JP6041456B2 - 過剰新生血管形成の治療 - Google Patents

Description

発明の分野
本発明は、幹細胞及び／又はそれらの子孫の投与による血管新生関連疾患の治療又は予防方法に関する。

発明の背景
血管新生
血管新生（又は新生血管形成）は、新たな血管の形成及び分化である。血管新生は、健常な成体又は成熟組織には一般に不在である。しかし、創傷治癒のために、及び外傷又は傷害後に組織への血流を回復させるために、健常体において発生する。女性の場合、血管新生は、毎月の生殖周期中及び妊娠中にも発生する。これらのプロセスのもとでの新たな血管の形成は、厳格に調節されている。

血管新生及び疾患
多くの重症疾患状態において、身体は、血管新生に対する制御を失う。過剰な血管新生が、疾患、例えば、癌、黄斑変性、糖尿病性網膜症、関節炎及び乾癬の際に発生する。これらの状態では新たな血管が罹病組織に栄養を与え、正常な組織を破壊し、そして癌の場合にはそれらの新たな血管が腫瘍細胞の循環への脱出及び他の器官への停留（腫瘍転移）を可能にする。

腫瘍増殖が血管新生依存性であるという仮説は、１９７１年に初めて提案された（Flokman, 1971）。最も簡単にいうと、この仮説は、一定の期を過ぎた腫瘍容積の拡大には新たな毛細血管の導入が必要であると提案している。例えば、マウスにおける早期前血管期の肺の微小転移は、組織切片に対する高倍率顕微鏡検査による以外、検出できない。さらに、腫瘍増殖が血管新生依存性であるという概念を支持する間接的な証拠は、米国特許第５，６３９，７２５号、米国特許第５，６２９，３２７号、米国特許第５，７９２，８４５号、米国特許第５，７３３，８７６号、および米国特許第５，８５４，２０５号において見つけられる。

血管新生を刺激するために、腫瘍は、線維芽細胞増殖因子（αＦＧＦ及びβＦＧＦ）（Kandel et al.,1991）及び血管内細胞増殖因子／血管透過性因子（ＶＥＧＦ／ＶＰＦ）及びＨＧＦを含む様々な血管新生因子のそれらの生産をアップレギュレートする。しかし、多くの悪性腫瘍は、アンギオスタチンタンパク質及びトロンボスポンジンを含む血管新生阻害剤も生成する。（Chen et al., 1995、Good et al., 1990、O'Reilly et al., 1994）。血管新生表現型が、これらの正の新生血管形成調節因子と負の新生血管形成調節因子の間の正味のバランスの結果であることは、自明なことと見なされている。（Good et al., 1990、O'Reilly et al., 1994）。血管新生の幾つかの他の内因性阻害剤も同定されており、すべてではないが、腫瘍の存在に関連付けられている。これらとしては、血小板第４因子（Gupta et al., 1995、Maione et al., 1990）、インターフェロン−アルファ、インターロイキン−１２によって誘導されるインターフェロン誘導性タンパク質１０（Angiolillo et al., 1995、Strieter et al., 1995）、及び／又はインターフェロン−ガンマ（Voest et al., 1995）、ｇｒｏ−ベータ（Cao et al., 1995）及び１６ｋＤａプロラクチンＮ末端フラグメント（Clapp et al., 1993）が挙げられる。

眼における新生血管形成は、重症眼病、例えば、加齢性黄斑変性（ＡＭＤ）及び糖尿病性網膜症の基本である。ＡＭＤは、米国、カナダ、イングランド、ウェールズ、スコットランド及びオーストラリアにおける６５歳及びそれより高齢の患者の法的、不可逆的盲の最も一般的な原因である。最初の眼の中心視力を失う患者の平均年齢は、約６５歳であるが、一部の患者は、４０代又は５０代でこの疾患の徴候が発現する。患者の約１０％から１５％は、この疾患の滲出（湿潤）型を発現する。滲出性ＡＭＤは、血管新生及び病的新生血管系の形成を特徴とする。この疾患は両側性であり、他眼における盲性障害の発現の機会が１年につき約１０％から１５％増してゆく。

糖尿病性網膜症は、Ｉ型糖尿病又はＩＩ型糖尿病のいずれかを有すると診断された患者の約４０から４５パーセントにおいて発生する、糖尿病の合併症である。糖尿病性網膜症は、通常、両眼に影響を及ぼし、４つの病期を通して進行する。第一期、軽度非増殖性網膜症は、眼内の微細動脈瘤を特徴とする。網膜の毛細血管及び小血管内に小さな腫脹領域が発生する。第二期、中等度非増殖性網膜症では、網膜に供給する血管が閉塞されてくる。重度非増殖性網膜症、第三期では、閉塞した血管が網膜への血液供給の減少をもたらし、網膜は、網膜に血液供給をもたらすために新たな血管を発生（血管新生）させるように眼にシグナルを送る。第四の最も進行した期、増殖性網膜症では、血管新生が発生するが、それらの新たな血管は異常であり、脆く、網膜及び硝子体ゲル（眼内を満たしている）の表面に沿って増殖する。これらの薄い血管が破裂し、又は血液を漏らすと、重度の視力喪失又は失明が生じる結果となり得る。

血管新生阻害剤
内皮細胞増殖を特異的に阻害する血管新生阻害剤の一例は、アンギオスタチンタンパク質である（O'Reilly et al., 1994）。アンギオスタチンタンパク質は、内皮細胞増殖の約３８ｋＤａ特異的阻害剤である。アンギオスタチンタンパク質は、プラスミノゲンの５つのクリングルのうちの少なくとも３つを含有する、プラスミノゲンの内部フラグメントである。アンギオスタチンタンパク質は、一定の腫瘍モデルにおいて腫瘍重量を減少させ、転移を阻害することが証明されている（O'Reilly et al., 1994）。もう１つの血管新生阻害剤は、エンドスタチンタンパク質であり、これは、コラーゲン又はＸＶＩＩＩのカルボキシフラグメントである（O'Reilly et al., 1997）。

血管新生関連障害を治療又は予防するために単独で使用することができる又は公知血管新生剤と併用することができる、さらなる抗血管新生剤の発見及び開発が必要とされている。

米国特許第５，６３９，７２５号 米国特許第５，６２９，３２７号 米国特許第５，７９２，８４５号 米国特許第５，７３３，８７６号 米国特許第５，８５４，２０５号

Flokman, 1971 Kandel et al.,1991 Chen et al., 1995 Good et al., 1990 O'Reilly et al., 1994 Gupta et al., 1995 Maione et al., 1990 Angiolillo et al., 1995 Strieter et al., 1995 Voest et al., 1995 Cao et al., 1995 Clapp et al., 1993 O'Reilly et al., 1997

発明の概要
本発明者らは、驚くべきことに、幹細胞及びそれらの子孫細胞を使用して血管新生関連障害を治療又は予防できることを発見した。

１つの態様において、本発明は、被験者における血管新生関連疾患を治療又は予防する方法を提供し、この方法は、幹細胞又はそれらの子孫細胞をその被験者に投与することを含む。

好ましい実施形態において、前記幹細胞は、骨髄から得られる。

好ましくは、前記幹細胞は、間葉前駆細胞（ＭＰＣ）である。好ましくは、前記間葉前駆細胞は、ＴＮＡＰ^＋、ＳＴＲＯ−１^＋、ＶＣＡＭ−１^＋、ＴＨＹ−１^＋、ＳＴＲＯ−２^＋、ＣＤ４５^＋、ＣＤ１４６^＋、３Ｇ５^＋又はそれらの任意の組み合わせである。もう１つの実施形態において、前記ＳＴＲＯ−１^＋細胞の少なくとも一部は、ＳＴＲＯ−１^ｂｒｉである。

さらなる実施形態において、前記間葉前駆細胞は、培養増幅されたものでなく、ＴＮＡＰ^＋である。

好ましい実施形態において、前記子孫細胞は、間葉前駆細胞をインビトロで培養することによって得られる。

さらなる実施形態において、前記細胞の少なくとも一部は、遺伝子修飾される。

さらなる実施形態において、前記血管新生関連疾患は、血管新生依存性癌又は良性腫瘍であり、前記細胞は、抗癌剤を送達するために使用される。

被験者における血管新生関連疾患を治療又は予防するための薬物を製造するための、幹細胞又はそれらの子孫細胞の使用も提供する。

以下、明らかであるが、本発明の一態様の好ましい特色及び特徴は、本発明の多くの他の態様にあてはまる。

本明細書全体を通して、「含む（comprise）」という語、又は語尾変化形、例えば、「含む（comprises）」及び「含む（comprising）」は、述べられている要素、整数もしくは段階、又は要素、整数もしくは段階の群の包含を意味するが、任意の他の要素、整数もしくは段階、又は要素、整数もしくは段階の群の除外を意味しないと解釈される。

レーザー光凝固眼のＣＦＰ及びＦＡ それぞれの時点からの眼の代表写真は、レーザー損傷（１ａ、矢印）、ならびに７日目（１ｂ）、１４日目（１ｃ）及び２８日目（１ｄ）の関連したフルオレセイン漏出（矢印によって示す）を示す。 それぞれの時点でのレーザー損傷の平均重症度スコア 濃度測定法を用いて、ＣＮＶの程度を計算し、統計解析した。平均重症度スコアは、レーザー処置後７日目と比較して（アスタリスク）１４日目でのほうが有意に高かった（ｐ＜０．０１）。しかし、１４日目と２８日目の間では、平均スコアは増加したが、その差は有意でなかった（ｐ＞０．０５）。この結果は、このモデルを使用する他のラット品種の特長であった。 それぞれの損傷スコアの値の度数 それぞれの損傷スコアの度数分布は、レーザー光凝固モデルを使用する他の齧歯動物品種における対照値によくあるものであることが判明した。これは、初期のゼロから軽度の漏出、及びレーザー処置後１４日目と２８日目の間でのピーク到達を特徴とした。０＝ゼロ／漏出なし、１＝軽度、２＝中等度、及び３＝強い漏出。 網膜組織のＨ＆Ｅ染色組織切片 正常網膜切片（ａ）は、無損傷のすべての層を示す（ＧＣ、神経節細胞；ＩＰＬ、内網状層；ＩＮＬ、内顆粒層；ＯＰＬ、外網状層；ＯＮＬ、外顆粒層、ＲＰＥ、網膜色素内皮；及びＣＢ、脈絡膜床（choroidal bed））。レーザー後７日目の眼の２０倍の倍率（ｂ）では、ブルッフ膜の破損を見ることができる（棒）。その後の４０倍倍率（ｃ）は、網膜層内の赤血球の存在（矢印）を示し、これは血管漏出を示す。しかし、２８日目には、２０倍の倍率（ｄ）ででも、４０倍の倍率（ｅ）ででも、血球の存在が格段に顕性であった。 レーザー損傷の蛍光顕微鏡検査 ＲＰＥは、黄色に見え、この層からの破壊片を損傷部位全体にわたって見ることができる。顕性なマクロファージはなく、これは、ＣＤ６８抗体を使用する免疫組織化学によって確認した。 処置した眼のＣＦＰ及びＦＡ 対照、非レーザー照射眼（ａ及びｂ）を比較に使用した。ＣＦＰ（ｃ、ｅ及びｇ）及びＦＡ（ｄ、ｆ及びｈ）を用いて、損傷の出現（矢印）について７日目（ｃ及びｄ）、１４日目（ｅ及びｆ）及び２８日目（ｇ及びｈ）に眼を評価した。 平均漏出スコア 第７日の時点で対照群と試験群の間のスコアの有意差を計算した。第７日と比較して、ＣＮＶ発現に起因するフルオレセイン漏出は、第１４又は２８日の時点で有意に増加されず、それらの比較時間点での対照スコアより有意に低かった。 それぞれの損傷スコアの度数値 それぞれの損傷スコアの度数分布は、レーザー光凝固モデルを使用する他の齧歯動物品種における対照値によくあるものであることが判明した。これは、初期のゼロから軽度の漏出、及びレーザー処置後１４日目と２８日目の間でのピーク到達を特徴とした。０＝ゼロ／漏出なし、１＝軽度、２＝中等度、及び３＝強い漏出。 眼の組織切片 眼内炎の徴候を示す眼には、多数のマクロファージが存在した（矢印、１０倍 ａ、２０倍 ｂ）。罹患していない眼の網膜は正常に見え、損傷部位での血管発生はなかった（ｃ）。 フルオレセイン漏出を伴うレーザー光凝固の百分率の比較 Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅを注射した眼及び細胞を注射した眼における注射後の異なる時点でのフルオレセイン漏出を伴うレーザー光凝固の百分率を示すグラフ。 眼のＨ＆Ｅ染色パラフィン包埋切片の光学顕微鏡検査 Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅ（Ａ）及びＨＭＰＣ（Ｂ）を注射した眼のＨ＆Ｅ染色パラフィン包埋切片の光学顕微鏡検査。矢印は、脈絡膜新生血管膜の厚さを示す。 脈絡膜新生血管膜厚の比較 細胞を注射した眼及びＰｒｏｆｒｅｅｚｅを注射した眼における１０の脈絡膜新生血管膜の平均厚を示すグラフ。

発明の詳細な説明
一般技術
特に別様に定義しない限り、本明細書において用いるすべての技術及び科学用語は、当分野における（例えば、幹細胞生物学、細胞培養、分子遺伝学、免疫学、免疫組織化学、タンパク質化学、及び生化学における）通常の技術者が一般に理解しているのと同じ意味を有すると解釈する。

別様に指示しない限り、本発明において利用する組換えタンパク質、細胞培養、及び免疫学的技術は、当業者に周知の標準的手順である。そのような技術は、出典、例えばJ. Perbal, A Practical Guide to Molecular Cloning, John Wiley and Sons(1984)、J. Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbour Laboratory Press(1989)、T. A. Brown(editor), Essential Molecular Biology: A Practical Approach, Volumes 1 and 2, IRL Press(1991)、D.M. Glover and B.D. Hames(editors), DNA Cloning: A Practical Approach, Volumes 1-4, IRL Press(1995 and 1996)、及びF.M. Ausubel et al.(editors), Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates and Wiley-Interscience（1988、現在までのすべての改訂を含む）、Ed Harlow and David Lane(editors)Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbour Laboratory,(1988)、及びJ.E. Coligan et al. (editors) Current Protocols in Immunology, John Wiley & Sons（現在までのすべての改訂を含む）、の中の文献のいたるところに記載及び説明されており、本明細書に参照として組み込まれる。

血管新生関連疾患、及びそれらの治療又は予防
本明細書において用いる場合、用語「血管新生」は、新たな血管の増殖及び／又は組織内への血管の成長を含む組織血管成長のプロセスと定義し、新生血管形成とも呼ばれる。このプロセスは、次の３つの方法：既存の血管から血管が出芽し得る方法、前駆細胞からの血管の新たな発生（血管形成）が生じ得る方法、及び／又は現存小血管の直径が大きくなり得る方法のうちの１つで進行し得る。

本明細書において用いる場合、「血管新生関連疾患」は、過剰な及び／又は異常な新生血管形成を特徴とする任意の状態である。

血管新生関連疾患は、本発明の方法を用いて治療又は予防することができる。血管新生関連疾患としては、血管新生依存性癌（例えば、充実性腫瘍、血液媒介腫瘍、例えば白血病、及び腫瘍転移を含む）；良性腫瘍、例えば、血管腫、聴神経腫、神経線維腫、トラコーマ及び化膿性肉芽腫；関節リウマチ；乾癬；眼部血管新生疾患、例えば、糖尿病性網膜症、未熟児網膜症、黄斑変性（乾燥型加齢性黄斑変性及び湿潤型加齢性黄斑変性を含む）、角膜移植後拒絶反応、血管新生緑内障、後水晶体線維増殖症及びルベオーシス；オスラー・ウェーバー症候群；心筋血管新生失明（myocardial angiogenesis blindness）；プラーク新生血管形成；毛細血管拡張症；血友病性関節；血管線維腫；及び創傷肉芽化が挙げられるが、これらに限定されない。本発明の方法は、病的異常の結果、例えば猫ひっかき病（Rochele minalia quintosa）及び潰瘍（ヘリコバクターピロリ（Helicobacter pylorii））として血管新生を有する疾患の治療及び予防においても有用である。

本明細書において用いる場合、「眼部血管新生疾患」は、過剰な及び／又は異常な新生血管形成を特徴とする眼の任意の状態である。

本発明の方法は、血管新生関連疾患を治療又は予防するための他の療法と併用することができる。これらの他の療法の性質は、個々の血管新生関連疾患に依存する。例えば、黄斑変性の治療又は予防のために、本発明の方法の使用を、抗酸化物質及び／又は亜鉛サプリメント、マキュジェン（Pegaptanib）の投与、米国特許第6,942,655号において定義されているような方法の使用、及び／又はレーザー処置と併用することができる。癌に関しては、本発明の方法での治療を、外科手術、放射線療法、及び／又は化学療法と併用することができる。

本明細書において用いる場合、用語「被験者」（本明細書では「患者」とも呼ばれる）は、温血動物、好ましくは哺乳動物（ヒトを含む）を含む。好ましい実施形態において、被験者は、霊長類である。さらにいっそう好ましい実施形態において、被験者は、ヒトである。

本明細書において用いる場合、用語「治療すること」、「治療する」、又は「治療」は、血管新生関連疾患の少なくとも１つの症状を低減又は消失させるために十分な、本明細書において定義するとおりの細胞の治療有効量を投与することを含む。

本明細書において用いる場合、用語「予防すること」、「予防する」又は「予防」は、血管新生関連疾患の少なくとも１つの症状の発現を停止させる又は妨げるために十分な、本明細書において定義するとおりの細胞の治療有効量を投与することを含む。

幹細胞及びそれらの子孫細胞
本明細書において用いる場合、用語「幹細胞」は、表現型的に及び遺伝子型的に同一の娘ならびに少なくとも１つの他の最終細胞タイプ（例えば、最終的に分化した細胞）を生じさせることができる自己再生細胞を指す。用語「幹細胞」は、全能性、多能性及び多分化能性細胞、ならびにそれらの分化から得られる始原細胞及び／又は前駆細胞を含む。

本明細書において用いる場合、用語「全能細胞」又は「全能性細胞」は、完全な胚を形成することができる細胞（例えば、胚盤胞）を指す。

本明細書において用いる場合、用語「多能細胞」又は「多能性細胞」は、完全分化多様性、すなわち、哺乳動物の身体の約２６０の細胞タイプのいずれにも成長する能力、を有する細胞を指す。多能細胞は、自己再生中である場合もあり、組織内で休眠又は静止したままである場合もある。

「多分化能性細胞」又は「多分化能細胞」は、幾つかの成熟細胞タイプのうちのいずれかを生じさせることができる細胞を意味する。本明細書において用いる場合、このフレーズは、成熟又は胚性幹細胞及び始原細胞、例えば、間葉前駆細胞（ＭＰＣ）及びこれらの細胞の多分化能性子孫を包含する。多能細胞とは異なり、多分化能細胞は、細胞タイプのすべてを形成する能力を有さない。

本明細書において用いる場合、用語「始原細胞」は、特定の細胞タイプに分化するように、又は特定の組織タイプを形成するようにコミットされている細胞を指す。

間葉前駆細胞（ＭＰＣ）は、骨髄、血液、歯髄細胞、脂肪細胞、皮膚、脾臓、膵臓、脳、腎臓、肝臓、心臓、網膜、脳、毛嚢、腸、肺、リンパ節、胸腺、骨、靭帯、腱、骨格筋、真皮、及び骨膜において見出される細胞であり、異なる生殖細胞系、例えば中胚葉、内胚葉及び外胚葉に分化することができる。従って、ＭＰＣは、脂肪組織、骨組織、軟骨組織、弾性組織、筋肉組織及び線維性結合組織を含む（しかし、これらに限定されない）、非常に多数の細胞タイプに分化することができる。これらの細胞が入る特定の系列コミットメント及び分化経路は、機械的影響及び／又は内因性生物活性因子、例えば増殖因子、サイトカイン及び／又は宿主組織によって確立される局所微小環境条件からの様々な影響に依存する。従って、間葉前駆体細胞は、非造血始原細胞あり、それらが分裂して、幹細胞又は前駆細胞のいずれかである娘細胞を生じさせ、それらが、やがて、不可逆的に分化して、１つの表現型の細胞を生じさせることとなる。

好ましい実施形態において、本発明の方法において使用される細胞は、被験者から得られたサンプルから富化される。用語「富化される」、「富化」又はそれらの語尾変化形は、１つの特定の細胞タイプの比率又は多数の特定の細胞タイプの比率が未処理の集団と比較して増加されている細胞の集団を記述するために、本明細書では用いる。

好ましい実施形態において、本発明において使用される細胞は、ＴＮＡＰ^＋、ＳＴＲＯ−１^＋、ＶＣＡＭ−１^＋、ＴＨＹ−１^＋、ＳＴＲＯ−２^＋、ＣＤ４５^＋、ＣＤ１４６^＋、３Ｇ５^＋又はそれらの任意の組み合わせである。好ましくは、前記ＳＴＲＯ−１^＋細胞は、ＳＴＲＯ−１^{明るい（bright）}である。加えて、好ましくは、前記ＳＴＲＯ−１^明るい細胞は、ＶＣＡＭ−１^＋、ＴＨＹ−１^＋、ＳＴＲＯ−２^＋、及び／又はＣＤ１４６^＋のうちの１つ又はそれ以上である。

１つの実施形態において、前記間葉前駆細胞は、WO 2004/85630において定義されているような血管周囲間葉前駆細胞である。

本発明者らが、細胞を所与のマーカーについて「陽性」であると呼ぶ場合、それは、そのマーカーがその細胞表面に存在する程度に依存して、そのマーカーの低（ｌｏもしくは暗い）発現因子（expresser）である場合もあり、又は高（明るいもしくはｂｒｉ）発現因子である場合もある（この場合、前記用語は、細胞の色選別プロセスにおいて使用される蛍光又は他の色彩の強度に関する）。ｌｏ（又は暗いもしくは鈍い）とｂｒｉの区別は、選別される特定の細胞集団に対して使用されるマーカーに関連して理解される。本発明者らが、本明細書において、細胞を所定のマーカーについて「陰性」であると呼ぶ場合、それは、そのマーカーがその細胞によって全く発現されないという意味ではない。それは、そのマーカーが、その細胞によって相対的に非常に低いレベルで発現されること、及びそれが、検出可能な程度に標識されたときに非常に低いシグナルを生じさせることを意味する。

用語「明るい」は、本明細書において用いる場合、検出可能な程度に標識されたときに相対的に高いシグナルを生じさせる、細胞表面のマーカーを指す。理論により限定されることを望まないが、「明るい」細胞は、そのサンプル中の他の細胞より多くのターゲットマーカータンパク質（例えば、ＳＴＲＯ−１によって認識される抗原）を発現すると提案される。例えば、ＳＴＲＯ−１^ｂｒｉ細胞は、ＦＩＴＣコンジュゲート型ＳＴＲＯ−１抗体で標識されたとき、ＦＡＣＳ分析によって判定して、明るくない細胞（ＳＴＲＯ−１^{鈍い（dull）／暗い（dim）}）より大きな蛍光シグナルを生じさせる。好ましくは、「明るい」細胞は、出発サンプルに含まれていた最も明るく標識された骨髄間葉細胞の少なくとも約０．１％を構成する。他の実施形態において、「明るい」細胞は、出発サンプルに含まれていた最も明るく標識された骨髄間葉細胞の少なくとも約０．１％、少なくとも約０．５％、少なくとも約１％、少なくとも約１．５％、又は少なくとも約２％を構成する。好ましい実施形態において、ＳＴＲＯ−１^明るい細胞は、ＳＴＲＯ−１表面発現より２ログ（ｌｏｇ）規模高い発現を有する。これは、「バックグラウンド」、すなわち、ＳＴＲＯ−１⁻である細胞、を基準にして計算される。比較すると、ＳＴＲＯ−１^暗い及び／又はＳＴＲＯ−１^{中間的（intermediate）}細胞は、ＳＴＲＯ−１表面発現の、「バックグラウンド」より２ｌｏｇ規模未満、典型的には、約１ｌｏｇ又はそれ以下の高い発現を有する。

本明細書において用いる場合、用語「ＴＮＡＰ」は、組織非特異的アルカリホスファターゼのすべてのアイソフォームを包含すると解釈する。例えば、この用語は、肝臓アイソフォーム（ＬＡＰ）、骨アイソフォーム（ＢＡＰ）及び腎臓アイソフォーム（ＫＡＰ）を包含する。好ましい実施形態において、ＴＮＡＰは、ＢＡＰである。特に好ましい実施形態において、本明細書において用いる場合、ＴＮＡＰは、ブタペスト条約の条項に従って寄託アクセッション番号ＰＴＡ−７２８２で２００５年１２月１９日にＡＴＣＣに寄託されたハイブリドーマ細胞株によって生産されたＳＴＲＯ−３抗体に結合することができる分子を指す。

さらに、好ましい実施形態において、前記細胞は、クローン形成性ＣＦＵ−Ｆを生じさせることができる。

前記多分化能性細胞の有意な割合が、少なくとも２つの異なる生殖細胞系に分化できることが好ましい。多分化能性細胞がコミットされ得る系列の非限定的な例としては、骨前駆細胞；胆管上皮細胞及び肝細胞への多分化能性を有する、肝細胞始原細胞；乏突起神経膠細胞及び神経膠星状細胞へと発達する神経膠細胞を生じさせることができる、神経系限定細胞；ニューロンへと発達する、ニューロン前駆細胞；心筋及び心筋細胞の前駆体、グルコース応答性インスリン分泌性ベータ細胞株が挙げられる。他の系列としては、象牙質芽細胞、象牙質生産細胞及び軟骨細胞、ならびに次の前駆細胞：網膜色素上皮細胞、線維芽細胞、皮膚細胞、例えばケラチノサイト、樹状細胞、毛嚢細胞、腎管上皮細胞、平滑及び骨格筋細胞、精巣始原細胞、血管内皮細胞、腱細胞、靭帯細胞、軟骨細胞、脂肪細胞、線維芽細胞、脊髄間質細胞、心筋細胞、平滑筋細胞、骨格筋細胞、周皮細胞、血管細胞、上皮細胞、神経膠細胞、神経細胞、神経膠星状細胞及び乏突起神経膠細胞が挙げられるが、これらに限定されない。

１つの実施形態において、前記幹細胞及びそれらの子孫は、周皮細胞に分化することができる。

もう１つの実施形態において、「多分化能性細胞」は、培養により、造血細胞を生じさせることができない。

本発明の方法に有用な幹細胞は、成体組織、胚、又は胎児から採取することができる。用語「成体」は、生後被験者を含むように、その最も広い意味で用いる。好ましい実施形態において、用語「成体」は、青春期後である被験者を指す。用語「成体」は、本明細書において用いる場合、女性から採取した臍帯血も包含し得る。

本発明は、本明細書に記載する幹細胞のインビトロ培養から生産される子孫細胞（これを増幅細胞と呼ぶこともある）の使用にも関する。本発明の増幅細胞は、培養条件（培養培地中の刺激因子の数及び／又はタイプを含む）及び継代数などに依存して多種多様な表現型を有し得る。一定の実施形態において、子孫細胞は、親集団から約２、約３、約４、約５、約６、約７、約８、約９又は約１０継代後に得られる。しかし、子孫細胞を、親集団からのいずれの回数の継代後に得てもよい。

子孫細胞は、任意の適する培地での培養によって得ることができる。用語「培地」は、細胞培養に関して用いる場合、細胞を包囲する環境の成分を含む。培地は、固体、液体、ガス状、又は相及び材料の混合物であり得る。培地は、液体増殖培地、ならびに細胞増殖を支援しない液体培地を含む。培地は、ゼラチン状培地、例えば、寒天、アガロース、ゼラチン及びコラーゲンマトリックスも含む。用語「培地」は、たとえそれらがまだ細胞と接触していなかったとしても、細胞培養での使用を目的とする材料も指す。言い換えれば、細菌培養のために調製された高栄養液は培地である。同様に、水又は他の液体と混合すると細胞培養に適するものとなる粉末混合物は、「粉末培地」と呼ぶことができる。

１つの実施形態において、本発明の方法に有用な子孫細胞は、ＳＴＲＯ−３抗体で標識した磁気ビーズを使用して骨髄からＴＮＡＰ＋ 細胞を単離し、前述したような２０％のウシ胎仔血清、２ｍＭのＬ−グルタミン及び１００μｍのＬ−アスコルベート−２−ホスフェートを補足したα−ＭＥＭ中でプレーティングすることによって得られる（培養条件に関するさらなる詳細についてはGronthos et al. (1995)を参照のこと）。

１つの実施形態において、そのような増幅細胞（少なくとも５継代後）は、ＴＮＡＰ−、ＣＣ９^＋、ＨＬＡクラスＩ^＋、ＨＬＡクラスＩＩ⁻、ＣＤ１４⁻、ＣＤ１９⁻、ＣＤ３⁻、ＣＤ１１ａ−ｃ⁻、ＣＤ３１⁻、ＣＤ８６⁻、及び／又はＣＤ８０⁻であり得る。しかし、本明細書に記載するものに対する様々な培養条件に従って、様々なマーカーの発現が変わり得る可能性もある。また、これらの表現型の細胞は、増幅細胞集団の中で優勢であり得るが、それは、この（これらの）表現型を有さない細胞の小集団がないという意味ではない（例えば、増幅細胞の小率がＣＣ９−である場合もある）。１つの好ましい実施形態において、本発明の増幅細胞は、異なる細胞タイプに分化する能力をまだ有している。

１つの実施形態において、本発明の方法において使用される増幅細胞集団は、細胞（前記細胞のうちの少なくとも２５％、さらに好ましくは、少なくとも５０％は、ＣＣ９＋である）を含む。

もう１つの実施形態において、本発明の方法において使用される増幅細胞集団は、細胞（前記細胞のうちの少なくとも４０％、さらに好ましくは、少なくとも４５％は、ＳＴＲＯ−１＋である）を含む。

さらなる実施形態において、前記子孫細胞は、ＬＦＡ−３、ＴＨＹ−１、ＶＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−１、ＰＥＣＡＭ−１、Ｐ−セレクチン、Ｌ−セレクチン、３Ｇ５、ＣＤ４９ａ／ＣＤ４９ｂ／ＣＤ２９、ＣＤ４９ｃ／ＣＤ２９、ＣＤ４９ｄ／ＣＤ２９、ＣＤ２９、ＣＤ１８、ＣＤ６１、インテグリンベータ、６−１９、トロンボモジュリン、ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＳＣＦ、ＰＤＧＦ−Ｒ、ＥＧＦ−Ｒ、ＩＧＦ１−Ｒ、ＮＧＦ−Ｒ、ＦＧＦ−Ｒ、レプチン−Ｒ、（ＳＴＲＯ−２＝レプチン−Ｒ）、ＲＡＮＫＬ、ＳＴＲＯ−１^明るい及びＣＤ１４６から成る群より選択されるマーカー又はこれらのマーカーの任意の組み合わせを発現することができる。

１つの実施形態において、前記子孫細胞は、WO 2006/032092において定義されているような多分化能性増幅ＭＰＣ子孫（ＭＥＭＰ）である。子孫を得ることができるＭＰＣの富化集団を調製するための方法は、WO 01/04268及びWO 2004/085630に記載されている。インビトロ状況では、ＭＰＣが絶対的に純粋な調製物として存在することはめったになく、一般に、特定の組織にコミットされた細胞（ＴＳＣＣ）である他の細胞と共に存在する。WO 01/04268は、約０．１％から約９０％の純度レベルでの骨髄からのそのような細胞の回収に言及している。子孫を得ることができるＭＰＣを含む集団は、組織源から直接回収される場合もあり、あるいはエクスビボで既に増幅された集団である場合もある。

例えば、前記子孫は、実質的に精製されているＭＰＣの回収、未増幅の集団（ＭＰＣが、それらが存在する集団の全細胞の少なくとも約０．１、１、５、１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０又は９５％を含む）から得ることができる。このレベルは、例えば、ＴＮＡＰ、ＳＴＲＯ−１^明るい、３Ｇ５^＋、ＶＣＡＭ−１、ＴＨＹ−１、ＣＤ１４６及びＳＴＲＯ−２から成る群より選択される少なくとも１つのマーカーについて陽性である細胞について選択することによって、達成することができる。

ＭＰＣ出発集団は、WO 01/04268又はWO 2004/085630に記載されている任意の１つ又はそれ以上の組織、すなわち、骨髄、歯髄細胞、脂肪組織及び皮膚から、又はおそらく、より広くは、脂肪組織、歯、歯髄、皮膚、肝臓、腎臓、心臓、網膜、脳、毛嚢、腸、肺、脾臓、リンパ節、胸腺、膵臓、骨、靭帯、骨髄、腱及び骨格筋から得ることができる。

ＭＥＭＰＳは、マーカーＳＴＲＯ−１^ｂｒｉについて陽性であり、マーカーアルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）について陰性である点で、新たに回収されたＭＰＣと区別することができる。対照的に、新たに単離されたＭＰＣは、ＳＴＲＯ−１^ｂｒｉとＡＬＰの両方について陽性である。本発明の好ましい実施形態において、投与細胞の少なくとも１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％又は９５％は、表現型ＳＴＲＯ−１^ｂｒｉ，ＡＬＰ⁻を有する。さらなる好ましい実施形態において、前記ＭＥＭＰＳは、マーカー Ｋｉ６７、ＣＤ４４及び／又はＣＤ４９ｃ／ＣＤ２９、ＶＬＡ−３、α３β１のうちの１つ又はそれ以上について陽性である。尚、さらに好ましい実施形態において、前記ＭＥＭＰは、ＴＥＲＴ活性を示さず、及び／又はマーカーＣＤ１８について陰性である。

１つの実施形態では、血管新生関連疾患を有する患者から細胞を採取し、標準的な技術を用いてインビトロで培養し、自己移植片又は同種移植片として患者に投与する施す。代替実施形態では、樹立ヒト細胞株の１つ又はそれ以上の細胞を使用する。本発明のもう１つの有用な実施形態では、非ヒト動物の（すなわち、患者がヒトでない場合、別の種からの）細胞を使用する。

本発明は、非ヒト霊長類細胞、有蹄動物、犬、猫、ウサギ、齧歯動物、鳥類及び魚類の細胞を含む（しかし、これらに限定されない）、任意の非ヒト動物種からの細胞を使用して実施することができる。本発明を実施することができる霊長類細胞としては、チンパンジー、ヒヒ、カニクイザル、及び任意の他の新又は旧世界ザルの細胞が挙げられるが、これらに限定されない。本発明を実施することができる有蹄動物細胞としては、牛、豚、羊、山羊、馬、水牛及び野牛の細胞が挙げられるが、これらに限定されない。本発明を実施することができる齧歯動物細胞としては、マウス、ラット、モルモット、ハムスター及びアレチネズミ細胞が挙げられるが、これらに限定されない。本発明を実施することができるウサギ種の例としては、飼い慣らされたウサギ、ジャックウサギ、野ウサギ、ワタオウサギ、カンジキウサギ及びナキウサギが挙げられる。にわとり（ニワトリ（Gallus gallus））は、本発明を実施することができる鳥類種の一例である。

本発明の方法に有用な細胞は、使用前に保管することができる。真核細胞及び特に哺乳動物細胞を保存及び保管するための方法及びプロトコルは、当分野において周知である（例えば、Pollard, J. W. and Walker, J. M. (1997) Basic Cell Culture Protocols, Second Edition, Humana Press, Totowa, N. J.; Freshney, R. I. (2000) Culture of Animal Cells, Fourth Edition, Wiley-Liss, Hoboken, N.J.を参照のこと）。単離された幹細胞、例えば、間葉幹／始原細胞、又はそれらの子孫、の生物活性を維持する任意の方法を、本発明に関連して利用することができる。１つの好ましい実施形態では、凍結保存を用いることにより、前記細胞を維持及び保管する。

細胞選別技術
本発明の方法に有用な細胞は、様々な技術を用いて得ることができる。例えば、細胞−抗体複合体に付随する特性又は抗体に取り付けたラベルを参照することにより物理的に細胞を分離する多数の細胞選別技術を用いることができる。この標識は、磁性粒子である場合もあり、又は蛍光分子である場合もある。前記抗体は、多数の細胞の凝集体を形成するように架橋させることができ、それらをその密度によって分離することができる。あるいは、抗体を固定マトリックスに取り付けることができ、それに所望の細胞が付着する。

好ましい実施形態では、ＴＮＡＰ^＋、ＳＴＲＯ−１^＋、ＶＣＡＭ−１^＋、ＴＨＹ−１^＋、ＳＴＲＯ−２^＋、３Ｇ５^＋、ＣＤ４５^＋、ＣＤ１４６^＋に結合する抗体（又は他の結合剤）を使用して、細胞を単離する。さらに好ましくは、ＴＮＡＰ^＋又はＳＴＲＯ−１^＋に結合する抗体（又は他の結合剤）を使用して、細胞を単離する。

抗体に結合した細胞と未結合の細胞とを分離する様々な方法が公知である。例えば、細胞に結合した抗体（又は抗アイソタイプ抗体）を標識し、その後、その標識の存在を検出する機械セルソーターによってそれらの細胞を分離することができる。蛍光励起セルソーターは、当分野において周知である。１つの実施形態では、抗ＴＮＡＰ抗体及び／又はＳＴＲＯ−１抗体を固体支持体に取り付ける。様々な固体支持体が当業者に公知であり、それらとしては、アガロースビーズ、ポリスチレンビーズ、中空糸膜、ポリマー、及びプラスチックペトリ皿が挙げられるが、これらに限定されない。抗体が結合している細胞は、細胞懸濁液から固体支持体を単に物理的に分離することにより、細胞懸濁液から除去することができる。

細胞分離に超常磁性微粒子を使用することができる。例えば、それらの微粒子を抗ＴＮＡＰ抗体及び／又はＳＴＲＯ−１抗体でコーティングすることができる。その後、それらの抗体標識、超常磁性微粒子を、対象となる細胞を含有する溶液と共にインキュベートすることができる。それらの微粒子は、所望の幹細胞の表面に結合し、その後、これらの細胞を磁場で回収することができる。

もう１つの例では、細胞サンプルを、例えば、固相連結抗ＴＮＡＰモノクローナル抗体及び／又は抗ＳＴＲＯ−１モノクローナル抗体と、物理的に接触させる。固相連結は、例えば、プラスチック、ニトロセルロース又は他の表面への抗体の吸着を含むことができる。中空糸膜の大きな細孔（細胞の流動を可能にするために十分な大きさのもの）の壁に前記抗体を吸着させることもできる。あるいは、ビーズ、例えばＰｈａｒｍａｃｉａ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ ６ ＭＢマクロビーズの表面に、前記抗体を共有結合で連結させることができる。固相連結抗体と幹細胞含有懸濁液のインキュベーションの正確な条件及び継続時間は、利用する系に固有の幾つかの要因に依存する。しかし、適切な条件の選択は、十分に当分野の技術の範囲内である。

その後、幹細胞を結合するために十分な時間を与えた後、未結合細胞を生理緩衝液で溶離するか、洗い流す。未結合細胞は、回収し、他の目的のために使用してもよいし、又は所望の分離が達成されたことを保障するために適切な試験を行った後、廃棄してもよい。その後、固相及び抗体の性質に主として依存して、任意の適切な方法により、結合細胞を固相から分離する。例えば、激しく攪拌することによって、プラスチックペトリ皿から結合細胞を溶離することができる。あるいは、酵素的「ニッキング」により、又は固相と抗体の間の酵素感受性「スペーサー」配列を消化することにより、結合細胞を溶離することができる。アガロースビーズに結合したスペーサーは、例えばＰｈａｒｍａｃｉａから、市販されている。

その後、それらの溶離され、富化された細胞画分を遠心分離によって緩衝液で洗浄することができ、前記富化画分は、従来の技術に従って後の使用のために生存可能な状態で凍結保蔵することができ、培養増幅することができ、及び／又は患者に導入することができる。

組成物及びそれらの投与
典型的に、前記細胞は、少なくとも１つの医薬的に許容される担体を含む医薬組成物で投与される。「医薬的に許容される」というフレーズは、堅実な医学的判断の範囲内で、人間及び動物の組織と接触させる使用に適し、過度の毒性、刺激、アレルギー反応又は他の問題もしくは合併症を伴わず、妥当な損益比に見合っている、化合物、材料、組成物及び／又は剤形を指す。本明細書において用いる場合、「医薬的に許容される担体」というフレーズは、医薬的に許容される材料、組成物又はビヒクル、例えば、液体もしくは固体充填剤、希釈剤、賦形剤又は溶媒封入材料を意味する。

医薬的に許容される担体としては、食塩水、水性緩衝溶液、溶媒及び／又は分散媒が挙げられる。そのような担体の使用は、当分野において周知である。前記溶液は、好ましくは、無菌であり、及び容易に注射できる程度に流動性である。好ましくは、前記溶液は、製造及び保管条件下で安定しており、ならびに例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン酸及びチメロサールなどの使用により、微生物、例えば細菌及び真菌の汚染作用から保護される。

医薬的に許容される担体としての役割を果たすことができる材料及び溶液の一部の例としては、（１）糖、例えば、ラクトース、グルコース及びスクロース；（２）デンプン、例えば、コーンスターチ及び馬鈴薯デンプン；（３）セルロース及びその誘導体、例えば、カルボキシメチルセルロースナトリウム、エチルセルロース及び酢酸セルロース；（４）粉末トラガカントゴム；（５）麦芽；（６）ゼラチン；（７）タルク；（８）賦形剤、例えば、カカオ脂及び座剤用ワックス；（９）油、例えば、ラッカセイ油、綿実油、ベニバナ油、ごま油、オリーブ油、トウモロコシ油及び大豆油；（１０）グリコール、例えば、プロピレングリコール；（１１）ポリオール、例えば、グリセリン、ソルビトール、マンニトール及びポリエチレングリコール；（１２）エステル、例えば、オレイン酸エチル及びラウリル酸エチル；（１３）寒天；（１４）緩衝剤、例えば、水酸化マグネシウム及び水酸化アルミニウム；（１５）アルギン酸；（１６）発熱物質不含水；（１７）等張食塩水；（１８）リンガー溶液；（１９）エチルアルコール；（２０）ｐＨ緩衝溶液；（２１）ポリエステル、ポリカーボネート及び／又はポリ無水物；ならびに（２２）医薬調合物に利用される他の非毒性適合性物質が挙げられる。

本発明の方法に有用な医薬組成物は、ポリマー担体又は細胞外マトリックスを含むことがある。

様々な生体又は合成固体マトリックス材料（すなわち、固体支持体マトリックス、生体用接着剤又は包帯剤、及び生物学的／医学的足場）が、本発明での使用に適する。前記マトリックス材料は、好ましくは、インビボ用途での使用に医学的に許容される。そのような医学的に許容される及び／又は生物学的にもしくは生理学的に許容されるもしくは適合性の材料の非限定的な例としては、吸収性及び／又は非吸収性である固体マトリックス材料、例えば、小腸粘膜下組織（ＳＩＳ）、例えばブタ由来のもの（及び他のＳＩＳ源）；架橋又は非架橋アルジネート、親水コロイド、フォーム、コラーゲンゲル、コラーゲンスポンジ、ポリグリコール酸（ＰＧＡ）メッシュ、ポリグラクチン（ＰＧＬ）メッシュ、フリース、フォーム包帯、生体用接着剤（例えば、フィブリンのり及びフィブリンゲル）及び一層又はそれ以上の層での非生存性脱表皮皮膚同等物（dead de-epidermized skin equivalent）が挙げられるが、これらに限定されない。

フィブリンのりは、様々な臨床環境で使用されている外科用シーラントの一種である。担当技術者は気づいているが、非常に多数のシーラントが、本発明の方法で使用するための組成物において有用である。しかし、本発明の好ましい実施形態は、本明細書に記載する細胞とフィブリンのりの使用に関する。

本明細書において用いる場合、用語「フィブリンのり」は、カルシウムイオンの存在下でのフィブリンポリマーの架橋によって形成される不溶性マトリックスを指す。フィブリンのりは、フィブリンマトリックスを形成する生体組織又は生体液から得られた、フィブリノゲン、又はその誘導体もしくは代謝産物、フィブリン（可溶性モノマーもしくはポリマー）及び／又はそれらの複合体から形成することができる。あるいは、フィブリンのりは、組換えＤＮＡ技術によって生産された、フィブリノゲン、又はその誘導体もしくは代謝産物、又はフィブリンから形成することができる。

フィブリンのりは、フィブリノゲンとフィブリンのり形成の触媒（例えば、トロンビン及び／又は第ＸＩＩＩ因子）との相互作用によって形成されることもある。当業者には理解されるように、フィブリノゲンは、触媒（例えば、トロンビン）の存在下でタンパク質分解によって切断され、フィブリンモノマーに転化される。その後、それらのフィブリンモノマーは、ポリマーを形成することができ、それらのポリマーが架橋して、フィブリンのりマトリックスを形成することができる。フィブリンポリマーの架橋は、触媒、例えば第ＸＩＩＩ因子の存在によって増進され得る。フィブリンのり形成の触媒は、フィブリノゲン又はトロンビンを含有する血漿、寒冷沈降物又は他の血漿画分から得ることができる。あるいは、前記触媒は、組換えＤＮＡ技術によって生産することができる。

血餅が形成する速度は、フィブリノゲンと混合されるトロンビンの濃度に依存する。酵素依存性反応であるので、温度が高いほど（３７℃まで）、血餅形成速度は速くなる。血餅の引張強度は、使用されるフィブリノゲンの濃度に依存する。

フィブリンのりの使用ならびにその調製及び使用方法は、米国特許第5,643,192号に記載されている。米国特許第5,643,192号には、単一ドナーからのフィブリノゲン及びトロンビン成分の抽出、ならびにフィブリンのりとして使用するためのこれらの成分のみの組み合わせが開示されている。米国特許第5,651,982号には、フィブリンのりについての別の調製及び使用方法が記載されている。米国特許第5,651,982号には、哺乳動物において局所シーラントとして使用するためのリポソームを伴うフィブリンのりが提供されている。

治療薬の送達のためのフィブリンのりの使用が、幾つかの公報に記載されている。米国特許第4,983,393号には、アガロース、寒天、食塩溶液グルコサミノグリカン、コラーゲン、フィブリン及び酵素を含む、膣内挿入物として使用するための組成物が開示されている。さらに、米国特許第3,089,815号には、フィブリノゲン及びトロンビンから成る注射用医薬製剤が開示されており、米国特許第6,468,527号には、体内の特定の部位への様々な生物及び非生物剤の送達を助長するフィブリンのりが開示されている。そのような手順を本発明の方法において用いることができる。

適するポリマー担体としては、合成又は天然ポリマーで形成された多孔質メッシュ又はスポンジ、ならびにポリマー溶液が挙げられる。マトリックスの１つの形態は、ポリマーメッシュ又はスポンジであり、他の形態は、ポリマーヒドロゲルである。使用することができる天然ポリマーとしては、タンパク質、例えば、コラーゲン、アルブミン及びフィブリン；ならびに多糖類、例えば、アルジネート及びヒアルロン酸ポリマーが挙げられる。合成ポリマーは、生体分解性ポリマーと非生体分解性ポリマーの両方を含む。生体分解性ポリマーの例としては、ヒドロキシ酸のポリマー、例えば、ポリ乳酸（ＰＬＡ）、ポリグリコール酸（ＰＧＡ）、及びポリ乳酸−グリコール酸（ＰＬＧＡ）、ポリオルトエステル、ポリ無水物、ポリホスファゼン、ならびにこれらの組み合わせが挙げられる。非生体分解性ポリマーとしては、ポリアクリレート、ポリメタクリレート、エチレンビニルアセテート、及びポリビニルアルコールが挙げられる。

展性であるイオン性又は共有結合性に架橋したヒドロゲルを形成することができるポリマーを使用して、細胞をカプセル封入する。ヒドロゲルは、有機ポリマー（天然又は合成）が共有結合、イオン結合又は水素結合によって架橋されて三次元開格子構造を作り、それが水分子を捕捉してゲルを形成するときに形成される物質である。ヒドロゲルを形成するために使用することができるマトリックスの例としては、多糖類、例えばアルジネート、ポリホスファジン、及びポリアクリレート（これらは、イオン架橋される）、又はブロックコポリマー、例えば、Ｐｌｕｒｏｎｉｃｓ（商標）又はＴｅｔｒｏｎｉｃｓ（商標）、ポリエチレンオキシド−ポリプロピレングリコール・ブロックコポリマー（これらは、それぞれ、温度又はｐＨによって架橋される）が挙げられる。他の材料としては、タンパク質、例えばフィブリン、ポリマー、例えばポリビニルピロリドン、ヒアルロン酸、及びコラーゲンが挙げられる。

一般に、これらのポリマーは、荷電側基又はそれらの一価イオン塩を有する水性溶液、例えば、水、緩衝塩類溶液又は水性アルコール溶液に、少なくとも部分的に可溶性である。カチオンと反応させることができる酸性側基を有するポリマーの例は、ポリ（ホスファゼン）、ポリ（アクリル酸）、ポリ（メタクリル酸）、アクリル酸とメタクリル酸のコポリマー、ポリ（ビニルアセテート）、及びスルホン化ポリマー、例えばスルホン化ポリスチレンである。アクリル酸又はメタクリル酸とビニルエーテルモノマー又はポリマーとの反応によって形成される、酸性側基を有するコポリマーも、使用することができる。酸性基の例は、カルボン酸基、スルホン酸基、ハロゲン化（好ましくは、フッ素化）アルコール基、フェノール性ＯＨ基、及び酸性ＯＨ基である。アニオンと反応させることができる塩基性側基を有するポリマーの例は、ポリ（ビニルアミン）、ポリ（ビニルピリジン）、ポリ（ビニルイミダゾール）、及び一部のイミノ置換ポリホスファゼンである。これらのポリマーのアンモニウム又は第四級塩を、それらの骨格窒素又はペンダントイミノ基から形成することもできる。塩基性側基の例は、アミノ及びイミノ基である。

さらに、本発明の方法に使用される組成物は、少なくとも１つの治療薬を含むことがある。例えば、本組成物は、炎症もしくは疼痛を治療する際に助けとなる鎮痛薬、別の抗血管新生性化合物、又は本組成物で治療する部位の感染を予防するための抗感染薬を含有することがある。さらに具体的には、有用な治療薬の非限定的な例としては、以下の治療カテゴリーが挙げられる：鎮痛薬、例えば、非ステロイド系抗炎症薬、アヘン剤アゴニスト及びサリチル酸塩；抗感染薬、例えば、抗蠕虫薬、抗嫌気性菌薬、抗生物質、アミノグリコシド抗生物質、抗真菌性抗生物質、セファロスポリン抗生物質、マクロライド抗生物質、その他のβ−ラクタム抗生物質、ペニシリン抗生物質、キノロン抗生物質、スルホンアミド抗生物質、テトラサイクリン抗生物質、抗マイコバクテリア薬、抗結核抗マイコバクテリア薬、抗原虫薬、抗マラリア性抗原虫薬、抗ウイルス薬、抗レトロウイルス薬、疥癬虫撲滅薬、抗炎症薬、コルチコステロイド抗炎症薬、痒み止め／局所麻酔薬、局所抗感染薬、抗真菌性局所抗感染薬、抗ウイルス性局所抗感染薬；電解質及び腎臓薬、例えば、酸形成薬、アルカリ化薬、利尿薬、炭酸脱水酵素阻害剤利尿薬、ループ利尿薬、浸透圧利尿薬、カリウム保持性利尿薬、チアジド系利尿薬、電解質置換、及び尿酸排泄薬；酵素、例えば、膵酵素及び血栓溶解酵素；胃腸薬、例えば、下痢止め、胃腸抗炎症薬、胃腸抗炎症薬、制酸性抗潰瘍薬、胃酸ポンプ阻害剤抗潰瘍薬、胃粘膜抗潰瘍薬、Ｈ２ブロッカー抗潰瘍薬、胆石溶解薬、消化薬、催吐薬、緩下剤及び便軟化剤、ならびに運動促進薬；全身麻酔薬、例えば、吸入麻酔薬、ハロゲン化吸入麻酔薬、静脈麻酔薬、バルビツール酸系静脈麻酔薬、ベンゾジアゼピン静脈麻酔薬、及びアヘン剤アゴニスト静脈麻酔薬；ホルモン及びホルモン調節剤、例えば、堕胎薬、副腎薬、コルチコステロイド副腎薬、アンドロゲン、抗アンドロゲン物質、免疫生物剤、例えば免疫グロブリン、免疫抑制薬、毒素、及びワクチン；局所麻酔薬、例えば、アミド局所麻酔薬及びエステル局所麻酔薬；筋骨格薬、例えば、抗痛風抗炎症薬、コルチコステロイド抗炎症薬、金化合物抗炎症薬、免疫抑制性抗炎症薬、非ステロイド系抗炎症薬（ＮＳＡＩＤ）、サリチル酸系抗炎症薬、鉱物；ならびにビタミン、例えば、ビタミンＡ、ビタミンＢ、ビタミンＣ、ビタミンＤ、ビタミンＥ、及びビタミンＫ。

単一組成物、又は併用療法のいずれかとして、本発明と共に用いることができる他の抗血管新生因子の例としては、血小板第４因子；硫酸プロタミン；硫酸化キチン誘導体（ズワイガニの甲羅から調製される）；硫酸化多糖類ペプチドグリカン複合体（ＳＰ−ＰＧ）（この化合物の機能は、ステロイド、例えばエストロゲン、及びクエン酸タモキシフェンの存在によって強化され得る）；スタウロスポリン；マトリックス代謝の調節剤（例えば、プロリン類似体、シスヒドロキシプロリン、ｄ，Ｌ−３，４−デヒドロプロリン、チアプロリン、アルファ，アルファ−ジピリジル、アミノプロピオニトリルフマレートを含む）；４−プロピル−５−（４−ピリジニル）−２（３Ｈ）−オキサゾロン；メトトレキサート；ミトキサントロン；ヘパリン；インターフェロン；２マクログロブリン−血清；ＣｈＩＭＰ−３；キモスタチン；シクロデキストリンテトラデカスルフェート；エポネマイシン；カンプトテシン；フマギリン；金チオリンゴ酸ナトリウム；抗コラゲナーゼ−血清；アルファ２−抗プラスミン；ビスアントレン（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ）；ロベンザリット二ナトリウム（Ｎ−（２）−カルボキシフェニル−４−クロロアントロニル酸二ナトリウム）；サリドマイド；Ａｎｇｏｓｔａｔｉｃステロイド；ＡＧＭ−１４７０；カルボキシナミノルミダゾール；及びメタロプロテイナーゼ阻害剤、例えばＢＢ９４が挙げられるが、これらに限定されない。

一定の実施形態において、前記治療薬は、細胞分化及び／又は増殖に影響を及ぼす、増殖因子又は他の分子であり得る。最終分化状態を誘導する増殖因子は、当分野において周知であり、それらは、最終分化状態を誘導することが証明されているような任意のそのような因子から選択することができる。本明細書に記載する方法において使用するための増殖因子は、一定の実施形態では、天然増殖因子の変異体又はフラグメントであり得る。

本発明の方法に有用な組成物は、細胞培養成分（例えば、アミノ酸、金属、補酵素因子を含む培養培地）ならびに他の細胞の小集団（例えば、後の幹細胞分化によって生じ得るものの一部）を含むことがある。

本発明の方法に有用な組成物は、例えば、培養培地から対象細胞を沈降させ、それらを望ましい溶液又は材料に再懸濁させることによって、調製することができる。前記細胞は、例えば、遠心分離、濾過、限外濾過などによって、培養培地から沈降及び／又は変えることができる。

当業者は、本発明の組成物中の及び本発明の方法において投与される細胞及び任意の担体（単数又は複数）の量を容易に決定することができる。１つの実施形態では、（活性細胞（単数又は複数）に加えて）任意の添加剤がリン酸緩衝食塩液中に０．００１から５０％（重量）の量で存在し、活性成分は、数マイクログラムから数ミリグラムのオーダーで、例えば、約０．０００１から約５重量％、好ましくは約０．０００１から約１重量％、さらにいっそう好ましくは約０．０００１から約０．０５重量％、又は約０．００１から約２０重量％、好ましくは約０．０１から約１０重量％、及びさらにいっそう好ましくは約０．０５から約５重量％で存在する。そのために、勿論、動物又はヒトに投与されるいずれの組成物についても、及びいずれの特定の投与方法についても、例えば適切な動物モデル、例えば齧歯動物、例えばマウスにおいて致死用量（ＬＤ）及びＬＤ_５０を決定することにより毒性を決定すること；ならびに組成物（単数又は複数）の投薬量、その中の成分の濃度、及び適する応答を惹起する組成物（単数又は複数）を投与するタイミングを決定することが好ましい。そうした決定は、当業者の知識、本開示及び本明細書に引用されている文献から、過度の実験を必要としない。また、過度の実験を伴わずに、逐次投与のための時間を突きとめることができる。

本組成物中の細胞の濃度は、少なくとも約５×１０^５細胞／ｍＬ、少なくとも約１×１０^６細胞／ｍＬ、少なくとも約５×１０^６細胞／ｍＬ、少なくとも約１０^７細胞／ｍＬ、少なくとも約２×１０^７細胞／ｍＬ、少なくとも約３×１０^７細胞／ｍＬ、又は少なくとも約５×１０^７細胞／ｍＬであり得る。

本発明の方法に有用な組成物は、とりわけ、局所注射（カテーテル投与を含む）、全身注射、局所注射、静脈内注射、子宮内注射又は非経口投与によって、投与することができる。本明細書に記載する治療用組成物（例えば、医薬組成物）を投与するとき、一般に、注射用単位剤形（溶液、懸濁液、エマルジョン）で調合される。

遺伝子修飾細胞の生産
１つの実施形態において、本発明の方法において使用される細胞は、遺伝子修飾される。好ましくは、異種タンパク質を生産するように、前記細胞を遺伝子的に修飾する。典型的に、異種タンパク質がそれらの細胞から分泌されるように、前記細胞を遺伝子修飾する。しかし、１つの実施形態では、ポリヌクレオチド、例えばｄｓＲＮＡ（典型的に、ＲＮＡサイレンシングのため）、アンチセンスオリゴヌクレオチド又は触媒核酸（例えば、リボザイムもしくはＤＮＡザイム）、をコードする機能的非タンパク質を発現するように、細胞を修飾することができる。

遺伝子修飾細胞は、修飾細胞の増殖を支援するために十分な量の少なくとも１つのサイトカインの存在下で培養することができる。このようにして得られた遺伝子修飾細胞を直ちに使用することができ（例えば、移植で）、インビトロで培養及び増幅することができ、又は後の使用のために保管することができる。これらの修飾細胞は、当分野において周知の方法によって保管することができ、例えば、液体窒素中で凍結させてもよい。

遺伝子修飾は、本明細書において用いる場合、本明細書に記載する細胞への外因性もしくは外来ポリヌクレオチドの導入又は細胞内の内因性遺伝子の修飾を含む、任意の遺伝子修飾法を包含する。遺伝子修飾としては、形質導入（インビトロ又はインビボ、いずれかでの、宿主又はドナーからレシピエントへの宿主ＤＮＡのウイルス媒介移入）、トランスフェクション（単離されたウイルスＤＮＡゲノムでの細胞の形質転換）、リポソーム媒介伝達、エレクトロポレーション、リン酸カルシウムトランスフェクション又は共沈及びその他が挙げられるが、これらに限定されない。形質導入法としては、細胞とプロデューサー細胞の直接共培養（Bregni et al., 1992）又は適切な増殖因子及びポリカチオンのみを伴う又は伴わないウイルス上清での培養が挙げられる。

本発明の有用な実施形態では、血管新生を中断させる又は阻害する遺伝子を含有するように、細胞を遺伝子修飾する。前記遺伝子は、細胞毒性因子、例えばリシンをコードし得る。もう１つの実施形態において、前記遺伝子は、免疫拒絶反応を惹起する細胞表面分子をコードする。例えば、α１，３ガラクトシルトランスフェラーゼを生産するように、細胞を遺伝子修飾することができる。この酵素は、主要異種抗原であるα１，３ガラクトシルエピトープを合成し、その発現は、既成循環抗体による、及び／又はＴ細胞媒介免疫拒絶による、トランスジェニック内皮細胞の超急性免疫拒絶を引き起こす。

好ましくは、外因性ポリヌクレオチドをベクター内において細胞に導入する。前記ベクターは、好ましくは、挿入されるコーディング配列の転写及び翻訳のための必要要素を含む。そのようなベクターを構築するために用いられる方法は、当分野において周知である。例えば、適する発現ベクターを構築するための技術は、Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press, N.Y. (3rd Ed., 2000)；及びAusubel et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Inc., New York (1999)に詳細に記載されている。

ベクターとしては、ウイルスベクター、例えば、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、及び単純疱疹ウイルス；コスミド；プラスミドベクター；合成ベクター；ならびに当分野において、典型的に用いられている他の組換えビヒクルを挙げることができるが、これらに限定されない。プロモーターと、ポリヌクレオチドを作動可能に連結することができるクローニング部位とを両方とも含有するベクターが、当分野において周知である。そのようなベクターは、インビトロ又はインビボでＲＮＡを転写することができ、供給業者、例えばＳｔｒａｔａｇｅｎｅ（カリフォルニア州、ラ・ホーヤ）及びＰｒｏｍｅｇａ Ｂｉｏｔｅｃｈ（ウィスコンシン州、マディソン）から市販されている。具体的な例としては、ＳｔｒａｔａｇｅｎｅからのｐＳＧ、ｐＳＶ２ＣＡＴ、ｐＸｔｌ；ならびにＰｈａｒｍａｃｉａからのｐＭＳＧ、ｐＳＶＬ、ｐＢＰＶ及びｐＳＶＫ３が挙げられる。

好ましいベクターとしては、レトロウイルスベクター（Coffin et al., “Retroviruses”, Chapter 9 pp; 437-473, Cold Springs Harbor Laboratory Press, 1997を参照のこと）が挙げられる。本発明において有用なベクターは、当分野において周知の手順によって組換え生産することができる。例えば、WO94/29438、WO97/21824及びWO97/21825には、レトロウイルスパッケージングプラスミド及びパッキング細胞株の構築が記載されている。例示的ベクターとしては、ｐＣＭＶ哺乳動物発現ベクター、例えば、ｐＣＭＶ６ｂ及びｐＣＭＶ６ｃ（Ｃｈｉｒｏｎ Ｃｏｒｐ．）、ｐＳＦＦＶ−Ｎｅｏ、ならびにｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ−Ｓｋ＋が挙げられる。有用なレトロウイルスベクターの非限定的な例は、マウス、鳥類又は霊長類レトロウイスルに由来するものである。一般的なレトロウイルスベクターとしては、モロニーマウス白血病ウイルスに基づくもの（ＭｏＭＬＶ−ベクター）が挙げられる。他のＭｏＭＬＶ由来ベクターとしては、Ｌｍｉｌｙ、ＬＩＮＧＦＥＲ、ＭＩＮＧＦＲ及びＭＩＮＴが挙げられる。追加のベクターとしては、テナガザル白血病ウイルス（ＧＡＬＶ）及びモロニーマウス肉腫ウイルス（ＭＯＭＳＶ）及び脾フォーカス形成ウイルス（ＳＦＦＶ）が挙げられる。マウス幹細胞ウイルス（ＭＥＳＶ）由来のベクターとしては、ＭＥＳＶ−ＭｉＬｙが挙げられる。レトロウイスルは、レンチウイルスに基づくベクターも含み、非限定的な例としては、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ−１及びＨＩＶ−２）に基づくベクターが挙げられる。

レトロウイルスベクター構築物を生産する場合、ウイルスｇａｇ、ｐｏｌ及びｅｎｖ配列をそのウイルスから除去して、外来ＤＮＡ配列を挿入するための場所を作る。外来ＤＮＡによってコードされた遺伝子は、通常、強いウイルスプロモーターの制御下、長い末端反復配列（ＬＴＲ）内で発現される。適切な制御調節配列の選択は、使用される宿主細胞に依存し、選択は、当業者の技術範囲内である。ＬＴＲのプロモーターに加えて、非常に多くのプロモーターが公知である。非限定的な例としては、ファージラムダＰＬプロモーター、ヒトサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）最初期プロモーター；モロニーマウス肉腫ウイルス（ＭＭＳＶ）、ラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）又は脾フォーカス形成ウイルス（ＳＦＦＶ）のＵ３領域プロモーター；グランザイムＡプロモーター；及びグランザイムＢプロモーターが挙げられる。加えて誘導可能な又は多制御要素を使用することができる。適するプロモーターの選択は、当業者には明らかである。

そのような構築物は、ｇａｇ、ｐｏｌ及びｅｎｖ機能が途中で（in trans）パッキング細胞株によって提供される場合、ウイルス粒子に効率的にパッケージされ得る。従って、そのベクター構築物をパッケージング細胞に導入すると、その細胞によって生産されたｇａｇ−ｐｏｌ及びｅｎｖタンパク質がベクターＲＮＡと共に組み立てられて感染性ウイルス粒子を生じ、それらが培養培地に分泌される。このようにして生産されたウイルスは、ターゲット細胞のＤＮＡを感染させ、それと一体化することはできるが、本質的なパッケージング配列を欠くので感染性ウイルス粒子を生産しない。現在使用されているパッキング細胞株の大部分は、それぞれが必要コーディング配列のうちの１つを含有する別個のプラスミドでトランスフェクトされているので、複製能力のあるウイルスを生産するには多数の組換え事象が必要である。あるいは、パッケージング細胞株は、プロウイスルを有する。プロウイスルは、機能が損なわれているので、感染性ウイルスを組み立てるために必要なすべてのタンパク質を生産できるが、それ自体のＲＮＡをウイルスにパッケージすることができない。その代わり、組換えウイルスから生産されたＲＮＡがパッケージされる。従って、それらのパッケージング細胞から放出されるウイルス株は、組換えウイルスしか含有しない。レトロウイルスパッケージング系統の非限定的な例としては、ＰＡ１２、ＰＡ３１７、ＰＥ５０１、ＰＧ１３、ＰＳＩ．ＣＲＩＰ、ＲＤＩ １４、ＧＰ７Ｃ−ｔＴＡ−Ｇ１０、ＰｒｏＰａｋ−Ａ（ＰＰＡ−６）、及びＰＴ６７が挙げられる。

他の適するベクターとしては、アデノウイルスベクター（WO 95/27071を参照のこと）及びアデノ関連ウイルスベクターが挙げられる。これらのベクターは、例えば、Stem Cell Biology and Gene Therapy, eds. Quesenberry et al., John Wiley & Sons, 1998；ならびに米国特許第5,693,531号及び同第5,691,176号に記載されているので、すべて当分野において周知である。アデノウイルス由来ベクターの使用は、非分裂細胞を感染させることができないので、一定の状況下では有利であり得る。レトロウイルスＤＮＡとは異なり、アデノウイルスＤＮＡは、ターゲット細胞のゲノムに組み込まれない。さらに、外来ＤＮＡを収容する容量は、レトロウイルスベクターよりアデノウイルスベクターにおけるほうがはるかに大きい。アデノ関連ウイルスベクターは、もう１つの有用な送達システムである。このウイルスのＤＮＡは、非分裂細胞に組み込むことができ、アデノ関連ウイルスベクターを使用して多数のポリヌクレオチドが異なる細胞タイプにうまく導入されている。

一部の実施形態において、前記構築物又はベクターは、２つ又はそれ以上の非相同ポリヌクレオチド配列を含む。好ましくは、前記追加の核酸配列は、選択マーカー、構造遺伝子、治療遺伝子、又はサイトカイン／ケモカイン遺伝子をコードするポリヌクレオチドである。

成功した遺伝子修飾をモニターする目的で、又はＤＮＡが組み込まれた細胞の選択のために、選択マーカーをその構築物又はベクターに含むことができる。非限定的な例としては、薬物耐性マーカー、例えば、Ｇ１４８又はハイグロマイシンが挙げられる。加えて、例えば、マーカーがＨＳＶ−ｔｋ遺伝子である場合、陰性選択を用いることができる。この遺伝子は、細胞を薬剤、例えばアシクロビル及びガンシクロビルに対して感受性にする。ＮｅｏＲ（ネオマイシン／Ｇ１４８耐性）遺伝子が通常使用されるが、その遺伝子配列がターゲット細胞中にすでに存在せず、使用することができる任意の適便なマーカー遺伝子を、使用することができる。さらなる非限定的な例としては、低親和性神経成長因子（ＮＧＦＲ）、強化緑色蛍光タンパク質（ＥＦＧＰ）、ジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子（ＤＨＦＲ）、細菌ｈｉｓＤ遺伝子、マウスＣＤ２４（ＨＳＡ）、マウスＣＤ８ａ（ｌｙｔ）、ピューロマイシン又はフレオマイシンに対する耐性を付与する細菌遺伝子、及びβ−ガラクトシダーゼが挙げられる。

前記追加のポリヌクレオチド配列（単数又は複数）は、同じベクター上の細胞に導入することができ、又は第二のベクター上の宿主細胞に導入することができる。好ましい実施形態では、そのポリヌクレオチドと同じベクターに選択マーカーを含む。

本発明は、内因性遺伝子の発現がアップグレードされ、その結果、野生型細胞と比較してコードされているタンパク質の生産が増加するような、内因性遺伝子のプロモーター領域の遺伝子修飾も包含する。

抗癌剤の送達
用語「抗癌剤」は、本明細書において用いる場合、癌細胞の機能を阻害もしくは防止する、及び／又は癌細胞の破壊を生じさせる、任意の物質を指す。例えば、抗癌剤は、細胞毒性剤であり得る。幹細胞又はそれらの子孫細胞に抗癌剤をコンジュゲートさせることができる。１つの実施形態において、前記幹細胞又はそれらの子孫細胞は、抗癌剤をコードするトランスジーンを含む。

用語「細胞毒性剤」は、本明細書において用いる場合、細胞の機能を阻害もしくは防止する、及び／又は細胞の破壊を生じさせる物質を指す。この用語は、化学療法薬、及び毒素、例えば、細菌、真菌、植物もしくは動物起源の酵素活性毒素又はそれらのフラグメントを含むと解釈する。細胞ターゲッティング部分、例えば抗体に細胞毒性剤をコンジュゲートさせることができる。好ましい実施形態において、細胞毒性剤は、遺伝子修飾された細胞のトランスジーンから生産される。

好ましい実施形態において、抗癌用量は、幹細胞又はそれらの子孫細胞を死滅させない。そのような薬剤の例としては、ＩＬ−２、インターフェロン−γ、抗ＶＥＧＦモノクローナル抗体、ならびに生物活性核酸、例えばリボザイム及びｄｓＲＮＡ（これらは、癌細胞によってコードされた重要な遺伝子をターゲットにする）が挙げられる。さらに、抗癌剤は、インビボでプロセッシング（例えば、切断）されて活性抗癌剤を放出する、前毒性形態のものであってもよい。

本明細書において用語「抗体」は最も広い意味で用いており、具体的には、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、多重特異性抗体（例えば、二重特異性抗体）、及び抗体フラグメント（但し、それらが所望の生物活性、例えば癌細胞に結合する生物活性、を示すことを条件とする）を包含する。抗体は、マウス抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、又は他の種に由来する抗体であり得る。

「抗体フラグメント」は、完全長抗体の一部、一般にはその抗原結合又は可変領域、を含む。抗体フラグメントの例としては、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２、及びＦｖフラグメント；ダイアボディー；線状抗体；Ｆａｂ発現ライブラリによって生産されたフラグメント、抗イディオタイプ（抗−Ｉｄ）抗体、ＣＤＲ（相補性決定領域）、及び癌細胞抗原に免疫特異的に結合する上述したもののうちのいずれかのエピトープ結合フラグメント、１本鎖抗体分子；ならびに抗体フラグメントから形成された多重特異性抗体が挙げられる。

細胞毒性剤として使用することができる酵素活性タンパク質毒素及びそれらのフラグメントとしては、ジフテリアＡ鎖、ジフテリア毒素の非結合活性フラグメント、コレラ毒素、ボツリヌス毒素、エキソトキシンＡ鎖（緑膿菌（Pseudomonas aeruginosa）からのもの）、リシンＡ鎖、アブリンＡ鎖、モデッシンＡ鎖、アルファ−サルシン、シナアブラギリ（Aleurites fordii）タンパク質、ジアンチンタンパク質、アメリカヤマゴボウ（Phytolaca americana）タンパク質（ＰＡＰＩ、ＰＡＰＩＩ、及びＰＡＰ−Ｓ）、ツルレイシ（momordica charantia）阻害剤、クルシン、クロチン、サパオナリア・オフィシナリス（sapaonaria officinalis）阻害剤、ゲロニン、サポリン、マイトジェリン（mitogellin）、レストリクトシン（restrictocin）、フェノマイシン、エノマイシン及びトリコテセンが挙げられる。

抗体−細胞毒コンジュゲートによってターゲッティングすることができる腫瘍関連抗原又は細胞表面受容体の例としては、ＢＭＰＲ１Ｂ（骨形成因子（bone morphogenetic protein）受容体−１Ｂ型）、Ｅ１６、ＳＴＥＡＰ１（前立腺の６回膜貫通型上皮抗原）、０７７２Ｐ（ＣＡ１２５、ＭＵＣ１６）、ＭＰＦ（ＭＳＬＮ、ＳＭＲ、巨核球増強因子、メソセリン）、Ｎａｐｉ３ｂ（ＮＡＰＩ−３Ｂ、ＮＰＴＩＩｂ、ＳＬＣ３４Ａ２、溶質担体ファミリー３４（リン酸ナトリウム）、メンバー２、ＩＩ型ナトリウム依存性リン酸輸送体３ｂ）、Ｓｅｍａ ５ｂ（ＦＬＪ１０３７２、ＫＩＡＡ１４４５、Ｍｍ．４２０１５、ＳＥＭＡ５Ｂ、ＳＥＭＡＧ、セマホリン５ｂ Ｈｌｏｇ、ｓｅｍａドメイン、７トロンボスポンジン反復配列（Ｉ型及び１型様）、膜貫通ドメイン（ＴＭ）及び短い細胞質ドメイン、（セマホリン）５Ｂ、ＰＳＣＡ ｈｌｇ（２７０００５０Ｃ１２Ｒｉｋ、Ｃ５３０００８０１６Ｒｉｋ、ＲＩＫＥＮ ｃＤＮＡ ２７０００５０Ｃ１２、ＲＩＫＥＮ ｃＤＮＡ ２７０００５０Ｃ１２遺伝子）、ＥＴＢＲ（内皮Ｂ型受容体）、ＭＳＧ７８３（ＲＮＦ １２４、仮説タンパク質ＦＬＪ２０３１５）、ＳＴＥＡＰ２（ＩＰＣＡ−１、ＰＣＡＮＡＰ１、ＳＴＡＭＰ１、ＳＴＥＡＰ２、ＳＴＭＰ、前立腺癌関連遺伝子１、前立腺癌関連タンパク質１、前立腺６回膜貫通型上皮抗原２、６回膜貫通型前立腺タンパク質）、ＴｒｐＭ４（ＢＲ２２４５０、ＦＬＪ２００４１、ＴＲＰＭ４、ＴＲＰＭ４Ｂ、一過性受容体電位カチオンチャネル、サブファミリーＭ、メンバー４）、ＣＲＩＰＴＯ（ＣＲ、ＣＲ１、ＣＲＧＦ、ＣＲＩＰＴＯ、ＴＤＧＦ１、奇形癌由来増殖因子）、ＣＤ２１（ＣＲ２（補体受容体２）もしくはＣ３ＤＲ（Ｃ３ｄ／エプスタイン・バーウイルス受容体）又はＨｓ．７３７９２）、ＣＤ７９ｂ（ＣＤ７９Ｂ、ＣＤ７９ｐ、ＩＧｂ（免疫グロブリン関連ベータ）、Ｂ２９、ＦｃＲＨ２（ＩＦＧＰ４、ＩＲＴＡ４、ＳＰＡＰ１Ａ（ＳＨ２ドメイン含有ホスファターゼアンカータンパク質１ａ）、ＳＰＡＰ１Ｂ、ＳＰＡＰ１Ｃ）、ＨＥＲ２、ＮＣＡ、ＭＤＰ、ＩＬ２０Ｒα、ＥｐｈＢ２Ｒ、ＡＳＬＧ６５９、ＰＳＣＡ、ＧＥＤＡ、ＢＡＦＦ−Ｒ（Ｂ細胞活性化因子受容体、ＢＬｙＳ受容体３）、ＣＤ２２（Ｂ細胞受容体ＣＤ２２−βアイソフォーム）、ＣＤ７９α、ＣＸＣＲ５（バーキットリンパ腫受容体１）、ＨＬＡ−ＤＯＢ（ペプチドに結合し、それらをＣＤ４＋ Ｔリンパ球に提示する、ＭＨＣクラスＩＩ分子（Ｉａ抗原）のベータサブユニット）、Ｐ２Ｘ５（プリン受容体Ｐ２Ｘリガンド依存性イオンチャネル５）、ＣＤ７２（Ｂ細胞分化抗原ＣＤ７２、Ｌｙｂ−２）、ＬＹ６４（リンパ球抗原６４（ＲＰ１０５））、ＦＣＲＨ１（Ｆｃ受容体様タンパク質１）、ＩＲＴＡ２（免疫グロブリンスーパーファミリー受容体転座関連２）、及びＴＥＮＢ２が挙げられるが、これらに限定されない。

〔実施例〕
以下、次の非限定的実施例によって、及び添付の図面を参照して、本発明を説明する。

脈絡膜新生血管形成（ＣＮＶ）の誘導
〔材料及び方法〕
動物の準備及び麻酔
本研究中、合計１５匹のヌードラットを使用し、視覚及び眼科研究における動物の使用についての眼科と視覚に関する研究会議（ＡＲＶＯ）宣言（the Associate for Research in Vision and Ophthalmology (ARVO) Statement for the Use of Animals in Ophthalmic and Vision Research）に従って実験を行った。すべてのラットを孤立した無菌施設内のケージの中に（１ケージにつき２匹の動物）、２２℃の一定温度で、１２：１２時間の明／暗サイクル（０８００時に点灯）で収容し、食餌及び水は、自由に入手できた。キシラジン（６ｍｇ／ｋｇ、ドイツのBayer AG）及びケタミン（５０ｍｇ／ｋｇ、米国のLambert Company）注射剤の筋肉内注射によって、ラットを麻酔した。レーザー光凝固、硝子体内注射及び写真撮影の少なくとも１０分前に、２．５％のフェニレフリン（エセックス州、ロムフォードのChauvin Pharmaceuticals Ltd.）及び１％のＭｙｄｒｉａｃｙｌ（ベルギーのAlcon）で瞳孔を広げた。これらの実験の過程全体を通して、無菌技術を用いた。

クリプトンレーザー照射
コンタクトレンズとしての役割を果たす手持ちカバーガラスを具備するＺｅｉｓｓ細隙灯によって、クリプトンレーザー照射（６４７．１ｎｍ、米国、カリフォルニア州のcoherent Radiation System）をそれぞれの動物の左眼にもたらした。１００μｍの直径、０．１秒の継続時間及び１５０ｍＷの強度という設定で、合計６から１１のレーザー火傷をそれぞれの眼の視神経の周りの後極に適用した。

カラー眼底撮影（ＣＦＰ）
動物の準備及び麻酔において述べたとおり、写真撮影前に動物に麻酔した。写真撮影の少なくとも１０分前に、２．５％のフェニルエフリン（エセックス州、ロムフォードのChauvin Pharmaceuticals Ltd.）及び１％のＭｙｄｒｉａｃｙｌ（ベルギーのAlcon)で瞳孔を拡張した。小動物用眼底カメラ(日本のKowa Genesis Tokyo）を使用し、Ｋｏｄａｋ Ｅｌｉｔｅ ２００ ＡＳＡスライドフィルムを使用して、ラット眼底撮影を行った。

フルオレセイン血管撮影（ＦＡ）
０．１ｍＬの１０％のフルオレセインナトリウムの腹腔内注射により、すべてのラットに関してフルオレセイン血管撮影を行った。ＣＦＰと同じカメラ（日本のKowa Genesis Tokyo）を使用したが、フルオレセイン血管撮影用のバリアフィルターを付け加えて、網膜血管系を写真撮影した。フルオレセインナトリウムの投与後、直ちに、Ｋｏｄａｋ Ｔｍａｘ ４００ ＡＳＡ単色プロフェッショナルフィルムを使用して単写写真を０．５から１分間隔で撮影した。

脈絡膜新生血管形成（ＣＮＶ）の形成及び程度
このモデルを使用して眼におけるＣＮＶの形成及び程度を、ＣＦＰ及びＦＡを用いてモニターした。麻酔した動物に０．３から０．４ｍＬの１０％のフルオレセインナトリウムを腹腔内注射し、蛍光眼底撮影を用いて眼を写真撮影した。濃度測定法（Marano and Rakoczy,2005）を用いて、フルオレセイン漏出の程度を計算した。簡単に言うと、Ｑｕａｎｔｉｔｙ Ｏｎｅ（登録商標）基本濃度測定ソフトウェア（米国、カリフォルニア州のＢｉｏＲａｄ）にインポートするためにＬＳ−４０００ ＥＤフィルムスキャナー（日本、東京のNicon Corp.）を使用して、フルオレセイン血管造影像をコンピュータにスキャンした。それぞれの傷害についての相対蛍光（ｒｆ）を計算し、その後、これらの値を重症度テンプレートとの比較により重症度スコアに変換した（このテンプレートは、０から２０のｒｆ、漏出なし；２１から７０のｒｆ、軽度の漏出；７１から１２０のｒｆ、中等度の漏出；及び１２１より大きいｒｆ、重度の漏出でのｒｆ区間を生成するために用いた）。それぞれの時点からの平均重症度スコアをＡＮＯＶＡとｐｏｓｔ ｈｏｃフィッシャーＬＳＤ分析によって比較した。差は、ｐ＜０．０５で有意と見なした。加えて、それぞれの損傷スコアの度数をカウントし、作表し、グラフで表した。

組織学的研究
注射の７日後に過剰用量のペントバルビタールナトリウム（Ｎｅｍｂｕｔａｌ）で５匹のラットを安楽死させ、残りの１０匹は、第２８日に実験が完了した時点で安楽死させた。第７日の時点で犠牲にした動物のうちの２匹からのレーザーを照射した眼を、蛍光顕微鏡検査のために、及びマクロファージ検出用にＣＤ６８抗体を使用する免疫組織化学のために、ＯＣＴ培地に包埋し、液体Ｎ_２で凍結した。切片をＵＶ線のもとで検査し、２０Ｘ倍率と２秒の露光時間でＯｌｙｍｐｕｓ顕微鏡（日本、東京、オリンパス）及びＯｌｙｍｐｕｓ ＤＰ７０ビデオカメラを使用して画像を捕捉した。第７日及び第２８日の時点で安楽死させた残りの動物から眼を摘出し、１０％の中性緩衝食塩水又は４％のパラホルムアルデヒド中で４時間、固定した。等級付アルコールによる常例的処理の後、それらの眼をパラフィンに包埋し、５μｍの薄片に切断し、シラン処理したスライドにマウントし、病理組織検査のためにヘマトキシリン及びエオシン（Ｈ＆Ｅ）で染色した。

〔結果〕
カラー眼底撮影を用いて、レーザー損傷の存在を確認した（図１ａ）。その後、フルオレセイン血管撮影を行って、それぞれの損傷からのフルオレセイン漏出レベル（これは、ＣＮＶ発現レベルの指標となる）を記録した。レーザー光凝固後、第７日の時点での最初の臨床観察は、損傷の大部分についてゼロから軽度の漏出レベルを示した（図１ｂ）。この時点の後、第１４日の時点で、漏出レベルの劇的な増加が観察され（図１ｃ）、第２８日までにこの漏出レベルはもう１度増加するように思われたが、第７日から第１４日の増加と比較するとほんのわずかであった（図１ｄ）。

その後、レーザー光凝固後７、１４及び２８日目にそれぞれの損傷についての重症度スコアを計算して、それぞれの時点での平均重症度スコアを得た（図２）。７日目での平均漏出スコアは、十分にゼロから軽度スケールの範囲内であった（０．８６±０．０７）。これは、この時点で漏出が最少であったことを示している。この発見は、ＣＮＶに起因するフルオレセイン漏出が、他の齧歯動物種において、レーザー光凝固後の最初の３から４日には発生しないことを示している。第１４日の時点での平均漏出スコアは、ＣＮＶ発現が進行したので、第７日のレベルから有意に増加した（１．８±０．１ ｐ＜０．０１）。レーザー光凝固後、第２８日の時点での損傷の平均重症度スコアは、再び増加したが、第１４日のスコアと比較すると有意ではなかった（１．９６±０．１；ｐ＞０．０１）。これは、ＣＮＶに起因する漏出はこの時点のあたりがピークであることを示している。

それぞれの時点でのそれぞれの損傷スコアの度数を調査する第二の分析を行った（表１及び図３）。第７日の時点で、８７％を超える損傷がゼロから軽度の漏出（２９．３％のゼロ及び５８．６％の軽度）を示し、残りは、中等度から重度の漏出を示した。第１４日までに、それぞれの損傷スコアの度数が劇的にシフトし、ゼロから軽度のスコアは、全損傷の３２．４％減少した（それぞれ、７％及び２４．５％）。損傷の大部分（４７．９％）は、中等度範囲内であり、損傷の数は、強い漏出が第７日の時点での１％から１９．７％に増加して、損傷の合計６７．６％が中等度から重度のスコアになったことを示している。第２８日までに、より高いスコアに進行する損傷の数は遅速した。ゼロランクの損傷の数は、２．８％に落ちた。これは、このモデルに特有のものであると予想される。レーザー損傷の小率はブルッフ膜を破損することができず、そのため、決してＣＮＶを発現しないからである。スコアの大多数（７０％）は、中等度から強いランク（それぞれ、４２．２％及び２８．２％）のままであり、これもこのモデルに特有のものである。

眼の組織切片は、正常なレーザー未照射網膜の外観（図４ａ）に加えて、このモデルの有効性には不可欠である、損傷及びブルッフ膜破断を示す（図４ｂ、棒で示される）レーザー光凝固後の網膜の外観を示す。切片の検査中、早期ＣＮＶ発現の指標である、赤血球の存在が、損傷部位内で同定された（図４ｃ、矢じり）。第２８日までに、赤血球の存在は、顕著な割合で増加したように見えた（図４ｄ及びｅ、矢じり）。これらの観察は、計算した重症度スコア、及びそれぞれの漏出スコアの度数分布と相関関係がある。

ＵＶ線顕微鏡のもとで可視化するためにＦＩＴＣ標識二次抗体を使用して凍結切片でＣＤ６８抗原（マクロファージ）の検出を行った。非検出切片の可視化（図５）は、網膜組織によって示される自己蛍光レベルを示し、損傷部位全体にわたってＲＰＥ層のレムナント（黄色として示す）を見ることができる（矢印）。色素脱失及び免疫検出後、マクロファージの目に見える形跡を検出することはできなかった（データは示さない）。

〔考察〕
本明細書において説明するクリプトンレーザー光凝固による脈絡膜新生血管形成の導入は、眼部新生血管形成を治療する薬剤の能力を試験するために適するモデルであるという判定を下した。

ＣＮＶの発現に対するヒト細胞の影響
〔材料及び方法〕
実施例１の場合と同様に、動物を準備し、麻酔し、クリプトンレーザー照射を行った。ＣＮＶの評価も実施例１のように行った。

〔細胞の調製〕
Ｒｏｙａｌ Ａｄｅｌａｉｄｅ Ｈｏｓｐｉｔａｌの施設内倫理委員会によって承認された手順に従って、健常で正常な成人ボランティア（２０から３５歳）から骨髄（ＢＭ）を回収した。簡単に言うと、４０ｍＬのＢＭを後腸骨稜から吸引してリチウム−ヘパリン抗凝固薬含有チューブにとった。前述されている（Zannettino et al., 1998）とおり、Ｌｙｍｐｈｏｐｒｅｐ（商標）（ノルウェイ、オスロのNycomed Pharma）を使用して密度勾配分離によってＢＭＭＮＣを調製した。４℃で３０分間、４００×ｇでの遠心分離後、白血球層（buffy layer）をホールピペットで除去し、５％のウシ胎仔血清（ＦＣＳ、オーストラリア、ビクトリアのCSL Limited）を含有するハンクス緩衝塩類溶液（ＨＢＳＳ；メリーランド州、ゲーサーズバーグのLife Technologies）から成る「ＨＨＦ」中で３回洗浄した。

その後、前述されている（Gronthos et al., 2003;Gronthos et al., 1995）ように、磁気活性化細胞選別によって、ＴＮＡＰ＋ 細胞を単離した。簡単に言うと、氷上で２０分間、ＨＨＦ中１０％（ｖ／ｖ）の正常ウサギ血清から成るブロッキングバッファー中で、約１から３×１０^８のＢＭＭＮＣをインキュベートする。それらの細胞を、氷上で１時間、ブロッキングバッファー中のＳＴＲＯ−３ ｍＡｂの１０μｇ／ｍＬ溶液（２００μＬ）と共にインキュメベートする。その後、それらの細胞を、４００×ｇでの遠心分離により、ＨＨＦ中で２回洗浄する。ＨＨＦバッファー中のヤギ抗マウスγ−ビオチン（英国、バーミンガムのSouthern Bioechnology Associates）の１／５０希釈液を添加し、それらの細胞を氷上で１時間、インキュベートする。ＭＡＣＳバッファ（１％のＢＳＡ、５ｍＭのＥＤＴＡ及び０．０１％のアジ化ナトリウムを補足した、Ｃａ^２＋不含及びＭｎ^２＋不含のＰＢＳ）中で上記のように細胞を２回洗浄し、０．９ｍＬの最終量のＭＡＣＳバッファに再懸濁させる。

１００μＬのストレプタビジンマイクロビーズ（Miltenyi Biotec；ドイツのベルギッシュ・グラトバッハ）をその細胞懸濁液に添加し、氷上で１５分間、インキュベートする。その細胞懸濁液を２回洗浄し、０．５ｍＬのＭＡＣＳバッファに再懸濁させ、その後、ミニＭＡＣＳカラム（ＭＳカラム、Miltenyi Biotec）に負荷し、０．５ｍＬのＭＡＣＳバッファで３回洗浄して、ＳＴＲＯ−３ ｍＡｂ（２００５年１２月１９日に、米国微生物系統保存機関（the American Type Culture Collection：ＡＴＣＣ）にアクセッション番号ＰＴＡ−７２８２で寄託されたもの−同時係属国際出願WO 2006/108229も参照のこと）に結合しなかった細胞を回収する。さらなる１ｍＬのＭＡＣＳバッファを添加した後、そのカラムを磁石から外し、ＴＮＡＰ陽性細胞を正圧によって単離する。それぞれの画分からの細胞のアリコートをストレプタビジン−ＦＩＴＣで染色し、フローサイトメトリーによって純度を評定する。

前述されている（Gronthos et al., 1995）ように２０％のウシ胎仔血清、２ｍＭのＬ−グルタミン及び１００μｍのＬ−アスコルベート−２−ホスフェートを補足したα−ＭＥＭ中でプレーティングすることにより、ＭＡＣＳ単離ＴＮＡＰ＋ 細胞から初代培養物を樹立する。

本明細書に記載するとおり調製した細胞は、ヒト間葉前駆細胞（ＨＭＰＣ）とも呼ばれる。

硝子体内注射
眼の縁の１ｍｍ後方の部位の硝子体に３０ゲージ針を挿入することによって、硝子体内注射を行った。挿入及び注入を行い、手術用顕微鏡によって直接検分した。水晶体又は網膜を傷つけないように注意した。レーザー光凝固の翌日に２μＬの細胞（５．６２５×１０^４細胞／μＬ）をラットの左眼に注射し、それらが硝子体腔の上及び周辺に配置されるようにした。

組織学的研究
第２８日に実験が完了した時点で過剰用量のペンタバルビタール（Ｎｅｍｂｕｔａｌ）を用いてラットを安楽死させた。これらの動物からすべての眼を摘出し、４時間、１０％の中性緩衝食塩液又は４％のパラホルムアルデヒド中で固定した。等級付アルコールによる常例的処理の後、それらの眼をパラフィンに包埋し、５μｍの薄片に切断し、シラン処理したスライドにマウントし、病理組織検査のためにヘマトキシリン及びエオシン（Ｈ＆Ｅ）で染色した。

〔結果〕
ＣＦＰを用いて、動物の処置した眼におけるレーザー損傷の存在を確認し、ＣＦＰの直後にＦＡを行って、それぞれの損傷からのフルオレセイン漏出レベルを記録した（図６）。細胞を注射したが、レーザー光凝固は行わなかった対照眼における眼底（図６ａ）及び血管系（図６ｂ）は、正常であるように見える。処置した眼では、注射の７日後、レーザー損傷がはっきりと見え（図６ｃ、矢印）、ＦＡは、それらの損傷の大部分についてゼロから軽度の漏出レベルの優勢を示した（図６ｄ、矢印）。この時点の後、第１４日の時点で、ＣＦＰを用いて損傷がまだはっきりと見えた（図６ｅ、矢印）。しかし、ＦＡを用いる最初の観察（図６ｆ）は、漏出が、実施例１の第１４日対照眼で観察されたように顕著に増加しなかったことを示差していた。これは、損傷はまだはっきりと見えた（図６ｇ、矢印）が、漏出は、顕著な量、増加したようでなかった（図６ｈ）、注射後第２８日の時点での場合であることも判明した。

その後、細胞注射後７、１４及び２８日目でのそれぞれの損傷について重症度スコアを計算して、それぞれの時点についての平均重症度スコアを得た（図７）。７日目での平均漏出スコアは、十分にゼロから軽度スケールの範囲内であった（０．８８±０．１４）。これは、この時点で漏出が最少であることを示している。この結果は、実施例１からの同じ時点で測定した対照動物（０．８６±０．０７）と有意な差がなかった（ｐ＞０．０５）。第１４日の時点での平均漏出スコアは、７日目のレベルから有意に増加せず（０．９３±０．１６、ｐ＞０．０５）、１４日目の対照群の損傷スコア（１．８±０．１、ｐ＜０．０１）より有意に低かった。同様に、注射後、第２８日の時点での損傷の平均重症度スコアは、増加したが、７日目のスコアと比較して有意ではなく（１．１８±０．１７；ｐ＞０．０１）、対照群の比較スコアより有意に低かった（１．９６±０．１、ｐ＜０．０１）。

実施例１と同様に、それぞれの時点についてのそれぞれの損傷の度数を調査した（表２及び図８）。第７日の時点で、７３％を超える損傷がゼロから軽度の漏出を示し、残りは、中等度の漏出を示した。第１４日までに、度数分布は、評価できるほどには変わらず、損傷の３９．９％は、まだ、ゼロ漏出を示した。軽度漏出を伴う損傷のわずかな減少（３５．３％から２８．６％）、及び中等度漏出を伴う損傷の小さな増加（２６．５％から３２．１％）があったが、重度漏出を伴う損傷は提示されなかった。第２８日までに、少数の損傷が重症度等級に進んだ（８．７％）が、大きな割合は、まだ、ゼロ漏出を示した（３２．４％）。これらのデータは、１４及び２８日目でのゼロ漏出スコアの割合がそれぞれ７％及び２．８％に落ち、重度損傷の数がそれぞれ１９．７％から２８．２％であった対照群とは対照的であった。

図９に提示する眼の組織切片は、認識できる網膜組織が一切不在であることに加えて、多数のマクロファージの存在（図９ａ及びｂ、矢印）を示している。眼の切片は、殆どマクロファージを有さず（図９ｂ）、感染の徴候を検出することはできず、網膜組織は、他の点では正常に見えた。加えて、損傷部位内での血管発生の徴候は検出されなかった。

〔考察〕
１５匹のヌードラットの左眼の網膜をレーザー光凝固して、６から１０の損傷をもたらした。翌日、それらのレーザー処置した眼に２μＬの細胞（５．６２５×１０^４細胞／μＬ）を注射し、３つ時点（注射後７、１４及び２８日目）で眼科的評価、ＣＦＰ及びＦＡに付した。

最初の臨床観察は、損傷範囲内でのＣＮＶ発現に起因する漏出が時間と共に増加しなかったようであることを示した。ＦＡを用いるそれらの損傷に対するその後の濃度測定は、これが、平均フルオレセイン漏出の有意な増加がないので、７から２８日目に計算した場合であることを示した。加えて、組織切片を検分したとき、火傷部位内で血管を検出することができなかった。これは、血管新生の阻害を示している。

ＣＮＶのレーザー誘導齧歯動物モデルにおける幹細胞療法の最適化
〔材料及び方法〕
動物
２０匹の週齢８から１０週の雌のＣＢＨ−ｒｎｕ／Ａｒｃラットを、本研究のためにウエスタンオーストラリアのAnimal Resource Centreから入手した。同型接合ＣＢＨ−ｒｎｕ／Ａｒｃラットは、殆ど又はまったく毛がなく、胸腺が欠損しており、マウスのヌード突然変異に似た発育不全を有する。それらの細胞媒介免疫は、非常に低減されたものであるか不在であり、Ｔリンパ球機能が著しく低下しており、それらは、クロストリジウム・ピリフォルメ（Clostridium piliformi）での感染を非常に受けやすい。

それらのＣＢＨ−ｒｎｕ／Ａｒｃラットを、下にもみがらを敷いた、頂部がフィルターのケージの中に、２２℃の一定温度で、１２：１２時間の明／暗サイクル（０８００時に点灯）で収容した。食餌及び水は、自由に入手できた。本研究全体を通して、これらのラットの身体的状態（例えば、体重、運動など）をモニターした。

手順
すべての手順は、Ｔｈｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｗｅｓｔｅｒｎ Ａｕｓｔｒａｌｉａの動物実験倫理委員会（the Animal Ethics and Experimentation Committee）のガイドライン及び眼科と視覚に関する研究会議宣言に従って行った。

麻酔及び瞳孔拡張
すべての臨床写真撮影、硝子体内注射、及びレーザー光凝固は、ケタミン（５０ｍｇ／ｋｇ、米国のLambert Company）とキシラジン（６ｍｇ／ｋｇ、ドイツのBayer AG）の混合物の筋肉内注射を伴う一般的な麻酔下のラットを用いて行った。２．５％のフェニレフリン（エセックス州、ロムフォードのChauvin Pharmaceuticals Ltd.）及び１％のＭｙｄｒｉａｃｙｌ（ベルギーのAlcon）点眼剤で瞳孔を広げた。

細胞の調製
上述した実施例２のとおり、ＨＭＰＣを調製した。

レーザー光凝固
コンタクトレンズとしての役割を果たす手持ちカバーガラスを具備するＺｅｉｓｓ細隙灯によって、クリプトンレーザー照射（６４７．１ｎｍ、米国、カリフォルニア州のCoherent Radiation System）をそれぞれのＣＢＨ−ｒｎｕ／Ａｒｃラットの左眼の眼底に施した。１００μｍの直径、０．１秒の露光時間及び１５０ｍＷの電力という設定で、それぞれの眼における視神経の周りの主要網膜血管の間に８から１３のレーザー光凝固を行った。ブルッフ膜の破損成功の指標として、気泡の形成を用いた。

臨床写真撮影
視野を増すために集光レンズ（Volk Superfield、オハイオ州、メンターのVolk Optical）を挿入した改良ポータブル小動物用眼底カメラ（Genesis；日本、東京のKowa）を使用して、カラー眼底撮影を行った。フルオレセイン血管撮影は、１００μＬの１０％のフルオレセインナトリウムをラットに腹腔内注射した後、共焦点走査型レーザー検眼鏡検査（Heidelberg Retinal Angiograph；カリフォルニア州、カールズバッドのHeidelberg Engineering）を用いて行った。

硝子体内注射
結膜を切断し、その露出した強膜の最初の穿刺を、３０ゲージ針を使用して行った。次に、５μＬのハミルトン注射器に取り付けた３２ゲージ針をその強膜の穿刺穴に通して硝子体腔に進めた。マイクロ送達システムを使用して制御するその針の前進を、手術用顕微鏡のもとで直接観察し、針先が硝子体腔に達したとき薬剤を送達した。針を硝子体腔内で約１分間保持し、その後、抜き取り、感染を予防するために抗生物質軟膏（０．５％のクロラムフェニコール滴剤、Chauvin Pharmaceutical Ltd.）を塗布した。注射した眼を毎日観察し、注射後の最初の３日間はクロラムフェニコール滴剤を適用した。

組織学的評価
注射後第３０日の時点でラットを犠牲にした後、器官を回収し、ブアン固定液（眼及び視神経）又は緩衝３．７％のホルムアルデヒドのいずれかの中で固定した。それらの器官をリン酸緩衝食塩液（ＰＢＳ、ｐＨ７．２から７．４）中で３回洗浄し、濃度勾配のあるエタノール溶液で脱水し、パラフィンろうに包埋した。選択した組織を薄片に切り、組織検査のためにヘマトキシリン及びエオシン（Ｈ＆Ｅ）で染色した。脈絡膜新生血管膜厚の形態測定のために、Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅ（商標）（スイス、バーゼルのLonza；これは、ＣＤＭ ＮＡＯ凍結培地、７．５％のＤＭＳＯ及び５０％のＡｌｆａ ＭＥＭを含む）を注射した眼及び細胞を注射した眼からランダムに１０のレーザー損傷を選択した。この紡錘形瘢痕を通る最大縦中線をその厚さとして測定した。

実験計画
２０のＣＢＨ−ｒｕｎ／Ａｒｃラットを身体検査し、麻酔した。瞳孔拡張後、それぞれのラットの左眼においてレーザー光凝固を行った。レーザー光凝固後の気泡の形成を、ブルッフ膜破損の指標として用いた。それぞれの目において合計８と１３の間のレーザー光凝固を行い、カラー眼底撮影法を用いて、直ちに、レーザー光凝固の分布を撮像した（第−１日）。

レーザー光凝固の翌日（第０日）、１０のレーザー光凝固した眼に３μＬのＰｒｏｆｒｅｅｚｅを硝子体内注射し、残りの１０のレーザー光凝固したＣＢＨ−ｒｎｕ／Ａｒｃラットの眼には３μＬのＨＭＰＣを硝子体内注射した。注射した眼に抗生物質軟膏を塗布した。翌３日間、毎日、ラットの眼を検査し、注射後の最初の３日間は毎日抗生物質軟膏を塗布した。

注射後、第７日、第１４日及び第２８日の時点で、処置した目の臨床写真撮影（カラー眼底撮影及びフルオレセイン血管撮影）を行った。注射後、第３０日の時点でそれらのＣＢＨ−ｒｎｕ／Ａｒｃラットを二酸化炭素窒息によって犠牲にし、その眼及び器官を回収した。すべての眼は、ブアン固定液中で固定し、一方、器官は、緩衝３．７％のホルムアルデヒドに浸漬した。その後、それらの組織サンプルを濃度勾配のあるエタノール溶液で脱水し、パラフィンろうに包埋した。選択した組織を薄片に切り、Ｈ＆Ｅで染色した。

〔結果及び考察〕
本研究において使用したＣＢＨ−ｒｎｕ／Ａｒｃラットの身体的状態
ＣＢＨ−ｒｎｕ／Ａｒｃラットは健常であり、本研究の前及び過程を通して健常体重範囲内であった。本研究中、それらを異なる手順に付したが、十分に給餌し、麻酔から完全に回復するとそれらは正常に動いていた。筋肉内注射部位にわずかに傷を有するものもあったが、これは、それらの運動、採食及び行動に影響を及ぼさなかった。

本研究において使用した２０匹のラットの眼は、本研究の開始時には正常であった。それぞれのラットの左及び右眼は、等しいサイズのものであった。それらの瞳孔は容易に拡張し、それらの結膜、角膜、虹彩及び水晶体は、すべて正常であった。本研究の開始時、すべてが、透明な硝子体、正常な眼底及び網膜血管系を有し、出血はなかった。

レーザー光凝固の直後、硝子体は透明であり、レーザー光凝固点は明瞭であり、明確であった。少数の目では、網膜血管へのレーザー光凝固の偶発的命中に起因して出血が時折観察された。

ＣＢＨ−ｒｎｕ／Ａｒｃラットの眼におけるＰｒｏｆｒｅｅｚｅ及び細胞の毒性効果の分析
Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅ及び細胞を、それぞれのラットの光凝固した眼の硝子体内に注射した。すべての眼は、注射直後、正常であった。

注射後、第７、１４及び２８日の時点でのカラー眼底撮影及び目の細隙灯写真撮影は、ラット＃１０、＃２４及び＃２５を除き、Ｐｒｏｆｒｅｅｚ及び細胞の存在は眼に悪影響を及ぼさなかったこと：角膜は正常であり、前房及び硝子体は両方とも透明であることを示した。ラット＃１０及びラット＃２４は、注射後、第７日の時点で混濁した硝子体を有し、これは、この時点での撮像を妨げた。しかし、その硝子体が、第１４及び２８日の時点では再び透明に見えた。ラット＃２５は、第７日の時点で前部ブドウ膜炎を有し、より後の時点で部分白内障が観察された。この部分白内障は、注射中の水晶体への偶発的傷害に起因する可能性が最も高かった。幾つかの眼の臨床撮像は、麻酔関連白内障のため、行うことができなかった。

Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅ及び細胞が、硝子体内送達後に何らかの局所又は全身性毒性効果を有するかどうかを評価するために、注射後３０日目に組織及び器官を回収した。剖検報告に基づき、Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅを注射したラット及び細胞を注射したラットの両方においてほぼ同じ頻度で、これらの組織及び器官において病理学的変化が検出された。これは、注射した細胞の存在が、それ自体、悪影響を一切及ぼさなかったことを示唆している。

Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅ及び細胞の効力の分析
レーザー誘導ラットＣＮＶモデルにおいて新たに形成された膜を、フルオレセイン血管撮影法を用いてフルオレセイン漏出を評価することによって、定量した。それぞれの時点でのフルオレセイン漏出を伴うレーザー光凝固の百分率を、Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅ注射群及び細胞注射群について評価した。

レーザー誘導ＣＮＶモデルにおいてＣＮＶの発現成功率を計算するために、レーザー光凝固後、第７日の時点でフルオレセイン漏出の評価に使用することができるフルオレセイン血管撮影像を有した眼のみを使用した。このため、ラット＃２４、＃１６、＃１９及び＃２５は、この評価から除外した。行った合計１６７のレーザー光凝固から、１２２、すなわち７３．１％が、第７日の時点でフルオレセイン漏出を有した（表３）。この百分率は、他のグループによって以前に報告された範囲内に入った（Yanagi et al., 2002;El Bradey et al., 2004;Zou et al., 2006）。

フルオレセイン漏出を伴う光凝固の百分率の時間に伴う変化を計算するために、完全なフルオレセイン血管撮影像セットを有する眼のみを含めた。この評価から、Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅ注射群の中のラット＃１６、ラット＃１９、ラット＃２０及びラット＃２３を除外し、ならびに細胞注射群の中のラット＃８、ラット＃１０及びラット＃２４を除外した。

Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅ注射群において、レーザー光凝固の７５％は、レーザー光凝固後、第７日の時点でフルオレセイン漏出を有し、これは、第１４日の時点で８０％に増加し、レーザー光凝固後２８日目には元の７５％に降下した（図１０）。対照的に、ＨＭＰＣを注射した眼では、光凝固の７６．３％がフルオレセイン漏出を有し、これが、レーザー光凝固後１４日目には６５．８％に降下し、第２８日の時点でさらに３０．３％に降下した（図１０）。これは、それらの細胞の存在が、このモデルにおける新生血管形成の阻害に影響を及ぼすことを示唆している。

眼のＨ＆Ｅ染色切片の光学顕微鏡分析から、傷害（レーザー損傷）の病巣は、Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅを注射した眼及びＨＭＰＣを注射した眼の中に存在した。そのような損傷は、外網状層及び外顆粒層の薄化から成る。色素細胞及び小血管が外顆粒層内に見出された。一部の病巣の小血管濃度増加と共に、網膜色素上皮層の病巣肥厚も見られた。新生血管膜（これらは、単一又は多層網膜色素上皮細胞を伴うレーザー損傷において紡錘形の網膜下血管結合組織の瘢痕として現れる）の存在が観察され、光凝固した眼内の隣接する正常な構造とそれらを区別することができた（図１１）。

Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅを注射した眼（ｎ＝６）及び細胞を注射した眼（ｎ＝７）からランダムに選択した１０の脈絡膜新生血管膜の最大厚の比較を行った。これらの脈絡膜新生血管膜の平均厚は、Ｐｒｏｆｒｅｅｚｅ注射群において３５．１±１０．２μｍ、及び細胞注射群において１６．３±４．７μｍであった（図１２）。この平均厚の差は、統計学的に有意であった（ｐ＜０．００１、スチューデントｔ検定）。

レーザー誘導ＣＮＶモデルにおける脈絡膜新生血管膜の厚は、化合物又は分子の抗血管新生活性の効力を評価するためにパラメータの１つとして用いられている（Lai et al., 2002; Berglin et al., 2003; Krzystolik et al., 2002; Ciulla et al., 2003）ので、ＨＭＰＣを注射した眼における脈絡膜新生血管膜の厚さの減少は、ＨＭＰＣがレーザー誘導脈絡膜新生血管形成を抑制する効果を有することを示している。

広く説明した本発明の精神又は範囲から逸脱することなく、特定の実施形態において示した本発明に対して非常に多数の変型及び／又は変更を行うことができることは、当業者には理解される。従って、本実施形態は、すべての点で、例証的なものと解釈すべきであり、限定的なものと解釈してはならない。

上述したすべての出版物は、それら全体が本明細書に組み込まれる。

本出願は、ＵＳ６０／８３０，６４９及びＵＳ６０／８３０，６５１（これらの全内容は、本明細書に参照として組み込まれる）の優先権を主張するものである。

本明細書に含めた文献、行為、材料、装置又は物品などのいずれの論議も、単に、本発明の状況を提供するためのものである。これらの事柄のいずれか又はすべてを、本出願のそれぞれのクレームの優先権主張日より前に存在していたので先行技術の基礎の一部を構成する又は本発明の関連分野における共通一般認識であったと解釈すべきでない。

Claims (6)

1. ＳＴＲＯ−１^明るい間葉前駆細胞（ＭＰＣ）又はそれらの子孫細胞を含む、被験者における黄斑変性又は糖尿病性網膜症の治療又は予防用治療剤。
2. 前記黄斑変性が、乾燥型加齢性黄斑変性又は湿潤型加齢性黄斑変性である、請求項１に記載の治療剤。
3. 前記ＭＰＣが、骨髄から得られる、請求項１または２に記載の治療剤。
4. 前記ＭＰＣが、追加的にＴＮＡＰ＋、ＶＣＡＭ−１＋、ＴＨＹ−１＋、ＳＴＲＯ−２＋、ＣＤ４５＋、ＣＤ１４６＋、３Ｇ５＋又はそれらの任意の組み合わせである、請求項３に記載の治療剤。
5. 前記子孫細胞が、インビトロで間葉前駆細胞を培養することによって得られる、請求項１から４のいずか一項に記載の治療剤。
6. 前記細胞の少なくとも一部が、遺伝子修飾される、請求項１から５のいずれか一項に記載の治療剤。