塗布とすることが好ましい。
以下に、本発明の実施例を説明する。
［マウスを用いた試験］
＜試料＞
〔試料１〕：ＴＨＭＦ１０ｍｇを、１０ｍＬのエタノールに溶解して、０．１％（ｗ／ｖ）のＴＨＭＦ溶液を調製した（以下、試料名を「0.1%THMF」という。）。
〔試料２〕：ＴＨＭＦ−０．１％を、エタノールで１０００倍に希釈して、１ｐｐｍ（ｗ／ｖ）のＴＨＭＦ希釈溶液を調製した（以下、試料名を「1ppmTHMF」という。）。
〔比較試料１〕：５０体積％エタノール（以下、「50％EtOH」という。）。
［マウスを用いた試験］
＜試料＞
〔試料１〕：ＴＨＭＦ１０ｍｇを、１０ｍＬのエタノールに溶解して、０．１％（ｗ／ｖ）のＴＨＭＦ溶液を調製した（以下、試料名を「0.1%THMF」という。）。
〔試料２〕：ＴＨＭＦ−０．１％を、エタノールで１０００倍に希釈して、１ｐｐｍ（ｗ／ｖ）のＴＨＭＦ希釈溶液を調製した（以下、試料名を「1ppmTHMF」という。）。
〔比較試料１〕：５０体積％エタノール（以下、「50％EtOH」という。）。
＜塗布試験＞
図１に各試料の塗布試験についての手順を示した。
７週齢のＣ５７ＢＬ／６系統のマウスの背部をバリカンで刈り取り、その部位に２００μＬの試料を毎日１週間塗布した。１週間後、除毛クリーム（クラシエホームプロダクツ株式会社製「エピラット」）を用いて塗布部位の体毛を完全に除去することにより、休止期から成長期に発毛を誘導した。翌日、マウスに放射線（５Ｇｙ）を照射した。
図１に各試料の塗布試験についての手順を示した。
７週齢のＣ５７ＢＬ／６系統のマウスの背部をバリカンで刈り取り、その部位に２００μＬの試料を毎日１週間塗布した。１週間後、除毛クリーム（クラシエホームプロダクツ株式会社製「エピラット」）を用いて塗布部位の体毛を完全に除去することにより、休止期から成長期に発毛を誘導した。翌日、マウスに放射線（５Ｇｙ）を照射した。
＜毛包ケラチノサイト幹細胞のＤＮＡ損傷試験＞
放射線照射６時間後の皮膚を回収し、免疫染色を実施した。毛包ケラチノサイト幹細胞の染色マーカーはＣＤ３４を用い、ＤＮＡの損傷した細胞の染色マーカーはγＨ２ＡＸを用いた。毛包中において、ＣＤ３４に陽性の細胞と、ＣＤ３４及びγＨ２ＡＸのいずれにも陽性の細胞について、それぞれ細胞数をカウントした。
放射線照射６時間後の皮膚を回収し、免疫染色を実施した。毛包ケラチノサイト幹細胞の染色マーカーはＣＤ３４を用い、ＤＮＡの損傷した細胞の染色マーカーはγＨ２ＡＸを用いた。毛包中において、ＣＤ３４に陽性の細胞と、ＣＤ３４及びγＨ２ＡＸのいずれにも陽性の細胞について、それぞれ細胞数をカウントした。
50%EtOH塗布マウス（Ｎ＝１）は、ＣＤ３４に陽性の細胞が２０個、ＣＤ３４及びγＨ２ＡＸのいずれにも陽性の細胞が５個であった。一方、0.1%THMF塗布マウス（Ｎ＝１）では、ＣＤ３４に陽性の細胞が２０個、ＣＤ３４及びγＨ２ＡＸのいずれにも陽性の細胞が２個であった。よって、ＴＨＭＦは、毛包ケラチノサイト幹細胞のＤＮＡ損傷抑制効果が認められた。
＜白毛化試験＞
放射線照射１カ月後、抜去した体毛が生えそろった時点で、体毛を目視にて評価した。図２は、50%EtOH塗布マウスと0.1%THMF塗布マウスの体毛の色を評価した写真である。図３は、50%EtOH塗布マウスと1ppmTHMF塗布マウスの体毛の色を評価した写真である。
その結果、ＴＨＭＦを塗布したマウスの体毛は、0.1%THMF、1ppmTHMFのいずれも50%EtOHを塗布したマウスの体毛よりも黒い毛が多く生えた。
放射線照射１カ月後、抜去した体毛が生えそろった時点で、体毛を目視にて評価した。図２は、50%EtOH塗布マウスと0.1%THMF塗布マウスの体毛の色を評価した写真である。図３は、50%EtOH塗布マウスと1ppmTHMF塗布マウスの体毛の色を評価した写真である。
その結果、ＴＨＭＦを塗布したマウスの体毛は、0.1%THMF、1ppmTHMFのいずれも50%EtOHを塗布したマウスの体毛よりも黒い毛が多く生えた。
さらに、50%EtOH塗布マウスと0.1%THMF塗布マウスについて、生えそろった体毛を回収し、分光側色計（ミノルタ製「ＣＭ５０８ｄ」）を用いてＬ*値を測定し、体毛の明度を評価した。各試料塗布群について１０匹のマウスの体毛を刈り取った後、それぞれのＬ*値を測定し、その平均を算出した。
その結果、50%EtOH塗布群のＬ*値は４７．６、0.1%THMF塗布群のＬ*値は３７．８であり、ＴＨＭＦを塗布することにより、体毛の白毛化を抑制するという効果が認められた。
また、50%EtOH塗布マウスと1ｐｐｍTHMF塗布マウスについて、上記と同じ手法でＬ*値を測定し、体毛の明度を評価した。各試料塗布群について３匹のマウスの体毛を刈り取った後、それぞれのＬ*値を測定し、その平均を算出した。
その結果、50%EtOH塗布群のＬ*値は４６．９１、1ｐｐｍTHMF塗布群のＬ*値は４２．２２であり、ＴＨＭＦを塗布することにより、体毛の白毛化を抑制するという効果が認められた。
その結果、50%EtOH塗布群のＬ*値は４７．６、0.1%THMF塗布群のＬ*値は３７．８であり、ＴＨＭＦを塗布することにより、体毛の白毛化を抑制するという効果が認められた。
また、50%EtOH塗布マウスと1ｐｐｍTHMF塗布マウスについて、上記と同じ手法でＬ*値を測定し、体毛の明度を評価した。各試料塗布群について３匹のマウスの体毛を刈り取った後、それぞれのＬ*値を測定し、その平均を算出した。
その結果、50%EtOH塗布群のＬ*値は４６．９１、1ｐｐｍTHMF塗布群のＬ*値は４２．２２であり、ＴＨＭＦを塗布することにより、体毛の白毛化を抑制するという効果が認められた。
［ＮＨＥＫを用いた試験］
＜試料＞
〔試料３〕：ＴＨＭＦをエタノールに溶解して、１００μＭのＴＨＭＦ溶液を調製した（以下、試料名を「100μM-THMF」という。）。
〔比較試料２〕：ジメチルスルホキシド（CAS Number：６７−６８−５）をエタノールに溶解して、１００μＭのジメチルスルホキシド溶液を調製した（以下、試料名を「ＤＭＳＯ」という。）。
〔比較試料３〕：エリオディクティオン・アングスティフォリウム種のヤーバサンタ（ハゼリソウ科の植物）の葉及び茎の混合物の乾燥物１ｇに５０体積％エタノール溶液２００ｍＬを加え、室温で約１週間抽出後、ろ過した。得られたろ液を濃縮して、１００μｇ／ｍＬのヤーバサンタ抽出液を調製した（以下、「E.angu.」という。）。
〔比較試料４〕：エリオディクティオン・カリフォルニカム種のヤーバサンタ（ハゼリソウ科の植物）の葉及び茎の混合物の乾燥物１ｇに５０体積％エタノール溶液２００ｍＬを加え、室温で約１週間抽出後、ろ過した。得られたろ液を濃縮して、１００μｇ／ｍＬのヤーバサンタ抽出液を調製した（以下、「E.cali.」という。）。
〔比較試料５〕：ステルビン（CAS Number：５１８５７−１１−５）をエタノールに溶解して、１００μＭのステルビン溶液を調製した（以下、試料名を「Sterubin」という。）。
〔比較試料６〕：ルテオリン（CAS Number：４９１−７０−３）をエタノールに溶解して、１００μＭのルテオリン溶液を調製した（以下、試料名を「Luteolin」という。）。
〔比較試料７〕：ホモエリオジクチオール（CAS Number：４４６−７１−９）をエタノールに溶解して、１００μＭのホモエリオジクチオール溶液を調製した（以下、試料名を「Homoeri」という。）。
〔比較試料８〕：ヘスペレチン（CAS Number：５２０−３３−２）をエタノールに溶解して、１００μＭのヘスペレチン溶液を調製した（以下、試料名を「Hesper」という。）。
〔比較試料９〕：ジオスメチン（CAS Number：５２０−３４−３）をエタノールに溶解して、１００μＭのジオスメチン溶液を調製した（以下、試料名を「Diosmet」という。）。
〔比較試料１０〕：エリオジクチオール（CAS Number：５５２−５８−９）をエタノールに溶解して、１００μＭのエリオジクチオール溶液を調製した（以下、試料名を「Eriodic」という。）。
＜試料＞
〔試料３〕：ＴＨＭＦをエタノールに溶解して、１００μＭのＴＨＭＦ溶液を調製した（以下、試料名を「100μM-THMF」という。）。
〔比較試料２〕：ジメチルスルホキシド（CAS Number：６７−６８−５）をエタノールに溶解して、１００μＭのジメチルスルホキシド溶液を調製した（以下、試料名を「ＤＭＳＯ」という。）。
〔比較試料３〕：エリオディクティオン・アングスティフォリウム種のヤーバサンタ（ハゼリソウ科の植物）の葉及び茎の混合物の乾燥物１ｇに５０体積％エタノール溶液２００ｍＬを加え、室温で約１週間抽出後、ろ過した。得られたろ液を濃縮して、１００μｇ／ｍＬのヤーバサンタ抽出液を調製した（以下、「E.angu.」という。）。
〔比較試料４〕：エリオディクティオン・カリフォルニカム種のヤーバサンタ（ハゼリソウ科の植物）の葉及び茎の混合物の乾燥物１ｇに５０体積％エタノール溶液２００ｍＬを加え、室温で約１週間抽出後、ろ過した。得られたろ液を濃縮して、１００μｇ／ｍＬのヤーバサンタ抽出液を調製した（以下、「E.cali.」という。）。
〔比較試料５〕：ステルビン（CAS Number：５１８５７−１１−５）をエタノールに溶解して、１００μＭのステルビン溶液を調製した（以下、試料名を「Sterubin」という。）。
〔比較試料６〕：ルテオリン（CAS Number：４９１−７０−３）をエタノールに溶解して、１００μＭのルテオリン溶液を調製した（以下、試料名を「Luteolin」という。）。
〔比較試料７〕：ホモエリオジクチオール（CAS Number：４４６−７１−９）をエタノールに溶解して、１００μＭのホモエリオジクチオール溶液を調製した（以下、試料名を「Homoeri」という。）。
〔比較試料８〕：ヘスペレチン（CAS Number：５２０−３３−２）をエタノールに溶解して、１００μＭのヘスペレチン溶液を調製した（以下、試料名を「Hesper」という。）。
〔比較試料９〕：ジオスメチン（CAS Number：５２０−３４−３）をエタノールに溶解して、１００μＭのジオスメチン溶液を調製した（以下、試料名を「Diosmet」という。）。
〔比較試料１０〕：エリオジクチオール（CAS Number：５５２−５８−９）をエタノールに溶解して、１００μＭのエリオジクチオール溶液を調製した（以下、試料名を「Eriodic」という。）。
＜ＤＮＡ損傷試験＞
ＮＨＥＫ（正常ヒト表皮角化細胞：Normal Human Epidermal Keratinocytes）を用いて、放射線によるＤＮＡの損傷試験を行い、各試料のＤＮＡ損傷抑制効果について評価した。評価方法は、ＮＨＥＫを１ウェルあたり１．２×１０4個となるように、６ウェルプレートに投入した。翌日、このＮＨＥＫを各試料に１時間（３７℃）暴露した後、放射線（５Ｇｙ）を照射した。
５時間後、ＤＮＡの損傷の指標となるγＨ２ＡＸを免疫蛍光により発色させ、細胞あたりのγＨ２ＡＸフォーサイの数をカウントした。細胞あたりのγＨ２ＡＸフォーサイの数のカウントでは、試験を独立して３回行い、各試験の平均値をγＨ２ＡＸフォーサイの数とした。その結果を図４に示す。
図４を参照すると、ＴＨＭＦは、ヤーバサンタ抽出物やステルビン等の他のフラボノイド類と比べて、優れたＤＮＡ損傷抑制効果を奏することが認められた。
ＮＨＥＫ（正常ヒト表皮角化細胞：Normal Human Epidermal Keratinocytes）を用いて、放射線によるＤＮＡの損傷試験を行い、各試料のＤＮＡ損傷抑制効果について評価した。評価方法は、ＮＨＥＫを１ウェルあたり１．２×１０4個となるように、６ウェルプレートに投入した。翌日、このＮＨＥＫを各試料に１時間（３７℃）暴露した後、放射線（５Ｇｙ）を照射した。
５時間後、ＤＮＡの損傷の指標となるγＨ２ＡＸを免疫蛍光により発色させ、細胞あたりのγＨ２ＡＸフォーサイの数をカウントした。細胞あたりのγＨ２ＡＸフォーサイの数のカウントでは、試験を独立して３回行い、各試験の平均値をγＨ２ＡＸフォーサイの数とした。その結果を図４に示す。
図４を参照すると、ＴＨＭＦは、ヤーバサンタ抽出物やステルビン等の他のフラボノイド類と比べて、優れたＤＮＡ損傷抑制効果を奏することが認められた。
＜細胞の生存率の測定＞
ＮＨＥＫを用いて、放射線による細胞の生存率の測定を行い、各試料の細胞死抑制効果について評価した。評価方法は、ＮＨＥＫを１ウェルあたり１．２×１０4個となるように、６ウェルプレートに投入した。翌日、このＮＨＥＫを各試料に１時間（３７℃）暴露した後、放射線（２０Ｇｙ）を照射した。７２時間後、細胞生存率を、ＭＴＴアッセイを用いて測定した。その結果を図５に示す。
図５（Ａ）を参照すると、ＴＨＭＦは、ステルビン等の他のフラボノイド類と比べて、優れた細胞死抑制効果を奏することが認められた。また、図５（Ｂ）に示すように、ＴＨＭＦの細胞死抑制効果について、濃度依存性も確認された。
ＮＨＥＫを用いて、放射線による細胞の生存率の測定を行い、各試料の細胞死抑制効果について評価した。評価方法は、ＮＨＥＫを１ウェルあたり１．２×１０4個となるように、６ウェルプレートに投入した。翌日、このＮＨＥＫを各試料に１時間（３７℃）暴露した後、放射線（２０Ｇｙ）を照射した。７２時間後、細胞生存率を、ＭＴＴアッセイを用いて測定した。その結果を図５に示す。
図５（Ａ）を参照すると、ＴＨＭＦは、ステルビン等の他のフラボノイド類と比べて、優れた細胞死抑制効果を奏することが認められた。また、図５（Ｂ）に示すように、ＴＨＭＦの細胞死抑制効果について、濃度依存性も確認された。
＜活性酸素の発生の評価＞
ＮＨＥＫを用いて、放射線による細胞内の活性酸素の発生を確認し、ＴＨＭＦの活性酸素発生の抑制効果について評価した。評価方法は、ＮＨＥＫを１ウェルあたり１．２×１０4個となるように、６ウェルプレートに投入した。翌日、このＮＨＥＫを各試料に１時間（３７℃）暴露した後、放射線（２０Ｇｙ）を照射した。次に、１０μＭのＤＣＦ-ＤＡに３０分間暴露した。活性酸素により生じたＤＣＦ（蛍光物質）を蛍光顕微鏡により撮影し、活性酸素の発生を確認した。その結果を図６に示す。なお、図６の「ＤＡＰＩ」は核染色による蛍光顕微鏡写真であり、「Ｍｅｒｇｅ」は、「ＤＣＦ」と「ＤＡＰＩ」を合わせた写真である。
図６を参照すると、ＴＨＭＦで処理したＮＨＥＫでは、細胞内の活性酸素の発生が抑制されたことがわかる。
ＮＨＥＫを用いて、放射線による細胞内の活性酸素の発生を確認し、ＴＨＭＦの活性酸素発生の抑制効果について評価した。評価方法は、ＮＨＥＫを１ウェルあたり１．２×１０4個となるように、６ウェルプレートに投入した。翌日、このＮＨＥＫを各試料に１時間（３７℃）暴露した後、放射線（２０Ｇｙ）を照射した。次に、１０μＭのＤＣＦ-ＤＡに３０分間暴露した。活性酸素により生じたＤＣＦ（蛍光物質）を蛍光顕微鏡により撮影し、活性酸素の発生を確認した。その結果を図６に示す。なお、図６の「ＤＡＰＩ」は核染色による蛍光顕微鏡写真であり、「Ｍｅｒｇｅ」は、「ＤＣＦ」と「ＤＡＰＩ」を合わせた写真である。
図６を参照すると、ＴＨＭＦで処理したＮＨＥＫでは、細胞内の活性酸素の発生が抑制されたことがわかる。
＜ミトコンドリアの損傷の評価＞
ＮＨＥＫを用いて、放射線によるミトコンドリアの膜電位の低下を確認し、ＴＨＭＦのミトコンドリアの損傷の抑制効果について評価した。評価方法は、ＮＨＥＫを１ウェルあたり１．２×１０4個となるように、６ウェルプレートに投入した。翌日、このＮＨＥＫを各試料に１時間（３７℃）暴露した後、放射線（２０Ｇｙ）を照射した。次に、Mito-Tracker red fluorescent（以下、「Mito-Tracker」という。）による染色を３０分間行った。なお、Mito-Trackerは、ミトコンドリアの膜電位に依存して染色する染色色素である。染色したMito-Trackerを蛍光顕微鏡により撮影し、放射線によるミトコンドリアの膜電位の低下を確認した。その結果を図７に示す。なお、図７の「ＤＡＰＩ」は核染色による蛍光顕微鏡写真であり、「Ｍｅｒｇｅ」は、「Mito-Tracker」と「ＤＡＰＩ」を合わせた写真である。
図７を参照すると、ＴＨＭＦで処理したＮＨＥＫは、放射線照射によるミトコンドリアの膜電位の低下が抑制されており、ＴＨＭＦはミトコンドリアの損傷を抑制することが認められた。
ＮＨＥＫを用いて、放射線によるミトコンドリアの膜電位の低下を確認し、ＴＨＭＦのミトコンドリアの損傷の抑制効果について評価した。評価方法は、ＮＨＥＫを１ウェルあたり１．２×１０4個となるように、６ウェルプレートに投入した。翌日、このＮＨＥＫを各試料に１時間（３７℃）暴露した後、放射線（２０Ｇｙ）を照射した。次に、Mito-Tracker red fluorescent（以下、「Mito-Tracker」という。）による染色を３０分間行った。なお、Mito-Trackerは、ミトコンドリアの膜電位に依存して染色する染色色素である。染色したMito-Trackerを蛍光顕微鏡により撮影し、放射線によるミトコンドリアの膜電位の低下を確認した。その結果を図７に示す。なお、図７の「ＤＡＰＩ」は核染色による蛍光顕微鏡写真であり、「Ｍｅｒｇｅ」は、「Mito-Tracker」と「ＤＡＰＩ」を合わせた写真である。
図７を参照すると、ＴＨＭＦで処理したＮＨＥＫは、放射線照射によるミトコンドリアの膜電位の低下が抑制されており、ＴＨＭＦはミトコンドリアの損傷を抑制することが認められた。
本発明の白毛化抑制剤は、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の白毛化を誘発する因子から毛包ケラチノサイト幹細胞を保護し、白毛化を抑制することができるため、例えば、白毛化の予防に利用することができる。
本発明の白毛化抑制剤は、放射線や紫外線、老化、酸化ストレス等の白毛化を誘発する因子から細胞死、細胞内の活性酸素の発生、ＤＮＡ損傷、ミトコンドリア損傷を抑制することができるため、これらに起因する種々の症状（例えば、肌のシミやそばかす、シワ等）の予防に利用することができる。
Claims (5)
- ３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを含有することを特徴とするＤＮＡ損傷抑制剤。
- 請求項１に記載されたＤＮＡ損傷抑制剤を有効成分として含有することを特徴とする医薬品、化粧料又は飲食品。
- 前記３’，４’，５−トリヒドロキシ−７−メトキシフラボンを０．０００１〜１．０質量％（ｗ／ｗ）含有することを特徴とする請求項２に記載の医薬品、化粧料又は飲食品。
- 外用剤であることを特徴とする請求項２又は３に記載の医薬品又は化粧料。
- 前記外用剤を頭皮へ適用することを特徴とする、請求項４に記載の化粧料の使用方法（ただし、ヒトに対する医療行為を除く。）。
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| JP2016062402A JP6782085B2 (ja) | 2016-03-25 | 2016-03-25 | 白毛化抑制剤、細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ｄｎａ損傷抑制剤、ミトコンドリア損傷抑制剤 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2016062402A JP6782085B2 (ja) | 2016-03-25 | 2016-03-25 | 白毛化抑制剤、細胞死抑制剤、活性酸素発生抑制剤、ｄｎａ損傷抑制剤、ミトコンドリア損傷抑制剤 |
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