JP6532192B2 - タイヤ用ゴム組成物、タイヤ部材、及び空気入りタイヤ - Google Patents
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Description
なお、本発明において、ゴム(バイオマス由来ゴム)のpMCは、ASTMD6866−10に準拠して測定して得られる値であり、具体的には実施例に記載の方法により測定できる。
なお、実施例に記載のように、ゴムの14C濃度を分析するためには、まずゴムの前処理が必要となる。具体的には、ゴムに含まれる炭素を酸化処理し、すべて二酸化炭素へと変換する。更に、得られた二酸化炭素を水や窒素と分離し、二酸化炭素を還元処理し、固形炭素であるグラファイトへと変換する必要がある。そして、この得られたグラファイトにCs+等の陽イオンを照射して炭素の負イオンを生成させ、タンデム加速器を用いて炭素イオンを加速し、負イオンから陽イオンへ荷電変換させ、質量分析電磁石により12C3+、13C3+、14C3+の進行する軌道を分離し、14C3+は静電分析器により測定を行うことができる。
なお、本発明において、ゴム(バイオマス由来ゴム)のTgは、実施例に記載の方法により測定できる。
同様に、バイオマス由来ゴムのMw(重量平均分子量)/Mn(数平均分子量)は、好ましくは0.1〜10、より好ましくは0.5〜5である。
なお、バイオマス由来ゴムのMw、Mnは、実施例に記載の方法により測定できる。
なお、本発明において、バイオマス由来ゴムの芳香族ビニル含量(好ましくはスチレン含量)は、H1−NMR測定により算出される。
なお、バイオマス資源をスチレンに変換する微生物、植物、動物は、遺伝子操作されていても、されていなくても構わない。
なお、上記中間体をスチレンに変換する微生物、植物、動物は、遺伝子操作されていても、されていなくても構わない。
なお、シリカのN2SAは、ASTM D3037−93に準じてBET法で測定される値である。
なお、カーボンブラックのN2SAは、JIS K 6217−2:2001によって求められる。
ブタジエン、スチレン、スチレンブタジエンゴムのpMCは、下記の方法にて、ASTMD6866−10に準拠して測定した。
試料(ブタジエン、スチレン、又はスチレンブタジエンゴム)を燃焼させ、二酸化炭素(CO2)を発生させ、該二酸化炭素を真空ラインで精製した。次に、鉄を触媒として、精製した二酸化炭素を水素で還元し、グラファイト(C)を生成させた。そして、得られたグラファイトを内径1mmのカソードにハンドプレス機で詰め、それをホイールにはめ込み、測定装置(タンデム加速器をベースとした14C−AMS 専用装置(NEC社製))に装着した。該測定装置により、14C濃度、13C濃度の測定を行い、米国国立標準局(NIST)から提供されたシュウ酸を標準試料として、バイオマス比率を示すpMC(%)を算出した。なお、pMCの算出の際に、13C濃度値による補正を行った。
BRUKER社製AV400のNMR装置、データ解析ソフトTOP SPIN2.1を用いてスチレン含量を測定した。
JIS−K7121に従い、(株)島津製作所製の自動示差走査熱量計(DSC−60A)を用いて、昇温速度10℃/分の条件でガラス転移温度(Tg)を測定した。
下記の条件(1)〜(8)でゲル・パーミエイション・クロマトグラフ(GPC)法により、重量平均分子量(Mw)と数平均分子量(Mn)を測定した。そして、測定したMw、Mnから重合体の分子量分布(Mw/Mn)を求めた。
(1)装置:東ソー社製HLC−8020
(2)分離カラム:東ソー社製GMH−XL(2本直列)
(3)測定温度:40℃
(4)キャリア:テトラヒドロフラン
(5)流量:0.6mL/分
(6)注入量:5μL
(7)検出器:示差屈折
(8)分子量標準:標準ポリスチレン
<バイオブタノールの製造>
300mlの発酵槽(DASGIP)にSoni et al(Soni et al,1987,Appl.Microbiol.Biotechnol.27:1−5)に記載の250mlの合成培地(糖類を含む)を満たし、窒素で30分スパージした。そこにClostridium acetobutylicum(ATCC824)を嫌気性条件下で、接種した。培養温度は35℃に一定維持し、pHはNH4OH溶液を用い、5.5に調節した。培養中、嫌気性条件を維持し、振盪速度は300rpmで維持した。5日間培養後、培養液を蒸留し、従来より周知となっているイオン交換樹脂法により分離して、バイオブタノール(1−ブタノール)を得た。
図1に示す装置を用いて、<バイオブタノールの製造>により得られたバイオブタノール(1−ブタノール)を原料として、バイオマス由来ブタジエンを合成した。
そして、二段目反応カラム26に、前記クロム担持ゼオライト触媒を10g充填した。
図1の装置を用いて、エタノールをブタジエンに変換する公知の方法(Kirshenbaum, I. (1978). Butadiene. In M. Grayson (Ed.), Encyclopedia of Chemical Technology, 3rd ed., vol. 4, pp. 313337. New York: John Wiley & Sons.)により、市販のバイオエタノールを用いて、バイオマス由来ブタジエンを合成した。得られたブタジエン(バイオマス由来ブタジエン)のバイオマス比率を示すpMCの値は、108%であった。
酢酸パラジウム 0.5mmol/Lを、0.3mol/L Na3H3PMo9V3O40 に溶解して調製した触媒を図1の装置の二段目反応カラム26に導入し、装置をアルゴン置換した。そこにバイオマス由来のエチレン(試作品、トウモロコシ由来バイオエタノールよりの製品)を導入した。装置を150℃、0.5MpaGの条件下で循環ライン28を通じて触媒溶液を循環させながら1時間反応した。冷却装置27のドレインを通じて触媒溶液を除去後、バイオエタノールを浸漬させたアルミナ触媒(住友化学社製アルミナKHA−46)を投入し、400℃で5時間反応させた。反応混合物をGC/MSにて分析することにより、ブタジエンの生成を確認した。得られたブタジエン(バイオマス由来ブタジエン)のバイオマス比率を示すpMCの値は、109%であった。
ハズ油より分離・精製したチグリン酸(生体内アミノ酸経由中間体)500mg、テトラキストリフェニルホスフィンパラジウム(0)30mg、トリエチルホウ素10mgをアルゴン充填したオートクレーブにいれ、200℃で1時間反応させた。生成物をGC/MSで分析することにより、ブタジエンの生成を確認した。得られたブタジエン(バイオマス由来ブタジエン)のバイオマス比率を示すpMCの値は、108%であった。
モミジバフウ(Liquidambar styraciflua)の樹皮を一部剥がし、滲出してきた樹脂合計620gをトルエンに浸漬した。半日放置後、トルエン溶液をろ過し、蒸留して130〜160℃の留分を2.4g分取した。得られた留分をHPLCにて分離精製することにより、スチレンを0.8g得た。得られたスチレン(バイオマス由来スチレン)のバイオマス比率を示すpMCの値は、109%であった。
また、剥がした樹皮1kgを同様に処理して、スチレンを0.8g得た。得られたスチレン(バイオマス由来スチレン)のバイオマス比率を示すpMCの値は、109%であった。
エゴノキ(Styrax japonica)の樹脂610gを製造例5と同様に処理して、スチレンを0.1g得た。得られたスチレン(バイオマス由来スチレン)のバイオマス比率を示すpMCの値は、109%であった。
ニチニチソウの芽を切り取り、70%のエタノール溶液、次いで約0.5%の次亜塩素酸ナトリウム溶液に浸漬後、滅菌水で洗浄した。1.0mg/lのジクロロフェノキシ酢酸、1.0mg/lのベンジルアデニンを加えたMS培地に洗浄した組織片(芽)を置床した。これを25℃で5週間培養することにより、カルスを形成させた。
次にGamborg B5 液体培地 (Gamborg O.L.,Miller R. A.,Ojima K.,Experimental Cell Research,50,151158(1968).)に、50mgのバイオマス由来の桂皮酸、1.0mg/lのジクロロフェノキシ酢酸、1.0mg/lのベンジルアデニン、3%のショ糖を加えた培地20mlに上記カルス10gを移植した。これを培養温度25℃、暗黒下、回転数100rpmで振盪しながら、12日間培養した。
培養組織を取り出して、水で洗浄、乾燥した後、冷凍粉砕したものをヘキサンにて抽出し、抽出液をHPLCで分離精製して、6mgのスチレンを得た。得られたスチレン(バイオマス由来スチレン)のバイオマス比率を示すpMCの値は、109%であった。
また、バイオマス由来の桂皮酸は、アロマ用途として販売されているハーブ(ゴマノハグサ)由来の桂皮酸をさらに高速液体クロマトグラフィーにより精製することにより調製した。
ポテトデキストロール培地粉末(シグマアルドリッチ製)24gを精製水1000mLに溶解し、121℃20分間オートクレーブ滅菌した。使用前に終濃度100mg/Lになるようにクロラムフェニコールを添加した。
Penicillium citrinum(ATCC 9849)を培地に接種し、25℃、密閉条件で2週間静置培養した。その後、ヘキサンを培養容器に加えて振盪した後、ヘキサン層を分離してGC/MSにて分析することにより、スチレンの生成を確認した。得られたスチレン(バイオマス由来スチレン)のバイオマス比率を示すpMCの値は、109%であった。
<encP遺伝子(フェニルアラニンアンモニアリアーゼをコードする遺伝子)断片の調製およびencP発現プラスミドの構築>
放線菌Streptomyces maritimus encP遺伝子(開始コドンからストップコドンまでの1572bp(GenBank受入番号:AF254925 ヌクレオチド番号16269〜17840))を人工遺伝子として作製し、クローニングベクターpUC19プラスミドの内SmaIサイトに挿入したDNAをPCRの鋳型とした。5’末端側にNdeIサイトを含む上流側プライマー(配列番号1)および5’末端側にBamHIサイトを含む下流側プライマー(配列番号2)を用いてPCRを行い、反応液をQIAprep PCR Purification Kit(キアゲン)で精製して、両末端に新規の制限酵素サイトを含むencP遺伝子のDNAフラグメントE(NdeI−encP−BamHI:1592bp)を得た。
一般的な組換えDNA手順により、NdeI制限酵素およびBamHI制限酵素で処理したDNAフラグメントEを、pET11aベクター(Novagen)のNdeI−BamHIサイトに連結し、大腸菌DH−5αコンピテントセルに形質転換してアンピシリン50μg/mLを含むLB寒天培地に播種し、37℃で1晩培養した。寒天培地に形成した大腸菌コロニーを、アンピシリン50μg/mLを含むLB液体培地5mLで37℃、1晩振とう培養し、得られた大腸菌からQIAprep Spin Miniprep Kit(キアゲン)を使ってプラスミドを抽出した。DNA配列解析によりpET11aベクターの目的の部位にGenBank受入番号AF254925のDNA配列が挿入されていることが確認できたプラスミドを、encP発現プラスミドpET11−encP(図2(a)に示すプラスミド)とした。
出芽酵母Saccharomyces cerevisiaeからYeast Geno−DNA−Template(Geno Technology, Inc)を用いてゲノムDNAを精製し、これを1回目のPCRの鋳型とした。上流側プライマー(配列番号3)および下流側プライマー(配列番号4)を用いてPCRを行い、反応液をQIAprep PCR purification Kit(キアゲン)で精製して、得られたDNAを2回目のPCRの鋳型とした。5’末端側にBspHIサイトを含む上流側プライマー(配列番号5)および5’末端側にHindIIIサイトを含む下流側プライマー(配列番号6)を用いて2回目のPCRを行い、反応液をQIAprep PCR purification Kit(キアゲン)で精製して、両末端に新規の制限酵素サイトを付加したFDC1遺伝子のDNAフラグメントF(BspHI−FDC1−HindIII:1525bp)を得た。
上述のSaccharomyces cerevisiaeゲノムを鋳型とし、上流側プライマー(配列番号7)および下流側プライマー(配列番号8)を用いてPCRを行い、反応液をPCR purification Kit(キアゲン)で精製して、得られたDNAを2回目のPCRの鋳型とした。5’末端側にNdeIサイトを含む上流側プライマー(配列番号9)および5’末端側にXhoIサイトを含む下流側プライマー(配列番号10)を用いて2回目のPCRを行い、反応液をQIAprep PCR purification Kit(キアゲン)で精製して、両末端に新規の制限酵素サイトを付加したPAD1遺伝子のDNAフラグメントP(NdeI−PAD1−XhoI:746bp)を得た。
pRSFDuet−1(Novagen)のマルチプルクローニングサイト−1(MCS−1)にFDC1遺伝子DNAフラグメントFを、マルチプルクローニングサイト−2(MCS−2)にPAD1遺伝子DNAフラグメントPを、以下の手順で挿入した。
一般的な組換えDNA手順により、pRSFDuet−1ベクター(Novagen)のマルチプルクローニングサイト−1内NcoIサイトおよびHindIIIサイトに、BspHI制限酵素およびHindIII制限酵素で処理したDNAフラグメントFを挿入した。寒天培地および液体培地中のアンピシリンをカナマイシンに変更したことを除いて、pET11−encPの構築と同様の手順で、pRSF−FDC1を構築した。
同様にして、pRSF−FDC1のNdeIサイトおよびXhoIサイト(元のベクターpRSFDuet−1のMCS−2に由来する)に、NdeI制限酵素およびXhoI制限酵素で処理したDNAフラグメントPを組み込み、構築したプラスミドをpRSF−FDC1−PAD1(図2(b)に示すプラスミド)とした。
pET11−encPおよびpRSF−FDC1−PAD1を大腸菌BL21(DE3)コンピテントセルに同時に形質転換してアンピシリン35μg/mLおよびカナマイシン20μg/mLを含むLB寒天培地に播種し、30℃で1晩培養して寒天培地に大腸菌コロニーの形成を確認した。
pET11−encPおよびpRSF−FDC1−PAD1を形質転換した大腸菌コロニーを、アンピシリン35μg/mLおよびカナマイシン20μg/mLを含むLB液体培地1mLに接種し、30℃で1晩振とう培養して前培養液とした。300mL容量マイエルフラスコ中のアンピシリン35μg/mLおよびカナマイシン20μg/mLを含むLB液体培地50mLに、前培養液100μLを接種し、30℃15時間振とう培養した。波長600nmにおける培養液の吸光度(A600)を30分毎に測定しながら、さらに同条件で培養を続け、A600が0.8になった時点で、タンパク質発現を誘導するために1M イソプロピル−β−チオガラクトピラノシド(IPTG)を25μL(終濃度0.5mM)添加し、さらに8時間培養した。
培養液を遠心分離し、その上澄みにヘキサンを加えて激しく撹拌した。遠心分離にかけた後、ヘキサン層を分離してGC/MSにて分析することにより、スチレンの生成を確認した。スチレンの産生量は140mg/Lであった。得られたスチレン(バイオマス由来スチレン)のバイオマス比率を示すpMCの値は、109%であった。
バイオマス由来のブタジエンとして、製造例1〜4で得られたバイオマス由来ブタジエン(1,3−ブタジエン)を混合したものを、バイオマス由来のスチレンとして、製造例5〜9で得られたバイオマス由来スチレンを混合したものを、モノマー成分として使用してBSBR(本発明のバイオマス由来ゴムに相当)の合成を行った。
使用した薬品は、以下のとおりである。
シクロヘキサン:関東化学(株)製の無水シクロヘキサン
ブタジエン:製造例1〜4で得られたバイオマス由来ブタジエンの混合物
スチレン:製造例5〜9で得られたバイオマス由来スチレンの混合物
TMEDA:関東化学(株)製のテトラメチルエチレンジアミン
ブチルリチウム溶液:関東化学(株)製の1.6M−n−ブチルリチウム/ヘキサン溶液
BHT溶液:関東化学(株)製のBHT(2,6−tert−ブチル−p−クレゾール)0.1gを関東化学(株)製のイソプロパノール100mlに溶解させて調製した溶液
<BSBRの合成>
反応釜(500mlの耐圧ステンレス容器)を窒素置換し、窒素雰囲気を保持しながらシクロヘキサンを180ml、ブタジエンを20ml(222mmol)、スチレン3.5ml(30mmol)、TMEDA0.3ml(2mmol)を投入し、撹拌を開始した。
次に容器内温度を40℃に昇温し、ブチルリチウム溶液を0.06ml投入し、重合を開始させた。3時間撹拌後、重合体溶液にBHT溶液0.1mlを添加し5分間撹拌した後、重合体溶液を取り出した。重合体溶液を300mlエタノール中に撹拌しながら注ぎ、重合物を凝固させた。得られた重合物を風乾後、24時間減圧乾燥を行い、バイオマススチレンブタジエンゴム(BSBR)を得た。収率は95%であった。分析の結果、得られたBSBRのMwは40.2×104、Mw/Mnは1.07、バイオマス比率を示すpMCは108%、Tgは−25℃、スチレン含量は22.3質量%であった。
NR:RSS#3(Tg:−75℃)
SBR:日本ゼオン(株)製のNS116(Tg:−25℃、スチレン含量:21質量%、Mwは68.7×104、Mw/Mnは1.12)
BSBR:製造例10により得られたバイオマススチレンブタジエンゴム(本発明のバイオマス由来ゴムに相当)
カーボンブラック:三菱化学(株)製のシーストN220(N2SA:114m2/g)
シリカ:エボニックデグッサ社製のウルトラシルVN3(平均一次粒子径:15nm、N2SA:175m2/g)
シランカップリング剤:エボニックデグッサ社製のSi75(ビス(3−トリエトキシシリルプロピル)ジスルフィド)
オイル:(株)ジャパンエナジー製のプロセスX−140
ワックス:大内新興化学工業(株)製のサンノックN
酸化亜鉛:三井金属鉱業(株)製の亜鉛華1号
ステアリン酸:日本油脂(株)製のステアリン酸「椿」
老化防止剤:住友化学(株)製のアンチゲン6C(N−(1,3−ジメチルブチル)−N’−フェニル−p−フェニレンジアミン)
硫黄:軽井沢硫黄(株)製の粉末硫黄
加硫促進剤(1):大内新興化学工業(株)製のノクセラーCZ(N−シクロヘキシル−2−ベンゾチアゾリルスルフェンアミド)
加硫促進剤(2):大内新興化学工業(株)製のノクセラーD(N,N’−ジフェニルグアニジン)
表1に示す配合処方にしたがい、1.7Lバンバリーミキサーを用いて、硫黄及び加硫促進剤以外の薬品を混練りした。次に、オープンロールを用いて、得られた混練り物に硫黄及び加硫促進剤を添加して練り込み、未加硫ゴム組成物を得た。次に、得られた未加硫ゴム組成物を170℃で15分間、2mm厚の金型でプレス加硫し、加硫ゴム組成物(加硫ゴムシート)を得た。
粘弾性スペクトロメーターVES((株)岩本製作所製)を用いて、温度70℃、初期歪み10%、動歪み2%の条件下で各配合(加硫ゴム組成物)のtanδを測定し、比較例1のtanδを100として、下記計算式により指数表示した。指数が大きいほど転がり抵抗性(低燃費性)に優れる。
(転がり抵抗指数)=(比較例1のtanδ)/(各配合のtanδ)×100
粘弾性スペクトロメーターVES((株)岩本製作所製)を用いて、温度20℃、初期歪み10%、動歪み2%の条件下で各配合(加硫ゴム組成物)のtanδを測定し、比較例1のtanδを100として、下記計算式により指数表示した。指数が大きいほどWET性能(ウェットグリップ性能)に優れる。
(WET性能指数)=(各配合のtanδ)/(比較例1のtanδ)×100
得られた未加硫ゴム組成物について、JIS K 6300−1「未加硫ゴム−物理特性−第1部:ムーニー粘度計による粘度及びスコーチタイムの求め方」に準じて、ムーニー粘度試験機を用いて、1分間の予熱によって熱せられた130℃の温度条件にて、小ローターを回転させ、4分間経過した時点での上記未加硫ゴム組成物のムーニー粘度(ML1+4/130℃)を測定した。測定結果を比較例1の結果を100とし、下記計算式により、各配合のムーニー粘度を指数表示した。指数が大きいほどムーニー粘度が低く、加工性に優れることを示す。
(加工性指数)=(比較例1のムーニー粘度)/(各配合のムーニー粘度)×100
22 加熱装置(電気炉)
23 脱水反応用カラム
24 冷却装置
25 加熱装置
26 二段目反応カラム
27 冷却装置
28 循環ライン
配列番号1:上流側プライマー(encP−U−Nde)
配列番号2:下流側プライマー(encP−L−Bam)
配列番号3:上流側プライマー(FDC1−gU)
配列番号4:下流側プライマー(FDC1−gL)
配列番号5:上流側プライマー(FDC1−nU−BspHI)
配列番号6:下流側プライマー(FDC1−nL−Hind)
配列番号7:上流側プライマー(PAD1−gU)
配列番号8:下流側プライマー(PAD1−gL)
配列番号9:上流側プライマー(PAD1−nU−Nde)
配列番号10:下流側プライマー(PAD1−nL−Xho)
Claims (34)
- スチレンブタジエンゴム及びカーボンブラックを含むタイヤ用ゴム組成物の製造方法であって、前記スチレンブタジエンゴムが、モノマー成分であるブタジエン、モノマー成分であるスチレンの少なくとも一部として、バイオマス由来のアルケン類、及び不飽和カルボン酸類からなる群より選択される少なくとも1種のバイオマス由来成分から触媒反応により得られたブタジエン、又は、バイオマス由来のアルケン類、及び不飽和カルボン酸類からなる群より選択される少なくとも1種のバイオマス由来成分から触媒反応により得られたブタジエンと、微生物、植物、及びこれらの組織培養体からなる群より選択される少なくとも1種を用いて得られたスチレンとを使用して重合して得られたものであり、
前記カーボンブラックの窒素吸着比表面積が、50〜180m2/gであるタイヤ用ゴム組成物の製造方法。 - 前記スチレンブタジエンゴムのガラス転移温度(Tg)が−60℃以上である請求項1記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記アルケン類が、ブテン及び/又はエチレンである請求項1又は2記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記不飽和カルボン酸類が、チグリン酸及び/又はアンゲリカ酸である請求項1〜3のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記スチレンが、バイオマス由来の桂皮酸より変換されたものである請求項1〜4のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記植物が、マンサク科、エゴノキ科、キョウチクトウ科、ナス科、ニンジン科、及びツバキ科からなる群より選択される少なくとも1種の科に属する植物である請求項1〜5のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記微生物が、フザリウム属、ペニシリウム属、ピキア属、カンジダ属、デバリオミセス属、トルロプシス属、サッカロマイセス属、バチルス属、エシェリキア属、ストレプトマイセス属、及びシュードモナス属からなる群より選択される少なくとも1種の属に属する微生物である請求項1〜6のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記微生物が、遺伝子改変されていない微生物である請求項1〜7のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記微生物及び/又は植物が、フェニルアラニンアンモニアリアーゼを高発現するよう操作されたものである請求項1〜7のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記微生物及び/又は植物が、桂皮酸デカルボキシラーゼ(フェニルアクリル酸デカルボキシラーゼ)を高発現するように操作されたものである請求項1〜7のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記微生物及び/又は植物が、フェノール酸デカルボキシラーゼを高発現するよう操作されたものである請求項1〜7のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記スチレンが、バイオマス由来の桂皮酸より、植物の代謝により得られたものである請求項1〜11のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記スチレンが、バイオマス由来の桂皮酸より、微生物の発酵により得られたものである請求項1〜11のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記スチレンブタジエンゴムが、由来が異なる複数のブタジエンを重合することにより得られたものである請求項1〜13のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記スチレンブタジエンゴムが、由来が異なる複数のスチレンを重合することにより得られたものである請求項1〜14のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- 前記スチレンブタジエンゴムのASTMD6866−10に準拠して測定したpMC(percent Modern Carbon)が1%以上である請求項1〜15のいずれかに記載のタイヤ用ゴム組成物の製造方法。
- スチレンブタジエンゴム及びカーボンブラックを含むタイヤ用ゴム組成物を用いて作製したタイヤ部材の製造方法であって、前記スチレンブタジエンゴムが、モノマー成分であるブタジエン、モノマー成分であるスチレンの少なくとも一部として、バイオマス由来のアルケン類、及び不飽和カルボン酸類からなる群より選択される少なくとも1種のバイオマス由来成分から触媒反応により得られたブタジエン、又は、バイオマス由来のアルケン類、及び不飽和カルボン酸類からなる群より選択される少なくとも1種のバイオマス由来成分から触媒反応により得られたブタジエンと、微生物、植物、及びこれらの組織培養体からなる群より選択される少なくとも1種を用いて得られたスチレンとを使用して重合して得られたものであり、
前記カーボンブラックの窒素吸着比表面積が、50〜180m2/gであるタイヤ部材の製造方法。 - スチレンブタジエンゴム及びカーボンブラックを含むタイヤ用ゴム組成物を用いて作製した空気入りタイヤの製造方法であって、前記スチレンブタジエンゴムが、モノマー成分であるブタジエン、モノマー成分であるスチレンの少なくとも一部として、バイオマス由来のアルケン類、及び不飽和カルボン酸類からなる群より選択される少なくとも1種のバイオマス由来成分から触媒反応により得られたブタジエン、又は、バイオマス由来のアルケン類、及び不飽和カルボン酸類からなる群より選択される少なくとも1種のバイオマス由来成分から触媒反応により得られたブタジエンと、微生物、植物、及びこれらの組織培養体からなる群より選択される少なくとも1種を用いて得られたスチレンとを使用して重合して得られたものであり、
前記カーボンブラックの窒素吸着比表面積が、50〜180m2/gである空気入りタイヤの製造方法。 - バイオマス由来のモノマー成分、又はバイオマス由来のモノマー成分と石油資源由来のモノマー成分とを重合し、バイオマス由来のモノマー成分が、バイオマス由来のアルケン類、及び不飽和カルボン酸類からなる群より選択される少なくとも1種のバイオマス由来成分から触媒反応により得られたブタジエン、又は、バイオマス由来のアルケン類、及び不飽和カルボン酸類からなる群より選択される少なくとも1種のバイオマス由来成分から触媒反応により得られたブタジエンと、微生物、植物、及びこれらの組織培養体からなる群より選択される少なくとも1種を用いて得られたスチレンとであることを特徴とする、スチレンとブタジエンを重合して得られ、ASTMD6866−10に準拠して測定したpMC(percent Modern Carbon)が1%以上であるバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記スチレンブタジエンゴムのガラス転移温度(Tg)が−60℃以上である請求項19記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記アルケン類が、ブテン及び/又はエチレンである請求項19又は20記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記不飽和カルボン酸類が、チグリン酸及び/又はアンゲリカ酸である請求項19〜21のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記スチレンが、バイオマス由来の桂皮酸より変換されたものである請求項19〜22のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記植物が、マンサク科、エゴノキ科、キョウチクトウ科、ナス科、ニンジン科、及びツバキ科からなる群より選択される少なくとも1種の科に属する植物である請求項19〜23のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記微生物が、フザリウム属、ペニシリウム属、ピキア属、カンジダ属、デバリオミセス属、トルロプシス属、サッカロマイセス属、バチルス属、エシェリキア属、ストレプトマイセス属、及びシュードモナス属からなる群より選択される少なくとも1種の属に属する微生物である請求項19〜24のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記微生物が、遺伝子改変されていない微生物である請求項19〜25のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記微生物及び/又は植物が、フェニルアラニンアンモニアリアーゼを高発現するよう操作されたものである請求項19〜25のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記微生物及び/又は植物が、桂皮酸デカルボキシラーゼ(フェニルアクリル酸デカルボキシラーゼ)を高発現するように操作されたものである請求項19〜25のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記微生物及び/又は植物が、フェノール酸デカルボキシラーゼを高発現するよう操作されたものである請求項19〜25のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記スチレンが、バイオマス由来の桂皮酸より、植物の代謝により得られたものである請求項19〜29のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記スチレンが、バイオマス由来の桂皮酸より、微生物の発酵により得られたものである請求項19〜29のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 由来が異なる複数のブタジエンを重合する請求項19〜31のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 由来が異なる複数のスチレンを重合する請求項19〜32のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
- 前記スチレンブタジエンゴムのpMCが100%以上である請求項19〜33のいずれかに記載のバイオマス由来スチレンブタジエンゴムの製造方法。
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