JP6566480B2 - イチゴ属植物のうどんこ病抵抗性関連マーカーとその利用 - Google Patents
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Description
(1)イチゴ属植物の染色体における配列番号1に示す塩基配列及び配列番号19に示す塩基配列により挟まれる連続する核酸領域からなる、イチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカー。
(2)上記核酸領域は、配列番号1〜19からなる群から選ばれるいずれか1の塩基配列又は当該塩基配列の一部を含むことを特徴とする(1)記載のイチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカー。
(3)上記核酸領域は、イチゴ属植物の染色体における配列番号1に示す塩基配列と配列番号7に示す塩基配列とにより挟み込まれる領域に位置することを特徴とする(1)記載のイチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカー。
(4)少なくとも一方の親がイチゴ属植物である後代植物の染色体及び/又は当該親のイチゴ属植物の染色体を抽出する工程と、上記で得られた染色体における上記(1)乃至(3)いずれか1に記載のイチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカーの存在・非存在を判定する工程とを含む、うどんこ病抵抗性が向上したイチゴ属植物系統の製造方法。
(5)上記判定する工程では、上記イチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカーを特異的に増幅するプライマーを用いた核酸増幅反応により当該イチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカーの存在・非存在を判定することを特徴とする(4)記載のイチゴ属植物系統の製造方法。
(6)上記判定する工程では、上記イチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカーに対応するプローブを備えるDNAチップを使用することを特徴とする(4)記載のイチゴ属植物系統の製造方法。
(7)上記後代植物は種子又は幼苗であり、当該種子又は幼苗から染色体を抽出することを特徴とする(4)記載のイチゴ属植物系統の製造方法。
本発明に係るイチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカーとは、イチゴ属植物の染色体上に存在する特定の領域であり、イチゴ属植物うどんこ病抵抗性という形質を判別できる機能を有する。すなわち、既知のイチゴ属植物を用いて得られた後代系統において、イチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカーの存在・非存在を確認することで、うどんこ病抵抗性を有する系統であるか否かを判断することができる。なお、本発明において、イチゴうどんこ病とは、Ann. Phytopathol. Soc. Jpn. 64:121-l24, l998に記載されるように、Sphaerotheca aphanis(Podosphaera aphanis)が感染することに起因して病班が形成される病気を意味している。
本発明では、上述したように、イチゴ品種「みやざきなつはるか」から取得した8,218個のマーカー及びイチゴ系統「08と−f」から取得した8,039個のマーカーからイチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカーを特定した。ここでは、これら8,218個と8,039個のマーカーについて説明する。このマーカーを同定する際には、特開2011-120558号公報や国際公開公報2011/074510に開示された方法を適用したDNAマイクロアレイを使用することができる。
イチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカーを利用することで、うどんこ病抵抗性が未知であるイチゴ属植物(例えば、後代系統)についてうどんこ病抵抗性を示す系統であるか判断することができる。ここで、イチゴ属植物うどんこ病抵抗性関連マーカーを利用するとは、当該マーカーを含む核酸断片を特異的に増幅する方法を利用する形態、当該マーカーに対応するプローブを有するDNAマイクロアレイを利用する形態を含む意味である。
(1)材料
イチゴ品種「みやざきなつはるか」と「08と−f」を用いた。
(2)制限酵素処理
これらイチゴ品種それぞれについて、Dneasy Plant Mini kit(QIAGEN社)を使用してゲノムDNAを抽出した。抽出したゲノムDNA(150ng)を制限酵素PstI(NEB社、5unit)で37℃、1時間処理した。
(3)アダプターライゲーション
(2)で処理したゲノムDNA断片(150ng)にPstI配列アダプター(5’-CACGATGGATCCAGTGCA-3’(配列番号20)、5’-CTGGATCCATCGTGCA-3’(配列番号21))とT4 DNA Ligase(NEB社、200 unit)を加え、16℃で1時間、その後55℃で20分間、その後37℃で30分間の条件でライゲーション反応を行った。次に、処理したサンプルに制限酵素BstNI(NEB社、6 unit)を添加、60℃で1時間処理した。
(4)PCR増幅
(3)で得られた、BstNI処理後のサンプル(15ng)にPstI配列アダプター認識プライマー(5’-GATGGATCCAGTGCAG-3’(配列番号22))とTaq polymerase(タカラバイオ社、PrimeSTAR、1.25unit)を加え、PCR(98℃を10秒間、55℃を15秒間、72℃を1分間、30サイクル後、72℃で3分間処理後、4℃で保存)でDNA断片を増幅した。
(5)ゲノムシークエンス取得
(4)においてPCR増幅したゲノムDNA断片について、Hiseq2000、Miseq(Illumina社)により塩基配列情報を取得した。
(6)プローブ設計及びDNAマイクロアレイの作成
(5)のゲノムシークエンス情報をもとに50〜60bpのプローブを設計した。設計したプローブの塩基配列情報をもとに、これらプローブを有するDNAマイクロアレイを作製した。
(1)材料
イチゴ品種「みやざきなつはるか」、「08と−f」及びこれらの交雑後代147系統を用いた。
(2)制限酵素処理
これらイチゴ品種及び交雑後代からそれぞれゲノムDNAをDneasy Plant Mini kit(QIAGEN社)により抽出した。抽出したゲノムDNA(150ng)を制限酵素PstI(NEB社、6unit)で37℃、1時間処理した。
(3)アダプターライゲーション
(2)で処理したゲノムDNA断片(150ng)にPstI配列アダプター(5’-CACGATGGATCCAGTGCA-3’(配列番号20)、5’-CTGGATCCATCGTGCA-3’(配列番号21))とT4 DNA Ligase(NEB社、200 unit)を加え、16℃で1時間、その後55℃で20分間、その後37℃で30分間の条件でライゲーション反応を行った。次に、処理したサンプルに制限酵素BstNI(NEB社、6 unit)を添加、60℃で1時間処理した。
(4)PCR増幅
(3)で得られたBstNI処理後のサンプル(15ng)にPstI配列アダプター認識プライマー(5’-GATGGATCCAGTGCAG-3’(配列番号22))とTaq polymerase(タカラバイオ社PrimeSTAR、1.25unit)を加え、PCR(98℃を10秒間、55℃を15秒間、72℃を1分間を1サイクルとして30サイクル実施後、72℃で3分間処理後、4℃で保存)でゲノムDNA断片を増幅した。
(5)ラベル化
上述した(4)で増幅したDNA断片をカラム(QIAGEN社)で精製後、 NimbleGen Arrays User’s Guideに従い、NimbleGen One-Color DNA Labeling Kit(ロシュ・ダイアグノステックス社)を用いラベル化した。
(6)ハイブリ・シグナル検出
(5)のラベル化サンプルと、上記1.で作製したDNAマイクロアレイとを用いて、アジレントIn-situ オリゴDNAマイクロアレイ キット アレイCGH(aCGH)法に従いハイブリ処理をし、各サンプルのシグナルを検出した。
(1)遺伝地図データシート作成
「みやざきなつはるか」と「08と−f」との交雑後代147系統のシグナルデータから、「みやざきなつはるか」型の8,218マーカー及び「08と−f」型の8,039マーカーの遺伝子型データを取得した。遺伝子型データをもとに、遺伝地図作成ソフトAntMap ((Iwata H, Ninomiya S 2006) AntMap: constructing genetic linkage maps using an ant colony optimization algorithm. Breed Sci 56: 371-378)を用い、遺伝距離計算式Kosambiによりマーカーの遺伝地図データを取得した。
(2)イチゴうどんこ病表現型データの取得
「みやざきなつはるか」と「08と−f」との交雑後代種子をハウス内で育苗し(147系統)、次年度の春季に野外圃場に定植して、夏季にイチゴうどんこ病の発症程度を調査した(図3)。罹病性個体については、微、中、激の3段階で、発症程度を評価した。
なお、本例で使用したうどんこ病菌は、岩手県盛岡市に土着している菌を自然感染させた。
(3)量的形質 (quantitative trait loci:QTL)の解析
上記(1)で得られた遺伝地図データ及び上記(2)で得られたうどんこ病検定試験データ(うどんこ病発症程度)をもとに、遺伝解析ソフトQTL Cartographer (Wang S., C. J. Basten, and Z.-B. Zeng (2010). Windows QTL Cartographer 2.5. Department of Statistics, North Carolina State University, Raleigh, NC)を使い、Composite interval mapping (CIM)法により、QTL解析を行った。LODの閾値は2.5を用いた。その結果、「08と-f」の第1連鎖群のマーカーIB535110からIB726514の区間内にLOD値7.3のイチゴうどんこ病抵抗性に関する遺伝子の存在を確認した(表2、図4)。
(4)選抜マーカーの選定
第1連鎖群の0cM〜6.83cMの区間にあるイチゴうどんこ病抵抗性遺伝子領域周辺のマーカーを選抜マーカーとして選定した(図4、表1)。
(1)イチゴうどんこ病表現型データの取得
上記3.(2)イチゴうどんこ病表現型データの取得で記載した系統とは別に、「みやざきなつはるか」と「08と−f」との交雑後代種子をハウス内で育苗し(50系統:以降A集団とする)、秋季に野外圃場に定植して、翌年の夏季にイチゴうどんこ病の発症程度を調査した。また、「みやざきなつはるか」と「おおきみ」との交雑後代種子(42系統:以降B集団とする)、及び「みやざきなつはるか」と「09s E-b 45e」との交雑後代種子(42系統:以降E集団とする)についても同様に育苗、定植し、うどんこ病発症程度を調査した(図5−1及び5−2)。
(2)ゲノムDNAの抽出
新たに、イチゴ品種「みやざきなつはるか」、「08と−f」及びA集団について、Dneasy Plant Mini kit(QIAGEN社)によりゲノムDNAを抽出した。
(3)制限酵素処理及びアダプターライゲーション
抽出したゲノムDNA(150ng)を制限酵素PstI(NEB社、5unit)で37℃、1時間処理後、PstI処理したサンプルにPstI配列アダプター(5’-CACGATGGATCCAGTGCA-3’(配列番号20)、5’-CTGGATCCATCGTGCA-3’(配列番号21))とT4 DNA Ligase(NEB社、200 unit)を加え、16℃で1時間処理後、55℃で20分、その後、37℃で30分処理した。処理したサンプルに制限酵素BstNI(NEB社、6 unit)を添加、60℃で1時間処理した。
(4)DNA断片の増幅
上記(3)にてBstNI処理したサンプル(15ng)にPstI配列アダプター認識プライマー(5’-GATGGATCCAGTGCAG-3’(配列番号22))とTaq polymerase(タカラバイオ社、PrimeSTAR、1.25 unit)を加え、PCR(98℃を10秒間、55℃を15秒間、72℃を1分間を1サイクルとして30サイクル実施後、72℃で3分間処理後、4℃で保存)でDNA断片を増幅した。
(5)ラベル化
上記(4)にて増幅したDNA断片をカラム(QIAGEN社)で精製後、 NimbleGen Arrays User’s Guideに従い、NimbleGen One-Color DNA Labeling Kit(ロシュ・ダイアグノステックス社)を用いラベル化した。
(6)ハイブリ・シグナル検出
上記(6)で蛍光標識したサンプルと上記1.で作成したアレイを用い、アジレントIn-situ オリゴDNAマイクロアレイ キット アレイCGH (aCGH) 法に従いハイブリ処理をし、各サンプルのシグナルを検出した。
(7)選定した選抜マーカーの検定
上記A集団中で、イチゴうどんこ病抵抗性遺伝子領域周辺のマーカーを選定し(表1)、選抜マーカーとしたものでアレイシグナル値とA集団の表現型とを比較すると90.0%〜98.0%一致していた(図6−1〜6−5)。なお、図6−1〜6−5において、高いアレイシグナル値には下線を付した。これらの結果から、表1に示したマーカーを利用することで、うどんこ病抵抗性に優れる系統、劣る系統の選抜が可能と考えられた。
(1)ゲノムDNAの抽出
イチゴ品種「みやざきなつはるか」、「08と−f」、「おおきみ」、「09s E-b 45e」、A集団(51系統、)B集団(42系統)及びE集団(42系統)について、Dneasy Plant Mini kit(QIAGEN社)によりゲノムDNAを抽出した。
(2)プライマー作製
PCRプライマー解析ソフトPrimer3を使い、IB535110の配列情報(配列番号1)から、IB535110を識別するプライマーを作製した(35110_v1F: ACACATATATGAATCGGAGCCA(配列番号23)、35110_v1R: GCTCAAGATGCTCAATCGAA(配列番号24))。
(3)PCR増幅と選抜マーカーの検定
交雑後代A集団、B集団、E集団のゲノムDNA(15 ng)に、上記プライマー(35110_v1F及び35110_v1R)とTaq polymerase(タカラバイオ社、Tks Gflex DNA Polymerase、1.25 unit)を加え、PCR(94℃で1分間、98℃で10秒間、60℃で15秒間、68℃で30秒間を1サイクルとして30サイクル実施後、4℃で保存)で増幅した。PCR増幅したDNA断片は、TapeStation D1000(アジレント社)により確認した。A集団、B集団及びE集団について行った結果を図7−1及び7−2、図8−1及び8−2並びに図9−1及び9−2にそれぞれ示した。なお、図7−1〜図9−2において、Mのレーンは「みやざきなつはるか」を示し、Zのレーンは「08と−f」を示している。また、これらの結果を図10−1及び10−2にまとめて示した。なお、図10−1及び10−2において下線は、表現型とPCRベースマーカーの結果とが一致しなかった場合を示している。図7−1〜図10−2に示したように、バンドパターンと表現型の一致率は非常に高く(98.5%)、IB535110を特異的に増幅するプライマーを用いた核酸増幅方法により、うどんこ病抵抗性に優れる系統、劣る系統の選抜ができることが明らかとなった。
(1)ゲノムDNAの抽出
イチゴ品種「みやざきなつはるか」、「08と−f」、「おおきみ」、「09s E-b 45e」、A集団(51系統、)B集団(42系統)及びE集団(42系統)について、Dneasy Plant Mini kit(QIAGEN社)によりゲノムDNAを抽出した。
(2)プライマー作製
PCRプライマー解析ソフトPrimer3を使い、IB522828の配列情報(配列番号2)から、 IB522828を識別するプライマーを作製した(22828_v6F:CTTTGACGCCTACTGCATTA (配列番号25)、22828_v6R:GGTTGGGCTTCGTTAAATCT(配列番号26))。
(3)PCR増幅と選抜マーカーの検定
交雑後代A集団、B集団、E集団のゲノムDNA(15 ng)に、上記プライマー(22828_v6F及び22828_v6R)とTaq polymerase(タカラバイオ社、Tks Gflex DNA Polymerase、1.25 unit)を加え、PCR(94℃で1分間、98℃で10秒間、60℃で15秒間、68℃で30秒間を1サイクルとして30サイクル実施後、4℃で保存)で増幅した。PCR増幅したDNA断片は、TapeStation D1000(アジレント社)により確認した。A集団、B集団及びE集団について行った結果を図11−1〜11−3、図12−1及び12−2並びに図13−1及び13−2にそれぞれ示した。なお、図11−1〜図13−2において、Mのレーンは「みやざきなつはるか」を示し、Zのレーンは「08と−f」を示し、Oのレーンは「おおきみ」を示している。また、これらの結果を図14−1及び14−2にまとめて示した。なお、図14−1及び14−2において下線は、表現型とPCRベースマーカーの結果とが一致しなかった場合を示している。図11−1〜図14−2に示したように、バンドパターンと表現型の一致率は非常に高く(98.5%)、IB522828を特異的に増幅するプライマーを用いた核酸増幅方法により、うどんこ病抵抗性に優れる系統、劣る系統の選抜ができることが明らかとなった。
Claims (5)
- イチゴ属植物の染色体における配列番号1〜19からなる群から選ばれる1つの塩基配列における少なくとも15塩基以上の連続する核酸であって、イチゴ属植物うどんこ病抵抗性を判別できる機能を有する単離された核酸。
- 少なくとも一方の親がイチゴ属植物である後代植物の染色体及び/又は当該親のイチゴ属植物の染色体を抽出する工程と、
上記で得られた染色体における配列番号1〜19からなる群から選ばれる1つの塩基配列における少なくとも15塩基以上の連続する核酸の存在・非存在を判定する工程とを含む、うどんこ病抵抗性が向上したイチゴ属植物系統の製造方法。 - 上記判定する工程では、上記核酸を特異的に増幅するプライマーを用いた核酸増幅反応により当該核酸の存在・非存在を判定することを特徴とする請求項2記載のイチゴ属植物系統の製造方法。
- 上記判定する工程では、上記核酸に対応するプローブを備えるDNAチップを使用することを特徴とする請求項2記載のイチゴ属植物系統の製造方法。
- 上記後代植物は種子又は幼苗であり、当該種子又は幼苗から染色体を抽出することを特徴とする請求項2記載のイチゴ属植物系統の製造方法。
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