JP5307542B2 - 治療的に活性なα−MSHアナログ - Google Patents
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Description
本発明者は、驚くべきことに、α-MSH及びα-MSHアナログをペプチドのN末端においてSIP改変することが、天然型のα-MSHペプチドに比較されたペプチドの最大効力を増加させるということを示した。本発明のペプチドは、天然型のα-MSHに比べて高い抗炎症効果及び虚血状態を予防するための高い能力を示す。
X-Aa1-Aa2-Aa3-Aa4-Aa5-Y-Aa6-Aa7-Z
[式中、
Xは、6個のアミノ酸残基R1-R2-R3-R4-R5-R6を含み、ここでR1、R2、R3、R4、R5及びR6は、独立して、Lys又はGluであり、そして
Yは、His-Phe-Arg、His-(D-Phe)-Arg、His-Nal-Arg及びHis-(D-Nal)-Argから選ばれるアミノ酸配列を含み、そして
Zは、Lys-Pro-Val及びLys-Pro-(D-Val)から選ばれるアミノ酸配列を含み、そして
Aa1、Aa2、Aa3、Aa4、Aa5、Aa6及びAa7は独立して、天然型又は非天然型のアミノ酸残基であるか、又は存在しないものであり、そして
当該ペプチドのカルボキシ末端が、-C(=O)-B1、式中B1は、OH、NH2、NHB2、N(B2)(B3)、OB2、及びB2から選ばれ、ここでB2及びB3は独立して、場合により置換されるC1-6アルキル、場合により置換されるC2-6アルケニル、場合により置換されるC6-10アリール、場合により置換されるC7-16アラルキル、及び場合により置換されるC7-16アルキルアリールから選ばれ、
当該ペプチドのアミノ末端は、(B4)HN-、(B4)(B5)N-、又は(B6)HN-であり、ここでB4及びB5は独立して、H、場合により置換されるC1-6アルキル、場合により置換されるC2-6アルケニル、場合により置換されるC6-10アリール、場合により置換されるC7-16アラルキル、及び場合により置換されるC7-16アルキルアリールから選ばれ;B6は、B4-C(=O)-である]
を含む全体で12〜19のアミノ酸残基を有するペプチドを提供する。
本発明は、α-MSH又は当該ペプチドのC末端部分におけるα-MSHのバリアント、並びに当該ペプチドのN末端部分における構造誘導性プローブ(SIP)のアミノ酸配列を含むペプチドに関する。本発明のペプチドは、α-MSHアナログと呼ばれている。本明細書及び特許請求の範囲では、これらの用語は、同義的に用いられる。
X-Aa1-Aa2-Aa3-Aa4-Aa5-Y-Aa6-Aa7-Z
[式中、
Xは、6個のアミノ酸残基R1-R2-R3-R4-R5-R6、ここでR1、R2、R3、R4、R5及びR6は独立してLys又はGluであり、そして
Yは、His-Phe-Arg、His-(D-Phe)-Arg、His-Nal-Arg及びHis-(D-Nal)-Argから選ばれるアミノ酸配列を含み、そして
Zは、Lys-Pro-Val及びLys-Pro-(D-Val)から選ばれるアミノ酸配列を含み、そして
Aa1、Aa2、Aa3、Aa4、Aa5、Aa6及びAa7は独立して、天然型又は非天然型のアミノ酸残基であるか、又は存在しないものであり、そして
当該ペプチドのカルボキシ末端が、-C(=O)-B1、(式中B1は、OH、NH2、NHB2、N(B2)(B3)、OB2、及びB2から選ばれ、ここでB2及びB3は独立して、場合により置換されるC1-6アルキル、場合により置換されるC2-6アルケニル、場合により置換されるC6-10アリール、場合により置換されるC7-16アラルキル、及び場合により置換されるC7-16アルキルアリールから選ばれ、
当該ペプチドのアミノ末端は、(B4)HN-、(B4)(B5)N-、又は(B6)HN-であり、ここでB4及びB5は独立して、H、場合により置換されるC1-6アルキル、場合により置換されるC2-6アルケニル、場合により置換されるC6-10アリール、場合により置換されるC7-16アラルキル、及び場合により置換されるC7-16アルキルアリールから選ばれ;B6は、B4-C(=O)-である]
を含む、全体で12〜19のアミノ酸を有するペプチドに関する。
、エチル、n-プロピル、イソプロピル、n-ブチル、イソブチル、sec-ブチル、tert-ブチル、ペンチル、イソペンチル、ネオペンチル、ヘキシル、ヘプチル及びオクチルなどを有する。分岐状の炭化水素鎖は、炭化水素鎖を有する任意の炭素でC1-6-アルキルを意味することを意図する。
本文脈では、「C7-16アルキルアリール」は、C6-10アリールで置換されるC1-6アルキルを意味することを意図する。
X-Y-Z、
X-Aa1-Y-Z、
X-Aa1-Aa2-Y-Z、
X-Aa1-Aa2-Aa3-Y-Z、
X-Aa1-Aa2-Aa3-Aa4-Y-Z、
X-Aa1-Aa2-Aa3-Aa4-Aa5-Y-Z、
X-Aa1-Y-Aa6-Z、
X-Aa1-Aa2-Y-Aa6-Z、
X-Aa1-Aa2-Aa3-Y-Aa6-Z、
X-Aa1-Aa2-Aa3-Aa4-Y-Aa6-Z、
X-Aa1-Aa2-Aa3-Aa4-Aa5-Y-Aa6-Z,
X-Aa1-Y-Aa6-Aa7-Z、
X-Aa1-Aa2-Y-Aa6-Aa7-Z、
X-Aa1-Aa2-Aa3-Y-Aa6-Aa7-Z、
X-Aa1-Aa2-Aa3-Aa4-Y-Aa6-Aa7-Z、及び
X-Aa1-Aa2-Aa3-Aa4-Aa5-Y-Aa6-Aa7-Z
[式中、
Xは、6個のアミノ酸残基R1-R2-R3-R4-R5-R6、ここでR1、R2、R3、R4、R5及びR6は独立してLys又はGluであり、そして
Yは、His-Phe-Arg、His-(D-Phe)-Arg、His-Nal-Arg及びHis-(D-Nal)-Argから選ばれるアミノ酸配列を含み、そして
Zは、Lys-Pro-Val及びLys-Pro-(D-Val)から選ばれるアミノ酸配列を含み、そして
Aa1、Aa2、Aa3、Aa4、Aa5、Aa6及びAa7は独立して、天然型又は非天然型のアミノ酸残基であるか、又は存在しないものであり、そして
当該ペプチドのカルボキシ末端が、-C(=O)-B1、(式中、B1は、OH、NH2、NHB2、N(B2)(B3)、OB2、及びB2であり、ここでB2及びB3は独立して、場合により置換されるC1-6アルキル、場合により置換されるC2-6アルケニル、場合により置換されるC6-10アリール、場合により置換されるC7-16アラルキル、及び場合により置換されるC7-16アルキルアリールから選ばれ、
当該ペプチドのアミノ末端が、(B4)HN-、(B4)(B5)N-、又は(B6)HN-であり、ここでB4及びB5は独立して、H、場合により置換されるC1-6アルキル、場合により置換されるC2-6アルケニル、場合により置換されるC6-10アリール、場合により置換されるC7-16アラルキル、及び場合により置換されるC7-16アルキルアリールから選ばれ;B6は、B4-C(=O)-である]
からなる群から選ばれるアミノ酸配列を含む、全体で12〜19のアミノ酸残基を有するペプチドに関する。
X-Aa1-Aa2-Aa3-Aa4-Aa5-Y-Aa6-Aa7-Z
[式中、
Aa1、Aa2、Aa3、Aa4、Aa5、Aa6、及びAa7は、独立して、任意の天然又は非天然アミノ酸で在りうる。こうして、Aa1、Aa2、Aa3、Aa4、Aa5、Aa6及びAa7は、全て本発明のペプチド中に存在する]
を含む、ペプチドに関する。
Xは、以下の:
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys(配列番号37)、
Glu-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys(配列番号38)、
Lys-Glu-Lys-Lys-Lys-Lys(配列番号39)、
Lys-Lys-Glu-Lys-Lys-Lys(配列番号40)、
Lys-Lys-Lys-Glu-Lys-Lys(配列番号41)、
Lys-Lys-Lys-Lys-Glu-Lys(配列番号42)、
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Glu(配列番号43)、
Glu-Glu-Lys-Lys-Lys-Lys(配列番号44)、
Glu-Lys-Glu-Lys-Lys-Lys(配列番号45)、
Glu-Lys-Lys-Glu-Lys-Lys(配列番号46)、
Glu-Lys-Lys-Lys-Glu-Lys(配列番号47)、
Glu-Lys-Lys-Lys-Lys-Glu(配列番号48)、
Lys-Glu-Glu-Lys-Lys-Lys(配列番号49)、
Lys-Glu-Lys-Glu-Lys-Lys(配列番号50)、
Lys-Glu-Lys-Lys-Glu-Lys(配列番号51)、
Lys-Glu-Lys-Lys-Lys-Glu(配列番号52)、
Lys-Lys-Glu-Glu-Lys-Lys(配列番号53)、
Lys-Lys-Glu-Lys-Glu-Lys(配列番号54)、
Lys-Lys-Glu-Lys-Lys-Glu(配列番号55)、
Lys-Lys-Lys-Glu-Glu-Lys(配列番号56)、
Lys-Lys-Lys-Glu-Lys-Glu(配列番号57)、
Lys-Lys-Lys-Lys-Glu-Glu(配列番号58)、
Glu-Glu-Glu-Lys-Lys-Lys(配列番号59)、
Glu-Glu-Lys-Glu-Lys-Lys(配列番号60)、
Glu-Glu-Lys-Lys-Glu-Lys(配列番号61)、
Glu-Glu-Lys-Lys-Lys-Glu(配列番号62)、
Glu-Lys-Glu-Glu-Lys-Lys(配列番号63)、
Glu-Lys-Glu-Lys-Glu-Lys(配列番号64)、
Glu-Lys-Glu-Lys-Lys-Glu(配列番号65)、
Glu-Lys-Lys-Glu-Glu-Lys(配列番号66)、
Glu-Lys-Lys-Glu-Lys-Glu(配列番号67)、
Glu-Lys-Lys-Lys-Glu-Glu(配列番号68)、
Lys-Lys-Lys-Glu-Glu-Glu(配列番号69)、
Lys-Lys-Glu-Lys-Glu-Glu(配列番号70)、
Lys-Lys-Glu-Glu-Lys-Glu(配列番号71)、
Lys-Lys-Glu-Glu-Glu-Lys(配列番号72)、
Lys-Glu-Lys-Lys-Glu-Glu(配列番号73)、
Lys-Glu-Lys-Glu-Lys-Glu(配列番号74)、
Lys-Glu-Lys-Glu-Glu-Lys(配列番号75)、
Lys-Glu-Glu-Lys-Lys-Glu(配列番号76)、
Lys-Glu-Glu-Lys-Glu-Lys(配列番号77)、
Lys-Glu-Glu-Glu-Lys-Lys(配列番号78)、
Lys-Lys-Glu-Glu-Glu-Glu(配列番号79)、
Lys-Glu-Lys-Glu-Glu-Glu(配列番号80)、
Lys-Glu-Glu-Lys-Glu-Glu(配列番号81)、
Lys-Glu-Glu-Glu-Lys-Glu(配列番号82)、
Lys-Glu-Glu-Glu-Glu-Lys(配列番号83)、
Glu-Lys-Lys-Glu-Glu-Glu(配列番号84)、
Glu-Lys-Glu-Lys-Glu-Glu(配列番号85)、
Glu-Lys-Glu-Glu-Lys-Glu(配列番号86)、
Glu-Lys-Glu-Glu-Glu-Lys(配列番号87)、
Glu-Glu-Lys-Lys-Glu-Glu(配列番号88)、
Glu-Glu-Lys-Glu-Lys-Glu(配列番号89)、
Glu-Glu-Lys-Glu-Glu-Lys(配列番号90)、
Glu-Glu-Glu-Lys-Lys-Glu(配列番号91)、
Glu-Glu-Glu-Lys-Glu-Lys(配列番号92)、
Glu-Glu-Glu-Glu-Lys-Lys(配列番号93)、
Lys-Glu-Glu-Glu-Glu-Glu(配列番号94)、
Glu-Lys-Glu-Glu-Glu-Glu(配列番号95)、
Glu-Glu-Lys-Glu-Glu-Glu(配列番号96)、
Glu-Glu-Glu-Lys-Glu-Glu(配列番号97)、
Glu-Glu-Glu-Glu-Lys-Glu(配列番号98)、
Glu-Glu-Glu-Glu-Glu-Lys(配列番号99)、
Glu-Glu-Glu-Glu-Glu-Glu(配列番号100)
から選ばれる。
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val (配列番号1)
のN末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化されている本発明に従ったペプチドに関する。
Glu-Glu-Glu-Glu-Glu-Glu-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val (配列番号2)
のN末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化されている本発明に従ったペプチドに関する。
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-(D-Val) (配列番号3)
のN末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化されている本発明に従ったペプチドに関する。
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-(D-Phe)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val (配列番号5)
のN末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化されている本発明に従ったペプチドに関する。
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-(D-Nal)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val (配列番号9)
のN末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化されている本発明に従ったペプチドに関する。
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Ser-Ile-Ile-Ser-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val (配列番号13)
のN末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化されている本発明に従ったペプチドに関する。
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Ser-Ile-Ile-Ser-His-(D-Phe)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val (配列番号17)
のN末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化されている本発明に従ったペプチドに関する。
Ac-(Lys)6-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号1*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)、
Ac-(Glu)6-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号2*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)、
Ac-(Lys)6-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-(D-Val)-NH2 (配列番号3*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)、
Ac-(Lys)6-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-(D-Phe)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号5*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)、
Ac-(Lys)6-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-(D-Nal)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号9*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)、
Ac-(Lys)6-Ser-Ser-Ile-Ile-Ser-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号13*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)、
Ac-(Lys)6-Ser-Ser-Ile-Ile-Ser-His-(D-Phe)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号17*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)
の生物学的効果を試験した。
Ac-(Lys)6-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号1*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)、及び
Ac-(Lys)6-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-D-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2(配列番号5*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)
の効果を調査し、そして2個のペプチド(配列番号1*及び5*)がLPS誘導性の肺内への好酸球の蓄積の効果を有意に抑制することが示された(実施例1及び2)。驚くべきことに、好酸球についての効果に加えて当該ペプチド(配列番号5*)は、天然メラニン細胞刺激ホルモン、α-MSH(実施例2)で処理されたラットで見られたよりもずっと高い程度で好中球の浸潤を顕著に抑制した。
Ac-(Lys)6-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号1*、N末端でアセチル化されており、そしてC末端でアミド化されている)、
Ac-(Lys)6-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-D-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号5*、N末端でアセチル化されており、そしてC末端でアミド化されている)、及び
Ac-(Lys)6-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-D-Nal-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号9*、N末端でアセチル化されており、そしてC末端でアミド化されている)
で表される3個全てのペプチドは、天然ペプチドα-MSHよりも高い程度に梗塞サイズを低減した(実施例1、3、4)。
a)ヒト白血球によるLPS誘導性TNF-α産生を抑制し、
b)炎症誘導性の肺内への好酸球浸潤を抑制し、
c)炎症誘導性の肺内への好中球浸潤を抑制し、
d)循環血液中の炎症誘導性TNF-α蓄積を抑制し、
e)虚血誘導性急性腎不全を低減し、
f)心筋梗塞サイズを低減し、
g)心筋梗塞後の心不全の程度を低減し、
h)肺高血圧を低減し、
i)シスプラチン誘導性腎不全を低減する
のうちの少なくとも1を有するペプチドに関する。
本発明のペプチドは、当該技術分野に知られている方法により製造されうる。こうして、α-MSH、α-MSH-バリアント、α-MSHアナログ及びXモチーフは、溶液合成又はメリフィールド型の固相合成などの鎖状ペプチド製造技術により製造されうる。
(a) 当該ペプチドをコードする核酸配列を宿主細胞に誘導し、
(b) 当該宿主細胞を培養し、そして
(c) 当該培養物から当該ペプチドを単離する
を含むか、或いは
(a) 当該ペプチドをコードする核酸配列を含む組換え宿主細胞を、当該ペプチドの産生を許容する条件下で培養し、そして
(b) 当該ペプチドを培養物から単離する
を含む組換えDNA技術を用いて、本発明に従ったペプチドを製造する方法に関する。
本発明は、特に、上又は以下に記載される病気、障害又は疾患のうちの1以上と組み合わせて使用する医薬において使用するための本発明に記載されるペプチドに関する。
本明細書及び特許請求の範囲では、虚血は、1以上の臓器への血流の低下として定義されて、酸素のデリバリーの低下及び/又は組織による利用の低下をもたらす。虚血は、脳、心臓、四肢、腎臓、脾臓、肝臓、腸、胃、肺、目、皮膚、筋肉、膵臓、内分泌臓器などを含む1以上の臓器(非限定的なリスト)で生じうる。
本文脈中の「炎症状態」という用語は、特異的Tリンパ球又は抗体と抗原との反応などのメカニズムが、炎症細胞のリクルート及び内在性メディエーター化学物質を引き起こす状態を意味する。幾つかの場合、臓器又は組織の通常の機能は、血管透過性における増加により、及び/又は内臓平滑筋の収縮により変更されよう。このような炎症状態は、炎症疾患を生じさせうる。
1の実施態様では、本発明は、毒素又は薬剤誘導性の細胞、組織又は臓器不全の治療又は予防のための医薬組成物の製造のための本発明に記載される1以上のペプチドの使用に関する。
本発明は、治療を必要とする個々の哺乳動物の1以上の臓器の組織の状態を治療又は予防する方法であって、当該方法は、本発明に記載される1以上のペプチドの有効量を投与することを含む、前記方法に関する。当該状態は、虚血又は炎症状態であり、及び/又は毒素又は薬剤治療の毒性効果から生じる。
本発明は、本発明に従った1以上のペプチドを含む医薬組成物にも関する。当該医薬組成物は、さらに1以上の医薬担体を含んでもよい。さらに、当該医薬組成物は、さらに1以上の医薬として許容される賦形剤を含んでもよい。
全身適用では、本発明に記載される組成物は、慣用的に非毒性の医薬として許容される担体及び賦形剤であって、マイクロスフィア及びリポソームを含むものを含みうる。
粘膜又は皮膚について適用するために、本発明に従って使用するための組成物は、慣用的に、非毒性医薬として許容される担体及び賦形剤、例えばマイクロスフィア及びリポソームを含みうる。
粘膜又は皮膚への適用のために、本発明に従って使用するための組成物は、マイクロスフィア及びリポソームを含む慣用的に非毒性の医薬として許容される担体及び賦形剤を含みうる。
溶媒の例は、非限定的に、水、アルコール、植物油又は魚油(例えば、食用油、例えばアーモンド油、ヒマシ油、カカオバター、やし油、トウモロコシ油、綿実油、亜麻仁油、オリーブ油、パーム油、ピーナッツ油、ケシの実油、アブラナ油、ゴマ油、ダイズ油、ヒマワリ油、及び茶油)、ミネラルオイル、脂肪油、流動パラフィン、ポリエチレングリコール、プロピレングリコール、グリセリン、液体ポリアルキルシロキサン及びそれらの混合物である。
座剤基材の例は、非限定的に、カカオ脂、アデプス・ソリダス(Adeps solidus)及びポリエチレングリコールである。
本発明のペプチドは、以下に記載される方法の試験化合物である。
in vitroにおけるヒト白血球によるLPS誘導性のTNF-α産生の抑制
EDTA入りのVacutainer(登録商標)チューブ中に20mlのヒト血液を回収した。Ficoll-Paque Plus(Amershamの製品、71-7167-00 AD, 2002-06)を用いてPBMCを単離した。トリパンブルー溶液(Sigma)を用いてPBMCを計数し、そして10mMのHepes(Sigma)、2mMのL-グルタミン(Sigma)、0.1%のBSA(Sigma)及び50U/50μg/mLのペニシリン/ストレプトマイシン(Sigma)を添加したRPMI1640(Applichem)中で5×105細胞/mlの濃度でインキュベートした。単離PBMCを、培地、10ngLPS/ml(Sigma)、及び試験化合物を入れた24ウェル平底プレート(Corning Incorporated)中で、加湿5%CO2、95%空気中でインキュベートした。18時間後、サンプルを遠心し、そして上清中のTNF-αを、Human Biotrak ELISA System(Amersham)からの腫瘍壊死因子α[(h)TNF-α]を用いて計測した。
RPMI中のPBMC(時間対照)
10ngLPS/mlを伴うPBMC(ビヒクル)
PBMC、10ngLPS/mL、10-17Mのα-MSH又はα-MSHアナログ
PBMC、10ngLPS/mL、10-15Mのα-MSH又はα-MSHアナログ
PBMC、10ngLPS/mL、10-13Mのα-MSH又はα-MSHアナログ
PBMC、10ngLPS/mL、10-11Mのα-MSH又はα-MSHアナログ
PBMC、10ngLPS/mL、10-9Mのα-MSH又はα-MSHアナログ
PBMC、10ngLPS/mL、10-7Mのα-MSH又はα-MSHアナログ
全てのサンプルを、最初のストック溶液から1.4×10-4M〜1.8×10-3Mで希釈する。
当該化合物の容器の表面への結合を保護するために、全ての溶液をBSA被膜容器中で取り扱う。
データを平均±SEで示す。LPS誘導性TNF-α遊離についての試験化合物の効果は、LPSビヒクル群におけるTNF-αの蓄積の割合として表現される。全ての比較は、スチューデントの対応のないt検定で分析した。確率水準(p)=0.05を有意差とした。
in vivoでのラットにおけるLPS誘導性TNFαの抑制
実験動物
雌Wistarラット(220〜240g)をCharles River, Sulzfeld, Germanyから購入し、そして12時間の明暗サイクル(午前6時から午後6時まで明るくする)で温度及び湿度が調節された動物室中(22〜24℃)(40〜70%)で飼育した。ラットを、140mmol/kgのナトリウム、275mmol/kgのカリウム及び23%タンパク質(Altromin International, Lage, Germany)を含むげっ歯類の標準飼料で維持し、そして自由に水へとアクセスさせた。
イソフルラン-亜酸化窒素麻酔中に大腿動脈及び静脈を介して、腹部大動脈及び下大静脈中に、常設医療品質のTygonカテーテルを動物にインプラントした。設置の後に、動物を個別に7〜10日間、実験の日まで飼育した。
実験前に、全てのラットを、それぞれ2回2時間トレーニングさせることにより実験に使用する梗塞ケージに順応させた。実験の日に、動物を拘束ケージに移し、そして150mMのグルコースを含むビヒクル溶液を静脈内に輸液を開始した。輸液速度は、実験を通して0.5ml/時であった。短い適応期間の後に、リポ多糖(LPS)の輸液を開始する。LPS(大腸菌セロタイプ0127 B8、L 3129、Sigma、St.Louis, USA)を4mg/kg体重の用量でi.v.輸液として1時間かけて与えた。0.3mlの動脈血試料を、LPS輸液開始後60、90、及び120分でとり、そして通常のドナーラットから直ぐにヘパリン化血と取り替えた。
LPS輸液に加えて、全てのラットを、以下の:
ビヒクル(0.5ml等張生理食塩水)
以下の用量:50μg/kg体重;200μg/kg体重又は1000μg/kg体重のうちの1の用量のα-MSH;
以下の用量:50μg/kg体重;200μg/kg体重又は1000μg/kg体重のうちの1の用量の試験化合物
のボーラス注射で処理する。
血液試料を予め凍結された、0.5mMのEDTA、pH7.4、及び20×106IU/mlアプロチニンを入れた試験管中に回収した。4℃で遠心した後に、血漿サンプルを予め凍結させた試験管に移し、そして-20℃でのちにTNF-αを計測するまで貯蔵した。血漿中のTNF-αは、ELISAにより決定される(Biotrak,Amersham, UK)。
結果を平均±SEとして示す。繰り返し計測についての2-ウェイANOVAを、群間の差について試験するために用いる。p<0.05の場合、対応するペプチド間の差は、対応のないt検定により評価され、有意差のレベルについてボンフェローニの補正を行った。
ラットにおけるLPS吸入後の好中球及び好酸球浸潤の抑制
M&B A/S, DK-8680 Ry, Denmarkから得た雄のスプラーグ-ドーリーラット(体重〜200g)を全ての実験に用いた。ラットを標準3型ケージにいれ、そして12時間の明暗サイクル(午前6時から午後6時まで明るくする)で温度及び湿度調節された動物室(22〜24℃、40〜70%)で飼育した。食餌は、オートクレーブ済みのAltromin 1324特別処方(Altromin Denmark, Chr. Pedersen A/S, 4100 Ringsted, Denmarkにより販売される)であった。
LPSの注入に加え、ラットを以下の:
ビヒクル(0.5ml等張生理食塩水)
α-MSH:200μg/kg/bw
α-MSHアナログ:200μg/kg/bw
のいずれかのボーラス注射で処理する。LPS吸入をされなかった時間対照群は、ビヒクルで処理される。
データは、平均±標準偏差として示される。分散の1ウェイ分析を行い、次にフィッシャーの最小有意差検定行うことにより、群間比較を行う。
in vivoにおけるLPS誘導性サイトカイン放出及びブタにおける肺高血圧の抑制
雌のランドレースブタ(Landrace pig)(〜30kg)を一晩絶食させたが、水は自由に与えた。次に、ブタに筋中でケタミン(10mg/kg)及びミダゾラム(0.25mg/kg)を前投与する。静脈内ケタミン(5mg/kg)で麻酔を誘導する。ブタに経口挿管し、そしてフェンタニル(60μg/kg/h)及びミダゾラム(6mg/kg/h)を連続静脈内輸液して麻酔を維持する。動物を、体積制御ベンチレーター(Servo 900ベンチレーター;Siemens Elema, Solna, Sweden)を用いて5cmH2Oの呼吸終末陽圧でベンチレートした。1回換気量を10〜15ml/kgに維持し、そして炭酸正常状態を維持するために(34〜45mmHgの範囲の二酸化炭素圧[PaCO2])、呼吸数を調節した(20〜25回の呼吸/分)。105mmHgを超える動脈酸素圧(PaO2)を達成するために空気中の酸素を用いて行った。1の動脈及び2の静脈シースを、輸液のために頚動脈及び対応する静脈に配置した。液体を満たしたカテーテルを通して血圧を計測し、血液サンプリング及び導入カテーテルに用いた。
心臓血圧、心拍数(心電図)、及び肺動脈圧(PAP)の連続観察を行った。
大腸菌リポ多糖エンドトキシン(大腸菌、026:_6、バクトリポ多糖;Difco Laboratoies、Detroit、MI)を、全ての沈殿を溶解するために各実験の前に120分間生理食塩水中に溶解した。安定期間後に、リポ多糖の注入は、2.5μg/kg/hの割合でベースラインで開始し、そして徐々に30分間、15μg/kg/分に増加させた。この後に、150分間、2.5μg/hkg/hの割合で維持し、そしてその後に止めた。
LPS注入を開始する直前に、対照群に介入群と等体積のビヒクルを与える。介入群に1回静脈内ボーラス注射として、α-MSHアナログを200μg/kgの用量で与える。
EDTA安定化血液から得られた新鮮凍結血漿サンプル(-80℃)を、製造説明書に従って、市販の酵素結合免疫吸着アッセイを用いることによりTNF-αの計測のために使用する。
データを平均±S.E.で表す。群間比較を、分散の1ウェイ分析の次にフィッシャーの最小有意差検定を行うことにより行なう。差は、0.05レベルで有意であるとした。
ラットの左前下行枝の60分間の閉塞により誘導される心筋梗塞のサイズの抑制
バリア-ブレッド(barrier-bred)及び特定病原菌除去ウィスターラット(250g)をCharles River, Hannover, Germanyから購入した。動物を12時間の明暗サイクルの温度及び湿度調節動物室(22〜24℃、40〜70%)で飼育した(午前6時から午後6時までを明るくした)。全ての動物に水道水、並びに約140mmol/kgのナトリウム、275mmol/kgのカリウム及び23%のタンパク質を含むペレット状のラット飼料(Altrominカタログ番号1310、Altoromin International Large, Germany)を自由に与えた。
ビヒクル:0.5mlの150mM・NaCl
α-MSH:200μg又は1000μgのα-メラニン細胞刺激ホルモン/kg b.w.を含む0.5mlの150mM・NaCl
試験化合物:200μg又は1000μgの試験化合物/kg b.w.を含む0.5mlの150mM・NaCl
のi.v.処理のうちの1にかける。
ラットを、虚血/再灌流後に麻酔状態を維持し、そしてLADの再拘束を、再灌流後3時間で行なった。この期間の間に、ECG及びMAPを連続して計測した。次に虚血領域のサイズを決定するためにEvans青色色素(1ml;2%w/v)をi.v.で投与した。心臓を取り除き、そして水平切片に切り、虚血領域の大きさを決定した。心臓を取り出し、そして水平切片に切り、虚血領域の大きさを決定し、そして非虚血心筋から虚血心筋を分離した。虚血領域を単離し、そして0.5%トリフェニルテトラゾリウム・クロリド溶液で37℃で10分間インキュベートした。ネクローシス組織の大きさは、次に、コンピューターによるイメージプログラムを用いることによって計測した。さらなる動物の実験例では、動物は、術後にブプレノルフィンで処理され、そしてケージに戻し、医薬による治療の高層性心不全の発達についての効果を評価するために、2週間後に左心室拡張末期圧(LVEDP)を計測した。右頚動脈を介して左心室へと挿入される2Fマイクロチップカテーテルを用いて、LVEDPを計測した。85〜90mmHgに平均動脈血圧(MAP)を安定化させるために、イソフルラン濃度を調節した。
データを、平均±S.E.で示す。スチューデントの対応のあるt検定を用いて群間比較を分析する。群間比較を、分散の1ウェイ分析をし、次にFishersの最小有意差検定により行なった。0.05レベルで差を有意差とみなした。
ラットにおいて、腎動脈の40分の両側閉塞により誘導される腎不全の抑制
バリア-ブレッド及び特定病原体除去の雌ウィスターラット(250g)をCharles River, Hannover, Germanyから購入した。当該動物を12時間の明暗サイクルで温度及び湿度調節動物室(22〜24℃、40〜70%)で飼育した。全ての動物に水道水、並びに約140mmol/kgのナトリウム、275mmol/kgのカリウム及び23%のタンパク質を含むペレット状のラット飼料(Altrominカタログ番号1310、Altoromin International Large, Germany)を自由に与えた。
ビヒクル:0.5mlの150mM・NaCl、
α-MSH:200μgのα-メラニン細胞刺激ホルモン/kg b.w.を含む0.5mlの150mM・NaCl、
試験化合物:200μgの試験化合物/kg b.w.を含む0.5mlの150mM・NaCl
のi.v.処理のうちの1を行なう。腎臓の再灌流の5分前に処理を行い、そして続いて6及び24時間後に行なう。
データを平均±S.E.として示す。群間比較は、スチューデントの対応のあるt検定を用いて分析した。群間比較を、分散の1ウェイ分析を行い、次にFisherの最小有意差試験を行なった。0.05レベルの差を有意差とした。
シスプラチン誘導性腎不全の抑制
前もって常設静脈カテーテルを設置されたラットを代謝ケージにいれ、そして代謝ケージへの馴化期間の後に、ラットを腹腔内シスプラチン注射5.0mg/kgbwを含む0.5mlの150mM・NaCl又はビヒクル(0.5ml・150mM・NaCl)で処理した。5日後、次にラットを代謝ケージに戻し、そして続く5日間、毎日24時間の尿量及び水摂取量を計測し、そして回収した。次に全てのラットをハロタン/N2Oで麻酔し、そして動脈血液サンプルを予め凍結されたEDTA被膜バイアル中に回収した。血液サンプルを、0.5mM・EDTA、pH7.4、及び20×106IU/mlアプロチニンを入れた予め凍結された試験チューブに回収し、そして-20℃で、クレアチニン及びマグネシウム(Mg)を後に計測した。このクレアチニンに加えて、血液採取の前の最後の24時間の期間回収された尿を計測する。糸球体ろ過量(GFR)の指標として使用されるクレアチニンクリアランス(Ccr)は、Ccr=Vu×Ucr/Pcrとして計算できる。ここでVuは、24時間の尿生産である;Ucrは、尿についてのックレアチニン濃度であり、そしてPcrは、血漿におけるクレアチニン濃度である。尿及び血漿におけるクレアチニンの計測は、臨床化学システムVITROS950(Ortho-Clinical diagnostics Inc., Johnson & Johnson, NJ)及びRoche Hitachi Modular (Roche Diagnostics, Manheim, Germany)を用いることにより行なわれる。
ビヒクル:0.5ml・150mM・NaCl、
α-MSH:200μgのα-メラニン細胞刺激ホルモン/kg b.w.を含む0.5ml150mM・NaCl、
試験化合物:200μgの試験化合物/kg b.w.を含む0.5mlの150mM・NaCl、
のi.v.処置のうちの1を行なう。腎臓の再灌流の5分前に処置を行い、そして6時間及び24時間後に処置を行なう。
データーを平均±S.E.として示す。群間比較を、スチューデントの対応のあるt検定で分析した。群間比較は、分散の1ウェイ分析を行ない、次にFisherの最小有意差検定を行なうことにより行なわれる。0.05レベルの差を有意差とした。
実施例1
試験化合物は、以下のα-MSHアナログ#1:
Ac-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号1*:N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化されている)
である。当該化合物は、実験例1-7で試験された。
α-MSH及びα-MSHアナログ#1(配列番号1*)の両方が、独立して、ヒト白血球懸濁液におけるLPS誘導性TNF-αの蓄積を低減させた。驚くべきことに、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)の抑制性効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症性効果よりも顕著に強調されている。これと対照的に、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)は、TNF-α蓄積をビヒクルの47±2%に低減することができる(αMSHに対してP<0.01)(図1を参照のこと)。
α-MSHとα-MSHアナログ#1(配列番号1*)の両方が、LPSのiv注入の間ラットにおいてTNF-αの蓄積を低減した。α-MSH並びにα-MSHアナログ#1(配列番号1*)の最大抑制効果は、200μg/kg体重の投与量で達成し、そしてTNF-α産生に対する最大抑制効果は、LPS融合の開始後120分で見られる。驚くべきことに、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)抑制性効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果よりも顕著により強調される。ラット血漿中のTNF-α濃度を、最大応答(LPS-ビヒクル)の17±3%に抑制する一方、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)は、TNF-α蓄積を9±1%のビヒクルに低減することができる(α-MSHに対してP=0.05)(図2を参照のこと)。
α-MSHとαMSHアナログ#1(配列番号1*)の両方が、LPS吸入後24時間で収集された気管支肺胞洗浄液中の好酸球の顕著な減少により示されるように、肺胞スペース内におけるLPS吸入に対する炎症応答を低減する。α-MSH処置は、BALFの好酸球の数を、26.7±4.3×105細胞に低減し(ビヒクルに対してP値<0.05)、そしてα-MSHアナログ#1(配列番号1*)は、好酸球の数を、49.0±10.5×105細胞(ビヒクルに対してP値<0.05)に低減し、BALF中の好酸球の数が164.6±42.2×105細胞であるビヒクル処理されたラットに比べられる(図3を参照のこと)。上と一致して、BALF内の好中球の数の効果は、α-MSH及びα-MSHアナログ#1(配列番号1*)と同様である。
α-MSHアナログ#1(配列番号1*)は、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)で処理されたブタにおいてLPS誘導後に、TNFαの血漿濃度の顕著な低下により示される顕著な抗炎症効果を有する。この抗炎症効果に加えて、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)は、驚くべきことに、肺性高血圧の発達に対する保護能力を有し、当該能力は、α-MSHアナログ#1(配列番号1)で処理されたラットにおいて見られたPAPのLPS誘導性の増加の顕著な減少により証拠付けられる(PAPの最大増加:ビヒクルについて22±4mmHg、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)について8±2mmHg;p=0.05)(図4を参照のこと)。
α-MSHとは対照的に、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)は、驚くべきことに、LAD-再灌流後3時間で計測されたリスク領域の画分としての壊死領域として表現される心筋梗塞サイズを低下させる。α-MSHアナログ#1の最大抑制効果は、200μg/kg体重の用量で達成され、ここで梗塞サイズの低下は、ビヒクル処理されたラットに比べて約30%である(ビヒクルについてリスク領域の50.6±2.6%、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)についてリスク領域の35.7±5.6、p=0.01)(図5を参照のこと)。1000μg/kg体重の用量で、梗塞サイズの低減は、ビヒクル処理されたラットに比較して〜30%である(α-MSHアナログ#1(配列番号1*)についてリスク領域の35.0±4.4%、ビヒクルに対してp<0.01)(図5を参照のこと)。60分のLADの閉塞後の14日目の動物のさらなる実験例での左心室拡張末期圧(LVEDP)の計測により、梗塞サイズのα-MSHアナログ#1(配列番号1*)の有利な効果がLVEDPの顕著な低下、そしてそれにより、梗塞後うっ血性心不全の発達の顕著な低下を伴うことが示された(LVEDP:α-MSHアナログ#1(配列番号1*):10.4±2.9mmHg;対ビヒクル:20.0±2.2mmHg;P<0.01;対時間対照7.5±2.3mmHg;NS)(図6を参照のこと)。
60分の両側腎虚血(RIR)は、顕著な虚血多尿症を誘導する。RIRラットは、持続性多尿症を患い、虚血誘導の4日後に、偽手術対照ラットと比べて101%だけ増加した(RIR-ビヒクル:34.8±3.3ml/24時間対時間対照:17.3±2.1ml/24時間、P<0.01)。α-MSH処理は、多尿症を低減することができない(RIR-α-MSH:29.0±2.9ml/24時間;NS対RIR-ビヒクル)。驚くべきことに、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)は、尿流量の完全な通常化を誘導できる(RIR-α-MSHアナログ#1(配列番号1*):18.8±3.6ml/24時間;NS対時間対照;P<0.01対RIR-ビヒクル)(図7を参照のこと)。
シスプラチン処理は、顕著な低マグネシウム症及びGFRの低下により証拠付けられるネフロン毒性を誘導する。これに従って、シスプラチン及びビヒクルで処理されたラットは低マグネシウム血漿を誘導し(血漿Mg:0.61±0.04mM、対照ラット:0.77±0.05mM、P<0.05)、そしてGFRの顕著な低下を誘導した。血漿Mgは、シスプラチン及びα-MSHで処理されたラットにおいて低下した(0.37±0.04mM、P<0.05対対照ラット)。驚くべきことに、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)での処理は、シスプラチン誘導性の低マグネシウム血漿を抑制し(0.84±0.04mM、NS対対照ラット)、そしてシスプラチン誘導性のGFRの低下を予防する。
試験化合物は以下のα-MSHアナログ#2:
Ac-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-(D-Phe)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号5* N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)
である。
α-MSHアナログ#2(配列番号5)は、10位でMetをNleに置換し、そして13位のPheを(D-Phe)に立体化学的に置換する点でα-MSHアナログ#1(配列番号1*)とは異なっている。
当該化合物を、実験例1-3、及び5-7で試験した。
α-MSH及びα-MSHアナログ#2(配列番号5*)の両方は、独立してヒト白血球懸濁液中でLPS誘導性のTNF-αの蓄積を低減する。驚くべきことに、α-MSHアナログ#2(配列番号5*)の抑制効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果よりもより顕著である。α-MSHは、最大応答(LPS-ビヒクル)の73±9%にTNF-αの蓄積を抑制する。これとは対照的に、α-MSHアナログ#2(配列番号5*)は、ビヒクルの42±11%へのTNF-αへと蓄積を低減できる(P<0.01対α-MSH)(図8を参照のこと)。
α-MSH及びα-MSHアナログ#2(配列番号5*)の両方が、LPSのiv注入の間にラットにおいてTNF-αの蓄積を低減する。α-MSH並びにα-MSHアナログ#2(配列番号5*)の最大抑制効果は、200μg/kg体重の用量で達成される。驚くべきことに、α-MSHアナログ#2(配列番号5*)の抑制効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果よりも顕著に強調される。一方、α-MSHが、ラット血漿中へのTNF-αの濃縮を最大応答(LPS-ビヒクル)の17±3%へと抑制する一方、α-MSHアナログ#2(配列番号5*)は、TNF-αの蓄積を、ビヒクルの9±1%へと低減する(P<0.05対α-MSH)(図9を参照のこと)。
α-MSH及びα-MSHアナログ#2(配列番号5*)の両方が、LPS吸入に応答する肺胞スペース内の炎症を低下させる。当該炎症の低下は、LPS吸入後24時間で回収されたBALF中の好酸球の顕著な低下により示される。α-MSH処理は、BALF中の好酸球の数を26.7±4.3×105細胞に低減し(ビヒクルに対してP値<0.05)、そしてα-MSHアナログ#2(配列番号5*)が、ビヒクル処理されたラットに比べて、好酸球を34.0±8.6×105細胞(ビヒクルに対してP値<0.05)に低減する。ビヒクル処理されたラットでは、BALF中の好酸球数は、164.6±42.2×105細胞である(図10を参照のこと)。驚くべきことに、α-MSHアナログ#2(配列番号5*)は、α-MSHに比べてBALF内の好中球についてより顕著な抑制効果を有した(α-MSHアナログ#2(配列番号5*)では9.1±2.4×105細胞、α-MSHでは20.1±2.5×105細胞;P<0.05)(図11を参照のこと)。
α-MSHとは対照的に、α-MSHアナログ#2(配列番号5*)は驚くべきことに、LAD再灌流後3時間で計測されたリスク領域の画分として壊死領域として表される心筋梗塞サイズを低減する。α-MSHアナログ#2(配列番号5*)の最大抑制効果は、200μg/kg体重の用量で達成され、ここで当該梗塞サイズの低下は、ビヒクル処理されたラットに比べて約27%である(ビヒクルについてリスク領域の51.4±2.1%の割合対α-MSHアナログ#2(配列番号5*):リスク領域の37.4±5.1%、p=0.01)(図12を参照のこと)。60分のLADの閉塞の14日後の動物のさらなる実験例における左心室拡張末期圧(LVEDP)の計測は、梗塞サイズについてのα-MSHアナログ#2(配列番号5*)の有利な効果は、LVEDPの顕著な低下と関連し、それにより梗塞後うっ血性心不全の発達の低下と関連することを示す。
60分の両側腎虚血(RIR)は、顕著な虚血後多尿症を誘導した。RIRラットは、持続性多尿症を有した。虚血発作後5日で当該多尿症は、偽手術対照ラットに比べて101%だけ増加した(RIR-ビヒクル:34.8±3.3ml/24時間対 時間対照:17.3±2.1ml/24時間、p<0.01)。α-MSH処置は、α-MSHアナログ#2(配列番号5*)で処置することに比べて、RIR後に見られる多尿症の程度を顕著に低減する。
シスプラチン処置は、顕著な低マグネシウム症及びGFRの低下により証拠付けられるネフロン毒性を誘導する。これに従って、シスプラチン及びビヒクルで処置されたラットは、GFRの低下に関連する低マグネシウム症(血漿Mg:0.61±0.04mM、対照ラットに対して0.77±0.05mM、p<0.05)を発達させる。血漿Mgは、シスプラチン及びα-MSHで処置されたラットにおいても低減する(0.37±0.04mM、P<0.05対対照ラット)。これとは対照的に、α-MSHアナログ#2(配列番号5*)は、シスプラチン誘導性低マグネシウム症、並びにシスプラチン誘導性GFRの低下を予防する。
試験化合物は、α-MSHアナログ#3:
Ac-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-D-Nal-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2 (配列番号9* N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)
であった。
α-MSHアナログ#3(配列番号9*)は、10位でMetをNleに置換し、そして13位でPheをD-Nalに置換する点で、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)と異なる。
化合物は、実験例1、2及び5において試験される。
α-MSH及びα-MSHアナログ#3(配列番号9*)の両方は、用量依存的にヒト白血球懸濁物においてLPS誘導性TNF-α蓄積を独立して低減する。驚くべきことに、α-MSHアナログ#3(配列番号9*)の抑制効果は、天然ペプチドであるα-MSHの抗炎症効果と比べて顕著により強調されている。α-MSHは、最大応答(LPS-ビヒクル)の73%±9%にTNF-αの蓄積を抑制する。これとは対照的に、α-MSHアナログ#3(配列番号9*)は、ビヒクルの53±13%にTNF-αの蓄積を低減することができる(α-MSHに対してP<0.05)(図13を参照のこと)。
α-MSH及びα-MSHアナログ#3(配列番号9*)の両方が、LPSのiv注入の間、ラットにおいてTNF-αの蓄積を低減する。α-MSH並びにα-MSHアナログ#3(配列番号9*)の最大抑制効果が、200μg/kg体重の用量で達成される。驚くべきことに、α-MSHアナログ#3(配列番号9*)の抑制効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症性効果と比べて、顕著により強調されている。α-MSHがラット血漿において、最大応答(LPS-ビヒクル)の17±3%にTNF-α濃度を抑制する一方、α-MSHアナログ#3(配列番号9*)が、ビヒクルの11±3%にTNF-αの蓄積を低減することができる(P<0.05対α-MSH)(図14を参照のこと)。
α-MSHとは対照的に、α-MSHアナログ#3(配列番号9*)は、驚くべきことに、LAD再灌流後3時間でリスク領域の画分としての壊死領域として表現される心筋梗塞サイズを低下する。α-MSHアナログ#3(配列番号9*)の最大抑制効果は、200μg/kg体重の用量で達成され、ここで梗塞サイズの低下は、ビヒクル処理されたラットに比べて約24%である(ビヒクルについて51.3±2.15、α-MSHアナログ#3(配列番号9*)について39.0±3.4%のリスク領域、p=0.05(図15を参照のこと)。LADの60分間の閉塞後14日目での動物の追加実験例における左心室拡張末期圧(LVEDP)の計測により、梗塞サイズについてのα-MSHアナログ#3(配列番号9*)の有利な効果が、LVEDPの顕著な低下に関連し、そしてそれにより梗塞後うっ血性心不全の発達の顕著な低下に関連するということが示された。
試験化合物は、以下のα-MSHアナログ#4:
Ac-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Ser-Ile-Ile-Ser-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2(配列番号13*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)
である。
α-MSHアナログ#4(配列番号13)は、8位においてTyrをSerで置換し、9位においてSerをIleで置換し、10位においてMetをIleで置換し、そして11位においてGluをSerで置換する点でα-MSHアナログ#1(配列番号1*)と異なっている。
化合物を実験例1及び2で試験する。
α-MSH及びα-MSHアナログ#4(配列番号13*)の両方ともが、ヒト白血球懸濁物において用量依存的にLPS誘導性TNF-αの蓄積を低減する。驚くべきことに、α-MSHアナログ#4(配列番号13*)の抑制効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果よりも顕著により強調されている。
α-MSH及びα-MSHアナログ#4(配列番号13*)の両方は、LPSのiv注入の間ラットにおいてTNF-αの蓄積を低減する。α-MSH並びにα-MSHアナログ#4の最大抑制効果は、200μg/kg体重の用量で達成される。驚くべきことに、α-MSHアナログ#4の抑制効果は、天然ペプチドであるα-MSHの抗炎症性効果に比べて顕著により強調されている。α-MSHがラット血漿中のTNF-αの濃度を最大応答(LPS-ビヒクル)の17±3%に抑制する一方、α-MSHアナログ#4(配列番号13*)は、TNF-α蓄積をビヒクルの12±2%に低減することができる(α-MSHに対して、P<0.05)(図16を参照のこと)。
試験化合物は、以下のα-MSHアナログ#5:
Ac-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Ser-Ile-Ile-Ser-His-(D-Phe)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2(配列番号17*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化されている)である。
当該化合物は、実験例1及び2で試験される。
α-MSH及びα-MSHアナログ#5(配列番号17*)の両方は、独立して、ヒト白血球懸濁におけるLPS誘導性TNF-α蓄積を低減する。驚くべきことに、α-MSHアナログ#5(配列番号17*)の抑制効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果よりも顕著である。
α-MSH及びα-MSHアナログ#5(配列番号17*)の両者は、LPSのiv注入の間ラットにおけるTNF-αの蓄積を低減する。α-MSH及びα-MSHアナログ#5(配列番号17*)の最大抑制効果は、200μg/kg体重の用量で達成される。驚くべきことにα-MSHアナログ#5(配列番号17*)の抑制効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果よりも顕著により強調される。
試験化合物は、以下のα-MSHアナログ#6:
Ac-Glu-Glu-Glu-Glu-Glu-Glu-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val-NH2(配列番号2*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)
である。
α-MSHアナログ#6(配列番号2)は、1〜6位で(Lys)6を(Glu)6に置換する点でα-MSHアナログ#1(配列番号1*)とは異なっている。
当該化合物は、実験例1及び2において試験される。
α-MSH及びα-MSHアナログ#6(配列番号2*)の両方が、独立してヒト白血球懸濁液中でLPS誘導性TNF-α蓄積を低減する。驚くべきことに、α-MSHアナログ#6(配列番号2*)の抑制効果が、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果に比べてより顕著に強調されている。
α-MSH及びα-MSHアナログ#6(配列番号2*)の両方が、LPSのiv注射の間ラットにおいてTNF-αの蓄積を低減する。α-MSH及びα-MSHアナログ#6(配列番号2*)の最大抑制効果は、200μg/kg体重で達成される。驚くべきことに、α-MSHアナログ#6(配列番号2*)の抑制効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果をよりも顕著に強調されている。
試験化合物が、以下のα-MSHアナログ#7:
Ac-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-(D-Val)-NH2(配列番号3*、N末端でアセチル化され、そしてC末端でアミド化される)である。
α-MSHアナログ#7(配列番号3)は、19位でPheの立体化学をD-Valへと置換する点で、α-MSHアナログ#1(配列番号1*)とは異なる。
当該化合物は、実験例1及び2において試験される。
α-MSH及びα-MSHアナログ#7(配列番号3)の両方が、独立してヒト白血球懸濁物中でのLPS誘導性TNF-α蓄積を低減する。驚くべきことに、α-MSHアナログ#7(配列番号3*)の抑制効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果に比べて顕著により強調される。
α-MSH及びα-MSHアナログ#7(配列番号3*)の両方が、LPSのiv注入の間にラットにおいてTNF-α蓄積を低減する。α-MSH、並びにα-MSHアナログ#7(配列番号3*)の最大抑制効果は、200μg/kg体重の用量で達成される。驚くべきことに、α-MSHアナログ#7(配列番号3*)の抑制効果は、天然ペプチドα-MSHの抗炎症効果に比べて顕著により強調される。
米国特許第4,288,627号
WO 91/17243
WO 99/46283
Claims (45)
- 以下のアミノ酸配列:
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Met-Glu-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val(配列番号1)
を含み、合計で19アミノ酸のペプチドであって、当該ペプチドのアミノ末端が、CH3-C(=O)-である、前記ペプチド。 - 前記ペプチドのカルボキシ末端が、-C(=O)-OHである、請求項1に記載のペプチド。
- 前記ペプチドのカルボキシ末端が、-C(=O)-NH2である、請求項1に記載のペプチド。
- 1)以下の:
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-(D-Phe)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val(配列番号5)、
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Ser-Ile-Ile-Ser-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val(配列番号13)、
からなる群から選ばれるペプチドであって、当該ペプチドのアミノ末端が、(B4)NH-、(B4)(B5)N-、又は(B6)HN-であり、ここでB4及びB5は、独立して、H、C1-6アルキル、C2-6アルケニル、C6-10アリール、C7-16アラルキル、及びC7-16アルキルアリールから選ばれ;B6がB4−C(=O)−であり;そして
そして当該ペプチドのカルボキシ末端が、-C(=O)-B1であり、ここでB1が、OH、NH2、NHB2、N(B2)(B3)、OB2、及びB2から選ばれ、ここでB2及びB3が独立して、C1-6アルキル、C2-6アルケニル、C6-10アリール、C7-16アラルキル、及びC7-16アルキルアリールから選ばれる、前記ペプチド。 - 前記ペプチドが以下の:
Lys-Lys-Lys-Lyg-Lys-Lys-Ser-Tyr-Ser-Nle-Glu-His-(D-Phe)-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val (配列番号5)
で表される配列を含む、請求項4に記載のペプチド。 - 前記ペプチドが、以下の:
Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Lys-Ser-Ser-Ile-Ile-Ser-His-Phe-Arg-Trp-Gly-Lys-Pro-Val (配列番号13)
で表される配列を含む、請求項4に記載のペプチド。 - 前記ペプチドのアミノ末端が、(B4)HN-であり、ここでB4がHである、請求項4〜6のいずれか一項に記載のペプチド。
- 前記ペプチドのアミノ末端が、(B6)HN−であり、ここでB6がB4−(=O)−であり、ここでB4がC1−6アルキルである、請求項4〜6のいずれか一項に記載のペプチド。
- B4がC1アルキルである、請求項4-6、及び8のいずれか一項に記載のペプチド。
- 前記ペプチドのカルボキシ末端が、-C(=O)-B1であり、B1がOHである、請求項4〜9のいずれか一項に記載のペプチド。
- 前記ペプチドのカルボキシ末端が、-C(=O)-B1であり、B1がNH2である、請求項4〜9のいずれか一項に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが、1、3、4及び5型メラノコルチン受容体から選ばれる1以上のメラノコルチン受容体を刺激する能力を有する、請求項1〜11のいずれか一項に記載のペプチド。
- 前記ペプチドが以下の性質:
a)ヒト白血球によりLPS誘導性TNF-α生成を抑制し、
b)肺内への炎症誘導性好酸球の浸潤を抑制し、
c)肺内への炎症誘導性好中球の浸潤を抑制し、
d)循環血液中での炎症誘導性TNF-αの蓄積を抑制し、
e)虚血誘導性急性腎不全を軽減し、
f)心筋梗塞サイズを低減し、
g)心筋梗塞性心不全後の程度を低減し、
h)肺血管高血圧を低減し、
i)シスプラチン誘導性腎不全を低減する
のうち少なくとも1を有する、請求項1〜12のいずれか一項に記載のペプチド。 - 医薬において使用するための、請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチド。
- 請求項1〜13のいずれか一項に記載されるペプチドを含む医薬組成物。
- 前記ペプチドが水溶液中に存在する、請求項15に記載の医薬組成物
- 1以上の医薬として許容される賦形剤をさらに含む、請求項15又は16に記載の医薬組成物。
- 前記組成物が、1以上の緩衝剤を含む、請求項15〜17のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記緩衝剤が、クエン酸、酢酸、酒石酸、乳酸、リン酸水素、及びジエチルアミンからなる群から選ばれる、請求項15〜18のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記緩衝剤が酢酸である、請求項18又は19に記載の医薬組成物。
- 1以上の医薬として許容される担体をさらに含む、請求項15〜20のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記組成物が、非経口、経口、局所、経粘膜、又は経皮組成物である、請求項15〜21のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 哺乳動物の1以上の臓器の組織の状態の治療又は予防用の医薬組成物であって、請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含む、前記医薬組成物。
- 前記臓器が、腎臓、肝臓、脳、心臓、筋肉、骨髄、皮膚、骨、肺、気道、脾臓、外分泌腺、膀胱、内分泌腺、卵管を含む生殖臓器、眼、耳、脈管系、小腸、結腸、直腸、及び肛門管を含む胃腸管、及び前立腺からなる群から選ばれる、請求項23に記載の医薬組成物。
- 前記状態が、虚血又は炎症状態である、請求項23又は24に記載の医薬組成物。
- 前記状態が、毒素又は薬剤誘導性の細胞、組織又は臓器不全のため生じる、請求項23〜25のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記状態が、虚血状態である、請求項23に記載の医薬組成物。
- 前記状態が急性、亜急性、又は慢性虚血である、請求項27に記載の医薬組成物。
- 前記状態が、二次的虚血である、請求項27又は28に記載の医薬組成物。
- 前記二次的虚血が、敗血性ショック又は全身性低血圧に付随する状態のため生じる、請求項29に記載の医薬組成物。
- 前記状態が、心筋虚血である、請求項23〜27のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記状態が、狭心症又は心筋梗塞である、請求項31に記載の医薬組成物。
- 前記状態が、炎症性状態である、請求項25に記載の医薬組成物。
- 前記炎症状態が、肺炎症、関節炎、皮膚炎、膵炎、炎症性腸疾患、心膜炎、心筋炎及び心内膜炎から選ばれる、請求項25に記載の医薬組成物。
- 前記状態が、心不整脈に付随する、請求項23〜26のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含む、肺脈管高血圧を抑制又は低下するための医薬組成物。
- 請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含む、虚血誘導性急性腎不全を低下するための医薬組成物。
- 請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含む、心虚血誘導性損傷を低下するための医薬組成物。
- 請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含む、心筋梗塞後心臓不全の程度を低下するための医薬組成物。
- 哺乳動物の1以上の臓器の組織における機能障害又は破壊を治療又は予防するための医薬組成物であって、請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含み、当該機能障害又は破壊が、手術により引き起こされる虚血のため生じる、前記医薬組成物。
- 哺乳動物の1以上の臓器の組織における機能障害又は破壊を治療又は予防するための医薬組成物であって、請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含み、当該機能障害又は破壊が、臓器移植により引き起こされる虚血のため生じる、前記医薬組成物。
- 哺乳動物の1以上の臓器の組織における機能障害又は破壊を治療又は予防するための医薬組成物であって、請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含み、当該機能障害又は破壊が、移植物、装置、移植片又はプロテーゼの外科的挿入により引き起こされる虚血のため生じる、前記医薬組成物。
- 哺乳動物の1以上の臓器の組織における機能障害又は破壊を治療又は予防するための医薬組成物であって、請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含み、当該機能障害又は破壊が、敗血性ショックにより引き起こされる虚血のため生じる、前記医薬組成物。
- 炎症性腸疾患の予防又は治療用の医薬組成物であって、請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含む、前記医薬組成物。
- 請求項1〜13のいずれか一項に記載のペプチドを含む、関節リウマチ、骨関節炎、及び反応性関節炎からなる群から選ばれる関節炎の治療又は予防用の医薬組成物。
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