JP5953232B2

JP5953232B2 - 薬物誘導性の心毒性の代謝バイオマーカー

Info

Publication number: JP5953232B2
Application number: JP2012533284A
Authority: JP
Inventors: ガブリエラセザー，; アランスミス，
Original assignee: Wisconsin Alumni Research Foundation
Current assignee: Wisconsin Alumni Research Foundation
Priority date: 2009-10-06
Filing date: 2010-10-06
Publication date: 2016-07-20
Anticipated expiration: 2030-10-06
Also published as: AU2010303471A1; CA2776383C; EP2486404B1; EP2486404A1; CA2776383A1; WO2011044253A1; JP2013506438A; AU2010303471B2; US20110081675A1; JP2016119903A

Description

この出願は、２００９年１０月６日に出願された米国仮特許出願第６１／２４９，１５０号（この全体は、参考として本明細書に援用される）の優先権の利益を主張する。

発明の分野
本発明は、医薬品、生物製剤ならびにその他の化合物および環境要因の心毒性の影響を識別するための方法およびバイオマーカーを提供する。本発明は特定的に、心毒性化合物へのインビトロでの露出に応答して心筋細胞が分泌する低分子量代謝産物を同定するための方法を提供する。化合物、医薬品、生物製剤または環境要因と接触した心筋細胞によって生成されて分泌される低分子量代謝産物を測定することによって心毒性を予測する候補バイオマーカーを同定するためのメタボロミクスの方法が提供される。本明細書においては、心毒性の影響に対する予測バイオマーカーも同定されて提供される。

発明の背景
心毒性は、医薬鉛化合物の減少、およびその後の市場からのＦＤＡ認可薬物の撤回の主要な原因の１つとなっている。安全な薬物開発をより一層可能にし、かつ臨床前の薬物の失敗に関連して急激に増加する経済的損失の低減を助けるために、心毒性予測に対する特異性および正確性を提供するスクリーニング法の開発が必要である。

現在、心毒性は主に、パッチ−クランプ手順を用いて心筋細胞における活動電位持続時間（ａｃｔｉｏｎｐｏｔｅｎｔｉａｌｄｕｒａｔｉｏｎ：ＡＰＤ）のインビトロでの変化を測定することによって推測することしかできない。電気生理学アッセイによって非常に貴重な知識がもたらされるにもかかわらず、パッチクランプ手順は非常に時間がかかってスループットが低い。簡単に言うと、医薬化合物に対するＡＰＤ応答は一度に１個の細胞が測定されるものであり、たとえばＰａｔｃｈＥｘｐｒｅｓｓ（登録商標）などのいわゆる「高スループット」系であっても、１回のアッセイ当たり数十個の細胞の記録しかできない。しかし最も重要なのは、薬理学的心毒性のメカニズムが薬物全体で同じではないことである。つまり、電気生理学記録は、複数の化合物の心毒性を予測する能力が限られている。ある特定の化合物は主に心臓のイオンチャネルの適切な機能を阻害することによってその毒性を発揮する（これはＡＰＤの変化につながるため、従来のアッセイを用いて検出できる）が、他の化合物は心筋細胞代謝を乱すことが知られており、これは現在アッセイされていない。たとえば、癌治療法に用いられる化学療法およびキナーゼ阻害剤の一次毒性は、心筋細胞における代謝指標の顕著な変化をもたらす。メカニズムに関わらず、心毒性は最終的に、心筋細胞からの低分子量分子の総合的コレクションに変化を与える。

代謝産物の合成、処理および存在量の調節不全は、心毒性に関連付けられてきた。化学療法および抗腫瘍レジメンは、酸化的リン酸化への干渉およびＡＴＰ合成の阻害を含むミトコンドリア機能、筋原線維の構造、ならびにエネルギー代謝のその他の局面の顕著な変化を伴う。（非特許文献１）。癌薬物の心毒性に関係するその他の代謝プロセスは、脂質過酸化、タンパク質およびＤＮＡの酸化、ならびにグルタチオンおよびピリジンヌクレオチド還元当量の減少を含む。心毒性の副作用は医薬化合物に限らない。なぜならモノクローナル抗体療法および生物製剤による心毒性が観察されているからである。パクリタキセル処理レジメンに関連するＨＥＲ２／ＥＲＢＢ２モノクローナル抗体およびトラスツズマブなどの治療用抗体は、成人心筋細胞に対して相乗効果的悪影響を有することが示されている。（非特許文献２）。心臓の安全性に対する生物製剤の有害な影響は、併用療法に関わらず一般的になっている。たとえば、トラスツズマブを用いる患者の１１パーセントに心臓毒性が発生する（非特許文献３）。

本技術分野においては、医薬品、生物製剤、ならびにその他の化合物および環境要因の心毒性を信頼性高く決定するためのインビトロの方法がなおも必要とされている。

ＴａｋｅｍｕｒａおよびＦｕｇｉｗａｒａ、ＰｒｏｇｒｅｓｓｉｎＣａｒｄｉｏｖａｓｃｕｌａｒＤｉｓｅａｓｅｓ（２００７）４９（５）：３３０〜３５２Ｐｅｎｔａｓｓｕｇｌｉａら、ＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌＣｅｌｌＲｅｓｅａｒｃｈ（２００７）３１３：１５８８〜１６０１Ｇｕａｒｎｅｒｉら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｌｉｎｉｃａｌＯｎｃｏｌｏｇｙ（２００６）２４：４１０７〜４１１５

本発明は、医薬品、生物製剤、ならびにその他の化合物または環境要因に応答して、好ましくは心筋細胞またはｈＥＳＣ由来もしくはヒトｉＰＳ由来の心臓特異的細胞から分泌される複数の低分子量分子を同定するための試薬および方法を提供する。加えて本発明は、特定の実施形態においては、医薬品、生物製剤、その他の化合物または環境要因に応答して心筋細胞によって生成される特定の代謝産物を、他の実施形態においては、医薬品、生物製剤、その他の化合物または環境要因に応答して心筋細胞によって生成される複数の細胞代謝産物を同定するための試薬および方法を提供することによって、たとえば特定の医薬品、生物製剤、ならびにその他の化合物および環境要因への露出に応答して、心毒性の結果として生成され分泌される特定の代謝産物の代謝プロファイルをも提供する。よって本発明は、医薬品、生物製剤、ならびにその他の化合物および環境要因の心毒性の影響を、こうした薬剤にインビトロで接触したヒト心筋細胞のメタボロミクス分析によって同定された低分子量代謝産物のプロファイルを用いて予測するための試薬および方法を提供する。

低分子量代謝産物は、たとえ少量であっても当該技術分野において公知の方法および技術によって感度良く検出でき、その方法は最も特定的には液体クロマトグラフィ高分解能質量分析（ｌｉｑｕｉｄｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙｈｉｇｈｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎｍａｓｓｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ：ＬＣ−ＭＳ）および／またはエレクトロスプレーイオン化飛行時間型質量分析（ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙｉｏｎｉｚａｔｉｏｎｔｉｍｅｏｆｆｌｉｇｈｔｍａｓｓｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ：ＥＳＩ−ＴＯＦ）の変形を含む。本明細書に開示されるとおり、医薬品、生物製剤、ならびにその他の化合物および環境要因に応答して心筋細胞によって生成される代謝産物を検出するためにこうした方法を適用することによる感度は、当該技術分野において公知のもっと頑強性の少ない方法に比べて、心毒性検出の結果を改善させる。本明細書に開示される本発明の方法の利点は、それらが心毒性応答の直接的生成物、すなわち医薬品、環境要因、化合物および／または生物療法からの侵入に応答して心筋細胞によって生成される代謝産物を提供することを含む。本明細書に開示される本発明は、有利には心筋細胞を特定の医薬品、生物製剤、ならびにその他の化合物および環境要因にインビトロで接触させることによって生成される代謝産物プロファイルも提供する。これらのプロファイルは、候補バイオマーカーの非限定的コレクションで構成され、心毒性を示す生化学的代謝サインを提供する。

特定の実施形態において、本発明は、特定の医薬品、生物製剤、ならびにその他の化合物および環境要因の心毒性に関連する代謝産物を検出するために、心筋細胞を用いるインビトロスクリーニングのための試薬および方法を提供する。代謝産物バイオマーカーのパターンおよびコレクションは、こうした心筋細胞が、特定の医薬品、生物製剤、ならびにその他の化合物および環境要因との接触によって生成される心毒性に対して特徴的な代謝応答を有することを確証する。

提供される方法の実施は、心筋細胞メタボロームを示し、疾患および心毒性応答に対する潜在的ヒトバイオマーカーを含む。これらのバイオマーカーは、心筋細胞を特定の医薬品、環境要因、化合物および生物療法に接触させることによって同定される。本明細書に示される結果は、心筋細胞を公知の心毒性薬物に露出することによって異なる代謝経路に顕著な変化が誘発されたことを示し、これは心臓毒として公知の活性に一致し、さらに、特徴付けされていない医薬品、生物製剤、ならびにその他の化合物および環境要因とともに本発明の方法を実施することによってこれらの化合物の示すあらゆる心毒性の程度を決定することの見本を提供する。

本願は一実施形態において例えば以下の項目を提供する：
（項目１）
試験化合物の存在下または不在下で心筋細胞において異なって生成される細胞代謝産物を同定する方法であって、前記方法は、
ａ）心筋細胞を試験化合物に接触させるステップと、
ｂ）前記心筋細胞から分泌された約１０ダルトンから約１５００ダルトンの複数の細胞代謝産物を分離するステップと、
ｃ）前記試験化合物に接触させなかった心筋細胞に比べて、前記試験化合物に接触させた心筋細胞から異なって分泌された約１０ダルトンから約１５００ダルトンの１つまたは複数の細胞代謝産物を同定するステップと
を含む、方法。
（項目２）
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させた心筋細胞においてより大量に生成される、項目１に記載の方法。
（項目３）
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させなかった心筋細胞においてより大量に生成される、項目１に記載の方法。
（項目４）
前記細胞代謝産物は物理的分離方法を用いて分離される、項目１に記載の方法。
（項目５）
前記物理的分離方法は、液体クロマトグラフィ／エレクトロスプレーイオン化飛行時間型質量分析（ＬＣ／ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ）である、項目４に記載の方法。
（項目６）
候補の前記細胞代謝産物は中性質量によって同定される、項目１に記載の方法。
（項目７）
前記試験化合物は心毒性化合物である、項目１に記載の方法。
（項目８）
前記細胞代謝産物は、表２Ａ〜２Ｄに示される細胞代謝産物のうちの１つまたは複数を含む、項目７に記載の方法。
（項目９）
前記細胞代謝産物は、トリエチルアミン；ＮＮ−ジエチルアミン；ヘキシルアミン；ｐ−グルコシルオキシマンデロニトリル；（ｓ）−４−ヒドロキシマンデロニトリルベータ−Ｄ−グルコシド；１３，１４−ジヒドロＰＧＥ１（プロスタグランジンＥ１）；７−ケトコレステロール；１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３−２６，２３−ラクトン；ホルモノネチン７−Ｏ−グルコシド−６’’−Ｏ−マロン酸塩；イソクロロゲン酸ｂ；１３−ジカフェオイルキナ酸；３−ヘキサプレニル−４−ヒドロキシ−５−メトキシ安息香酸；２−フェニルグリシン；（Ｅ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；（Ｚ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；ベタイン；２−エチルヘキシル−４−ヒドロキシ安息香酸塩；グリセロホスホコリン；Ｎ−アセチルガラクトサミン；ＣＧＰ５２６０８；ビオチン；ＤＬ−ホモシスチン；エテノデオキシアデノシン；キューイン；Ｎ−アセチルアスパルチルグルタミン酸；テトラヒドロコルチゾン；環状ホスファチジン酸；２−メトキシエストロン３−グルクロニド；ジアシルグリセロール；ケルセチン３−（２Ｇ−キシロシルルチノシド）；ナイアシンアミド；アスパラギン酸；イミノジアセテート；エリトリトール；Ｄ−トレイトール；Ｎ−アセチルセリン；Ｌ−グルタミン酸；Ｌ−４−ヒドロキシグルタミン酸セミアルデヒド；２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−アミノ吉草酸塩；Ｏ−アセチルセリン；ＤＬ−グルタミン酸塩；ＤＬ−グルタミン酸；２−アミノグルタル酸；グルタミン酸塩；Ｄ−グルタミン酸；３−ピリジンブタン酸；ノルサルソリノール；Ｄ−フェニルアラニン；Ｄ−アルファ−アミノ−ベータ−フェニルプロピオン酸；Ｌ−フェニルアラニン；３−メチルヒスチジン；１−メチルヒスチジン；（Ｒ）−Ｎ−メチルサルソリノール；（Ｓ）−Ｎ−メチルサルソリノール；対称ジメチルアルギニン；または非対称ジメチルアルギニンのうちの１つまたは複数を含む、項目７に記載の方法。
（項目１０）
前記方法によって同定される前記細胞代謝産物は、心毒性化合物に対する心筋細胞応答に特有の代謝プロファイルを構成する、項目７に記載の方法。
（項目１１）
前記方法によって同定される細胞代謝産物は、試験化合物に対する心筋細胞応答に特有の代謝プロファイルを構成する、項目１に記載の方法。
（項目１２）
複数の心毒性試験化合物の存在下または不在下で心筋細胞によって異なって生成される細胞代謝産物を同定するための方法であって、前記方法は、
ａ）心筋細胞の複数の実験セットの各々を異なる心毒性試験化合物に別々に接触させるステップと、
ｂ）細胞の各実験セットから分泌された約１０ダルトンから約１５００ダルトンの複数の細胞代謝産物を分離するステップと、
ｃ）前記心毒性試験化合物に接触させなかった心筋細胞に比べて、前記心毒性試験化合物の各々に接触させた心筋細胞から異なって分泌された約１０ダルトンから約１５００ダルトンの１つまたは複数の細胞代謝産物を同定するステップと、
ｄ）前記試験化合物に露出された心筋細胞の実質的にすべての前記実験セットによって異なって生成された１つまたは複数の細胞代謝産物を同定するステップと
を含む、方法。
（項目１３）
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させた心筋細胞においてより大量に生成される、項目１２に記載の方法。
（項目１４）
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させなかった心筋細胞においてより大量に生成される、項目１２に記載の方法。
（項目１５）
前記細胞代謝産物は物理的分離方法を用いて分離される、項目１２に記載の方法。
（項目１６）
前記物理的分離方法は、液体クロマトグラフィ／エレクトロスプレーイオン化飛行時間型質量分析（ＬＣ／ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ）である、項目１５に記載の方法。
（項目１７）
候補の前記細胞代謝産物は中性質量によって同定される、項目１２に記載の方法。
（項目１８）
前記細胞代謝産物は、表２Ａ〜２Ｄに示される細胞代謝産物のうちの１つまたは複数を含む、項目１２に記載の方法。
（項目１９）
前記細胞代謝産物は、トリエチルアミン；ＮＮ−ジエチルアミン；ヘキシルアミン；ｐ−グルコシルオキシマンデロニトリル；（ｓ）−４−ヒドロキシマンデロニトリルベータ−Ｄ−グルコシド；１３，１４−ジヒドロＰＧＥ１（プロスタグランジンＥ１）；７−ケトコレステロール；１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３−２６，２３−ラクトン；ホルモノネチン７−Ｏ−グルコシド−６’’−Ｏ−マロン酸塩；イソクロロゲン酸ｂ；１３−ジカフェオイルキナ酸；３−ヘキサプレニル−４−ヒドロキシ−５−メトキシ安息香酸；２−フェニルグリシン；（Ｅ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；（Ｚ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；ベタイン；２−エチルヘキシル−４−ヒドロキシ安息香酸塩；グリセロホスホコリン；Ｎ−アセチルガラクトサミン；ＣＧＰ５２６０８；ビオチン；ＤＬ−ホモシスチン；エテノデオキシアデノシン；キューイン；Ｎ−アセチルアスパルチルグルタミン酸；テトラヒドロコルチゾン；環状ホスファチジン酸；２−メトキシエストロン３−グルクロニド；ジアシルグリセロール；ケルセチン３−（２Ｇ−キシロシルルチノシド）；ナイアシンアミド；アスパラギン酸；イミノジアセテート；エリトリトール；Ｄ−トレイトール；Ｎ−アセチルセリン；Ｌ−グルタミン酸；Ｌ−４−ヒドロキシグルタミン酸セミアルデヒド；２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−アミノ吉草酸塩；Ｏ−アセチルセリン；ＤＬ−グルタミン酸塩；ＤＬ−グルタミン酸；２−アミノグルタル酸；グルタミン酸塩；Ｄ−グルタミン酸；３−ピリジンブタン酸；ノルサルソリノール；Ｄ−フェニルアラニン；Ｄ−アルファ−アミノ−ベータ−フェニルプロピオン酸；Ｌ−フェニルアラニン；３−メチルヒスチジン；１−メチルヒスチジン；（Ｒ）−Ｎ−メチルサルソリノール；（Ｓ）−Ｎ−メチルサルソリノール；対称ジメチルアルギニン；または非対称ジメチルアルギニンのうちの１つまたは複数を含む、項目１８に記載の方法。
（項目２０）
前記方法によって同定される前記細胞代謝産物は、心毒性化合物に対する心筋細胞応答に特有の代謝プロファイルを構成する、項目１２に記載の方法。
（項目２１）
前記試験化合物はドキソルビシン（ｄｏｘｉｒｕｂｉｃｉｎ）、タモキシフェンまたはパクリタキセルである、項目２０に記載の方法。
（項目２２）
前記試験化合物はドキソルビシン（ｄｏｘｉｒｕｂｉｃｉｎ）、タモキシフェンまたはパクリタキセルである、項目１０に記載の方法。
（項目２３）
前記細胞代謝産物は、表２Ａ〜２Ｄに示される細胞代謝産物のうちの１つまたは複数を含む、項目１０または２０に記載の方法。
（項目２４）
前記細胞代謝産物は、トリエチルアミン；ＮＮ−ジエチルアミン；ヘキシルアミン；ｐ−グルコシルオキシマンデロニトリル；（ｓ）−４−ヒドロキシマンデロニトリルベータ−Ｄ−グルコシド；１３，１４−ジヒドロＰＧＥ１（プロスタグランジンＥ１）；７−ケトコレステロール；１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３−２６，２３−ラクトン；ホルモノネチン７−Ｏ−グルコシド−６’’−Ｏ−マロン酸塩；イソクロロゲン酸ｂ；１３−ジカフェオイルキナ酸；３−ヘキサプレニル−４−ヒドロキシ−５−メトキシ安息香酸；２−フェニルグリシン；（Ｅ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；（Ｚ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；ベタイン；２−エチルヘキシル−４−ヒドロキシ安息香酸塩；グリセロホスホコリン；Ｎ−アセチルガラクトサミン；ＣＧＰ５２６０８；ビオチン；ＤＬ−ホモシスチン；エテノデオキシアデノシン；キューイン；Ｎ−アセチルアスパルチルグルタミン酸；テトラヒドロコルチゾン；環状ホスファチジン酸；２−メトキシエストロン３−グルクロニド；ジアシルグリセロール；ケルセチン３−（２Ｇ−キシロシルルチノシド）；ナイアシンアミド；アスパラギン酸；イミノジアセテート；エリトリトール；Ｄ−トレイトール；Ｎ−アセチルセリン；Ｌ−グルタミン酸；Ｌ−４−ヒドロキシグルタミン酸セミアルデヒド；２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−アミノ吉草酸塩；Ｏ−アセチルセリン；ＤＬ−グルタミン酸塩；ＤＬ−グルタミン酸；２−アミノグルタル酸；グルタミン酸塩；Ｄ−グルタミン酸；３−ピリジンブタン酸；ノルサルソリノール；Ｄ−フェニルアラニン；Ｄ−アルファ−アミノ−ベータ−フェニルプロピオン酸；Ｌ−フェニルアラニン；３−メチルヒスチジン；１−メチルヒスチジン；（Ｒ）−Ｎ−メチルサルソリノール；（Ｓ）−Ｎ−メチルサルソリノール；対称ジメチルアルギニン；または非対称ジメチルアルギニンのうちの１つまたは複数を含む、項目１０または２０に記載の方法。
（項目２５）
心毒性化合物との接触または心毒性化合物の投与の結果生じる、患者における心毒性の影響を識別するための方法であって、前記方法は、
ａ）約１０ダルトンから約１５００ダルトンの分子量を有する１つまたは複数の細胞代謝産物の存在について、患者からの生物学的サンプルをアッセイするステップと、
ｂ）心毒性応答の代謝プロファイルに存在する少なくとも１つの細胞代謝産物を同定するステップと
を含む、方法。
（項目２６）
試験化合物の心毒性を評価する方法であって、
ａ）心筋細胞を前記試験化合物に接触させるステップと、
ｂ）前記心筋細胞から分泌された約１０ダルトンから約１５００ダルトンの複数の細胞代謝産物を分離するステップと、
ｃ）もし前記試験化合物に接触させた心筋細胞から異なって分泌された約１０ダルトンから約１５００ダルトンの少なくとも１つまたは複数の細胞代謝産物が、項目１０または２０に記載の心毒性の代謝プロファイルを構成するならば、前記試験化合物を心毒性化合物として同定するステップと
を含む、方法。
（項目２７）
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させた心筋細胞においてより大量に生成される、項目２６に記載の方法。
（項目２８）
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させなかった心筋細胞においてより大量に生成される、項目２６に記載の方法。
（項目２９）
前記細胞代謝産物は物理的分離方法を用いて分離される、項目２６に記載の方法。
（項目３０）
前記物理的分離方法は、液体クロマトグラフィ／エレクトロスプレーイオン化飛行時間型質量分析（ＬＣ／ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ）である、項目２９に記載の方法。
（項目３１）
候補の前記細胞代謝産物は中性質量によって同定される、項目２６に記載の方法。
本発明の特定の実施形態は、以下の特定の好ましい実施形態のより詳細な説明および請求項によって明らかになるだろう。

本発明のこれらの目的および特徴ならびにその他の目的および特徴は、図面とともに与えられる以下の詳細な説明からより良く理解されるであろう。

図１は、心臓アルファアクチンに対する免疫組織化学的（ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ：ＩＨＣ）処理を受けた心臓細胞の写真である。アルファアクチンのＩＨＣ染色によって、ドキソルビシン、パクリタキセルおよびタモキシフェンに露出した細胞が心臓由来であることを確認した。心毒性の予測代謝バイオマーカーの同定のために、心臓細胞が薬物処理を受けた。図２は、トリパンブルー染料含有物によって測定された、抗腫瘍薬物への露出に応答したヒト心筋細胞の細胞死のパーセンテージを示すグラフである。図３は、０．０５偽発見率（ＦａｌｓｅＤｉｓｃｏｖｅｒｙＲａｔｅｓ：ＦＤＲ）におけるドキソルビシン（ｄｏｘｏｒｕｂｉｃｉｎ：ＤＯＸ）、パクリタキセル（ｐａｃｌｉｔａｘｅｌ：ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ｔａｍｏｘｉｆｅｎ：ＴＡＭ）で処理したヒト心筋細胞における異なる代謝産物を表す、統計的に有意な質量特徴（ｍａｓｓｆｅａｔｕｒｅｓ）を示すベン図である。強い心毒性物質ＤＯＸおよびＰＡＣに対して７３の特徴が共通していた。図４Ａは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ｉｏｎｅｘｔｒａｃｔｅｄｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｍｓ：ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（ｃｏｎｔｒｏｌｓ）（黒の実線）およびドキソルビシン培地（ｍｅｄｉａ）（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｂは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｃは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｄは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｅは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｆは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｇは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｈは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｉは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｊは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｋは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｌは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｍは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｎは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｏは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｐは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｑは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｒは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｓは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｔは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｕは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｖは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｗは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｘは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｙは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４Ｚは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４ＡＡは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４ＡＢは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４ＡＣは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４ＡＤは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４ＡＥは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４ＡＦは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図４ＡＧは、ヒト心筋細胞において検出された統計的に有意な質量特徴（すなわち心毒性の候補代謝産物バイオマーカー）からのイオン抽出クロマトグラム（ＥＩＣｓ）であり、２６μＭのドキソルビシンで処理したヒト心筋細胞（点線）を未処理の対照（黒の実線）およびドキソルビシン培地（線の指示についてはグラフ内の凡例を参照）と比較したもの、ならびに１５μＭのパクリタキセルで処理した心筋細胞（破線）を未処理の対照（黒の実線）および培地（凡例を参照）と比較したものを示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、およびタモキシフェン（ＴＡＭ）。図５は、さまざまな実験処理後のメタボロミクス特徴の階層的クラスター化を示す図である。ＮＩＰＡＬＳＰｒｉｎｃｉｐａｌＣｌｕｓｔｅｒＡｎａｌｙｓｉｓ（ＰＣＡ）は、類似の傾向を示す（クラスター化する）強い心毒性物質（ＤＯＸ、ＰＡＣ）を、弱い心毒性物質（ＴＡＭ）と比較して示す。ドキソルビシン（ＤＯＸ）、パクリタキセル（ＰＡＣ）、タモキシフェン（ＴＡＭ）、およびハーセプチン（Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ：ＨＥＲ）。図６は、ドキソルビシン（２６ｕＭ）で２４時間処理し、次いでパクリタキセル（１５ｕＭ）で４８時間処理した心臓前駆細胞の細胞培養培地中の統計的に有意な質量特徴Ｍ２０３Ｔ５０７のイオン抽出クロマトグラムである。このＥＩＣは、処理された心臓前駆体における対称ジメチルアルギニンまたは非対称ジメチルアルギニンの蓄積の統計的に有意な減少を示している。Ｙ軸は強度、Ｘ軸は秒による時間である。図７は、ドキソルビシン（２６ｕＭ）で２４時間処理し、次いでパクリタキセル（１５ｕＭ）で４８時間処理した心臓前駆細胞の細胞培養培地中の質量特徴Ｍ１９４Ｔ６９のイオン抽出クロマトグラムである。このＥＩＣは、処理された心臓前駆体の細胞培養培地における（Ｒ）−Ｎ−メチルサルソリノールまたは（Ｓ）−Ｎ−メチルサルソリノールの欠乏を示している。Ｙ軸は強度、Ｘ軸は秒による時間である。図８は、ドキソルビシン（２６ｕＭ）で２４時間処理し、次いでパクリタキセル（１５ｕＭ）で４８時間処理した心臓前駆細胞の細胞培養培地中の統計的に有意な質量特徴Ｍ１９２Ｔ５２２の抽出イオンクロマトグラムである。このＥＩＣは、処理された心臓前駆体の細胞培養培地における３−メチルヒスチジンまたは１−メチルヒスチジンの蓄積の統計的に有意な減少を示している。Ｙ軸は強度、Ｘ軸は秒による時間である。図９は、ドキソルビシン（２６ｕＭ）で２４時間処理し、次いでパクリタキセル（１５ｕＭ）で４８時間処理した心臓前駆細胞の細胞培養培地中の統計的に有意な質量特徴Ｍ１８８Ｔ３５４のイオン抽出クロマトグラムである。このＥＩＣは、処理された心臓前駆体の細胞培養培地における３−ピリジンブタン酸、ノルサルソリノールまたはフェニルアラニンの蓄積の統計的に有意な増加を示している。Ｙ軸は強度、Ｘ軸は秒による時間である。図１０は、ドキソルビシン（２６ｕＭ）で２４時間処理し、次いでパクリタキセル（１５ｕＭ）で４８時間処理した心臓前駆細胞の細胞培養培地中の統計的に有意な質量特徴Ｍ１４８Ｔ４９７＿１のイオン抽出クロマトグラムである。このＥＩＣは、処理された心臓前駆体の細胞培養培地におけるＮ−アセチルセリン、グルタミン酸、Ｌ−４−ヒドロキシグルタミン酸セミアルデヒド、２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−アミノ吉草酸塩、またはＯ−アセチルセリンの蓄積の統計的に有意な増加を示している。Ｙ軸は強度、Ｘ軸は秒による時間である。図１１は、ドキソルビシン（２６ｕＭ）で２４時間処理し、次いでパクリタキセル（１５ｕＭ）で４８時間処理した心臓前駆細胞の細胞培養培地中の統計的に有意な質量特徴Ｍ１４５Ｔ１０９の抽出イオンクロマトグラムである。このＥＩＣは、処理された心臓前駆体の細胞培養培地におけるエリトリトールまたはトレイトールの蓄積の統計的に有意な減少を示している。Ｙ軸は強度、Ｘ軸は秒による時間である。図１２は、ドキソルビシン（２６ｕＭ）で２４時間処理し、次いでパクリタキセル（１５ｕＭ）で４８時間処理した心臓前駆細胞の細胞培養培地中の統計的に有意な質量特徴Ｍ１３４Ｔ５０４の抽出イオンクロマトグラムである。このＥＩＣは、処理された心臓前駆体の細胞培養培地におけるアスパラギン酸またはイミノジアセテートの蓄積の統計的に有意な減少を示している。Ｙ軸は強度、Ｘ軸は秒による時間である。図１３は、ドキソルビシン（２６ｕＭ）で２４時間処理し、次いでパクリタキセル（１５ｕＭ）で４８時間処理した心臓前駆細胞の細胞培養培地中の統計的に有意な質量特徴Ｍ１３４Ｔ５０４の抽出イオンクロマトグラムである。このＥＩＣは、処理された心臓前駆体の細胞培養培地におけるアスパラギン酸またはイミノジアセテートの蓄積の統計的に有意な減少を示している。Ｙ軸は強度、Ｘ軸は秒による時間である。

以下に本発明をより特定的に説明しており、本明細書に示される実施例は例示的なものとしてのみ意図される。なぜなら、実施例における多数の修正および変形が当業者に明らかになるためである。

本明細書の記載およびそれに続く請求項全体にわたって用いられる「ａ」、「ａｎ」および「ｔｈｅ」の意味は、状況が明らかに別様を示さない限り、複数形の言及を含む。本明細書において用いられる用語は、本発明の状況および各用語が用いられる特定の状況において、一般的に当該技術分野におけるそれらの通常の意味を有する。本発明の説明に関して実務家（ｐｒａｃｔｉｏｎｅｒ）に追加のガイダンスを提供するために、以下においていくつかの用語をより特定的に定義している。特に、本明細書において用いられる「細胞（ｃｅｌｌ）」という用語は単数形であっても複数形であってもよいが、好ましい実施形態においては複数形である。

一実施形態において、本発明は、心毒性化合物への露出の細胞的および／または生化学的影響を定めるための試薬および方法を含む。本明細書において用いられる「細胞代謝産物（ｃｅｌｌｕｌａｒｍｅｔａｂｏｌｉｔｅ）」またはその複数形「細胞代謝産物（ｃｅｌｌｕｌａｒｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ）」という用語は、細胞によって分泌される低分子量分子を示す。一般的に、代謝産物のサイズは約５５ダルトンから約１５００ダルトンの範囲である。細胞代謝産物は、次のタイプの低分子量分子を含んでもよいがそれに限定されない：酸、塩基、脂質、糖、グリコシド、アミン、有機酸、脂質、アミノ酸、オキシム、エステル、ジペプチド、トリペプチド、脂肪酸、コレステロール、オキシステロール、グリセロール、ステロイド、および／またはホルモン。代替的な実施形態において、細胞代謝産物は心筋細胞、ヒト胚性幹細胞（ｈｕｍａｎｅｍｂｒｙｏｎｉｃｓｔｅｍｃｅｌｌ：ｈＥＳＣ）由来の心筋細胞、またはヒト誘導多能性幹細胞（ｉｎｄｕｃｅｄｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔｓｔｅｍｃｅｌｌ：ｉＰＳ）由来の心筋細胞から分泌される。好ましい実施形態において、細胞代謝産物は、次の低分子量分子を含むがそれに限定されない：トリエチルアミン；ＮＮ−ジエチルアミン；ヘキシルアミン；ｐ−グルコシルオキシマンデロニトリル；（ｓ）−４−ヒドロキシマンデロニトリルベータ−Ｄ−グルコシド；１３，１４−ジヒドロＰＧＥ１（プロスタグランジンＥ１）；７−ケトコレステロール；１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３−２６，２３−ラクトン；ホルモノネチン７−Ｏ−グルコシド−６’’−Ｏ−マロン酸塩；イソクロロゲン酸ｂ；１３−ジカフェオイルキナ酸；３−ヘキサプレニル−４−ヒドロキシ−５−メトキシ安息香酸；２−フェニルグリシン；（Ｅ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；（Ｚ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；ベタイン；２−エチルヘキシル−４−ヒドロキシ安息香酸塩；グリセロホスホコリン；Ｎ−アセチルガラクトサミン；ＣＧＰ５２６０８；ビオチン；ＤＬ−ホモシスチン；エテノデオキシアデノシン；キューイン；Ｎ−アセチルアスパルチルグルタミン酸；テトラヒドロコルチゾン；環状ホスファチジン酸；２−メトキシエストロン３−グルクロニド；ジアシルグリセロール；ケルセチン３−（２Ｇ−キシロシルルチノシド）；ナイアシンアミド；アスパラギン酸；イミノジアセテート；エリトリトール；Ｄ−トレイトール；Ｎ−アセチルセリン；Ｌ−グルタミン酸；Ｌ−４−ヒドロキシグルタミン酸セミアルデヒド；２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−アミノ吉草酸塩；Ｏ−アセチルセリン；ＤＬ−グルタミン酸塩；ＤＬ−グルタミン酸；２−アミノグルタル酸；グルタミン酸塩；Ｄ−グルタミン酸；３−ピリジンブタン酸；ノルサルソリノール；Ｄ−フェニルアラニン；Ｄ−アルファ−アミノ−ベータ−フェニルプロピオン酸；Ｌ−フェニルアラニン；３−メチルヒスチジン；１−メチルヒスチジン；（Ｒ）−Ｎ−メチルサルソリノール；（Ｓ）−Ｎ−メチルサルソリノール；対称ジメチルアルギニン；または非対称ジメチルアルギニン。

本明細書において用いられる「異なって（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌｌｙ）生成された．．．１つまたは複数の細胞代謝産物を同定する」という語句は、試験化合物に露出させた細胞と未処理（すなわち対照）の細胞との比較を含むがそれに限定されない。実験細胞と対照細胞との間の、細胞が分泌した低分子量分子集団の変動の検出または測定がこの定義に含まれる。本明細書において用いられる「分泌する（ｓｅｃｒｅｔｅ）」、「分泌する（ｓｅｃｒｅｔｉｎｇ）」および「分泌（ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ）」という用語は、細胞が生成した細胞代謝産物を細胞の外側に移動させるあらゆる細胞プロセスを包含することが意図される。代謝産物もしくは小分子、特に細胞によって分泌、排出もしくは消費される種、または細胞を通って流される代謝産物は、病理学的または化学的侵入に対する細胞応答の機能的メカニズムに関与する。代謝産物はアポトーシスまたはネクローシスの結果として生成されることもある。

好ましい実施形態においては、処理細胞対未処理細胞における低分子量分子の変化のプロファイルを定めることによって、細胞または細胞活性の変化を測定する。異なる量、タイプもしくは濃度、持続時間または強度の心毒性化合物または潜在的心毒性化合物で処理した細胞同士の比較も含まれる。

たとえば糖、有機酸、アミノ酸、脂肪酸、および低分子量化合物などの細胞代謝産物の変化が測定されて、心筋細胞における生化学経路に対する特定の医薬品、環境要因、化合物および生物療法の影響を評価するために用いられる。スクリーニングされる低分子量化合物（すなわち代謝産物）は、炎症、消炎、血管拡張、神経保護、脂肪酸代謝、コラーゲンマトリックス分解、酸化ストレス、抗酸化活性、ＤＮＡ複製および細胞周期調節、メチル化、ヌクレオチド、炭水化物、アミノ酸および脂質の生合成などを含むがそれに限定されないさまざまな生物活性に応答して分泌される。分泌される低分子量分子は、インビボの生化学反応の前駆体、中間体および／または最終生成物である。分子の特定の部分集合における変化は特定の生化学経路に対応し、よって心毒性の生化学的影響を明らかにする。

本明細書に記載される「心筋細胞（ｃａｒｄｉｏｍｙｏｃｙｔｅ）」または「心筋細胞（ｃａｒｄｉｏｍｙｏｃｙｔｅｃｅｌｌ（ｓ））」という用語は、初代心筋細胞、心筋細胞前駆細胞、成人の心臓に由来するクローン心筋細胞、不死化心筋細胞、ヒト胚性幹細胞（ｈＥＳＣ）由来の心筋細胞、ヒト誘導多能性幹細胞（ｉＰＳ）由来の心筋細胞、または心筋細胞特異的マーカーを示すためにその細胞が心筋細胞特異的もしくは心筋細胞由来であることを病理学者、科学者もしくは検査技師が認識するようなあらゆる細胞を示す。

本明細書に記載される「心毒性」という用語は、心筋症、心疾患ならびに／または異常な心臓病態および生理機能を誘導する物質または処理、特に医薬品、生物製剤ならびにその他の化合物および環境要因を示す。本明細書において用いられるこの用語の定義に包含される心毒性の例は、薬物処理レジメンに起因するか、またはその結果である可能性のある、医者、心臓専門医または医学研究者によって認識される心臓異常を含む。

好ましい実施形態において、「化合物」または「試験化合物」という用語は、医薬品、環境要因、化合物および生物療法を含むがそれに限定されず、そこには抗体に基づく処理、ワクチン、または組み換えタンパク質および酵素が含まれる。特に好ましい実施形態において、心毒性化合物はタモキシフェン、ドキソルビシンおよびパクリタキセルを含む。さらなる実施形態においては、心毒性の可能性のある化合物を、すでに公知である心毒性化合物に対する代謝産物の類似性についてスクリーニングする。

「心筋症」という用語は、心筋の炎症および心機能の低下を含むがそれに限定されない心疾患を示す。心筋症は原発性または続発性に分類でき、さらに拡張型、肥大型および拘束型心筋症を含み得る。心臓腔は拡張および伸展される可能性があり（例、心臓拡張）、正常にポンピングしないことがある。心臓の電気伝導において、不整脈および撹乱と呼ばれる異常な心拍リズムも起こり得る。この状態においては、左室の筋肉量が大きくなるかまたは「肥大する」。

質量分析に基づくプラットフォームは、心毒性の候補バイオマーカーとしてペプチドおよびタンパク質を選択するための手段として提案されていたが、小分子代謝産物は対象ではなかった。たとえば、脳ナトリウム利尿ペプチド（ｂｒａｉｎｎａｔｒｉｕｒｅｔｉｃｐｅｐｔｉｄｅ：ＢＮＰ）およびＮ末端ｐｒｏＢＮＰ（Ｎ−ｔｅｒｍｉｎａｌｐｒｏＢＮＰ：ＮＴｐｒｏＢＮＰ）は、心不全の臨床的バイオマーカーである。圧力過負荷に応答して心室にＢＮＰホルモンおよび不活性ＮＴｐｒｏＢＮＰが主に分泌されるため、ラットにおける薬物性心肥大のマーカーとして研究されている。（Ｂｅｒｎａら、２００８，ＡｎａｌＣｈｅｍ８０：５６１−５６６を参照）。加えて、ミオシンのサブユニットの１つの２３ｋＤａアイソフォームであるミオシン軽鎖１（ｍｙｏｓｉｎｌｉｇｈｔｃｈａｉｎ１：Ｍｙｌ３）およびトロポニンは、薬物性の心毒性を予測するための心臓ネクローシスのバイオマーカーとして提案されている（Ａｄａｍｃｏｖａら、２００５，ＥｘｐｅｒｔＯｐｉｎｉｏｎｏｎＤｒｕｇＳａｆｅｔｙ４（３）：４５７−４７２を参照）。当該技術分野において、こうしたペプチドおよびタンパク質は、心筋症に伴う心筋の変性変化の産物であると認識されている。

心筋細胞における心毒性に対する候補バイオマーカーを同定するためのメタボロミクスアプローチの有用性を示すために本明細書で用いられる化合物のうちのあるものは、公知の心毒性化合物である。つまりこれらの化合物は、心毒性に対するメタボロミクスマーカーを検出するための試薬および方法を説明するためのものであり、ドキソルビシン、パクリタキセルおよびタモキシフェンを含む。よって、複数の薬物処理レジメンへの露出に応答して心筋細胞が分泌する低分子量分子代謝産物の評価は、これらの臨床的特徴によって合理化され得る心毒性の候補バイオマーカーの新規のプロファイルを提供する。

本明細書において用いられる「対照細胞」という用語は一般的に、心臓に由来しない細胞型を示す。好ましい実施形態において、対照細胞はヒト線維芽細胞を含む。

本明細書において用いられる「対照心筋細胞」という用語は、対照条件に露出された心筋細胞または心筋細胞由来の細胞を示す。

本明細書において用いられる「対照セット」という用語は、当業者が対照処理と認識するような条件に特定の細胞型を露出させることを示す。好ましい実施形態において、これは次の実験条件を含むがそれに限定されない：心臓細胞の無毒性化合物への露出、または非心臓細胞の心毒性化合物への露出。反対に、本明細書において用いられる「実験セット」は、たとえば特定の医薬品、生物製剤ならびにその他の化合物および環境要因などの対象化合物（例、試験化合物）に露出させた心臓特異的細胞を含む。

本明細書において用いられる「減算する」という用語は、実験細胞および対照細胞によって分泌された共通の細胞代謝産物を同定した後、特定の心毒性応答の代謝サインまたはバイオマーカープロファイルからそれら共通の代謝産物を選択的に除去することを示す。

心筋細胞が分泌する低分子量代謝産物を同定するとき、熟練した技術者または科学者は、たとえば細胞上清に分泌および／もしくは放出されたか、ならびに／または細胞抽出物中に存在する代謝産物などによって、ならびに分泌された分子の評価のために利用可能なさまざまなその他の方法によって、こうした代謝産物を測定できることを理解するだろう。同定される代謝産物は、細胞が排出する廃棄生成物であってもよい。

「試験化合物への露出」という語句は、個々の化合物に別々に露出されるか、または複数の化合物に順次および／もしくは集合的に露出される細胞サンプルを示してもよい。一実施形態において、細胞は個々の試験化合物に露出される。さらなる実施形態において、細胞は複数の化合物に露出される。代替的な実施形態において、細胞はいずれの化合物にも露出されない（すなわち対照）。細胞は試験化合物の存在下または不在下で培養されてもよい。

本明細書において用いられる「共通性のあるものを選択する」という語句は、２セット以上の細胞に共通して生成される分泌代謝産物を示す。よってたとえば、さまざまな細胞セット中の代謝産物が同定され、比較されて、共通のものが共通性のためにさらに選択されてもよい。

本明細書において用いられる「物理的分離方法」という用語は、本発明の方法に従って医薬品、環境要因、化合物および生物療法に露出された細胞が生成する低分子量分子の変化および差異のプロファイルを生成するために十分な、当業者に公知のあらゆる方法を示す。特定の実施形態において、物理的分離方法は、酸、塩基、脂質、糖、グリコシド、アミン、有機酸、脂質、アミノ酸、オキシム、エステル、ジペプチド、トリペプチド、脂肪酸、コレステロール、オキシステロール、グリセロール、ステロイド、および／またはホルモンを含むがそれに限定されない低分子量分子の検出を可能にする。特定の実施形態において、この分析は液体クロマトグラフィ高分解能質量分析（ＬＣ−ＭＳ）および／または液体クロマトグラフィ／エレクトロスプレーイオン化飛行時間型質量分析（ＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ）によって行なわれるが、本明細書に示される低分子量化合物は、代替的な分光法または当該技術分野において公知の他の方法を用いても検出できることが理解されるだろう。たとえば核磁気共鳴（ｎｕｃｌｅａｒｍａｇｎｅｔｉｃｒｅｓｏｎａｎｃｅ：ＮＭＲ）は、本発明の低分子量化合物を同定し得る別の方法である。当該技術分野における他の生体系にも類似の分析が適用されており（Ｗａｎｔら、２００５，ＣｈｅｍＢｉｏＣｈｅｍ６：１９４１−５１）、生体液において検出可能な疾患または毒性応答のバイオマーカーを提供している（Ｓａｂａｔｉｎｅら、２００５，Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ１１２：３８６８−８７５）。異なる機器は異なる低分子量化合物を検出し得ることが理解される。よってたとえば、ＬＣ−ＭＳおよび／またはＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳによってもたらされたプロファイルは、ＮＭＲによってもたらされたプロファイルと同じであっても異なっていてもよい。

「生物学的サンプル」は、インビトロで培養された細胞、患者のサンプル、またはインビトロで分散され培養された生検細胞を含むがそれに限定されない。「患者」はヒトであっても動物であってもよい。「患者のサンプル」は血液、血漿、血清、リンパ、尿、脳脊髄液、唾液またはあらゆるその他の生体液もしくは廃棄物を含むがそれに限定されない。

本明細書において用いられる「バイオマーカー」という用語はとりわけ、特に心毒性化合物への露出に関して実験細胞セットと対照細胞セットとの間で顕著な変化を示す、本明細書に示されるような低分子量化合物を示す。特定の実施形態において、バイオマーカーはたとえばＬＣ−ＭＳおよび／またはＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳなどを含む方法によって、上に示されるとおりに同定される。特定の実施形態においては、以下の低分子量分子が単独またはあらゆる有益な組み合わせで、心毒性のバイオマーカーとして本明細書において提供される：トリエチルアミン；ＮＮ−ジエチルアミン；ヘキシルアミン；ｐ−グルコシルオキシマンデロニトリル；（ｓ）−４−ヒドロキシマンデロニトリルベータ−Ｄ−グルコシド；１３，１４−ジヒドロＰＧＥ１（プロスタグランジンＥ１）；７−ケトコレステロール；１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３−２６，２３−ラクトン；ホルモノネチン７−Ｏ−グルコシド−６’’７−Ｏ−マロン酸塩；イソクロロゲン酸ｂ；１３−ジカフェオイルキナ酸；３−ヘキサプレニル−４−ヒドロキシ−５−メトキシ安息香酸；２−フェニルグリシン；（Ｅ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；（Ｚ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；ベタイン；２−エチルヘキシル−４−ヒドロキシ安息香酸塩；グリセロホスホコリン；Ｎ−アセチルガラクトサミン；ＣＧＰ５２６０８；ビオチン；ＤＬ−ホモシスチン；エテノデオキシアデノシン；キューイン；Ｎ−アセチルアスパルチルグルタミン酸；テトラヒドロコルチゾン；環状ホスファチジン酸；２−メトキシエストロン３−グルクロニド；ジアシルグリセロール；ケルセチン３−（２Ｇ−キシロシルルチノシド）；ナイアシンアミド；アスパラギン酸；イミノジアセテート；エリトリトール；Ｄ−トレイトール；Ｎ−アセチルセリン；Ｌ−グルタミン酸；Ｌ−４−ヒドロキシグルタミン酸セミアルデヒド；２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−アミノ吉草酸塩；Ｏ−アセチルセリン；ＤＬ−グルタミン酸塩；ＤＬ−グルタミン酸；２−アミノグルタル酸；グルタミン酸塩；Ｄ−グルタミン酸；３−ピリジンブタン酸；ノルサルソリノール；Ｄ−フェニルアラニン；Ｄ−アルファ−アミノ−ベータ−フェニルプロピオン酸；Ｌ−フェニルアラニン；３−メチルヒスチジン；１−メチルヒスチジン；（Ｒ）−Ｎ−メチルサルソリノール；（Ｓ）−Ｎ−メチルサルソリノール；対称ジメチルアルギニン；または非対称ジメチルアルギニン。好ましい実施形態において、本明細書の表２Ａ〜２Ｄに記載される低分子量分子は、単独またはあらゆる有益な組み合わせで用いられる、心毒性の信頼性高いバイオマーカーである。同定される低分子量分子の多くは一意の質量特徴サイズまたは中性質量によって同定されるが、いくつかの分子は化合物名によってさらに同定される。

本明細書において用いられる「代謝サイン」および「代謝プロファイル」という用語は、本発明の方法によって同定された１つまたは複数の代謝産物を示す。本発明に従う代謝サインおよびプロファイルは、心毒性の影響の分子「フィンガープリント」を提供して、心毒性である医薬品、環境要因、化合物および生物療法への露出後に顕著に変化した低分子量化合物を同定できる。特定の実施形態においては、代謝サインまたは代謝プロファイルを用いて化合物の心毒性を予測できる。代替的な実施形態において、代謝サインまたはプロファイルは、薬物処理レジメン、医薬品、環境要因、化合物または生物療法からの心毒性の影響を診断してもよい。

特定の実施形態において、試験化合物の心毒性は、単一の公知の心毒性バイオマーカーの心筋細胞分泌によって識別されてもよい。一例として、単一のマーカーはベタインまたはグリセロホスホコリンを含んでもよい。これは、単一の確立された心毒性化合物（例、ドキソルビシン）への露出に応答して分泌される代謝産物を含んでもよい。他の実施形態においては、２つまたはそれ以上の公知の心毒性化合物（例、ドキソルビシンおよびパクリタキセル、またはドキソルビシン、パクリタキセルおよびタモキシフェン）に応答して心筋細胞が一般的に生成する代謝サイン（すなわち１つまたは複数の低分子量代謝産物）の検出によって、心毒性が確認される。さらなる実施形態においては、表２Ａ〜２Ｄ中に提供されているか、または図４Ａ〜４ＡＧおよび図６〜１３のクロマトグラムに記載されている細胞代謝産物の１つまたは複数を含む心毒性の代謝サインが提供される。

統計分析のためのデータは、ＡｇｉｌｅｎｔＭａｓｓＨｕｎｔｅｒソフトウェア（製品Ｎｏ．Ｇ３２９７ＡＡ，ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＳａｎｔａＣｌａｒａ，ＣＡ）を用いてクロマトグラムから抽出した；代替的な統計分析法が用いられてもよいことが理解されるだろう。質量が１０ｐｐｍ以内であって２分間の保持期間以内に溶出されたとき、それらの質量を一緒にビニングした。ビニングされた質量は、異なるＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ分析にわたって同じ分子であるとみなされた（本明細書においては「正確な質量」と呼び、これは±１０ｐｐｍであると理解される）。データのビニングは、実験全体の質量の統計分析および比較のために必要である。単一サンプル内の同じ保持時間に同じ質量を有する複数のピークがＭａｓｓＨｕｎｔｅｒによって検出されたときは、それらを平均してデータ分析を補助した。天然の同位体分布を欠く質量、または１０００未満の絶対高度を有する質量は、分析の前にデータから取り除いた。このアッセイからの結果は、１０ｐｐｍ以内の注釈を付けられた値に従って評価される相対値を提供することによって、検出された分子量に対する同一性を提供することが理解されるだろう。よって１０ｐｐｍ以内の質量シフトは、たとえば異なる実験間または異なる機器の使用など、イオン化源および計測の違いのために、前に注釈を付けた特定の細胞代謝産物の同一性を定めることに矛盾しないと考えられる。

本明細書において用いられるとき、最初にデータを質量および保持時間によって分別する簡単なアルゴリズムを用いるＬＣ／ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ実行にわたって、質量は同じであるとみなされた。分別後に、ある化合物が０．１分以下の規則正しい保持時間差と、重み付けした式以下の質量差とを有するとき、その化合物は一意であるとみなされた。連続した質量は、１７５Ｄａ未満なら１０ｐｐｍ違わず、１７５Ｄａから３００Ｄａの範囲では７ｐｐｍ違わず、３００Ｄａより大きいときは５ｐｐｍ違わなかった。一連の測定値がこの定義に合うとき、それは同じ化合物からのものであるとみなされた。質量または保持時間のいずれかが上に挙げた限界よりも多く変動するとき、それは異なる化合物とみなされて新しい一意の名称が与えられた。

最も再現性のある質量特徴からのデータを、統計分析の前に対数底２で変換し、中央値を中央にした。統計分析は、オープンソースの統計プログラミングおよび分析ソフトウェアＲを用いて行なわれた。個々の質量特徴の統計的有意性は、並べ替えに基づく検定統計値またはウエルチＴ検定を用いて、対照と薬物処理との間に存在量の差は存在しないという帰無仮説の下で行なわれた。帰無仮説を検定するために、条件付き分布の正規近似を仮定した一元配置の並べ替えに基づくｔ検定が使用され、プログラミングコードの寄与パッケージであるＰｅｒｍｕｔａｔｉｏｎＴｅｓｔＦｒａｍｅｗｏｒｋ（Ｃｏｉｎ）ライブラリ内のＣｏｎｄｉｔｉｏｎａｌＩｎｆｅｒｅｎｃｅＰｒｏｃｅｄｕｒｅｓを用いて実施された。統計検定は、欠測値を補完するのではなく、自由度を下げる欠測値の置換なしに行なわれた。この一元配置検定法は、検定されるすべての特徴が正規分布を有すると仮定できないような複雑なデータセットの分析に理想的に適する（Ｈｏｔｈｏｒｎら、２００６，Ａｍｅｒ．Ｓｔａｔｉｓｔｉｃｉａｎ，６０：２５７−２６３）。偽発見率（ＦＤＲ）はＱ値推定量を用いて制御され（Ｓｔｏｒｅｙら、２００３，ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉ．，１００：９４４０−５）、Ｒにおけるｑ値（ｑｖａｌｕｅ）ライブラリを用いて実施された（Ｄａｂｎｅｙら、２００３，ｑｖａｌｕｅ：Ｑ−ｖａｌｕｅｅｓｔｉｍａｔｉｏｎｆｏｒｆａｌｓｅｄｉｓｃｏｖｅｒｙｒａｔｅｃｏｎｔｒｏｌ．Ｒｐａｃｋａｇｅｖｅｒｓｉｏｎ１．１０．０．，ｗｗｗ．ＣＲＡＮ．Ｒ−ｐｒｏｊｅｃｔ．ｏｒｇ）。

特定の実施形態において、心毒性バイオマーカーは、公知の心臓毒への露出に続いて心筋細胞が生成する細胞代謝産物の１つまたはコレクションに言及してもよい。心毒性代謝サインは、約１個、または約６個、または約１０個、または約２０個、または約３０個の異なって分泌された低分子量分子を含んでもよく、本明細書に開示される心毒性サインは約１個から約３０個の代謝産物を含み、本明細書の表２Ａ〜２Ｄに示される低分子量分子を含むが、前記心毒性サインは一般的に、実験試験化合物が心毒性であることを独立的に識別するために十分な数の代謝産物を含む。未処理細胞と処理細胞との間の代謝産物分泌の微分倍率変化（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌｆｏｌｄｃｈａｎｇｅ）は、各代謝産物によって変動し得ることが当業者に理解されるだろう。

以下の実施例は、本発明の特定の実施形態およびそのさまざまな用法を説明するためのものである。それらは説明の目的のためにのみ示されており、本発明を限定するものと解釈されるべきではない。

実施例１
心毒性薬剤への露出後の心臓特異的細胞の検証および心臓細胞死の測定
ヒト心筋細胞、成人の心臓に由来するクローン心筋細胞（Ｃｅｌｐｒｏｇｅｎ３６０４４−１５ａｔ，ＳａｎＰｅｄｒｏ，ＣＡ）または心臓前駆細胞を、心毒性の影響を有することが公知である薬理的化合物の変動用量で処理した。心筋細胞を、強い毒性物質であるドキソルビシンおよびパクリタキセル、ならびに弱い毒性物質であるタモキシフェンによって、２４時間または４８時間処理した。いくつかの組み合わせ処理レジメンは、相乗的な心毒性の影響を示すことが明らかになった（例、ドキソルビシンおよびトラスツズマブの併用療法についてはＰｅｎｔａｓｓｕｇｌｉａら、２００７，ＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌＣｅｌｌＲｅｓｅａｒｃｈ３１３：１５８８−１６０１を参照；パクリタキセルおよびドキソルビシンの併用療法についてはＲｏｂｅｒｔ，２００７，ＣａｒｄｉｏｖａｓｃＴｏｘｉｃｏｌ７：１３５−１３９を参照）。

これらの細胞が心臓由来であることは、心臓アルファアクチンタンパク質に対する抗体を用いた免疫組織化学によって確認した（図１）。細胞死のパーセンテージは、本質的に、かつ薬物処理の後に、トリパンブルー染色によって算出した（図２）。細胞死は、ドキソルビシンまたはパクリタキセル（５０〜５５％）で処理したヒト心筋細胞の方が、タモキシフェン（１８％）および未処理対照（７％）よりも有意に高かった。

実施例２
心毒性薬理物質に露出した心筋細胞によって生成される代謝産物の同定
心毒性化合物への露出の後に心筋細胞または心臓前駆体によって分泌される低分子量代謝産物を同定するために、上の実施例１に記載されるとおりの細胞をドキソルビシン、パクリタキセル、およびタモキシフェンによって２４時間または４８時間処理した。

処理細胞および未処理細胞からの細胞外培地を、メタボロミクス分析のための低分子量分子（＜３ｋＤ）の抽出のために、Ｃｅｚａｒら（２００７，ＳｔｅｍＣｅｌｌｓＤｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ１６：８６９−８８２、この出版物を引用により援用する）に記載されるとおりに処理した。各サンプル内に存在する低分子量分子の全スペクトルのイオン化および検出のために、細胞外低分子量分子調製物を液体クロマトグラフィに続くエレクトロスプレーイオン化飛行時間型（ＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ）質量分析によって分離した。より特定的には、ＥＳＩ＿Ｌｕｎａ＿ＨＩＬＩＣ＿９５ｔ０６ＯＡＣＮ＿１６ｍｉｎ法（ＨＩＬＩＣクロマトグラフィ）を用いてサンプルを分離した。以下に記載されるとおり（Ｃｅｚａｒら（２００７，同上）にも提供されている）、その後の脱アイソトープ（ｄｅｉｓｏｔｏｐｅｄ）ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ質量特徴のバイオインフォマティクスおよびインシリコマッピングによって、統計的差異を推測した。

簡単に言うと、Ａｇｉｌｅｎｔ６５２０Ａｃｃｕｒａｔｅ−ＭａｓｓＱ−ＴＯＦにおける拡張したダイナミックレンジおよびポジティブモードにおいて、イオン化（１００ｍ／ｚ〜１５００ｍ／ｚ）を得た。２つの独立した方法を用いて質量特徴を生成した。第１に、ＭａｓｓＨｕｎｔｅｒ定性分析を用いて、分子特徴抽出アルゴリズム（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＦｅａｔｕｒｅＥｘｔｒａｃｔｉｏｎａｌｇｏｒｉｔｈｍ：ＭＦＥ）を用いて質量特徴を生成した。ＭＦＥによって生成された特徴をＲにおいてビニングし、薬物処理に応答した蓄積の相違を分析した。さらに、ＡｇｉｌｅｎｔのＭａｓｓＨｕｎｔｅｒ定性分析ワークステーションを用いて、ＡｇｉｌｅｎｔデータファイルをｍｚＤａｔａファイルフォーマットに変換した。薬物の存在下で異なって存在する質量特徴ビンを見出すためにソフトウェアライブラリＸＣＭＳを用いて、ＲにおいてｍｚＤａｔａファイルを分析した。ＭａｓｓＨｕｎｔｅｒＭＦＥバージョン４４を用いて、ＭＦＥによって作成されたＭＨＤファイルをテキストファイルに変換した。このＭＨＤテキストファイルをＲにロードし、ファイル名、細胞系（Ｃｅｌｐｒｏｇｅｎ心筋細胞または溶媒）、プレート（０、１、２または３）、ウェル（溶媒、Ａ、ＢまたはＣ）、実験複製、細胞（上清、未培養培地または溶媒）、細胞培養継代数、薬物処理（１５ｕＭタモキシフェン、１５μＭパクリタキセル、対照、２６μＭドキソルビシン）、特徴保持時間グループ、保持時間、特徴中性質量、質量特徴質量標準偏差、存在量、飽和、高度、特徴におけるイオンの数、最小電荷、最大電荷、電荷数、幅、およびグループ特徴カウントに対応するメタデータを各ファイルに加えた。

細胞毒性薬物処理に応答して心筋細胞が分泌する代謝産物を同定するために、類似の細胞継代からの心筋細胞に対してメタボロミクス分析を行なった。細胞毒性薬物処理の間で共通する統計的に有意な特徴を識別した。対照および薬物処理心筋細胞のＬＣ−ＭＳサンプルの少なくとも２５％に存在した質量特徴を選択した。個々の質量特徴の統計的有意性は、スチューデントのｔ検定などの並べ替えに基づく検定統計値を用いて、対照と薬物処理との間に存在量の差は存在しないという帰無仮説の下で判定した。帰無仮説を検定するために、条件付き分布の正規近似を仮定した一元配置検定（Ｈｏｒｔｈｏｎら、２００６ａ，ＴｈｅＡｍｅｒｉｃａｎＳｔａｔｉｓｔｉｃｉａｎ６０（３）：２５７−２６３を参照）が用いられ、ＲにおけるＰｅｒｍｕｔａｔｉｏｎＴｅｓｔＦｒａｍｅｗｏｒｋ（Ｃｏｉｎ）ライブラリ内のＣｏｎｄｉｔｉｏｎａｌＩｎｆｅｒｅｎｃｅＰｒｏｃｅｄｕｒｅｓを用いて実施された（Ｈｏｒｔｈｏｎら、２００６ｂ，ＣｏｎｄｉｔｉｏｎａｌＩｎｆｅｒｅｎｃｅＰｒｏｃｅｄｕｒｅｓｉｎａＰｅｒｍｕｔａｔｉｏｎＴｅｓｔＦｒａｍｅｗｏｒｋ，Ｒｐａｃｋａｇｅｖｅｒｓｉｏｎ０．４−５，ＣＲＡＮ．Ｒ−ｐｒｏｊｅｃｔ．ｏｒｇを参照）。統計検定は、対数底２で変換し、中央値を正規化した存在量値に対して行なわれ、欠測値が存在するときには、自由度を減じる欠測値の置換なしに行なわれた。偽発見率（ＦＤＲ）はＱ値推定量を用いて（Ｓｔｏｒｅｙら、２００３，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ１００：９４４０−４５）ラムダ０によって制御され、Ｒにおけるｑ値ライブラリを用いて実施された（Ｄａｂｎｅｙら、２００３，ｑｖａｌｕｅ：Ｑ−ｖａｌｕｅｅｓｔｉｍａｔｉｏｎｆｏｒｆａｌｓｅｄｉｓｃｏｖｅｒｙｒａｔｅｃｏｎｔｒｏｌ．Ｒｐａｃｋａｇｅｖｅｒｓｉｏｎｓ１．１０；ＣＲＡＮ．Ｒ−ｐｒｏｊｅｃｔ．ｏｒｇ；ＲＤｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔＣｏｒｅＴｅａｍ．Ｒ：ＡＬａｎｇｕａｇｅａｎｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｆｏｒＳｔａｔｉｓｔｉｃａｌＣｏｍｐｕｔｉｎｇ．Ｖｉｅｎｎａ，Ａｕｓｔｒｉａ：ＲＦｏｕｎｄａｔｉｏｎｆｏｒＳｔａｔｉｓｔｉｃａｌＣｏｍｐｕｔｉｎｇ：２００７．ＩＳＢＮ３−９０００５１−０７−０；ｗｗｗ．Ｒ−ｐｒｏｊｅｃｔ．ｏｒｇ）。統計を行なった後、ＦＤＲ調整したｐ値に基づいて、各薬物処理に対する対照の比較から統計的に有意な質量特徴の母集団（ｕｎｉｖｅｒｓｅ）を作成した。ブール論理を用いて、異なる薬物処理間に共通する統計的に有意な特徴を見出した。細胞生存率に影響する薬物（ＤＯＸ、ＰＡＣ）においては統計的に有意な差を示したが、（ＴＡＭ）においては統計的に有意ではなかった質量特徴の共通部分を選択した。この共通部分は、細胞毒性処理において統計的に有意な変化を示したが、非細胞毒性処理においては統計的に有意な変化を示さなかったものであるため、心毒性に関連する共通の質量特徴を表したものである。

上に記載したソフトウェアおよび方法によって行なわれるような、データを質量および保持時間によって分別する簡単なアルゴリズムを用いるＬＣ／ＥＳＩ−ＭＳ実行にわたって、質量は同じであるとみなされた。処理細胞に対して用いられた基準は、検出器効率を補償するための滑り質量スケール（ｓｌｉｄｉｎｇｍａｓｓｓｃａｌｅ）に基づくものであった。流速のため、１．５ｍｉｎの保持時間差によって１７５Ｄａ未満のときに（０．００００１×質量）以内であるとき、１７６〜３００Ｄａのときに（０．０００００７×質量）以内であるとき、および３００Ｄａより大きいときに（０．０００００５×質量）以内であるとき、その質量は同等であるとみなした。一連の測定値がこの定義に合うとき、それは各実験内の同じ化合物からのものであるとみなされた。質量または保持時間のいずれかが上に挙げた限界よりも多く変動するとき、その化合物は異なるものであるとみなされて異なるビン記載が与えられた。特定的には、７７４，６４５の特徴がＭａｓｓＨｕｎｔｅｒソフトウェアによって同定され、ＬＣ／ＭＳ実行当たりでは平均６４５５および中央値５８６９の特徴であった。次いで質量特徴を質量および保持時間グループ化によって分別し、違いのなかった質量および保持グループ化の各セットに対して特徴ＩＤビンを作成した。

ＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳによって検出された各化合物の中性の正確な質量および／または実験化学式の候補同一性について、公共の検索可能なデータベースＭＥＴＬＩＮ（ｍｅｔｌｉｎ．ｃｒｉｐｓ．ｅｄｕ）、ＴｈｅＨｕｍａｎＭｅｔａｂｏｌｏｍｅＤａｔａｂａｓｅ（ｈｍｄａ．ｃａ）、ＫｙｏｔｏＥｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａｏｆＧｅｎｅｓａｎｄＧｅｎｏｍｅｓ（ｇｅｎｏｍｅ．ｊｐ／ｋｅｇ）、およびＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＭａｇｎｅｔｉｃＲｅｓｏｎａｎｃｅＢａｎｋ（ｂｍｒｂ．ｗｉｓｃ．ｅｄｕ／ｍｅｔａｂｏｌｏｍｉｃｓ）に照会した。ＬＣ−ＭＳ測定した質量シグナルは、その正確な質量が百万分率で１０（０．００００１×質量）以内であれば、データベース内に存在する小分子と一致した。正確な質量測定値および化学式は一般的に、特定のサイズまでの小分子に対しては曖昧ではない。比較ＬＣ−ＭＳに対して、分析グレードの化学標準物質がＳｉｇｍａから販売されていた。実験に用いられた条件付き培地のアリコートに１ｍＭの化学標準物質を加えた後、上述のとおりに標準ＬＣ−ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳを行なった。条件付き培地に加えられた標準化合物に対する中性の正確な質量および保持時間を用いて、Ａｎａｌｙｓｔソフトウェア（Ａｇｉｌｅｎｔ）を用いて実験サンプル中のピークを再抽出した。

各化合物に対する用量は公表された標準に基づき、それは可能な限り治療的循環レベルに等しくした（表１を参照）。上記の濃度を用いたトリパンブルー排除／細胞死アッセイは、これらの用量が公表された所見を実証することを示し、実施例１に記載されるとおり、ドキソルビシンおよびパクリタキセルは有意に高い細胞死を誘導した。（図２）。

最初の研究で観察された代謝産物の傾向を図５に示しており、ここでは強い心毒性化合物が類似の質量特徴（低分子量分子）を示し、よって管理されていない多変量分析（ＮＩＰＡＬＳＰｒｉｎｃｉｐａｌＣｌｕｓｔｅｒＡｎａｌｙｓｉｓ）の際にともにクラスター化する。

同定された特徴を表２Ａ〜２Ｄに提供する。具体的には、表２Ａはパクリタキセル処理およびドキソルビシン処理の間に共通性を有する同定質量特徴を提供する。表２Ｂはパクリタキセル処理、ドキソルビシン処理、およびタモキシフェン処理の間に共通性を有する同定質量特徴を提供する。表２Ｄは、ドキソルビシンで処理した後にパクリタキセルで処理した心臓前駆細胞から分泌された同定質量特徴を提供する。

前に報告されたアプローチを用いて、新規または注釈を付けられなかった低分子量分子について、代謝産物分泌における統計的に有意な変化を調べることができる（Ｃｅｚａｒｅｔａｌ，２００７，ＳｔｅｍＣｅｌｌｓａｎｄＤｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ１６：８６９−８８２）。最初の実験は、ヒト代謝産物の部分集合が、心筋症の強い誘導物質である医薬品すなわちドキソルビシンおよびパクリタキセルに応答して、タモキシフェンなどの弱い／中程度の誘導物質よりも確かに統計的に有意に変化することを示した。（図３）。

データは、心毒性の程度が異なる次の３つの実験処理へのヒト心筋細胞（Ｃｅｌｐｒｏｇｅｎ３６０４４−１５ａｔ，ＳａｎＰｅｄｒｏ，ＣＡ）の露出に続くｎ＝１０７の質量分析注入からもたらされた：（１．）ドキソルビシン；（２．）パクリタキセル；および（３．）タモキシフェン（弱い毒性物質）。偽発見率（ＦＤＲ０．０５）調整による統計分析の後、ドキソルビシンに応答して１８７の有意な特徴（例、候補バイオマーカー）を同定し、パクリタキセルに応答して１８５の有意な特徴を同定し、タモキシフェンに応答して１４８の有意な特徴を同定した。好ましい実施形態において記載したとおり、強い心毒性物質ドキソルビシンおよびパクリタキセルに対して、７３の統計的に有意な特徴が共通していることが見出された。（図３および表２Ａ）。

化学データベース中のこうした特徴の正確な中性質量の推定注釈によって、いくつかの候補バイオマーカーがたとえばＮＡＤＰＨ_２：酸素酸化還元酵素活性、ＵＤＰグルクロン酸ベータ−Ｄ−グルクロノシルトランスフェラーゼ、解糖、糖新生および酸化ストレスなどのエネルギー代謝経路に位置することが明らかになった。これらの結果は、これらの特定の化合物に対する心毒性のメカニズムについての公表された報告と一致する。

３つの確立された心臓毒、すなわちパクリタキセル、ドキソルビシンおよびタモキシフェンへのヒト心筋細胞の露出後に同定された低分子量分子の強い頑強性および高い再現性が観察された。２つまたは３つの心臓毒に応答して心筋細胞が分泌する代謝産物の同定によって、候補バイオマーカーを豊富にすることができ、心毒性の代謝サインが提供された。

加えて、請求される本発明は開示された実施形態に制限されることは意図されない。前述の開示は本発明の特定の実施形態を強調するものであって、それと同等の代替物のすべての変更は添付の請求項において示される本発明の趣旨および範囲内にあることが理解されるべきである。

Claims

試験化合物の存在下または不在下で心筋細胞において異なって生成される細胞代謝産物を同定するインビトロの方法であって、前記方法は、
ａ）心筋細胞を試験化合物に接触させるステップと、
ｂ）前記心筋細胞から分泌された１０ダルトンから１５００ダルトンの複数の細胞代謝産物を分離するステップと、
ｃ）前記試験化合物に接触させなかった心筋細胞に比べて、前記試験化合物に接触させた心筋細胞から異なって分泌された１０ダルトンから１５００ダルトンの１つまたは複数の細胞代謝産物を同定するステップと
を含み、ここで、前記細胞代謝産物は、以下：
に示される細胞代謝産物のうちの１つまたは複数を含む、方法。
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させた心筋細胞においてより大量に生成される、請求項１に記載の方法。
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させなかった心筋細胞においてより大量に生成される、請求項１に記載の方法。
前記細胞代謝産物は物理的分離方法を用いて分離される、請求項１に記載の方法。
前記物理的分離方法は、液体クロマトグラフィ／エレクトロスプレーイオン化飛行時間型質量分析（ＬＣ／ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ）である、請求項４に記載の方法。
候補の前記細胞代謝産物は中性質量によって同定される、請求項１に記載の方法。
前記試験化合物は心毒性化合物である、請求項１に記載の方法。
前記細胞代謝産物は、トリエチルアミン；ＮＮ−ジエチルアミン；ヘキシルアミン；ｐ−グルコシルオキシマンデロニトリル；（ｓ）−４−ヒドロキシマンデロニトリルベータ−Ｄ−グルコシド；１３，１４−ジヒドロＰＧＥ１（プロスタグランジンＥ１）；７−ケトコレステロール；１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３−２６，２３−ラクトン；ホルモノネチン７−Ｏ−グルコシド−６’’−Ｏ−マロン酸塩；イソクロロゲン酸ｂ；１３−ジカフェオイルキナ酸；３−ヘキサプレニル−４−ヒドロキシ−５−メトキシ安息香酸；２−フェニルグリシン；（Ｅ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；（Ｚ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；ベタイン；２−エチルヘキシル−４−ヒドロキシ安息香酸塩；グリセロホスホコリン；Ｎ−アセチルガラクトサミン；ＣＧＰ５２６０８；ビオチン；ＤＬ−ホモシスチン；エテノデオキシアデノシン；キューイン；Ｎ−アセチルアスパルチルグルタミン酸；テトラヒドロコルチゾン；環状ホスファチジン酸；２−メトキシエストロン３−グルクロニド；ジアシルグリセロール；ケルセチン３−（２Ｇ−キシロシルルチノシド）；ナイアシンアミド；アスパラギン酸；イミノジアセテート；エリトリトール；Ｄ−トレイトール；Ｎ−アセチルセリン；Ｌ−グルタミン酸；Ｌ−４−ヒドロキシグルタミン酸セミアルデヒド；２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−アミノ吉草酸塩；Ｏ−アセチルセリン；ＤＬ−グルタミン酸塩；ＤＬ−グルタミン酸；２−アミノグルタル酸；グルタミン酸塩；Ｄ−グルタミン酸；３−ピリジンブタン酸；ノルサルソリノール；Ｄ−フェニルアラニン；Ｄ−アルファ−アミノ−ベータ−フェニルプロピオン酸；Ｌ−フェニルアラニン；３−メチルヒスチジン；１−メチルヒスチジン；（Ｒ）−Ｎ−メチルサルソリノール；（Ｓ）−Ｎ−メチルサルソリノール；対称ジメチルアルギニン；または非対称ジメチルアルギニンのうちの１つまたは複数を含む、請求項１に記載の方法。
前記方法によって同定される前記細胞代謝産物は、心毒性化合物に対する心筋細胞応答に特有の代謝プロファイルを構成する、請求項１に記載の方法。
前記方法によって同定される細胞代謝産物は、試験化合物に対する心筋細胞応答に特有の代謝プロファイルを構成する、請求項１に記載の方法。
複数の心毒性試験化合物の存在下または不在下で心筋細胞によって異なって生成される細胞代謝産物を同定するためのインビトロの方法であって、前記方法は、
ａ）心筋細胞の複数の実験セットの各々を異なる心毒性試験化合物に別々に接触させるステップと、
ｂ）細胞の各実験セットから分泌された１０ダルトンから１５００ダルトンの複数の細胞代謝産物を分離するステップと、
ｃ）前記心毒性試験化合物に接触させなかった心筋細胞に比べて、前記心毒性試験化合物の各々に接触させた心筋細胞から異なって分泌された１０ダルトンから１５００ダルトンの１つまたは複数の細胞代謝産物を同定するステップと、
ｄ）前記試験化合物に露出された心筋細胞の実質的にすべての前記実験セットによって異なって生成された１つまたは複数の細胞代謝産物を同定するステップと
を含み、ここで、前記細胞代謝産物は、以下：
に示される細胞代謝産物のうちの１つまたは複数を含む、方法。
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させた心筋細胞においてより大量に生成される、請求項１１に記載の方法。
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させなかった心筋細胞においてより大量に生成される、請求項１１に記載の方法。
前記細胞代謝産物は物理的分離方法を用いて分離される、請求項１１に記載の方法。
前記物理的分離方法は、液体クロマトグラフィ／エレクトロスプレーイオン化飛行時間型質量分析（ＬＣ／ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ）である、請求項１４に記載の方法。
候補の前記細胞代謝産物は中性質量によって同定される、請求項１１に記載の方法。
前記細胞代謝産物は、トリエチルアミン；ＮＮ−ジエチルアミン；ヘキシルアミン；ｐ−グルコシルオキシマンデロニトリル；（ｓ）−４−ヒドロキシマンデロニトリルベータ−Ｄ−グルコシド；１３，１４−ジヒドロＰＧＥ１（プロスタグランジンＥ１）；７−ケトコレステロール；１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３−２６，２３−ラクトン；ホルモノネチン７−Ｏ−グルコシド−６’’−Ｏ−マロン酸塩；イソクロロゲン酸ｂ；１３−ジカフェオイルキナ酸；３−ヘキサプレニル−４−ヒドロキシ−５−メトキシ安息香酸；２−フェニルグリシン；（Ｅ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；（Ｚ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；ベタイン；２−エチルヘキシル−４−ヒドロキシ安息香酸塩；グリセロホスホコリン；Ｎ−アセチルガラクトサミン；ＣＧＰ５２６０８；ビオチン；ＤＬ−ホモシスチン；エテノデオキシアデノシン；キューイン；Ｎ−アセチルアスパルチルグルタミン酸；テトラヒドロコルチゾン；環状ホスファチジン酸；２−メトキシエストロン３−グルクロニド；ジアシルグリセロール；ケルセチン３−（２Ｇ−キシロシルルチノシド）；ナイアシンアミド；アスパラギン酸；イミノジアセテート；エリトリトール；Ｄ−トレイトール；Ｎ−アセチルセリン；Ｌ−グルタミン酸；Ｌ−４−ヒドロキシグルタミン酸セミアルデヒド；２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−アミノ吉草酸塩；Ｏ−アセチルセリン；ＤＬ−グルタミン酸塩；ＤＬ−グルタミン酸；２−アミノグルタル酸；グルタミン酸塩；Ｄ−グルタミン酸；３−ピリジンブタン酸；ノルサルソリノール；Ｄ−フェニルアラニン；Ｄ−アルファ−アミノ−ベータ−フェニルプロピオン酸；Ｌ−フェニルアラニン；３−メチルヒスチジン；１−メチルヒスチジン；（Ｒ）−Ｎ−メチルサルソリノール；（Ｓ）−Ｎ−メチルサルソリノール；対称ジメチルアルギニン；または非対称ジメチルアルギニンのうちの１つまたは複数を含む、請求項１１に記載の方法。
前記方法によって同定される前記細胞代謝産物は、心毒性化合物に対する心筋細胞応答に特有の代謝プロファイルを構成する、請求項１１に記載の方法。
前記試験化合物はドキソルビシン（ｄｏｘｉｒｕｂｉｃｉｎ）、タモキシフェンまたはパクリタキセルである、請求項１８に記載の方法。
前記試験化合物はドキソルビシン（ｄｏｘｉｒｕｂｉｃｉｎ）、タモキシフェンまたはパクリタキセルである、請求項９に記載の方法。
前記細胞代謝産物は、トリエチルアミン；ＮＮ−ジエチルアミン；ヘキシルアミン；ｐ−グルコシルオキシマンデロニトリル；（ｓ）−４−ヒドロキシマンデロニトリルベータ−Ｄ−グルコシド；１３，１４−ジヒドロＰＧＥ１（プロスタグランジンＥ１）；７−ケトコレステロール；１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３−２６，２３−ラクトン；ホルモノネチン７−Ｏ−グルコシド−６’’−Ｏ−マロン酸塩；イソクロロゲン酸ｂ；１３−ジカフェオイルキナ酸；３−ヘキサプレニル−４−ヒドロキシ−５−メトキシ安息香酸；２−フェニルグリシン；（Ｅ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；（Ｚ）−４−ヒドロキシフェニルアセトアルデヒド−オキシム；ベタイン；２−エチルヘキシル−４−ヒドロキシ安息香酸塩；グリセロホスホコリン；Ｎ−アセチルガラクトサミン；ＣＧＰ５２６０８；ビオチン；ＤＬ−ホモシスチン；エテノデオキシアデノシン；キューイン；Ｎ−アセチルアスパルチルグルタミン酸；テトラヒドロコルチゾン；環状ホスファチジン酸；２−メトキシエストロン３−グルクロニド；ジアシルグリセロール；ケルセチン３−（２Ｇ−キシロシルルチノシド）；ナイアシンアミド；アスパラギン酸；イミノジアセテート；エリトリトール；Ｄ−トレイトール；Ｎ−アセチルセリン；Ｌ−グルタミン酸；Ｌ−４−ヒドロキシグルタミン酸セミアルデヒド；２−オキソ−４−ヒドロキシ−５−アミノ吉草酸塩；Ｏ−アセチルセリン；ＤＬ−グルタミン酸塩；ＤＬ−グルタミン酸；２−アミノグルタル酸；グルタミン酸塩；Ｄ−グルタミン酸；３−ピリジンブタン酸；ノルサルソリノール；Ｄ−フェニルアラニン；Ｄ−アルファ−アミノ−ベータ−フェニルプロピオン酸；Ｌ−フェニルアラニン；３−メチルヒスチジン；１−メチルヒスチジン；（Ｒ）−Ｎ−メチルサルソリノール；（Ｓ）−Ｎ−メチルサルソリノール；対称ジメチルアルギニン；または非対称ジメチルアルギニンのうちの１つまたは複数を含む、請求項９または１８に記載の方法。
心毒性応答の代謝プロファイルに存在する少なくとも１つの細胞代謝産物を、心毒性化合物との接触または心毒性化合物の投与の結果生じる、患者における心毒性の影響の指標とするための方法であって、前記方法は、
ａ）１０ダルトンから１５００ダルトンの分子量を有する１つまたは複数の細胞代謝産物の存在について、患者からの生物学的サンプルをアッセイするステップと、
ｂ）心毒性応答の代謝プロファイルに存在する少なくとも１つの細胞代謝産物を同定するステップと
を含み、ここで、前記細胞代謝産物は、以下：
に示される細胞代謝産物のうちの１つまたは複数を含む、方法。
試験化合物の心毒性を評価するインビトロの方法であって、
ａ）心筋細胞を前記試験化合物に接触させるステップと、
ｂ）前記心筋細胞から分泌された１０ダルトンから１５００ダルトンの複数の細胞代謝産物を分離するステップと、
ｃ）もし前記試験化合物に接触させた心筋細胞から異なって分泌された１０ダルトンから１５００ダルトンの少なくとも１つまたは複数の細胞代謝産物が、請求項９または１８に記載の心毒性の代謝プロファイルを構成するならば、前記試験化合物を心毒性化合物として同定するステップと
を含み、ここで、前記細胞代謝産物は、以下：
に示される細胞代謝産物のうちの１つまたは複数を含む、方法。
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させた心筋細胞においてより大量に生成される、請求項２３に記載の方法。
前記細胞代謝産物の少なくとも１つは、前記試験化合物に接触させなかった心筋細胞においてより大量に生成される、請求項２３に記載の方法。
前記細胞代謝産物は物理的分離方法を用いて分離される、請求項２３に記載の方法。
前記物理的分離方法は、液体クロマトグラフィ／エレクトロスプレーイオン化飛行時間型質量分析（ＬＣ／ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ）である、請求項２６に記載の方法。
候補の前記細胞代謝産物は中性質量によって同定される、請求項２３に記載の方法。