JP6566607B2 - 生体試料中レナリドミドの前処理方法及び分析方法 - Google Patents
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Description
本発明は、レナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料を前処理するための方法であって、酸性条件下で除タンパクが行われることを特徴とする方法、及び、このようにして前処理したレナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料を高速液体クロマトグラフィーにより分析することを特徴とする、生体試料中のレナリドミドのエナンチオマーを定量するための方法に関する。
レナリドミドは、サリドマイドの誘導体であり、多発性骨髄腫など多様な悪性血液疾患に有効な免疫調製薬として広く用いられている。レナリドミドは、サリドマイドと比較して、改善された毒性プロフィール及び優れた免疫調製活性を有することが報告されている（非特許文献１）。逆相モードを利用したＨＰＬＣ法によって、レナリドミドの薬物動態学的特性が明らかにされており（非特許文献２; 非特許文献３; 及び非特許文献４）、レナリドミドの最終排泄半減期は、約３〜４時間であると推測されている。
また、サリドマイドやその誘導体、類似体に関しては、Ｒ体とＳ体との薬物活性の相違が報告されている。例えば、サリドマイドの鎮静作用はＲ体のみに見られることが報告されている一方で（非特許文献５）、Ｓ−ポマリドミド（３−アミノ−フタリミド−グルタリミド）は、Ｒ体やラセミ体と比較して、ｂＦＧＦやＶＥＧＦにより誘発される角膜血管新生を有意に阻害することが報告されている（非特許文献６）。
このようなエナンチオマーにおける活性の違いにもかかわらず、依然として、サリドマイドがＲ体：Ｓ体＝５０：５０のラセミ体混合物として投与されている。この主な理由の１つとして、血中での極めて速いラセミ化特性が挙げられる（非特許文献７）。
サリドマイドのエナンチオマーは、有機溶媒を用いた反復抽出や、修飾アミロース（非特許文献８）、セルロース（非特許文献７）、バンコマイシン（非特許文献９）又はメタクリルアミド（非特許文献１０）などのエナンチオ選択型の固定相を用いたクロマトグラフィー法によって分離・定量されており、血中で極めて迅速にラセミ化することが明らかになっている。このようなラセミ化は、G. Blaschke らによって初めて開示され、ヒト血漿中でのサリドマイドのラセミ化半減期は約１０分であると報告されている（非特許文献１０）。これは、サリドマイドの排出半減期が８．７時間であること（非特許文献１１）を考慮すると極めて短いものである。
このような体内動態を示すことから、サリドマイドの純粋なエナンチオマーを投与することに薬理学的な意義がないものと考えられており、サリドマイドに類似した基本骨格を有するレナリドミドについても同様の性質を有するものと考えられてきたため、レナリドミドの純粋なエナンチオマーの薬物動態学的・薬理学的特性については十分に研究されておらず、生体試料中のレナリドミドの純粋なエナンチオマーの分離・定量方法についても、これまでに全く報告されていない。
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本発明の課題は、レナリドミドのエナンチオマーのラセミ化及び／又は分解を抑制し、生体中のレナリドミドのエナンチオマーそれぞれの含量を維持したまま試料を前処理するための新規な方法を提供することにある。
本発明者は、この度、レナリドミドのエナンチオマーが、サリドマイドのエナンチオマーと比較した場合、有意に長い間生体内に滞留する、という驚くべき知見を得た。上述のとおり、サリドマイドのエナンチオマーは生体内におけるラセミ化速度が極めて早いため、純粋なエナンチオマーを投与することに薬理学的な意義がないものと考えられていたが、レナリドミドは、その排泄半減期を考慮すると、薬理効果を無視できない程長い時間エナンチオマーとして生体内に留まっていることが明らかになった。したがって、レナリドミドの純粋なエナンチオマーの薬物動態学的・薬理学的作用の評価は、極めて重要な意味を有するものと考えられる。また、生体試料中のレナリドミドの純粋なエナンチオマーを分析する場合には、タンパク質の妨害による分析精度の低下を防ぐため、あらかじめ、除タンパク処理を行う必要がある。サリドマイドの前処理は、従来、サリドマイドを含む生体試料を強疎水性有機溶媒により、１又は複数回抽出し、得られた有機溶媒層を乾燥させ後、有機溶媒に再溶解させることによって行っていた。しかしながら、レナリドミドはサリドマイドよりも極性が高く、有機溶媒層に溶解しにくいため、従来の方法が適用できなかった。このような課題を解決するために、本発明者は、レナリドミドのエナンチオマーのラセミ化に及ぼすｐＨの影響について鋭意検討を重ねた結果、レナリドミドのエナンチオマーは、酸性条件下において極めて安定であることを見いだし、本発明を完成した。
具体的には、本発明は以下の発明を包含する。
［１］ レナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料を前処理するための方法であって、酸性条件下で生体試料の除タンパクが行われることを特徴とする方法。
［２］ 前記酸性条件がｐＨ５以下であることを特徴とする、［１］に記載の方法。
法。
［３］ 過塩素酸、トリクロロ酢酸、トリフルオロ酢酸、メタリン酸、塩酸、コハク酸、及びマレイン酸から選択される酸が添加されることを特徴とする、［１］又は［２］に記載の方法。
［４］ 前記生体試料が、血液、血清、血漿、尿、唾液、母乳、髄液、精液、組織、又はミクロソームであることを特徴とする、［１］〜［３］のいずれかに記載の方法。
［５］ 前記レナリドミドのエナンチオマーがＳ体であることを特徴とする、［１］〜［４］のいずれかに記載の方法。
［６］ 前記レナリドミドのエナンチオマーがＲ体であることを特徴とする、［１］〜［４］のいずれかに記載の方法。
［７］ 生体試料中のレナリドミドのエナンチオマーを定量するための方法であって、［１］〜［６］のいずれかに記載の方法によって前処理したレナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料を高速液体クロマトグラフィーにより分離分析することを特徴とする、方法。
［８］ レナリドミドのエナンチオマーを保存するための方法であって、レナリドミドのエナンチオマーを水性バッファーにおいて酸性条件下で維持することを特徴とする方法。
［９］ 前記酸性条件がｐＨ５以下であることを特徴とする、［８］に記載の方法。
［１０］ 前記水性バッファーが、クエン酸バッファーであることを特徴とする、［８］又は［９］に記載の方法。
［１１］ 前記レナリドミドのエナンチオマーがＳ体であることを特徴とする、［８］〜［１０］のいずれかに記載の方法。
［１２］ 前記レナリドミドのエナンチオマーがＲ体であることを特徴とする、［８］〜［１０］のいずれかに記載の方法。
［１］ レナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料を前処理するための方法であって、酸性条件下で生体試料の除タンパクが行われることを特徴とする方法。
［２］ 前記酸性条件がｐＨ５以下であることを特徴とする、［１］に記載の方法。
法。
［３］ 過塩素酸、トリクロロ酢酸、トリフルオロ酢酸、メタリン酸、塩酸、コハク酸、及びマレイン酸から選択される酸が添加されることを特徴とする、［１］又は［２］に記載の方法。
［４］ 前記生体試料が、血液、血清、血漿、尿、唾液、母乳、髄液、精液、組織、又はミクロソームであることを特徴とする、［１］〜［３］のいずれかに記載の方法。
［５］ 前記レナリドミドのエナンチオマーがＳ体であることを特徴とする、［１］〜［４］のいずれかに記載の方法。
［６］ 前記レナリドミドのエナンチオマーがＲ体であることを特徴とする、［１］〜［４］のいずれかに記載の方法。
［７］ 生体試料中のレナリドミドのエナンチオマーを定量するための方法であって、［１］〜［６］のいずれかに記載の方法によって前処理したレナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料を高速液体クロマトグラフィーにより分離分析することを特徴とする、方法。
［８］ レナリドミドのエナンチオマーを保存するための方法であって、レナリドミドのエナンチオマーを水性バッファーにおいて酸性条件下で維持することを特徴とする方法。
［９］ 前記酸性条件がｐＨ５以下であることを特徴とする、［８］に記載の方法。
［１０］ 前記水性バッファーが、クエン酸バッファーであることを特徴とする、［８］又は［９］に記載の方法。
［１１］ 前記レナリドミドのエナンチオマーがＳ体であることを特徴とする、［８］〜［１０］のいずれかに記載の方法。
［１２］ 前記レナリドミドのエナンチオマーがＲ体であることを特徴とする、［８］〜［１０］のいずれかに記載の方法。
本発明によって、レナリドミドのエナンチオマーのラセミ化及び／又は分解を抑制し、生体中のレナリドミドのエナンチオマー含量を維持したまま試料を前処理し、簡便かつ効率的に正確な生体試料中のレナリドミドのエナンチオマーを分離・定量することが可能となる。これにより、生体内におけるレナリドミドの純粋なエナンチオマーの薬物動態学的特性や薬理学的特性を明らかにし、レナリドミドの純粋なエナンチオマーの投与による副作用低減や薬効向上の可能性を見出すことに役立つものと考えられる。したがって、本発明は、レナリドミドのエナンチオマーの薬理薬効・安全性・物性・薬物動態研究など医療・製薬産業における活用・展開に大きく寄与するものと確信する。
レナリドミド（ＬＬ）は、多発性骨髄腫治療薬として知られるサリドマイド（ＴＤ）の誘導体であり、多発性骨髄腫など多様な悪性血液疾患に有効な免疫調製薬として広く用いられている。以下の式により表される化学構造を有し、サリドマイドと同様に、ジオキソピペリジン環上に不斉中心を有する。
レナリドミドはデキサメタゾンとの併用により、再発・難治性多発性骨髄腫での奏効率が６０％と高く、世界中で認可が進んでおり、これまでに約５０ヶ国で認可され、売上は４０００億円を超えるブロックバスター薬となっている。日本では２０１０年に承認されたが、安全性を確保する観点から医療関係者・患者・家族の管理手順遵守や全症例で使用成績調査を実施しなければならないという条件が付いている。レナリドミドはサリドマイドよりも薬効が高く、眠気や痺れ等の副作用は軽微である一方、サリドマイドと同様に催奇性のリスクが依然として存在するため、妊婦への投与は禁忌となっている。レナリドミドはサリドマイドの誘導体であるため、サリドマイドと同様、血中で速やかにラセミ化するものと推測されている。このため、Ｒ体：Ｓ体＝５０：５０のラセミ体として販売されており、現在、レナリドミドの純粋なエナンチオマーを入手することは困難である。また、ラセミ化を抑制し安定な前処理・分離分析条件も確立されていないことから、レナリドミドの純粋なエナンチオマーの体内動態やラセミ化速度などについては、これまでにほとんど知見がない。
本発明者は、この度、クロマトグラフィー法を用いた光学分割において、非プロトン性溶媒、第二級アルコール及びこれらの混合物から成る群から選択される有機溶媒を移動相として用いることにより、分解やラセミ化を抑制し、レナリドミドの純粋なエナンチオマーを分離・定量できることを見出した。したがって、本発明の態様において、レナリドミドのエナンチオマーを分離・定量するための方法であって、レナリドミドのエナンチオマー混合物を含む試料クロマトグラフィーに供し、そして、非プロトン性溶媒、第二級アルコール及びこれらの混合物から成る群から選択される有機溶媒を移動相として用いることにより、レナリドミドのエナンチオマー混合物からレナリドミドの各エナンチオマーを安定的に光学分割することを特徴とする方法が供される。
クロマトグラフィー法は、不斉識別能を有する化合物（キラル識別子）が担持された固定相にエナンチオマー混合物を含む試料を移動相の有機溶媒と共に流し、各々のエナンチオマーを吸着させ、その保持時間の差を利用して各々のエナンチオマーを光学分割するための方法である。一般には、光学分割用カラムを装着した高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）装置を用いて行われる。
移動相として用いられる非プロトン性溶媒は、本発明の目的を達成できる限り特に制限されないが、例えば、アセトニトリル、酢酸エチルなどのエステル類、アセトンなどのケトン類、ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテルなどのエーテル類又はこれらの組み合せなどが挙げられる。好ましくは、アセトニトリル、酢酸エチル又はこれらの組み合せである。
移動相として用いられる第二級アルコールは、本発明の目的を達成できる限り特に制限されないが、イソプロパノール、２−ブタノール、シクロペンタノール、又はシクロヘキサノール又はこれらの組み合せが挙げられる。好ましくは、イソプロパノールである。
本発明の方法において用いられる光学分割用カラムは、本発明の目的を達成できる限り特に限定されず、順相カラム、逆相カラム、その他の分離モードのカラムやそれぞれを組合わせたマルチモードカラムでもよい。典型的には、多糖誘導体キラルカラムが用いられる。多糖誘導体キラルカラムとは、キラル識別子として多糖誘導体が担体に固定化されたカラムである。多糖誘導体キラルカラムに担持される多糖誘導体としては、例えば、アミロース誘導体やセルロール誘導体が挙げられる。本発明においては、好ましくはＣｈｉｒａｌｐａｋ（登録商標）ＩＡ又はＣｈｉｒａｌｐａｋ（登録商標）ＩＣが用いられる。
本発明の光学分割法により、レナリドミドのエナンチオマー混合体（ラセミ体など）から、分解やラセミ化を伴うことなく、レナリドミドの純粋なエナンチオマーを分離・定量することができる。
生体試料中のレナリドミドの純粋なエナンチオマーを分離・定量する場合には、一般に低分子の分離効率の低下をもたらすタンパク質のような高分子は、あらかじめ取り除く。サリドマイドの前処理は、従来、サリドマイドを含む生体試料を疎水性有機溶媒（例えば、ｎ−ヘキサン／酢酸エチル混液）により、１又は複数回抽出し、得られた有機溶媒層を乾燥させた後、ジオキサンなどの有機溶媒に再溶解させることによって行っていた。しかしながら、レナリドミドはサリドマイドよりも極性が高く、有機溶媒層への溶解度が小さいため、従来の方法では効率が低く不適であった。このような課題を解決するために、本発明者らは、レナリドミドのエナンチオマーのラセミ化に及ぼすｐＨの影響について鋭意検討を重ねた結果、レナリドミドのエナンチオマーは、酸性条件下において極めて安定であることを見出した。したがって、本発明の別の態様においては、レナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料を前処理するための方法であって、前記生体試料を酸性条件下で除タンパクすることを特徴とする方法が供される。
このような酸性条件は、典型的にはｐＨ５以下であり、好ましくはｐＨ２〜ｐＨ５の範囲であり、最も好ましくはｐＨ４〜ｐＨ５の範囲である。
酸性条件をもたらすために試料に加えられる酸は、本発明の目的を達成できる限り特に制限されないが、過塩素酸、トリクロロ酢酸、トリフルオロ酢酸、メタリン酸、塩酸、又はコハク酸やマレイン酸などのジカルボン酸が挙げられる。
生体試料は、レナリドミドが含有されている限り特に制限されないが、例えば、血液、血清、血漿、尿、唾液、母乳、汗、髄液、精液、組織又はミクロソームなどが挙げられる。
このようにして、前処理したレナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料をクロマトグラフィー、好ましくは高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）に供することにより、生体試料に存在するレナリドミドのエナンチオマーを簡便かつ効率的に分離・定量することが可能となる。
さらに、画分を分取したレナリドミドのエナンチオマーを水性バッファー中で、酸性条件下で維持することにより、レナリドミドのエナンチオマーを保存することが可能となる。このような酸性条件は、典型的にはｐＨ５以下であり、好ましくはｐＨ２〜ｐＨ５の範囲である。水性バッファーは、酸性条件を維持することができる限り特に制限されないが、例えば、クエン酸バッファー、リン酸バッファー、酢酸バッファー、グリシン-塩酸バッファー、ＭＥＳ−ＨＥＰＥＳバッファー、Ｔｒｉｓバッファー、又はホウ酸バッファーが挙げられる。
例１．多様な溶媒におけるレナリドミドの安定性
試料として、メタノール、エタノール、イソプロパノール、アセトニトリル、酢酸エチル中の０．５ｍｇ／ｍＬのレナリドミドのラセミ体（Selleck Chemicals(米)）を室温又は５０℃で２４時間インキュベートし、以下のＨＰＬＣ条件を用いて、レナリドミドのエナンチオマーを定量し、多様な溶媒におけるレナリドミドの安定性を評価した。
ＨＰＬＣ条件
装置： ナノスペース ＳＩ−２シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ（４．６×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： ＥｔＯＨ（１００％）
流速： １．０ｍＬ／分
注入体積： ５μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ
試料として、メタノール、エタノール、イソプロパノール、アセトニトリル、酢酸エチル中の０．５ｍｇ／ｍＬのレナリドミドのラセミ体（Selleck Chemicals(米)）を室温又は５０℃で２４時間インキュベートし、以下のＨＰＬＣ条件を用いて、レナリドミドのエナンチオマーを定量し、多様な溶媒におけるレナリドミドの安定性を評価した。
ＨＰＬＣ条件
装置： ナノスペース ＳＩ−２シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ（４．６×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： ＥｔＯＨ（１００％）
流速： １．０ｍＬ／分
注入体積： ５μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ
インキュベーション前後のエナンチオマーのピーク面積を図１に示す（最初に観察されたピークをエナンチオマー１とし、次に観察されたピークをエナンチオマー２とした）。メタノール及びエタノール中では、レナリドミドは極めて不安定であったが、アセトニトリルや酢酸エチルでは分解が見られなかった。また、レナリドミドは、イソプロパノール中でも安定であった。これらの結果を考慮すると、レナリドミドの分解は、カルボニル基のα炭素原子を攻撃するアルコールの弱塩基性により促進されるものと考えられる。これは、非プロトン性溶媒であるアセトニトリルや酢酸エチルでレナリドミドが安定性を示した結果にも矛盾しない。
例２．多様な溶媒を用いたレナリドミドのエナンチオマーの分離
レナリドミドのエナンチオマーのラセミ化速度を明らかにするために、レナリドミドの純粋なエナンチオマーを分離・定量することは極めて重要である。例１に示されるとおり、アルコール（特に、メタノールとエタノール）や水（＞ｐＨ７）溶媒中のレナリドミドは不安定であるため、安定性の高い非プロトン性溶媒を移動相や試料溶媒として用いるべきである。
以下のＨＰＬＣ条件に基づき、表１に示される多様な有機溶媒を移動相として用いた場合のレナリドミド（ＬＬ）及びサリドマイド（ＴＤ）のエナンチオマーの分離について試験した。試料は、アセトニトリル中に溶解した０．５ｍｇ／ｍＬのＬＬ（和光純薬工業）及びＴＤ（シグマアルドリッチ）を用いた。
レナリドミドのエナンチオマーのラセミ化速度を明らかにするために、レナリドミドの純粋なエナンチオマーを分離・定量することは極めて重要である。例１に示されるとおり、アルコール（特に、メタノールとエタノール）や水（＞ｐＨ７）溶媒中のレナリドミドは不安定であるため、安定性の高い非プロトン性溶媒を移動相や試料溶媒として用いるべきである。
以下のＨＰＬＣ条件に基づき、表１に示される多様な有機溶媒を移動相として用いた場合のレナリドミド（ＬＬ）及びサリドマイド（ＴＤ）のエナンチオマーの分離について試験した。試料は、アセトニトリル中に溶解した０．５ｍｇ／ｍＬのＬＬ（和光純薬工業）及びＴＤ（シグマアルドリッチ）を用いた。
ＨＰＬＣ条件
装置： ナノスペース ＳＩ−２シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＣ（４．６×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： 表１に示される溶媒
流速： １．０ｍＬ／分
注入体積： ５μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ又は２５４ｎｍ
装置： ナノスペース ＳＩ−２シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＣ（４．６×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： 表１に示される溶媒
流速： １．０ｍＬ／分
注入体積： ５μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ又は２５４ｎｍ
移動相は、アセトニトリル（ＡＣＮ）、酢酸エチル（ＥｔＯＡｃ）、テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）及びｔ−ブチルメチルエーテル（ＢＭＥ）から成る非プロトン性溶媒を用いた。また、イソプロパノール（ＩＰＡ）は第二級アルコールであるが、図１に示されるとおり優れた安定性を有することから同様に試験した。エナンチオマー分離能は、以下の式に規定される分離係数（ＲＳ）を用いて評価した。
ＲＳ＝２×（Ｔ2−Ｔ1）／（Ｗ1＋Ｗ2）
式中、数字１及び数字２は、それぞれ、エナンチオマー１及びエナンチオマー２に関することを意味し（ピーク１はピーク２よりも早く溶出する）、Ｔは保持時間を意味し、Ｗはピーク幅を意味する。移動相として、各種溶媒を用いた場合のＬＬエナンチオマーの分離度を表１に示す。
ＲＳ＝２×（Ｔ2−Ｔ1）／（Ｗ1＋Ｗ2）
式中、数字１及び数字２は、それぞれ、エナンチオマー１及びエナンチオマー２に関することを意味し（ピーク１はピーク２よりも早く溶出する）、Ｔは保持時間を意味し、Ｗはピーク幅を意味する。移動相として、各種溶媒を用いた場合のＬＬエナンチオマーの分離度を表１に示す。
これらの移動相の中で、ＬＬエナンチオマーの分離において最も有効であったものは酢酸エチルであり、酢酸エチルを移動相として用いた場合（表１，Ｎｏ．０２）に最も高い分離度が得られた（ＲＳ＝１２．５１）。図２には、酢酸エチルを移動相として用いた場合に、ＬＬエナンチオマーが良好に分離することが示されている。さらに、一定量の酢酸エチルが混合された移動相を用いた場合、酢酸エチルを全くあるいは僅かしか含まないものよりも優れた分離度を示した（例えば、Ｎｏ．３，１０，１１及び１７）。これらの結果から、ＬＬエナンチオマー分離のためのクロマトグラフィーの移動相として酢酸エチルは極めて優れた溶媒であることが判明した。
また、アセトニトリルも良好な分離度を示した（表１，Ｎｏ．０１，ＲＳ＝７．２６）。さらに、図１に示されるとおり、アセトニトリルも優れた安定性を示すことから、ＬＬエナンチオマー分離のためのクロマトグラフィーの移動相として、良好な溶媒となり得る。
一方で、ＴＤについては、いずれの移動相を用いた場合にも十分な分離が観察されなかった。
例３．レナリドミドの純粋なエナンチオマーの調製
上記レナリドミドの安定性及びエナンチオマー分離における結果に基づき、レナリドミドの純粋なエナンチオマーを調製するための方法を確立した。具体的には、以下のスキーム及びＨＰＬＣ条件に従い、レナリドミドの純粋なエナンチオマーを調製した。
上記レナリドミドの安定性及びエナンチオマー分離における結果に基づき、レナリドミドの純粋なエナンチオマーを調製するための方法を確立した。具体的には、以下のスキーム及びＨＰＬＣ条件に従い、レナリドミドの純粋なエナンチオマーを調製した。
ＨＰＬＣ条件
装置： ＨＰＤ ＰＵＭＰ 及び ＬＡＭＢＤＡ１０１０ （Ｂｉｓｃｈｏｆｆ社）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＣ（２．０ｍｍ ｉ．ｄ．×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： 酢酸エチル
流速： １０ｍＬ／分
注入体積： ５０００μＬのアセトニトリル中２．３μＬ／ｍＬのＬＬラセミ体
検出： ＵＶ ２５４ｎｍ
装置： ＨＰＤ ＰＵＭＰ 及び ＬＡＭＢＤＡ１０１０ （Ｂｉｓｃｈｏｆｆ社）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＣ（２．０ｍｍ ｉ．ｄ．×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： 酢酸エチル
流速： １０ｍＬ／分
注入体積： ５０００μＬのアセトニトリル中２．３μＬ／ｍＬのＬＬラセミ体
検出： ＵＶ ２５４ｎｍ
図３に示されるとおり、ＬＬエナンチオマーは完全に分離した。画分を分取し乾燥させた後、１８０ｍｇのラセミ体から、８０ｍｇ超の純粋なエナンチオマーが得られた。画分をアセトニトリル（１又は０．１ｍｇ／ｍＬ）に溶解し、−２５℃で保管した。図４（Ａ−２，Ｂ−２）に示されたクロマトグラムの積分ピーク面積に基づき、レナリドミドエナンチオマー１（ＬＬ１）及びレナリドミドエナンチオマー１（ＬＬ２）として回収された画分１及び画分２は、それぞれ９９．０２％及び９９．９６％の十分なエナンチオマー純度を示した。
例４．溶出順番からのＬＬ１及びＬＬ２についての絶対配置の推定
ＬＬ１及びＬＬ２の絶対配置は、ＬＬ１とＬＬ２の溶出の順番を、商業的に入手可能なＲ−サリドマイド及びＳ−サリドマイド（シグマアルドリッチ）と比較することにより十分合理的に推定できる。溶出の順番は以下に示すＨＰＬＣ条件を用いて確認した。
ＬＬ１及びＬＬ２の絶対配置は、ＬＬ１とＬＬ２の溶出の順番を、商業的に入手可能なＲ−サリドマイド及びＳ−サリドマイド（シグマアルドリッチ）と比較することにより十分合理的に推定できる。溶出の順番は以下に示すＨＰＬＣ条件を用いて確認した。
ＨＰＬＣ条件
装置： ナノスペース ＳＩ−２ シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ（４．６ｍｍ ｉ．ｄ．×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： ＥｔＯＨ／Ｈ2Ｏ（９５／５，ｖ／ｖ）中０．１％ギ酸
流速： ０．７５ｍＬ／分
注入体積： ０．１ｍｇ／ｍＬの（Ｓ）−ＴＤ，（Ｒ）−ＴＤ，５μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ
装置： ナノスペース ＳＩ−２ シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ（４．６ｍｍ ｉ．ｄ．×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： ＥｔＯＨ／Ｈ2Ｏ（９５／５，ｖ／ｖ）中０．１％ギ酸
流速： ０．７５ｍＬ／分
注入体積： ０．１ｍｇ／ｍＬの（Ｓ）−ＴＤ，（Ｒ）−ＴＤ，５μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ
図５からも明らかなように、Ｓ−サリドマイドは、Ｒ−サリドマイドよりも早く溶出した。同じＨＰＬＣ条件下において、ＬＬ１がＬＬ２よりも早く溶出することを考慮すれば、ＬＬ１の絶対配置はＳ−エナンチオマーに対応し、ＬＬ２の絶対配置はＲ−エナンチオマーに対応するものと考えられる（以下、ＬＬ１及びＬＬ２は、Ｓ*−ＬＬ及びＲ*−ＬＬと規定する）。
例５．ｐＨにおけるラセミ化半減期の依存性
レナリドミドのラセミ化半減期及びそのｐＨ依存性を明らかにするために、以下のスキーム及びＨＰＬＣ条件にしたがい実験を行った。
レナリドミドのラセミ化半減期及びそのｐＨ依存性を明らかにするために、以下のスキーム及びＨＰＬＣ条件にしたがい実験を行った。
ＨＰＬＣ条件
装置： ナノスペース ＳＩ−２ シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ（４．６ｍｍ ｉ．ｄ．×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： ＥｔＯＨ／Ｈ2Ｏ（９５／５，ｖ／ｖ）中０．１％ギ酸
流速： ０．７５ｍＬ／分
注入： ５μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ
装置： ナノスペース ＳＩ−２ シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ（４．６ｍｍ ｉ．ｄ．×２５０ｃｍ，５μｍ，株式会社ダイセル），ＲＴ
移動相： ＥｔＯＨ／Ｈ2Ｏ（９５／５，ｖ／ｖ）中０．１％ギ酸
流速： ０．７５ｍＬ／分
注入： ５μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ
多様なｐＨにおける（Ｓ*）−ＬＬの変動を図６に示す。ｐＨ６でのインキュベーションでは（Ｒ*）−ＬＬが僅かに産生し、７以上のｐＨではラセミ化が有意に加速した。また、ｐＨ９及び８では、（Ｓ*）−及び（Ｒ*）−ＬＬのピーク面積が低下していることから、これらのｐＨ条件ではＬＬのラセミ化および分解が生じていることがわかる。
各ポイントの鏡像体過剰率（ＥＥ，［（Ｓ−Ｒ）／（Ｓ＋Ｒ）×１００］，％）を図７にプロットし、そしてｌｏｇ10（ＥＥ）対時間プロットを図８に示す。サリドマイドに関して報告されるとおり、ラセミ化は擬一次反応であると考えられるため、図８は、理想的な直線近似を示す。
この直線性を用いて、直線近似式（ｙ＝ａｘ＋ｂ）に基づきＥＥ＝５０の時間を計算することによりラセミ化半減期を算定した。純粋なエナンチオマーの安定性は、ｐＨにおける極めて強い依存性を示し、その半減期は、ｐＨが１下がるごとに１０倍も長くなり、ｐＨ４において、半減期の推定は不可能となった。一方、ｐＨ９においては、急激なラセミ化と分解が観察された。これの結果は、レナリドミドのエナンチオマーが、酸性条件（＜ｐＨ４）で安定であることを明確に示すものである。
この直線性を用いて、直線近似式（ｙ＝ａｘ＋ｂ）に基づきＥＥ＝５０の時間を計算することによりラセミ化半減期を算定した。純粋なエナンチオマーの安定性は、ｐＨにおける極めて強い依存性を示し、その半減期は、ｐＨが１下がるごとに１０倍も長くなり、ｐＨ４において、半減期の推定は不可能となった。一方、ｐＨ９においては、急激なラセミ化と分解が観察された。これの結果は、レナリドミドのエナンチオマーが、酸性条件（＜ｐＨ４）で安定であることを明確に示すものである。
例６．生体試料の前処理方法の確立
これまでに、ＨＰＬＣを用いた血液（血清及び血漿）又は尿中におけるサリドマイドやレナリドミドの測定については多く報告されている。ＴＤに関して、生体試料中におけるエナンチオマーの測定が報告されており、生体内又は試験管内におけるラセミ化半減期は明らかとなっている（Eriksson T et al., Chirality., 1995, 7（1）, p.44-52及びKnoche B et al., J. Chromatogr. A., 1994, 666, p.235-240）。これらの測定は全て液−液抽出法に基づくものである。このような、従来の方法をスキーム（ａ）に示す。非プロトン性溶媒は、ラセミ化や分解に実質的に不活性であるため、この方法により測定が可能である。しかしながら、疎水性である有機溶媒中のサリドマイドやレナリドミドの溶解度は高くないため、多量の溶媒を用いて繰り返し抽出する必要があった。
これまでに、ＨＰＬＣを用いた血液（血清及び血漿）又は尿中におけるサリドマイドやレナリドミドの測定については多く報告されている。ＴＤに関して、生体試料中におけるエナンチオマーの測定が報告されており、生体内又は試験管内におけるラセミ化半減期は明らかとなっている（Eriksson T et al., Chirality., 1995, 7（1）, p.44-52及びKnoche B et al., J. Chromatogr. A., 1994, 666, p.235-240）。これらの測定は全て液−液抽出法に基づくものである。このような、従来の方法をスキーム（ａ）に示す。非プロトン性溶媒は、ラセミ化や分解に実質的に不活性であるため、この方法により測定が可能である。しかしながら、疎水性である有機溶媒中のサリドマイドやレナリドミドの溶解度は高くないため、多量の溶媒を用いて繰り返し抽出する必要があった。
このため、例５に実証された酸性条件におけるエナンチオマーの安定性に関する知見に基づき、極めて単純かつ効率的なレナリドミドの前処理方法を確立した。本発明の分析法をスキーム（ｂ）に示す。反応を停止させ、かつ同時にタンパク質を沈殿・除去するために酸としてＨＣｌＯ4を用いた。
スキーム（ｂ）の方法を用いて得られたクロマトグラムを図９に示す。図９（ｂ）に示されるとおり、血清中のレナリドミドのエナンチオマーはタンパク質などの夾雑成分の影響を受けることなく良好に分離・定量が可能で生体試料にも適用できることが示された。
例７．生理条件におけるレナリドミドのラセミ化
得られた純粋なエナンチオマーを用いて、生体バッファー条件（ｐＨ７．４，３７℃）及びヒト血清（３７℃）におけるレナリドミドのラセミ化速度を、以下のスキームに従い評価した。
得られた純粋なエナンチオマーを用いて、生体バッファー条件（ｐＨ７．４，３７℃）及びヒト血清（３７℃）におけるレナリドミドのラセミ化速度を、以下のスキームに従い評価した。
ＨＰＬＣ条件
装置： ナノスペース ＳＩ−２シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ（４．６ｍｍ ｉ．ｄ．×２５０ｃｍ，５μｍ）＋Ｓｅｃｕｒｉｔｙ ｇｕａｒｄ Ｃ８（３．０ｍｍ ｉ．ｄ．×４ｍｍ）
温度： ４０℃
移動相： ＥｔＯＨ／Ｈ2Ｏ（９５／５，ｖ／ｖ）中０．１％ギ酸
流速： ０．７５ｍＬ／分
注入： ２０μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ
装置： ナノスペース ＳＩ−２シリーズ（資生堂）
カラム： Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ（４．６ｍｍ ｉ．ｄ．×２５０ｃｍ，５μｍ）＋Ｓｅｃｕｒｉｔｙ ｇｕａｒｄ Ｃ８（３．０ｍｍ ｉ．ｄ．×４ｍｍ）
温度： ４０℃
移動相： ＥｔＯＨ／Ｈ2Ｏ（９５／５，ｖ／ｖ）中０．１％ギ酸
流速： ０．７５ｍＬ／分
注入： ２０μＬ
検出： ＵＶ ２３０ｎｍ
図１０に示される（Ｓ*）−ＬＬのクロマトグラム［（ａ）バッファー中、（ｂ）血清中０．０１ｍｇ／ｍＬ］からも明らかなように、本発明の方法は、十分な保持・分離と検出感度（シグナル／ノイズ比）を有する。ＬＬを伴わない血清のみに由来するブランク試料（ｃ）は、本発明の方法においてＬＬの測定を阻害する夾雑物質を含まなかった。図１８（ｂ）の（Ｓ*）−ＬＬのピーク面積は、図１８（ａ）の９１％であった。これは、血清中レナリドミドの前処理において十分な回収率を有することを示す。
Ｓ*−ＬＬのインキュベーションにおけるクロマトグラムの連続変化を図１１に示す。ＬＬのエナンチオマーは、試料中で他の物質に妨害されることなく、ラセミ化産物を検出するために十分なレベルで分離・定量された。
例５に記載される方法と同様にしてラセミ化半減期を算出した。これにより、水性バッファー中のラセミ化半減期を以下のとおり推定した；（Ｓ*）−ＬＬ、（Ｒ*）−ＬＬ、（Ｓ）−ＴＤ及び（Ｒ）−ＴＤについて、それぞれ、２７２±１．３、２６７±１．１、２６６±１０及び２９５±２４（分）。以上の結果から、ｐＨ７．４において、ＬＬエナンチオマーは、水性バッファー中ではＴＤと同様の半減期を有することが明らかとなった。
ヒト血清中における半減期もまた、同様に算定した；（Ｓ*）−ＬＬ、（Ｒ*）−ＬＬ、（Ｓ）−ＴＤ及び（Ｒ）−ＴＤについて、それぞれ、１３１±４．９、１０９±２．０、２１．８±１．０及び３２．９±２５（分）。これらの結果を、図１２に示す。ヒト血清中のサリドマイドは、バッファー中と比較して僅か８．２％（Ｓ体）及び１１．１％（Ｒ体）の半減期であり、サリドマイドのラセミ化は、血清中で極度に促進されることが解る。このエナンチオマーに認められたラセミ化の促進は、生体分子、例えば血清中のヒトアルブミンなどのタンパク質によるものと思われる。
血清中のＬＬに関しては、（Ｓ*）−ＬＬが（Ｓ）−ＴＤよりも６倍も長いラセミ化半減期を有し、（Ｒ*）−ＬＬは（Ｒ）−ＴＤよりも３倍長いラセミ化半減期を有するという結果が得られた。これらの結果は、ＬＬエナンチオマー、特に（Ｓ*）−ＬＬが、サリドマイドと比較して極めて安定であることを明確に示すものである。なお、ＴＤの場合とは対照的に、（Ｓ*）−ＬＬのほうが（Ｒ*）−ＬＬよりも安定であった。このようなＳ−及びＲ−エナンチオマーの半減期の相違にも注目すべきである。
Claims (12)
- レナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料を前処理するために、レナリドミドのエナンチオマーのラセミ化を抑制する方法であって、酸性条件下で生体試料の除タンパクが行われることを特徴とする方法。
- 前記酸性条件がｐＨ５以下であることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
- 過塩素酸、トリクロロ酢酸、トリフルオロ酢酸、メタリン酸、塩酸、コハク酸、及びマレイン酸から選択される酸が添加されることを特徴とする、請求項１又は２に記載の方法。
- 前記生体試料が、血液、血清、血漿、尿、唾液、母乳、髄液、精液、組織、又はミクロソームであることを特徴とする、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
- 前記レナリドミドのエナンチオマーがＳ体であることを特徴とする、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
- 前記レナリドミドのエナンチオマーがＲ体であることを特徴とする、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
- 生体試料中のレナリドミドのエナンチオマーを定量するための方法であって、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法によって前処理したレナリドミドのエナンチオマーを含有する生体試料を高速液体クロマトグラフィーにより分離分析することを特徴とする、方法。
- レナリドミドのエナンチオマーを保存するために、レナリドミドのエナンチオマーのラセミ化を抑制する方法であって、レナリドミドのエナンチオマーを水性バッファーにおいて酸性条件下で維持することを特徴とする方法。
- 前記酸性条件がｐＨ５以下であることを特徴とする、請求項８に記載の方法。
- 前記水性バッファーが、クエン酸バッファーであることを特徴とする、請求項８又は９に記載の方法。
- 前記レナリドミドのエナンチオマーがＳ体であることを特徴とする、請求項８〜１０のいずれか１項に記載の方法。
- 前記レナリドミドのエナンチオマーがＲ体であることを特徴とする、請求項８〜１０のいずれか１項に記載の方法。
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