JP5409359B2 - 細胞の単離方法、細胞用無血清培養培地および細胞の培養方法 - Google Patents
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Description
更に分離した細胞を幹細胞と証明するためには他の細胞へ分化する能力や元の組織を形成する能力を厳密に試験をしなければならない。そのため、幹細胞の分離と同定には多くの場合、無血清培地が使われるが、単離されていない幹細胞の性状は不明である。そのため、幹細胞の無血清培養においてどのような因子が効果的であるか確定するのは非常に困難である。
上記のとおり、動物細胞培養用の無血清培地は、種々のものが開示されている。
そのため、動物組織より採取した付着性幹細胞を用いて各種試験・研究を行い明確な結果を得るには血清など未知因子が含まれず、細胞外基質を必要としない培養条件下でもって幹細胞の分化機能を保持し、また意図的に分化させ組織を構築させ得る培地の開発および単離法の開発が望まれている。
すなわち、従来は、細胞外基質が存在せず、且つ培養表面処理が施されていない培養容器や培養担体には付着系細胞は付着できず、増殖できない環境と考えられていた。しかし、本発明者らは幹細胞などの細胞が自ら活発に細胞外基質を産生して増殖することができることを見出し、この知見を更に発展させ、細胞外基質非存在下かつ表面処理無施行下で幹細胞などの目的細胞のみを単離できる方法を見出した。
また、単離された細胞の培養において、血清や脳下垂体抽出物など動物由来未知因子が存在しない無血清基礎培地に一般的な培地添加構成物であるセレン、インシュリン、トランスフェリン、エタノールアミン(SITE)およびレチノール、リノール酸、リノレイン酸、α−トコフェロールなどの脂溶性必須栄養素ならびに脂溶性栄養素のキャリアとしてアルブミンを添加した培地、および、さらに上皮細胞増殖因子(EGF)、ケラチノサイト増殖因子(FGF−7)や繊維芽細胞増殖因子(FGF−2)といった各種増殖因子を添加した培地を使用することで、幹細胞などの細胞を再現性高く、且つ効率よく増殖させることを見出した。
本発明はまた、細胞が幹細胞である前記方法を提供する。
本発明はまた、幹細胞が上皮系の幹細胞である前記方法を提供する。
本発明はまた、幹細胞が角膜上皮幹細胞、結膜上皮幹細胞、口腔粘膜上皮幹細胞、または皮膚上皮幹細胞である前記方法を提供する。
本発明はまた、前記いずれかの方法によって幹細胞または細胞を組織から単離する工程、および単離された幹細胞または細胞を培地で培養する工程を含む、幹細胞または細胞の培養方法を提供する。
本発明はまた、培地が無血清培地である前記方法を提供する。
本発明はまた、無血清培地が血清アルブミンを含む前記方法を提供する。
本発明はまた、無血清培地が、インシュリン、トランスフェリン、亜セレン酸ナトリウム、エタノールアミン、ヒト血清アルブミン、リノール酸、リノレイン酸、レチノ−ル、およびα−トコフェロールを含む前記方法を提供する。
本発明はまた、血清アルブミンがヒト血清アルブミンである前記方法を提供する。
本発明はまた、ヒト血清アルブミンが組換えヒト血清アルブミンである前記方法を提供する。
本発明はまた、無血清培地が、分化刺激物を含む前記方法を提供する。
本発明はまた、分化刺激物が、EGF若しくはFGF-2若しくはFGF-7のいずれかから選択される前記方法を提供する。
本発明はまた、前記いずれかの方法によって、幹細胞を組織から単離する工程、および単離した幹細胞を培地で培養する工程を含む、幹細胞コロニーの製造方法を提供する。
本発明はまた、前記いずれかの方法によって、幹細胞または細胞を組織から単離する工程、および単離した幹細胞または細胞を培地で培養する工程を含む、細胞シートの製造方法を提供する。
本発明はまた、細胞シートが重層化上皮系細胞シートである前記方法を提供する。
本発明はまた、角膜輪部上皮組織を細胞に解離させる工程、培養表面が表面処理されていない培養容器又は培養用担体に該細胞を播種してインキュベートする工程、該培養容器又は該培養用担体の培養表面に付着した細胞を選択する工程、および単離した角膜上皮幹細胞を、EGFまたはFGF-7を含む無血清培地で培養する工程を含む、角膜上皮細胞シートの製造方法を提供する。
本発明はまた、角膜輪部上皮組織を細胞に解離させる工程、培養表面が表面処理されていない培養容器又は培養用担体に該細胞を播種してインキュベートする工程、該培養容器又は該培養用担体の培養表面に付着した細胞を選択する工程、および単離した角膜上皮幹細胞を、FGF-2を含む無血清培地で培養する工程を含む、ゴブレット細胞の製造方法を提供する。
本発明はまた、皮膚組織を細胞に解離させる工程、培養表面が表面処理されていない培養容器又は培養用担体に該細胞を播種してインキュベートする工程、該培養容器又は該培養用担体の培養表面に付着した細胞を選択する工程、および単離した皮膚上皮細胞を、EGFを含む無血清培地で培養する工程を含む、皮膚上皮細胞シートの製造方法を提供する。
本発明はまた、インシュリン、トランスフェリン、亜セレン酸ナトリウム、エタノールアミン、血清アルブミン、リノール酸、リノレイン酸、レチノール、およびα−トコフェロールを含み、血清を含まない、幹細胞培養用培地を提供する。
本発明はまた、血清アルブミンがヒト血清アルブミンである前記培地を提供する。
本発明はまた、ヒト血清アルブミンが組換えヒト血清アルブミンである前記培地を提供する。
そのため、本発明の細胞の単離方法では、付着系幹細胞などの目的の細胞以外が生育できないような表面処理されていない培養表面上で、細胞を付着培養することにより、目的の細胞のみを単離することができる。「表面処理されていない」とは、ラミニンやコラーゲンなどの細胞外基質によりコーティングされておらず、かつ、プラズマ処理もされていないことを意味する。
表面処理されていない培養容器の具体例としては、ポリスチレン製のFALCON 351143やKord-Valmark 2901、住友ベークライトのセルデスク(MS-92132) 非表面処理品などが挙げられるが、これらに限定はされない。
その他のプラスチック製の浮遊培養用Dish、例えば、住友ベークライト社MS-1160RやMS-1135R、コーニング社の無処理表面デイッシュ 430589も使用できる。
表面処理されていない培養用担体の具体例として、プラスチック製の担体が挙げられる。プラスチックの種類では、ポリカーボネート、ポリアリレート、ポリエチレンテレフタレート、ポリスルフォン、ポリアミン-ポリスチレングラフト共重合体、ポリスチレン、ポリエチレンテレフタレート、ポリエチレンテレフタレート−ポリブチレンテレフタレート ポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート、セグメント化ポリウレタン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリN-イソアクリルアミド、ポリビニルアルコール、ポリエステルなどが挙げられる。
担体の形状としては、皿状のもの、板状のもの、袋状のもの、ボトル状のもの、ビーズ、不織布などが挙げられるが細胞が付着できる表面が露出していれば特に限定されない。
また、培養に使用できる容器や担体の種類は
http://idb.exst.jaxa.jp/jdata/02042/199603J02042000/199603J02042000.html#2.1
を参照して入手することもできる。
幹細胞としては、例えば、神経幹細胞、角膜内皮幹細胞、角膜上皮幹細胞、結膜上皮幹細胞、皮膚上皮幹細胞、口腔粘膜上皮幹細胞、食道上皮幹細胞、甲状腺上皮幹細胞、副甲状腺上皮幹細胞、胸腺上皮幹細胞、エナメル上皮幹細胞、毛包等の外胚葉系幹細胞;尿細管上皮幹細胞等の中胚葉系幹細胞;消化管上皮幹細胞、胆道上皮幹細胞、膵管上皮幹細胞等の内胚葉系幹細胞等が挙げられる。
本発明の単離法が適用できる細胞としては、ヒト又はヒト以外の哺乳類動物由来の組織、器官、臓器から得られるものが好ましく、さらに付着性の体性細胞が好ましく、上皮系の細胞がより好ましい。
次に、得られた細胞を上記の表面処理されていない培養容器に入れてインキュベートして幹細胞のみを選択的に培養容器に付着させる。インキュベートは、細胞の種類にもよるが、例えば、37℃で5〜24時間行うことが好ましい。幹細胞を培養容器に付着させる際に使用する液体媒体は、リン酸緩衝液等の緩衝液や後述する各種成分を含んだ無血清培地でもよいが、好ましくは後述する各種成分を含んだ無血清培地に分化刺激物を添加したものが用いられる。
インキュベート後に、非付着細胞を除去することによって容器に付着した幹細胞を選択することができる。
各添加物の添加濃度は細胞の増殖に効果があり毒性を示さない範囲であれば特に限定されないが、好ましくは、インシュリンは0.1mg/L以上、トランスフェリンは0.1mg/L〜10mg/L、亜セレン酸ナトリウムは1μg/L〜20μg/L、エタノールアミンは0.5mg/L〜20mg/Lである。
各々の構成成分の役割については、インシュリンはグルコースおよびアミノ酸の細胞への取り込みを促進するポリペプチドであり、トランスフェリンは必須微量元素である鉄の輸送蛋白質であり、セレンは必須微量元素であり、エタノールアミンは細胞膜を構成するリン脂質の塩基成分である。
これらの役割については、血清アルブミンは脂肪酸を可溶化させ細胞への脂肪酸取り込みを促進する脂肪酸複合蛋白質である。レチノールおよびα−トコフェロールは必須栄養素である。レチノール、α−トコフェロールについては培地中に可溶化させたほうが望ましい。よってこれらは培地中に可溶化させることができる。たとえば、シクロデキストランやシクロアミロースといった錯体に包接または結合させ可溶化させる方法がある。またレチノールは広義のビタミンA、即ちレチナール、レチノイン酸、およびこれらの3-デヒドロ体、その誘導体でも置き換えられる。
さらに本発明の細胞培養用培地はリノール酸、リノレイン酸を含めることが好ましい。これらの添加物の添加濃度は細胞の増殖に効果があり毒性を示さない範囲であれば特に限
定されないが、好ましくは、リノール酸は0.5μg/L以上、リノレイン酸は0.5μg/L以上である。
これらの役割については、血清アルブミンは脂肪酸を可溶化させ細胞への脂肪酸取り込みを促進する脂肪酸複合蛋白質であり、リノール酸およびリノレイン酸は必須脂肪酸である。リノール酸、リノレイン酸は培地中に可溶化させたほうが望ましい。よってこれらは培地中に可溶化させることができる。
rHSAは、遺伝子操作を経て調製されたHSA産生宿主により産生されるHSAであれば特に限定されないが、好ましくは産生宿主に由来する夾雑成分(例えば、蛋白質、多糖類等)を実質的に含まない、より好ましくは公知の手段でrHSA産生宿主を培養した後、その培養濾液または菌体、細胞からそれぞれ公知の分離手段および精製手段により採取および精製されたものが用いられる。rHSAの産生宿主としては、サッカロマイセス属やピキア属などの酵母、動物細胞、トランスジェニック動物などが挙げられる。rHSAについては特開2005-204539に詳細に記載されている。
以下に、各種幹細胞の単離、増殖、分化および細胞シートの作製について説明する。
単離された細胞が角膜上皮幹細胞であることは、角膜上皮細胞の分化マーカーであるサイトケラチン3(CK3)やサイトケラチン12(CK12)の発現が見られる細胞を細胞分裂によって供給する能力(他細胞への分化能と増殖能)、またこれらの角膜上皮細胞マーカーに陽性な重層化した角膜上皮組織を形成する能力(組織形成能)、によって確認することができる。分化マーカー発現の確認は、RT−PCRやノーザンブロットなどのmRNAの解析や、抗体染色などのタンパク質の解析によって行うことができる。増殖能はBrdU法やKi67による免疫染色のほか、培養中の細胞が分裂途中に顕微鏡で染色体を視認することで確認することができる。組織形成能は細胞を培養し重層化した上皮組織を形成しかつ分化マーカーの発現を調べることで確認できる。
得られた角膜上皮幹細胞は、分化刺激を加えることによって幹細胞の持つ分化能の範囲内において所望の細胞に分化させることができる。例えば、幹細胞培養用培地にEGFやFGF−7を添加し、培養することにより、角膜上皮幹細胞を角膜上皮細胞に分化させることができる。また、角膜上皮幹細胞にFGF−2を添加することにより、ゴブレット細胞に分化させることができる。
そして、角膜上皮幹細胞は細胞コロニーとして得ることもできるが、得られた角膜上皮幹細胞をシート状に増殖させ、EDTA処理などによって剥離することで角膜上皮細胞シートを得ることもできる。角膜上皮細胞シートは羊膜上に作製することもできる。得られた角膜上皮細胞シートは重層化することもできる。
得られた角膜上皮細胞シートは難治性角膜上皮障害などの難治性眼表面疾患の再生医療による治療に適用することができる。
単離された細胞が結膜上皮幹細胞であることは、結膜上皮細胞の分化マーカーであるサイトケラチン4(CK4)やサイトケラチン13(CK13)の発現が見られる細胞を細胞分裂によって供給する能力(他細胞への分化能と増殖能)、またこれらの結膜上皮細胞マーカーに陽性な重層化した結膜上皮組織を形成する能力(組織形成能)、によって確認することができる。
得られた結膜上皮幹細胞は、分化刺激を加えることによって幹細胞の持つ分化能の範囲内において所望の細胞に分化させることができる。例えば、幹細胞培養用培地にEGFやFGF−7を添加し、培養することにより、結膜上皮幹細胞を結膜上皮細胞に分化させることができる。また、FGF−2を添加することにより、ゴブレット細胞に分化させることができる。
そして、結膜上皮幹細胞は細胞コロニーとして得ることもできるが、得られた結膜上皮幹細胞をシート状に増殖させ、EDTA処理などによって剥離することで結膜上皮細胞シートを得ることもできる。結膜上皮細胞シートは羊膜上に作製することもできる。得られた結膜上皮細胞シートは重層化することもできる。
得られた結膜上皮細胞シートは腫瘍摘出後の上皮再建、緑内障手術におけるろ過包の形成などに適用することができる。
単離された細胞が口腔粘膜上皮幹細胞であることは、口腔粘膜上皮細胞の分化マーカーであるCK3、CK4、CK13の発現が見られる細胞を細胞分裂によって供給する能力(他細胞への分化能と増殖能)、またこれらの口腔粘膜上皮細胞マーカーに陽性な重層化した口腔粘膜上皮組織を形成する能力(組織形成能)、によって確認することができる。
得られた口腔粘膜上皮幹細胞は、分化刺激を加えることによって幹細胞の持つ分化能の範囲内において所望の細胞に分化させることができる。例えば、幹細胞培養用培地にEGFやFGF−7を添加し、培養することにより、口腔粘膜上皮幹細胞を口腔粘膜上皮細胞に分化させることができる。またFGF−2を添加することにより、ゴブレット細胞に分化させることができる。
そして、口腔粘膜上皮幹細胞は細胞コロニーとして得ることもできるが、得られた口腔粘膜上皮幹細胞をシート状に増殖させ、EDTA処理などによって剥離することで口腔粘膜上皮細胞シートを得ることもできる。口腔粘膜上皮細胞シートは羊膜上に作製することもで
きる。得られた口腔粘膜上皮細胞シートは重層化することもできる。
得られた口腔粘膜上皮幹細胞シートは、口腔粘膜上皮の再建や両眼性の眼表面疾患などの治療に適用することができる。
得られた皮膚上皮細胞シートは、皮膚の再建や重度の熱傷などの治療に適用することができる。
採取された皮膚上皮細胞が皮膚上皮幹細胞であることは、皮膚上皮幹細胞自らが発現していない皮膚上皮細胞特異的ケラチンパターンであるサイトケラチン1(CK1)およびサイトケラチン10(CK10)を発現する細胞を細胞分裂によって供給する能力(他細胞への細胞分化能と増殖能)、更には重層化した皮膚上皮組織を形成する能力(組織形成能)によって確認することができる。また皮膚上皮幹細胞の細胞分化能は現在の知見では知られていない別種の細胞へ変化することによっても確認することが出来る。
以上、角膜上皮幹細胞、結膜上皮幹細胞および口腔粘膜上皮幹細胞、皮膚上皮幹細胞について説明したが、その他の幹細胞または細胞についても同様にして単離することができる。
以下、本発明を、実施例を挙げて、より具体的に説明するが、本発明の保護範囲は以下の実施例に限定されるものではない。
さらに、ウシ血清アルブミン(Invitrogen)2.5g/L、リノール酸5μg/L(SIGMA)、リノレイン酸5μg/L(SIGMA)、レチノール100μg/L(SIGMA)、α−トコフェロール1mg/L(SIGMA)を添加した。
さらに、スーパーオキシドジスムターゼ(SOD)2.5mg/L(SIGMA)、カタラーゼ(SIGMA)、グルタチオンペルオキシダーゼ1mg/L(和光純薬)を添加した。
さらに、トリヨードサイロニン、20μg/L、プトレスシン100μM(SIGMA)、プロゲストロン20nM(MPB Biomedicals,Inc)を添加して幹細胞培養用培地(A)とし、以下の実施例に使用した。
また、DMEM/F−12基礎培地(SIGMA)にSITE培地添加物(SIGMA)を加え、インシュリン濃度が10mg/L、トランスフェリン濃度が5.5mg/L、亜セレン酸ナトリウム濃度が5μg/L、エタノールアミン濃度が2mg/Lとなるようにし、ヒト組換えアルブミン(田辺三菱製薬)2.5g/L、レチノール100μg/L(SIGMA)、α−トコフェロール1mg/L(SIGMA)、スーパーオキシドジスムターゼ(SOD)2.5mg/L(SIGMA)、カタラーゼ(SIGMA)、グルタチオンペルオキシダーゼ1mg/L(和光純薬)を添加した。トリヨードサイロニン、20μg/L、プトレスシン100μM(SIGMA)、プロゲストロン20nM(MPB Biomedicals,Inc)、を添加して幹細胞培養用培地(B)とし実施例に使用した。なお、田辺三菱製薬社製のヒト組換えアルブミン製剤には、リノール酸およびリノレイン酸が含まれていたため、本培地の調製の際には、新たにこれらを加えてはいない。
幹細胞用浮遊培養用容器の作成は、特願 2005-369270号(特開2007−166977)に記載の方法に従って、生細胞分離用遠心分離管記載のポリヒドロキシエチルメタクリレートをエタノールに溶解させ、市販されている浮遊培養用プラスチック培養容器にコーティングし風乾させて作成した。この幹細胞用浮遊培養用容器は研究者が意図しない幹細胞の付着を防止する目的で用いることができる。
幹細胞培養用培地(A)に上皮細胞増殖因子(EGF:和光純薬より入手)を20ng/mLの濃度になるよう添加して単離した角膜上皮幹細胞の培養を37℃ 5%CO2の環境下で行った。単離された角膜上皮幹細胞は活発に分裂を始め、図2に示される約一週間で円形の単一細胞由来の細胞集団(コロニー)を形成した。このコロニーを増殖能が確認できるBrdU(Roche)取り込み試験法(BrdU法)やHoechst33342(Invitrogen)による核染色を行った結果を図3に示す。コロニーはDNA合成を行った細胞に取り込まれたBrdUに対する検出抗体、FITC-Conjugated anti−BrdU antibody(Roche)に対して陽性であり、また細胞分裂の際に現れる染色体が確認できることから角膜上皮細胞が活発に増殖していることがわかる。コロニーの形態は上皮細胞の特徴である敷石状であり、角膜上皮特異的ケラチン発現パターンであるCK3およびCK12の蛋白質発現を免疫染色法で調べた。CK3の検出に用いるために一次抗体AE−5(Progen)を使用し、CK12の検出を行うために一次抗体N−16(Santa Cruz Biotech)を使用して免疫抗体反応を行った。その後、二次抗体であるAlexa Fluor 488 goat anti−mouse IgG (H+L)(Alexa 488:Invitrogen)を反応させた。その結果図4で示される角膜上皮細胞特異的なサイトケラチンパターンであるCK3とCK12の発現が確認された。これらの結果から角膜輪部上皮組織より採取された角膜上皮幹細胞は角膜上皮細胞への分化能を持つことが確認された。
幹細胞培養用培地(A)に繊維芽細胞増殖因子(FGF−2:和光純薬より入手)を40ng/mLの濃度になるよう添加し、単離した角膜上皮幹細胞の培養を37℃ 5%CO2の環境下で行った。
単離された角膜上皮幹細胞は活発に分裂を始め、培養3−5日ほどで中央部が盛り上がり突起物を形成し、特異的な形状をした単一細胞由来のコロニーが現われた(図5a)。この中央部の突起物の断面を見ると、細胞成分が少なく細胞塊ではなく細胞外基質の塊だと判明した(図5b)。そこでゴブレット細胞で陽性になるPAS染色を行なったところ陽性であり(図5c)、角膜上皮幹細胞をゴブレット細胞へ分化制御させることができた。
幹細胞培養用培地(A)に上皮細胞増殖因子(EGF:和光純薬より入手)を20ng/mLの濃度になるよう添加し、単離した角膜上皮幹細胞を37℃ 5%CO2の環境下で三週間培養した。三週間培養した後10%ホルマリンで固定しパラフィンで包埋を行なった後に断面を図6Aで示されるヘマトキシリン・エオジン染色法で確認した。幹細胞は5層前後に重層化した角膜上皮組織を形成した。また、三週間培養した角膜上皮幹細胞を剥離して得られた角膜上皮シートの写真を図6Bに示す。
次に幹細胞培養用培地(B)を用いた羊膜上角膜上皮シートの作成を行なった。羊膜は帝王切開予定の提供者から眼科研究と治療の目的で使用する旨説明した上で同意を得て入手した。羊膜は無菌的に採取され、絨毛膜をピンセットで除去したのち冷凍保存されたものを使用した。羊膜はPBS(−)で洗浄されたあと、コーニング社製、50ml遠心管中で、0.02%EDTA/PBS(-)溶液中で37℃、2時間、恒温槽でインキュベートした。その後コーニング社製セルスクレイパーで羊膜上皮を剥離し、羊膜基質のみを採取し、コーニング社製TransWell 6well Plateに貼り付けた。
米国アイバンクより入手した研究用ヒト輸入角膜より結膜を採取し、得られた結膜をハサミを用いて切除した。切除した結膜を、コラゲナーゼTYPEIA(SIGMA)0.02%を添加した幹細胞培養用培地(A)を10ml満たした幹細胞用浮遊培養用容器に入れ、37℃、5%CO2の環境下で一晩培養し組織を溶解させ細胞の凝集体を得た。
引き続き、細胞の同定のために発現蛋白質を解析した。結膜上皮特異的サイトケラチンパターンである、CK4、およびCK13の蛋白質発現を確認するために、mouse anti-human Cytokeratin4(ICN Pharmaceuticals)および、mouse anti−human cytokeratin 13(American Reserch Products)からなる抗体を使用して免疫染色を行い、これを二次抗体であるAlexa, Fluor 488 goat anti−mouse IgG(Invitrogen)で反応させた。また未分化細胞マーカー蛋白質であるNestinをmouse anti−Nestin(BD PharMingen)で染色し、二次抗体Alexa Fluor 488 goat anti−mouse IgGで検出した。その結果、上皮様形態を持つこれらの細胞コロニーは、結膜上皮特異的サイトケラチンパターンCK4、およびCK13を発現しており、結膜上皮細胞であることが示された。また未分化細胞マーカーであるNestinが陽性であった。
一方、角膜上皮特異的マーカーであるCK3とCK12は陰性であった。また、BrdU 法によりコロニーを形成する細胞は増殖能を有することがわかった(図8)。
なお、コロニーはP2まで継代可能であり、自己複製能を有していることがわかった。
細胞コロニーによって組織形成能に差があり、強弱3つのタイプに分類できたが、写真は最も組織形成能が高かったものを示す(図10)。
抜歯の際に不要となった口腔粘膜上皮組織を提供者の同意を得た後入手した。口腔粘膜上皮組織はDMEM/F12(SIGMA)中に1.2U/mlとなるようDispaseII(Roche)を添加した組織溶解溶液に4℃で4時間以上酵素処理を行った。その後ピンセットで口腔粘膜上皮組織より、上皮細胞層だけを用手的に剥離し、住友ベークライト社製遠心管STEMFULL中に回収した。
形成外科手術の際に不要となった皮膚を提供者の同意を得た後入手した。皮膚組織をDMEM/F12(SIGMA)中に1.2U/mlとなるようDispaseII(Roche)を添加した組織溶解溶液に4℃で4時間以上酵素処理を行った。その後皮膚組織より、表皮細胞層だけをピンセットで用手的に剥離し、住友ベークライト社製遠心管STEMFULL中に回収した。
実施例5と同様の方法で調製されたコーニング社製TransWell 6well Pleateに貼り付けた羊膜基質上に皮膚上皮細胞を10万個ずつ播種し、その後、2−3日に一度の培地交換を行いながら、37℃ 5%CO2の環境下で3週間培養を続け、細胞シートを作成した(図12B)。
10%ホルマリンで固定しパラフィンで包埋を行なった後にヘマトキシリン・エオジン染色法にて細胞シート断面の評価を行なった。細胞シートは重層化しており、基底層を有し表面が角化様の細胞シートを確認した。細胞シートの組織評価のため皮膚上皮特異的ケラチンパターンであるサイトケラチン1(CK1)AE1(PROGEN Biotechnik GmbH)−サイトケラチン10(CK10)VIK−10(BioVendor Laboratory Medicine, Inc)を用いて免疫染色を行なった。二次染色はAlexa, Fluor 488 goat anti−mouse IgG(Invitrogen)で反応させた。その結果、皮膚上皮細胞から作成された細胞シートは皮膚上皮特異的サイトケラチンパターンCK1、およびCK10を発現しており、皮膚上皮細胞シートであることが示された(図12C、D)。
本発明によって調製することが出来る幹細胞は産業上大きな利用可能性を持っている。本発明によって得られた幹細胞は、その一個の細胞から数百万の細胞で構成された組織を作成することが可能である。このような大量の細胞を供給する幹細胞を狙って感染するウィルスが存在する可能性は十分ある。それがウィルスにとって自身のDNAまたはRNAを感染、増殖させるのに最も良い方法であると考えられる。そのためウィルスの中には幹細胞を見分けて感染する機構を持つものが存在する可能性がある。また幹細胞自身にとっても自身へのウィルス感染は重大な脅威となりえる。そのため感染に対する防御機構を保持して
いると予想される。また幹細胞自身の機能異常による疾病も多く存在すると考えられる。しかしこれらは現在人類の知見の手には届いていない。現在まで幹細胞を無血清で容易に単離する手段が存在しなかったためである。しかし、本発明によってその知見はいつでも手に入れられる。本発明は感染症や癌に対する医薬品の開発などに用いる研究用試薬や試料の調製法として非常に大きな価値があると考えられる。
また上皮系幹細胞は特定増殖因子の刺激により、ムチンを活発に分泌し、または特定の細胞外基質を大量に分泌する。これらの代謝経路を幹細胞が保持していることが予想され、これらの代謝経路を明らかにすることは、酵母による組替え体を産業利用する上で収量効率化に大きな効果を及ぼすと考えられる。
また、本発明の培地は血清を用いた場合と比較して細胞の増殖能が優れており、適切な増殖因子の存在下で幹細胞が組織や他細胞へ分化する能力を発揮したまま培養できる。増殖因子の添加のみで細胞の分化を完全に制御できて生体組織を形成させることができる。これら形成された生体組織は血清を用いた場合と比較して未知の感染症の可能性が排除でき、例えば難治性角膜上皮障害を治療するためなどの再生医療に用いることが可能である。
Claims (11)
- 動物由来の組織を細胞に解離させる工程、培養表面が表面処理されていない培養容器又は培養用担体に該細胞を播種してインキュベートする工程、および該培養容器又は該培養用担体の培養表面に付着した細胞を選択する工程を含む単離方法によって角膜上皮幹細胞、結膜上皮幹細胞、口腔粘膜上皮幹細胞および皮膚上皮幹細胞から選択される幹細胞を組織から単離する工程、および単離された前記幹細胞をインシュリン、トランスフェリン、亜セレン酸ナトリウム、エタノールアミン、血清アルブミン、リノール酸、リノレイン酸、レチノール、およびα−トコフェロールを含む無血清培地で培養する工程を含む、前記幹細胞の培養方法。
- 血清アルブミンがヒト血清アルブミンである請求項1に記載の前記幹細胞の培養方法。
- ヒト血清アルブミンが組換えヒト血清アルブミンである、請求項2に記載の前記幹細胞の培養方法。
- 無血清培地が、EGF、FGF-2およびFGF-7から選択される分化刺激物を含む請求項1〜3の
いずれかに記載の前記幹細胞の培養方法。 - 動物由来の組織を細胞に解離させる工程、培養表面が表面処理されていない培養容器又は培養用担体に該細胞を播種してインキュベートする工程、および該培養容器又は該培養用担体の培養表面に付着した細胞を選択する工程を含む単離方法によって角膜上皮幹細胞、結膜上皮幹細胞、口腔粘膜上皮幹細胞および皮膚上皮幹細胞から選択される幹細胞を組織から単離する工程、および単離した前記幹細胞をインシュリン、トランスフェリン、亜セレン酸ナトリウム、エタノールアミン、血清アルブミン、リノール酸、リノレイン酸、レチノール、およびα−トコフェロールを含む無血清培地で培養する工程を含む、前記幹細
胞のコロニーの製造方法。 - 動物由来の組織を細胞に解離させる工程、培養表面が表面処理されていない培養容器又は培養用担体に該細胞を播種してインキュベートする工程、および該培養容器又は該培養用担体の培養表面に付着した細胞を選択する工程を含む単離方法によって、角膜上皮幹細胞、結膜上皮幹細胞、口腔粘膜上皮幹細胞および皮膚上皮幹細胞から選択される幹細胞を組織から単離する工程、および単離した前記幹細胞をインシュリン、トランスフェリン、亜セレン酸ナトリウム、エタノールアミン、血清アルブミン、リノール酸、リノレイン酸、レチノール、およびα−トコフェロールを含む無血清培地で培養する工程を含む、角膜上皮細胞シート、結膜上皮細胞シート、口腔粘膜上皮細胞シートおよび皮膚上皮細胞シートから選択される細胞シートの製造方法。
- 細胞シートが重層化された前記上皮細胞シートである請求項6に記載の前記細胞シートの製造方法。
- インシュリン、トランスフェリン、亜セレン酸ナトリウム、エタノールアミン、血清アルブミン、リノール酸、リノレイン酸、レチノール、およびα−トコフェロールを含み、血清を含まない、角膜上皮肝細胞、結膜上皮幹細胞、口腔粘膜上皮幹細胞および皮膚上皮幹細胞から選択される幹細胞培養用培地。
- 血清アルブミンがヒト血清アルブミンである、請求項8に記載の前記幹細胞培養用培地。
- ヒト血清アルブミンが組換えヒト血清アルブミンである、請求項9に記載の前記幹細胞培養用培地。
- EGF、FGF-2およびFGF-7から選択される分化刺激物をさらに含む、請求項8〜10のいず
れかに記載の前記幹細胞培養用培地。
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