JP5449834B2 - リポ多糖、イネ発酵エキス及びイネ発酵エキス配合物 - Google Patents
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Description
イネより単離されたパントエア・アグロメランス(A46株(非特許文献1参照))のコロニーの一部を掻き取り普通寒天培地に播き、30度の恒温そう内で一晩培養した。コロニー一つを滅菌済みルリアブロス(LB)培地1リットルの入った3リットルの坂口フラスコに入れ、30度にて一晩振盪培養した。培養後、遠心チューブに培養液を移し、7000 回転/分 (rpm)で遠心分離(HITACHI SCR-20B)を行い、A46株の湿菌体を回収した。A46株の湿菌体からのリポ多糖の精製はWestphalらの方法に従って行った。すなわち、湿菌体5.4gに蒸留水を加えて54ml(湿菌体100mg/ml)とした。菌を懸濁してこの液に同容量の90%フェノールを加え、65度から70度で10分間攪拌した。その後、4度まで液を冷却し、10000 rpmで遠心分離を行った。上層の水層を別の容器に回収し、残りのフェノール層と中間層に、回収した水層と同量の蒸留水を加え、再度65度から70度で10分間攪拌しリポ多糖を再抽出した。その後、4度まで液を冷却し、遠心分離を行った。2回目の水層を一回目の水層と合わせ蒸留水で透析しフェノールを除去した。この透析内液をさらにDNA分解酵素(DNase I)(50U/ml)及びRNA分解酵素(RNase A)(20μg/ml)処理し、タンパク分解酵素(プロティナーゼK)(100μg/ml)処理後、フェノール抽出を行い、その後、水層を透析しフェノールを除去した。透析終了後、透析内液を回収し、マイクロコンYM-100(ミリポア)を用いて限外濾過により濃縮した。本濃縮液をA46のイネパントエア・アグロメランスの精製リポ多糖(LPSp46)溶液とした。本溶液を凍結乾燥して乾燥重量を測定した。精製リポ多糖LPSp46の乾燥重量は42mgと測定された。リポ多糖に特異的に反応するリムラス活性測定キットとして生化学工業のエンドスペシーを用いた。標準リポ多糖は生化学工業のリポ多糖標準品を用いた。測定されたリムラス活性値とより、IP-PA1としての換算値を算出した。
トリシンを用いたドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動(濃度15%のゲル)により、LPSp46(5μg/レーン)とIP-PA1(5μg/レーン)の分子量を解析した。泳動後、リポ多糖の分子を可視化させる目的でシルベストステイン(Cat No30642-41、ナカライテスク、日本)キットにより銀染色を行った。染色された各サンプルのバンドの分子量サイズを分子量マーカー(Prestained Protein Marker, NEW ENGLAND BioLabs)から読み取った。
A46株はパントエア属であることからIP-PA1に特異的に反応する抗体に対して交差反応性が認められる可能性がある。そこで、IP-PA1に対して特異的に反応するモノクローナル抗体6種を用いてリポ多糖LPSp46の交差反応性について検討した。96穴イムノプレートにリポ多糖LPSp46、IP-PA1および大腸菌O128 リポ多糖の3種のリポ多糖を10μg/mlの濃度で0.05ml/ウエル入れ、4℃で一晩放置した。その後、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)(pH7.3〜7.7、日水製薬製)に0.05%ポリオキシエチレン(20)ソルビタンモノラウレート(和光純薬工業製、Tween20相当品)を添加した溶液(PBS−T)で3回洗浄した後、3%牛血清アルブミンを入れ、室温で1時間放置し、抗体その他のタンパクの非特異的吸着を防止した。その後、PBS−Tで3回洗浄後、ウエルに、6種のIP-PA1に特異的に反応するモノクローナル抗体を含有するハイブリドーマ培養上清液0.05mlを入れ、室温で1時間放置した。次いで、各ウエルをPBS−Tで5回洗浄し、1%牛血清アルブミンで希釈したアルカリフォスファターゼ結合抗マウスIgG、M、A免疫グロブリン抗体(シグマ社製)を0.05ml/ウエルに入れ、室温で1時間放置した。その後、PBS−Tで5回洗浄し、1mg/mlになるようにp−ニトロフェニルリン酸二ナトリウム(和光純薬工業製)を基質緩衝液に溶解した溶液を0.1ml/ウエル入れ、室温で1時間放置した後、2規定の水酸化ナトリウム水溶液 0.05ml/ウエルを入れてプレートミキサーで混和して反応を停止させ、マイクロプレートリーダーにて415nmの吸光度を測定した。その結果を表3に示した。交差反応性が認められない大腸菌O128の精製リポ多糖の場合と同様に発色は認められず、6種のIP-PA1に対するモノクローナル抗体に対してリポ多糖LPSp46の交差反応性は認められなかった。すなわち、リポ多糖LPSp46はIP-PA1と異なる糖鎖構造を有することが明らかとなった。
マウスのマクロファージ系の培養細胞株であるRAW264.7に、リポ多糖を添加した後の、細胞からの一酸化窒素(NO)産生をNO代謝物の亜硝酸の培養液中の濃度を指標として測定した。RAW264.7はATCC (No.TIB-71) より購入した。対照として大腸菌O128のリポ多糖とIP-PA1を用いた。
米ぬか0.5gに蒸留水5mlを加え懸濁し、上澄みをルリアブロス寒天培地に0.1ml添加し、37℃で一晩培養した。寒天培地上に認められたコロニーを単離し、通常の方法で菌を同定し、イネパントエア・アグロメランスを単離し、これを50%グリセロール溶液に懸濁し、冷凍庫に保存した。このストックの一部をルリアブロス寒天培地にとり、37℃に放置してイネパントエア・アグロメランスの独立コロニーを作成した。
米ぬか発酵エキスまたは小麦発酵エキスを水に希釈し、養殖魚用飼料に噴霧し、乾燥させた。対照として水だけを飼料に噴霧した。平均体重20gのニシキゴイ20匹に各飼料を7日間体重の1%になるように毎日与えた。なお、体重kgあたり、リポ多糖LPSp46またはIP-PA1が10マイクログラムになるように調製した。7日間飼料を与えたニシキゴイにエロモナスハイドロフィラを1×107 個の生菌を腹腔内に投与し、感染させた。感染操作後10日間のニシキゴイの生存を観察した。小麦発酵エキス無添加のコイでは、6日目までに全てのコイが死亡した。小麦発酵エキス含有飼料を投与した群では、感染10日目において、生存率30%であった。米ぬか発酵エキスを投与した群では80%の生存率が示された。米ぬか発酵エキスは小麦発酵エキスよりも高い予防効果が認められた。
Claims (5)
- イネに共生するパントエア・アグロメランスから得られることを特徴とするリポ多糖。
- 米ぬかをイネに共生するパントエア・アグロメランスによって発酵させて、同時に該パントエア・アグロメランスを培養することによって得られることを特徴とするイネ発酵エキス。
- 請求項2記載のイネ発酵エキスから得られることを特徴とするイネ発酵エキス末。
- 請求項2記載のイネ発酵エキス又は請求項3記載のイネ発酵エキス末が配合されていることを特徴とするイネ発酵エキス配合物。
- 前記イネ発酵エキス配合物が医薬品、食品、化粧品、雑貨、飼料、肥料、又は日用品であることを特徴とする請求項4記載のイネ発酵エキス配合物。
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