JP6219956B2 - 血液脳関門シャトル - Google Patents
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Description
例えば低い脳透過性を有する大型バイオ治療薬又は小分子薬などの神経障害薬の脳透過は、神経血管ユニット(NVU)中の他の細胞成分と一緒に広範囲で不透過性の血液脳関門(BBB)によって厳密に制限されている。この障壁を克服するための多くの戦略が試験されており、一つは、脳毛細血管内皮上に発現された内因性レセプターによって仲介されるトランスサイトーシス経路を利用することである。脳へのバイオ治療薬のレセプター介在性送達を可能にするために、モノクローナル抗体又はペプチドなどのリコンビナントタンパク質がこれらのレセプターに対して設計されている。しかし、脳内皮細胞(BEC)内の誤ソーティング及びBEC中のあるオルガネラ(特にバイオ治療薬の分解に導くオルガネラ)内の蓄積度を最小化する一方で脳の取り込みを最大化するための戦略は、まだ探求されていない。
第一の局面では、本発明は、脳エフェクター本体、リンカー、及び血液脳関門レセプターに結合する一つの一価結合性本体を含む血液脳関門シャトルであって、リンカーが、血液脳関門レセプターに結合する一価結合性本体にエフェクター本体を連結する血液脳関門シャトルを提供する。
− IgG重鎖、
− IgGの重鎖のFc部分のC末端をscFabのVLドメインのN末端に連結しているリンカー、
− scFabの可変軽鎖ドメイン(VL)及びC−κ軽鎖ドメイン、
− scFabのC−κ軽鎖ドメインのC末端をscFabのVHドメインのN末端に連結しているリンカー、
− scFab抗体の可変重鎖ドメイン(VH)及びIgG CH3重鎖ドメイン。
定義
「血液脳関門」又は「BBB」は、脳毛細血管内皮形質膜内のタイトジャンクションによって形成される、末梢循環と脳及び脊髄との間の生理学的関門を表し、尿素(60ダルトン)などの非常に小さな分子であっても脳内への分子の輸送を制限する密着関門を作る。脳内のBBB、脊髄内の血液−脊髄関門、及び網膜内の血液−網膜関門は、CNS内の近接毛細血管関門であり、本明細書において、まとめて血液脳関門又はBBBと呼ばれる。BBBは、また、関門が毛細血管内皮細胞よりもむしろ上衣細胞から構成される血液−CSF関門(脈絡叢)を包含する。
本発明の方法及び製造品は、R/BBBに結合する血液脳関門シャトル及び/又は融合タンパク質を使用又は組み入れる。一価結合性本体の産生又はスクリーニングのために使用されるべきR/BBB抗原は、例えば所望のエピトープを含む可溶型又はその部分(例えば細胞外ドメイン)でありうる。代替的又は追加的に、細胞表面にBBB−Rを発現している細胞は、一価結合性本体を作製又はスクリーニングするために使用することができる。一価結合性本体を作製するために有用な他の形態のR/BBBは、当業者に明らかであろう。本明細書におけるR/BBBの例には、トランスフェリンレセプター(TfR)、インスリンレセプター、インスリン様成長因子レセプター(IGF−R)、低比重リポタンパク質レセプター関連タンパク質1(LRP1)及びLRP8、ならびにヘパリン結合性上皮成長因子様成長因子(HB−EGF)が挙げられる。
本発明により使用される血液脳関門シャトル及び/又はコンジュゲートの治療用製剤は、場合による薬学的に許容されうる担体、賦形剤又は安定化剤と混合することにより、凍結乾燥製剤又は水溶液の形態で保管用に調製される(Remington's Pharmaceutical Sciences 16th edition, Osol, A. Ed. (1980))。許容されうる担体、賦形剤、又は安定化剤は、採用される用量及び濃度でレシピエントに無毒であり、それらには、リン酸塩、クエン酸塩、及び他の有機酸などの緩衝剤;アスコルビン酸及びメチオニンを含む抗酸化剤;保存料(オクタデシルジメチルベンジルアンモニウムクロリド;塩化ヘキサメトニウム;塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム;フェノール、ブチルアルコールもしくはベンジルアルコール;メチルパラベンもしくはプロピルパラベンなどのアルキルパラベン;カテコール;レゾルシノール;シクロヘキサノール;3−ペンタノール;及びm−クレゾールなど);低分子量(約10残基未満の)ポリペプチド;血清アルブミン、ゼラチン、もしくは免疫グロブリンなどのタンパク質;ポリビニルピロリドンなどの親水性ポリマー;グリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン、もしくはリシンなどのアミノ酸;単糖、二糖、及びグルコース、マンノース、もしくはデキストリンを含む他の糖質;EDTAなどのキレート剤;スクロース、マンニトール、トレハロースもしくはソルビトールなどの糖;ナトリウムなどの塩形成対イオン;金属複合体(例えばZn−タンパク質複合体);ならびに/又はTWEEN(商標)、PLURONICS(商標)もしくはポリエチレングリコール(PEG)などの非イオン性界面活性剤が含まれる。
本発明の別の局面では、上記障害の治療及び/又は予防に有用な物質を含有する製造品が提供される。製造品は、容器、及び容器上又は容器に関連するラベル又は添付文書を含む。適切な容器には、例えばボトル、バイアル、シリンジ、IV溶液バッグなどが挙げられる。容器は、ガラス又はプラスチックなどの多様な材料から形成することができる。容器は、それ自体である組成物又は状態を治療、予防及び/もしくは診断するために有効な別の組成物と組み合わされた組成物を収容し、無菌アクセスポートを有しうる(例えば、容器は、皮下注射針により刺通可能なストッパーを有する静脈内溶液バッグ又はバイアルでありうる)。組成物中の少なくとも1種の活性薬剤は、本発明の血液脳シャトル及び/又はコンジュゲートである。ラベル又は添付文書は、組成物が選ばれた状態を処置するために使用されることを示す。そのうえ、製造品は、(a)組成物がその中に収容された第1の容器(その際、組成物は、本発明の血液脳関門シャトル及び/又はコンジュゲートを含む);及び(b)組成物がその中に収容された第2の容器(その際、組成物は、さらなる細胞傷害性薬物又は他の治療薬を含む)を含みうる。本発明のこの態様における製造品は、さらに、組成物が特定の状態を処置するために使用することができることを示す添付文書を含む。代替的又は追加的に、製造品は、さらに、注射用静菌水(BWFI)、リン酸緩衝食塩水、リンゲル液及びブドウ糖溶液などの薬学的に許容されうる緩衝液を含む第2(又は第3)の容器を含みうる。それは、さらに、他の緩衝剤、希釈剤、フィルター、針、及びシリンジを含む、商業的及び利用者の観点から望ましい他の物質を含みうる。
実施例1:発現プラスミドの作製
基本/基準哺乳類発現プラスミドの説明
ヒト胚性腎細胞(HEK293)の一過性トランスフェクションにより所望のタンパク質を発現させた。所望の遺伝子/タンパク質(例えば抗体−Fab多量体タンパク質)の発現のために、以下の機能的エレメントを含む転写ユニットを使用した:
− イントロンAを含むヒトサイトメガロウイルス由来最初期エンハンサー及びプロモーター(P−CMV)、
− ヒト重鎖免疫グロブリン5’非翻訳領域(5’UTR)、
− マウス免疫グロブリン重鎖シグナル配列(SS)、
− 発現されるべき遺伝子/タンパク質(例えば完全長抗体重鎖)、及び
− ウシ成長ホルモンポリアデニル化配列(BGH pA)。
− E. coliにおいてこのプラスミドを複製させるベクターpUC18由来複製起点、及び
− E. coliにアンピシリン耐性を付与するβ−ラクタマーゼ遺伝子
を含む。
四価Mab31−scFab(8D3)(図1C)(Mab31=Aβを認識するヒトモノクローナル抗体。Mab31のINN=ガンテネルマブ(Gantenerumab))
重鎖(10132_pPM284_Mab31(IgG1)−(G 4 S) 4 −VL−Ck−(G 4 S) 6 −GG−VH−CH1)(配列番号1):
Mab31−scFab(8D3)重鎖融合タンパク質の組成:
− C末端Lysを有さないMab31ヒトIgG1重鎖
− グリシンセリン−リンカー
− マウス8D3抗トランスフェリン抗体の可変軽鎖ドメイン(VL)変異体(L596V及びL598I)(Boado, R.J. Zhang, Y. Wang, Y and Pardridge, W.M., Biotechnology and Bioengineering (2009) 102, 1251-1258)
− ヒトC−κ軽鎖
− グリシンセリン−リンカー
− マウス8D3抗トランスフェリン抗体の可変重鎖ドメイン(VH)(Boado, R.J. Zhang, Y. Wang, Y and Pardridge, W.M., Biotechnology and Bio-engineering (2009) 102, 1251-1258)
− ヒトIgG1 CH3重鎖ドメイン
軽鎖(5170−VL−Mab31−BsmI−L2−Neo−BGHpA)(配列番号2)
Mab31軽鎖の組成
− Mab31ヒトCκ軽鎖
三価Mab31−scFab(8D3)(図1B)
ノブ重鎖(10134_pPM287_Mab31(IgG1)_ノブ_SS_−(G4S)4−VL−Ck−(G4S)6−GG−VH−CH1)(配列番号3)
ノブMab31−scFab(8D3)重鎖融合タンパク質の組成
− 追加的なジスルフィド架橋の形成のための、C末端Lysを有さずCH3ノブ突然変異T366W及びS354C突然変異を含むMab31ヒトIgG1重鎖
− グリシンセリン−リンカー
− マウス8D3抗トランスフェリン抗体の可変軽鎖ドメイン(VL)変異体(L596V及びL598I)(Boado, R.J. Zhang, Y. Wang, Y and Pardridge, W.M., Biotechnology and Bioengineering (2009) 102, 1251-1258)
− ヒトC−κ軽鎖
− グリシンセリン−リンカー
− マウス8D3抗トランスフェリン抗体の可変重鎖ドメイン(VH)(Boado, R.J. Zhang, Y. Wang, Y and Pardridge, W.M., Biotechnology and Bio-engineering (2009) 102, 1251-1258)
− ヒトIgG1 CH3重鎖ドメイン
ホール重鎖(10133_pPM286_Mab31(IgG1)_ホール_SS)(配列番号4)
ホールMab31重鎖融合タンパク質の組成
− 追加的なジスルフィド架橋の形成のためのCH3ホール突然変異T366S、Y407V及びL368A及びY349C突然変異を含むMab31ヒトIgG1重鎖
軽鎖(5170−VL−Mab31−BsmI−L2−Neo−BGHpA)(配列番号2)
Mab31軽鎖の組成
− Mab31ヒトCκ軽鎖
抗体鎖は、F17培地(Invitrogen Corp.)中で培養されたHEK293細胞(ヒト胚性腎細胞系293由来)の一過性トランスフェクションによって作製した。トランスフェクションのために、「293-Fectin」トランスフェクション試薬(Invitrogen)を使用した。抗体鎖は、それぞれ四価Mab31−scFab(8D3)重鎖及びMab31に対応する軽鎖、又はノブ及びホール三価Mab31−scFab(8D3)重鎖及びMab31に対応する軽鎖をコードする2種(四価Mab31−scFab(8D3))又は3種(三価Mab31−scFab(8D3))の異なるプラスミドから発現させた。2又は3種のプラスミドは、トランスフェクションのときに等モルのプラスミド比で使用した。トランスフェクションは、製造業者の説明書に明記されたように行った。抗体融合タンパク質を含有する細胞培養上清は、トランスフェクションの7日後に回収した。上清は、精製まで凍結保管した。
マウストランスフェリンレセプター(mTfR)へのmAb31−8D3構築物の結合は、不完全ELISAにより判定した。この目的のために、リコンビナントmTfR(細胞外ドメイン;Sino Biological)をPBS中に1μg/mLでMaxisorbマイクロタイタープレート(Nunc)に4℃で一晩コーティングした。1%Crotein−C/PBS(ブロッキング緩衝液; Roche)中でRTにおいて1時間ブロッキングし、0.1% Tween−20/PBS(洗浄緩衝液)で4回洗浄後、mAb31−8D3構築物をブロッキング緩衝液中に0.01から150nMの間の濃度でウェルに加え、RTで1時間インキュベーションした。4回の洗浄段階の後に、抗ヒト−IgG−HRP(Jackson Immunoresearch)をブロッキング緩衝液中に1:10,000希釈して添加することによって構築物を検出し(1 RT)、続いて6回洗浄し、TMB(Sigma)中でインキュベーションした。吸光度は、1N HClで発色を停止させた後に450nmで読み取った。
脳の切片作製及び免疫組織化学染色:
脳は、PBS潅流後に調製し、矢状断凍結切片を、Paxinos及びFranklinの脳図解書により横方向に約1.92から1.68ミリメートルの間で切断した。Leica CM3050Sクリオスタットを使用して−15℃で公称厚さ20ミクロンの脳切片を作製し、予冷したガラススライド(Superfrost plus, Menzel, Germany)上に置いた。各脳について、切片3枚を80ミクロン間隔で同じスライド上に置いた。
前頭皮質(一次運動野領域)中にプラーク含有領域を有する各PS2APP−マウスの脳の各切片から3画像を取得した。1エアリーのピンホール設定のLeica TCS SP5共焦点システムを用いて画像を記録した。
免疫陽性領域をTIFF画像として視覚化し、ImageJバージョン1.45(NIH)を用いて蛍光強度及び面積(ピクセル単位で測定)の定量のために処理した。定量のために、5のバックグラウンド強度を各画像において差し引きし、5平方ピクセル未満の陽性領域をフィルタリングして除去した。選択された等値面の合計蛍光強度は、単一の個別陽性領域の合計強度として決定し、平均ピクセル強度は、合計強度を被解析ピクセル数で除算して計算した。
実験手順を実施例4に記載する。図6に、10mg/ml mAb31(図1Aの構築物)及び13.3mg/kg sFab−mAb31(図1Bの構築物)を用いてsFab−mAb31の脳曝露の定量を示す。sFab−mAb31構築物を注射した8時間後に、すでにmAb31に比べてかなりの取り込みがある(約55倍の増加)。25mg/ml mAb31(図1Aの構築物)及び33.3mg/kg sFab−mAb31(図1Bの構築物)を用いて、投与の24時間後に類似のデータが得られた。図6にも、sFab−mAb31の一過性毛細血管染色が、経時的なターゲティング効果及びBBB通過を明らかにすることを示す。全てのこれらのデータは、図6に示すように高度に有意である。
実験の詳細:bEnd3細胞を6ウェルプレート形式で培養する。集密に達した2〜3日後にdFab−mAb31、sFab−mAb31又は未処理対照で24時間処理する。次に、培地を除去/吸引し、細胞を氷冷PBS(−MgCl)(−CaCl)(Gibco 14190-094)5ml/ウェルで2回洗浄する。トリプシン/EDTA(Lonza CC-5012)1ml/ウェルを添加し、全ての細胞が剥離するまで37℃で15分間インキュベーションする。トリプシン中和溶液(氷冷)(Lonza CC-5002)1mlで反応を停止する。トリプシン/EDTA+中和溶液2mlを50ml容Falconチューブ中に収集し、氷上に置く。細胞を4℃及び1400rpmで10分間遠心分離する。ペレットを氷冷bEnd3培地(DMEM−12(Gibco31331)+10%FBS)50ml中に再懸濁する。細胞を4℃及び1400rpmで10分間遠心分離する。ペレットを氷冷FACS緩衝液(BD554656)3ml中に再懸濁する。細胞数:a)sFabチューブ(細胞2.5×105個/ml)の生存率:47%、b)dFabチューブ(細胞3.18×105個/ml)の生存率:55%、c)対照チューブ(細胞4.6×105個/ml)の生存率:57%。FACS染色:細胞1×105個/エッペンドルフチューブとなるように分配し、遠心分離する(4℃、10分、1500rpm)。上清を吸引する;a)CD71−PE(クローンR17217−IgG2aモノクローナル)(santa cruz sc-52504)は20μL抗体/ペレット(染色体積100μL)を氷冷FACS緩衝液(BD554656)で100μLに調整、b)CD31−APC(BD551262)(ラット抗マウスIgG2a(200μg/ml))は5μg抗体/ペレット(染色体積100μL)を氷冷FACS緩衝液(BD554656)で100μLに調整、c)8D3−Alexa488(染色体積100μL)は氷冷FACS緩衝液(BD554656)で希釈(1:50)、d)Alexa488、APC及びPE(全てBD製)についてのアイソタイプ対照。氷冷して暗条件で1時間インキュベーションする。氷冷FACS緩衝液で1.5mlに調整し、遠心分離する(4℃、10分、1500rpm)。ペレットを氷冷FACS緩衝液1.5mlで2回洗浄し、最終的にペレットをPBS 500μL中に再懸濁する。FACS測定は、Guavaフローサイトメトリー装置を使用して行った。データは、二重(dFab)構築物(図8B)が細胞表面でのトランスフェリンレセプターをダウンレギュレーションするように見えることを示している。これは、単一(sFab)構築物を用いたこのアッセイの設定で検出不能であり(図8A)、一価結合様式が、脳内皮細胞上の細胞表面でのトランスフェリンレセプターの量を決定する細胞輸送及びリサイクリングに直接的な効果を有さないことを示している。
APPswe/PS2トランスジェニックマウスに以下の構築物:MAb31(10mg/kg)、sFab−MAb31(13.3mg/kg)又はdFab−MAb31(17.44mg/kg)をi.v注射(尾注射)した。注射された用量は分子サイズを反映し、MAb31を参照として使用した。注射の15分後又は8時間後に、マウスをCO2で安楽死させ、以下のように処理した。心臓の右心房を切開することにより、血液及び潅流溶液が流出できるようにした。左心室を切開し、強制給餌プローブ#10を大動脈内に押し込んだ。PBS約20mlを注射し(約10ml/min、室温)、続いてPBS中の2%PFA30mlを注射した。脳を摘出し、同じ潅流液中で追加的に7時間00分インキュベーションした。ビブラトームを使用して、脳自由浮遊性切片100ミクロンを作製し、それを免疫蛍光染色のために使用した。切片を最初に透過性にし、PBS−0.3%Triton X−100−10%ロバ血清を使用してブロッキングした。次に、PBS−5%ロバ血清中に希釈した表示の一次抗体と共に切片を一晩インキュベーションした。Molecular Probes製二次抗体を製造業者の推奨にしたがって使用した。Leica SP5共焦点顕微鏡を使用して画像を取得し、画像処理及び3D復元のためにImarisソフトウェアを使用した。
抗Aβモノクローナル抗体mAb31は、非常に特異的であり、強力なAβプラーク結合体であり、本発明者らに脳実質内のターゲットの会合を定量するための強力な読み取りを提供する。本発明者らは、mAb31親抗体に比べて2種の脳シャトル構築物の脳曝露量を検討するためにPS2APPダブルトランスジェニックアミロイドーシスモデルを用いた。3種の変異体を10mg/kgで静脈内注射し、注射の8時間後にプラークに存在する抗体の量を定量することによって脳曝露の程度を決定した。dFab構築物のために、mAb31に比べてプラーク装飾の有意な増加は検出されなかった(図13A)。しかし、sFab構築物について、親mAb31抗体に比べてプラーク装飾の大きな増加があった。sFab構築物について、アミロイドプラークでのターゲット会合は、ラベル化二次抗体を用いた蛍光強度定量に基づき50倍よりも大きく改善した。sFab構築物は大きなプラーク装飾を示したものの(図13D)、dFabは、微小血管にのみ検出可能であり(図13C)、dFab構築物が脳微小血管をターゲティングし、その中に進入するが、反管腔側から逃避できないことを示した。本発明者らは、低用量2.66mg/kgでsFab構築物のターゲット会合能を検討し、最大7日までin vivo曝露時間を延長した。単回注射後8時間以内に最大プラーク装飾に到達し、続いて少なくとも1週間にわたる持続的プラーク結合が生じた(図13E)。
次の一連の実験で、本発明者らは、一価結合様式を用いた脳曝露の顕著な増加が長期処置研究で抗Aβ抗体のin vivo効力を改善するかどうかを問うた。本発明者らは、sFab構築物及び対照親抗体mAb31を1週間に1回3ヶ月間注射した。前回の5ヶ月研究で、治療用抗体mAb31は、20mg/kgでプラーク負荷を軽減することが示された。図14に示すデータに基づき、本発明者らは、脳曝露の改善がin vivo効力の強化に繋がるかどうかを検討するために2種の低用量を選択した。最終でのターゲットプラーク結合は、両方の用量で親mAb31抗体よりもsFab構築物と強いターゲット会合があったことを示した(図14A〜D)。APPPS2二重トランスジェニックマウスでのアミロイドーシスの程度をベースラインで、ならびにビヒクル、低用量親mAb31及び低用量sFab構築物処置の後に定量した。これらの低用量で、親モノクローナルmAb31を用いてin vivo効果は検出されず(図14E)、それは、前回の5ヶ月間長期試験に基づき予期されたことであった。対照的に、皮質及び海馬の両方におけるプラーク数の有意な減少が、低用量2.67mg/kgのsFab構築物で観察された。ずっと低い用量0.53mg/kgであっても(図14E)、sFab構築物は統計的有意性に到達しなかったものの、特に皮質においてsFab構築物を有利とする傾向が見られた。プラークサイズの二次分析から、mAb31についての作用様式に一致して、小さなプラークについてプラーク数のより顕著な減少が明らかとなった。これらのデータは、一価様式のTfR結合によって可能にされる脳透過の増加が、アルツハイマー病病態の慢性動物モデルにおける治療用抗体の効力における有意な改善に繋がることを示している。
トランスフェリンレセプター発現BaF3細胞(DSMZ, #CLPZ04004)(TfR+)を、異なる抗体−融合分子によって誘導される抗体依存性細胞傷害作用(ADCC)実験のためのターゲット細胞として使用した。
− ターゲット細胞のみ(+培地)
− 最大LDH放出:ターゲット細胞+3%Triton−X
− 自然放出:ターゲット細胞+NK細胞(E:T=3:1)
特異的ADCC/溶解(%)は、次項により計算した:
モノクローナル抗体8D3のエピトープマッピングは、マウストランスフェリンレセプター1の細胞外ドメイン(90〜763)の配列に対応する重複する固定化ペプチドフラグメント(長さ:アミノ酸15個、移動:アミノ酸3個)のライブラリーにより実施した。ペプチドアレイの調製のために、Intavis CelluSpots(商標)技法を採用した。このアプローチでは、自動合成装置(Intavis MultiPep RS)を用いて改変セルロースディスク上にペプチドを合成し、セルロースディスクを合成後に溶解する。次に、高分子セルロースに共有結合したままの個別のペプチド溶液を、コーティング済み顕微鏡用スライド上にスポットする。384ウェル合成プレート中のアミノ改変セルロースディスクに9−フルオレニルメトキシカルボニル(Fmoc)化学反応を利用してCelluSpots(商標)合成を段階的に実施した。各カップリングサイクルにおいて、対応するアミノ酸をDIC/HOBtのDMF溶液で活性化した。カップリング段階の間に、未反応のアミノ基を無水酢酸、ジイソプロピルエチルアミン及び1−ヒドロキシベンゾトリアゾールの混合物でキャッピングした。合成の完了時に、セルロースディスクを96ウェルプレートに移し、トリフルオロ酢酸(TFA)、ジクロロメタン、トリイソプロピルシラン(triisoproylsilane)(TIS)及び水の混合物で処理し、側鎖脱保護に供した。切断溶液の除去後、セルロースに結合しているペプチドをTFA、TFMSA、TIS及び水の混合物に溶かし、ジイソプロピルエーテルで沈殿させ、DMSO中に再懸濁した。続いてIntavisスライドスポッティングロボットを使用してこれらのペプチド溶液をIntavis CelluSpots(商標)スライド上にスポットした。
Claims (42)
- 脳エフェクター本体、リンカー、及びトランスフェリンレセプターに結合する一つの一価結合性本体を含む血液脳関門シャトルであって、
リンカーが、トランスフェリンレセプターに結合する一価結合性本体にエフェクター本体を連結し、トランスフェリンレセプターに結合する一価結合性本体が、配列番号14、15、又は16のアミノ酸配列内に含まれる、トランスフェリンレセプター中のエピトープを認識する一つのscFabを含む、血液脳関門シャトル。 - 脳エフェクター本体が、神経障害薬、神経栄養因子、成長因子、酵素、細胞傷害性薬物、脳ターゲットに対する抗体、脳ターゲットに対するモノクローナル抗体、脳ターゲットに対するペプチドから成る群より選択される、請求項1記載の血液脳関門シャトル。
- 脳ターゲットが、β−セクレターゼ1、Aβ、上皮成長因子、上皮成長因子レセプター2、タウ、リン酸化タウ、アポリポタンパク質E4、αシヌクレイン、αシヌクレインのオリゴマー性フラグメント、CD20、ハンチンチン、プリオンタンパク質、ロイシンリッチリピートキナーゼ2、パーキン、プレセニリン2、γセクレターゼ、デスレセプター6、アミロイド前駆タンパク質、p75ニューロトロフィンレセプター、及びカスパーゼ6から成る群より選択される、請求項2記載の血液脳関門シャトル。
- 脳エフェクター本体が、タンパク質、ポリペプチド、及びペプチドから成る群より選択される、請求項1から3記載の血液脳関門シャトル。
- トランスフェリンレセプターに結合する一価結合性本体が、リンカーによって脳エフェクター本体のC末端に連結されている、請求項4記載の血液脳関門シャトル。
- 脳エフェクター本体が、脳ターゲットに対する完全長抗体を含む、請求項1から5記載の血液脳関門シャトル。
- 脳エフェクター本体が、完全長IgGを含む、請求項6記載の血液脳関門シャトル。
- 脳エフェクター本体としての完全長IgG抗体、リンカー、及びトランスフェリンレセプターと結合する一価結合性本体としての一つのscFabを含む血液脳関門シャトルであって、scFabが、リンカーによってIgG抗体の重鎖の一つのFc部分のC末端に連結されている、請求項7記載の血液脳関門シャトル。
- エフェクター本体が、Aβに対する完全長抗体である、請求項6から8記載の血液脳関門シャトル。
- Aβに対する抗体が、(a)配列番号5のアミノ酸配列を含むH−CDR1、(b)配列番号6のアミノ酸配列を含むH−CDR2、(c)配列番号7のアミノ酸配列を含むH−CDR3、(d)配列番号8のアミノ酸配列を含むL−CDR1、(e)配列番号9のアミノ酸配列を含むL−CDR2、及び(f)配列番号10のアミノ酸配列を含むL−CDR3を含む、請求項9記載の血液脳関門シャトル。
- Aβに対する抗体が、配列番号11のアミノ酸配列を含むVHドメイン及び配列番号12のアミノ酸配列を含むVLドメインを含む、請求項10記載の血液脳関門シャトル。
- エフェクター本体が、リン酸化タウに対する完全長抗体であり、一価結合性本体が、トランスフェリンレセプターに対する一つのscFabである、請求項6から8記載の血液脳関門シャトル。
- エフェクター本体が、αシヌクレインに対する完全長抗体であり、一価結合性本体が、トランスフェリンレセプターに対する一つのscFabである、請求項6から8記載の血液脳関門シャトル。
- リンカーが、ペプチドリンカーである、請求項1から13記載の血液脳関門シャトル。
- ペプチドリンカーが、少なくとも20アミノ酸長を有するアミノ酸配列であるペプチドである、請求項14記載の血液脳関門シャトル。
- ペプチドリンカーが、25〜50アミノ酸長を有するアミノ酸配列であるペプチドである、請求項15記載の血液脳関門シャトル。
- トランスフェリンレセプターに結合する一価結合性本体が、CH2−CH3 Ig本体及びトランスフェリンレセプターに結合する一つのscFabを含み、scFabが、第2のリンカーによってCH2−CH3 Ig本体のC末端に連結されている、請求項1から3記載の血液脳関門シャトル。
- 脳エフェクター本体、リンカー、CH2−CH3 Igドメイン、第2のリンカー、及びトランスフェリンレセプターに結合する一つのscFabを含む血液脳関門シャトルであって、脳エフェクター本体が、第1のリンカーによってCH2−CH3 IgドメインのN末端に連結されており、scFabが、第2のリンカーによってCH2−CH3 IgドメインのC末端に連結されている、請求項17記載の血液脳関門シャトル。
- CH2−CH3 Ig本体がCH2−CH3 IgG本体である、請求項17又は18記載の血液脳関門シャトル。
- 請求項1から19記載の血液脳関門シャトルをコードする単離された核酸。
- 請求項20記載の核酸を含むホスト細胞。
- 請求項1から19記載の血液脳関門シャトル及び薬学的担体を含む薬学的製剤。
- 医薬として使用するための、請求項1から19記載の血液脳関門シャトル。
- 医薬の製造における請求項1から19記載の血液脳関門シャトルの使用。
- 医薬が、神経変性障害の処置用である、請求項24記載の使用。
- 神経変性障害が、アルツハイマー病である、請求項25記載の使用。
- 血液脳関門を通して脳エフェクター本体を輸送するための、請求項1から19記載の血液脳関門シャトル。
- CH2−CH3 Ig本体、リンカー、及びトランスフェリンレセプターに対する一つのscFabを含む、血液脳関門を通して脳エフェクター本体を輸送するための融合タンパク質であって、scFabが、リンカーによってCH2−CH3 Ig本体のC末端に連結されている融合タンパク質。
- 脳エフェクター本体が、神経障害薬、神経栄養因子、成長因子、酵素、細胞傷害性薬物、脳ターゲットに対する抗体フラグメント又はペプチドから成る群より選択され、脳ターゲットに対する抗体フラグメント又はペプチドが、scFv、Fv、scFab、Fab、VHH、F(ab’)2から成る群より選択される、請求項28記載の、血液脳関門を通して脳エフェクター本体を輸送するための融合タンパク質。
- トランスフェリンレセプターに対するscFabが、配列番号14、15、又は16のアミノ酸配列内に含まれる、トランスフェリンレセプター中のエピトープを認識する、請求項28又は29記載の、血液脳関門を通して脳エフェクター本体を輸送するための融合タンパク質。
- リンカーがペプチドリンカーである、請求項28から29記載の、血液脳関門を通して脳エフェクター本体を輸送するための融合タンパク質。
- CH2−CH3 Ig本体がCH2−CH3 IgG本体である、請求項28から31記載の融合タンパク質。
- 請求項28から32記載の融合タンパク質をコードする単離された核酸。
- 請求項33記載の核酸を含むホスト細胞。
- 請求項28から32記載の、血液脳関門を通して脳エフェクター本体を輸送するための融合タンパク質と、リンカーによって融合タンパク質のCH2−CH3 Ig本体のN末端に連結された脳エフェクター本体とを含むコンジュゲート。
- 脳エフェクター本体が、タンパク質、ポリペプチド、及びペプチドから成る群より選択される、請求項35記載のコンジュゲート。
- エフェクター本体のC末端が、リンカーによってCH2−CH3 Ig本体のN末端に連結されている、請求項36記載のコンジュゲート。
- 請求項35から37記載のコンジュゲート及び薬学的担体を含む薬学的製剤。
- 医薬として使用するための、請求項35から37記載のコンジュゲート。
- 医薬の製造における、請求項35から37記載のコンジュゲートの使用。
- 医薬が、神経変性障害の処置用である、請求項40記載の使用。
- 神経変性障害が、アルツハイマー病である、請求項41記載の使用。
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