JP6621741B2 - Ctla−4に対する親和性が改善したcd86バリアント - Google Patents
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Description
配列番号1は、ヒトCTLA−4のアミノ酸配列である(GenBank:AAD00698.1に対応する)。
配列番号2は、ヒトCD28のアミノ酸配列である(GenBank:AAA51944.1に対応する)。
配列番号3は、N末端から23個のアミノ酸のシグナル配列を除く、ヒト野生型CD86の単量体細胞外ドメインのアミノ酸配列である。
配列番号4は、N末端シグナル配列を含む、ヒト野生型CD86の単量体細胞外および膜貫通ドメインのアミノ酸配列である。本明細書におけるアミノ酸位置のすべてのナンバリングは、N末端から始まる配列番号4における位置に基づく。したがって、配列番号3のN末端のアラニンは24とナンバリングされる。
配列番号5は、Peach et al (Journal of Biological Chemistry 1995, vol 270(36), 21181-21187)に開示のヒトCD86の細胞外ドメインの変異体形態のアミノ酸配列である。野生型配列の位置79のHは、配列番号5の配列の対応する位置において、Aで置換される。この変化は、本明細書においてH79Aと呼ばれる。本明細書において参照される他のアミノ酸置換全体を通じて、同じ命名法が使用される。位置のナンバリングは、上述のとおり配列番号4に基づく。
配列番号6から24は、本発明の特定のタンパク質のアミノ酸配列である。
配列番号25から43はそれぞれ、配列番号6から24のそれぞれのアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列である。
配列番号44は、ヒトCD86の全長アミノ酸配列である(GenBank:ABK41931.1に対応する)。
配列番号45は、マウスCTLA−4のアミノ酸配列である(UniProtKB/Swiss−Prot:P09793.1に対応する)。
配列番号46は、マウスCD28のアミノ酸配列である(GenBank:AAA37395.1に対応する)。
B7タンパク質、CD80およびCD86(B7−1およびB7−2)は、抗原提示細胞の表面上に発現し、T細胞受容体CD28およびCTLA−4と相互作用する。CD28へのB7分子の結合は、T細胞活性化を促進する一方で、CTLA−4へのB7分子の結合は、T細胞の活性化のスイッチをオフにする。B7タンパク質とCD28および/またはCTLA−4との間の相互作用は、免疫活性化および調節において重要な役割を果たす共刺激シグナル伝達経路を構成する。したがって、B7分子は、経路の一部であり、免疫阻害を解き、それにより患者における免疫を増強するための操作が可能である。
本発明は、CTLA−4に結合し、CD28にもまた結合しうるポリペプチドに関する。本明細書において使用されるCTLA−4という用語は、典型的にはヒトCTLA−4を指し、本明細書において使用されるCD28という用語は、典型的にはヒトCD28を指すが、他の哺乳動物に由来するCTLA−4またはCD28、たとえば霊長類またはマウスCTLA−4またはCD28を指してもよい。ヒトCTLA−4およびヒトCD28の配列はそれぞれ、配列番号1および2に記載されている。マウスCTLA−4およびマウスCD28の配列はそれぞれ、配列番号45および46に記載されている。本発明のポリペプチドは、他の哺乳動物に由来するCTLA−4またはCD28、たとえば霊長類またはマウスCTLA−4またはCD28に対して、一定の結合親和性を有していてもよい。
結合比=[CD28に対する結合親和性]÷[CTLA−4に対する結合親和性]
あるいは、より高い値がより高い親和性を示すパラメータを使用して結合親和性が評価される場合、上の式の逆数が好ましい。いずれの文脈においても、本発明のポリペプチドは、好ましくは、ヒト野生型CD86よりも高い結合比を有する。所定のポリペプチドの結合比と別のポリペプチドの結合比との直接的な比較は、典型的には、結合親和性を評価して両方のポリペプチドの結合比を算出するために、同じパラメータが使用されることが必要であることが認められる。
本発明のポリペプチドは、たとえばCTLA−4を発現する細胞、たとえばT細胞に投与されるとき、CTLA−4からのシグナル伝達を調節してもよい。好ましくは、結合性ドメインは、前記シグナル伝達を減少させ、すなわちそれを阻害または遮断し、それにより前記細胞の活性化を増加させる。薬剤(たとえば本発明のポリペプチド)の投与の結果としてのCTLA−4シグナル伝達および細胞活性化における変化は、任意の好適な方法により決定されてもよい。好適な方法には、薬剤の存在下または好適な対照の存在下で、T細胞の表面上に発現するCTLA−4に結合し、それを通じてシグナル伝達する(たとえばラージ細胞上の)膜結合性CD86の能力のアッセイが含まれる。対照の存在下でのT細胞IL−2産生のレベルおよび/またはT細胞増殖に対する、薬剤の存在下でのT細胞IL−2産生のレベルの増加またはT細胞増殖の増加は、CTLA−4を通じたシグナル伝達の減少および細胞活性化の増加を示す。このタイプの典型的なアッセイは、US20080233122の実施例9に開示されている。
本発明はまた、本発明のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドに関する。したがって、本発明のポリヌクレオチドは、本明細書に記載の任意のポリペプチドをコードしていてもよい。「核酸分子」および「ポリヌクレオチド」という用語は、本明細書において互換的に使用され、任意の長さの核酸の重合体形態、デオキシリボヌクレオチドもしくはリボヌクレオチドのいずれか、またはそれらの類似体を指す。ポリヌクレオチドの非限定的な例には、遺伝子、遺伝子断片、メッセンジャーRNA(mRNA)、cDNA、組換えポリヌクレオチド、プラスミド、ベクター、任意の配列の単離DNA、任意の配列の単離RNA、核酸プローブ、およびプライマーが含まれる。本発明のポリヌクレオチドは、単離または実質的に単離された形態で提供できる。実質的に単離されていることにより、任意の周囲の媒体からの、完全ではないが実質的なポリペプチドの単離がありうることが意図されている。ポリヌクレオチドは、それらの意図された使用に干渉しない担体または希釈剤と混合されていてもよく、それでも実質的に単離されているとみなされる。
別の一態様において、本発明は、本明細書に記載の本発明の分子、たとえばポリペプチド、ポリヌクレオチド、ベクターおよび細胞を含む組成物を提供する。たとえば、本発明は、1つまたは複数の本発明の分子、たとえば1つまたは複数の本発明のポリペプチドと、少なくとも1種の薬学的に許容される担体とを含む組成物を提供する。
実施例
イントロダクション
本発明のポリペプチドの製造のための出発物質は、ヒトCD86の単量体可溶性細胞外結合性ドメインであった。すなわち、ヒトCD86のCTLA−4結合性ドメインである。このドメインのアミノ酸配列およびCTLA−4と複合したCD86の構造モデル(Schwartz et al; Nature 2001; 410(6828) p604-608)を、候補ポリペプチドの4つの異なる出発ファージディスプレイライブラリーを設計するために使用した。すなわち、AL−1014−01、AL−1014−02、AL−1014−03およびAL−1014−04である。標準的プロトコルを使用し、候補ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を使用して、ファージディスプレイライブラリーを製造した。候補ポリペプチドのアミノ酸配列は、下に記載のとおり設計した。
ライブラリーAL−1014−01の設計の主目的は、CTLA−4との相互作用のための、CD86の結合性ドメインの結合表面の増加を提供することであった。この目的のため、CD86のFGループ(位置114から121、図4におけるナンバリング)における様々な残基を変異のため選択した。FGループの伸長を可能にする2つの挿入もまた導入した。CD86の野生型配列に対する位置および導入変異を、下の表1に要約した。各位置において許容される可変性が示される。表1に示すすべての可能な変異の組合せから生じるすべての可能なポリペプチドをコードするヌクレオチドを設計し、AL−1014−01ファージディスプレイライブラリーを標準的プロトコルにより製造するために使用した。
本実施例において適用した選択方略は、6回のラウンド(R1からR6)からなり、これを表3に要約する。
実施例1から選択されたファージクローンを、標準的プロトコルにより、融合タンパク質フォーマット内にリクローニングし、各クローンをγ2/γ4 Fcに融合した。融合タンパク質をHEK293細胞内で発現させた。細胞の培養上清を回収し、下に記載の方法によりELISAおよびBiacore(商標)の両方を使用して発現した融合タンパク質をアッセイした。結果を表4に示し、これはまた各クローンに存在する変異を示す。ELISAアッセイ(907)で最も性能の良いクローンは、野生型タンパク質CD86よりもほぼ10倍高いEC50結合比を有していた。Biacore(商標)アッセイ(904)で最も性能の良いクローンは、野生型タンパク質CD86よりも4倍超高いKd結合比を有していた。
96ウェル平底高結合プレート(Greiner#655074)を、一晩4℃でインキュベートすることにより、CTLA4−Fc(Fitzgerald#30R−CD152)またはCD28−Fc(R&D systems 342−CD)のいずれかでコーティングした。プレートを洗浄し(洗浄緩衝液:PBS+0.05%Tween20(PBST)Medicago#09−9410−100)、次にPBST+3%BSA(Merck、#1.12018.0100)中でブロッキングした。プレートを再び洗浄し、試料または対照(1/5に連続希釈 200〜0.001μg/ml)をウェルに添加した。試料を1時間室温でインキュベートし、次に洗浄した。検出抗体、ヤギ抗ヒトIgG Fcγ−HRP(Jackson、#109−035−098)を添加し、その後SuperSignal Pico Chemiluminescent基質(Thermo#37069)を使用してプレートを展開し、Envisionリーダー(Perkin Elmer)で検出した。EC50値をCTLA4およびCD28の両方について算出した。結合比(EC50結合比=[CD28に対するEC50]÷[CTLA−4に対するEC50])を、各ポリペプチドについて算出し、表4に示した。
CTLA4−Fc(Fitzgerald#30R−CD152)またはCD28−Fc(R&D systems 342−CD)を、従来のアミン結合を使用してBiacore(商標)センサーチップ、CM5に固定化した。CD86変異体分子および対照(1/2に連続希釈 100〜1.5nM)を、HBs−P(GE、BR−1003−69)における結合について流速30μl/mlで解析した。会合が3分間、解離が10分間続いた。5mM NaOHを30秒間使用して再生を2度実施した。動態パラメータおよび親和性定数を、BIAevaluation 4.1ソフトウェアを使用して算出した。結合比(Kd結合比=[CD28に対するKd]÷[CTLA−4に対するKd])を、各ポリペプチドについて算出し、表4に示した。
ライブラリー製造
2つのさらなるライブラリーAL−1014−11およびAL−1014−12の出発物質は、実施例1および2において同定された6つのクローン、すなわち、901、904、906、907、908、915であった。リアセンブリPCRステップ(reassembly PCR step)に含まれる変異オリゴでのエラープローンPCRにより、WO2002048351、WO200309734、およびWO2007057682に記載のプロトコルに従い追加の多様性を生じた。適用されたオリゴは、CD86分子のホットスポット領域における変異を含んでいた。各ライブラリーからおよそ20個のクローンをシークエンシングした。2つのライブラリーは、組換えクローン、エラープローンPCR生成クローン、および変異オリゴの導入により製造されたクローンを含有していた。各クローンは、CD86の野生型配列と比較して平均して3個〜11個の変異を含有していた。
実施例1に記載の選択ラウンドR2からR6を、ライブラリーAL−1014−11およびAL−1014−12の両方に適用した。最後の2回のラウンドにおいて選択されたクローンをシークエンシングし、組換えおよび新規変異が得られたことを確認した。
最後の2回の選択ラウンドからのおよそ1250個のクローンを、ファージストックとして発現させ、CTLA−4およびCD28との結合について、実施例1に記載の同じハイスループットスクリーニングELISAにより解析した(データは示さず)。クローンをそれらのCTLA−4およびCD28との結合に基づき順位付けした。上位10個のクローンを、CTLA−4への高い結合性およびCD28への低い結合性の基準に基づき選択した。これらクローンの配列を決定し、それぞれをHEK293細胞からガンマ2/ガンマ4融合として、実施例2に記載のとおり発現させた。
実施例3において選択された10個のクローンそれぞれからのポリペプチドを、さらに以下のとおり特徴付けた。
各クローンをコードするプラスミドを、Freestyle 293−T細胞(Invitrogen)に標準的プロトコルによりトランスフェクトし、上清を6日目に回収した。ポリペプチドおよび対照を、プロテインAカラム(GE Healthcare#17−0402−01)を使用して親和性精製した。
実施例2に記載のプロトコルと同様に、96ウェル平底高結合プレート(Greiner#655074)を、4℃で一晩インキュベートすることにより、CTLA4−Fc(Fitzgerald#30R−CD152)またはCD28−Fc(Simon Davis、オクスフォード大学の好意により提供)のいずれかでコーティングした。プレートを洗浄し(洗浄緩衝液:PBS+0.05%Tween20(PBST)Medicago#09−9410−100)、次にPBST+3%BSA(Merck、#1.12018.0100)中でブロッキングした。プレートを再び洗浄し、試料または対照(1/3に連続希釈 50000〜0001nM)をウェルに添加した。試料を1時間室温でインキュベートし、次に洗浄した。検出抗体、ヤギ抗ヒトIgG Fcγ−HRP(Jackson、#109−035−098)を添加し、その後SuperSignal Pico Chemiluminescent基質(Thermo#37069)を使用してプレートを展開し、Envisionリーダー(Perkin Elmer)で検出した。
96ウェル平底高結合プレート(Greiner#655074)を4℃で一晩インキュベートすることにより、野生型CD28−Fc(R&D Systems#7625−B2)でコーティングした。プレートを洗浄し(洗浄緩衝液:PBS+0.05%Tween20(PBST)Medicago#09−9410−100)、次にPBST+3%BSA(Merck、#1.12018.0100)中でブロッキングした。試料(CD86変異体または野生型タンパク質、1/4に連続希釈 30000から0.3ng/ml)をビオチン化CTLA4(Fitzgerald#30R−CD152)で、室温で1時間インキュベートし、次に混合物をELISAプレートのブロッキングされたウェルに添加した。検出をストレプトアビジン−HRP(Pierce#21126)で実施し、その後SuperSignal Pico Chemiluminescent基質(Thermo#37069)を使用してプレートを展開し、Envisionリーダー(Perkin Elmer)で検出した。結果を表2に示す。IC50値を算出し、表8に示す。すべての分子は、野生型およびH79Aの両方よりも良好なIC50値を示し、最良の変異体CD86分子のICは、野生型と比較して100倍超改善した。
実施例2におけるように、CTLA4−Fc(Fitzgerald#30R−CD152)またはCD28−Fc(Simon Davis、オクスフォード大学の好意により提供)のいずれかを、従来のアミン結合を使用してBiacore(商標)センサーチップ、CM5に固定化した。CD86変異体分子および対照(1/3に連続希釈 1000〜4nM)を、HBs−P(GE、BR−1003−69)における結合について流速30μl/mlで解析した。会合が3分間、解離が10分間続いた。5mM NaOHを30秒間使用して再生を2度実施した。動態パラメータおよび親和性定数を、BIAevaluation 4.1ソフトウェアを使用して算出した。
本発明の例示的変異体CD86分子、904の抗腫瘍活性を、マウス膀胱癌細胞を接種したC57BL/6マウスモデルにおいて研究した。簡潔に述べると、2.5×105個のマウス膀胱癌細胞、MB49を、C57BL/6マウスの右側腹部内に皮下注射した(1群あたりn=8)。7日目、10日目および13日目に、本発明の変異体CD86分子(904)、またはアイソタイプ対照を、100μl用量で原発腫瘍への腫瘍周囲(p.t.)注射により動物に投与した。実験を通じて、キャリパーを使用して腫瘍成長および生存をモニタリングし、楕円体積式: =4/3*π*a(長さの半径)*b(幅の半径)*c(深さの半径)により腫瘍サイズを算出した。腫瘍が1cm3を超えた場合または潰瘍が生じた場合、マウスを屠殺した。結果を図3に示す。倫理的考慮から第1のマウスを屠殺した23日目の腫瘍体積データを示す。変異体CD86分子は、対照と比較して有意な腫瘍効果を示した(*p<0.05)。
本発明の例示的変異体CD86分子、1040のマウスおよびヒトCTLA−4に対する相対親和性を、阻害ELISA結合アッセイを使用して調査した。これら実験において使用された1040分子は、二重特異性分子の一部として抗CD40抗体にコンジュゲートしている。CD86分子のCTLA−4結合特性は、このコンジュゲーションによる影響を受けない(データは示さず)。
Claims (9)
- 配列番号6から24のうちのいずれか1つから選択されるアミノ酸配列を含む、野生型ヒトCD86よりも高い親和性でCTLA−4に結合する、ポリペプチド。
- 免疫グロブリンFc領域、Igドメイン、アルブミン、アルブミン結合モジュール、PEG、または治療剤もしくは検出可能な標識から選択される分子に結合される、請求項1に記載のポリペプチド。
- 個体における疾患または状態を治療または予防するための方法における使用のための、請求項1または2に記載のポリペプチド。
- 前記疾患または状態が癌である、請求項3に記載のポリペプチド。
- 前記癌が、前立腺癌、乳癌、結腸直腸癌、膵臓癌、卵巣癌、肺癌、子宮頚癌、横紋筋肉腫、神経芽細胞腫、多発性骨髄腫、白血病、急性リンパ芽球性白血病、黒色腫、膀胱癌、胃癌、頭頸部癌、肝臓癌、皮膚癌、リンパ腫またはグリア芽腫である、請求項4に記載のポリペプチド。
- 請求項1または2に記載のポリペプチドおよび少なくとも1種の薬学的に許容される希釈剤または担体を含む組成物。
- CTLA−4を発現する細胞の活性化を増加させるために使用するための、請求項1または2に記載のポリペプチド。
- 請求項1または2に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
- CTLA−4結合ポリペプチドを同定する方法であって、候補ポリペプチドが、CTLA−4への結合について、請求項1または2に記載のポリペプチドと競合するかどうかを決定することを含み、前記候補ポリペプチドが、配列番号3と同一であるアミノ酸配列を含まない、方法。
Applications Claiming Priority (3)
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