JP6614659B2 - Cidecによるうつ病の検査方法 - Google Patents
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Description
また、特許文献2には、FASLG、CX3CR1、TBX21、ID2、SLAMF7、PRSS23、YWHAQ、TARDBP、ADRB2、PPP1R8、MMAA、SQLE、PDHA1、HAVCR2、RACGAP1、AHNAK、EDG8、およびDUSP5の18遺伝子の発現量を測定し、前記測定結果に基づき当該被験者がうつ病に罹患しているか否かを判定することを特徴とする、うつ病の検査方法が、記載されている。
しかし、これらの内で臨床応用されているものは皆無であるので、より的確な診断が可能であり、さらにうつ病治療薬の治療効果を反映するような分子マーカーが求められていた。
[1]被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含み、CIDECの発現量を基準値と比較することにより被検動物のうつ病の発症の有無が判定される、該動物におけるうつ病の診断のための検査方法。
[2]さらに、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2からなる群より選ばれる1種又は2種以上の発現量を測定する工程を含む、[1]に記載のうつ病の診断のための検査方法。
[3]さらに、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2の発現量を測定する工程を含む、[1]に記載のうつ病の検査方法。
[4]前記試料は、血液である、[1]から[3]のいずれかに記載のうつ病の検査方法。
[5]前記測定が、マイクロアレイ、リアルタイムPCR、ELISA法、ウエスタンブロット法、FACS解析法、分光光度法、蛍光光度法、質量分析法、及びクロマトグラフィーからなる群より選ばれる1種又は2種以上により行われる、[1]から[4]のいずれかに記載のうつ病の診断のための検査方法。
[6]被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含み、CIDECの発現量が高いほどうつ病の重症度が高いという基準に基づいてうつ病の重症度が判定される、該動物におけるうつ病の重症度評価のための検査方法。
[7]うつ病治療薬が投与されたうつ病治療を必要とする動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、該動物におけるうつ病の治療効果の評価方法。
[8]被検体とうつ病治療薬の候補化合物を接触させた後、該被検体中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、うつ病治療薬のスクリーニング方法。
[9]CIDECの発現量を測定し得る試薬を含んでなる、うつ病の診断のための検査用、うつ病治療効果評価用、またはうつ病治療薬候補化合物のスクリーニング用キット。
[10]被検動物のうつ病の診断の指標とするために、被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、CIDECの発現量の測定方法。
(1)うつ病の診断のための検査方法
本発明の第1は、被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、該動物におけるうつ病の診断のための検査方法である。
免疫測定法としては、ウエスタンブロット法、酵素免疫定量法に従い定量検出する方法、蛍光免疫測定法、化学発光免疫測定法等で測定する方法等が好ましい。酵素免疫定量法は、標識イムノアッセイ法のうち、酵素を標識物質として用いる検出方法である。中でも、イムノソルベントを用いる、enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) 法を選択するのが、特に好適である。また、ELISAのうちサンドイッチ法は、操作の簡便性、経済上の利便性、とりわけ臨床検査における汎用性を考慮すると、特に好適な測定態様の一つとして挙げられる。これらの測定方法は、例えば、新生化学実験講座(日本生化学会編;東京化学同人)、Molecular Cloning, A Laboratory Manual (T. Maniatis et al., Cold Spring Harbor Laboratory (2001))、Antibodies - A Laboratory Manual(E.Harlow, et al., ColdSpring Harbor Laboratory(1988))等の一般的実験書に記載の方法又はそれに準じて行うことができる。
CIDECと上記他のマーカーとを組み合わせて判別分析を行うことにより、より精度の高いうつ病検査ができる。
本発明のCIDECマーカーを用いたうつ病検査方法の具体的方法として、被検者(動物)のうつ病の重症度を評価するための検査方法が挙げられる。うつ病の重症度とは、社会活動や日常生活においてうつ病症状が現れることにより、どの程度支障が生じるかを示す尺度である。たとえば、「軽度」では、仕事や日常生活、他人とのコミュニケーションに生じる障害はわずかで、周囲の人は気づかないこともある。一方「重度」では、仕事や日常生活、他人とのコミュニケーションが明らかに困難となる。「中等度」は、「軽度」と「重度」の間に位置する。
本発明は、さらに上記うつ病の診断のための検査に用いるためのキット、あるいは下述するうつ病の治療効果の評価、あるいはうつ病治療薬のスクリーニング方法を行うためのキットも含まれる。キットの内容は、機器または試薬の組み合わせにより構成されるが、以下に述べる各構成要素と本質的に同一、またはその一部と本質的に同一な物質が含まれていれば、構成または形態が異なっていても、本発明のキットに包含される。
なお、本発明のキットは、他の分子マーカー、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2を測定するためのプライマーや抗体などの試薬を含んでもよい。
本発明の他の態様は、うつ病の治療薬が投与されたうつ病治療を必要とする動物から採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、該動物におけるうつ病治療効果の評価方法である。
本発明の他の態様は、被検体とうつ病治療薬の候補化合物を接触させた後、該被検体の試料中のCIDEC発現量を測定する工程を含む、うつ病治療薬のスクリーニング方法である。
その投与量、投与方法、処理時間等は、用いる被検体に従って適宜選択すればよい。
群馬大学病院にて治療中の大うつ病(MDD)患者のうち、初発年齢が50歳以上であり、DSM-IV分類において大うつ病のメランコリー型を呈し、かつ、他の精神疾患の合併を認めない者を対象とした。MDDの重症度はハミルトンうつ病評価尺度構造化面接法(Structured Interview Guide for the Hamilton Depression Rating Scale;SIGH-D)により採点し、8点未満を寛解とした。
対照として年齢と性別を一致させた健常者をリクルートした。リクルートした健常者に、精神疾患罹患歴や家族歴が無いことを確認した。リクルートした被験者に認知機能検査(Mini Mental State Examination; MMSE)を行い、認知機能が正常であることを確認した。
以下表1に、リクルートした被験者を示す。
RM:寛解した遅発性うつ病患者
HC:健常者
SIGH-D:ハミルトンうつ病評価尺度構造化面接法
MMSE: 認知機能検査
遅発性うつ病患者の2名は、MMSEを辞退した。データは、平均値±標準誤差(mean ± SE)で表す。表中の米印(*)は、対応する健常者群に対するp値がp<0.05であることを示す(ボンフェローニ試験)。
被験者から10mLの血液を採取し、血液中の有核細胞(主に白血球)から、QIAmp RNA Blood Mini Kit (QIAGEN K.K.)によりRNAを抽出した。抽出操作はキットに添付の説明書の記載に多少の修正を加えて行われた。その操作は、要約すると次のとおりである。採取した10mlの血液を、50mlチューブに半分ずつ分け、各々のチューブに25mlのバッファーELを加えて、よく転倒混和した。各々のチューブを氷中に20分置いた後、4℃、480×gで15分遠心し、上清を捨てた。チューブ中のペレットに10mlのバッファーELを加えてボルテックスし、再懸濁した。再懸濁したサンプルを、4℃、480×gで15分遠心し、上清を捨てた。2-メルカプトエタノールを含むバッファーRLTをペレットに3ml加えて、ボルテックスにより溶解した。前記溶解物はQIAshredder spin columnsで室温にて2分遠心することによりホモジナイズした。ホモジナイズした溶解物に等量の70%エタノールを加えて、ボルテックスによりよく混和した。混和したサンプルをQIAamp spin columnに加えて15秒遠心した。カラムを洗浄後、DNaseI消化した。溶出工程はキットに添付の説明書どおりに行った。溶出したサンプルは標準的なエタノール沈殿法により処理された。RNAペレットはRNaseフリーの水に溶解した。
RNAの量はNanodrop ND-1000 spectrophotometer (Thermo Fisher Scientific Inc.)により測定した。
メスのC57BL/6Jマウス(8週齢)をCharles River Laboratories Japanより購入し、1週間の馴化後、ペントバルビタール麻酔下にて卵巣の摘除を行った(Ovariectomy; OVX)。同様にペントバルビタール麻酔を行い、卵巣を露出させたものの摘出せずに縫合したものを対照動物とした(Sham-operation; Sham)。
上記処置の2週間後より、慢性変動ストレス(chronic ultra-mild stress; CUMS)の負荷を開始した。CUMSの方法は既報(Uchida et al., Neuron, 69, 359-372, 2011)に準じ、6週に亘って負荷を行った。なお、同期間ストレス負荷を行わなかった群(Nonstress:NS群)を設けた。すなわち、本試験は、Sham+NS(n=9)、Sham+CUMS(n=8)、OVX+NS(n=8)、及び、OVX+CUMS(n=9)の4つの群構成で行われた。
強制水泳試験は、以下のように行った。アクリルシリンダー(高さ22cm、直径11.5cm)に室温の水を高さ15cmまで注ぎ、その中にマウスを置いた。マウスの行動は、パソコンに接続したCCDカメラにより5分間記録され、ImageJ PS1(小原医科産業社製)による解析を行った。記録された無動時間をうつ様行動の指標とした。
オープンフィールド試験は、以下のように行った。オープンフィールド装置(50×50×40cm)を発光ダイオードで照明し(フィールドの中央で30 lux)、フィールドの中央にマウスを置いて、5分間自由に移動させた。中央領域内(フィールドの36%)で移動した合計距離と、中央領域にて過ごした時間を、指標として採用した。集めたデータは、ImageJOF4(小原医科産業社製)を使用して解析した。
ペントバルビタール麻酔下にてマウスの大静脈から300μLの血液を採取後、すぐにヘパリン処置し、1000×gにて2分遠心した。得られたペレットは、2−メルカプトエタノールを含む冷却した溶解バッファーに溶解した。当該溶解物から、GeneJet Whole Blood RNA Purification Mini Kit (Thermo Fisher Scientific Inc.)を使用して、キット添付の説明書に従ってトータルRNAを抽出した。
RNAの量はNanodrop ND-1000 spectrophotometer (Thermo Fisher Scientific Inc.)により測定した。
被験者ならびにマウスから得たRNAを、Agilent Low Input Quick Amp Labeling Kit, one-color (Agilent Technologies)を使用して、キットに添付の説明書に従ってCyanine 3でラベルした。ラベル化したRNAを、 RNeasy mini spin column(QIAGEN)により精製した。得られたラベル化RNAをフラグメント化し、Agilent SurePrint G3 Human GE 8×60K v2 Microarray (Design ID: 039494)ならびにAgilent SurePrint G3 Mouse GE 8×60K Microarray (Design ID: 028005)と65℃で17時間ハイブリダイズさせた後、マイクロアレイを洗浄し、Agilent DNA microarray scannerにより測定した。発光強度をAgilent feature extraction software version 10.7.3.1により定量化し、Agilent GeneSpring GX version 11.0.2により標準化した。
この遺伝子リスト同士を照合した結果、一致する遺伝子14種を見出した(表2)。これをうつ病およびうつ症状を反映するバイオマーカーの候補とした。
被験者から得たRNAをPrimeScript RT reagent Kit (Takara Bio Inc.)により逆転写してcDNAサンプルを得た後、このcDNAサンプルとマイクロアレイの結果から得られたバイオマーカー候補14種に対する特異的なプライマーペアー(表3)ならびにSYBR Premix Ex Taq II (Takara Bio Inc.)とを混合してリアルタイム定量PCRを行った。リアルタイム定量PCRは、StepOnePlusリアルタイムPCRシステム(Applied Biosystems)により、95℃3秒及び60℃30秒を50サイクルで行った。なお、内標準物質としてRPS29を選択した。ターゲット遺伝子の増幅量はΔΔCt法に従って定量解析を行い、健常者と比較した。
配列番号9及び10は、ARFRP1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号11(forward)及び12(reverse)に示す。配列番号13及び14は、ARFRP1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号15(forward)及び16(reverse)に示す。
配列番号17及び18は、BANPのヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号19(forward)及び20(reverse)に示す。配列番号21及び22は、BANPのマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号23(forward)及び24(reverse)に示す。
配列番号25及び26は、BCL11Bのヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号27(forward)及び28(reverse)に示す。配列番号29及び30は、BCL11Bのマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号31(forward)及び32(reverse)に示す。
配列番号33及び34は、FYCO1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号35(forward)及び36(reverse)に示す。配列番号37及び38は、FYCO1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号39(forward)及び40(reverse)に示す。
配列番号41及び42は、NIPAL3のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号43(forward)及び44(reverse)に示す。配列番号45及び46は、NIPAL3のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号47(forward)及び48(reverse)に示す。
配列番号49及び50は、RAB11FIP4のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号51(forward)及び52(reverse)に示す。配列番号53及び54は、RAB11FIP4のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号55(forward)及び56(reverse)に示す。
配列番号57及び58は、RNASE1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号59(forward)及び60(reverse)に示す。配列番号61及び62は、RNASE1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号63(forward)及び64(reverse)に示す。
配列番号65及び66は、RPL23Aのヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号67(forward)及び68(reverse)に示す。配列番号69及び70は、RPL23Aのマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号71(forward)及び72(reverse)に示す。
配列番号73及び74は、RPS2のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号75(forward)及び76(reverse)に示す。配列番号77及び78は、RPS2のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号79(forward)及び80(reverse)に示す。
配列番号81及び82は、RPS29のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号83(forward)及び84(reverse)に示す。配列番号85及び86は、RPS29のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号87(forward)及び88(reverse)に示す。
配列番号89及び90は、SIGIRRのヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号91(forward)及び92(reverse)に示す。配列番号93及び94は、SIGIRRのマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号95(forward)及び96(reverse)に示す。
配列番号97及び98は、SLC35F2のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号99(forward)及び100(reverse)に示す。配列番号101及び102は、SLC35F2のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号103(forward)及び104(reverse)に示す。
配列番号105及び106は、SLC36A1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号107(forward)及び108(reverse)に示す。配列番号109及び110は、SLC36A1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号111(forward)及び112(reverse)に示す。
配列番号113及び114は、STYXL1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号115(forward)及び116(reverse)に示す。配列番号117及び118は、STYXL1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号119(forward)及び120(reverse)に示す。
また、マイクロアレイ解析においてうつ病で特異的に発現減少していた遺伝子のうち、ARFRP1(図5左上)、BCL11B(図5右上)ならびにSLC35F2(図5下)は、リアルタイム定量PCRにおいても、うつ病群(DP)において有意な発現減少を示した。
OVX+CUMSマウスに抗うつ薬であるエスシタロプラムを投与した結果、行動異常の改善が認められた(図9)。
そこで、Sham+NSに水を投与した群、OVX+CUMSに水を投与した群、及び、OVX+CUMSにエスシタロプラムを投与した群の計3群の血液からRNAを抽出し、PrimeScript RT reagent Kit (Takara Bio Inc.)により逆転写してcDNAサンプルを得た後、このcDNAサンプルとマイクロアレイの結果から得られたバイオマーカー候補14種に対する特異的なプライマーペアー(表3)ならびにSYBR Premix Ex Taq II (Takara Bio Inc.)とを混合してリアルタイム定量PCRを行った。詳細な手順は上記と同様である。なお、内標準物質としてRps29を選択した。ΔΔCt法に従って定量解析を行い、Sham+Nonstressマウスと比較した。その中から、上記ヒト解析で重要と判断された4種(Cidec、Rnase1、Slc36a1、Styxl1)をグラフに示した(図10)。
その結果、うつ病モデルであるOVX+CUMSマウスにおいて全ての遺伝子で発現が増加し、抗うつ薬の処置により改善する傾向が見られた。特に、Slc36a1は、上記発現増加及び改善において、統計学的な有意差が認められた。
Claims (10)
- 被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含み、CIDECの発現量を基準値と比較することにより被検動物のうつ病の発症の有無が判定される、該動物におけるうつ病の診断のための検査方法。
- さらに、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2からなる群より選ばれる1種又は2種以上の発現量を測定する工程を含む、請求項1に記載のうつ病の診断のための検査方法。
- さらに、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2の発現量を測定する工程を含む、請求項1に記載のうつ病の検査方法。
- 前記試料は、血液である、請求項1から3のいずれか一項に記載のうつ病の診断のための検査方法。
- 前記測定が、マイクロアレイ、リアルタイムPCR、ELISA法、ウエスタンブロット法、FACS解析法、分光光度法、蛍光光度法、質量分析法、及びクロマトグラフィーからなる群より選ばれる1種又は2種以上により行われる、請求項1から4のいずれか一項に記載のうつ病の診断のための検査方法。
- 被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含み、CIDECの発現量が高いほどうつ病の重症度が高いという基準に基づいてうつ病の重症度が判定される、該動物におけるうつ病の重症度評価のための検査方法。
- うつ病治療薬が投与されたうつ病治療を必要とする非ヒト動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、該非ヒト動物におけるうつ病の治療効果の評価方
法。 - 被検体とうつ病治療薬の候補化合物を接触させた後、該被検体中のCIDECの発現量を測
定する工程を含む、うつ病治療薬のスクリーニング方法。 - CIDECの発現量を測定し得る試薬を含んでなる、うつ病の診断のための検査用、うつ病
治療効果評価用、またはうつ病治療薬候補化合物のスクリーニング用キット。 - 被検動物のうつ病の診断の指標とするために、被検動物より採取された試料中のCIDEC
の発現量を測定する工程を含む、CIDECの発現量の測定方法。
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