JP6776895B2 - 抗血栓性材料 - Google Patents
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Description
ヘパリンが溶出した後に露出するカチオン表面が血栓形成を促進しまうことが懸念される。また、被覆するポリマーの量が多すぎると、基材の表面の構造が埋没してしまい、医療機器としての性能が低下してしまう可能性がある。
(1) アルキレンイミン、ビニルアミン、アリルアミン、リジン、プロタミン及びジアリルジメチルアンモニウムクロライドからなる群から選択される化合物を構成モノマーとして含むカチオン性ポリマー並びに硫黄原子を含むアニオン性の抗凝固活性を有する化合物を含む被覆材料と、該被覆材料によって表面が被覆された基材と、を備え、上記カチオン性ポリマーは、上記基材と共有結合され、上記硫黄原子を含むアニオン性の抗凝固活性を有する化合物は、上記カチオン性ポリマーとイオン結合され、上記被覆材料の平均の厚みが15〜400nmである、抗血栓性材料。
(2) 抗ファクターXa活性から算出される、上記被覆材料に含まれるアニオン性の抗凝固活性を有する化合物の総量が50〜1000mIU/cm2である、(1)記載の抗血栓性材料。
(3) 表面におけるX線電子分光法(XPS)で測定した全原子の存在量に対する窒素原子の存在比率が6.5〜9.5原子数%である、(1)又は(2)記載の抗血栓性材料。
(4) 上記カチオン性ポリマーの重量平均分子量は、10000〜1000000である、(1)〜(3)のいずれか記載の抗血栓性材料。
(5) 上記基材はポリエステル系ポリマーであり、上記抗血栓性材料の最大応力が350MPa以上である、(1)〜(4)のいずれか記載の抗血栓性材料。
(6) 上記カチオン性ポリマーは、正電荷の官能基を有し、かつ、上記基材は、負電荷の官能基を有し、上記負電荷の官能基に対する上記正電荷の官能基の存在比率は、8.0〜30である、(1)〜(5)のいずれか記載の抗血栓性材料。
(7) 上記カチオン性ポリマーが共有結合する前の上記基材の負電荷の官能基の存在量に対する上記カチオン性ポリマーが共有結合した後の上記基材の負電荷の官能基の存在量の比率は、25%以下である、(1)〜(6)のいずれか記載の抗血栓性材料。
(8) 細胞接着性を有する、(1)〜(7)のいずれか記載の抗血栓性材料。
(9) (1)〜(8)のいずれか記載の抗血栓性材料を有する医療器材。
(10) 硫黄原子を含むアニオン性の抗凝固活性を有する化合物と、正電荷の官能基を有するポリマーと、負電荷の官能基を有する基材と、を備え、上記含硫黄多糖類は、上記ポリマーにイオン結合され、上記ポリマーは、上記基材に共有結合され、上記負電荷の官能基に対する上記正電荷の官能基の存在比率は、8.0〜30である、抗血栓性材料。
(11) 上記ポリマーが共有結合する前の上記基材の負電荷の官能基の存在量に対する上記ポリマーが共有結合した後の上記基材の負電荷の官能基の存在量の比率は、25%以下である、(10)に記載の抗血栓性材料。
(12) 上記ポリマーの重量平均分子量は、10000〜750000である、(11)又は(12)に記載の抗血栓性材料。
(13) (10)〜(12)のいずれか記載の抗血栓性材料を有する医療器材。
[測定条件]
装置 :ESCALAB220iXL(VG Scientific社製)
励起X線 :monochromaticAlKα1,2線(1486.6eV)
X線径 :1mm
X電子脱出角度 :90°(抗血栓性材料の表面に対する検出器の傾き)
分割ratio : 各分割ピーク成分の存在比率(%)
N1sratio : 全原子の存在量に対する窒素原子の存在比率(%)
分割percent : N1sピークにおける各分割ピーク成分の割合(%)
分割ratio : 各分割ピーク成分の存在比率(%)
C1sratio : 全原子の存在量に対する炭素原子の存在比率(%)
分割percent : C1sピークにおける各分割ピーク成分の割合(%)
Q+=a+×n/m ・・・式4
Q+:正電荷の官能基量(mol)
a+:負電荷の官能基を有する色素による定量モル数(mol)
n:基材における正電荷の官能基の価数(−)
m:負電荷の官能基を有する色素の価数(−)
Q-=a-×n/m ・・・式5
Q-:負電荷の官能基量(mol)
a-:負電荷の官能基を有する色素による定量モル数(mol)
n:基材における正電荷の官能基の価数(−)
m:負電荷の官能基を有する色素の価数(−)
Qratio(−)=Q+/Q− ・・・式6
Qratio: 負電荷の官能基に対する正電荷の官能基の存在比率
Q+: 正電荷の官能基量
Q−: 負電荷の官能基量
Q− residue(%)=(Q− after/Q− before)×100 ・・・式7
Q− residue: 正電荷の官能基を有するカチオン性ポリマーが共有結合する前の基材の負電荷の官能基の存在量に対する正電荷の官能基を有するカチオン性ポリマーが共有結合した後の基材の負電荷の官能基の存在量の比率
Q− after: 正電荷の官能基を有するカチオン性ポリマーが共有結合した後の基材の負電荷の官能基量
Q− before: 正電荷の官能基を有するカチオン性ポリマーが共有結合する前の基材の負電荷の官能基量
上記被覆材料で被覆された基材の最大応力(MPa) = 最大荷重(N)/基材の断面積(mm2) ・・・式8
[測定条件]
装置 :引っ張り試験機テンシロンRTE−1210(オリエンテック社製)
ロードセル :500N
試料初期長さ :10mm
引っ張り速度 :5mm/分
溶血率(%) = [(At−An)/(Ap−An)]×100 ・・・式9
At : 検体の吸光度
An : 陰性対照の吸光度
Ap : 陽性対照の吸光度
[測定条件]
装置 :電界放出型透過電子顕微鏡JEM−2100F(JEOL社製)
EELS検出器 :GIF Tridiem(GATAN社製)
EDX検出器 :JED−2300T(JEOL社製)
画像取得 :Digital Micrograph(GATAN社製)
試料調整 :超薄切片法(銅製マイクログリッドに懸架し、包埋樹脂はアクリル系樹脂を使用。)
加速電圧 :200kV
ビーム径 :直径0.7nm
エネルギー分解能 :約1.0eVFWHM
基材であるPETメッシュ(径:27μm、繊維間距離:100μm)を3.0重量%過マンガン酸カリウム(和光純薬工業株式会社製)、0.6mol/L硫酸(和光純薬工業株式会社製)の水溶液に浸漬し、60℃で3時間反応させてPETメッシュを加水分解及び酸化した(加水分解及び酸化する工程)。反応後の水溶液を除去し、塩酸(和光純薬工業株式会社製)及び蒸留水で洗浄した。
第1の被覆工程において、PEI(平均分子量約70000;和光純薬工業株式会社製)を用いた以外は、実施例1と同様の操作を実施した。
第1の被覆工程において、PEI(LUPASOL(登録商標) P;BASF社製))を用いた以外は、実施例1と同様の操作を実施した。
第1の被覆工程において、PEI(平均分子量約600;和光純薬工業株式会社製)、又はPEI(LUPASOL(登録商標) SK;BASF社製)を用いた以外は、実施例1のサンプル2と同様の操作を実施した。
実施例3と同様の操作を行い、第1の被覆工程を実施した後、PETメッシュを0.5重量%DMT−MM、0.5重量%PAA(和光純薬工業株式会社製)の水溶液に浸漬し、30℃で2時間反応させた(第1の追加工程)。反応後の水溶液を除去し、炭酸ナトリウム水溶液や蒸留水で洗浄した。
実施例3と同様の操作を行い、第1の被覆工程を実施した後、PETメッシュを0.5重量%DMT−MM、0.5重量%PAA(和光純薬工業株式会社製)の水溶液に浸漬し、30℃で2時間反応させた(第1の追加工程)。反応後の水溶液を除去し、炭酸ナトリウム水溶液や蒸留水で洗浄した。
PETメッシュを5%PEIの水溶液に浸漬し、5kGyのγ線を照射(JS−8500型コバルト60γ線照射装置;ノーディオン・インターナショナル社製)し共有結合させた(第1の被覆工程)。反応後の水溶液を除去し、Triton−X100(シグマ−アルドリッチ社製)、生理食塩水や蒸留水で洗浄した。実施例1と同様の操作を行い、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、第2の被覆工程を実施した。
PETメッシュを5%PEIの水溶液に浸漬し、80℃で2時間加熱し、PETメッシュにPEIをアミノリシス反応により共有結合させた(第1の被覆工程)。反応後の水溶液を除去し、蒸留水で洗浄した。実施例1と同様の操作を行い、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、第2の被覆工程を実施した。
“テストチーム(登録商標)ヘパリンS”(積水メディカル株式会社製)のキットの操作手順を参考にして検量線を作成した。具体的には、栄研チューブにヘパリン標準液200μLを添加し、37℃で6分間インキュベートした。ファクターXa液200μLを添加し、混和後に37℃で30秒間インキュベートした。37℃に加温しておいた基質液(S−2222溶液)200μLを添加し、混和後に37℃で3分間インキュベートした。反応停止液300μLを添加し、混和した。マイクロプレートに300μLを添加し、405nmの吸光度をマイクロプレートリーダ(MTP−300;コロナ電気株式会社製)で測定して、テストチーム(登録商標) ヘパリンSのキットの操作手順に従って検量線を作成した。次に、被覆材料を被覆した抗血栓性材料(例えばPETメッシュ)を横幅0.5cm、縦幅0.5cmのサイズにカットし、生理食塩水を用いて37℃で30分間洗浄した。“テストチーム(登録商標)ヘパリンS”(積水メディカル株式会社製)の操作手順を参考にしてサンプルを反応させた。具体的には、生理食塩水洗浄後のサンプルを栄研チューブに入れ、ヒト正常血漿20μL、緩衝液160μL、アンチトロンビンIII液20μL添加し、混和後に37℃で6分間インキュベートした。ファクターXa液200μL添加し、混和後に37℃で30秒間インキュベートした。37℃に加温しておいた基質液200μL添加し、混和後に37℃で3分間インキュベートした。反応停止液300μL添加し、混和した。反応停止後の溶液をエッペンチューブに分注した。この際に、サンプルは取り除いた。マイクロプレートに300μL添加し、405nmの吸光度をマイクロプレートリーダ(MTP−300;コロナ電気株式会社製)で測定して、テストチーム ヘパリンSの操作手順に従って抗ファクターXa活性による表面量を算出した。表面量は高い程よく、40mIU/cm2以上であることが好ましく、50mIU/cm2以上であることがより好ましく、60mIU/cm2以上であることがさらにより好ましい。また、動物実験で被覆材料を被覆した抗血栓性材料の性能を評価した結果、生理食塩水で30分洗浄後の表面量が40mIU/cm2以上であることが好ましいことを見出した。そのため、生理食塩水で30分洗浄後の抗ファクターXa活性による表面量が40mIU/cm2以上であれば表面量が多いとして(○)、40mIU/cm2未満であれば表面量が少ないとして(×)と判定した。
被覆材料を被覆した抗血栓性材料(例えばPETメッシュ)を横幅1cm、縦幅1cmのサイズにカットし、ヒト血漿(コスモバイオ株式会社製)500μLを用いて37℃で6時間洗浄した。その後、上述した評価1の方法に従って、抗血栓性材料の表面に残存する抗凝固活性を有する化合物の量を算出した。動物実験で被覆材料を被覆した抗血栓性材料の性能を評価した結果、残存表面量が40mIU/cm2未満であることが好ましいことを見出した。そのため、ヒト血漿で6時間洗浄後の抗ファクターXa活性による残存表面量が40mIU/cm2未満であれば(○)、40mIU/cm2以上であれば(×)と判定した。
被覆材料を被覆した抗血栓性材料(例えばPETメッシュ)を横幅1cm、縦幅1cmのサイズにカットし、ヒト血漿500μLに37℃で24時間浸漬させて、抗凝固活性を有する化合物を溶出させた。“テストチーム(登録商標) ヘパリンS”(積水メディカル株式会社製)を用いて、抗ファクターXa活性によるヒト血漿中に溶出した抗凝固活性を有する化合物の量を算出した。次に、ヒト血漿に24時間浸漬後のPETメッシュを横幅0.5cm、縦幅0.5cmのサイズにカットし、生理食塩水を用いて37℃で30分間洗浄した。その後、上述した評価1の方法に従って、抗血栓性材料の表面に残存する抗凝固活性を有する化合物の表面量を算出した。抗ファクターXa活性により測定した全ての溶出量と抗血栓性材料の表面に残存する表面量を合計した量を総担持量とした。総担持量が多すぎると、基材の表面の微細構造が破壊されてしまう一方で、低すぎると、目的の抗血栓性が得られにくくなる。また、総担持量が多すぎるとヘパリンが溶出した後に露出するカチオン表面が血栓形成を促進しまうことが懸念される。さらに、動物実験で被覆材料を被覆した抗血栓性材料の性能を評価した結果、総担持量が50〜1000mIU/cm2であることが好ましいことを見出した。そのため、総担持量が50〜1000mIU/cm2となる場合は(○)、50mIU/cm2未満又は1000mIU/cm2より大きい場合は(×)と判定した。
被覆材料を被覆した抗血栓性材料(例えばPETメッシュ)を横幅1cm、縦幅1cmのサイズにカットし、抗血栓性材料の表面における全原子の存在量に対する窒素原子の存在比率を、下記条件でXPS測定を実施して算出した。
[測定条件]
装置 :ESCALAB220iXL(VG Scientific社製)
励起X線 :monochromaticAlKα1,2線(1486.6eV)
X線径 :1mm
X電子脱出角度 :90°(抗血栓性材料の表面に対する検出器の傾き)
ここでいう抗血栓性材料の表面とは、XPSの測定条件におけるX電子脱出角度、すなわち抗血栓性材料の表面に対する検出器の傾きを90°として測定した場合に検出される、測定表面からの深さ10nmまでのことを指す。
被覆材料を被覆した抗血栓性材料(例えばPETメッシュ)を横幅1cm、縦幅4cmのサイズにカットし、基材の最大応力を下記条件で引っ張り試験を実施して評価した。
[測定条件]
装置 :引っ張り試験機テンシロンRTE−1210(オリエンテック社製)
ロードセル :500N
試料初期長さ :10mm
引っ張り速度 :5mm/分
上記被覆材料で被覆された基材の最大応力(MPa) = 最大荷重(N)/上記被覆材料で被覆された基材の断面積(mm2) ・・・式10
上記被覆材料で被覆された基材の断面積(mm2) = 13.5×13.5×3.14×80(本)/1000000 ・・・式11
被覆材料を被覆した抗血栓性材料(例えばPETメッシュ)を用いて、被覆材料の平均の厚みを分析した。下記条件でSTEM−EDX法を用いて被覆材料由来の硫黄原子が観測される厚み、STEM−EELS法を用いて被覆材料由来の窒素原子が観測される厚みを分析した。ここでいう平均の厚みは、少なくとも3点の平均の値を指す。
[測定条件]
装置 :電界放出型透過電子顕微鏡JEM−2100F(JEOL社製)
EELS検出器 :GIF Tridiem(GATAN社製)
EDX検出器 :JED−2300T(JEOL社製)
画像取得 :Digital Micrograph(GATAN社製)
試料調整 :超薄切片法(銅製マイクログリッドに懸架し、包埋樹脂はアクリル系樹脂を使用。)
加速電圧 :200kV
ビーム径 :直径0.7nm
エネルギー分解能 :約1.0eVFWHM
被覆材料を被覆したPETメッシュ(径:27μm、繊維間距離:100μm)を用いて遊離血栓捕捉器具を作製し、動物実験にて抗血栓性を評価した。ヘパリンを投与しない過酷な条件下でビーグル犬(雄、体重10〜12kg)の総頚動脈に遊離血栓捕捉器具を留置し、エコー及び造影剤にて血流を確認した。遊離血栓捕捉器具のPETメッシュに血栓が形成して、遊離血栓捕捉器具よりも末梢の血流が完全に確認できなくなる平均の閉塞時間を測定した。ここでいう平均の閉塞時間は、少なくとも3回分の平均の値を指す。平均の閉塞時間が20分以上の場合は、高い抗血栓性があるとして(○)、20分未満の場合は、抗血栓性が不十分として(×)とした。なお、一般的な臨床では抗凝固薬(ヘパリン等)を投与した条件下で遊離血栓捕獲器具は使用されており、かつ手技が20分程度のカテーテル治療において使用されていることから、ヘパリンを投与しない過酷な条件下で閉塞時間が20分以上であれば、臨床で使用することが可能になると考えられることから、○と判断した。
P.C.Begovacらの文献(Eur Vasc Endovasc Surg 25, 432−437 2003)等を参考にして、イヌ頚動脈に被覆材料を被覆したPET製の人工血管(内径:3mm、長さ:3cm)を移植し、抗血栓性と細胞接着性を評価した。移植2日前からアスピリン100mg/day、ジピリダモール50mg/dayを経口投与した。28日後に人工血管を摘出する日まで毎日投与した。ヘパリンを100IU/kg静脈投与して、クレンメで血流を遮断した後に、血管を5mmトリミングした。端端縫合により人工血管を総頚動脈に移植した。移植後、7日毎にエコー検査を実施して人工血管の開存状況を観察した。以下の式12に示すように、28日後の開存率を算出した。
開存率(%) = Nt(本)×100/移植した人工血管の本数(本) ・・・式12
Nt : 28日後まで開存した人工血管の本数(本)
また、28日後まで開存していた人工血管については、摘出後に病理組織学的検査を実施して内皮細胞の被覆率を評価した。以下の式13に示すように、内皮細胞の被覆率を算出した。
内皮細胞の被覆率(%) = Lt(cm)×100/人工血管の全長(cm) ・・・式13
Lt : 内皮細胞が移入した長さ(cm)
以上の場合は、高い抗血栓性と細胞接着性があるとして(○)、それ以外の場合は、抗血栓性又は細胞接着性が不十分として(×)とした。
基材であるPETメッシュ(径:27μm、繊維間距離:100μm)を0.6重量%過マンガン酸カリウム(和光純薬工業株式会社製)、0.6mol/L硫酸(和光純薬工業株式会社製)の水溶液に浸漬し、60℃で24時間反応させてPETメッシュを加水分解及び酸化した(加水分解及び酸化する工程)。反応後の水溶液を除去し、塩酸(和光純薬工業株式会社製)及び蒸留水で洗浄した。
まず、実施例4と同様の操作にてPETメッシュを加水分解及び酸化した。次いで、PEI水溶液の濃度を2.5重量%に変更して、PEIを基材と共有結合させ、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
まず、実施例4と同様の操作にてPETメッシュを加水分解及び酸化した。次いで、PEI水溶液の濃度を1.5重量%に変更して、PEIを基材と共有結合させ、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
まず、実施例4と同様の操作を行い、硫酸水溶液の濃度を0.1mol/Lに変更して加水分解及び酸化する工程を実施した。次いで、0.5重量%DMT−MM、5.0重量%PEI(LUPASOL(登録商標) P;BASF社製、重量平均分子量750000)を用いて実施例4と同様の操作を行い、PEIを基材と共有結合させ、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
まず、実施例7と同様の操作にてPETメッシュを加水分解及び酸化した。次いで、PEI水溶液の濃度を2.0重量%に変更して、実施例4と同様の操作を行って、PEIを基材と共有結合させ、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
まず、実施例4と同様の操作を行い、過マンガン酸カリウムの濃度を3.0重量%、硫酸水溶液の濃度を0.1mol/L、反応時間を3時間に変更して、PETメッシュを加水分解及び酸化する工程を実施した。次いで、0.5重量%DMT−MM、5.0重量%PEI(和光純薬株式会社製、重量平均分子量10000)を用いて実施例4と同様の操作を行いPEIと基材を共有結合させ、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
まず、実施例9と同様の操作を行い、PETメッシュを加水分解及び酸化後、0.5重量%DMT−MM(和光純薬工業株式会社製)、5.0重量%PEI(LUPASOL(登録商標) P;BASF社製、重量平均分子量750000)にてPEIと基材を共有結合させた。
比較例6と同様の操作を行い、PEIと基材を共有結合させた後、PETメッシュを0.5重量%DMT−MM、0.5重量%PAA(和光純薬工業株式会社製、重量永金分子量5000)の水溶液に浸漬し、30℃で2時間反応させた(第1の追加工程)。反応後の水溶液を除去し、炭酸ナトリウム水溶液や蒸留水で洗浄した。
比較例7と同様の操作を行い、PAAの重量平均分子量を1000000に変更し、第1の追加工程を実施した。次いで、比較例7と同様の操作を行い、PEIを用いた第2の追加工程、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
まず、実施例7と同様の操作を行い、PETメッシュを加水分解及び酸化後、0.5重量%DMT−MM、0.5重量%PEI(LUPASOL(登録商標) P;BASF社製、重量平均分子量750000)を用いてPEIと基材を共有結合させ、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例3と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
実施例9と同様の操作を行い、PETメッシュを加水分解及び酸化後、DMT−MMを添加せずにPEIと基材をイオン結合させ、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
実施例9と同様の操作を行い、PETメッシュを加水分解及び酸化後、0.5重量%DMT−MM、0.5重量%PEI(和光純薬製、重量平均分子量600)を用いてPEIと基材を共有結合させ、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
実施例9と同様の操作を行い、PETメッシュを加水分解及び酸化後、0.5重量%DMT−MM、0.5重量%PEI(和光純薬製、重量平均分子量2000000)を用いてPEIと基材を共有結合させ、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
比較例8と同様の操作を行い、PEIを用いた第2の追加工程を実施した後、再度重量平均分子量1000000のPAAを用いて第3の追加工程を実施し、基材とした。次いで、実施例9と同様の操作を行い、PEIを用いた第4の追加工程、臭化エチルを用いて第4級アンモニウム化工程を実施した後、実施例4と同様の操作にてヘパリンをPEIとイオン結合させた。
抗血栓性材料(例えばPETメッシュ)を0.5cm×0.5cmのサイズにカットし、生理食塩水を用いて37℃で30分間洗浄した。洗浄後のPETメッシュを“テストチーム(登録商標) ヘパリンS”(積水メディカル株式会社製)の操作手順に従って反応させ、405nmの吸光度をマイクロプレートリーダ(MTP−300;コロナ電気株式会社製)で測定して、テストチーム ヘパリンSの操作手順に従って抗ファクターXa活性による表面量を算出した。表面量は高い程よく、40mIU/cm2以上であることが好ましく、80mIU/cm2以上であることがより好ましい。
ヒト新鮮血をガラスビーズ入り三角フラスコの壁面を伝うように入れた。手のひらの上で、水平に円を描くように、およそ1秒間に2回の間隔で約5分間振とうし、脱線維血を調製した。抗血栓性材料(例えばPETメッシュ)を1.0×2.0cmのサイズにカットし、生理食塩水で37℃、30分間洗浄してから2mLのマイクロチューブに入れた。メッシュが入ったマイクロチューブに生理食塩水で50倍希釈した脱線維血を1mL添加し、37℃で4時間インキュベートした。インキュベート後、750Gで5分間遠心分離した。上清を採取し、576nmでのUV吸収を測定した。上記式9より算出した値が2より大きい値、すなわち溶血性有りであれば(+)、2以下の値、すなわち非溶血性であれば(−)と判定した。溶血毒性は無い方がよく、非溶血性であることが好ましい。
Claims (8)
- アルキレンイミン、ビニルアミン、アリルアミン、リジン、プロタミン及びジアリルジメチルアンモニウムクロライドからなる群から選択される化合物を構成モノマーとして含むカチオン性ポリマー並びに硫黄原子を含むアニオン性の抗凝固活性を有する化合物を含む被覆材料と、該被覆材料によって表面が被覆された基材と、を備え、
前記カチオン性ポリマーは、前記基材と共有結合され、
前記硫黄原子を含むアニオン性の抗凝固活性を有する化合物は、前記カチオン性ポリマーとイオン結合され、
前記カチオン性ポリマーは、正電荷の官能基を有し、かつ、前記基材は、負電荷の官能基を有し、
前記負電荷の官能基に対する前記正電荷の官能基の存在比率は、8.0〜30であり、
前記被覆材料の平均の厚みが15〜400nmである、抗血栓性材料。 - 抗ファクターXa活性から算出される、前記被覆材料に含まれるアニオン性の抗凝固活性を有する化合物の総量が50〜1000mIU/cm2である、請求項1記載の抗血栓性材料。
- 表面におけるX線電子分光法(XPS)で測定した全原子の存在量に対する窒素原子の存在比率が6.5〜9.5原子数%である、請求項1又は2記載の抗血栓性材料。
- 前記カチオン性ポリマーの重量平均分子量は、10000〜1000000である、請求項1〜3のいずれか一項記載の抗血栓性材料。
- 前記基材はポリエステル系ポリマーであり、前記抗血栓性材料の最大応力が350MPa以上である、請求項1〜4のいずれか一項記載の抗血栓性材料。
- 前記カチオン性ポリマーが共有結合する前の前記基材の負電荷の官能基の存在量に対する前記カチオン性ポリマーが共有結合した後の前記基材の負電荷の官能基の存在量の比率は、25%以下である、請求項1〜5のいずれか一項記載の抗血栓性材料。
- 細胞接着性を有する、請求項1〜6のいずれか一項記載の抗血栓性材料。
- 請求項1〜7のいずれか一項記載の抗血栓性材料を有する医療器材。
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