JP5797192B2 - 細胞クローンのための阻害に基づくハイスループットスクリーニング方法 - Google Patents
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Description
本願は、2009年6月11日に出願された米国仮出願第61/213,459号の優先権を主張するものであり、参照によりその全体を本明細書に組み入れるものとする。
外因性タンパク質を高レベルで発現する細胞をスクリーニングするための方法が開示される。一実施形態において、本方法は、標的タンパク質と宿主細胞内の内因性選択マーカーに対する阻害物質の両方をコードするDNA構築物を複数の宿主細胞中に導入するステップであって、この場合、DNA構築物は、宿主細胞内で標的タンパク質と阻害物質の両方を発現するように構成されている、ステップと、内因性選択マーカーの発現についてDNA構築物を含む宿主細胞をスクリーニングするステップと、内因性選択マーカーの発現が低下した細胞を単離するステップ、
を含む。
ジヒドロ葉酸還元酵素欠損チャイニーズハムスター卵巣細胞系統(CHO/dhfr−)をHT(0.1mM ヒポキサンチンナトリウムおよび0.016mM チミジン、Gibco、Cat No.11067)、10%のFBS(Biological Industries、Cat.04−001−1A)および2μMのメトトレキサート水和物(MTX、Sigma、SI−M8407)を添加したイスコフ改変ダルベッコ培地(IMDM, Gibco、Cat.No.12200)中で維持した。
(1)pScinoDP−DHFRベクター
pEGFP−N1(Clontech)プラスミド骨格中のEGFP遺伝子をIRES−DHFR融合遺伝子へと置換し、SV40ポリA尾部およびCMV−IEプロモーターの付加をpEGFP−N1(Clontech)プラスミド骨格へと挿入することにより、pScinoDP−DHFRプラスミドを構築した。手短にいえば、ポリA尾部およびCMV−IEプロモーター配列を、pCEP4プラスミド(Invitrogen)をテンプレートとして用いたPCR増幅により取得した。PCRによるオーバーラップ伸張(OL−PCR)を介して、融合されたポリA尾部−プロモーター融合配列SV40polA−CMV−IE(約1.2kb)を作製した。融合された配列をXhoI/BglIIで消化し、XhoI/BglIIした消化pEGFP−N1ベクターへと挿入した。得られた構築物をpScinoDPと名付けた。
pScinoDP3−DHFRベクターは、CMV−IEエンハンサーを伴ったhEF1αプロモーターを有する、pScinoDP−DHFRをベースとしたベクターである。手短に言えば、hEF1αプロモーターをpBudCE4.1ベクター(Invitrogen)から増幅した。pEGFP−N1上のCMV−IEエンハンサーの後ろにhEF1αプロモーターをサブクローニングしてpCMVe−hEF1α−EGFPベクターを形成させることを通じて、hEF1αプロモーターを伴うハイブリッドCMV−IEエンハンサー配列を得た。CMVe−hEF1α断片をpCMVe−hEF1α−EGFPベクターからPCR増幅し、pScionDP−DHFRベクター中の両方のCMVプロモーターを置換するために用いた。得られたベクターをpScinoDP3−DHFRと名付けた(図3)。
以下の合成骨格DNAおよびプライマーを用いて、記載されるように、PCRを用いて一本鎖97ntの「mir30様」shRNAiGFPオリゴを作製した:
5’-TGCTGTTGACAGTGAGCGAGCACAAGCTGGAGTACAACTATAGTGAAGCCACAGATGTATAGTTGTACTCCAGCTTGTGCCTGCCTACTGCCTCGGA-3’ (配列番号1)
5’-CAGAAGGACCGGTAAGGTATATTGCTGTTGACAGTGAGCG-3’ (配列番号2)
5’-CTAAAGTAGCCCCTTAAGCTTTCCGAGGCAGTAGGCA-3’ (配列番号3)
pScinoDP8mir−DHFRベクターは、調節DNAエレメントmARE40を含む。ハウスキーピング遺伝子由来の抗リプレッシングエレメント(repressing element)等の調節エレメントは、細胞系統により産生される組み換えタンパク質の特異的な生産性に正の影響を与えることが示された。プラスミドpEGFP−N1は、この構築物の骨格として用いられた。手短に言えば、以下の合成骨格DNAおよびプライマーを用いて、記載されるオーバーラッピングPCRを用いて、部分的マウス抗リプレッサーエレメント40断片を作製した:
5’-TTGCTCTGAGCCAGCCCACCAGTTTGGAATGACTCCTTTTTATGACTTGAATTTTCAAGTATAAAGTCTAGTGCTAAATTTAATTTGAACAACTGTATAGTTTTTG-3’ (配列番号4)
5’-TTAGAAATCCTCACACACAACAAGTTTTCATTTCACTTCTAATTCTGAAAAAAACACTGCCACCATTTTTTTTCCTTCCCCCAACCAGCAAAAACTATACAGTTGT-3’ (配列番号5)
5’-GTGTGTGAGGATTTCTAATGACATGTGGTGGTTGCATACTGAGTGAAGCCGGTGAGCATTCTGCCATGTCACCCCCTCGTGCTCAGTAATGTACTTTACAGAAATC-3’ (配列番号6)
5’-TGGCAGAAATGCAGGCTGAGTGAGACTACCCAGAGAAGAGACCGGATATACACAAGAAGCATGGTTTATATCAATCTTTTGAGTTTAGGATTTCTGTAAAGTACAT-3’ (配列番号7)
pScinoDP8mir−DHFRベクターの構築、および、pScinoDP8mir−DHFR中の2つのCMVエンハンサーをCAGプロモーターで置換する(ニワトリβ−アクチンプロモーターと融合させたCMV−IEエンハンサー)手法と同様の手法を用いて、pScinoDP9mir−DHFRベクター(図6)を構築した。pScinoDP9mir−DHFRの完全配列を配列番号13に示す。
pIRES2−EGFPおよびpLKO−AS3w−puroプラスミドをテンプレートとして用いて、IRES配列およびDHFR遺伝子を取得した。PCRによるオーバーラップ伸張(OL−PCR)を通じて、IRES配列断片およびピューロマイシン遺伝子断片のハイブリッド(IRES2−ピューロマイシン)を取得した。IRES2−ピューロマイシン断片を、SalI−BamHI消化したpFLAG−CMV2ベクター(Kodak)へと挿入した。得られた構築物をpIRES2−Puroと名付けた。pEGFP−N1ベクターからEGFP遺伝子を取得し、pIRES−Puroベクターへと挿入してpGFP/ピューロマイシンベクターを構築した。
pScinoDP9mir−ハーセプチン−DHFRベクターの構築を図7Aおよび7Bに示す。手短に言えば、4−1リーダー配列および4−2リーダー配列をオリゴ合成骨格断片からPCR増幅し、一方、ヒトIgG1(hIgG1CH)の重鎖定常領域配列およびヒトIgG1(hIgG1CL)の軽鎖定常領域配列を、ヒトIgG1配列を含む組み換えプラスミドから取得した。リーダー配列およびhIgG1定常領域配列ベクターのハイブリッドは、配向性の連結手法によって、hIgG1定常領域を、リーダー配列を含むベクターへとサブクローンすることによって得た。
ハーセプチンVH-L1(+) (108 mer)
5’-gAggTgCAgCTCgTggAgAgTggTggCgggTTggTCCAgCCAggCgggTCTCTgCgATTgAgCTgTgCTgCCTCTggATTTAACATCAAAgACACgTACATCCATTgg-3’ (配列番号16)
5’-TTTAACgCTATCAgCgTATCTggTgTAgCCgTTAgTgggATAgATTCTAgCTACCCATTCAAggCCCTTgCCgggggCCTgTCTCACCCAATggATgTACgTgTC-3’ (配列番号17)
5’-TACgCTgATAgCgTTAAAggAAggTTTACTATTTCTgCCgACACCTCCAAgAATACCgCATATCTACAgATgAACTCCCTgCgCgCTgAggACACCgCTgTgTAT-3’ (配列番号18)
5’-CTTAgTAgAgCACTgCTAACTgTCACTAAggTACCCTggCCCCAgTAgTCCATTgCgTAgAATCCgTCTCCCCCCCAACgTgAgCAgTAATACACAgCggTgTCCTC-3’ (配列番号19)
ハーセプチン-VH-5HindIII (30 mer) (センス)
5’-gCCAAgCTTgAggTgCAgCTCgTggAgAgT-3’ (配列番号20)
5’-AgggggCCCTTAgTAgAggCACTgCTAACT-3’ (配列番号21)
ハーセプチンVL-L1(+) (93 mer)
5’-gATATACAgATgACACAgTCTCCgTCAAgTCTgAgCgCAAgCgTgggCgACCggGTAACAATTACCTgTAgAgCCAgCCAggACgTAAATACA-3’ (配列番号24)
5’-CCgCTATAAAggAACgAggCAgAgTAgATCAgAAgCTTAggAGCTTTACCAggTTTTTgCTgATACCAggCCACggCTgTATTTACgTCCTggCT-3’ (配列番号25)
5’-CTCgTTCCTTTATAgCggggTgCCAAgCCgCTTCTCCggATCTAggTCTggAACAgACTTTACTCTgACCATTTCCAgTCTCCAgCCCgAAgAC-3’ (配列番号26)
5’-CTTgATCTCgACCTTggTgCCCTgCCCAAATgTgggTggAgTCgTgTAATgTTgCTggCAATAgTAggTAgCAAAgTCTTCgggCTggAgACT-3’ (配列番号27)
ハーセプチン-VL-5HindIII (30 mer) (センス)
5’-gCCAAgCTTgATATACAgATgACACAgTCT-3’ (配列番号28)
5’-CgCggATTCCTTgATCTCgACCTTggTgCC-3’ (配列番号29)
CHO/+GFP/−dhfr細胞をPBS緩衝液中に懸濁させた。40μgの直鎖状プラスミド(pScinoDP9mir−Herceptin−DHFR)のDNAを前記細胞に加えて、氷上で10分間インキュベートした。細胞を次いで、電圧設定750Vおよび電気容量25μF(電気容量拡張機能を伴うGene Pulser II、および、Bio−Radのパルスコントローラー)にて電気泳動した。電気泳動した細胞をT−175フラスコ中に撒き、25mLの培地(HT、10%のFBS、2μMのMTXおよび5μg/mlのピューロマイシン二塩酸塩を添加したIMDM)と共に24時間置いた。次いで細胞を、800μg/mlのG418硫酸塩(Calbiochem、Cat#345810)を用いて、10%のD−FBS(Gibco、Cat.No.30067−334)および5μg/mlのピューロマイシン二塩酸塩を添加した最小必要培地α培地(Alpha−MEM、Gibco、Cat.No.12000)中で選択した。10%のD−FBSおよび選択的抗生物質を添加したα−MEM培地中での選択の14日後、遺伝子増幅のため、濃度を増加させながらのMTX処理に細胞を供した。
(1)免疫染色による表面抗体の検出
トリプシン処理したハーセプチン−CHO+GFP/−dhfr細胞を、5分間、200 rpmで遠心分離した。細胞をPBSで2回洗浄し、PBS中に再懸濁して最終濃度約1×107細胞/mlとした。細胞を次いで、製造者の推奨に従う濃度のフィコエリトリン(PE)コンジュゲート抗マウス抗ヒトIgG(Fc)(Beckman Coulter、Cat. No.736007)と共に、4℃、30分間暗所でインキュベートし、PBSで2度洗浄して、FACS分析のため氷上に保管した。
手短に言えば、96穴ウェルプレートを抗ヒトIgG抗体(Sigma:I 1886)を0.05Mの炭酸塩−重炭酸塩緩衝液(pH9.7)で希釈し、4℃にて16時間インキュベートした。プレートをブロッキング緩衝液(10mM Tris、0.15M NaCl、1%スキムミルク、pH8.0)にて、37℃、分間被覆した。培養物の上清をウェルに載せて37℃、2時間インキュベートした。製造者の推奨に従って、希釈緩衝液(10mM Tris、0.15M NaCl、0.05% Tween 20、pH8.0)中に希釈した西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲート抗ヒトIgG−F(c)抗体(Abcam:ab7499)を37℃、1時間インキュベートした。基質を用いて反応物を検出し(1−stepTM ultra TMB−ELISA、Pierce、Cat.34028)、プレートをマイクロプレートリーダー(Bio−Rad)に載せて読んだ。
図8は、FACSを用いた、異なる蛍光強度で選別されたハーセプチン−CHO+GFP/−dhfr細胞のヒストグラムプロファイルを示す。パネルAは、ハーセプチン−CHO+GFP/−dhfr細胞のプールにおけるGFP蛍光を示す。細胞は、蛍光強度に基づいていくつかのサブ集団(R2、R3およびR4)に分割された。パネルB−Dは、各サブ集団中でのGFP発現レベルを示す。パネルEは、プールおよび各サブ集団中での抗体ハーセプチン抗体の力価を示す。データは、最も低いGFP蛍光レベルを有する細胞(ハーセプチン/R4/CHO+GFP/−dhfr)が最も高レベルのハーセプチン力価を有することを示す。
フローサイトメトリーと組み合わせたshRNAmireGFPの使用は、2つの重大な点において、細胞系統の開発の正確性および効率性を実質的に向上させる。第一に、クローンのスクリーニングにおける初期段階では、FACS法は、治療用タンパク質の力価に関して調製培地における分析を行うよりも、クローンの生産性をよりよく予測する判断材料である。第二に、不安定な導入遺伝子発現を伴うクローンは、増幅ステージの間、蛍光の増加が観察されることにより容易に識別される。すなわち、本発明の方法は、さらなる開発、および、従来の方法よりも初期のステージで不安定なクローンを除去することに関し良い候補を同定するための、正確な96ウェルのクローンスクリーニングにおける新たな利点を提供する。
Claims (20)
- 標的タンパク質を高レベルで発現する細胞をスクリーニングするための方法であって、
標的タンパク質と宿主細胞内の内因性選択マーカーに対する阻害物質の両方をコードするDNA構築物を複数の該宿主細胞中に導入するステップと、
該内因性選択マーカーの発現について、DNA構築物を含む該宿主細胞をスクリーニングするステップと、
該内因性選択マーカーの発現が低下した細胞を単離するステップ、
を含み、
該内因性選択マーカーは該宿主細胞中への該DNA構築物の導入前に該宿主細胞中に存在するポリヌクレオチドによってコードされる選択マーカーであり、該DNA構築物は該宿主細胞内で該標的タンパク質と阻害物質の両方を発現するように構成されている、前記方法。 - 前記阻害物質が、低分子干渉RNA(siRNA)、低分子ヘアピン型RNA(shRNA)、マイクロRNA(miRNA)、miRNAとshRNAのハイブリッド、およびアンチセンスRNAからなる群より選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記阻害物質が、shRNAである、請求項1に記載の方法。
- 前記内因性選択マーカーが蛍光マーカーであり、かつ、前記単離ステップが蛍光活性化セルソーター(FACS)を用いて細胞を選別するステップを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記DNA構築物がジヒドロ葉酸レダクターゼ(DHFR)をさらにコードし、かつ、前記宿主細胞がDHFR欠損細胞である、請求項1に記載の方法。
- 導入遺伝子を発現する細胞を選択するためのハイスループットスクリーニング方法であって、
少なくとも1つの導入遺伝子と蛍光タンパク質の発現を阻害する干渉RNAとを担持するベクターを用いて、該蛍光タンパク質を発現する細胞をトランスフェクトするステップと、
該トランスフェクト細胞において蛍光強度を測定するステップと、
非トランスフェクト細胞の蛍光強度よりも低い蛍光強度を有する該トランスフェクト細胞を単離するステップ、
を含む、前記方法。 - 前記蛍光タンパク質が緑色蛍光タンパク質(GFP)である、請求項6に記載の方法。
- 前記干渉RNAがmir−30に基づくshRNAである、請求項6に記載の方法。
- 前記単離ステップがFACSを用いて細胞を選別するステップを含む、請求項6に記載の方法。
- 前記蛍光タンパク質を発現する細胞がジヒドロ葉酸レダクターゼ(DHFR)欠損CHO細胞である、請求項6に記載の方法。
- 前記少なくとも1つの導入遺伝子が、内部リボソーム進入部位(IRES)によって、DHFRをコードする遺伝子と連結している、請求項6に記載の方法。
- 発現ベクターを含む細胞をハイスループットスクリーニングするための発現ベクターであって、
標的タンパク質をコードする第1のヌクレオチド配列と、
宿主細胞のための外因性選択マーカーをコードする第2のヌクレオチド配列と、
宿主細胞内の内因性選択マーカーに対する阻害物質をコードする第3のヌクレオチド配列と、
前記宿主細胞において前記第1、第2および第3のヌクレオチド配列の発現を制御する1つ以上の調節エレメントを含み、
この場合、前記第1のヌクレオチド配列は、内部リボソーム進入部位(IRES)によって第2のヌクレオチド配列と連結している、
発現ベクター。 - 1つ以上の抗リプレッサーエレメントをさらに含む、請求項12に記載の発現ベクター。
- 前記1つ以上の抗リプレッサーエレメントが、部分的マウス抗リプレッサーエレメント40を含む、請求項13に記載の発現ベクター。
- 前記阻害物質が、干渉RNAである、請求項12に記載の発現ベクター。
- 前記干渉RNAが、miR−30に基づくshRNAである、請求項15に記載の発現ベクター。
- 前記内因性選択マーカーが蛍光タンパク質である、請求項12に記載の発現ベクター。
- 前記蛍光タンパク質が緑色蛍光タンパク質である、請求項17に記載の発現ベクター。
- 前記外因性選択マーカーがジヒドロ葉酸レダクターゼである、請求項12に記載の発現ベクター。
- 前記1つ以上の調節エレメントが、CMV IEエンハンサーを含む、請求項12に記載の発現ベクター。
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