JP5277965B2 - ナトリウム吸収阻害剤、カリウム吸収阻害剤およびリン吸収阻害剤、並びにそれを含む予防剤、治療剤および食品 - Google Patents
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Description
R−O−A (I)
{式(I)中、Rは架橋セルロース残基を表し、Aは陽イオン交換能を有する官能基aを表す。}
[2] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1以上であることを特徴とする前記[1]記載のナトリウム吸収阻害剤。
[3] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.2以上であることを特徴とする前記[1]記載のナトリウム吸収阻害剤。
[4] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.4以上であることを特徴とする前記[1]記載のナトリウム吸収阻害剤。
[5] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.5以上であることを特徴とする前記[1]記載のナトリウム吸収阻害剤。
[6] 官能基aが、下記一般式(II)〜(V)で表される基から選択されることを特徴とする前記[1]〜[5]のいずれかに記載のナトリウム吸収阻害剤。
[7] 官能基aが、下記一般式(II−1)、(II−2)、(III−1)〜(III−5)、(IV−1)、(V−1)および(V−2)から選択されることを特徴とする前記[6]記載のナトリウム吸収阻害剤。
[10] 前記架橋セルロース誘導体が架橋剤としてエピクロロヒドリンを用いて製造されたことを特徴とする前記[1]〜[9]のいずれかに記載のナトリウム吸収阻害剤。
[11] 前記[1]〜[10]のいずれかに記載の架橋セルロース誘導体の金属塩(但しナトリウム塩を除く)を有効成分とすることを特徴とする食塩過剰摂取に起因する疾患又は食塩摂取制限を必要とする疾患の予防剤及び治療剤。
[12] 前記[1]〜[10]のいずれかに記載のセルロース誘導体の金属塩(但しナトリウム塩を除く)を含有することを特徴とする食品。
[13] 下記一般式(I)で表される架橋セルロース誘導体の金属塩(但しカリウム塩を除く)を有効成分とすることを特徴とするカリウム吸収阻害剤。
R−O−A (I)
{式(I)中、Rは架橋セルロース残基を表し、Aは陽イオン交換能を有する官能基aを表す。}
[14] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1以上であることを特徴とする前記[13]記載のカリウム吸収阻害剤。
[15] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.2以上であることを特徴とする前記[13]記載のカリウム吸収阻害剤。
[16] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.4以上であることを特徴とする前記[13]記載のカリウム吸収阻害剤。
[17] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.5以上であることを特徴とする前記[13]記載のカリウム吸収阻害剤。
[18] 官能基aが、下記一般式(II)〜(V)で表される基から選択されることを特徴とする前記[13]〜[17]のいずれかに記載のカリウム吸収阻害剤。
[19] 官能基aが、下記一般式(II−1)、(II−2)、(III−1)〜(III−5)、(IV−1)、(V−1)および(V−2)から選択されることを特徴とする前記[18]記載のカリウム吸収阻害剤。
[22] 前記架橋セルロース誘導体が架橋剤としてエピクロロヒドリンを用いて製造されたことを特徴とする前記[13]〜[21]のいずれかに記載のカリウム吸収阻害剤。
[23] 前記[13]〜[22]のいずれかに記載の架橋セルロース誘導体の金属塩(但しカリウム塩を除く)を有効成分とすることを特徴とするカリウム過剰摂取に起因する疾患又はカリウム摂取制限を必要とする疾患の予防剤及び治療剤。
[24] 前記[13]〜[22]のいずれかに記載のセルロース誘導体の金属塩(但しカリウム塩を除く)を含有することを特徴とする食品。
[25] 下記一般式(I)で表される架橋セルロース誘導体の金属塩を有効成分とすることを特徴とするリン吸収阻害剤。
R−O−A (I)
{式(I)中、Rは架橋セルロース残基を表し、Aは陽イオン交換能を有する官能基aを表す。}
[26] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1以上であることを特徴とする前記[25]記載のリン吸収阻害剤。
[27] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.2以上であることを特徴とする前記[25]記載のリン吸収阻害剤。
[28] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.4以上であることを特徴とする前記[25]記載のリン吸収阻害剤。
[29] 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.5以上であることを特徴とする前記[25]記載のリン吸収阻害剤。
[30] 官能基aが、下記一般式(II)〜(V)で表される基から選択されることを特徴とする前記[25]〜[29]のいずれかに記載のリン吸収阻害剤。
[31] 官能基aが、下記一般式(II−1)、(II−2)、(III−1)〜(III−5)、(IV−1)、(V−1)および(V−2)から選択されることを特徴とする前記[30]記載のリン吸収阻害剤。
[34] 前記架橋セルロース誘導体が架橋剤としてエピクロロヒドリンを用いて製造されたことを特徴とする前記[25]〜[33]のいずれかに記載のリン吸収阻害剤。
[35] 前記[25]〜[34]のいずれかに記載の架橋セルロース誘導体の金属塩を有効成分とすることを特徴とするリン過剰摂取に起因する疾患又はリン摂取制限を必要とする疾患の予防剤及び治療剤。
[36] 前記[25]〜[34]のいずれかに記載のセルロース誘導体の金属塩を含有することを特徴とする食品。
架橋工程は、セルロースに対して、架橋剤を反応させることによって行うことができる。本発明に用いられる架橋剤としては、グリオキザール、ジアルデヒドでんぷん、ポリアクロレインなどのアルデヒド類、N−メチロールメラミン、トリメチロールメラミンなどのメチロール化合物、ジビニルスルホンなどの活性ビニル化合物、エピクロロヒドリン、エピブロモヒドリン、エチレングリコールジグリシジルエーテル、プロピレングリコールジグリシジルエーテル、グリセロールポリグリシジルエーテル、ペンタエリスリトールポリグリシジルエーテル、ネオペンチルグリコールジグリシジルエーテル、1,4−ブタンジオールジグリシジルエーテル、1,4−ビス(2,3−エポキシプロポキシ)ブタン、1,4−ビスグリシドキシブタン、1,2−ビス(2,3−エポキシプロポキシ)エチレン、1,−(2,3−エポキシプロピル)−2,3−エポキシシクロヘキサンなどのエポキシ化合物、酒石酸、クエン酸、リンゴ酸、マレイン酸、フマル酸、コハク酸、アジピン酸、セバシン酸、アスパラギン酸、グルタル酸、トリカルバリル酸、ブタンテトラカルボン酸、ポリマレイン酸、ポリアクリル酸、ポリアクリル酸−マレイン酸共重合物などのポリカルボン酸、ジイソシアネート化合物、オキシラニルメタノール、N−エチルビス(2−クロロエチル)アミン、メチルビニルジアセトキシシラン、ジメチルジアセトキシシラン、トリグリシジルトリス(2−ヒドロキシエチル)イソシアヌレート、ホルムアルデヒド、グルタルアルデヒド、クロトンアルデヒド、4,5−ジヒドロキシエチレン尿素、ジビニルスルホン、が挙げられ、好ましくは、ハロヒドリン類、グリシジルエーテル類、エポキシアルカン類などのエポキシ化合物であり、特に好ましくは、エピクロロヒドリンである。
上記架橋反応触媒の使用量は、上記架橋剤100重量部に対して、1〜200重量部で、好ましくは、80〜150重量部である。
エピクロロヒドリンにより、セルロースの糖鎖に対し、下記構造式のように架橋構造部分が増加する。この増加する部分の分子量は56である。
39000×0.04=1560、
増加する分子構造部分の分子量が56であることから、
1560÷56≒28
という計算から、架橋構造部分は、約28モルと算出される。即ち、架橋/セルロースの比は、28/1となる。
セルロース1モルにはグルコースが240個(平均重合度)あり、グルコース単位当たり水酸基が3個あることから、セルロース1モル当たりの水酸基数は、
240×3=720
であり、架橋構造部分との比は、上記のとおり28/1であるから、
28/720=0.039
と算出される。即ち、水酸基1個当たり0.039個であり、この0.039を上記の例の架橋セルロースの「架橋度」として定義することが出来る。
架橋度を制御するには、セルロースに対する官能基を活性化させるための塩基或いは酸の投与量と架橋剤の投与量の比で行うことができる。また、固液反応であることから、用いる溶剤の種類によって、また、溶剤が二種以上の場合はその比率によっても制御することが可能である。架橋度を好ましい範囲に制御するには、セルロースに対する官能基を活性化させるための塩基或いは酸の投与量と架橋剤の投与量の比で主に行うことが好ましい。
例えば架橋剤がエピクロロヒドリンの場合、水酸基が官能基であることから、塩基として水酸化ナトリウムを用いるが、エピクロロヒドリンと水酸化ナトリウムの比を一定とした場合、セルロースに対してエピクロロヒドリンの量比を増加するに従って架橋度は高くなる。ただし、水酸化ナトリウムがセルロースに対して大過剰であったり、水酸化ナトリウム水溶液濃度が高い場合には、セルロースの分解反応も平行して進行する恐れがあり、必ずしも架橋度の向上には繋がらない。
また、用いる溶剤に極性溶媒、例えばメタノールやイソプロピルアルコールのようなものを大量に用いた場合にはセルロースの分解(低分子化)が進み、架橋度は上がるものの回収率の低下が起こる可能性がある。
発明者らが鋭意研究した結果、エピクロロヒドリンと水酸化ナトリウムの量比(モル換算)は、エピクロロヒドリン/水酸化ナトリウムが、1/2〜1/4が好ましく、更に好ましくは1/2.3〜1/3.2である。さらにセルロースとの量比で表すと、セルロース/水酸化ナトリウム/エピクロロヒドリンが、1/6/3〜1/20/5、さらに好ましくは1/7/3〜1/16/5である。
そして用いる溶媒は、n−へプタン/メタノール/水や、n−ヘプタン/イソプロピルアルコール/水などの三相系や、n−ヘプタン/水系などの二相系で、非極性溶媒と極性溶媒(水のみ、またはアルコール系)があるが、n−ヘプタン/水がさらに好ましい。
さらには、架橋剤を分割して、すなわち、小分けにして投与回数を増やすことにより、架橋反応に使われずに加水分解する架橋剤の量を抑制し、より架橋度を上げることができる。また、例えば、攪拌速度を上げる、攪拌羽の形状を変える、バッフルを追加する、反応スケールを小さくするなどして、攪拌効率を上げることにより、より架橋度を上げることができる。
官能基導入工程が硫酸化を含む場合、官能基導入工程を架橋工程後に行うことがより好ましい。例えば、官能基aが前記一般式(III)の骨格の場合、セルロースの水酸基に、硫酸基を導入する硫酸化剤としては、濃硫酸、発煙硫酸、無水硫酸、無水硫酸/DMF錯体、無水硫酸/ピリジン錯体、無水硫酸/トリエチルアミン錯体、クロロスルホン酸などが挙げられるが、好ましくは、無水硫酸/DMF錯体を用いる。
しかしながら、官能基aが、前記一般式(II)の骨格の場合、既存のセルロース誘導体、6−ヒドロキシエチルセルロースや、6−ヒドロキシプロピルセルロースを出発物質に用いる場合は、官能基導入工程が官能基変換(この場合、酸化反応)を含むことが好ましく、官能基導入工程の後に架橋工程を行うのが好ましい。
n=162Y÷{y/m−((官能基a部分の分子量)−(水素1個分)に相当する値)Y}
以下、各一般式における置換度(n)の算出について、具体的に説明する。
{(無水硫酸分1個)+(Ca1/2)−(水素)}=99
が増加した261となり、Sの元素分析値を計算すると、
32/261=約12%
となる。置換度が2の場合には、分子量は、360に増加し、Sの元素分析値は、
64/360=約17.8%
になる。すなわち、Sの元素分析値をYとし、置換度をnとすると、
Y=32n÷(162+99n)
であるから、
n=162Y÷(32−99Y)
となる。この式を用いて、Sの元素分析値(Y)から置換度(n)が算出できる。たとえば、Sの元素分析値が18%の場合、置換度に換算すれば、約2.1となる。架橋セルロースの場合には、架橋の度合いを加味して算出する。例えば、架橋の構造がエピクロロヒドリンから得られる2−ヒドロキシ−1,3−エーテル骨格の場合、グルコース骨格と架橋構造部分の分子量と、架橋の割合を加味して算出することができる。
例えば、架橋度が後述する定義による0.1であったとすると、架橋構造部分(C3H4O)の分子量は、56であるから、グルコース骨格1個あたりでは(0.1×720×56÷240=)16.8となる。即ち、架橋セルロースの一単位あたりの分子量は、(162+16.8=)178.8となる。これを上述のセルロースの場合の式に当てはめると、置換度(n)は、n=178.8Y÷(32−99Y)と、Sの元素分析値(Y)から算出することが出来る。
Y=20n÷(162+78n)
となり、置換度(n)は、Caの元素分析値(Y)が求められれば、
n=162Y÷(20−78Y)
で算出できる。
Y=31n÷(162+148n)
となり、置換度(n)は、Pの元素分析値(Y)が求められれば、
n=162Y÷(31−148Y)
で算出出来る。
本発明におけるカリウム吸収阻害剤の、前記置換度は、好ましくは1以上であり、より好ましくは1.2以上であり、さらに好ましくは1.4以上であり、特に好ましくは1.5以上である。
本発明におけるリン吸収阻害剤の、前記置換度は、好ましくは1以上であり、より好ましくは1.2以上であり、さらに好ましくは1.4以上であり、特に好ましくは1.5以上である。置換度を上記範囲とするには、架橋工程において架橋度を制御することが好ましい。
一方、従来の硫酸化方法では、架橋度を制御したのみでは、好ましい置換度を獲得することは容易ではない。以下、官能基aが前記一般式(III)の骨格の場合を例として説明する。
硫酸基の置換度を向上させるには、硫酸化剤の架橋セルロースに対する量比を上げてやればよい。しかしながら、最も強力な硫酸化剤である無水硫酸/DMF錯体は、DMF中への無水硫酸の溶解度が20%弱であることから、反応系中における硫酸化剤の濃度には自ずと限度が生じる。その結果、置換度を向上させるには限度が生じ、特に架橋度の高い架橋セルロースに対して置換度を上げることは困難であった。
発明者らは、この点について鋭意研究した結果、DMF溶媒中に架橋セルロースを分散させた反応系中に無水硫酸を直接添加していくことにより、無水硫酸のDMF中濃度は一定でも、架橋セルロースに対する濃度を約2倍以上にすることができ、これにより、無水硫酸/セルロースの比が2/1程度でも、従来の3/1の場合と同程度以上の置換度(1.5以上)のものを容易に得ることが出来ることを見出した。即ち、架橋度の高い架橋セルロースに高い置換度を求めるために、架橋セルロースに対しDMF量を減らして無水硫酸を高濃度状態で反応させることで達成することができる。官能基aが、前記一般式(III)の骨格の場合、置換度は、好ましくは、1.2以上、より好ましくは1.4以上、さらに好ましくは1.5以上である。
{第一段階:硫酸化工程}
40℃で真空乾燥した結晶性セルロース(旭化成製、商品名:セオラスPH-101) 20.0g(123.5mmol(グルコース換算))を500mLセパラブルフラスコに入れ、DMF 100mLにて4日間攪拌下含浸を行なった。
この懸濁液を5℃まで冷却した。次に攪拌したまま、セパラブルフラスコに接続した滴下ロートから、20%無水硫酸−DMF錯体溶液 371.8g(SO3:0.929mol)を、系内温度を5℃に維持しながら徐々に滴下した。滴下終了後、恒温槽にて16〜17℃に調整し、6時間攪拌した。
次にイソプロパノール 500mLをこの反応液に加えた。反応液中からの析出物をろ別した。ろ過物を水 500mLにて溶解し、飽和塩化カルシウム水溶液 137.0gを加え、カルシウム化を行ない、粗生成物を析出させ、ろ別し目的物を得た。さらにイソプロパノール(500mL×2回)で洗浄した。濾過操作にてイソプロパノールを除去後、真空乾燥器にて乾燥させ、27.5gの硫酸化セルロースカルシウム塩を得た。元素分析を行ったところ、S;16.0%、Ca;12.4%、置換度は、1.6であった。
第一段階で得られた硫酸化セルロースカルシウム塩 25.05g(78.18mmol(グルコース換算))を冷却下イオン交換水 2000mLにて溶解した。
次にUF膜(旭化成製:ペンシル型モジュールACP-0013,公称分画分子量:13,000)を用いて、流速1.88〜1.92L/minで限外ろ過を行なった。原液が200mLになるまで循環濃縮した。200mL分を凍結乾燥にかけ最終的に17.68gの白色粉末を得た。
元素分析を行なったところ、S;18.3%、Ca;12.4%、置換度は、2.1であった。
{第一段階;架橋工程}
結晶性セルロース(旭化成製、商品名:セオラスPH-101) 5.0g(30.8mmol(グルコース換算))を500mL三口フラスコに入れ、冷却管、滴下ロートを接続した。別途、水酸化ナトリウム(96%品) 8.6g(206mmol)を水 50mLに溶解した。この調製した水酸化ナトリウム水溶液を滴下ロートに移し、結晶性セルロースに加えた。室温で10分間攪拌し、懸濁状態を維持した。
次に反応系にn-ヘプタン 50mLとメタノール 50mLを加え、50℃に昇温した。そこへ滴下ロートを用いて、エピクロロヒドリン 8.5g(92mmol)をメタノール 50mLに溶解したものを懸濁液に速やかに滴下した。二層が良く混合するようにしながら、50〜60℃を保持して3時間攪拌した。
室温まで冷却後、攪拌したまま濃塩酸を徐々に加え、水層のpHが、7.0付近にした。一旦、減圧濾過し、濾過物を水で洗浄し、さらにメタノールで洗浄した。濾過操作にてメタノールを除去後、真空乾燥機にて充分乾燥させ、6.1gの架橋セルロースを得た。架橋度は、0.174であった。
第一段階で得られた架橋セルロース 4g(0.0247mol(グルコース換算))を500mLセパラブルフラスコに入れ、DMF 20mLにて攪拌下3日間含浸した。その後この懸濁液を5℃まで冷却した。次に攪拌したまま、セパラブルフラスコに接続した滴下ロートから、20%無水硫酸−DMF錯体溶液 74.12g(SO3:0.185mol)を徐々に滴下した。このとき、反応温度は5℃を維持した。滴下終了後、恒温槽にて16〜17℃に調整し、24時間攪拌した。
次にイソプロパノール 100mLをこの反応液に添加した。反応液中からの析出物をろ過分別した。ろ過物を水 250mL加え、攪拌した。さらに、飽和塩化カルシウム水溶液 27.45gを添加し2時間攪拌した。不溶物をろ別し、さらにイソプロパノール(100mL×2回)で洗浄した。濾過操作にてイソプロパノールを除去後、真空乾燥器にて充分乾燥させ、8.09gの架橋硫酸化セルロースカルシウム塩を得た。元素分析を行ったところ、S;17.6%、Ca;10.8%、置換度は、2.3であった。
{第一段階;架橋工程}
結晶性セルロース(旭化成製、商品名:セオラスPH-101) 16.0g(99mmol(グルコース換算))を500mL三口フラスコに入れ、冷却管、滴下ロートを接続した。次に反応系にn-ヘプタン 300mLとイソプロパノール 10mLを加えた。30分攪拌後、別途、水酸化ナトリウム(96%品) 32.0g(768mmol)を水 100mLに溶解した。この調製した水酸化ナトリウム溶液の半量を滴下ロートに移し懸濁液に加え、室温で1時間攪拌した。
滴下ロートを用いて、エピクロロヒドリン 26.0g(281mmol)を懸濁液に速やかに滴下後、50℃に昇温した。二層が良く混合するようにしながら、50〜60℃を保持して3時間攪拌した。次に残りの水酸化ナトリウム溶液を滴下し、1.5時間攪拌した。これにエピクロロヒドリン 26.0g(281mmol)を加え、さらに2時間攪拌した。
室温まで冷却後、不溶物をろ別し、濾過物を水、2N塩酸、水で順次洗浄し、洗液のpHが中性付近になるまで洗浄した。さらにメタノールで洗浄した。真空乾燥機にて乾燥させ、18.1gの架橋セルロースを得た。架橋度は、0.198であった。
第一段階で得られた架橋セルロース 10g(0.0617mol(グルコース換算))を500mLセパラブルフラスコに入れ、DMF 50mLにて攪拌下3日間含浸した。その後この懸濁液を5℃まで冷却した。次に攪拌したまま、セパラブルフラスコに接続した滴下ロートから、18%無水硫酸−DMF錯体溶液 206.04g(SO3:0.463mol)を徐々に滴下した。このとき、反応温度は5℃を維持した。滴下終了後、恒温槽にて16〜17℃に調整し、24時間攪拌した。
次にイソプロパノール 250mLをこの反応液に添加した。反応液中からの析出物をろ過分別した。ろ過物を水 625mL加え、攪拌した。さらに、飽和塩化カルシウム水溶液 68.60gを添加し2時間攪拌した。不溶物をろ別し、さらにイソプロパノール(100mL×2回)で洗浄した。濾過操作にてイソプロパノールを除去後、真空乾燥器にて充分乾燥させ、13.7gの架橋硫酸化セルロースカルシウム塩を得た。元素分析を行ったところ、S;7.40%,Ca;5.38%、置換度は、0.58であった。
{第一段階;架橋工程}
結晶性セルロース(旭化成製、商品名:セオラスPH-101) 80.0g(0.494mol(グルコース換算))を3L三口フラスコに入れ、MeOH 800mLとn-ヘキサン 800mLに懸濁した。冷却管、攪拌羽根(攪拌モーター付)、滴下ロートを接続し、攪拌した。別途、水酸化ナトリウム(96%品) 140.0g(3.36mol)を水 1600mLに溶解しておいた。この調製した水酸化ナトリウム水溶液を滴下ロートに移し、懸濁液に加えた。室温で30分間攪拌し、懸濁状態を維持した。
次に反応系を50℃に昇温し、そこへ滴下ロートを用いて、エピクロロヒドリン 138.8g(1.5mol)をメタノール 200mLに溶解したものを懸濁液に滴下した。二層が良く混合するようにしながら、50〜60℃を保持して3時間攪拌した。
室温まで冷却後、洗液がpH=7.0付近になるまで、水、2N塩酸、水で順次洗浄した。
減圧濾過し、濾過物をメタノールで洗浄した。濾過操作にてメタノールを除去後、真空乾燥機にて乾燥させ、84.4gの架橋セルロースを得た。架橋度は、0.053であった。
第一段階で得られた架橋セルロース 40g(0.247mol(グルコース換算))を500mLセパラブルフラスコに入れ、DMF 200mLにて攪拌下3日間含浸した。その後この懸濁液を5℃まで冷却した。次に攪拌したまま、セパラブルフラスコに接続した滴下ロートから、18%無水硫酸−DMF錯体溶液 900g(SO3:2.025mol)を徐々に滴下した。このとき、反応温度は5℃を維持した。滴下終了後、恒温槽にて16〜17℃に調整し、一昼夜攪拌した。
次にイソプロパノール 1000mLをこの反応液に添加した。反応液中からの析出物をろ過分別した。ろ過物を水 1000mLにて溶解し、飽和塩化カルシウム水溶液 274.5gを添加しカルシウム化を行ない、粗生成物を析出させ、ろ過分別し目的物を得た。さらにイソプロパノール(1000mL×2回)で洗浄した。濾過操作にてイソプロパノールを除去後、真空乾燥器にて充分乾燥させ、76.8gの架橋硫酸化セルロースカルシウム塩を得た。元素分析を行ったところ、S;16.8%、Ca;12.8%、置換度は、1.9であった。
{第一段階;架橋工程}
結晶性セルロース(旭化成製、商品名:セオラスPH-101) 80.0g(0.494mol(グルコース換算))を3L三口フラスコに入れ、冷却管、攪拌羽根(攪拌モーター付)、滴下ロートを接続した。そこへメタノール 800mLおよびn-ヘキサン 800mLを加え攪拌し、懸濁液とした。別途、水酸化ナトリウム(96%品) 144.0g(3.457mol)を氷冷下で水 800mLに溶解した。この調製した水酸化ナトリウム水溶液を滴下ロートに移し、懸濁液に加えた。室温で60分間攪拌し、懸濁状態を維持した。
次に反応系を50℃に昇温し、そこへ滴下ロートを用いて、エピクロロヒドリン 159.9g(1.728mol)をメタノール 200mLに溶解したものを懸濁液に速やかに滴下した。二層が良く混合するようにしながら、50〜60℃を保持して6時間攪拌した。
室温まで冷却し、さらに20時間攪拌を続けた後、5Lビーカーに移し4時間静置した。上澄み液をデカンテーションによって除去し、残渣を水で懸濁後、減圧濾過した。濾過物を水で再度懸濁後、攪拌したまま濃塩酸を徐々に加え、pHが、7.0付近にした。一旦、減圧濾過し、濾過物を水で洗浄し、さらにメタノールで洗浄した。濾過操作にてメタノールを除去後、真空乾燥機にて充分乾燥させ、80.8gの架橋セルロースを得た。架橋度は、0.01未満であった。
第一段階で得られた架橋セルロース 30g(0.18mol(グルコース換算))を2L三口フラスコに入れ、DMF 150mLを加えて室温で21時間攪拌した。この懸濁液を5℃まで冷却した。次に攪拌したまま、三口フラスコに接続した滴下ロートから、無水硫酸DMF錯体DMF溶液(18.5%品) 721.0g(0.871mol)を徐々に滴下した。このとき、反応温度は5±5℃を維持した。滴下終了後、室温まで昇温し、24時間攪拌した。
次にイソプロパノール 1000mLを洗浄液に用いて加圧濾過した。濾過物を水 750mLに溶解後、別に調製した塩化カルシウム水溶液(31.1%) 198.0g(0.555mol)を加えた。そこへ攪拌しながらイソプロパノール 1000mLを加え結晶を析出させた後、60分間静置した。上澄み液をデカンテーションによって除去し、残渣をイソプロパノールで懸濁後、減圧濾過した。さらにイソプロパノールで洗浄した。濾過操作にてイソプロパノールを除去後、真空乾燥機にて充分乾燥させ、79.8gの架橋硫酸化セルロースカルシウム塩を得た。元素分析を行ったところ、S;17.8%、Ca;12.4%、置換度は、2.0であった。
{第一段階;架橋工程}
結晶性セルロース(旭化成製、商品名:セオラスPH-101) 80.0g(0.494mol(グルコース換算))を3L三口フラスコに入れ、冷却管、攪拌羽根(攪拌モーター付)、滴下ロートを接続した。別途、水酸化ナトリウム(96%品) 329.2g(7.901mol)を水 800mLに溶解した。この調製した水酸化ナトリウム水溶液を滴下ロートに移し、結晶性セルロースに加えた。室温で30分間攪拌し、懸濁状態を維持した。
次に反応系を50℃に昇温し、そこへ滴下ロートを用いて、エピクロロヒドリン 228.4g(2.469mol)をn-ヘプタン 1,600mLに溶解したものを懸濁液に速やかに滴下した。二層が良く混合するようにしながら、50〜60℃を保持して3時間攪拌した。
室温まで冷却後、攪拌したまま濃塩酸を徐々に加え、水層のpHが、7.0付近にした。一旦、減圧濾過し、濾過物を水で洗浄し、さらにメタノールで洗浄した。濾過操作にてメタノールを除去後、真空乾燥機にて充分乾燥させ、94.9gの架橋セルロースを得た。本化合物のX線回折を行って得られた結晶性が無くなったことを示すチャートから、架橋が進んだことが確認された。架橋度は、0.180であった。
第一段階で得られた架橋セルロース 25g(0.130mol(グルコース換算))を塩化カルシウム 34.3g(0.309mol)とともに500mL三口フラスコに入れ、DMF 300mLを加えて室温で24時間攪拌した。この懸濁液を5℃まで冷却した。次に攪拌したまま、三口フラスコに接続した滴下ロートから、無水硫酸 28.9mL(0.694mol)を徐々に滴下した。このとき、反応温度は20±5℃を維持した。滴下終了後、室温まで昇温し、24時間攪拌した。
次にイソプロパノール 1000mLを洗浄液に用いて減圧濾過した。濾過物を水(1000mL×3回)で洗浄した。さらにメタノール(500mL×2回)で洗浄した。濾過操作にてメタノールを除去後、真空乾燥機にて充分乾燥させ、48.0gの架橋硫酸化セルロースカルシウム塩を得た。元素分析を行ったところ、S;16.7%、Ca;9.7%、置換度は、1.9であった。
[製造例:架橋硫酸化セルロースカリウム塩の製造:Lot.KCS01-001]
{第二段階;硫酸化工程}
攪拌機、温度計及び滴下ロートを備えた2Lフラスコに製造例Lot.Type-007の{第一段階;架橋工程}の製造法と同様に製造した架橋セルロース 50.0g(0.260mol(グルコース換算))及び塩化カルシウム 68.5g(0.617mol)を入れた。窒素気流下とした後、氷冷しながらDMF 800mLを加えて懸濁液とした。5℃まで冷却した後、室温まで昇温し、窒素気流下で24時間攪拌した。この懸濁液を-20℃まで冷却した。次に攪拌したまま、セパラブルフラスコに接続した滴下ロートから、無水硫酸 59.0mL(1.42mol)を徐々に滴下した。このとき、反応温度は-20〜0℃を維持した。滴下終了後、20±5℃まで昇温し、24時間攪拌した。
次に反応系内にメタノール 1000mLを加えた後、加圧濾過する。イソプロパノール 1000mLで洗浄した後、濾過物を水 800mLに加え、攪拌し懸濁液とした。この懸濁液に水酸化カリウム水溶液を徐々に加え、水層のpHを7.0付近にした。加圧濾過し、得られた濾過物に25%塩化カリウム水溶液、400gを加え2時間攪拌状態を保持した。減圧濾過し、再び得られた濾過物に25%塩化カリウム水溶液、400gを加え2時間攪拌状態を保持した。減圧濾過し、さらに水及びアセトンで洗浄した後、真空乾燥機にて充分乾燥した。その結果、109.8gの架橋硫酸化セルロースカリウム塩を得た。元素分析を行ったところ、S;15.7%、K;20.2%、Ca;0.45%、置換度は、1.89であった。
〔架橋プロピル硫酸化セルロースカルシウム塩:Lot.ME13-138〕
7.8g(0.20mol)のNaHを100mLのヘキサンで洗浄後、200mLのDMSOに懸濁し、アルゴン置換した。この溶液に、30gの架橋化セルロース(上記化学反応式中の化合物1;本発明例Lot.Type-007の{第一段階;架橋工程}の製造法と同様に製造した架橋セルロース(0.156mol(グルコース換算))を加え、50℃で1時間攪拌し、さらに、23.7g(0.19mol)の1,3-プロパンスルトンのDMSO(25mL)溶液を滴下し、50℃で16時間攪拌した。この反応液を700mLの冷メタノールに加え、得られた結晶(上記化合物2)を減圧濾過し、メタノールで洗浄後(100mL×3)、70℃で2時間真空乾燥した。
収量は、51.4gであった。元素分析を行ったところ、Na;6.1%、S;8.9%、置換度は、0.9であった。
117g(0.80mol)のCaCl2・2H2Oの水溶液(350mL)に、50gの化合物2(0.149mol(グルコース換算))を加え、50℃で12時間攪拌した。反応液を遠心分離(3000rpm/20分/4℃)し、得られた残渣を250mLの水で洗浄・遠心分離し(それぞれ3回実施)、450mLのメタノールに加え、室温下30分間攪拌し、化合物3を得た。得られた化合物3を減圧濾過し、メタノール(100mL×2)で洗浄し、70℃で4時間真空乾燥した。
収量は、47.3gであった。元素分析を行ったところ、Ca;5.5%、S;8.7%、置換度は、0.8であった。
収量は、1.9gであった。元素分析を行ったところ、Ca;8.5%、S;13%、置換度は、1.7であった。
また、同様の方法によって45gの化合物3から49gの化合物4を得た。(ME13-141)
元素分析を行ったところ、Ca;10.7%、S;12.6%、であった。置換度は、1.6であった。
収量は、73.9gであった。元素分析を行ったところ、Na;9.1%、S;12%、置換度は、1.6であった。
229g(1.5mol)のCaCl2・2H2Oの水溶液(300mL)に、70gの化合物5(0.146mol(グルコース換算))を加え、50℃で12時間攪拌した。反応液を遠心分離(3000rpm/20分/4℃)し、得られた残渣を水(250mL)で洗浄・遠心分離し(それぞれ3回実施)、400mLのメタノールに加えた。得られた化合物6を減圧濾過し、メタノール(100mL×2)で洗浄し、70℃で4時間真空乾燥した。(ME13-147)
収量は、46.8gであった。元素分析を行ったところ、Ca;7.2%、S;11%、置換度は、1.3であった。
攪拌機、温度計及び滴下ロートを備えた1L丸底フラスコにヒドロキシエチルセルロース(和光純薬製) 10.2g(0.0495mol(グルコース換算))をイオン交換水 700mLに分散させ、これにTEMPO 28mgと臭化ナトリウム 260mgを加え、室温で攪拌した。これに5%次亜塩素酸ナトリウム水溶液(和光純薬製) 77gを加えた。
反応液のpHが徐々に下がっていくので、0.2M−水酸化ナトリウム水溶液を適宜加えて、pH10.5程度を維持した。約1時間後、あまりpHが変化しないことを確認後、0.2M−水酸化ナトリウム水溶液を10mL加え、室温で一晩攪拌した。翌朝、pHが9.9になっていた反応液を1N-塩酸を用いて、pH1.8まで下げた。
反応液を3Lビーカーに移し、1400mLの2-プロパノールを加え、晶析を行った。二晩静置後、上澄み液をデカンテーションし、残分を吸引濾過した。濾過物をエタノールで洗浄し、60℃で一晩減圧乾燥した。白色粉末 10.8gを得た。
IRを測定したところ、1730cm−1にカルボキシル基由来のC=O伸縮由来の強い吸収ピークを確認した。
第1工程で得られた6-ヒドロキシカルボニルメチルオキシセルロース 10.8g(0.049mol(グルコース換算))を1L三口フラスコに入れ、冷却管、攪拌羽根(攪拌モーター付)、滴下ロートを接続した。別途、水酸化ナトリウム(96%品) 4.2g(0.1mol)を水 200mLに溶解した。この調製した水酸化ナトリウム水溶液を結晶性セルロースに加えた。室温で30分間攪拌した。
次に反応系を50℃に昇温し、そこへ滴下ロートを用いて、エピクロロヒドリン 12g(0.13mol)をn-ヘプタン 160mLに溶解したものを懸濁液に速やかに滴下した。二層が良く混合するようにしながら、50〜60℃を保持して3時間攪拌した。
室温まで冷却後、攪拌したまま濃塩酸を徐々に加え、水層のpHを、7.0付近にした。一旦、減圧濾過し、濾過物を水で洗浄し、さらにメタノールで洗浄した。濾過操作にてメタノールを除去後、減圧乾燥機で60℃で一晩減圧乾燥した。その結果、12.8gの6-ヒドロキシカルボニルメチルオキシセルロースを得た。本化合物のX線回折を行って得られた結晶性が無くなったことを示すチャートから、架橋が進んだことが確認された。
この白色粉体 12g(0.05mol(グルコース換算))を純水 100mLに溶解し、塩化カルシウム 30gと水酸化カルシウム 4gを加えた。この懸濁液を3時間攪拌後、一晩静置した。1N-塩酸を用いて、懸濁液のpHを11.5から7.5に下げて中和した。これを吸引濾過し、濾過物をエタノールで洗浄した。60℃で一晩減圧乾燥し、白色微粉末 12gを得た。
元素分析を行ったところ、Ca;7.2%、置換度は、1.0であった。また本化合物のIRを測定したところ、1730cm−1にカルボキシル基由来のC=O伸縮由来の強い吸収ピークを確認した。
{架橋型硫酸化セルロース(Ca)の正常ラットの糞便への電解質排泄に及ぼす影響}
〔方法〕
動物は日本チャールスリバー(株)より購入したSD系雄性ラットを用いた。ラットは一夜絶食飼育した後3日間、精製飼料(Casein 25.0%、アルファコーンスターチ 51.5%、大豆油 6.0%、シュクロース 5.0%、AIN76ミネラル混合 3.5%、AIN76ビタミン混合 1.0%、セルロース 8.0%)の1%をNaCl、5%をCelluloseで置換したセルロース食を用いて制限給餌下に粉末飼料へ馴化させた。その後、動物の体重を測定し、馴化期間中の摂餌量および体重を指標に群分けした。即ち、セルロース食を摂取させたコントロール群、精製飼料セルロースの、1%をNaCl、5%を試験物質で置換させた飼料を摂取させた試験物質(SS1054, IK-40223, Type007)群を設けた。各群のラットは一夜絶食飼育させた後、各試験食で4日間制限給餌(20g/day)させた。試験食飼育の3日目には17時から48時間採糞を行った。尚、試験期間中、各群のラットには蒸留水を自由に摂取させた。採取した糞便は50℃の乾燥機内で5日間乾燥させた後、乾燥重量を求めた後、灰化(500℃、36時間以上)し、蒸留水にて懸濁し、遠心分離した後その上清のNaおよびK濃度をイオン電極法で測定しそれぞれの含量を求めた。Pについては濃硝酸による可溶化処理の後、酵素法により溶液中濃度を測定し含量を求めた。
セルロース群(n=4)の糞便電解質排泄量(mg/day、平均値±標準偏差)はそれぞれ1.0±0.4(Na)、0.9±0.3(K)、34.9±2.0(P)であり、SS-1054群(n=4)の糞便電解質排泄(mg/day)はそれぞれ29.6±8.5(Na)、17.3±3.1(K)、48.3±5.7(P)、IK-40233群(n=4)の糞便電解質排泄(mg/day)はそれぞれ18.2±5.2(Na)、10.5±2.2(K)、44.8±4.2(P)、Type007群(n=4)の糞便電解質排泄(mg/day)はそれぞれ30.6±2.7(Na)、10.2±1.9(K)、45.4±0.9(P)であり、試験物質群で各種電解質の糞便排泄の増加が認められた。これらの結果をグラフ化して、図1の(a)および図2〜図3に示す。
また、試験物質群の尿中電解質排泄は糞便排泄の増加に応じた低下がみられた。後記する<有用性に関する試験6>に用いたCaCS006についても同様の効果が認められた。
{硫酸化セルロース(Ca)の正常ラットの糞便への電解質排泄に及ぼす影響}
(硫酸化セルロースカルシウム塩の製造)
蒸留水(D.W.)1Lの入った5L容ビーカーに硫酸化セルロースナトリウム塩(米 Acros社製)50gを入れ攪拌し、完全に溶解させた。その後、塩化カルシウム・2水和物(片山化学社製)93gの水溶液300mLを投入し、30分間攪拌した。これに、イソプロピルアルコール1Lを加え、更に1時間攪拌後、1晩静置した。上清をデカンテーションにより除去し、さらに残渣を遠心分離して沈殿を得た。再度この沈殿をイソプロピルアルコール1Lに懸濁し、30分間攪拌後、1晩静置した。上清をデカンテーションにより除去し、さらに残渣を遠心分離して沈殿を得た。この沈殿を減圧乾燥して、硫酸化セルロースカルシウム塩44gを白色粉末として得た。
実験動物は9週齢のウィスター(Wistar)系雄性ラット(日本チャールスリバー(株))を用いた。動物は一夜絶食した後、個別代謝ゲージに移し、3日間セルロース食(カゼイン 20%(w/w以下同じ)、αコーンスターチ 59.5%、大豆油 5%、シュークロース 5%、AIN-76ビタミン混合 1%、AIN-76ミネラル混合 3.5%、食塩 1%及びセルロース 5%)を用いて制限給餌下(20g/ラット/日)に粉末飼料へ馴化させた。その後、動物の体重を測定し、訓化期間中の摂餌量及び体重を指標に群分け(n=5/群)した。即ち、セルロース食を摂取させたセルロース群、該セルロース食のセルロースを硫酸化セルロースカルシウム塩で40%置換した飼料又は全量置換した飼料を摂取させた、硫酸化セルロースカルシウム塩2%群及び硫酸化セルロースカルシウム塩5%群をそれぞれ設けた。
図1(b)に各群の糞便ナトリウム排泄を示した。図1(b)中では、硫酸化セルロースカルシウム塩を「Ca化硫酸セルロース」と記載した。
糞便ナトリウム排泄は、セルロース群の0.2±0.1mg/日に比し、硫酸化セルロースカルシウム塩2%群は10.4±2.2mg/日、硫酸化セルロースカルシウム塩5%群では29.9±7.5mg/日であり、硫酸化セルロースカルシウム塩摂取による用量依存的な糞便ナトリウム排泄の増加が確認された。
一方、尿中ナトリウム排泄は、セルロース群では、89.6±6.5mg/日の尿中ナトリウム排泄が見られたのに比し、硫酸化セルロースカルシウム塩2%群で65.3±4.5mg/日、硫酸化セルロースカルシウム塩5%群では40.3±3.4mg/日と、カルシウム化硫酸セルロース摂取による用量依存的な尿中ナトリウム排泄の低下が確認された。
〔方法〕
前記<有用性に関する試験1>と同様の方法により試験を実施した。精製飼料(950gあたりの原材料がCasein 200g、アルファコーンスターチ 595g、大豆油 50g、シュクロース 50g、AIN76ミネラル混合 35g、AIN76ビタミン混合 10g、NaCl 10g)を9の割合に対しME13-147を1の割合で混ぜた飼料を2日間経口摂取(20g/day)させ、試験食飼育の2日目に採糞した。
Cellulose群(0.8±0.1(Na)、0.5±0.1(K))に比して、ME13-147群(4.3±1.3(Na)、4.2±1.7(K))とそれぞれの電解質で糞便排泄の増加がみられた。
〔方法〕
前記<有用性に関する試験1>と同様の方法により試験を実施した。精製飼料(Casein 20%、アルファコーンスターチ 59.5%、大豆油 5%、シュクロース 5%、AIN76ミネラル混合 3.5%、AIN76ビタミン混合 1%、NaCl 1.0%、CelluloseまたはME13-141 5.0%)を4日間経口摂取(20g/day)させ、試験食飼育の3日目と4日目に採糞した。
Cellulose群(0.5±0.1(Na)、0.4±0.1(K))に比して、ME13-141群(23±6(Na)、6±2(K))とそれぞれの電解質で糞便排泄の増加がみられた。
〔方法〕
前記<有用性に関する試験1>と同様の方法により試験を実施した。精製飼料(Casein 20%、アルファコーンスターチ 59.5%、大豆油 5%、シュクロース 5%、AIN76ミネラル混合 3.5%、AIN76ビタミン混合 1%、NaCl 1.0%、CelluloseまたはKCS01-001 5.0%)を4日間経口摂取(20g/day)させ、試験食飼育の3日目と4日目に採糞した。
Cellulose群(0.3±0.0(Na)、0.6±0.1(K))に比して、KCS01-001群(47±7(Na)、34±5(K))はそれぞれの電解質で糞便排泄の増加がみられた。
{架橋型硫酸化セルロース(Ca)の正常ラットの消化管に及ぼす影響}
〔方法〕
動物は日本チャールスリバー(株)より購入した7-9週齢CBA系雄性マウスを用いて、体重を指標に群分けした。各群のマウスには市販の粉末飼料(オリエンタル酵母工(株)、粉末CRF1)の10%をセルロース(粉末、ナカライテスク(株))または試験物質(SS1054, IK-40223, Type007)でそれぞれ置換した試験食を1週間自由摂取させた。試験食摂取終了の後、それぞれのマウスより糞便を一つ以上採取し、スライドを用いた化学法による便潜血検査(便潜血スライドシオノギII、シオノギ製薬)を実施し、色調の変化の程度に応じて0(変化なし)〜5(濃)まで点数化した。
セルロース群は全例、便性状は正常であり、便潜血反応スコアは0.5±0.0(n=8、平均値±標準偏差)であった。SS-1054群は、8例中6例に肛門周囲に血液の付着が見られるほど消化管症状が悪化し、試験開始4日目以後、摂餌量の明らかな低下を認めるほど全身症状が重篤化した。IK-40223群は7日間の試験期間中に摂餌量の低下は見られず、便潜血反応スコアも1.5±0.8(8)であった。Type007群ではいずれのマウスの便も正常であり、便潜血反応スコアも0.5±0.3(10)であった。
{架橋型硫酸化セルロース(Ca)の正常ラットの消化管に及ぼす影響}
〔方法〕
動物は日本チャールスリバー(株)より購入した9週齢CBA系雄性マウスを用いて、体重を指標に群分けした。各群のマウスには市販の粉末飼料(オリエンタル酵母工(株)、粉末CRF1)の10%をセルロース(粉末、ナカライテスク(株))または試験物質(CaCS005, CaCS006, CaCS007)でそれぞれ置換した試験食を6日間自由摂取させた。試験食摂取終了の後、それぞれのマウスより糞便を一つ以上採取し、スライドを用いた化学法による便潜血検査(便潜血スライドシオノギII、シオノギ製薬)を実施し、色調の変化の程度に応じて0(変化なし)〜5(濃)まで点数化した。
セルロース群は全例、便性状は正常であり、試験終了時の便潜血反応スコアは0.3±0.3(n=5、平均値±標準偏差)であった。CaCS005群は試験開始二日目より便潜血反応(スコア1.8±0.5(n=4))がみられた。以降、CaCS005群の動物では摂餌量の低下が著明であり、粘血便がみられるほど重篤化する動物もみられ、全例で貧血により手足が白色化した。試験終了時における便潜血反応スコアは3.3±1.3(n=4)であった。CaCS006群およびCaCS007群の試験期間中における便性状はほぼ正常に推移し、試験終了時におけるスコアはCaCS006群で0.5±0.0(n=3,ただし試験開始5日目)、CaCS007群で0.2±0.3(n=3)と明らかに消化管への障害性は軽減されていた。貧血は見られなかった。
〔方法〕
前記<有用性に関する試験5>と同様の方法により試験物質(KCS01-001)を市販の粉末飼料(オリエンタル酵母工業(株)、粉末CRF1)に10%混ぜた飼料をマウスに一週間自由摂取させた。
セルロース群は全例、便性状は正常であり、便潜血反応スコアは0.5〜1(n=8)であった。KCS01-001群も便性状は正常であり便潜血反応スコアも0.5〜1(n=8)と便潜血検査は軽微な反応であった。
〔方法〕
前記<有用性に関する試験5>と同様の方法により試験物質(ME13-147, ME13-141)を市販の粉末飼料(オリエンタル酵母工業(株)、粉末CRF1)に10%混ぜた飼料をマウスに一週間自由摂取させた。
いずれの試験物質を摂取させた場合も血便はみられず、便潜血検査も軽微な反応であった。
Claims (21)
- 下記一般式(I):
R−O−A (I)
{式(I)中、Rは架橋セルロース残基を表し、Aは陽イオン交換能を有する官能基aを表す。}
で表される架橋セルロース誘導体の金属塩(但しナトリウム塩を除く)であって、
該架橋セルロース誘導体の架橋が、二層系で架橋剤とセルロースを架橋反応触媒水溶液中で激しく攪拌して架橋させる二層系架橋法により形成されたものであり、
該架橋剤が、エピクロロヒドリンであり、
該架橋反応触媒が、水酸化ナトリウムであり、
該架橋セルロース誘導体の架橋度が、0.01以上であり、
該架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1以上であり、
該官能基aが、下記式(II−1)、(III−1)および(III−4):
- 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.2以上であることを特徴とする請求項1記載のナトリウム吸収阻害剤。
- 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.4以上であることを特徴とする請求項1記載のナトリウム吸収阻害剤。
- 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.5以上であることを特徴とする請求項1記載のナトリウム吸収阻害剤。
- 前記架橋セルロース誘導体が結晶性セルロースを用いて製造されたことを特徴とする請求項1〜4のいずれかに記載のナトリウム吸収阻害剤。
- 請求項1〜5のいずれかに記載の架橋セルロース誘導体の金属塩(但しナトリウム塩を除く)を有効成分とすることを特徴とする食塩過剰摂取に起因する疾患又は食塩摂取制限を必要とする疾患の予防剤及び治療剤。
- 請求項1〜5のいずれかに記載の架橋セルロース誘導体の金属塩(但しナトリウム塩を除く)を含有することを特徴とする食品。
- 下記一般式(I):
R−O−A (I)
{式(I)中、Rは架橋セルロース残基を表し、Aは陽イオン交換能を有する官能基aを表す。}
で表される架橋セルロース誘導体の金属塩(但しカリウム塩を除く)であって、
該架橋セルロース誘導体の架橋が、二層系で架橋剤とセルロースを架橋反応触媒水溶液中で激しく攪拌して架橋させる二層系架橋法により形成されたものであり、
該架橋剤が、エピクロロヒドリンであり、
該架橋反応触媒が、水酸化ナトリウムであり、
該架橋セルロース誘導体の架橋度が、0.01以上であり、
該架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1以上であり、
該官能基aが、下記式(II−1)、(III−1)および(III−4):
- 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.2以上であることを特徴とする請求項8記載のカリウム吸収阻害剤。
- 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.4以上であることを特徴とする請求項8記載のカリウム吸収阻害剤。
- 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.5以上であることを特徴とする請求項8記載のカリウム吸収阻害剤。
- 前記架橋セルロース誘導体が結晶性セルロースを用いて製造されたことを特徴とする請求項8〜11のいずれかに記載のカリウム吸収阻害剤。
- 請求項8〜12のいずれかに記載の架橋セルロース誘導体の金属塩(但しカリウム塩を除く)を有効成分とすることを特徴とするカリウム過剰摂取に起因する疾患又はカリウム摂取制限を必要とする疾患の予防剤及び治療剤。
- 請求項8〜12のいずれかに記載の架橋セルロース誘導体の金属塩(但しカリウム塩を除く)を含有することを特徴とする食品。
- 下記一般式(I):
R−O−A (I)
{式(I)中、Rは架橋セルロース残基を表し、Aは陽イオン交換能を有する官能基aを表す。}
で表される架橋セルロース誘導体の金属塩であって、
該架橋セルロース誘導体の架橋が、二層系で架橋剤とセルロースを架橋反応触媒水溶液中で激しく攪拌して架橋させる二層系架橋法により形成されたものであり、
該架橋剤が、エピクロロヒドリンであり、
該架橋反応触媒が、水酸化ナトリウムであり、
該架橋セルロース誘導体の架橋度が、0.01以上であり、
該架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1以上であり、
該官能基aが、下記式(II−1)、(III−1)および(III−4):
- 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.2以上であることを特徴とする請求項15記載のリン吸収阻害剤。
- 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.4以上であることを特徴とする請求項15記載のリン吸収阻害剤。
- 前記架橋セルロース誘導体のグルコース単位の水酸基の官能基aによる置換度が、1.5以上であることを特徴とする請求項15記載のリン吸収阻害剤。
- 前記架橋セルロース誘導体が結晶性セルロースを用いて製造されたことを特徴とする請求項15〜18のいずれかに記載のリン吸収阻害剤。
- 請求項15〜19のいずれかに記載の架橋セルロース誘導体の金属塩を有効成分とすることを特徴とするリン過剰摂取に起因する疾患又はリン摂取制限を必要とする疾患の予防剤及び治療剤。
- 請求項15〜19のいずれかに記載の架橋セルロース誘導体の金属塩を含有することを特徴とする食品。
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