JP5879163B2

JP5879163B2 - 悪性腫瘍細胞の検出方法

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Publication number: JP5879163B2
Application number: JP2012055796A
Authority: JP
Inventors: 海老沼　宏幸; 宏幸海老沼; 耕平田久保; 深町　勇; 勇深町; 彩舟吉田; 英明武城; 知昭中世古; 齋藤　康; 康齋藤
Original assignee: Sekisui Medical Co Ltd
Current assignee: Sekisui Medical Co Ltd
Priority date: 2010-07-15
Filing date: 2012-03-13
Publication date: 2016-03-08
Anticipated expiration: 2031-07-15
Also published as: US20130115229A1; US9969802B2; EP2594943A1; JPWO2012008594A1; KR101879225B1; KR20130091720A; EP2594943A4; CN103003695A; EP2594943B1; JP4955836B2; WO2012008594A1; CN103003695B; JP2012144550A

Description

本発明は、悪性腫瘍細胞の検出方法に関する。

腫瘍細胞の表面に特異的に発現しているタンパク質は、患者の末梢血、骨髄細胞、組織などを用いたがん診断の細胞表面マーカーとして有用であり、その発現の有無を検査することにより、がん治療の効果判定や再発のモニタリングにも応用が可能である。
さらに、近年、腫瘍細胞の表面に特異的に発現しているタンパク質を標的とした抗体医薬の開発が盛んに行われている。抗体医薬による治療法は、正常細胞に発現していないか、もしくは発現量が非常に僅かな抗原を標的として選択することで、正常細胞に与える影響が最小限で、かつ腫瘍細胞に選択性の高い治療効果が期待できる治療法として注目されている。抗体医薬の有効成分である抗体の作用機序（メカニズム）は多様であり、例えばＢ細胞に特異的に発現しているＣＤ２０抗原に対して作製されたモノクローナル抗体を使用するＢ細胞リンパ腫の治療薬であるリツキシマブ（ｒｉｔｕｘｉｍａｂ）は、腫瘍細胞に対して、アポトーシスの誘導、抗体依存性細胞傷害（ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔｃｅｌｌｕｌａｒｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ：ＡＤＣＣ）活性、補体依存性細胞傷害（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ：ＣＤＣ）活性などの作用を有する。また、抗ＣＤ２０モノクローナル抗体に放射性同位元素を結合させたイットリウム（⁹⁰Ｙ）イブリツモマブ（ｉｂｕｒｉｔｕｍｏｍａｂ）チウキセタンは、抗体による腫瘍細胞への攻撃に加えて放射線による治療効果を見込め、再発や難治性Ｂリンパ腫の治療の有用性が確認されている。

しかしながら、腫瘍の治療に有用なモノクローナル抗体は、転移性乳癌、急性骨髄性白血病、難治性慢性リンパ腫、非ホジキンリンパ腫、多発性骨髄腫など、いくつかの腫瘍種に限られているのが現状である。
従って、がんの診断や抗体医薬によるがん治療に応用可能な、腫瘍細胞に特異的な新しい細胞表面マーカーの探索が盛んに進められている。

ＬＲ１１（ＬＤＬｒｅｃｅｐｔｏｒｒｅｌａｔｉｖｅｗｉｔｈ１１ｌｉｇａｎｄ−ｂｉｎｄｉｎｇｒｅｐｅａｔｓ）は、ＬＤＬ受容体ファミリーに特徴的な構造を有する新規なＬＤＬ受容体類似タンパク質として同定されたものである（特許文献１、非特許文献１）。ＬＲ１１は、平滑筋細胞の遊走及び増殖によって形成された血管内膜肥厚部位に、特異的に発現が亢進していることが報告されている（非特許文献２）。本発明者らは、哺乳動物の血液中に可溶性ＬＲ１１が存在していること、及び動脈硬化性疾患患者血液中の可溶性ＬＲ１１濃度が健常者と比較して有意に高値であること見出している（特許文献２）。さらに、本発明者らは血液や骨髄液中の可溶性ＬＲ１１を簡便で正確に測定する方法（特許文献３、非特許文献４）を開発し、様々な疾患における可溶性ＬＲ１１の濃度を測定した結果、悪性腫瘍、特に白血病や悪性リンパ腫のような造血器腫瘍疾患で異常高値を示すことを確認し、血液中の可溶性ＬＲ１１が新たな腫瘍マーカーになることを見出した（特許文献４）。しかしながら、すべての造血器腫瘍疾患患者の血液中において可溶性ＬＲ１１が異常高値を示すとは限らず、その理由はいまだ明らかではない。

一方、非特許文献５には、広範囲のヒト由来の組織（神経組織、肝臓、脳、末梢白血球）においてＬＲ１１のｍＲＮＡが発現していることが報告されている。さらにヒト骨髄細胞中の幹細胞が存在するＣＤ３４＋ＣＤ３８−画分（骨髄性白血病細胞）において、ＬＲ１１のｍＲＮＡ発現が亢進していること、およびデータは示されていないが、一部の造血器腫瘍培養細胞にもＬＲ１１のｍＲＮＡが発現している旨の記述がある。しかし、非特許文献５は培養細胞を含めた血液前駆細胞における網羅的な遺伝子発現解析をしたのみであって、タンパク質レベルでＬＲ１１を発現している組織についての記載はなく、造血器腫瘍とＬＲ１１ｍＲＮＡの発現の関係についての記載も全くない。

特開平９−１６３９８８号公報国際公開第ＷＯ２００８／１５５８９１号国際公開第ＷＯ２００９／１１６２６８号特願２００９−２８５４９２号公報

Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１９９６；２７１，２４７６１−２４７６８Ａｒｔｅｒｉｏｓｃｌｅｒ．Ｔｈｒｏｍｂ．Ｖａｓｃ．Ｂｉｏｌ．１９９９；１９，２６８７−２６９５Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．２００８；１１８，２７３３−２７４６Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．２００９；５５，１８０１−１８０８ＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌＨｅｍａｔｏｌｏｇｙ２０００；２８，１２８６−１２９６

本発明の課題は、悪性腫瘍細胞表面に発現しているタンパク質マーカーを測定することによる悪性腫瘍細胞の検出方法を提供することにある。
また本発明の課題は、悪性腫瘍細胞の表面タンパク質に特異的な抗体を有効成分とする悪性腫瘍治療薬を提供することにある。

本発明者らは、抗ＬＲ１１抗体を作製し、その反応性を検討してきたところ、造血器腫瘍細胞株溶解液中のＬＲ１１及び当該造血器腫瘍細胞株の培養上清中に分泌されたＬＲ１１をそれぞれ検出できることを見出した。また、骨髄組織を免疫染色すると、血清中の可溶性ＬＲ１１濃度が高値の造血器腫瘍患者においてＬＲ１１が陽性となることだけでなく、血清中の可溶性ＬＲ１１濃度が健常域（非特許文献４などによる）の造血器腫瘍患者においても、ＬＲ１１が陽性となる場合があることを見出した。
さらに、本発明者らは、作製した抗ＬＲ１１抗体を用いてフローサイトメトリーを行ったところ、多くの造血器腫瘍由来細胞株の表面にＬＲ１１が発現していることを初めて確認した。また、急性骨髄性白血病患者の末梢血中の未熟な単球画分にＬＲ１１が発現していること、及び急性リンパ性白血病患者の末梢血中の成熟したＢ細胞ではＬＲ１１は発現していないが、分化過程の未熟なＢ細胞画分にはＬＲ１１が発現していることを確認した。一方、上皮性悪性腫瘍由来細胞株においても、細胞表面にＬＲ１１が発現していることを確認した。かかる知見から、被験試料中の細胞表面のＬＲ１１を測定することで、血中の可溶性ＬＲ１１濃度が有意に高値になっていない場合においても悪性腫瘍細胞の存在を特異的に検出できること、及び、ＬＲ１１が悪性腫瘍の細胞表面に発現していることから、抗体医薬の標的分子となりうることを見出し、本発明を完成した。

すなわち、本発明は、被験試料中の細胞表面のＬＲ１１を測定することを特徴とする悪性腫瘍細胞の検出方法を提供するものである。
また本発明は、被験試料中の細胞表面のＬＲ１１を測定することを特徴とする悪性腫瘍の診断方法を提供するものである。
また本発明は、悪性腫瘍細胞表面のＬＲ１１に特異的な抗体を有効成分とする悪性腫瘍治療薬を提供するものである。
また本発明は、悪性腫瘍を治療するための、悪性腫瘍細胞表面のＬＲ１１に特異的な抗体を提供するものである。
さらに本発明は、悪性腫瘍細胞表面のＬＲ１１に特異的な抗体の、悪性腫瘍治療薬製造のための使用を提供するものである。
さらに本発明は、悪性腫瘍細胞表面のＬＲ１１に特異的な抗体を投与することを特徴とする悪性腫瘍の治療方法を提供するものである。

本発明によれば、侵襲性の低い手法によって、悪性腫瘍、特に造血器腫瘍又は上皮性悪性腫瘍が高精度に検出でき、悪性腫瘍の存在及び重篤度、治療方法の選択及び効果判定、再発の危険性及び再発の有無を判断するにあたって、有用な情報を得ることができる。また、悪性腫瘍細胞を特異的に攻撃することにより悪性腫瘍を治療することができる。

各種造血器腫瘍細胞株におけるＬＲ１１の発現を、細胞溶解液を用いてウェスタンブロット法で検出した図である。各種造血器腫瘍細胞株における細胞表面でのＬＲ１１の発現を、フローサイトメトリーで解析した結果を示した図である。健常者及び急性骨髄単球性白血病患者の末梢血における細胞表面でのＣＤ１４とＬＲ１１の発現を、フローサイトメトリーで解析した結果を示した図である。健常者及び急性リンパ性白血病患者の末梢血における細胞表面でのＣＤ１９とＬＲ１１の発現を、フローサイトメトリーで解析した結果を示した図である。急性白血病患者由来骨髄組織におけるＬＲ１１の発現を、免疫染色で検出した図である。胆嚢癌由来細胞株における細胞表面でのＬＲ１１の発現を、フローサイトメトリーで解析した結果を示した図である。ＮＢ−４細胞株をマウス腹腔内に免疫し、マウス血清中の抗ＬＲ１１抗体価を確認したグラフである。各種上皮性悪性腫瘍細胞株における細胞表面でのＬＲ１１の発現を、膜画分溶解液を用いて、ウェスタンブロット法で検出した図である。悪性リンパ腫患者由来リンパ節組織におけるＬＲ１１の発現を、免疫染色で検出した図である。

本明細書において「ＬＲ１１」とは、特にことわらない限り抗ＬＲ１１抗体との反応性を有するタンパク質を指す。「全長ＬＲ１１」や「可溶性ＬＲ１１」として公知のタンパク質や、それらが部分的に断片化されたり、修飾されたものをいう。また、本明細書において、「測定」と「検出」の語は、同じ意味を有し、特にことわらないかぎり「定性」測定、「定量」測定、「半定量」測定のいずれの概念も含む。また、「定量」、「半定量」を総称して「定量等」ということがある。
本明細書において悪性腫瘍の診断というときは、悪性腫瘍の存在、重篤度、治療方法の選択もしくは効果判定、再発の危険性又は再発の有無を判定することを含む。

本発明の悪性腫瘍細胞の検出方法は、被験試料中の細胞表面のＬＲ１１を測定することを特徴とする。被験試料としては、悪性腫瘍細胞の存在が疑われる生体由来試料であればよく、末梢血液、骨髄液、組織切片等が挙げられる。また被験試料は、ヒトだけでなく、マウス、ラット、ウサギ、ブタ、イヌ、ネコなどの哺乳動物由来のものが挙げられる。

本発明の検出対象となる悪性腫瘍としては、造血器腫瘍及び上皮性悪性腫瘍が挙げられる。ここで造血器腫瘍としては白血病及び悪性リンパ腫が挙げられる。白血病には急性白血病及び慢性白血病が含まれ、悪性リンパ腫には非ホジキンリンパ腫が挙げられる。一方、上皮性悪性腫瘍としては、胃癌、肝臓癌、膵臓癌、肺癌、前立腺癌、膀胱癌、食道癌、乳癌、子宮頸癌、卵巣癌、結腸癌、大腸癌、腎臓癌、胆嚢癌、神経腫瘍（グリオーマ）、悪性黒色腫（メラノーマ）などが挙げられる。本発明による具体的な検出対象としては、造血器腫瘍においては、白血病のうち、急性白血病がより好ましく、悪性リンパ腫のうち、非ホジキンリンパ腫がより好ましい。また、上皮性悪性腫瘍においては、肝臓癌、膵臓癌、結腸癌、大腸癌、胆嚢癌が好ましい。

細胞表面のＬＲ１１の測定方法としては、細胞表面のＬＲ１１に特異的に結合するタンパク質、例えば抗ＬＲ１１抗体、ＬＲ１１レセプター関連タンパク質（ＲＡＰ）を用いる方法が挙げられる。このうち、抗ＬＲ１１抗体を用いて、細胞表面のＬＲ１１を測定する手段が精度、特異性の点で好ましい。

細胞表面のＬＲ１１と反応する抗ＬＲ１１抗体としては、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体のいずれでも良いが、モノクローナル抗体が好ましく用いられる。当該抗体の作製は周知の方法にて行うことができる。例えば、ポリクローナル抗体の作製には、免疫する動物としてマウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ヤギ、ヒツジ、ニワトリなどが用いられる。ポリクローナル抗体としては、抗血清が好ましく、抗血清は、抗原を動物の皮下、皮内、腹腔などに一回又は複数回投与した後、免疫された動物の血清から得ることができる。タンパク質、ペプチドを抗原として用いる時は、免疫賦活効果を有する補液との混合物の免疫がより好ましい。
また、モノクローナル抗体の作製には、公知のモノクローナル抗体作製方法、例えば、長宗香明、寺田弘共著、「単クローン抗体」廣川書店（１９９０年）や、ＪａｍｅＷ．Ｇｏｌｄｉｎｇ， ‘‘ＭｏｎｏｃｌｏｎａｌＡｎｔｉｂｏｄｙ’ ’，３ｒｄｅｄｉｔｉｏｎ，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ（１９９６年）に従い作製することができる。また、ＤＮＡ免疫法によりモノクローナル抗体を作製することもでき、Ｎａｔｕｒｅ１９９２Ｍａｒ１２；３５６１５２−１５４やＪ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．ＭｅｔｈｏｄｓＭａｒ１；２４９１４７−１５４を参考に作製することができる。

抗体作製に用いられる抗原としては、ＬＲ１１、又はその一部断片（ペプチド）、ＬＲ１１を細胞表面に発現している細胞、あるいはＬＲ１１をコードするｃＤＮＡを組み込んだ発現ベクターを用いることができる。ＬＲ１１の高次構造を認識するモノクローナル抗体を得るためには、ヒトＬＲ１１全長遺伝子を挿入した発現ベクターが最適であるが、そのほか、ＬＲ１１配列の一部領域が挿入された発現ベクターも使用できる。ＤＮＡ免疫法は、上記発現ベクターを単独又は混合して、免疫動物に対して様々な遺伝子導入法（例えば筋肉注射、エレクトロポレーション、遺伝子銃など）のいずれかを用いて、動物（マウス、ラット等）の皮下に注入し、細胞内に取り込ませることにより実施できる。

当該モノクローナル抗体は、常法に従い作製したハイブリドーマを培養し、培養上清から分離する方法、該ハイブリドーマをこれと適合性のある哺乳動物に投与し、腹水として回収する方法により製造できる。

抗ＬＲ１１抗体は、必要に応じて抗血清、培養上清あるいは腹水より精製して使用することができる。抗ＬＲ１１抗体を精製・単離する手法としては、従来公知の方法、例えば、硫酸アンモニウム沈殿法などの塩析、セファデックスなどによるゲルろ過法、イオン交換クロマトグラフィー法、プロテインＡカラムなどによるアフィニティ精製法などがある。

抗ＬＲ１１抗体を用いた被験試料中の細胞表面のＬＲ１１の具体的な測定方法は特に限定されないが、フローサイトメトリー、免疫組織染色法、細胞膜画分のウエスタンブロット法などが挙げられ、このうちフローサイトメトリーが好ましい。フローサイトメトリーを用いる場合には、蛍光色素で標識された抗ＬＲ１１抗体を試料中の細胞集団と反応させ、生理食塩水やその他の培地で洗浄した後、ベクトン・ディキンソン社その他から商業的に入手可能な蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）を用いて蛍光染色パターンの解析及び細胞の選別を行う。なお、細胞表面のＬＲ１１と結合することを限度に、上記抗ＬＲ１１抗体の代替として、ＲＡＰ等のＬＲ１１に親和性を有する物質を使用することも可能であり、そのような態様は本発明の範囲に含まれる。

本発明のＬＲ１１の測定においては、細胞表面のＬＲ１１の存在の有無を測定する定性的な測定のほかに、較正基準となるＬＲ１１濃度又は量と比較することにより定量測定もしくは半定量測定をすることもできる。この場合、較正基準となるＬＲ１１濃度又は量は、濃度又は量が既知のＬＲ１１発現細胞やＬＲ１１発現細胞株の溶解液、培養上清あるいはＬＲ１１高濃度血液より回収したＬＲ１１、リコンビナントＬＲ１１、あるいは抗体作製において免疫原として使用しうる合成ペプチド等を使用して設定することができる。

本発明の方法において、例えば、被験試料中のＬＲ１１の測定結果（定性、定量等）を、予め測定しておいた健常者群や腫瘍の種類などで括られた特定のがん患者群の測定結果（定性、定量等）と対比させることにより、病態に関する詳細な情報を得ることができる。例えば、悪性腫瘍細胞が存在している場合、重篤化している場合、あるいは再発の危険性がある場合には、被験試料中の細胞表面ＬＲ１１濃度又は量は、健常者群や特定のがん患者群の測定値に対して高値である場合があり、両者を対比させることにより、悪性腫瘍の存在又は重篤度、治療方法の選択又は効果判定、再発の危険性又は再発の有無を判定することができる。

測定方法、判定方法の具体的な例として、以下の手段が挙げられる。フローサイトメトリーでの測定においては、陽性・陰性のカットオフを定め、一定の細胞集団中における陽性細胞の存在比率により上記の判定をすることができる。また、免疫組織染色での測定においては、陽性・陰性のカットオフを定め、一定の組織範囲における陽性領域が占める比率（広狭）や、陽性領域の局在状態、正常領域との境界の状態などを画像解析することにより上記の判定をすることができる。また、上記した判定において、後記するＬＲ１１以外の細胞表面マーカーと組み合わせるなど、従来公知の方法を使用して、判定精度を向上させることができる。

前記した悪性腫瘍の重篤度とは、がんがどの程度進行しているかの指標になるものである。本発明において、「悪性腫瘍の存在又は重篤度を判定する」とは、例えば、造血器腫瘍の場合は、ＷＨＯ分類で、白血病や悪性リンパ腫が詳細に分類され、悪性度も評価されていることから、腫瘍細胞表面のＬＲ１１の測定結果に基づき、これらの分類に区分することを含む。また、非ホジキンリンパ腫の場合は、ＷＨＯ分類で、細胞増殖の速度により「高悪性度」、「中悪性度」、及び「低悪性度」に分類されおり、腫瘍細胞表面のＬＲ１１の測定結果に基づき、これらの分類に区分することを含む。各悪性度それぞれに区分される非ホジキンリンパ腫の代表的なものに、濾胞性リンパ腫（低悪性度）、びまん性大細胞型Ｂリンパ腫（中〜高悪性度）、Ｔ細胞リンパ芽球性リンパ腫（高悪性度）が挙げられている。また、上皮性悪性腫瘍に関しては、腫瘍の大きさと進展度、所属リンパ節への転移状況、及び遠隔転移の有無によるＴＮＭ分類という国際的な病期分類に関する指標が使用され、さらにこの分類をもとに、がんの進行度と広がりの程度を一度に表わすことが出来るステージ分類が使われており、腫瘍細胞表面のＬＲ１１の測定結果に基づき、これらの分類に区分することを含む。

治療方法の選択又は効果判定は、白血病芽球の骨髄細胞中の比率の変化や発症した腫瘍の大きさの変化を見ることで評価することができる。又、再発の危険性については、治療により細胞表面ＬＲ１１に関する指標（濃度、量、陽性細胞の存在比率、組織における陽性領域の比率など）が正常域に下がらない場合に再発の危険性が高いと判断すること、さらに再発の有無については、間欠期や治療による寛解の後に、前記した細胞表面ＬＲ１１に関する指標が上昇あるいは増加し始めた場合に、腫瘍が再び発生している恐れが高い、と評価することができる。

現在、白血病の診断は、末梢血を用いた血液形態検査により異常が認められた場合に骨髄穿刺して普通染色を行い診断を確定させ、さらに詳細な分類をするには細胞表面の抗原解析検査が行われている。本発明の抗ＬＲ１１抗体を用いた被験試料中の細胞表面のＬＲ１１の測定方法によれば、末梢血を用いた検査において白血病細胞の検出精度を向上させることができる。また、前記の悪性腫瘍細胞の存在等を判定するにあたっては、細胞表面ＬＲ１１の測定値だけでなく、他の公知の細胞表面マーカーと組み合せることによって、より精度の高い判断をすることができる。

血液細胞では造血幹細胞が様々な系統の細胞に分化する際に、細胞分化成熟度に応じ発現する抗原基の種類や発現時期が変化する。造血器細胞の表面には抗原レセプター、細胞接着分子、サイトカインレセプター、補体レセプター、Ｆｃレセプターなど種々の分子が存在しており、これらをマーカーとして細胞の帰属を推測することができる。また、白血病の病型診断では、細胞化学的手法が使用され、ペルオキシダーゼ反応（ＰＯＤ）を利用してリンパ性白血病か骨髄性白血病かの分類が行われる。急性白血病分類の１つであるＦＡＢ分類のＭ０は、ＰＯＤ３％以下であり、従来であればリンパ系白血病に分類されていたが、現在では細胞表面抗原を検索し，マーカーのＣＤ１３もしくはＣＤ３３が陽性でＣＤ１９、ＣＤ２０が陰性であれば骨髄性白血病として治療が開始される。Ｍ７もＭ０と同様、ＰＯＤ３％以下であり，表面抗原検索が重要である。リンパ性白血病や悪性リンパ腫では，骨髄性白血病のように形態学的特徴がそれほど明確でないため、細胞表面抗原検索はさらに重要な検査項目となる。このように、細胞表面形質の検索が腫瘍細胞の帰属の決定に重要な役割を果たしており、ＷＨＯ分類では、すべての造血器腫瘍の免疫表現型が記載されている。これら従来の方法に本発明のＬＲ１１を細胞表明マーカーとして組み合わせることにより、さらに詳細に病態を把握するための情報を得ることが可能になる。なお、上記した白血病の診断や分類等に関しては、例えば、浅野茂隆ら監修、「三輪血液病学」文光堂（２００６年）などに詳細に記載されており、本発明の測定を実施する際、参照できる。

本発明により、悪性腫瘍細胞表面にはＬＲ１１が発現することが確認されたので、悪性腫瘍細胞表面のＬＲ１１を標的分子とする分子標的治療、具体的には、ＬＲ１１に特異的な抗体を用いた悪性腫瘍の治療が可能である。上記の分子標的治療は、抗ＬＲ１１抗体を有効成分とする悪性腫瘍治療薬、いわゆる抗体医薬の投与によって行うことができる。なお、本明細書において、「悪性腫瘍治療薬」と「抗体医薬」は、特に区別せず、同義で使用している。
上記抗体医薬において当該抗ＬＲ１１抗体は、放射性同位元素、抗がん剤あるいは毒素など（以下、総称して「抗がん剤等」ということがある）を担持させる担体として使用することができる。ここでは抗ＬＲ１１抗体は、標的分子（ＬＲ１１）が発現している悪性腫瘍細胞（標的細胞）へ抗がん剤等を運搬するキャリアーとして働く。抗ＬＲ１１抗体に担持させる抗がん剤等としては放射性同位元素が好ましく、⁹⁰Ｙ（イットリウム９０）、¹³¹Ｉ（ヨウ素１３１）が好適に使用される。

上記抗体医薬において抗ＬＲ１１抗体が細胞傷害活性を有する場合には、直接殺細胞効果を得ることができる。最近の知見によれば、抗体医薬の作用機序において細胞傷害活性が重要と考えられており、悪性腫瘍細胞表面に発現するＬＲ１１に結合し、細胞傷害活性を有する抗体が好ましい。かかる抗体は、前記のように作製された抗ＬＲ１１抗体を用いて細胞傷害活性をスクリーニングすることにより得られる。なお、本発明における、「細胞傷害」とは、何らかの形で、細胞に病理的な変化をもたらすことをいい、ＡＤＣＣ活性やＣＤＣ活性に基づく直接的な細胞の殺傷害にとどまらず、ＤＮＡの切断や塩基の二量体の形成、染色体の切断、細胞分裂装置の損傷、各種酵素活性の低下などあらゆる細胞の構造や機能上の損傷をいう。本発明における「細胞傷害活性」とは上記細胞傷害を引き起こすことをいう。また、本発明の悪性腫瘍治療薬の対象となる悪性腫瘍は、前記の検出対象と同様である。

本発明の悪性腫瘍治療薬（抗体医薬）に用いられる抗ＬＲ１１抗体は、ＬＲ１１と特異的に結合することを限度として、特に制限はない。具体的には、マスウなど免疫動物由来の抗体、治療対象とする哺乳動物と同じ動物由来の抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、完全ヒト抗体などを挙げることができる。これらは、投与対象である哺乳動物への投与量、投与頻度、抗原性などを考慮し、上記から適宜選択することができる。抗体医薬の投与対象がヒトである場合には、キメラ抗体、ヒト化抗体、完全ヒト抗体を用いるのが好ましい。前記キメラ化、ヒト化等は、公知の方法によって行うことができる。

上記したＡＤＣＣ活性やＣＤＣ活性は、公知の方法を用いることにより、抗ＬＲ１１抗体に付与あるいは増強させることができる。ＡＤＣＣ活性及び／又はＣＤＣ活性を抗ＬＲ１１抗体に付与あるいは増強させる方法としては、例えば、抗体のＦｃ領域のアミノ酸配列を改変する方法（ＳｈｉｅｌｄｓＲ．Ｌ．，ｅｔ．ａｌ．；Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７６，６５９１−６６０４（２００１））、Ｆｃ領域中の糖鎖を改変してＦｃγ受容体ＩＩＩＡへの結合力を高める方法（ＵｍａｎａＰ．，ｅｔ．ａｌ；Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１７，１７６−１８０（１９９９）、ＳｈｉｅｌｄｓＲ．Ｌ．，ｅｔ．ａｌ，；Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７７２６７３３−２６７４０（２００２）、ＳｈｉｎｋａｗａＴ．，ｅｔ．ａｌ．；Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７８，３４６６−３４７３（２００３））、Ｆｃ領域をタンデムに多量体化する方法（国際公開ＷＯ２００７／１０００８３）、ＣＤＣ活性を増強する能力を有するＦｃ断片を導入する方法（国際公開ＷＯ２００６／１１４７００）などが挙げられる。

また、抗ＬＲ１１抗体の中から、腫瘍細胞におけるＬＲ１１の生物活性を中和あるいは阻害する抗体を選択すれば、例えば、悪性腫瘍細胞にアポトーシスを誘導することを作用機序とする抗体医薬とすることもできる。

ｉｎｖｉｔｒｏでの抗ＬＲ１１抗体による腫瘍細胞におけるＬＲ１１の生物活性の中和活性は、例えば、ＬＲ１１を過剰発現している細胞の培養系に、種々の濃度で抗ＬＲ１１抗体を添加し、ＬＲ１１が有する接着や遊走活性の抑制程度を測定することにより評価することができる。また、腫瘍細胞の抗がん剤感受性の変化を測定することよっても評価することができる。また、ＬＲ１１を過剰発現している上皮性悪性腫瘍細胞を用いる場合にはフォーカス形成、コロニー形成及びスフェロイド増殖に対する抑制活性を測定することで評価することもできる。

ｉｎｖｉｔｒｏでの抗ＬＲ１１抗体による腫瘍細胞の傷害活性は例えば、ＬＲ１１を過剰発現している細胞に対して抗ＬＲ１１抗体の示す抗体依存性細胞傷害活性、補体依存性細胞傷害活性又は補体依存性細胞性細胞傷害活性を測定することで評価できる。例えば、ＬＲ１１を過剰発現している細胞を培養し、培養系に種々の濃度で抗ＬＲ１１抗体を添加し、さらにマウス等の脾臓細胞を添加して適当時間培養後のＬＲ１１過剰発現細胞に対する細胞死誘導率を測定することで評価することができる。

ｉｎｖｉｔｒｏでの実験動物を利用した抗ＬＲ１１抗体の腫瘍に対する治療効果は、例えば、ＷＴ１遺伝子トランスジェニックマウスなどの白血病モデル動物のうち、ＬＲ１１を過剰に発現しているトランスジェニックモデル動物に抗ＬＲ１１抗体を投与し、腫瘍細胞の変化を測定することで評価できる。このようにして得られたＬＲ１１の生物活性を中和する抗体又はＬＲ１１を発現する腫瘍細胞を特異的に傷害する抗体は、医薬として特にがんの治療を目的とした抗体医薬の有効成分として有用である。

本発明は、治療に有効な量の抗ＬＲ１１抗体と薬学上許容される希釈剤、担体、可溶化剤、乳化剤、保存剤及び／又は補助剤を含む医薬組成物も提供する。

本発明の医薬組成物において許容される製剤に用いる物質としては好ましくは投与量や投与濃度において、医薬組成物を投与される者に対して非毒性のものが好ましい。

本発明の医薬組成物は、ｐＨ、浸透圧、粘度、透明度、色、等張性、無菌性、安定性、溶解率、徐放率、吸収率、浸透率を変えたり、維持したり、保持したりするための製剤用の物質を含むことができる。製剤用の物質として以下のものを挙げることができるが、これらに制限されない：グリシン、アラニン、グルタミン、アスパラギン、アルギニン又はリジン等のアミノ酸類、抗菌剤、アスコルビン酸、硫酸ナトリウム又は亜硫酸水素ナトリウム等の抗酸化剤、リン酸、クエン酸、ホウ酸バッファー、炭酸水素、トリス−塩酸（Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ）溶液等の緩衝剤、マンニトール等の充填剤、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）等のキレート剤、カフェイン、ポリビニルピロリジン、β−シクロデキストリンやヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン等の錯化剤、グルコース、マンノース又はデキストリン等の増量剤、単糖類、二糖類やグルコース、マンノースやデキストリン等の他の炭水化物、着色剤、香味剤、希釈剤、乳化剤やポリビニルピロリジン等の親水ポリマー、低分子量ポリペプチド、塩形成対イオン、塩化ベンズアルコニウム、安息香酸、サリチル酸、チメロサール、フェネチルアルコール、メチルパラベン、プロピルパラベン、クロルヘキシジン、ソルビン酸又は過酸化水素等の防腐剤、グリセリン、プロピレングリコール又はポリエチレングリコール等の溶媒、マンニトール又はソルビトール等の糖アルコール、懸濁剤、ＰＥＧ、ソルビタンエステル、ポリソルビテート２０やポリソルビテート８０等ポリソルビテート、トリトン（Ｔｒｉｔｏｎ）、トロメタミン（ｔｒｏｍｅｔｈａｍｉｎｅ）、レシチン又はコレステロール等の界面活性剤、スクロースやソルビトール等の安定化増強剤、塩化ナトリウム、塩化カリウムやマンニトール、ソルビトール等の弾性増強剤、輸送剤、希釈剤、賦形剤、及び／又は薬学上の補助剤。これらの製剤用の物質の添加量は、抗ＬＲ１１抗体の重量に対して０．０１〜１００倍、特に０．１〜１０倍添加するのが好ましい。製剤中の好適な医薬組成物の組成は当業者によって、適用疾患、適用投与経路などに応じて適宜決定することができる。

医薬組成物中の賦形剤や担体は液体でも固体でもよい。適当な賦形剤や担体は注射用の水や生理食塩水、人工脳脊髄液や非経口投与に通常用いられている他の物質でもよい。中性の生理食塩水や血清アルブミンを含む生理食塩水を担体に用いることもできる。医薬組成物にはｐＨ７．０〜８．５のＴｒｉｓバッファーやｐＨ４．０〜５．５の酢酸バッファーやそれらにソルビトールや他の化合物を含むこともできる。本発明の医薬組成物は選択された組成で必要な純度で適当な薬剤として、凍結乾燥品あるいは液体として準備される。抗ＬＲ１１抗体を含む医薬組成物はスクロースのような適当な賦形剤を用いた凍結乾燥品として成型されることもできる。

本発明の医薬組成物は非経口投与用に調製することもできるし、経口による消化管吸収用に調製することもできる。製剤の組成及び濃度は投与方法によって決定することができるし、本発明の医薬組成物に含まれる、抗ＬＲ１１抗体のＬＲ１１に対する親和性、即ち、ＬＲ１１に対する解離定数（Ｋｄ値）に対し、親和性が高い（Ｋｄ値が低い）ほど、ヒトへの投与量を少なく薬効を発揮することができるので、この結果に基づいて本発明の医薬組成物の人に対する投与量を決定することもできる。投与量は、ヒト型抗ＬＲ１１抗体をヒトに対して投与する際には、約０．１〜１００ｍｇ／ｋｇを１〜３０日間に１回投与すればよい。

本発明の医薬組成物の形態としては、点滴を含む注射剤、坐剤、経鼻剤、舌下剤、経皮吸収剤などが挙げられるが、点滴を含む注射剤が好ましい。

次に実施例を挙げて本発明をさらに詳細に説明する。

実施例１各種造血器腫瘍細胞株のＬＲ１１発現の確認
各種造血器腫瘍細胞株でのＬＲ１１発現を、ＬＲ１１の部分アミノ酸配列を有する合成ペプチドを免疫して作製した抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ａ２−２−３：特許文献３）によるウェスタンブロット法で確認した。細胞株は、急性骨髄性白血病由来３株（ＨＬ−６０、ＭＬ−２、ＮＢ−４）、急性リンパ性白血病由来３株（ＣＣＲＦ−ＳＢ、ＭＯＬＴ−４、ＮＡＬＬ−１）、悪性リンパ腫由来２株（Ｄａｕｄｉ、Ｕ９３７）の合計８種を用いた。これらの細胞株は、ＨＴ培地（１５％ｆｅｔａｌｂｏｖｉｎｅｓｅｒｕｍＨＴｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ、ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ／ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎを含むＲＰＭＩ−１６４０）に懸濁し、５％炭酸ガスインキュベーター内で３７℃にて適当な時間培養し、増殖させた。それぞれの細胞株の細胞数をカウントし、１×１０⁷個となるように分取後、１％プロテアーゼインヒビター（シグマアルドリッチ社製；Ｐ８３４０）を含むＲＩＰＡバッファー（２５ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌｐＨ７．６，１５０ｍＭＮａＣｌ，１％ＮＰ−４０，１％Ｓｏｄｉｕｍｄｅｏｘｙｃｈｏｌａｔｅ，０．１％ＳＤＳ）を、加えて溶解させた。不溶物を遠心分離にて除去した後、細胞溶解物中のタンパク質濃度を測定し、１レーン当たり２０μｇ分をＳＤＳ含有還元条件下で煮沸処理した。該処理液をＳＤＳ−ＰＡＧＥ（２−１５％）の各レーンにアプライし電気泳動した。泳動終了後、ゲルよりタンパク質をＰＶＤＦ膜へ転写し、一次抗体として抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ａ２−２−３）を反応させ、マウスＩｇＧＡＢＣキット（Ｖｅｃｔｏｒ社製）を用いてＬＲ１１を検出した。
その結果、各細胞株の細胞溶解液中に、分子量で２３０ｋＤａより少し大きい位置に、若干大きさの異なる２本のバンドが認められた。

実施例２各種造血器腫瘍細胞株のフローサイトメトリー
実施例１で解析した細胞株８種について、細胞表面にＬＲ１１が発現しているか否かを、フローサイトメトリーにて解析した。各細胞株５×１０⁵個をＳｔａｉｎｉｎｇＭｅｄｉｕｍ（１％ＦＢＳ／ＰＢＳ）に浮遊させ、１５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上清を除去し、ペレットに１ｍｇ／ｍＬＦＩＴＣ標識抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ｍ３：特許文献３）を３μＬ添加し、４℃で６０分間反応させた。細胞をＳｔａｉｎｉｎｇＭｅｄｉｕｍにて２回洗浄後、使用説明書に従いＪＳＡＮ（Ｂａｙｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いて、フローサイトメトリー解析を実施した。ＦＩＴＣ標識抗ＬＲ１１モノクローナル抗体の陰性コントロールには、正常マウスＩｇＧ（ＢＤｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社製）を用いた。その結果を図２に示す。実施例１でＬＲ１１の発現が確認された８株の内、ＨＬ−６０、ＭＬ−２、ＮＢ−４、ＭＯＬＴ−４、ＣＣＲＦ−ＳＢ、Ｕ９３７の６株については、強陽性から弱陽性の反応が見られたことから、これらの細胞株の表面には、ＬＲ１１が発現していることが確認された。

実施例３急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）患者の末梢血のフローサイトメトリー
急性骨髄単球性白血病患者（ＦＡＢ分類：Ｍ４）の末梢血からＦｉｃｏｌｌ−ＰａｑｕｅＰＬＵＳ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて単核球を分離し、ＬＲ１１が細胞表面に発現しているか否かを、実施例２に準じて、フローサイトメトリーによる解析を行った。陰性コントロールは、健常者の末梢血を用いた。それぞれの細胞株５×１０⁵個をＳｔａｉｎｉｎｇＭｅｄｉｕｍに浮遊させ、１５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上清を除去し、ペレットに１ｍｇ／ｍＬＦＩＴＣ標識抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ｍ３）並びにＰＥ標識抗ＣＤ１４抗体（ＢＤｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社製）をそれぞれ３μＬ添加し、４℃で６０分間反応させた。細胞をＳｔａｉｎｉｎｇＭｅｄｉｕｍにて２回洗浄後、使用説明書に従いＪＳＡＮ（Ｂａｙｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いて、フローサイトメトリー解析を実施した。その結果を図３に示す。
健常者の末梢血中の白血球では、単球の表面マーカーであるＣＤ１４の陽性画分にＬＲ１１が発現していることがわかり、同様に、急性骨髄単球性白血病患者の末梢血中の白血病細胞でも、やはりＣＤ１４陽性の単球系の芽球でＬＲ１１が発現していることが分かった。白血病では、単芽球や前芽球などの未熟な単球が多いことから、ＬＲ１１は健常者に見られる成熟した単球のみならず、白血病細胞である未熟な単球にも発現していることが分かった。

実施例４急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）患者の末梢血のフローサイトメトリー
急性リンパ性白血病患者（ＦＡＢ分類：Ｌ２）の末梢血からＦｉｃｏｌｌ−ｐａｑｕｅＰＬＵＳ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて単核球を分離し、ＬＲ１１が細胞表面に発現しているか否かを、実施例２に準じて、フローサイトメトリーによる解析を行った。陰性コントロールは、健常者の末梢血を用いた。それぞれの細胞株５×１０⁵個をＳｔａｉｎｉｎｇＭｅｄｉｕｍに浮遊させ、１５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上清を除去し、ペレットに１ｍｇ／ｍＬＦＩＴＣ標識抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ｍ３）並びにＰＥ標識抗ＣＤ１９抗体（ＢＤｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社製）をそれぞれ３μＬ添加し、４℃で６０分間反応させた。細胞をＳｔａｉｎｉｎｇＭｅｄｉｕｍにて２回洗浄後、使用説明書に従いＪＳＡＮ（Ｂａｙｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いて、フローサイトメトリー解析を実施した。その結果を図４に示す。
健常者の末梢血由来の白血球では、Ｂ細胞の表面マーカーであるＣＤ１９陽性画分においてＬＲ１１はほとんど陰性であったのに対して、急性リンパ性白血病患者の末梢血由来の白血球では、白血病細胞化してＣＤ１９陽性となるリンパ芽球細胞の多くでＬＲ１１が陽性となることが判明した。

実施例５急性白血病患者由来骨髄組織の免疫染色
急性リンパ性白血病（ＡＬＬ）患者１名（血清中可溶性ＬＲ１１濃度４０７ｎｇ／ｍＬ）並びに急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）患者３名（各血清中可溶性ＬＲ１１濃度７０，６，８ｎｇ／ｍＬ）の骨髄組織に対する免疫染色を行った。陰性コントロールは、正常マウスＩｇＧを用いた。組織切片はパラフィン包埋した病理検体を、ミクロトームを用いて、厚さ４μｍに薄切し作製した。作製した切片はキシレンで脱パラフィンをして、エタノールで水和処置後、以下の方法で免疫染色を行った。組織切片をクエン酸バッファー（ｐＨ６．０）中に浸し、マイクロウェーブ処置を行うことで抗原を賦活化した。次に、内在性のペルオキシダーゼをブロックするために、切片を０．３％過酸化水素含有メタノール液で３０分間処理した。その後、ＰｒｏｔｅｉｎＢｌｏｃｋ（Ｄａｋｏ社製）ならびにＡｖｉｄｉｎ／ｂｉｏｔｉｎｂｌｏｃｋｉｎｇｋｉｔ（Ｖｅｃｔｏｒ社製）を用いてブロッキング処理を行った。次に、１０μｇ／ｍＬの抗ＬＲ１１モノクローナル抗体を（Ａ２−２−３）切片に乗せ、４℃で一晩反応させた。ＴＢＳ（５０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭＮａＣｌ）で洗浄後、５００倍希釈（終濃度１．１４ｎｇ／ｍＬ）したｂｉｏｔｉｎ−ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄｒａｂｂｉｔａｎｔｉ−ｍｏｕｓｅＩｇＧ（Ｄａｋｏ社製）と室温で３０分反応させた。洗浄後、Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅｃｏｎｊｕｇａｔｅｄｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ（Ｎｉｃｈｉｒｅｉ社製）と室温で５分反応させ、ＴＢＳで洗浄し、発色液（０．３ｍｇ／ｍＬｄｉａｍｉｎｏｂｅｎｚｉｄｉｎｅ，０．００６％過酸化水素、５０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．６））で発色させた。最後に、Ｍａｙｅｒ'ｓＨｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ（Ｍｕｔｏ社製）を用いて核染色を行い、エタノール処理にて脱水並びにキシレンで透徹後、Ｍａｌｉｎｏｌ（Ｍｕｔｏ社製）で封入した。その結果を図５に示す。
実施例１に記載の抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ａ２−２−３）を用いた免疫組織染色結果から、血清中可溶性ＬＲ１１濃度が高い患者由来の組織だけでなく、正常域の患者由来組織でも、ＬＲ１１の発現が認められるという興味深い知見が得られた。実施例３及び４で示した末梢血の未分化な単球やＢ細胞の表面での発現検出以外に、組織切片におけるＬＲ１１の発現を検出することは、治療の効果判定や再発のモニタリングに適用できる可能性を示唆している。また、通常は末梢血にがん細胞が検出されない悪性リンパ腫などでは、腫瘍の組織切片による精密検査が行われていることから、適用の価値は高いと考えられる。

実施例６上皮性悪性腫瘍細胞株のフローサイトメトリー
上皮性悪性腫瘍の中から、血清中可溶性ＬＲ１１を高濃度に検出する例が多い胆嚢癌について、胆嚢癌由来細胞株２種（ＯＣＵＧ−１、ＮＯＺ）を用い、実施例２に準じて、細胞表面にＬＲ１１が発現しているか否かを、フローサイトメトリーにて解析した。培養後トリプシン処理、ナイロンメッシュを通した細胞を用いた。各細胞株５×１０⁵個をＳｔａｉｎｉｎｇＭｅｄｉｕｍに浮遊させ、１５００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上清を除去し、ペレットに１ｍｇ／ｍＬＦＩＴＣ標識抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ｍ３）を３μＬ添加し、４℃で６０分間反応させた。細胞をＳｔａｉｎｉｎｇＭｅｄｉｕｍにて２回洗浄後、使用説明書に従いＪＳＡＮ（Ｂａｙｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いて、フローサイトメトリー解析を実施した。ＦＩＴＣ標識抗ＬＲ１１モノクローナル抗体の陰性コントロールには、正常マウスＩｇＧ（ＢＤｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社製）を用いた。その結果、ＬＲ１１陽性細胞の割合がＯＣＵＧ−１では約６０％、ＮＯＺでは約２０％であった（図６）。

実施例７細胞免疫
実施例５の結果で、ＬＲ１１が細胞表面に強発現している造血器腫瘍由来細胞の１つであるＮＢ−４株をＨＴ培地で拡大培養し、ＰＢＳにて２回洗浄後、細胞数が１〜２×１０⁷個になるようＰＢＳに懸濁し、ＢＡＬＢ／ｃマウス（メス）の腹腔内に注入し免疫した。隔週又は毎週免疫し、適切な時期に、次に示す方法によりマウス血清中の抗ＬＲ１１抗体価を確認した。
マイクロプレート（ＮＵＮＣ社製）に、ヒト尿由来精製可溶性ＬＲ１１をＰＢＳで５０ｎｇ／ｍＬに希釈して１ウエルあたり５０μＬ添加し室温で２時間固相化した。０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳ（ＰＢＳＴ）で洗浄後、１％ＢＳＡを含むＰＢＳＴ（ＢＳＡ−ＰＢＳＴ）を１ウエルあたり２００μＬ添加し室温で１時間ブロッキングした。マウスの尻尾より採血して得られた血清を、ＢＳＡ−ＰＢＳＴにより２００〜１６００倍希釈して１ウエルあたり５０μＬ添加し、室温で１時間反応させた。ＰＢＳＴで洗浄後、ＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧポリクローナル抗体（Ｒｏｃｋｌａｎｄ社）を１００００倍希釈して１ウエルあたり５０μＬ添加し、室温で１時間反応させた。ＰＢＳＴで洗浄後、次いでｏ−フェニレンジアミン基質液を１ウエルあたり５０μＬ加え室温で２０分間反応させ、１．５Ｎ硫酸を１ウエルあたり５０μＬ加えて反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー（Ａｂｓ．４９２ｎｍ）で測定した。
５回免疫した後のマウス血清中の抗ＬＲ１１抗体価を確認した結果を図７に示す。
免疫前のマウス血清では、固相化したヒト尿由来精製ＬＲ１１への反応はほとんど認められていないのに対して、ＮＢ−４細胞株を免疫した場合は、固相化したヒト尿由来精製ＬＲ１１への明確な反応が認められていることから、ＬＲ１１に対する抗体が産生されていることが確認された。悪性腫瘍細胞の表面に発現しているＬＲ１１に結合する抗体、更には細胞傷害性を有する抗体については、抗体価が十分高くなった時点で、常法に従い脾臓を取り出し細胞融合を実施して、抗ＬＲ１１モノクローナル抗体を樹立し、その中から、腫瘍細胞表面のＬＲ１１結合活性と、ＬＲ１１の生物活性の中和活性及び／又は細胞傷害性活性を有する抗体を選択することで得られる。また、細胞傷害性活性は、公知の方法により付与あるいは増強することができる。

実施例８各種上皮性悪性腫瘍細胞株のＬＲ１１タンパク質の確認
各種上皮性腫瘍細胞株でのＬＲ１１タンパク質発現を、実施例１で用いた抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ａ２−２−３）によるウェスタンブロット法で確認した。細胞株は、ＨＬＥ（肝臓癌由来）、ＭＫＮ１（胃癌由来）、Ｔ．Ｔｎ（食道癌由来）、ＣＯＬＯ２０１（大腸癌由来）、ＡｓＰＣ−１（膵臓癌由来）、Ｃａｋｉ−１（腎臓癌由来）、Ｏｋａ−Ｃ−１（肺癌由来）、ＰＣ−３（前立腺癌由来）、ＫＭＢＣ−２（膀胱癌由来）、ＨｅＬａ（子宮頸癌由来）、ＯＶＩＳＥ（卵巣癌由来）、ＹＭＢ−１（乳癌由来）、ＫＩＮＧＳ１（神経腫瘍由来）、Ｇ−３６１（悪性黒色腫由来）の合計１４種を用いた。これら細胞株は、指定された培地（例えば、１０％ｆｅｔａｌｂｏｖｉｎｅｓｅｒｕｍ、ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ／ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎを含むＲＰＭＩ−１６４０）に懸濁し、５％炭酸ガスインキュベーター内で３７℃にて適当な時間培養し、増殖させた。増殖した細胞は、ＰＢＳで数回洗浄した後、トリプシン−ＥＤＴＡ溶液（インビトロジェン社製；２５２００−０７２）を用いて回収された。それぞれの細胞株の細胞数をカウントし、１×１０⁷個となるように分取後、ＰＢＳを適当量加え懸濁させ、遠心分離で細胞を回収した。この操作を３回繰り返して細胞を洗浄した。回収した細胞に、１％プロテアーゼインヒビター（シグマアルドリッチ社製；Ｐ８３４０）を含むＰＢＳ１００μＬを加えた後、超音波振動器（ホモジナイザー）で細胞を破砕した。細胞の破砕断片を遠心分離にて除去した後、上清を超遠心分離（１００，０００ｇ、１０分間）にて、膜画分を沈殿させた。上清を除去し、ＰＢＳにて沈殿を洗浄した後、１％プロテアーゼインヒビター（シグマアルドリッチ社製；Ｐ８３４０）及び１％ＭＥＧＡ−９を含むＰＢＳ１００μＬを加え、超音波振動器（ホモジナイザー）にて、膜画分を懸濁・溶解させ、再び超遠心分離（１００，０００ｘｇ、１０分間）にて不溶の膜画分を除去することで、可溶化膜画分溶液を得た。
１レーン当たり２μＬ分の各細胞株の可溶化膜画分溶液を、ＳＤＳ含有還元条件下で煮沸処理し、各処理液をＳＤＳ−ＰＡＧＥ（２−１５％）の各レーンにアプライし分離した。泳動終了後、ゲルよりタンパク質をＰＶＤＦ膜へ転写し、一次抗体として抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ａ２−２−３）を反応させ、その後は、Ｂｉｏｔｉｎｙｌａｔｅｄａｎｔｉ−ｍｏｕｓｅＩｇＧポリクローナル抗体（ＤＡＫＯ）及びＨＲＰ標識ストレプトアビジンを組み合わせて、最終的にジアミノベンチジンで発色させて、ＬＲ１１を検出した。
その結果、用いた１４種すべての細胞株の膜画分溶解液で、ＬＲ１１タンパク質を示すバンドが認められた（図８）。この知見は、上皮性悪性腫瘍疾患での患者病変部の細胞表面に、ＬＲ１１タンパク質の発現が亢進している可能性を示唆するものである。

実施例９悪性リンパ腫患者由来組織の免疫染色
実施例５の方法に準じて、悪性リンパ腫で、非ホジンキンリンパ腫に分類されるびまん性大細胞型Ｂ細胞リンパ腫（ＤＬＢＣＬ）患者１名（血清中可溶性ＬＲ１１濃度７９ｎｇ／ｍＬ）並びに健常者のリンパ節組織に対する免疫染色を行った。陰性コントロールは、正常ラットＩｇＧ（ＳａｎｔａＣｒｕｚＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製）を用いた。組織切片はパラフィン包埋した病理検体を、ミクロトームを用いて厚さ４μｍに薄切し作製した。作製した切片はキシレンで脱パラフィンをして、エタノールで水和処置後、以下の方法で免疫染色を行った。内在性のペルオキシダーゼをブロックするために、切片を３％過酸化水素含有メタノール液で５分間処理した。その後、ＰｒｏｔｅｉｎＢｌｏｃｋ（Ｄａｋｏ社製）を用いてブロッキング処理を行った。次に、１０μｇ／ｍＬの抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ｒ１４；非特許文献４）及び正常ラットＩｇＧを切片に乗せ、室温で一晩反応させた。ＰＢＳで洗浄後、３０００倍希釈したｂｉｏｔｉｎ−ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄｒａｂｂｉｔａｎｔｉ− ｒａｔＩｇＧ（Ｄａｋｏ社製）と室温で３０分反応させた。洗浄後、Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅｃｏｎｊｕｇａｔｅｄｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ（Ｎｉｃｈｉｒｅｉ社製）と室温で５分反応させ、ＰＢＳで洗浄し、ＩｍｍＰＡＣＴＤＡＢＰｅｒｏｘｉｄａｓｅＳｕｂｓｔｒａｔｅ（ＶｅｃｔｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）を用いて染色した。最後に、Ｍａｙｅｒ'ｓＨｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ（Ｍｕｔｏ社製）を用いて核染色を行い、エタノール処理にて脱水並びにキシレンで透徹後、Ｍａｌｉｎｏｌ（Ｍｕｔｏ社製）で封入した。その結果を図９に示す。
抗ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ｒ１４）を用いた免疫組織染色結果から、悪性リンパ腫の組織切片においても、ＬＲ１１の発現が確認された。

Claims

悪性腫瘍細胞表面のＬＲ１１に特異的な抗体に抗がん剤又は放射性同位元素を担持してなる抗体を有効成分とする悪性腫瘍治療薬。
悪性腫瘍が、造血器腫瘍又は上皮性悪性腫瘍である請求項１記載の悪性腫瘍治療薬。
造血器腫瘍が、白血病又は悪性リンパ腫である請求項２記載の悪性腫瘍治療薬。
白血病が、急性白血病である請求項３記載の悪性腫瘍治療薬。
悪性リンパ種が、非ホジキンリンパ腫である請求項３記載の悪性腫瘍治療薬。
上皮性悪性腫瘍が、胃癌、肝臓癌、膵臓癌、肺癌、前立腺癌、膀胱癌、食道癌、乳癌、子宮頸癌、卵巣癌、結腸癌、大腸癌、腎臓癌、胆嚢癌、神経腫瘍及び悪性黒色腫からなる群より選択される請求項２記載の悪性腫瘍治療薬。
前記抗体が、モノクローナル抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体又は完全ヒト化抗体である請求項１〜６のいずれか１項記載の悪性腫瘍治療薬。