JP5383105B2 - オリゴヌクレオチド及びこれをプライマーとして用いたバチルス・コアグランスの検出法 - Google Patents
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Chain Reaction、以下PCR法と省略する)による迅速検出法が知られており、この検出法を用いてラクトバチルス属の特定の菌種の同定や解析が行われている。
そこで、本出願人は、PCR法でバチルス・コアグランスを検出するために新規にプライマーを開発し、バチルス・コアグランスの迅速な検出を可能とした(特許文献1)。
Amplification)法による手法が栄研化学(株)より開発された。この手法は必要とする試薬に特定の遺伝子領域を増幅するためのプライマーを混合し、65℃付近の一定温度にて1時間程度反応させ、その判定は反応液の濁度により確認可能な方法である。また、この手法は、PCR法にみられるような特殊な専用機器を用いる必要はなく、また反応時間も短いため簡便であり、迅速な結果を得られると考えられる。
(1)バチルス・コアグランスの16SrRNAをコードするヌクレオチド配列を標的とし、そのヌクレオチド配列の一部と相補的となるように化学合成されたオリゴヌクレオチドからなる、LAMP(Loop-Mediated Isothermal
Amplification)法で用いるプライマーセットであって、配列番号1に示される塩基配列FIPを含むオリゴヌクレオチド、配列番号2に示される塩基配列BIPを含むオリゴヌクレオチド、配列番号3に示される塩基配列F3を含むオリゴヌクレオチド、および配列番号4に示される塩基配列B3を含むオリゴヌクレオチドの少なくとも4種のオリゴヌクレオチドを含むことを特徴とする、バチルス・コアグランス検出用プライマーのセット、
(2)(1)記載の少なくとも4種のオリゴヌクレオチドを含むプライマーのセットにおいて、4種のオリゴヌクレオチドに加え、配列番号5に示される塩基配列LFを含むオリゴヌクレオチドおよび配列番号6に示される塩基配列LBを含むオリゴヌクレオチドをさらに加えた少なくとも6種のオリゴヌクレオチドを含むことを特徴とする、バチルス・コアグランス検出用プライマーのセット、
(3)(1)又は(2)に記載のプライマーのセットを添加し、LAMP(Loop-Mediated Isothermal
Amplification)法によりプライマーの伸長反応と標的とするヌクレオチド配列の増幅を行い、そのヌクレオチド配列の増幅を検出することを特徴とする、バチルス・コアグランスの検出方法、
である。
Amplification法(特許3313358号)に基づくものである。
Manual of Systematic Bacteriology vol.2により種レベルまで同定した。
Bacteriology vol.2を用いて同定した種名と、16SrDNA塩基配列を解析し、データベースと相同性を照合して推定した種名が異なる場合は、本発明では、16SrDNA塩基配列より推定した種名を基準とする。
of Bacteriology, 173 (2), p697-703 (1991)]を用い、
(5´) AGAGTTTGATCATGGCTCAG (3´) (配列番号7)
(5´) GGTTACCTTGTTACGACTT (3´) (配列番号8)
前記単一コロニーの熱水抽出物をDNAの鋳型としてPCRを行った後(細菌で保存性が高い配列部分をプライマーとしているので、未知の細菌であっても16SrRNAをコードする約1400塩基対のDNAが増幅される。)、PCR産物を電気泳動し、16SrRNAをコードする約1400塩基対のDNAの増幅を確認する。次に、PCR産物の塩基配列を「ABI
PRISM 3100 Genetic Analyzer(アプライドバイオシステムズジャパン(株)」で解読する。日本DNAデータバンク(DDBJ)の相同性検索ソフト:ブラスト(BLAST)により、当該塩基配列と相同性の高い塩基配列を検索し、種を推定する。
FIP
(5´) GCCCATCTGTAAGTGYCAGCCAGTTTTTTCCTCCGCATGGA (3´) (配列番号1)
BIP
(5´) GGCGCATTAGCTAGTTGGCGGGATCACCCTCTCAGGTCGG (3´) (配列番号2)
F3
(5´) GATAACGCCGGGAAACCG (3´) (配列番号3)
B3
(5´) GTGTCTCAGTCCCAATGTGG (3´)
(配列番号4)
のいずれかを含むオリゴヌクレオチドを使用する。
LF
(5´) AAGCCGCCTTTCCTTTTTCC (3´) (配列番号5)
LB
(5´) CACCAAGGCAACGATGCG (3´) (配列番号6)
(1)検体の調製
本発明のプライマーがバチルス・コアグランスに対して特異的であることを確認するために、表1中の縦の見出し欄に示した種々の細菌をそれぞれ増菌用の平板培地に接種し、培養した。菌体を掻き取り、生理的食塩水に懸濁し、沸騰水中で10分間加熱することによりDNAを抽出し、遠心分離した上澄液を検体とした。なお、この懸濁液中の菌濃度は108cfu/mL程度であった。
バチルス・コアグランスの16SrRNAをコードするヌクレオチド配列を標的とするプライマーとして、配列番号1〜6の塩基配列を有するオリゴヌクレオチドをホスホアミダイト法により合成した。
LAMP反応試薬は、栄研化学(株)製のLoopamp DNA増幅試薬キットを用いた。LAMP反応液は、2倍濃度反応用緩衝液12.5μL、配列番号1の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド(FIP)40pmol、配列番号2の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド(BIP)40pmol、配列番号3の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド(F3)5pmol、配列番号4の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド(B3)5pmol、DNAポリメラーゼ1.0μLを加え、滅菌蒸留水で22.5μLとした。
配列番号1〜4の4種類のオリゴヌクレオチドからなるプライマーセット、および配列番号1〜6の6種類のオリゴヌクレオチドからなるプライマーセットについて、バチルス・コアグランスの増幅速度について比較を行った。
実施例1のLAMP反応液(プライマー4種類を含有)に加え、配列番号5の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド(LF)20pmol、配列番号6の塩基配列からなるオリゴヌクレオチド(LB)20pmolをさらに含むLAMP反応液(プライマー6種類を含有)を調製した。このLAMP反応液(プライマー6種類を含有)と、実施例1のLAMP反応液(プライマー4種類を含有)との反応速度の違いを調べるために、バチルス・コアグランス(食品由来)を実施例1と同様に検体として調製したものを使用し、Loopampリアルタイム濁度測定装置RT−160C((株)モリテックス製)でのLAMP法反応を行い、濁度を経時的に測定した。また、LAMP反応液(プライマー6種類を含有)が、バチルス・コアグランス以外の細菌を検出しないことを確認するため、バチルス・セレウス(IFO3001)を検体として使用し、上記LAMP法反応により同様に濁度を経時的に測定した。図1は、増幅時間に対する濁度の変化を表した図である。
実施例2のLAMP反応液(プライマー6種類を含有)について、バチルス・コアグランスの検出感度について評価した。
実施例1と同様に、バチルス・コアグランスを検体として調製した。菌濃度は、2.5×10〜2.5×104cfu/mLとなるように滅菌蒸留水で希釈した。これらを実施例1と同様にLAMP法反応を行い、60分後に目視で判定を行った。この結果を表2に示す。
Claims (3)
- バチルス・コアグランスの16SrRNAをコードするヌクレオチド配列を標的とし、そのヌクレオチド配列の一部と相補的となるように化学合成されたオリゴヌクレオチドからなる、LAMP(Loop-Mediated Isothermal
Amplification)法で用いるプライマーセットであって、配列番号1に示される塩基配列FIPを含むオリゴヌクレオチド、配列番号2に示される塩基配列BIPを含むオリゴヌクレオチド、配列番号3に示される塩基配列F3を含むオリゴヌクレオチド、および配列番号4に示される塩基配列B3を含むオリゴヌクレオチドの少なくとも4種のオリゴヌクレオチドを含むことを特徴とする、バチルス・コアグランス検出用プライマーのセット。 - 請求項1記載の少なくとも4種のオリゴヌクレオチドを含むプライマーのセットにおいて、4種のオリゴヌクレオチドに加え、配列番号5に示される塩基配列LFを含むオリゴヌクレオチドおよび配列番号6に示される塩基配列LBを含むオリゴヌクレオチドをさらに加えた少なくとも6種のオリゴヌクレオチドを含むことを特徴とする、バチルス・コアグランス検出用プライマーのセット。
- 請求項1又は2に記載のプライマーのセットを添加し、LAMP(Loop-Mediated Isothermal
Amplification)法によりプライマーの伸長反応と標的とするヌクレオチド配列の増幅を行い、そのヌクレオチド配列の増幅を検出することを特徴とする、バチルス・コアグランスの検出方法。
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