JP5542682B2 - Calicivirus inactivation method - Google Patents

Calicivirus inactivation method Download PDF

Info

Publication number
JP5542682B2
JP5542682B2 JP2010534695A JP2010534695A JP5542682B2 JP 5542682 B2 JP5542682 B2 JP 5542682B2 JP 2010534695 A JP2010534695 A JP 2010534695A JP 2010534695 A JP2010534695 A JP 2010534695A JP 5542682 B2 JP5542682 B2 JP 5542682B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
composition
virus
calicivirus
protein
acid
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2010534695A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPWO2010047108A1 (en
Inventor
田 秀 樹 小
川 隆 志 殿
橋 敦 石
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
MC Food Specialties Inc
Original Assignee
MC Food Specialties Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by MC Food Specialties Inc filed Critical MC Food Specialties Inc
Priority to JP2010534695A priority Critical patent/JP5542682B2/en
Publication of JPWO2010047108A1 publication Critical patent/JPWO2010047108A1/en
Application granted granted Critical
Publication of JP5542682B2 publication Critical patent/JP5542682B2/en
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K45/00Medicinal preparations containing active ingredients not provided for in groups A61K31/00 - A61K41/00
    • A61K45/06Mixtures of active ingredients without chemical characterisation, e.g. antiphlogistics and cardiaca
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N31/00Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic oxygen or sulfur compounds
    • A01N31/02Acyclic compounds
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/045Hydroxy compounds, e.g. alcohols; Salts thereof, e.g. alcoholates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/185Acids; Anhydrides, halides or salts thereof, e.g. sulfur acids, imidic, hydrazonic or hydroximic acids
    • A61K31/19Carboxylic acids, e.g. valproic acid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/185Acids; Anhydrides, halides or salts thereof, e.g. sulfur acids, imidic, hydrazonic or hydroximic acids
    • A61K31/19Carboxylic acids, e.g. valproic acid
    • A61K31/194Carboxylic acids, e.g. valproic acid having two or more carboxyl groups, e.g. succinic, maleic or phthalic acid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K33/00Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
    • A61K33/42Phosphorus; Compounds thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/02Local antiseptics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

関連出願の相互参照Cross-reference of related applications

本出願は、2008年10月24日出願の日本特願2008−274103号および2009年7月13日出願の日本特願2009−164896号の優先権を主張し、それらの全記載は、ここに特に開示として援用される。   This application claims the priority of Japanese Patent Application No. 2008-274103 filed on October 24, 2008 and Japanese Patent Application No. 2009-164896 filed on July 13, 2009, the entire description of which is here Specifically incorporated by reference.

本発明は、ネコカリシウイルスやノロウイルス等のカリシウイルス科に属するウイルス(以下、カリシウイルスという)を不活化する方法に関する。   The present invention relates to a method for inactivating viruses belonging to the family Caliciviridae such as feline calicivirus and norovirus (hereinafter referred to as calicivirus).

[背景技術]
厚生労働省によると、冬の急性胃腸炎患者の10分の1はノロウイルス感染が原因している。ノロウイルスの感染経路はほとんどが経口感染であり、食品取扱者や調理器具からの2次汚染を防止するという観点から、ノロウイルスの失活化または不活化方法が重要である。
[Background technology]
According to the Ministry of Health, Labor and Welfare, one-tenth of patients with acute gastroenteritis in winter are caused by norovirus infection. Most of the infection routes of norovirus are oral infections, and the method of inactivating or inactivating norovirus is important from the viewpoint of preventing secondary contamination from food handlers and cooking utensils.

厚生労働省によると、ノロウイルス失活化には消毒用エタノールや逆性石鹸は効果がなく、次亜塩素酸ナトリウム水溶液がノロウイルス失活化に効果があるとされている(厚生労働省 ノロウイルスに関するQ&A Q16参照、http://www.mhlw.go.jp/topics/syokuchu/03.html#3-3)(非特許文献1)   According to the Ministry of Health, Labor and Welfare, disinfecting ethanol and reverse soap are not effective in inactivating norovirus, and sodium hypochlorite aqueous solution is effective in inactivating norovirus (see Q16 for Q & A on Norovirus, Ministry of Health, Labor and Welfare) , Http://www.mhlw.go.jp/topics/syokuchu/03.html#3-3) (Non-Patent Document 1)

しかし、次亜塩素酸ナトリウム水溶液は、特有の臭気が強く、皮膚に付着して肌荒れを起こす、衣服や絨毯を脱色してしまう等、問題点も存在する。また、酸と混合すると塩素ガスを発生し、中毒症状を起こすこともあり、危険な場合もある。   However, the sodium hypochlorite aqueous solution has a strong odor, which causes problems such as adhesion to the skin and rough skin, and discoloration of clothes and carpets. In addition, when mixed with acid, it generates chlorine gas, which may cause poisoning and may be dangerous.

一方、エタノールについては酒類等の食品に含まれる成分のため、安全性が高いが、上記のように単独ではノロウイルス失活化に効果はない。   On the other hand, since ethanol is a component contained in foods such as alcoholic beverages, it is highly safe, but it alone has no effect on norovirus inactivation as described above.

それに対して、エタノールと天然抽出物(グレープフルーツ種子抽出液)とフィチン酸を併用したカリシウイルス用除菌液が報告されている(特許文献1)。   On the other hand, a disinfectant solution for calicivirus using ethanol, natural extract (grapefruit seed extract) and phytic acid in combination has been reported (Patent Document 1).

また、一般の細菌の抑制や除菌にはエタノールと有機酸が組み合わされて用いられており、食品用防腐剤として知られている(特許文献2)が、ノロウイルスに対する効果は知られていない。   In addition, ethanol and organic acids are used in combination for the suppression and sterilization of general bacteria and are known as food preservatives (Patent Document 2), but the effect on norovirus is not known.

それに対して、つい最近公開された特許文献3には、以下の(a)、(b)、(c)及び(d)を含み、かつ殺菌消毒を目的とする他の殺菌消毒剤を含まない消毒剤が開示されている。この消毒剤は、手指や皮膚に適用できるものであり、かつ殺ウィルス用であるとも記載されている。
(a)エタノール、イソプロピルアルコール、又はこれらの混合物を、消毒剤全体に対して40〜90%(w/w)
(b)乳酸を、消毒剤全体に対して0.1〜2%(w/w)
(c)クエン酸を、消毒剤全体に対して0.01〜2%(w/w)
(d)溶液中で亜鉛イオンを遊離する亜鉛含有化合物を、消毒剤全体に対して0.001〜0.1%(w/w)
On the other hand, Patent Document 3, which has been recently released, includes the following (a), (b), (c) and (d), and does not include other disinfectants for the purpose of disinfecting. Disinfectants are disclosed. This disinfectant can be applied to fingers and skin and is also described as being for virucidal use.
(A) 40 to 90% (w / w) of ethanol, isopropyl alcohol, or a mixture thereof with respect to the entire disinfectant
(B) 0.1-2% (w / w) of lactic acid based on the whole disinfectant
(C) 0.01 to 2% (w / w) citric acid based on the entire disinfectant
(D) The zinc-containing compound that liberates zinc ions in the solution is 0.001 to 0.1% (w / w) with respect to the entire disinfectant.

[特許文献]
[特許文献1]特開2007-320924号公報
[特許文献2]特公昭60-35106号公報
[特許文献3]特許4163249号公報
[Patent Literature]
[Patent Document 1] Japanese Unexamined Patent Publication No. 2007-320924 [Patent Document 2] Japanese Patent Publication No. 60-35106 [Patent Document 3] Japanese Patent No. 4163249

[非特許文献]
[非特許文献1]http://www.mhlw.go.jp/topics/syokuchu/03.html#3-3
上記特許文献及び非特許文献の全記載は、ここに特に開示として援用される。
[Non-patent literature]
[Non-Patent Document 1] http://www.mhlw.go.jp/topics/syokuchu/03.html#3-3
The entire description of the above patent documents and non-patent documents is specifically incorporated herein by reference.

[発明の概要]
[発明が解決しようとする課題]
上記のように、厚生労働省によって、ノロウイルス失活化に効果があるとされている次亜塩素酸ナトリウム水溶液には、いくつかの問題があり、また、エタノールは、単独ではノロウイルス失活化に効果がなく、特殊な天然抽出物(グレープフルーツ種子抽出液)とフィチン酸の併用により、カリシウイルス用除菌液として知られているにすぎない。
[Summary of Invention]
[Problems to be solved by the invention]
As mentioned above, the sodium hypochlorite aqueous solution, which is said to be effective in inactivating norovirus by the Ministry of Health, Labor and Welfare, has several problems, and ethanol alone is effective in inactivating norovirus. However, it is only known as a sterilization solution for calicivirus by the combined use of a special natural extract (grapefruit seed extract) and phytic acid.

特許文献3に記載の消毒剤は、明細書の記載によれば、ノロウイルスなどのノンエンベロープウイルスに対して高い有効性を有するとのことである。しかし、この消毒剤の適用対象は、主に手指や皮膚に限られていた。   According to the description of the specification, the disinfectant described in Patent Document 3 is highly effective against non-enveloped viruses such as Norovirus. However, the application target of this disinfectant was mainly limited to fingers and skin.

それに対して、手指や皮膚の消毒も必要であるが、それと同等に、医療や介護の現場において必要とされている物として、ノロウイルスなどのノンエンベロープウイルスを含む吐瀉物や糞尿等に対するウイルスの不活化方法である。医療や介護の現場においては、ノンエンベロープウイルスに感染したまたは感染が疑われる患者が排泄する吐瀉物や糞尿等が、ときに床などに散乱することがあり、これを安全に処理する必要に迫られる。これまでは、そのような排泄物を使い捨てのシートや紙で拭き取り、その後を次亜塩素酸ナトリウム水溶液で処理している。しかし、次亜塩素酸ナトリウム水溶液には上述のような問題があるのに加えて、吐瀉物や糞尿等には、ウイルスに加えてタンパク質を主成分とする有機物が含まれており、ウイルスを不活化する前に次亜塩素酸が消費され、不活化効果が著しく低減するという問題があった。   On the other hand, disinfection of fingers and skin is also necessary, but it is equally necessary in the field of medical care and nursing care to prevent viruses against sputum and manure containing non-enveloped viruses such as norovirus. It is an activation method. At medical and nursing care sites, sputum and manure excreted by patients infected with or suspected of having non-enveloped viruses may sometimes be scattered on the floor, etc., and this must be handled safely. It is done. Until now, such excrement has been wiped with a disposable sheet or paper, and then treated with an aqueous sodium hypochlorite solution. However, in addition to the above-mentioned problems with sodium hypochlorite aqueous solution, sputum and feces and urine contain organic substances mainly composed of proteins in addition to viruses. There was a problem that hypochlorous acid was consumed before activation, and the inactivation effect was significantly reduced.

そこで本発明の目的は、次亜塩素酸ナトリウム水溶液のような危険性を有さず、かつ被消毒物に含まれるノロウイルス等のカリシウイルスを、タンパク質を主成分とする有機物の共存下であっても有効に失活化または不活化できる方法を提供することにある。   Therefore, an object of the present invention is to have a calicivirus such as a norovirus contained in a disinfectant having no danger like an aqueous sodium hypochlorite solution in the presence of an organic substance mainly composed of a protein. Is to provide a method that can be effectively deactivated or deactivated.

本発明者らは、エタノール水に対して特定の範囲のpHを示すように酸を共存させたエタノール製剤(組成物)を用いることで、タンパク質を主成分とする有機物が共存するカリシウイルスを不活化できることを見出して、本発明を完成させた。尚、本明細書において、カリシウイルスの不活化と失活化は同義で使用し、カリシウイルスが不活化または失活化した状態とは、ウイルスの感染力が実質的に失われ、無毒化された状態を意味し、具体的にはウイルスの感染価がコントロールに比べ10-4以下になった場合を意味する。By using an ethanol preparation (composition) in which an acid is present so as to exhibit a pH in a specific range with respect to ethanol water, the present inventors can eliminate calicivirus in which an organic substance mainly composed of protein is present. The present invention was completed by finding that it could be activated. In this specification, the inactivation and inactivation of calicivirus are used synonymously, and the inactivated or inactivated state of calicivirus means that the infectivity of the virus is substantially lost and detoxified. Specifically, it means that the infectious titer of the virus is 10 -4 or less compared to the control.

[課題を解決するための手段]
上記課題を解決する本発明は以下のとおりである。
[1]
カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物に、有効成分としてエタノールと酸を含み、pHが2.5〜5.0の範囲にある水溶液からなる組成物を接触させることを含む、タンパク質共存下のカリシウイルスを不活化する方法。
[2]
前記カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物が、施設または物品表面に存在し、
前記施設または物品表面の少なくとも一部または全部に水透過性及び/又は保持性のシートを被覆する工程、
前記シート上に前記組成物を供給して、シート下の前記表面に前記組成物を接触させる工程、及び
接触後、所定時間放置する工程
を含む、[1]に記載の方法。
[3]
前記表面に存在する前記物の少なくとも一部を拭き取り、前記物を拭き取った後の施設または物品表面に前記シートを被覆する[2]に記載の方法。
[4]
前記シートは、予め前記組成物を含有するものである[2]または[3]に記載の方法。
[5]
前記カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物が、吐瀉物または糞尿である[1]〜[4]のいずれかに記載の方法。
[6]
前記カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物が、カリシウイルス感染者の吐瀉物または糞尿である[1]〜[4]のいずれかに記載の方法。
[7]
前記組成物におけるエタノール濃度が40〜85%(w/w)の範囲である[1]〜[6]のいずれかに記載の方法。
[8]
前記酸が有機酸または無機酸である[1]〜[7]のいずれかに記載の方法。
[9]
前記酸の濃度が1〜10%の範囲である[1]〜[8]のいずれかに記載の方法。
[10]
前記酸は、1〜10%の濃度において、前記水溶液のpHが2.5〜5.0の範囲を示す酸である[1]〜[9]のいずれかに記載の方法。
[11]
前記酸は、クエン酸、乳酸またはリン酸である[8]に記載の方法。
[12]
前記組成物はポリグリセリン脂肪酸エステルをさらに含有する[1]〜[11]のいずれかに記載の方法。
[13]
前記カリシウイルスが、ノロウイルスである[1]〜[12]のいずれかに記載の方法。
[14]
前記カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物の容量1に対して前記組成物の供給量(容量比)が、0.5〜100の範囲である[1]〜[13]のいずれかに記載の方法。
[Means for solving problems]
The present invention for solving the above problems is as follows.
[1]
The presence of calicivirus is suspected, and the substance containing protein is brought into contact with a composition comprising an aqueous solution containing ethanol and acid as active ingredients and having a pH in the range of 2.5 to 5.0. A method of inactivating calicivirus.
[2]
The presence of the calicivirus is suspected and the protein-containing material is present on the facility or article surface;
Coating at least a part or all of the facility or article surface with a water-permeable and / or retaining sheet;
The method according to [1], comprising the steps of supplying the composition onto the sheet, bringing the composition into contact with the surface under the sheet, and allowing the composition to stand for a predetermined time after the contact.
[3]
The method according to [2], wherein at least a part of the object existing on the surface is wiped off, and the sheet is coated on a facility or article surface after the object is wiped off.
[4]
The method according to [2] or [3], wherein the sheet contains the composition in advance.
[5]
The method according to any one of [1] to [4], wherein the presence of the calicivirus is suspected and the protein-containing product is vomit or manure.
[6]
The method according to any one of [1] to [4], wherein the presence of the calicivirus is suspected and the protein-containing product is a vomit or manure of a person infected with calicivirus.
[7]
The method according to any one of [1] to [6], wherein the ethanol concentration in the composition is in the range of 40 to 85% (w / w).
[8]
The method according to any one of [1] to [7], wherein the acid is an organic acid or an inorganic acid.
[9]
The method according to any one of [1] to [8], wherein the acid concentration is in the range of 1 to 10%.
[10]
The method according to any one of [1] to [9], wherein the acid is an acid having a pH of 2.5 to 5.0 in a concentration of 1 to 10%.
[11]
The method according to [8], wherein the acid is citric acid, lactic acid, or phosphoric acid.
[12]
The method according to any one of [1] to [11], wherein the composition further contains a polyglycerol fatty acid ester.
[13]
The method according to any one of [1] to [12], wherein the calicivirus is a norovirus.
[14]
[1] to [13] in which the presence of the calicivirus is suspected and the supply amount (volume ratio) of the composition is in the range of 0.5 to 100 with respect to the volume 1 of the protein-containing product. The method according to any one.

[発明の効果]
本発明によれば、エタノール製剤(組成物)を用いて、タンパク質と共存するカリシウイルスを不活化できる方法を提供でき、特にノロウイルスの蔓延抑制に有効である。さらに、本発明によれば、医療や介護の現場において必要とされている、ノロウイルスなどのノンエンベロープウイルスを含む吐瀉物や糞尿等に対するウイルスの有効かつ安全な不活化方法を提供することができる。
[Effect of the invention]
ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, the method which can inactivate the calicivirus which coexists with protein can be provided using an ethanol formulation (composition), and it is effective especially in the spread suppression of norovirus. Furthermore, according to the present invention, it is possible to provide an effective and safe method for inactivating viruses against vomit, feces and urine containing non-enveloped viruses such as norovirus, which are required in the field of medical care and nursing care.

[発明を実施するための形態]
本発明は、カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物に、有効成分としてエタノールと酸を含み、pHが2.5〜5.0の範囲にある水溶液からなる組成物を接触させることを含む、タンパク質共存下のカリシウイルスを不活化する方法に関する。
[Mode for Carrying Out the Invention]
The present invention includes contacting a composition suspected of the presence of calicivirus and containing a protein with an aqueous solution containing ethanol and acid as active ingredients and having a pH in the range of 2.5 to 5.0. The present invention relates to a method for inactivating calicivirus in the presence of proteins.

本発明で用いる組成物は、有効成分としてエタノールと酸を含む。エタノール(エチルアルコール)は、上述のように、単独での使用では、ノロウイルス失活化または不活性に対する効果はないと言われている。それに対して、本発明者らは、エタノールに酸を併用し、かつpHを2.5〜5.0の範囲とすることで、次亜塩素酸ナトリウム水溶液では不活化効果が得られない、タンパク質が共存するノロウイルスに対して不活化効果を示すことを見出した。   The composition used in the present invention contains ethanol and an acid as active ingredients. As described above, ethanol (ethyl alcohol) is said to have no effect on norovirus inactivation or inactivation when used alone. On the other hand, the inventors of the present invention have used a norovirus coexisting with proteins, in which an inactivation effect cannot be obtained with an aqueous sodium hypochlorite solution by using ethanol in combination with an acid and adjusting the pH to a range of 2.5 to 5.0. It has been found that an inactivation effect is exhibited.

本発明に用いる組成物におけるエタノール濃度は、組成物の使用方法(原液のままで使用するのか、あるいは適当に希釈したものを使用するのか等)によって適宜選択できるが、例えば、40〜85%(w/w)の範囲であることが、カリシウイルスの不活化が確実に得られるという観点からは適当である。エタノール濃度がこの範囲であれば、細菌への効果も同時に期待されることが多く、一般的にこの濃度が細菌の殺菌に効果が高いと言われている。また、エタノール濃度が低いと噴霧等の適用後の乾燥が遅くなり、次の作業に移るまでに時間がかかってしまうため、一定以上の濃度とすることが適当である。エタノールのさらに好ましい濃度は、40〜59%(w/w)である。60%を超えると消防法上の危険物となり、取り扱いに制限が生じるからである。また、エタノール濃度が高くなると、酸および塩として、クエン酸、クエン酸塩等の溶解性が低くなるため、製造面、製品の安定性の面で扱いにくい場合がある。   The ethanol concentration in the composition used in the present invention can be appropriately selected depending on the method of use of the composition (whether it is used as a stock solution or is appropriately diluted, etc.), for example, 40 to 85% ( The range of w / w) is appropriate from the viewpoint that inactivation of calicivirus is reliably obtained. If the ethanol concentration is in this range, an effect on bacteria is often expected at the same time, and it is generally said that this concentration is highly effective for sterilizing bacteria. In addition, if the ethanol concentration is low, drying after application such as spraying is delayed, and it takes time to move to the next operation. A more preferred concentration of ethanol is 40-59% (w / w). If it exceeds 60%, it becomes a dangerous item under the Fire Service Law, and handling is restricted. In addition, when the ethanol concentration is high, the solubility of citric acid, citrate, etc. as the acid and salt is low, which may be difficult to handle in terms of production and product stability.

エタノールに併用する酸は、例えば、有機酸または無機酸であることができ、有機酸として、酢酸、酒石酸、コハク酸、リンゴ酸、フマル酸、フィチン酸、無機酸として硫酸、塩酸、硝酸、リン酸等を挙げることができる。酸の濃度は、組成物のpHを考慮して適宜決定できるが、例えば、1〜10%の範囲であることができる。酸の濃度は、低すぎると吐瀉物等の使用対象に含まれるタンパク質の緩衝能により、不活化効果が低下する可能性があり、他方、高すぎると、エタノール製剤の使用後、水やエタノールが揮発した後に固形分が残存して洗浄等で除去が必要な場合が出てくるので、上記範囲が好ましい。また、酸の種類によっては、酸が濃縮されて金属腐食を促進する恐れが生じる場合もある。酸の好ましい濃度は、1%〜5%程度である。5%より濃い場合には、組成物の使用後、水やエタノールが揮発した後に固形分が残存し易く、見た目に目立つこともあるからである。酸のより好ましい濃度は、1%〜3%程度である。   The acid used in combination with ethanol can be, for example, an organic acid or an inorganic acid. Examples of the organic acid include acetic acid, tartaric acid, succinic acid, malic acid, fumaric acid, phytic acid, and inorganic acids such as sulfuric acid, hydrochloric acid, nitric acid, and phosphorus. An acid etc. can be mentioned. The acid concentration can be appropriately determined in consideration of the pH of the composition, and can be, for example, in the range of 1 to 10%. If the acid concentration is too low, the inactivation effect may be reduced due to the buffer capacity of the protein contained in the object to be used such as sputum. On the other hand, if the acid concentration is too high, water or ethanol will not be used after the ethanol preparation is used. The above-mentioned range is preferable because solid content remains after volatilization and needs to be removed by washing or the like. Further, depending on the type of acid, there is a possibility that the acid is concentrated to promote metal corrosion. A preferable concentration of the acid is about 1% to 5%. If the concentration is higher than 5%, the solid content tends to remain after the use of the composition and the water and ethanol volatilize, which may be visually noticeable. A more preferable concentration of the acid is about 1% to 3%.

上記組成物は、pHを2.5〜5.0の範囲に設定する。pHが2.5未満となり、低くなりすぎると、金属腐食等の悪影響がより大きくなるためpH2.5以上が好ましい。pHのより好ましい範囲は、カリシウイルスの不活化効果が確実に得られるという観点から、2.5〜4.5の範囲であり、さらに好ましくは2.8〜4.0、より好ましくは3.0〜3.5の範囲である。この範囲であればほぼ確実にウイルスを不活化できるが、3.5を超えると使用条件により不活化効果が低下することがある。例えば、吐瀉物等、使用対象が緩衝能をもつ場合、不活化効果が低下する傾向がある。但し、pH4.0以下であれば、多くの場合ウイルス不活化効果は発揮される。   The composition sets the pH in the range of 2.5 to 5.0. If the pH is less than 2.5 and becomes too low, adverse effects such as metal corrosion become larger, so pH 2.5 or higher is preferable. A more preferable range of pH is in the range of 2.5 to 4.5, more preferably in the range of 2.8 to 4.0, and more preferably in the range of 3.0 to 3.5, from the viewpoint that the inactivation effect of calicivirus is reliably obtained. Within this range, the virus can be inactivated almost certainly, but if it exceeds 3.5, the inactivation effect may be reduced depending on the use conditions. For example, when the object of use such as vomit has a buffering capacity, the inactivation effect tends to decrease. However, if the pH is 4.0 or less, the virus inactivating effect is exhibited in many cases.

酸としては、上記1〜10%の濃度範囲において、組成物である水溶液のpHが2.5〜5.0の範囲を示す酸であることが適当である。そのような酸の具体例として、上記のクエン酸、乳酸およびリン酸を挙げることができる。尚、酸は、単独で使用しても、複数の酸を併用しても、組成物のpH範囲が上記範囲であれば良い。また、上記酸の少なくとも一部は、塩であってもよく、塩とすることで緩衝作用も働いてpHの調整が容易になる場合もある。塩としては、例えば、乳酸、クエン酸等の有機酸、またはリン酸等の無機酸のアルカリ金属(リチウム、ナトリウム、カリウム)塩を挙げることができる。   The acid is suitably an acid having a pH of 2.5 to 5.0 in the aqueous solution as the composition in the concentration range of 1 to 10%. Specific examples of such acids include citric acid, lactic acid and phosphoric acid described above. The acid may be used alone or in combination with a plurality of acids as long as the pH range of the composition is within the above range. In addition, at least a part of the acid may be a salt, and when it is converted to a salt, the buffering action may also work to facilitate pH adjustment. Examples of the salt include alkali metal (lithium, sodium, potassium) salts of organic acids such as lactic acid and citric acid, or inorganic acids such as phosphoric acid.

上記組成物は、水溶性である酸や酸の金属塩を水に溶解させ、その後エタノールを加えることにより調製することができる。   The above composition can be prepared by dissolving a water-soluble acid or acid metal salt in water and then adding ethanol.

上記組成物は、上記エタノールおよび酸以外に、例えば、グリセリン脂肪酸エステル、ポリグリセリン脂肪酸エステルやグリシン、植物抽出物や植物エキス等の抗菌成分を混合することにより、細菌、真菌への殺菌効果を強化して、衛生面で総合的に機能の高いエタノール製剤を調製することができる。中でもポリグリセリン脂肪酸エステルは、エタノール製剤の表面張力を低下させることにより、接触面積を広くすることができ、また、細かい隙間にも浸透しやすくなるため、上記組成物のカリシウイルス不活化効果の有効性を高めることができる。ポリグリセリン脂肪酸エステルの好適な例としては、ラウリン酸テトラグリセリド、ラウリン酸ペンタグリセリド、ラウリン酸ヘキサグリセリド等を挙げることができる。   In addition to ethanol and acid, the composition enhances the bactericidal effect on bacteria and fungi by mixing antibacterial components such as glycerin fatty acid ester, polyglycerin fatty acid ester and glycine, plant extract and plant extract. Thus, it is possible to prepare an ethanol preparation having a comprehensively high function in terms of hygiene. Among them, polyglycerol fatty acid esters can increase the contact area by reducing the surface tension of ethanol preparations, and also easily penetrate into fine gaps. Can increase the sex. Preferable examples of the polyglycerin fatty acid ester include lauric acid tetraglyceride, lauric acid pentaglyceride, lauric acid hexaglyceride and the like.

尚、本発明の上記組成物は、亜鉛含有化合物を含有しない。有機酸や無機酸を多く添加する場合、亜鉛イオンとの塩を形成し、溶解性が悪くなる恐れがあるからである。   In addition, the said composition of this invention does not contain a zinc containing compound. This is because when a large amount of organic acid or inorganic acid is added, a salt with zinc ions is formed, and the solubility may deteriorate.

本発明の方法は、上記組成物を、カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物に接触させることを含む。カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物は、例えば、吐瀉物または糞尿であることができ、さらには、カリシウイルス感染者または感染が疑われる者の吐瀉物または糞尿であることができる。吐瀉物または糞尿には、多量のタンパク質が含有され、その中にカリシウイルスが存在する場合、通常用いられる濃度の次亜塩素酸ナトリウム水溶液では、カリシウイルスを不活化することは困難である。それに対して、本発明で用いる上記組成物では、そのような吐瀉物または糞尿であっても、カリシウイルスを不活化することができる。   The method of the present invention comprises contacting the composition with an object suspected of having a calicivirus and containing a protein. The thing in which the presence of calicivirus is suspected and the protein-containing material can be, for example, vomit or manure, and can be vomit or manure of a person infected with calicivirus or suspected of being infected. it can. When a large amount of protein is contained in vomit or feces and calicivirus is present therein, it is difficult to inactivate calicivirus with a sodium hypochlorite aqueous solution having a concentration usually used. On the other hand, in the composition used in the present invention, calicivirus can be inactivated even with such sputum or manure.

上記のようにカリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物が吐瀉物または糞尿である場合、床や寝床等に排泄等される場合があり、これの適切かつ安全な処理方法が、医療現場や介護現場で望まれている。本発明の方法では、吐瀉物または糞尿が、床や寝床等の施設または物品表面に排泄等され、存在する場合、即ち、カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物が、床や寝床等の施設または物品表面に存在する場合、前記施設または物品表面の少なくとも一部または全部に水透過性及び/又は保持性のシートを被覆する。好ましくは、前記表面に存在する前記物の少なくとも一部を拭き取り、前記物を拭き取った後の施設または物品表面に前記シートを被覆する。次いで、前記シート上に前記組成物を供給して、シート下の前記表面に前記組成物を接触させ、接触後、所定時間放置する。所定時間は、例えば、1〜10分、好ましくは3〜5分とすることができる。上記所定時間の放置により、施設または物品表面に存在する物にカリシウイルスの存在する場合、タンパク質が共存するにも関わらずカリシウイルスを不活化することができる。前記組成物の供給量は、床や寝床等の施設または物品表面に存在するカリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物の量に応じて適宜決定できる。後述の実施例に示すように、前記組成物は、その組成に応じて、組成物が前記タンパク質を含有する物に供給された状態(混在状態)において、40mg/ml以下のタンパク質量の場合にカリシウイルス不活化効果を奏する。従って、前記組成物の供給量は、この点を考慮して適宜決定でき、カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物の量が多い場合には、それに応じた量の前記組成物を供給する。カリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物の量1に対して前記組成物の供給量(容量比)で、例えば、0.5〜100の範囲、好ましくは1〜20の範囲とすることができる。上記シートを被覆することなしに上記組成物を施設または物品表面に存在するカリシウイルスの存在が疑われ、かつタンパク質を含有する物に供給し、接触させることもできる。但し、カリシウイルスの存在が疑われるため、飛散の防止のために上記シートの被覆が好ましい。さらに、シートを被覆しつつ上記接触をさせることで、組成物に含まれるエタノールの蒸発を抑制でき、比較的長い時間不活化効果を持続できるという効果もある。被覆用のシートは液体の保持力が高いものが、比較的多量の組成物を保持して、カリシウイルスに対する高い不活化効果が得られるという観点から好ましい。そのような液体保持力の高いシートとしては、吸水性シート(吸水性樹脂を内蔵したもの)や不織布等を挙げることができる。   When the presence of calicivirus is suspected as described above and the protein-containing material is vomit or manure, it may be excreted on the floor or bed, etc. It is desired at the site and nursing care site. In the method of the present invention, sputum or manure is excreted or present on the surface of a facility or article such as a bed or a bed, that is, the presence of calicivirus is suspected, and the protein-containing material is a floor or a bed. If present on the surface of the facility or article, at least part or all of the surface of the facility or article is covered with a water-permeable and / or retaining sheet. Preferably, at least a part of the object existing on the surface is wiped off, and the sheet is coated on the facility or article surface after the object is wiped off. Next, the composition is supplied onto the sheet, the composition is brought into contact with the surface under the sheet, and left for a predetermined time after the contact. The predetermined time can be, for example, 1 to 10 minutes, preferably 3 to 5 minutes. When the calicivirus is present in the object or the surface of the article, the calicivirus can be inactivated despite the presence of the protein. The amount of the composition to be supplied can be appropriately determined according to the amount of a protein containing protein that is suspected of the presence of calicivirus present on the surface of a facility or article such as a bed or bed. As shown in the examples described later, the composition has a protein amount of 40 mg / ml or less in a state where the composition is supplied to the protein-containing product (mixed state) according to the composition. Has an effect of inactivating calicivirus. Therefore, the supply amount of the composition can be appropriately determined in consideration of this point, and when the presence of calicivirus is suspected and the amount of the protein-containing material is large, the amount of the composition according to the amount Supply. Presence of calicivirus and the amount (volume ratio) of the composition to the amount 1 of the protein-containing product is, for example, in the range of 0.5 to 100, preferably in the range of 1 to 20. can do. Without covering the sheet, the composition may be supplied to and contacted with a suspected presence of calicivirus present on the facility or article surface and containing protein. However, since the presence of calicivirus is suspected, it is preferable to cover the sheet in order to prevent scattering. Furthermore, by contacting the sheet while covering the sheet, it is possible to suppress the evaporation of ethanol contained in the composition and to maintain the inactivation effect for a relatively long time. A coating sheet having a high liquid holding power is preferable from the viewpoint that a relatively large amount of the composition can be held and a high inactivation effect on calicivirus can be obtained. Examples of such a sheet having a high liquid holding ability include a water absorbent sheet (containing a water absorbent resin) and a nonwoven fabric.

前記物を拭き取った後の施設または物品表面に被覆する前記シートは、予め前記組成物を含有するものであることもできる。また、前記表面に存在する前記物の少なくとも一部の拭き取りに使用する物、例えば、不織布等にも、予め前記組成物を含有させておくことができる。前記シート等への前記組成物への含有(供給)は、使用の直前に実施することができるが、予めシート等への前記組成物を含有させ、密閉容器(例えば、袋)に密閉状態に保管したものであることもできる。   The said sheet | seat coat | covered on the plant | facility or article | item surface after wiping off the said thing can also contain the said composition previously. Moreover, the said composition can be previously contained also in the thing used for wiping off at least one part of the said thing which exists in the said surface, for example, a nonwoven fabric etc. Inclusion (supply) of the composition in the sheet or the like can be carried out immediately before use, but the composition in the sheet or the like is previously contained and sealed in a sealed container (for example, a bag). It can also be stored.

上記組成物の接触時の前記シートへの供給方法は特に制限はないが、例えば、組成物を注ぐか、あるいは噴霧することができる。   Although there is no restriction | limiting in particular in the supply method to the said sheet | seat at the time of the contact of the said composition, For example, a composition can be poured or sprayed.

本発明の方法においては、上記の方法で処置された施設または物品の表面に対して、さらに上記組成物をさらに噴霧し、カリシウイルスの不活化を徹底することもできる。   In the method of the present invention, the surface of the facility or article treated by the above method can be further sprayed with the above composition to thoroughly inactivate calicivirus.

本発明の組成物は、カリシウイルスの中でもノロウイルスの不活化に有効である。   The composition of the present invention is effective for inactivating norovirus among caliciviruses.

本発明の方法の具体的な方法の一例は以下のとおりである。
床等に飛び散った患者の吐瀉物や糞便を処理するときには、使い捨てのガウン(エプロン)、マスクと手袋を着用し汚物中のウイルスが飛び散らないように、糞便、吐しゃ物をペーパータオル等で静かに拭き取ることが適当である。拭き取った後は、床をシートで被覆し、被覆したシートに前記組成物を供給し、シート下の床を消毒する。さらに、シートで被覆されていない床も念のため前記組成物を噴霧する等して、飛び散った可能性がある飛沫も処理することが好ましい。あるいは、拭き取った後に、シートで被覆することなく、前記組成物で浸すように床をさらに拭き取ることもできる。シートを用いない方法は、飛び散った吐瀉物等が少量の場合には適当である場合がある。これらの処理後、必要により、水拭きをすることもできる。
An example of a specific method of the present invention is as follows.
When handling vomit and feces from patients who are scattered on the floor, wear disposable gowns (aprons), masks and gloves, and gently dispose of feces and vomits with paper towels, etc. so that viruses in the filth do not scatter. It is appropriate to wipe off. After wiping, the floor is covered with a sheet, the composition is supplied to the coated sheet, and the floor under the sheet is disinfected. Furthermore, it is preferable to treat splashes that may have been scattered, for example, by spraying the composition on the floor not covered with a sheet. Alternatively, after wiping, the floor can be further wiped so as to be immersed in the composition without being covered with a sheet. A method that does not use a sheet may be appropriate when a small amount of sputum is scattered. After these treatments, if necessary, water can be wiped off.

尚、上記組成物は、タンパク質を含有するカリシウイルスの存在が疑われる物に対してだけではなく、例えば、食器類、食品用機械、食品用機器、手袋、手指等の皮膚、食卓、まな板、ふきん等に付着しているウイルスを不活化するのにも使用できる。食器類や食品用機械器具のウイルス不活化には、浸漬しての使用が有効である。浸漬できない場合はこれらの物へ噴霧して使用することもできる。浸漬、噴霧ができない場合、ダスターに本発明の組成物を染み込ませて、対象表面を拭き取って使用することもできる。この場合は酸やエタノールの濃度が高い方が好ましい。   In addition, the above composition is not only for those suspected of having a calicivirus containing protein, but for example, tableware, food machinery, food equipment, gloves, fingers and other skin, table, cutting board, It can also be used to inactivate viruses attached to cloths and the like. It is effective to immerse the tableware and food machinery in order to inactivate viruses. When it cannot be immersed, it can also be used by spraying on these items. When immersion and spraying are not possible, the duster can be impregnated with the composition of the present invention, and the target surface can be wiped off. In this case, a higher concentration of acid or ethanol is preferable.

[実施例]
以下、本発明を実施例に基づいてさらに詳細に説明する。
[Example]
Hereinafter, the present invention will be described in more detail based on examples.

例1(参考例)ネコカリシウイルスに対する感染性不活化効果試験(エタノール濃度依存性)
エタノール試薬特級99.5%をW/W%で80%、70%、60%、50%、40%、30%、20%となるようにM/100リン酸緩衝液pH7.2(以下、PBSと略記する)で希釈しサンプルを調製し、以下に示す試験方法にてサンプルの消毒効果(ウイルス不活化効果)を測定した。結果を表1に示す。
Example 1 (Reference Example) Infectivity inactivation effect test against feline calicivirus (depending on ethanol concentration)
M / 100 phosphate buffer pH 7.2 (hereinafter referred to as “ethanol reagent special grade 99.5%” at 80%, 70%, 60%, 50%, 40%, 30%, 20% in W / W%) The sample was diluted with PBS (abbreviated as PBS), and the sample disinfection effect (virus inactivation effect) was measured by the test method shown below. The results are shown in Table 1.

試験方法
1)サンプルの消毒効果(ウイルス不活化効果)を測定するための使用ウイルスは、ネコカリシウイルスF9株を用いた。
2)サンプル1およびサンプル2の原液および2倍希釈液(M/100 リン酸緩衝食塩液pH7.2:PBSにて希釈)を用いた。消毒効果のエンドポイントが得られなかった場合は、さらにサンプルを希釈した。
3)それぞれのサンプル液900μlに、ウイルス液を100μl加え、室温にて1分間と30分間作用させた。
反応後100μl採取し、多量のタンパク質を含む日水製薬社製ブイヨン液(肉エキス5mg、ペプトン15mg/ml)900μlに加えた。日水製薬社製ブイヨンを用いたのは、作用後の試験サンプルの消毒効果の進行を阻止するためである。
4)用いたウイルスのウイルスコントロール群は、消毒薬サンプルの代わりにブイヨン液で希釈し感染価を測定した。
5)ブイヨン液で10倍に希釈したウイルス液は、ブイヨン液にてさらに10-1〜10-4に希釈した(階段希釈液)。
6)6穴プレート上に4日間培養させたCrFK細胞の細胞増殖用培地(ウシ胎児血清10%含むMEM培地)をアスピレーターにて取り除き、各階段希釈したウイルス液について3穴の細胞を使用し、それぞれに100μl接種した。
7)インキュベータ内で1時間ウイルス吸着を行った後、ウシ胎児血清を含まない組織培養液(MEM培地;MINIMUM ESSENTIAL MEDIUM EAGLE (MODIFIED) WITH EARLE`S SALTS(MIP Biomedicals,Inc)を重炭酸ナトリウムにてpH7.1に調整)を1穴あたり3ml加え、そして取り除くことにより細胞の洗浄を行った。(検査サンプルの細胞への毒性を除くため)
8)0.7%寒天を含むMEM寒天培地(0.03%L−グルタミン、0.22%重炭酸ナトリウム含有)をプレート1穴あたり3ml加え(40℃)、寒天培地が固形化したら6穴プレートを反転し、5%CO2インキュベータにて72時間培養した。
9)培養終了後の6穴プレートに1穴あたり1.5mlの10%ホルマリンPBS液を加え1時間室温で放置し細胞固定後、流水で寒天培地を取り除き、メチレンブルー染色を行った。この方法により、ウイルス数をプラークとして数えることができるようになった。
10)消毒薬サンプルを加えないウイルスの感染価に対し、消毒薬を加えたウイルスの感染価を比較することで消毒効果を評価した。
Test Method 1) Feline calicivirus F9 strain was used as the virus used to measure the disinfection effect (virus inactivation effect) of the sample.
2) The stock solution of Sample 1 and Sample 2 and a 2-fold diluted solution (M / 100 phosphate buffered saline pH 7.2: diluted with PBS) were used. If the end point of the disinfection effect was not obtained, the sample was further diluted.
3) 100 μl of virus solution was added to 900 μl of each sample solution and allowed to act at room temperature for 1 minute and 30 minutes.
After the reaction, 100 μl was collected and added to 900 μl of broth liquid (5 mg of meat extract, 15 mg / ml of peptone) manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd. containing a large amount of protein. The reason why the broth made by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd. was used is to prevent the progress of the disinfection effect of the test sample after the action.
4) The virus control group of the virus used was diluted with a broth solution instead of the disinfectant sample, and the infectivity titer was measured.
5) The virus solution diluted 10 times with the bouillon solution was further diluted 10 -1 to 10 -4 with the bouillon solution (step dilution solution).
6) Remove the cell growth medium (MEM medium containing 10% fetal bovine serum) of CrFK cells cultured on a 6-well plate for 4 days using an aspirator, and use 3 well cells for each step diluted virus solution, Each was inoculated with 100 μl.
7) After adsorbing virus for 1 hour in the incubator, tissue culture solution without fetal bovine serum (MEM medium; MINIMUM ESSENTIAL MEDIUM EAGLE (MODIFIED) WITH EARLE`S SALTS (MIP Biomedicals, Inc) in sodium bicarbonate The cell was washed by adding and removing 3 ml per well. (To remove cell toxicity of test sample)
8) 3 ml of MEM agar medium (containing 0.03% L-glutamine and 0.22% sodium bicarbonate) containing 0.7% agar per plate (40 ° C.), and 6 holes when the agar medium solidifies The plate was inverted and cultured for 72 hours in a 5% CO 2 incubator.
9) 1.5 ml of 10% formalin PBS solution per well was added to the 6-well plate after completion of the culture and left at room temperature for 1 hour. After fixing the cells, the agar medium was removed with running water and stained with methylene blue. This method allowed the virus count to be counted as plaques.
10) The disinfection effect was evaluated by comparing the infectivity value of the virus to which the disinfectant was added to the infectivity value of the virus to which no disinfectant sample was added.

まとめ:上記結果から、エタノール単独ではネコカリシウイルスの不活化には有効でないことが分かる。 Summary: The above results show that ethanol alone is not effective in inactivating feline calicivirus.

例2(参考例) ネコカリシウイルスに対する感染性不活化効果試験(エタノール含有液のpH依存性)1
表2に示す組成のサンプルを調製し、例1に記載した試験方法にてサンプルの消毒効果(ウイルス不活化効果)を測定した。結果を表3に示す。
Example 2 (Reference Example) Infectivity inactivation effect test against feline calicivirus (pH dependence of ethanol-containing solution) 1
Samples having the compositions shown in Table 2 were prepared, and the disinfection effect (virus inactivation effect) of the samples was measured by the test method described in Example 1. The results are shown in Table 3.

※グリセリン脂肪酸エステル:(モノ)カプリン酸モノグリセリド * Glycerin fatty acid ester: (mono) capric acid monoglyceride

まとめ:アルカリ性を示すサンプル1はネコカリシウイルスに対する消毒効果を認めなかった。酸性を示すサンプル2には消毒効果が認められ、1分間の作用時間で検出限界以下、2倍に希釈した場合でもウイルスの感染価を1万分の1に下げることが分かった。 Summary: Sample 1 showing alkalinity did not show a disinfection effect against feline calicivirus. Sample 2 showing acidity has a disinfecting effect, and it has been found that the virus infectivity titer is reduced to 1 / 10,000 even when diluted 2 times below the detection limit in an action time of 1 minute.

例3(参考例)ネコカリシウイルスに対する感染性不活化効果試験(エタノール含有液のpH依存性)2
表4に記載のサンプルにネコカリシウイルス原液を等量加え、室温1分間反応後、5倍濃度のブイヨン液(タンパク質量80mg/ml)で10倍に希釈し細胞毒性を消失させた。更に10倍段階希釈で10-6までサンプルの希釈列には希釈液にMEMを用いた。各希釈液をコンフルエントになった3日間培養ネコ肝臓細胞(CrFK)6穴プレートの3穴に各100μl接種し、ウイルス吸着90分後に、0.7%寒天を含むMEM培地を重層した。34℃、5%CO2培養インキュベータにて50時間培養した。10%ホルマリンを用いた数時間の固定後、寒天培地を除去し、メチレンブルー染色液を加え、染色後のプラーク数をカウントした。結果を表5に示す。
Example 3 (Reference Example) Infectivity inactivation effect test against feline calicivirus (pH dependence of ethanol-containing solution) 2
An equal amount of feline calicivirus stock solution was added to the samples shown in Table 4, reacted for 1 minute at room temperature, and diluted 10-fold with a 5-fold bouillon solution (protein amount 80 mg / ml) to eliminate cytotoxicity. Further, MEM was used as a diluent in the dilution series of samples up to 10 −6 by 10-fold serial dilution. 100 μl of each diluted solution was inoculated into 3 wells of a 3 day-cultured feline liver cell (CrFK) 6-well plate that had become confluent and 90 minutes after virus adsorption, MEM medium containing 0.7% agar was overlaid. The cells were cultured for 50 hours in a 34 ° C., 5% CO 2 culture incubator. After fixing with 10% formalin for several hours, the agar medium was removed, methylene blue staining solution was added, and the number of plaques after staining was counted. The results are shown in Table 5.

※組成の%は%(W/W)を示す。
※次亜塩素酸ナトリウムは、純正化学(株)製であり、有効塩素濃度の測定値は5.6%である。
※ネコカリシウイルス:F9株
※サンプル1〜4のエタノール濃度、サンプル1〜8のクエン酸濃度およびサンプル9〜13の次亜塩素酸ナトリウム濃度は、ウイルスと等量混合後2倍に希釈されるのでいずれも濃度は2分の1になる。
*% Of composition indicates% (W / W).
* Sodium hypochlorite is manufactured by Junsei Chemical Co., Ltd., and the measured value of effective chlorine concentration is 5.6%.
* Feline calicivirus: F9 strain * The ethanol concentration of samples 1 to 4, the citric acid concentration of samples 1 to 8 and the sodium hypochlorite concentration of samples 9 to 13 are diluted twice after mixing with an equal amount of virus. As a result, the concentration is halved.

まとめ
1.クエン酸とエタノールの混合製剤は、ネコカリシウイルスに対してクエン酸5%から1.25%まで優れたウイルス不活化効果を認めたが、0.625%では効果が減少した。
2.一方、エタノールを含まないクエン酸のみのグループでは、5%に於いても効果がなかった。
3.例1の結果を併せるとそれぞれ単体では効果のないものが、混合することにより効果を発揮したことが明らかになった。
4.次亜塩素酸ナトリウムのウイルス完全不活化には、最終濃度200ppmが必要であった。
Summary 1. The mixed preparation of citric acid and ethanol showed an excellent virus inactivating effect from 5% to 1.25% citric acid against feline calicivirus, but the effect decreased at 0.625%.
2. On the other hand, the citric acid only group containing no ethanol had no effect even at 5%.
3. When the results of Example 1 were combined, it became clear that those that were not effective by themselves were effective when mixed.
4). A final concentration of 200 ppm was required for complete virus inactivation of sodium hypochlorite.

例4(実施例) タンパク質共存下のネコカリシウイルスに対する感染性不活化効果1
表6に示すサンプルを調製し、例3に記載した方法に従って消毒効果(ウイルス不活化効果)を測定した。但し、ネコカリシウイルス液はタンパク質量の異なる普通ブイヨンを含むもの、および普通ブイヨンを含まないMEM培地のみ含むものを用いた。比較として次亜塩素酸ナトリウムについても同様の試験を行った。
Example 4 (Example) Infectious inactivation effect on feline calicivirus in the presence of protein 1
Samples shown in Table 6 were prepared, and the disinfection effect (virus inactivation effect) was measured according to the method described in Example 3. However, the feline calicivirus liquid used was one containing normal bouillon having a different amount of protein and one containing only MEM medium not containing normal bouillon. As a comparison, the same test was conducted for sodium hypochlorite.

ブイヨンは極東製薬工業社製の普通ブイヨンを5倍濃度で使用した(タンパク質量85mg/ml)。ブイヨンとウイルスを等量混合したので42.5mg/mlとなり、さらにサンプルとウイルス液を等量混合したので最終タンパク質濃度は21.5mgである。反応時間は室温1分間とした。   As the bouillon, ordinary bouillon manufactured by Kyokuto Pharmaceutical Co., Ltd. was used at a 5-fold concentration (protein amount: 85 mg / ml). Since equal amounts of bouillon and virus were mixed, the amount was 42.5 mg / ml. Further, equal amounts of sample and virus solution were mixed, so the final protein concentration was 21.5 mg. The reaction time was 1 minute at room temperature.

サンプル( )内は、ウイルス液と合わせた時の最終濃度 Sample () shows final concentration when combined with virus solution

まとめ
1.ネコカリシウイルスにブイヨンタンパク質を加えることにより、消毒効果の減少が認められた。
2.クエン酸5%+エタノールではタンパク質共存下でも消毒効果は減少しなかった。
3.乳酸5%単独では、ウイルス不活化効果を認めなかったが、エタノールを加えることにより効果を認めた。
4.次亜塩素酸ナトリウムは、高濃度(最終濃度800ppm)であるにもかかわらず、タンパク質共存下では消毒効果が消失した。
5.自然界のウイルスは何らかの形でタンパク質と混在しているため、クエン酸5%+エタノールのような、タンパク質混在下のウイルスを不活化する効果は、非常に有用である。
Summary 1. The addition of bouillon protein to feline calicivirus reduced the disinfection effect.
2. With 5% citric acid + ethanol, the disinfection effect did not decrease even in the presence of protein.
3. Lactic acid 5% alone did not show the virus inactivating effect, but the effect was recognized by adding ethanol.
4). Although sodium hypochlorite had a high concentration (final concentration 800 ppm), the disinfection effect disappeared in the presence of protein.
5. Since natural viruses are mixed with proteins in some form, the effect of inactivating viruses under mixed proteins such as 5% citric acid + ethanol is very useful.

例5(実施例)タンパク質共存下のネコカリシウイルスに対する感染性不活化効果2
ネコカリシウイルスに混在するタンパク質量と、不活化効果の相関性を調べた。表7に示すサンプルを調製し、例3に記載した方法に従って消毒効果(ウイルス不活化効果)を測定した。但し、ネコカリシウイルス液はタンパク質量の異なる普通ブイヨンを含むもの、および普通ブイヨンを含まないMEM培地のみ含むものを用いた。比較として次亜塩素酸ナトリウムについても同様の試験を行った。
Example 5 (Example) Infectious inactivation effect 2 on feline calicivirus in the presence of protein 2
The correlation between the amount of protein mixed in feline calicivirus and the inactivation effect was examined. Samples shown in Table 7 were prepared, and the disinfection effect (virus inactivation effect) was measured according to the method described in Example 3. However, the feline calicivirus liquid used was one containing normal bouillon having a different amount of protein and one containing only MEM medium not containing normal bouillon. As a comparison, the same test was conducted for sodium hypochlorite.

但し、ネコカリシウイルス液は、5倍濃度の普通ブイヨン(85mg/ml)を加え、タンパク質量40mg/ml、10mg/ml、8mg/mlとして物を用いた。タンパク質量0mg/mlについてはMEM(タンパク質を含まない組織培養液)で代用した。サンプルとウイルス液は、等量混合し、室温、60秒間反応させた。   However, the feline calicivirus solution was added with 5 times normal bouillon (85 mg / ml) and used as protein amounts of 40 mg / ml, 10 mg / ml and 8 mg / ml. For the protein amount of 0 mg / ml, MEM (tissue culture solution containing no protein) was substituted. The sample and virus solution were mixed in equal amounts and reacted at room temperature for 60 seconds.

※および( )内の数字は、ウイルス液と混合した時の最終製剤濃度またはタンパク質濃度を示す。 * Numbers in parentheses indicate final drug concentration or protein concentration when mixed with virus solution.

まとめ
1.クエン酸5%(2.5%)+エタノールは、20mg/mlのタンパク質を含むウイルスを完全に不活化した。
2.クエン酸2.5%(1.25%)+エタノールは、10mg/mlのタンパク質を含むウイルスを完全に不活化した。
3.クエン酸1.25%(0.625%)+エタノールは、4mg/mlのタンパク質を含むウイルスを103まで不活化したが完全に不活化していない。
4.次亜塩素酸ナトリウム1600ppm(800ppm)は、4mg/mlのタンパク質を含むウイルスを完全に不活化したが10mg/ml、20mg/mlのタンパク質を含むウイルスについては不活化できなかった。
5.次亜塩素酸ナトリウム800ppm(400ppm)、次亜塩素酸ナトリウム400ppm(200ppm)は、4mg/mlのタンパク質を含むウイルスに対しても不活化できなかった。
Summary 1. Citric acid 5% (2.5%) + ethanol completely inactivated the virus containing 20 mg / ml protein.
2. Citric acid 2.5% (1.25%) + ethanol completely inactivated the virus containing 10 mg / ml protein.
3. Citric acid 1.25% (0.625%) + ethanol inactivated virus containing 4 mg / ml protein up to 10 3 but not completely inactivated.
4). Sodium hypochlorite 1600 ppm (800 ppm) completely inactivated a virus containing 4 mg / ml protein, but could not inactivate viruses containing 10 mg / ml and 20 mg / ml protein.
5. Sodium hypochlorite 800 ppm (400 ppm) and sodium hypochlorite 400 ppm (200 ppm) could not be inactivated against viruses containing 4 mg / ml protein.

例6(実施例)タンパク質共存下のネコカリシウイルスに対する感染性不活化効果3
表8に示すサンプルを調製し、例3に記載した方法に従って消毒効果(ウイルス不活化効果)を測定した。但し、ネコカリシウイルス液はタンパク質量の異なる普通ブイヨンを含むもの、および普通ブイヨンを含まないMEM培地のみ含むものを用いた。比較として次亜塩素酸ナトリウムについても同様の試験を行った。但し、ネコカリシウイルスに10倍濃度の普通ブイヨン(170mg/ml)を加え、タンパク質量80mg/ml、40mg/ml、または20mg/mlを含むウイルス液を作製し、これを用いた。タンパク質量0mg/mlについてはMEM(タンパク質を含まない組織培養液)で代用した。濃度の異なるクエン酸、エタノール、次亜塩素酸ナトリウム溶液に、タンパク質量の異なるネコカリシウイルス液を等量加え、室温、60秒間反応させた。
Example 6 (Example) Infectious inactivation effect on feline calicivirus in the presence of protein 3
Samples shown in Table 8 were prepared, and the disinfection effect (virus inactivation effect) was measured according to the method described in Example 3. However, the feline calicivirus liquid used was one containing normal bouillon having a different amount of protein and one containing only MEM medium not containing normal bouillon. As a comparison, the same test was conducted for sodium hypochlorite. However, a normal bouillon (170 mg / ml) having a 10-fold concentration was added to feline calicivirus to prepare a virus solution containing a protein amount of 80 mg / ml, 40 mg / ml, or 20 mg / ml, and this was used. For the protein amount of 0 mg / ml, MEM (tissue culture solution containing no protein) was substituted. Equal amounts of feline calicivirus solutions having different protein amounts were added to citric acid, ethanol, and sodium hypochlorite solutions having different concentrations, and reacted at room temperature for 60 seconds.

NTはNon Test
※および( )内の数字は、ウイルス液と混合した時の最終製剤濃度またはタンパク質濃度
NT is Non Test
* The numbers in parentheses are the final formulation concentration or protein concentration when mixed with the virus solution.

まとめ
1.クエン酸5%(2.5%)+エタノールは、最終濃度40mg/mlのタンパク質共存下でウイルスを完全に不活化した。
2.クエン酸2.5%(1.25%)+エタノールは、最終濃度10mg/mlのタンパク質共存下で約106の感染性の減少を示した。
3.次亜塩素酸ナトリウム3200ppm(1600ppm)は、10mg/mlのタンパク質共存下ではウイルスを完全に不活化したが、タンパク質濃度が高くなるにつれウイルスの不活化効果が急激に減少した。
4.次亜塩素酸ナトリウムは、1600ppm(800ppm)以下の濃度では、タンパク質共存下でウイルス不活化作用が消失することが判った。
Summary 1. Citric acid 5% (2.5%) + ethanol completely inactivated the virus in the presence of protein at a final concentration of 40 mg / ml.
2. Citric acid 2.5% (1.25%) + ethanol showed a reduction in infectivity of about 10 6 in the presence of protein at a final concentration of 10 mg / ml.
3. Sodium hypochlorite 3200 ppm (1600 ppm) completely inactivated the virus in the presence of 10 mg / ml protein, but the virus inactivation effect decreased rapidly as the protein concentration increased.
4). Sodium hypochlorite was found to lose its virus inactivating action in the presence of protein at a concentration of 1600 ppm (800 ppm) or less.

例7(参考例)ノロウイルスに対する効果
RT-PCR法により抗ノロウイルスへの不活化効果の評価を行った。試験サンプルの組成は、エタノール68%、乳酸10%、水22%であり、試験材料としては糞便由来のノロウイルス(NV遺伝子2群に属する)を用いた。
Example 7 (Reference Example) Effect on Norovirus
The inactivation effect on anti-norovirus was evaluated by RT-PCR. The composition of the test sample was ethanol 68%, lactic acid 10%, and water 22%, and stool-derived norovirus (belonging to NV gene group 2) was used as the test material.

ノロウイルス懸濁液100μLに試験サンプル400μLを添加し、ボルテックスミキサーにて撹拌し、30分後にRNA抽出を行った。RNA抽出物をDNaseで処理した後にRT-PCR(逆転写+ポリメラーゼ連鎖反応)を行い、さらにPCR法にて、増幅した。増幅物を2.5%アガロースゲル電気泳動に付し、電気泳動写真を撮影した。試験サンプルについては2度同様の操作を行った。   400 μL of a test sample was added to 100 μL of Norovirus suspension, and the mixture was stirred with a vortex mixer, and RNA extraction was performed 30 minutes later. The RNA extract was treated with DNase, followed by RT-PCR (reverse transcription + polymerase chain reaction), and further amplified by the PCR method. The amplified product was subjected to 2.5% agarose gel electrophoresis, and an electrophoresis photograph was taken. The same operation was performed twice for the test sample.

比較として、(1)ノロウイルス懸濁液500μL、(2)ノロウイルス懸濁液100μLに消毒用エタノール400μLを添加したもの、(3)ノロウイルス懸濁液100μLに次亜塩素酸ナトリウム溶液(200ppm)400μLを添加したものについても同様の操作を行った。   For comparison, (1) Norovirus suspension 500 μL, (2) Norovirus suspension 100 μL with disinfecting ethanol 400 μL, (3) Norovirus suspension 100 μL with sodium hypochlorite solution (200 ppm) 400 μL. The same operation was performed for the added one.

その結果、試験サンプルおよび次亜塩素酸ナトリウム溶液を用いた系についてはノロウイルスのバンド(344bp)は観測されず、ノロウイルス懸濁液のみおよび消毒用エタノールを用いた系についてはノロウイルスのバンド(344bp)が観測された。   As a result, norovirus band (344 bp) was not observed for the test sample and the system using sodium hypochlorite solution, and norovirus band (344 bp) was used for the system using only norovirus suspension and disinfecting ethanol. Was observed.

例8(実施例)
材料
1.ウイルス:ネコカリシウイルス F9株
2.細胞:CrFK細胞
3.ブイヨン液:10倍濃度 160mg/ml
4.ウイルス希釈液:MEM培地(FCS-)
Example 8 (Example)
Material 1. Virus: Feline calicivirus F9 strain2. 2. Cell: CrFK cell Bouillon liquid: 10 times concentration 160mg / ml
4). Virus dilution: MEM medium (FCS-)

サンプル5:次亜塩素酸ナトリウム1600ppm水溶液 Sample 5: Sodium hypochlorite 1600ppm aqueous solution

方法:
1.表9に示すサンプルとタンパク質量 80mg/ml,20mg/ml,10mg/ml,0mg/mlを含むネコカリシウイルス原液を100μlずつ等量混合し、室温で60秒間反応させた。
2.反応後直ちにサンプル・ウイルス混合液100μlを80mg/ml濃度のブイヨン液900μlに加え反応を止めた。これをMEM培地で10-2から10-5まで10倍階段希釈を行った。
3.培養3日目の6穴プレートに10倍階段希釈を行ったウイルス・サンプル液を100μl接種し、90分のウイルス吸着操作を行った後、0.7%寒天培地で重層し5%CO2インキュベーター内で34℃60時間培養した。
4.培養終了後10%ホルマリン固定、メチレンブルー染色により形成されたプラーク数を数え、感染価を判定した。
5.ウイルスコントロールは、サンプルの代わりにMEMを用い、方法はサンプルに準じた。
結果を表10に示す。
Method:
1. Samples shown in Table 9 and feline calicivirus stock solutions containing protein amounts of 80 mg / ml, 20 mg / ml, 10 mg / ml, and 0 mg / ml were mixed in an equal volume of 100 μl and reacted at room temperature for 60 seconds.
2. Immediately after the reaction, 100 μl of the sample / virus mixture was added to 900 μl of a bouillon solution with a concentration of 80 mg / ml to stop the reaction. This was serially diluted 10-fold from 10 -2 to 10 -5 with MEM medium.
3. Inoculate 100 μl of virus sample solution diluted 10-fold in a 6-well plate on the third day of culture, and after 90 minutes of virus adsorption, overlay with 0.7% agar medium in a 5% CO 2 incubator. The cells were cultured at 34 ° C for 60 hours.
4). After completion of the culture, the number of plaques formed by 10% formalin fixation and methylene blue staining was counted to determine the infectious titer.
5. For virus control, MEM was used instead of the sample, and the method was based on the sample.
The results are shown in Table 10.

まとめ
1.サンプル1についてはウイルス不活化効果を認め、タンパク質量10mg/mlの共存下に於いても、ウイルス感染性を完全に不活化した。
2.サンプル2についてはウイルス不活化を認めなかった。但し、後述の例11に示すように、サンプル2の組成でもウイルス液量に対する使用量を増大させるとウイルス不活化を認められるようになる。
3.サンプル3及び4についてはウイルス不活化効果を認めたが、サンプル1には及ばなかった。
Summary 1. Sample 1 showed a virus inactivating effect, and virus infectivity was completely inactivated even in the presence of a protein amount of 10 mg / ml.
2. For sample 2, no virus inactivation was observed. However, as shown in Example 11 to be described later, even with the composition of sample 2, virus inactivation can be recognized when the amount used is increased with respect to the amount of virus solution.
3. Samples 3 and 4 showed a virus inactivating effect, but did not reach sample 1.

例9(実施例)
材料
1.ウイルス:ネコカリシウイルス F9株
2.細胞:CrFK細胞
3.ブイヨン液:10倍濃度 160mg/ml
4.ウイルス希釈液:MEM培地(FCS-)
Example 9 (Example)
Material 1. Virus: Feline calicivirus F9 strain2. 2. Cell: CrFK cell Bouillon liquid: 10 times concentration 160mg / ml
4). Virus dilution: MEM medium (FCS-)

方法:
1.表11に示すサンプルとタンパク質量20mg/ml,10mg/ml,0mg/mlを含むネコカリシウイルス原液を100μlずつ等量混合し、室温で60秒間反応させた。
2.反応後直ちにサンプル・ウイルス混合液100μlを80mg/ml濃度のブイヨン液900μlに加え反応を止めた。これをMEM培地で10-2から10-5まで10倍階段希釈を行った。
3.培養3日目の6穴プレートに10倍階段希釈を行ったウイルス・サンプル液を100μl接種し、90分のウイルス吸着操作を行った後、0.7%寒天培地で重層し5%CO2インキュベーター内で34℃、60時間培養した。
4.培養終了後10%ホルマリン固定、メチレンブルー染色により形成されたプラーク数を数え、感染価を判定した。
5.ウイルスコントロールは、サンプルの代わりにMEMを用い、方法はサンプルに準じた。
Method:
1. The sample shown in Table 11 and feline calicivirus stock solution containing 20 mg / ml, 10 mg / ml, and 0 mg / ml of protein were mixed in an equal volume of 100 μl and reacted at room temperature for 60 seconds.
2. Immediately after the reaction, 100 μl of the sample / virus mixture was added to 900 μl of a bouillon solution with a concentration of 80 mg / ml to stop the reaction. This was serially diluted 10-fold from 10 -2 to 10 -5 with MEM medium.
3. Inoculate 100 μl of virus sample solution diluted 10-fold in a 6-well plate on the third day of culture, and after 90 minutes of virus adsorption, overlay with 0.7% agar medium in a 5% CO 2 incubator. The cells were cultured at 34 ° C for 60 hours.
4). After completion of the culture, the number of plaques formed by 10% formalin fixation and methylene blue staining was counted to determine the infectious titer.
5. For virus control, MEM was used instead of the sample, and the method was based on the sample.

まとめ
1.サンプル1〜6についてはウイルス不活化効果を認め、タンパク質量20mg/mlの共存下に於いても、ウイルス感染性を完全に不活化した。
2.サンプル7については、タンパク質量20mg/mlを含むウイルス液中のウイルスに対しては不活化効果が低い成績であったが10mg/mlより低濃度のタンパク質を含むウイルス液中のウイルスに対しては不活化効果を認めた。
Summary 1. For samples 1 to 6, the virus inactivating effect was observed, and the virus infectivity was completely inactivated even in the presence of a protein amount of 20 mg / ml.
2. For sample 7, the inactivation effect was low for viruses in virus solution containing 20 mg / ml of protein, but for viruses in virus solution containing protein at a concentration lower than 10 mg / ml. An inactivation effect was observed.

例10(実施例)
材料
ウイルス:ネコカリシウイルス F9株
普通ブイヨン10倍濃度:160mg/ml
次亜塩素酸ナトリウム:有効塩素濃度 4%
Example 10 (Example)
Material virus: Feline calicivirus F9 strain normal bouillon 10 times concentration: 160mg / ml
Sodium hypochlorite: effective chlorine concentration 4%

方法
1.表13に示すサンプルに加えるネコカリシウイルスに普通ブイヨンを加えることにより最終タンパク質濃度80mg/ml,40mg/ml,20mg/ml,0mg/mlとなるように調整した4種類のタンパク質濃度の異なるウイルス液を用意した。
2.サンプルごとに使用するウイルスは、タンパク質濃度の異なるウイルスでウイルス不活化活性を測定した。
3.サンプルを100μlとウイルス100μl等量混合し、ボルテックスにより室温25℃、60秒間攪拌作用させた後、100μlを採取し、900μlの80mg/mlタンパク質濃度のブイヨン液に加え10倍に希釈した。このような高濃度のブイヨン液を使用したのは、サンプルの作用停止とプラーク形成に用いるCrFK細胞に対する消毒薬の細胞毒性を無毒化させるためである。
4.10-2から10-5までの希釈液にはMEMを用い、6穴プレートに各希釈液を1希釈に付き2穴ずつ100μl接種した。
5.コントロールウイルス群は各濃度のタンパク質を含むウイルスにMEMを等量に加えた。
6.90分間の細胞へのウイルス吸着、寒天培地の重層、34℃で60時間培養した。
7.培養後のプレートに形成されたプラークは、ホルマリン固定の後、メチレンブルー染色しプラーク数により感染価を計算した。
Method 1. Four types of virus solutions with different protein concentrations, adjusted to the final protein concentrations of 80 mg / ml, 40 mg / ml, 20 mg / ml, and 0 mg / ml by adding normal broth to the feline calicivirus added to the samples shown in Table 13. Prepared.
2. Viruses used for each sample were viruses with different protein concentrations, and the virus inactivating activity was measured.
3. 100 μl of the sample was mixed with 100 μl of the virus in an equal amount, and vortexed at room temperature at 25 ° C. for 60 seconds, then 100 μl was taken and added to 900 μl of 80 mg / ml protein broth and diluted 10 times. The reason why such a high-concentration bouillon solution is used is to detoxify the cytotoxicity of the disinfectant against CrFK cells used to stop the action of the sample and to form plaques.
4. MEM was used for the dilutions from 10 −2 to 10 −5, and 100 μl of each dilution was inoculated into a 6-well plate in duplicate for each dilution.
5. In the control virus group, MEM was added in an equal amount to the virus containing each concentration of protein.
6. Adsorption of virus to cells for 90 minutes, overlay of agar medium, culture at 34 ° C. for 60 hours.
7). Plaques formed on the plate after culture were fixed with formalin, stained with methylene blue, and the infectious titer was calculated from the number of plaques.

※NT:試験せず * NT: Not tested

まとめ
タンパク質共存下でウイルスを不活化させる作用は、サンプル3が優れていると思われた。
Summary Sample 3 appeared to be superior in inactivating viruses in the presence of proteins.

例11(実施例)
材料
1. ウイルス:ネコカリシウイルス F9株
2. 細胞:CrFK細胞
3. ブイヨン液:10倍濃度 160mg/ml
4. ウイルス希釈液:MEM培地(FCS-)
Example 11 (Example)
Material 1. Virus: Feline calicivirus F9 strain2. 2. Cell: CrFK cell Bouillon liquid: 10 times concentration 160mg / ml
4). Virus dilution: MEM medium (FCS-)

方法
1.表15に示すサンプルとタンパク質量 80mg/ml,20mg/ml,10mg/ml,0mg/mlを含むネコカリシウイルス原液を100μlずつ等量混合し、室温で60秒間反応させた。
6.2.反応後直ちにサンプル・ウイルス混合液100μlを80mg/ml濃度のブイヨン液900μlに加え反応を止めた。これをMEM培地で10-2から10-5まで10倍階段希釈を行った。
3.培養3日目の6穴プレートに10倍階段希釈を行ったウイルス・サンプル液を100μl接種し、90分のウイルス吸着操作を行った後、0.7%寒天培地で重層し5%CO2インキュベーター内で34℃60時間培養した。
4.培養終了後10%ホルマリン固定、メチレンブルー染色により形成されたプラーク数を数え、感染価を判定した。
5.ウイルスコントロールは、サンプルの代わりにMEMを用い、方法はサンプルに準じた。
Method 1. Samples shown in Table 15 and feline calicivirus stock solutions containing protein amounts of 80 mg / ml, 20 mg / ml, 10 mg / ml, and 0 mg / ml were mixed in equal amounts of 100 μl and reacted at room temperature for 60 seconds.
6.2. Immediately after the reaction, 100 μl of the sample / virus mixture was added to 900 μl of a bouillon solution with a concentration of 80 mg / ml to stop the reaction. This was serially diluted 10-fold from 10 -2 to 10 -5 with MEM medium.
3. Inoculate 100 μl of virus sample solution diluted 10-fold in a 6-well plate on the third day of culture, and after 90 minutes of virus adsorption, overlay with 0.7% agar medium in a 5% CO 2 incubator. The cells were cultured at 34 ° C for 60 hours.
4). After completion of the culture, the number of plaques formed by 10% formalin fixation and methylene blue staining was counted to determine the infectious titer.
5. For virus control, MEM was used instead of the sample, and the method was based on the sample.

まとめ
1.ウイルス:薬剤=1:1の系において、サンプルB,F,Gについては、最終タンパク質10mg/ml存在下においてもウイルス不活化効果を認めた。
2.サンプルA,Cについてもウイルス不活化効果を認めたが、B,F,Gには及ばなかった。
3.ウイルス:薬剤=1:9の系において、サンプルA〜Dについては、最終タンパク質濃度16mg/ml存在下においてもウイルス不活化効果を認めた。
4.サンプルEについてもウイルス不活化効果を認めたが、A〜Dには及ばなかった。
Summary 1. In the system of virus: drug = 1: 1, the samples B, F, and G showed a virus inactivating effect even in the presence of 10 mg / ml of the final protein.
2. Samples A and C also showed a virus inactivating effect, but did not reach B, F, and G.
3. In the system of virus: drug = 1: 9, virus inactivation effect was observed for samples A to D even in the presence of a final protein concentration of 16 mg / ml.
4). Sample E also showed a virus inactivating effect, but did not reach AD.

本発明は、カリシウイルス、特にノロウイルスの失活化に関わる薬品製造と公衆衛生分野に有用である。   INDUSTRIAL APPLICABILITY The present invention is useful in drug production and public health related to the inactivation of caliciviruses, particularly noroviruses.

Claims (10)

吐瀉物または糞尿中に存在するカリシウイルスを不活化する方法であって、
エタノール、リン酸グリセリン脂肪酸エステルおよびポリグリセリン脂肪酸エステルを含み、かつpHが2.5〜5.0の範囲にある水溶液からなる組成物を、前記吐瀉物または糞尿に接触させることを含む、方法。
A method of inactivating calicivirus present in vomit or feces,
A method comprising contacting a composition comprising an aqueous solution containing ethanol, phosphoric acid , glycerin fatty acid ester and polyglycerin fatty acid ester and having a pH in the range of 2.5 to 5.0 with the sputum or manure.
前記吐瀉物または糞尿が、施設または物品表面に存在し、
前記施設または物品表面の少なくとも一部または全部に水透過性及び/又は保持性のシートを被覆する工程、
前記シート上に前記組成物を供給して、シート下の前記表面に前記組成物を接触させる工程、及び
接触後、所定時間放置する工程
を含む、請求項1に記載の方法。
The vomit or manure is present on a facility or article surface;
Coating at least a part or all of the facility or article surface with a water-permeable and / or retaining sheet;
The method according to claim 1, comprising: supplying the composition onto the sheet, bringing the composition into contact with the surface under the sheet; and allowing the composition to stand for a predetermined time after the contact.
前記表面に存在する前記物の少なくとも一部を拭き取り、前記物を拭き取った後の施設または物品表面に前記シートを被覆する請求項2に記載の方法。   The method according to claim 2, wherein at least a part of the object existing on the surface is wiped off, and the sheet is coated on a facility or article surface after the object is wiped off. 前記シートは、予め前記組成物を含有するものである請求項2または3に記載の方法。   The method according to claim 2 or 3, wherein the sheet contains the composition in advance. 前記吐瀉物または糞尿が、カリシウイルス感染者の吐瀉物または糞尿である請求項1〜4のいずれかに記載の方法。   The method according to any one of claims 1 to 4, wherein the vomit or manure is vomit or manure of a person infected with calicivirus. 前記組成物におけるエタノールの濃度が、40〜85%(w/w)の範囲である請求項1〜5のいずれかに記載の方法。   The method according to claim 1, wherein the ethanol concentration in the composition is in the range of 40 to 85% (w / w). 前記リン酸の濃度が1〜10%(w/w)の範囲である請求項1〜6のいずれかに記載の方法。   The method according to any one of claims 1 to 6, wherein the concentration of the phosphoric acid is in the range of 1 to 10% (w / w). 前記カリシウイルスが、ノロウイルスである請求項1〜7のいずれかに記載の方法。   The method according to any one of claims 1 to 7, wherein the calicivirus is a norovirus. 前記吐瀉物または糞尿の容量1に対して前記組成物の供給量(容量比)が、0.5〜100の範囲である請求項1〜8のいずれかに記載の方法。   The method according to claim 1, wherein a supply amount (volume ratio) of the composition is in a range of 0.5 to 100 with respect to a volume 1 of the vomit or manure. 前記ポリグリセリン脂肪酸エステルがラウリン酸ペンタグリセリドである請求項1〜9のいずれかに記載の方法。   The method according to claim 1, wherein the polyglycerol fatty acid ester is lauric acid pentaglyceride.
JP2010534695A 2008-10-24 2009-10-21 Calicivirus inactivation method Active JP5542682B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2010534695A JP5542682B2 (en) 2008-10-24 2009-10-21 Calicivirus inactivation method

Applications Claiming Priority (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2008274103 2008-10-24
JP2008274103 2008-10-24
JP2009164896 2009-07-13
JP2009164896 2009-07-13
JP2010534695A JP5542682B2 (en) 2008-10-24 2009-10-21 Calicivirus inactivation method
PCT/JP2009/005531 WO2010047108A1 (en) 2008-10-24 2009-10-21 Calicivirus inactivation method

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2014028734A Division JP5829293B2 (en) 2008-10-24 2014-02-18 Calicivirus inactivation method

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPWO2010047108A1 JPWO2010047108A1 (en) 2012-03-22
JP5542682B2 true JP5542682B2 (en) 2014-07-09

Family

ID=42119161

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2010534695A Active JP5542682B2 (en) 2008-10-24 2009-10-21 Calicivirus inactivation method
JP2014028734A Active JP5829293B2 (en) 2008-10-24 2014-02-18 Calicivirus inactivation method

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2014028734A Active JP5829293B2 (en) 2008-10-24 2014-02-18 Calicivirus inactivation method

Country Status (3)

Country Link
JP (2) JP5542682B2 (en)
CN (1) CN102196724A (en)
WO (1) WO2010047108A1 (en)

Families Citing this family (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPWO2014115860A1 (en) * 2013-01-25 2017-01-26 公立大学法人大阪府立大学 Viricide
JP6286321B2 (en) * 2013-09-09 2018-02-28 吉田製薬株式会社 disinfectant
JP6688597B2 (en) * 2015-10-20 2020-04-28 三菱商事ライフサイエンス株式会社 Method for eliminating genetic information of non-enveloped virus
JP2016210807A (en) * 2016-09-09 2016-12-15 株式会社ニイタカ Disinfection solution and disinfection method
WO2018168977A1 (en) 2017-03-16 2018-09-20 株式会社日清製粉グループ本社 Liquid composition for bacteriostasis or sterilization
JP2018184371A (en) * 2017-04-26 2018-11-22 Mcフードスペシャリティーズ株式会社 Picornavirus virus control method
JP6339725B1 (en) * 2017-05-23 2018-06-06 株式会社ニイタカ Norovirus inactivator and sanitary material
JP2018197195A (en) * 2017-05-23 2018-12-13 株式会社セハージャパン Ethanol preparation
JP7058490B2 (en) * 2017-10-12 2022-04-22 三菱商事ライフサイエンス株式会社 Antibacterial composition that suppresses viruses, bacteria and fungi
JP2018197222A (en) * 2017-11-01 2018-12-13 株式会社ニイタカ Norovirus deactivator and sanitary material
JP6585756B2 (en) * 2018-03-16 2019-10-02 株式会社ニイタカ Virus inactivators, norovirus inactivators and hygiene materials
JP6454805B1 (en) * 2018-03-26 2019-01-16 株式会社Adeka Alcohol preparation and disinfection method using the same
JP7428469B2 (en) * 2018-09-05 2024-02-06 株式会社日清製粉グループ本社 Sterilizing or bacteriostatic liquid composition
JP6732350B1 (en) * 2019-10-11 2020-07-29 株式会社アルボース Sterilizing/bactericidal composition
JP2021065488A (en) * 2019-10-25 2021-04-30 花王株式会社 Hydrolyzable cleaning tool
JPWO2021095636A1 (en) * 2019-11-15 2021-05-20
JP6869577B2 (en) * 2020-02-26 2021-05-12 株式会社大阪製薬 Viscous disinfectant
JP7471117B2 (en) 2020-03-18 2024-04-19 ライオンハイジーン株式会社 Ethanol preparation composition for plastic cutting boards and ethanol preparation product for plastic cutting boards
CN112301004B (en) * 2020-10-30 2022-08-05 苏州良辰生物医药科技有限公司 Method for inactivating porcine parvovirus

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007045732A (en) * 2005-08-09 2007-02-22 Daio Paper Corp Disinfection solution, and article for disinfection
WO2007139844A2 (en) * 2006-05-24 2007-12-06 The Dial Corporation Composition and method for controlling the transmission of noroviruses
JP2008156329A (en) * 2006-11-29 2008-07-10 Asahi Kasei Chemicals Corp Aqueous germicidal disinfectant
JP2008255101A (en) * 2007-03-09 2008-10-23 Maruishi Pharmaceutical Co Ltd Disinfectant

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH09202900A (en) * 1996-01-26 1997-08-05 Lion Corp Liquid detergent composition
WO2002069887A2 (en) * 2001-02-28 2002-09-12 Konowalchuk Thomas W Virucidal compositions
JP4143294B2 (en) * 2001-12-20 2008-09-03 上野製薬株式会社 Disinfectant composition
US8119115B2 (en) * 2006-02-09 2012-02-21 Gojo Industries, Inc. Antiviral method
JP2009173641A (en) * 2007-12-27 2009-08-06 Johnson Diversey Co Ltd Bactericidal disinfectant composition, bactericidal disinfectant material comprising the same, and bactericidal disinfection method using the same composition or the same material

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007045732A (en) * 2005-08-09 2007-02-22 Daio Paper Corp Disinfection solution, and article for disinfection
WO2007139844A2 (en) * 2006-05-24 2007-12-06 The Dial Corporation Composition and method for controlling the transmission of noroviruses
JP2008156329A (en) * 2006-11-29 2008-07-10 Asahi Kasei Chemicals Corp Aqueous germicidal disinfectant
JP2008255101A (en) * 2007-03-09 2008-10-23 Maruishi Pharmaceutical Co Ltd Disinfectant

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JPN6013063168; Applied and Environmental Microbiology Vol.70, No.8, 2004, p.4538-43 *
JPN6013063170; Applied and Environmental Microbiology Vol.73, No.17, 2007, p.5494-500 *

Also Published As

Publication number Publication date
JP5829293B2 (en) 2015-12-09
CN102196724A (en) 2011-09-21
JPWO2010047108A1 (en) 2012-03-22
JP2014129372A (en) 2014-07-10
WO2010047108A1 (en) 2010-04-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5829293B2 (en) Calicivirus inactivation method
JP4813059B2 (en) Hydrogen peroxide disinfectant containing cyclic carboxylic acid and / or aromatic alcohol
EP1143799B1 (en) Multi-purpose acid compositions
AU2007273208B2 (en) Methods and composition for treating a material
JP5388325B2 (en) Anti-norovirus composition
JP5832201B2 (en) Norovirus composition
EP2424352A1 (en) Methods and composition for treating a material
GB2103089A (en) Use of carboxylic acids as virucides
US20080194689A1 (en) Disinfectant and Germicidal Agent
JP5281808B2 (en) Food sterilization method using a food-use alcohol sanitizer that imparts antibacterial persistence and antiviral properties
US20060075922A1 (en) Controlled-acidity composition
JP7058490B2 (en) Antibacterial composition that suppresses viruses, bacteria and fungi
JP6688597B2 (en) Method for eliminating genetic information of non-enveloped virus
JP2003267813A (en) Liquid disinfectant composition and disinfection method
RU2736364C2 (en) Disinfectant composition with tartaric acid, lactic acid
JP2018197195A (en) Ethanol preparation
EP4287832A1 (en) Formulation comprising chlorite and percarbonate salts
CA2297350A1 (en) Wide range cleaning and disinfecting preparation

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20120925

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20131220

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20140218

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20140311

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20140320

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20140411

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20140507

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 5542682

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250