JP5190926B2 - ツバキ由来のアントシアニン色素、その製造方法及び用途、並びにツバキの品種識別方法 - Google Patents

Description

本発明は、アントシアニン色素、その製造方法及び用途、並びにツバキの品種識別方法に関する。

ツバキは、観賞用花木として世界的に親しまれているのみならず、種子を椿油の原料として用い、また、花は開花直前に採集して日干ししたものを、腸出血の救急薬や、滋養・強壮のため煎じて服用され、常用すれば美容上にも好ましいなど、民間薬として用いられている（非特許文献１）。

紅色ツバキにはその花色を発現する色素として、アントシアニン色素が含まれていることが報告されている。１９５３年に林らは紅色ツバキより初めてアントシアニン色素を単離し、その化学構造をｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）であることを明らかにした（非特許文献２）。また、斉藤らはカンツバキ、ヤブツバキ、山茶花の紅花からｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（８）を単離し（非特許文献３）、寺原らは、紅花茶の葉からｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１５）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅを単離した報告がある（非特許文献４）。

本発明者の一人である坂田は、１９８８年その学位論文の中で薄層クロマトグラフによりツバキ花弁中に１５種類のアントシアニン色素が存在することを明らかにしている（非特許文献５）。また、著書の中では、紅色ツバキの花弁には、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｓｏｐｈｏｒｏｓｉｄｅ、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３、５−ｄｉ−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅが存在するとの記載がある（非特許文献６）。更に、ヤブツバキ系の品種では、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅの花弁中の含量が増せばより赤色になることや、トウツバキ系品種では、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｓｏｐｈｏｒｏｓｉｄｅの花弁中の含量が増せばより赤色に変化することの記載がある。

従来において、ツバキの花や植物体には以下のような活性又は利用方法があることが開示されている。

特許文献１には、ツバキ科ツバキ属植物、特に、ツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ ｊａｐｏｎｉｃａ）、サザンカ（Ｃａｍｅｌｌｉａ ｓａｓａｎｑｕａ）の抽出物がヒアルロニダーゼの活性阻害剤作用を有することが開示されている。

特許文献２には、ツバキ科植物の根と茎を除く、該植物由来の、水及び有機溶媒にともに溶解性を示す抽出物がセラミド産生を促進することが開示されている。

特許文献３には、ツバキの花から抽出されたフラボノイド成分を経口又は静注することによって、心臓病又は脳血管症の治療を可能とすることが開示されている。

特許文献４には、ツバキの花など１０種類の漢薬を配合した外用製剤が神経痛、頭痛などに有効であることが開示されている。

特許文献５には、山茶花の抽出物などが美白効果と皮膚のメラニン色素合成を抑制することが開示されている。

特許文献６には、クエン酸やリンゴ酸を添加することによって、ツバキの花から効率よく色素を抽出する方法が開示されている。

特許文献７には、ツバキの花をローストすることによって、カカオ豆と同じ香り、色、味を出すことのできる粉末を製造する方法が開示されている。

特許文献８には、ツバキの花を漬物として保存する製造方法が開示されている。
特許文献９には、ツバキの花を発酵させることによってツバキ茶を製造する方法が開示されている。

特開２００３−０１２４８９号公報 特開２００４−１８９６８３号公報 ＣＮ１７７５２４９号公報 ＣＮ１２７９０９１号公報 特開２０００−３０２６３４号公報 特開昭５５−１２３６５５号公報 特開昭５５−１１１７５８号公報 特開昭５５−１１１７５１号公報 特開昭５５−０９９１８０号公報 主婦の友社、主婦の友生活シリーズ、「身近にあり、効きめの確かな「薬草カラー図鑑」」、１９８５年、ｐ．２９−３０ Ｈａｙａｓｈｉ、Ｋ．とＡｂｅ、Ｙ．「Ｓｔｕｄｉｅｎ ｕｂｅｒ Ａｎｔｈｏｃｙａｎｅ、ＸＸＩＩＩ」、資源科学研究所彙報（Ｍｉｓｃ．Ｒｅｐ．Ｒｅｓ．Ｉｎｓｔ．Ｎａｔｕｒ．Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ）、１９５３年、第２９巻、ｐ．１−８ Ｓａｉｔｏ、Ｎ．、Ｙｏｋｏｉ、Ｍ．、Ｙａｍａｊｉ、Ｍ． ａｎｄ Ｈｏｎｄａ、Ｔ．「Ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌｇｌｕｃｏｓｉｄｅ ｉｎ Ｃａｍｅｌｌｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ」、Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、１９８７年、第２６巻（１０号）、ｐ．２７６１−２７６２ Ｔｅｒａｈａｒａ、Ｎ．、Ｔａｋｅｄａ、Ｙ．、Ｎｅｓｕｍｉ、Ａ． ａｎｄ Ｈｏｎｄａ、Ｔ．「Ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｓ ｆｒｏｍ ｒｅｄ ｆｌｏｗｅｒ ｔｅａ （Ｂｅｎｉｂａｎａ−ｃｈａ）、Ｃａｍｅｌｌｉａ ｓｉｎｅｎｓｉｓ」、Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、２００１年、第５６巻、ｐ．３５９−３６１ 坂田祐介、学位論文「ツバキ属植物の花色素に関する研究」、１９８８年、ｐ．１０−１２ 坂田祐介、植物色素研究会編、大阪公立大学共同出版会、植物色素研究法「ツバキの花色素と花色育種」、２００４年、ｐ．１９１−２０６

前述したように、従来ではツバキの花又は花弁の抽出物の生物学的活性が明らかにされ、また、その利用方法が発明されたものの、ツバキの花又は花弁の抽出物に含まれる、赤色を発現するアントシアニン色素については不明な点が多く、それらの詳細な分離法、色素の詳細な化学構造、色素の品種間での分布の違いについては知られていなかった。これらの分離法が確立できれば、ツバキの花又は花弁の抽出物を更に有効に使用できるものと考えられる。

そこで、本発明は、ツバキの花又は花弁の抽出物から、赤色を発現するアントシアニン色素を分離する方法、また、分離された色素の化学構造を知ることによって、ツバキ品種間での色素分布の違いを知る方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、前記課題を解決するため鋭意研究を行った結果、ツバキ花弁の抽出物から２５種類のアントシアニン色素、特に、８種類の新規アントシアニン色素を得ることに成功し、更に、得られたアントシアニンを標品として、高速液体クロマトグラフィー分析を行うことによって、各色素組成を元にツバキを種類分けすることが可能となり、ツバキ花弁由来のアントシアニンエキスを利用するために、明確に種類分けできることを見出し、本発明を完成するに至った。

本発明の要旨は以下のとおりである。
（１）次式（Ｉ）

（式中、Ｒはアセチル基を表す。）
で示される化合物。

（２）次式（II）

（式中、Ｒは（Ｚ）−ｐ−クマロイル基、（Ｅ）−ｐ−クマロイル基、（Ｅ）−カフェオイル基又はアセチル基を表す。）
で示される化合物。

（３）次式（III）

（式中、Ｒは（Ｚ）−ｐ−クマロイル基、（Ｅ）−ｐ−クマロイル基又は（Ｅ）−カフェオイル基を表す。）
で示される化合物。

（４）ツバキの花又は花弁の抽出物から前記（１）〜（３）のいずれかに記載の化合物を単離及び精製することを特徴とするアントシアニン色素の製造方法。

（５）前記ツバキがトウツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ ｒｅｔｉｃｕｌａｔａ Ｌｉｎｄｌ．）であり、アントシアニン色素がｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（４）又はｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）である前記（４）に記載の製造方法。

（６）前記ツバキがホンコンツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ Ｓｅｅｍ．）であり、アントシアニン色素がｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１８）又はｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２０）である前記（４）に記載の製造方法。

（７）前記ツバキがサルウィンツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ ｓａｌｕｅｎｅｎｓｉｓ Ｓｔａｐｆ ｅｘ Ｂｅａｎ）であり、アントシアニン色素がｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）又はｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）−５−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２４）である前記（４）に記載の製造方法。

（８）前記ツバキが園芸品種のツバキ：大理茶（Ｄａｌｉｃｈａ）であり、アントシアニン色素がｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（５）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１３）又はｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１４）である前記（４）に記載の製造方法。

（９）前記単離及び精製手段がカラムクロマトグラフィーである前記（４）〜（８）のいずれかに記載の製造方法。
（１０）抽出溶媒が酢酸−メタノール混合溶媒である前記（４）〜（９）のいずれかに記載の製造方法。

（１１）ツバキの花又は花弁の抽出物中に含まれるアントシアニン色素の組成を分析することを特徴とするツバキの品種識別方法。
（１２）高速液体クロマトグラフィー法によりアントシアニン色素の組成を分析する前記（１１）に記載のツバキの品種識別方法。

（１３）高速液体クロマトグラフィー法を、リン酸水溶液と、リン酸−ギ酸−アセトニトリル−テトラヒドロフラン−水混合溶媒とを用いてリニアーグラジエント溶出させることにより行う前記（１２）に記載のツバキの品種識別方法。
（１４）ツバキの花又は花弁の抽出物又はその精製物を含有する抗酸化剤。

（１５）ツバキの花又は花弁の抽出物の精製物が単離・精製されたアントシアニン色素である前記（１４）に記載の抗酸化剤。
（１６）ツバキの花又は花弁の抽出物又はその精製物を含有する抗癌剤。
（１７）ツバキの花又は花弁の抽出物の精製物が単離・精製されたアントシアニン色素である前記（１６）に記載の抗癌剤。

本発明によれば、ツバキ抽出物からアントシアニン色素を得ることができ、また、得られたアントシアニン色素を標品として、高速液体クロマトグラフィー分析を行うことによって、各色素組成を元にツバキ属を種類分けすることが可能となり、ツバキ花弁由来のアントシアニンエキスを利用するために、明確に種類分けできる。

以下、本発明を詳細に説明する。
本発明に係るツバキの花又は花弁の抽出物（以下「ツバキ色素抽出物」という。）は、ツバキ、好ましくは紅花ツバキの花弁又は花を溶媒抽出に供することで得ることができる。例えば、ツバキの花弁を、酢酸と低級アルコール（例えばメタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、ブタノール、イソブタノール、好ましくはメタノール）の１〜１．５対１、好ましくは１対１（容量比）で混合した溶媒を用いた抽出に供し、これを１回又は数回（例えば３回）繰り返すことでツバキ色素抽出物を得ることができる。

通常、ツバキの花弁１ｋｇ当り抽出溶媒３〜４Ｌを使用する。抽出温度は、通常、溶媒の融点ないし溶媒の沸点の範囲内であり、好ましくは１５〜３０℃、更に好ましくは２０〜２５℃である。また、抽出は、通常常圧下で行うが、加圧下又は減圧下で行ってもよい。抽出時間は、抽出温度等により異なり、通常室温で１日〜２日間である。なお、本発明においては、ツバキ色素抽出物とは、前記抽出方法で得られた抽出液もしくは各種溶媒抽出液、その希釈液、その濃縮液又はその乾燥粉末を意味する。

また、本発明においては、前述したツバキ色素抽出物を濾過、遠心分離又は精製処理等の精製手段に供することで、当該抽出物から夾雑物を除去した精製物を用いることができる。精製手段としては、例えば、カラムクロマトグラフィー、順相又は逆相クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー及びゲル濾過が挙げられるが、カラムクロマトグラフィーが特に好ましい。

例えば、ツバキ色素の酢酸と低級アルコール抽出溶液を減圧蒸留装置でアルコールを蒸留除去後、濃縮された溶液を直接、逆相用のゲル（例えば、ＭＣＩ ｇｅｌ ＣＨＰ−２０Ｐ（三菱化学）など）のオープンカラムクロマトグラフィーに付す。移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸のメタノール溶液を用い、Ａ液とＢ液との比率を１００：０から順次Ｂ液の含量を増加させ、例えば、７０：３０、３０：７０、０：１００と変えて、クロマトグラフィーを行う。最後にＣ液として５％酢酸を含むアセトンを用い、Ａ液とＣ液との比率を５０：５０にしてクロマトグラフィーを行う。Ａ液とＢ液との比率が２０：８０で溶出する粗製分画物、並びにＡ液とＢ液との比率が４０：６０で溶出する粗製分画物並びにＡ液とＢ液との比率が７０：３０で溶出する粗製分画物には、本発明のアントシアニン色素が含有される。従って、これら粗製分画物は、ツバキ色素の粗精製物として好適に使用することができる。

また、得られた前記ツバキ色素の粗精製物を更に逆相用のゲル（例えば、Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）など）のオープンカラムクロマトグラフィーに付す。移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸のメタノール溶液を用い、Ａ液とＢ液との比率を１００：０から順次Ｂ液の含量を増加させ、例えば、７０：３０、３０：７０、０：１００と変えて、クロマトグラフィーを行う。最後にＣ液として５％酢酸を含むアセトンを用い、Ａ液とＣ液との比率を５０：５０にしてクロマトグラフィーを行う。Ａ液とＢ液との比率が１００：０で溶出する粗製分画物並びにＡ液とＢ液との比率が５０：５０で溶出する粗製分画物には、本発明であるアントシアニン色素が含有される。従って、これら粗製分画物は、ツバキ色素の粗精製物として好適に使用することができる。

更にまた、得られた前記ツバキ色素の粗精製物を逆相用のゲル（例えば、Ｃｈｒｏｍａｔｏｒｅｘ ＯＤＳ（Ｆｕｊｉ Ｓｉｌｙｓｉａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ ＬＴＤ）など）のオープンカラムクロマトグラフィーに付す。移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸のメタノール溶液を用い、Ａ液とＢ液との比率を１００：０から順次Ｂ液の含量を増加させ、例えば、１００:０、９０:１０、８０:２０、７０：３０、６０:４０、５０:５０、４０:６０、３０：７０、０：１００と変えて、クロマトグラフィーを行う。最後にＣ液として５％酢酸を含むアセトンを用い、Ａ液とＣ液との比率を５０：５０にしてクロマトグラフィーを行う。この操作を繰り返し行うことによって、本発明であるアントシアニン色素を単離することができる。

また、単離されたアントシアニン色素の純度を上げるために、例えば、Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）など）のオープンカラムクロマトグラフィーに付す。移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｃ液として５％酢酸を含むアセトンを用い、Ａ液とＣ液との比率を０：１００から順次Ａ液の濃度を２％ずつ上げて、２５：７５までクロマトグラフィーを行う。この操作を行うことによって、本発明のアントシアニン色素の純度を上げることができる。

前記単離されたアントシアニン色素及びツバキ色素の粗精製物に含まれるアントシアニン色素を簡単に分析する方法を以下に例示する。

例えば、高速液体クロマトグラフィー法（ＨＰＬＣ；Ｈｉｇｈ Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ Ｌｉｑｕｉｄ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）を用いることでアントシアニン色素を確認できる。ＨＰＬＣの溶出溶媒としては、Ａ液としてリン酸水溶液と、Ｂ液としてリン酸−ギ酸−アセトニトリル−テトラヒドロフラン−水混合溶媒を用い、リニアーグラジエント溶出（例えば、流速を１分間に０．８ｍｌ、カラムの温度を４０℃に保ち、検出波長を５２５ｎｍに設定し、Ａ液とＢ液との比率を８２：１８から３０：７０の比率で３５分かけて溶出）させることで、本発明のアントシアニン類をよく検出することができる。

また、例えば、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ；Ｔｈｉｎ Ｌａｙｅｒ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）を用いることでアントシアニン色素を容易に確認できる。ＴＬＣの展開溶媒としては、例えば、Ａ液としてベンゼン−ギ酸エチル−ギ酸の１：７：１の比率で混合した溶液と、Ｂ液としてギ酸エチル−ギ酸−水の３：１：１の比率で混合した溶液を用い、Ａ液とＢ液との比率を４：１から１：１程度の比率で混合し、ＴＬＣを展開すると、本発明のアントシアニン類はよく検出することができる。

以上のように説明したツバキ色素抽出物又は精製物、又は、これらより単離されたアントシアニン色素を分析できる。この結果、２５種類のアントシアニン色素を検出することができる。これらのアントシアニン色素は、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（５）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（８）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（９）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１０）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１５）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１８）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１９）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２０）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２１）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３，５−ｄｉ−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）−５−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）−５−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２５）である。

前記のアントシアニン色素のうち、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（５）（前記式（Ｉ）においてＲがアセチル基である化合物）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１１）（前記式（II）においてＲが（Ｚ）−ｐ−クマロイル基である化合物）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１２）（前記式（II）においてＲが（Ｅ）−ｐ−クマロイル基である化合物、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１３）（前記式（II）においてＲが（Ｅ）−カフェオイル基である化合物）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１４）（前記式（II）においてＲがアセチル基である化合物）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１６）（前記式（III）においてＲが（Ｚ）−ｐ−クマロイル基である化合物）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１７）（前記式（III）においてＲが（Ｅ）−ｐ−クマロイル基である化合物）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１８）（前記式（III）においてＲが（Ｅ）−カフェオイル基である化合物）は新規化合物である。

なお、本明細書において、アントシアニン色素の化合物名の末尾に付した番号は、後述する実施例及び図面に記載の化合物に付した番号に対応する。

前記ツバキとして、トウツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ ｒｅｔｉｃｕｌａｔａ Ｌｉｎｄｌ．）を使用すれば、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（８）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（９）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１０）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１５）、のアントシアニン色素を分析及び製造できる。

前記ツバキとして、ホンコンツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ Ｓｅｅｍ.）を使用すれば、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（８）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（９）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１５）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１８）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１９）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２０）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２１）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２２）、のアントシアニン色素を分析及び製造できる。これらのうち、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１８）は新規化合物である。

前記ツバキとして、サルウィンツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ ｓａｌｕｅｎｅｎｓｉｓ Ｓｔａｐｆ ｅｘ Ｂｅａｎ）を使用すれば、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（８）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３，５−ｄｉ−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）−５−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）−５−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２５）、のアントシアニン色素を分析及び製造できる。

前記ツバキとして、園芸品種のツバキ：大理茶（Ｄａｌｉｃｈａ）を使用すれば、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（５）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１０）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１４）、のアントシアニン色素を分析及び製造できる。これらのうち、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（５）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１３）又はｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１４）は新規化合物である。

以上のように説明したツバキ色素抽出物又は精製物、又は、これらより単離されたアントシアニン色素を有効成分として用いることで、飲食品、医薬品、化粧品などを製造するために利用することができる。ツバキ色素抽出物又は精製物は、例えば、抗酸化剤、抗癌剤の有効成分として用いることができる。

本発明のツバキ色素抽出物又は精製物、又は、これらより単離されたアントシアニン色素の有効量を、錠剤、カプセル、顆粒、ドリンク、ペットボトルなどの任意の形態に添加又は封入するか、あるいは任意の飲食品に添加することも可能である。

飲食品には、例えば、菓子類、レトルト食品、ジュース類、お茶類、乳製品などが含まれるが、これらに限定されない。また、飲食品には、必要に応じて甘味剤、調味料、乳化剤、懸濁化剤、防腐剤などを添加してもよいし、あるいはビタミン類、栄養剤、免疫増強剤（例えば、プロポリスやきのこ抽出物など）などを添加してもよい。

本発明に使用できるツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ属）野生種として、限定されるものではないが、好ましくは紅花ツバキ、例えば、セッコウベニバナユチャ（浙江紅花油茶、Ｃ．ｃｈｅｋｉａｎｇｏｌｅｏｓａ）、カンツバキ（Ｃ．ｈｉｅｍａｌｉｓ）、ホンコンツバキ（香港紅山茶、Ｃ．ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ）、ヤブツバキ（紅山茶、Ｃ．ｊａｐｏｎｉｃａ）、テマリツバキ（桜花短柱茶、Ｃ．ｍａｌｉｆｌｏｒａ）、ピタールツバキ（西南山茶、Ｃ．ｐｉｔａｒｄｉｉ）、ピタールツバキピタール種（西南山茶西南種、Ｃ．ｐｉｔａｒｄｉｉ ｖａｒ． ｐｉｔａｒｄｉｉ）、ピタールツバキ雲南種（西南山茶雲南種、Ｃ．ｐｉｔａｒｄｉｉ ｖａｒ． ｙｕｎｎａｎｉｃａ）、マイレイツバキ（Ｃ．ｍａｉｒｅｉ）、ポリオドンタ（宛田紅花油茶、Ｃ．ｐｏｌｙｏｄｏｎｔａ）、トウツバキ（てん山茶、Ｃ．ｒｅｔｉｃｕｌａｔａ）、ロシフロラ（玖瑰連芯茶、Ｃ．ｒｏｓｉｆｌｏｒａ），ユキルバキ（雪椿、Ｃ．ｒｕｓｔｉｃａｎａ）、サルウィンツバキ（怒江山茶、Ｃ．ｓａｌｕｅｎｅｎｓｉｓ）、サザンカ（山茶花、Ｃ．ｓａｓａｎｑｕａ）、セミセラータ（南山茶、Ｃ．ｓｅｍｉｓｅｒｒａｔａ）、ワビスケ（侘助、Ｃ．ｗａｂｉｓｕｋｅ）が挙げられる。

本発明に使用できるツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ属）園芸品種として、限定されるものではないが、例えば、艶姿（えにし）、乙女（おとめ）、勘次郎（かんじろう）、皇玉（こうぎょく）、獅子頭（ししがしら）、昭和の栄（しょうわのさかえ）、緋乙女（ひおとめ）、日の出富士（ひのでふじ）、朝日鶴（あさひづる）、大空（おおぞら）、大錦（おおにしき）、桜月夜（さくらづくよ）、七福神（しちふくじん）、東雲（しののめ）、酒中花（しゅちゅうか）、大朱盃（たいしゅはい）、宝合（たからあわせ）、昼夜錦（ちゅうやにしき）、丁子車（ちょうじぐるま）、鳴海潟（なるみがた）、二重弁天（にじゅうべんてん）、肥後入日の海（ひごいりひのうみ）、三国紅（みくにこう）、和合神（わごうじん）、旭（あさひ）、梅ケ香（うめがか）、笑顔（えがお）、凱旋（がいせん）、鎌倉絞（かまくらしぼり）、古金襴（こきんらん）、佐保姫（さほひめ）、三段花（さんだんか）、蜀紅錦（しょっこうにしき）、飛竜（ひりゅう）、曙（あけぼの）、岩根絞（いわねしぼり）、有楽（うらく）、蝦夷錦（えぞにしき）、王冠（おうかん）、大阿蘇（おおあそ）、沖の浪（おきのなみ）、長楽（おさらく）、春日野（かすがの）、玉之浦（たまのうら）、太郎庵（たろうあん）、釣篝（つりかがり）、鶏の子（とりのこ）、白班孔雀（はくはんくじゃく）、羽衣（はごろも）、春の台（はるのうてな）、光源氏（ひかるげんじ）、アドルフ・オーデュソン（Ａｄｏｌｐｈ Ａｕｄｕｓｓｏｎ）、ベティー・シェフィールド・シュープリーム（Ｂｅｔｔｙ Ｓｈｅｆｆｉｅｌｄ Ｓｕｐｒｅｍｅ）、カーターズ・サンバースト（Ｃａｒｔｅｒ’ｓ Ｓｕｎｂｕｒｓｔ）、Ｃ．Ｍ．ハヴィー（Ｃ．Ｍ．Ｈｏｖｅｙ）、コンテッサ・ラヴィニア・マギ（Ｃｏｎｔｅｓｓａ Ｌａｖｉｎｉａ Ｍａｇｇｉ）、ドーンズ・アーリー・ライト（Ｄａｗｎ’ｓ Ｅａｒｌｙ Ｌｉｇｈｔ）、ドゥビュタント（Ｄｅｂｕｔａｎｔｅ）、ギリョ・ヌッチオ（Ｇｕｉｌｉｏ Ｎｕｃｃｉｏ）、クレイマーズ・シュープリーム（Ｋｒａｍｅｒ’ｓ Ｓｕｐｒｅｍｅ）、マーガレット・デイヴィス・ピコティー（Ｍａｒｇａｒｅｔ Ｄａｖｉｓ Ｐｉｃｏｔｅｅ）、マトティアナ（Ｍａｔｈｏｔｉａｎａ）、ミセス・Ｄ．Ｗ．デイヴィス（Ｍｒｓ．Ｄ．Ｗ．Ｄａｖｉｓ）、ミセス・Ｄ．Ｗ．デイヴィス・デスカンソ（Ｍｒｓ．Ｄ．Ｗ．Ｄａｖｉｓ Ｄｅｓｃａｎｓｏ）、アーチ・オブ・トライアンフ（Ａｒｃｈ ｏｆ Ｔｒｉｕｍｐｈ）、仏陀（Ｂｕｄｄｈａ）、唐椿（Ｃａｐｔａｉｎ Ｒｏｗｅｓ）、張家茶（Ｃｈａｎｇ’ｓ Ｃａｍｅｌｌｉａ）、チャイナ・レディー（Ｃｈｉｎａ Ｌａｄｙ）、大瑪瑙（Ｃｏｒｎｅｌｉａｎ）、菊弁（Ｃｈｒｙｓａｎｔｈｅｍｕｍ Ｐｅｔａｌ）、大桃紅（Ｇｒｅａｔ Ｐｅａｃｈ Ｂｌｏｏｍ）、ハワード・アスパー（Ｈａｗａｒｄ Ａｓｐｅｒ）、ラスカ・ビューティー（Ｌａｓｃａ Ｂｅａｕｔｙ）、ロワ・シノー（Ｌｏｉｓ Ｓｈｉｎａｕｌｔ）、シャルレアン（Ｃｈａｒｌｅａｎ）、ドネイション（Ｄｏｎａｔｉｏｎ）、ドリーム・ボート（Ｄｒｅａｍ Ｂｏａｔ）、Ｅ．Ｇ．ウォーターハウス（Ｅ．Ｇ．Ｗａｔｅｒｈｏｕｓｅ）、エルジー・ジュアリー（Ｅｌｓｉｅ Ｊｕｒｙ）、Ｊ．Ｃ．ウィリアムズ（Ｊ．Ｃ．Ｗｉｌｌｉａｍｓ）、ジュリア・ハミター（Ｊｕｌｉａ Ｈａｍｉｔｅｒ）、ベイビー・ベアー（Ｂａｂｙ Ｂｅａｒ）、センティッド・ジェム（Ｓｃｅｎｔｅｄ Ｇｅｍ）、スニパト（Ｓｎｉｐｐｅｔ）、タイニー・プリンセス（Ｔｉｎｙ Ｐｒｉｎｃｅｓｓ）、ウァーリンガ・プリンセス（Ｗｉｒｌｉｎｇａ Ｐｒｉｎｃｅｓｓ）が挙げられる。

なお、これらのツバキのアントシアニン色素を分析し、新規色素として、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（５）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１８）を単離及び精製することも、本発明に含まれる。

以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの実施例に限定されないものとする。

〔実施例１〕トウツバキ（Ｃ．ｒｅｔｉｃｕｌａｔａ Ｌｉｎｄｌ．）の分析
（１）花弁から色素の抽出と単離、精製の方法
トウツバキから花弁を採集した。採集した花弁は、褐変を防ぐため熱湯に３〜５秒間浸漬し、ポリフェノールオキシダーゼなどの酵素を死活させた。浸漬後、花弁を室温で乾燥させた。乾燥花弁２ｋｇに、酢酸とメタノールを１対１で混合した溶液（５０％酢酸−メタノール）１２Ｌを加え、２０〜２５℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出液を綿栓でろ過した後、溶媒を減圧下、ロータリーエバポレーターで留去した。抽出残渣を５％酢酸水溶液に溶解し、オープンカラムクロマトグラフィーに付した。オープンカラムクロマトグラフィーの条件は、固定相にエムシーアイゲルＣＨＰ−２０Ｐ（ＭＣＩ ｇｅｌ ＣＨＰ−２０Ｐ、三菱化学株式会社、Ｍｉｔｓｕｂｉｓｈｉ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）、セファデックスＬＨ−２０（Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）、クロマトレックスＯＤＳ（Ｃｈｒｏｍａｔｏｒｅｘ ＯＤＳ、富士シリシア化学株式会社、Ｆｕｊｉ Ｓｉｌｙｓｉａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ ＬＴＤ．）を用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸−メタノールを用い、Ａ液からＢ液の含量を１０％ずつ増やすことによって、ＭＣＩgelのカラム（以下ＭＣＩカラム）−Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０カラム−ＯＤＳカラムの順番で各種クロマトグラフィーを行った。また、固定相にセファデックスＬＨ−２０（Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）を用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｃ液として５％酢酸−アセトン（アセトンに酢酸を５％量加えたもの）を用い、Ｃ液からＡ液の含量を２％ずつ増やすことによってクロマトグラフィーを行った。最後に、Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０カラムとＯＤＳカラムを用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸−メタノールを用い、Ａ液からＢ液の含量を５％ずつ増やすことを繰り返した。

これらのオープンカラムクロマトグラフィーを繰り返し行うことによって、アントシアニン色素として、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（８）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（９）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１０）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１５）を単離及び精製した（図１）。

（２）色素の各種スペクトルデータ
単離・精製したアントシアニン色素のプロトン核磁気共鳴スペクトル（^１Ｈ-Ｎｕｃｌｅａｒ ｍａｇｎｅｔｉｃ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ［ＮＭＲ］ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定装置は、ＪＮＭ-ＥＣＡ６００型核磁気共鳴装置（ＪＥＯＬ ＪＮＭ-ＥＣＡ６００ＫＳ、日本電子データム株式会社、ＪＥＯＬ ＤＡＴＵＭ ＬＴＤ．）を用いた。測定は、ＣＤ_３ＯＤとＣＦ_３ＣＯＯＤの９対１混合溶液を用いて行った。その結果を表１及び表２に示す。表中の数値はデルタ（δ、ｐｐｍ）で示す。また、二番目に表された数値は、カップリング定数（Ｊ値）を示している。表中の記号で、ｂｒは、ｂｒｏａｄ、ｓはｓｉｎｇｌｅｔ、ｄはｄｏｕｂｌｅｔ、ｄｄはｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅｔ、ｄｄｄはｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅｔ、ｔはｔｒｉｐｌｅｔ、ｍはｍｕｌｔｉｐｌｅｔを示す。

単離・精製したアントシアニン色素の炭素１３核磁気共鳴スペクトル（^１３Ｃ-Ｎｕｃｌｅａｒ ｍａｇｎｅｔｉｃ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ［ＮＭＲ］ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定装置は、ＪＮＭ-ＥＣＡ６００型核磁気共鳴装置（ＪＥＯＬ ＪＮＭ-ＥＣＡ６００ＫＳ、日本電子データム株式会社、ＪＥＯＬ ＤＡＴＵＭ ＬＴＤ．）を用いた。測定は、ＣＤ_３ＯＤとＣＦ_３ＣＯＯＤの９対１混合溶液を用いて行った。その結果を表３に示す。表中の数値はデルタ（δ、ｐｐｍ）で示す。また表中、Ｃ（Ｚ）はパラクマル酸のＺ型、Ｃ（Ｅ）はパラクマル酸のＥ型、Ｃａｆ（Ｅ）はカフェー酸のシグナルであることを示す。

図１で示した（１）〜（４）、（６）〜（１０）及び（１５）のアントシアニン色素の紫外部吸収スペクトル（Ｕｌｔｒａ Ｖｉｏｌｅｔ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定には、島津製作所株式会社の分光機器（ＵＶ−ｖｉｓｉｂｌｅ ｒｅｃｏｒｄｉｎｇ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ、ＵＶ−２１００）を用いた。その結果は次の通りである。測定溶媒はメタノールである。ｓｈはｓｈｏｕｌｄｅｒを示す。
色素（１）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８２ （４．３１）， ３７９ （３．１０）， ５３８ （３．４７）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８２ （４．３７）， ３３２ （３．６８）， ５３０ （４．５９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４０）， ３１２ （４．００）， ４１１ （３．８１）， ５６４ （４．６２）。
色素（２）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．５１）， ３１１ｓｈ （４．４０）， ５５３ （３．１８）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８４ （４．５３）， ３１４ （４．４０）， ５３０ （４．５４）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４６）， ３１３ （４．４９）， ５７０ （４．６１）。
色素（３）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．５８）， ３１１ｓｈ （４．４８）， ５５３ （３．２５）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８４ （４．６０）， ３１４ （４．４８）， ５３０ （４．６１）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．５３）， ３１３ （４．５６）， ５７０ （４．６９）。
色素（４）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．６１）， ３３１ （４．４６）， ５３２ （４．５３）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８４ （４．６５）， ３３０ （４．５０）， ５３０ （４．６９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４８）， ３１４ （４．４７）， ３４９ （４．４９）， ５７１ （４．７５）。
色素（６）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．０４）， ３１１ｓｈ（４．１７）， ５３８ （３．５５）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８３ （４．０８）， ３３２ （３．６４）， ５３０ （４．１９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８８ （３．９９）， ３１３ （３．９４）， ５７１ （４．２８）。
色素（７）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．３０）， ３０８ｓｈ （４．１９）， ５３１ （３．８９）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．３３）， ３１１ （４．１７）， ３７５ｓｈ （３．５８）， ５３０ （４．３５）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．２６）， ３１１ （４．２７）， ４１１ （３．７０）， ５７３ （４．４４）。
色素（８）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．４９）， ３１１ｓｈ （４．３９）， ５５３ （３．１７）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．５１）， ３１４ （４．３９）， ５３０ （４．５２）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４５）， ３１３ （４．４７）， ５７０ （４．６０）。
色素（９）：赤色無晶形粉末、 ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．６１）， ３３１ （４．４６）， ５３２ （４．５３）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．６５）， ３３０ （４．５０）， ５３０ （４．６９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４８）， ３１４ （４．４７）， ３４９ （４．４９）， ５７１ （４．７５）。
色素（１０）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８２ （４．１２）， ３３３ （３．２６）， ５３０ （４．２７）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８２ （４．１９）， ３３２ （３．４０）， ５３０ （４．４２）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８７ｓｈ （４．００）， ３１３ （３．８２）， ４０９ （３．５７）， ５７０ （４．５０）。
色素（１５）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８３ （４．００）， ３１１ｓｈ （３．２２）， ５３０ （３．０８）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８２ （４．５４）， ３３１ （３．９７）， ５２９ （４．７４）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２７２ （４．４３）， ３１２ （４．２４）， ５７１ （４．８５）。

質量分析計（ｐｏｓｉｔｉｖｅ-ｉｏｎ Ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ-Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ；ＥＳＩ−ＭＳ）を用いて、図１で示した（１）〜（４）、（６）〜（１０）及び（１５）のアントシアニン色素の質量を測定した。
色素（１）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５８１．３７ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２６Ｈ_２９Ｏ_１５ ５８１．４１）。
色素（２）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７２７．３７ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３５Ｈ_３５Ｏ_１７ ７２７．５３）。
色素（３）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７２７．３８ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３５Ｈ_３５Ｏ_１７ ７２７．５３）。
色素（４）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７４３．３５ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３５Ｈ_３５Ｏ_１８ ７４３．５３）。
色素（６）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ４４９．２１ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２１Ｈ_２１Ｏ_１１ ４４９．３１）。
色素（７）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５９５．１９ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１３ ５９５．４４）。
色素（８）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５９５．１４ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１３ ５９５．４４）。
色素（９）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ６１１．２２ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１４ ６１１．４４）。
色素（１０）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５８１．１８ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２６Ｈ_２９Ｏ_１５ ５８１．４１）。
色素（１５）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ４４９．２３ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２１Ｈ_２１Ｏ_１１ ４４９．３１）。
以上の結果、理論値と測定値がよく一致した。

〔実施例２〕ホンコンツバキ（Ｃ．ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ Ｓｅｅｍ．）の分析
（１）花弁から色素の抽出と単離、精製の方法
ホンコンツバキから花弁を採集した。採集した花弁１０ｋｇに直接、酢酸とメタノールを１対１で混合した溶液（５０％酢酸−メタノール）２０Ｌを加え、２０〜２５℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出液を綿栓でろ過した後、溶媒を減圧下、ロータリーエバポレーターで留去した。抽出残渣を５％酢酸水溶液に溶解し、オープンカラムクロマトグラフィーに付した。オープンカラムクロマトグラフィーの条件は、固定相にエムシーアイゲルＣＨＰ−２０Ｐ（ＭＣＩ ｇｅｌ ＣＨＰ−２０Ｐ、三菱化学株式会社、Ｍｉｔｓｕｂｉｓｈｉ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）、セファデックスＬＨ−２０（Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）、クロマトレックスＯＤＳ（Ｃｈｒｏｍａｔｏｒｅｘ ＯＤＳ、富士シリシア化学株式会社、Ｆｕｊｉ Ｓｉｌｙｓｉａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ ＬＴＤ．）を用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸−メタノールを用い、Ａ液からＢ液の含量を１０％ずつ増やすことによって、ＭＣＩgelのカラム（以下ＭＣＩカラム）−Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０カラム−ＯＤＳカラムの順番で各種クロマトグラフィーを行った。また、固定相にセファデックスＬＨ−２０（Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）を用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｃ液として５％酢酸−アセトン（アセトンに酢酸を５％量加えたもの）を用い、Ｃ液からＡ液の含量を２％ずつ増やすことによってクロマトグラフィーを行った。最後に、Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０カラムとＯＤＳカラムを用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸−メタノールを用い、Ａ液からＢ液の含量を５％ずつ増やすことを繰り返した。これらのオープンカラムクロマトグラフィーを繰り返し行うことによって、アントシアニン色素として、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（８）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（９）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１５）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１８）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１９）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２０）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２１）、ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２２）を単離及び精製した（図２）。単離及び精製したアントシアニン色素のうち、（１６）、（１７）、（１８）は新規な色素である（図２）。

（２）色素の各種スペクトルデータ
単離・精製したアントシアニン色素のプロトン核磁気共鳴スペクトル（^１Ｈ-Ｎｕｃｌｅａｒ ｍａｇｎｅｔｉｃ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ［ＮＭＲ］ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定装置は、ＪＮＭ-ＥＣＡ６００型核磁気共鳴装置（ＪＥＯＬ ＪＮＭ-ＥＣＡ６００ＫＳ、日本電子データム株式会社、ＪＥＯＬ ＤＡＴＵＭ ＬＴＤ．）を用いた。測定は、ＣＤ_３ＯＤとＣＦ_３ＣＯＯＤの９対１混合溶液を用いて行った。その結果を表４〜表６に示す。表中の数値はデルタ（δ、ｐｐｍ）で示す。また、二番目に表された数値は、カップリング定数（Ｊ値）を示している。表中の記号で、ｂｒは、ｂｒｏａｄ、ｓはｓｉｎｇｌｅｔ、ｄはｄｏｕｂｌｅｔ、ｄｄはｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅｔ、ｄｄｄはｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅｔ、ｔはｔｒｉｐｌｅｔ、ｍはｍｕｌｔｉｐｌｅｔを示す。

単離・精製したアントシアニン色素の炭素１３核磁気共鳴スペクトル（^１３Ｃ-Ｎｕｃｌｅａｒ ｍａｇｎｅｔｉｃ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ［ＮＭＲ］ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定装置は、ＪＮＭ-ＥＣＡ６００型核磁気共鳴装置（ＪＥＯＬ ＪＮＭ-ＥＣＡ６００ＫＳ、日本電子データム株式会社、ＪＥＯＬ ＤＡＴＵＭ ＬＴＤ．）を用いた。測定は、ＣＤ_３ＯＤとＣＦ_３ＣＯＯＤの９対１混合溶液を用いて行った。その結果を表７〜表９に示す。表中の数値はデルタ（δ、ｐｐｍ）で示す。また表中、Ｃ（Ｚ）はパラクマル酸のＺ型、Ｃ（Ｅ）はパラクマル酸のＥ型、Ｃａｆ（Ｅ）はカフェー酸のシグナルであることを示す。ｓｈはｓｈｏｕｌｄｅｒである。

図２で示した（６）〜（９）及び（１５）〜（２２）のアントシアニン色素の紫外部吸収スペクトル（Ｕｌｔｒａ Ｖｉｏｌｅｔ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定には、島津製作所株式会社の分光機器（ＵＶ−ｖｉｓｉｂｌｅ ｒｅｃｏｒｄｉｎｇ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ、ＵＶ−２１００）を用いた。その結果は次の通りである。測定溶媒はメタノールである。
色素（６）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．０４）， ３１１ｓｈ （４．１７）， ５３８ （３．５５）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８３ （４．０８）， ３３２ （３．６４）， ５３０ （４．１９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８８ （３．９９）， ３１３ （３．９４）， ５７１ （４．２８）。
色素（７）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．３０）， ３０８ｓｈ （４．１９）， ５３１ （３．８９）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．３３）， ３１１ （４．１７）， ３７５ｓｈ （３．５８）， ５３０ （４．３５）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．２６）， ３１１ （４．２７）， ４１１ （３．７０）， ５７３ （４．４４）。
色素（８）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．４９）， ３１１ｓｈ（４．３９）， ５５３ （３．１７）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．５１）， ３１４ （４．３９）， ５３０ （４．５２）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４５）， ３１３ （４．４７）， ５７０ （４．６０）。
色素（９）：赤色無晶形粉末、 ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．６１）， ３３１ （４．４６）， ５３２ （４．５３）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．６５）， ３３０ （４．５０）， ５３０ （４．６９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４８）， ３１４ （４．４７）， ３４９ （４．４９）， ５７１ （４．７５）。
色素（１５）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８３ （４．００）， ３１１ｓｈ （３．２２）， ５３０ （３．０８）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８２ （４．５４）， ３３１ （３．９７）， ５２９ （４．７４）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２７２ （４．４３）， ３１２ （４．２４）， ５７１ （４．８５）。
色素（１６）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．２６）， ３０９ （４．１４）， ５３１ （４．０６）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．２８）， ３１０ （４．１５）， ５３０ （４．２８）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．２５）， ３１３ （４．２７）， ４０５ （３．６６）， ５７１ （４．３９）。
色素（１７）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．２９）， ３１１ｓｈ （４．１９）， ５３１ （４．１０）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．３１）， ３１２ （４．１９）， ５３０ （４．３２）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．２５）， ３１３ （４．２６）， ４０１ （３．５４）， ５５８ （４．３２）。
色素（１８）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．２７）， ３３０ （４．１４）， ５３１ （４．００）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．３０）， ３３０ （４．１８）， ５３１ （４．２９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８７ （４．１３）， ３１２ （４．１３）， ３５１ （４．１６）， ５６９ （４．３８）。
色素（１９）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８１ （３．９６）， ３１９ｓｈ （３．１６）， ５４４ （４．３７）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２７８ （４．０８）， ３３３ （４．４６）， ５４２ （４．３５）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２７７ （４．０３）， ３１８ （３．６８）， ５８０ （４．４１）。
色素（２０）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．３２）， ３０８ （３．８４）， ５４５ （３．０４）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８５ （４．３２）， ３００ （４．２５）， ５４５ （４．１６）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８８ （４．３２）， ３１５ （４．２７）， ５８６ （４．２５）。
色素（２１）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．２８）， ３０７ （４．２４）， ５４４ （３．７９）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８３ （４．３１）， ２９９ （４．２６）， ５４２ （４．３６）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８８ （４．２７）， ３１５ （４．２７）， ５８４ （４．４３）。
色素（２２）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．０５）， ３１８ｓｈ （３．９０）， ３２９ （３．９４）， ５４８ （３．７４）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８２ （４．１１）， ３１７ｓｈ （３．９４）， ３３２ （３．９８）， ５４４ （４．２０）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８５ （４．００）， ３２９ｓｈ （４．０１）， ３５０ （４．０６）， ５８７ （４．２６）。

質量分析計（ｐｏｓｉｔｉｖｅ-ｉｏｎ Ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ-Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ；ＥＳＩ−ＭＳ）を用いて、図２で示した（６）〜（９）及び（１５）〜（２２）のアントシアニン色素の質量を測定した。
色素（６）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ４４９．２１ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２１Ｈ_２１Ｏ_１１ ４４９．３１）。
色素（７）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５９５．１９ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１３ ５９５．４４）。
色素（８）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５９５．１４ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１３ ５９５．４４）。
色素（９）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ６１１．２２ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１４ ６１１．４４）。
色素（１５）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ４４９．２３ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２１Ｈ_２１Ｏ_１１ ４４９．３１）。
色素（１６）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５９５．１９ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１３ ５９５．４４）。
色素（１７）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５９５．１７ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１３ ５９５．４４）。
色素（１８）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ６１１．３９ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１４ ６１１．４４）。
色素（１９）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ４６５．２３ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２１Ｈ_２１Ｏ_１２ ４６５．３１）。
色素（２０）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ６１１．３５ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１４ ６１１．４４）。
色素（２１）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ６１１．２２ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１４ ６１１．４４）。
色素（２２）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ６２７．３７ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１５ ６２７．４３）。
以上の結果、理論値と測定値がよく一致した。

〔実施例３〕サルウィンツバキ（Ｃ．ｓａｌｕｅｎｅｎｓｉｓ Ｓｔａｐｆ ｅｘ Ｂｅａｍ）の分析
（１）花弁から色素の抽出と単離、精製の方法
サルウィンツバキから花弁を採集した。採集した花弁は、褐変を防ぐため熱湯に３〜５秒間浸漬し、ポリフェノールオキシダーゼなどの酵素を死活させた。浸漬後、花弁を室温で乾燥させた。乾燥花弁３ｋｇに、酢酸とメタノールを１対１で混合した溶液（５０％酢酸−メタノール）１３Ｌを加え、２０〜２５℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出液を綿栓でろ過した後、溶媒を減圧下、ロータリーエバポレーターで留去した。抽出残渣を５％酢酸水溶液に溶解し、オープンカラムクロマトグラフィーに付した。オープンカラムクロマトグラフィーの条件は、固定相にエムシーアイゲルＣＨＰ−２０Ｐ（ＭＣＩ ｇｅｌ ＣＨＰ−２０Ｐ、三菱化学株式会社、Ｍｉｔｓｕｂｉｓｈｉ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）、セファデックスＬＨ−２０（Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）、クロマトレックスＯＤＳ（Ｃｈｒｏｍａｔｏｒｅｘ ＯＤＳ、富士シリシア化学株式会社、Ｆｕｊｉ Ｓｉｌｙｓｉａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ ＬＴＤ．）を用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸−メタノールを用い、Ａ液からＢ液の含量を１０％ずつ増やすことによって、ＭＣＩgelのカラム（以下ＭＣＩカラム）−Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０カラム−ＯＤＳ カラムの順番で各種クロマトグラフィーを行った。また、固定相にセファデックスＬＨ−２０（Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）を用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｃ液として５％酢酸−アセトン（アセトンに酢酸を５％量加えたもの）を用い、Ｃ液からＡ液の含量を２％ずつ増やすことによってクロマトグラフィーを行った。次いで、Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０カラムとＯＤＳカラムを用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸−メタノールを用い、Ａ液からＢ液の含量を５％ずつ増やすことを繰り返した。これらのオープンカラムクロマトグラフィーを繰り返し行うことによって、アントシアニン色素として、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（７）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（８）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３，５−ｄｉ−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）−５−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）−５−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２５）を単離及び精製した（図３）。

（２）色素の各種スペクトルデータ
単離・精製したアントシアニン色素のプロトン核磁気共鳴スペクトル（^１Ｈ-Ｎｕｃｌｅａｒ ｍａｇｎｅｔｉｃ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ［ＮＭＲ］ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定装置は、ＪＮＭ-ＥＣＡ６００型核磁気共鳴装置（ＪＥＯＬ ＪＮＭ-ＥＣＡ６００ＫＳ、日本電子データム株式会社、ＪＥＯＬ ＤＡＴＵＭ ＬＴＤ．）を用いた。測定は、ＣＤ_３ＯＤとＣＦ_３ＣＯＯＤの９対１混合溶液を用いて行った。その結果を表１０及び表１１に示す。表中の数値はデルタ（δ、ｐｐｍ）で示す。また、二番目に表された数値は、カップリング定数（Ｊ値）を示している。表中の記号で、ｂｒは、ｂｒｏａｄ、ｓはｓｉｎｇｌｅｔ、ｄはｄｏｕｂｌｅｔ、ｄｄはｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅｔ、ｄｄｄはｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅｔ、ｔはｔｒｉｐｌｅｔ、ｍはｍｕｌｔｉｐｌｅｔを示す。

単離・精製したアントシアニン色素の炭素１３核磁気共鳴スペクトル（^１３Ｃ-Ｎｕｃｌｅａｒ ｍａｇｎｅｔｉｃ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ［ＮＭＲ］ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定装置は、ＪＮＭ-ＥＣＡ６００型核磁気共鳴装置（ＪＥＯＬ ＪＮＭ-ＥＣＡ６００ＫＳ、日本電子データム株式会社、ＪＥＯＬ ＤＡＴＵＭ ＬＴＤ．）を用いた。測定は、ＣＤ_３ＯＤとＣＦ_３ＣＯＯＤの９対１混合溶液を用いて行った。その結果を表１２に示す。表中の数値はデルタ（δ、ｐｐｍ）で示す。また表中、Ｃ（Ｚ）はパラクマル酸のＺ型、Ｃ（Ｅ）はパラクマル酸のＥ型、Ｃａｆ（Ｅ）はカフェー酸のシグナルであることを示す。

図３で示した（６）〜（８）及び（２３）〜（２５）のアントシアニン色素の紫外部吸収スペクトル（Ｕｌｔｒａ Ｖｉｏｌｅｔ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定には、島津製作所株式会社の分光機器（ＵＶ−ｖｉｓｉｂｌｅ ｒｅｃｏｒｄｉｎｇ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ、ＵＶ−２１００）を用いた。その結果は次の通りである。測定溶媒はメタノールである。ｓｈはｓｈｏｕｌｄｅｒを示す。
色素（６）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．０４）， ３１１ｓｈ （４．１７）， ５３８ （３．５５）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８３ （４．０８）， ３３２ （３．６４）， ５３０ （４．１９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８８ （３．９９）， ３１３ （３．９４）， ５７１ （４．２８）。
色素（７）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．３０）， ３０８ｓｈ （４．１９）， ５３１ （３．８９）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．３３）， ３１１ （４．１７）， ３７５ｓｈ （３．５８）， ５３０ （４．３５）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．２６）， ３１１ （４．２７）， ４１１ （３．７０）， ５７３ （４．４４）。
色素（８）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．４９）， ３１１ｓｈ （４．３９）， ５５３ （３．１７）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．５１）， ３１４ （４．３９）， ５３０ （４．５２）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４５）， ３１３ （４．４７）， ５７０ （４．６０）。
色素（２３）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８２ （３．１４）， ３１１ｓｈ （１．８９）， ５２７ （２．７１）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２７９ （３．１４）， ３３１ （２．４９）， ５２６ （３．４３）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８４ｓｈ （２．９７）， ３１３ （２．８２）， ４５２ （２．６４）， ５７０ （３．４４）。
色素（２４）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８６ （４．２７）， ３１７ｓｈ （４．０９）， ５３１ （２．５８）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８１ （４．２５）， ２９４ （４．２２）， ５３０ （４．３４）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８１ （４．１９）， ３１２ （４．２１）， ４２１ （３．６８）， ５７１ （４．３７）。
色素（２５）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．５６）， ３１１ｓｈ（４．４６）， ５５３ （３．２３）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．５８）， ３１４ （４．４６）， ５３０ （４．５９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．５１）， ３１３ （４．５４）， ５７０ （４．６７）。

質量分析計（ｐｏｓｉｔｉｖｅ-ｉｏｎ Ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ-Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ；ＥＳＩ−ＭＳ）を用いて、図３で示した（６）〜（８）及び（２３）〜（２５）のアントシアニン色素の質量を測定した。
色素（６）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ４４９．２１ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２１Ｈ_２１Ｏ_１１ ４４９．３１）。
色素（７）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５９５．１９ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１３ ５９５．４４）。
色素（８）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５９５．１４ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３０Ｈ_２７Ｏ_１３ ５９５．４４）。
色素（２３）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ６１１．３９ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２７Ｈ_３１Ｏ_１６ ６１１．４３）。
色素（２４）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７５７．４４ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３６Ｈ_３７Ｏ_１８ ７５７．５５）。
色素（２５）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７５７．４４ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３６Ｈ_３７Ｏ_１８ ７５７．５５）。
以上の結果、理論値と測定値がよく一致した。

〔実施例４〕園芸品種ツバキ：大理茶（Ｄａｌｉｃｈａ）の分析
（１）花弁から色素の抽出と単離、精製の方法
園芸品種ツバキから花弁を採集した。採集した花弁は、褐変を防ぐため熱湯に３〜５秒間浸漬し、ポリフェノールオキシダーゼなどの酵素を死活させた。浸漬後、花弁を室温で乾燥させた。乾燥花弁２ｋｇに、酢酸とメタノールを１対１で混合した溶液（５０％酢酸−メタノール）１１Ｌを加え、２０〜２５℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出液を綿栓でろ過した後、溶媒を減圧下、ロータリーエバポレーターで留去した。抽出残渣を５％酢酸水溶液に溶解し、オープンカラムクロマトグラフィーに付した。オープンカラムクロマトグラフィーの条件は、固定相にエムシーアイゲルＣＨＰ−２０Ｐ（ＭＣＩ ｇｅｌ ＣＨＰ−２０Ｐ、三菱化学株式会社、Ｍｉｔｓｕｂｉｓｈｉ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）、セファデックスＬＨ−２０（Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）、クロマトレックスＯＤＳ（Ｃｈｒｏｍａｔｏｒｅｘ ＯＤＳ、富士シリシア化学株式会社、Ｆｕｊｉ Ｓｉｌｙｓｉａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ ＬＴＤ．）を用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸−メタノールを用い、Ａ液からＢ液の含量を１０％ずつ増やすことによって、ＭＣＩgelのカラム（以下ＭＣＩカラム）−Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０カラム−ＯＤＳカラムの順番で各種クロマトグラフィーを行った。また、固定相にセファデックスＬＨ−２０（Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ ＡＢ）を用い、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｃ液として５％酢酸−アセトン（アセトンに酢酸を５％量加えたもの）を用い、Ｃ液からＡ液の含量を増やすことによってクロマトグラフィーを行った。これらのオープンカラムクロマトグラフィーを繰り返し行うことによって、アントシアニン色素として、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（４）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（５）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１０）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１１）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１２）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１３）、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１４）を単離及び精製した（図４）。単離及び精製したアントシアニン色素のうち、（５）、（１１）〜（１４）は新規な色素である（図４）。

（２）色素の各種スペクトルデータ
単離・精製したアントシアニン色素のプロトン核磁気共鳴スペクトル（^１Ｈ-Ｎｕｃｌｅａｒ ｍａｇｎｅｔｉｃ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ［ＮＭＲ］ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定装置は、ＪＮＭ-ＥＣＡ６００型核磁気共鳴装置（ＪＥＯＬ ＪＮＭ-ＥＣＡ６００ＫＳ、日本電子データム株式会社、ＪＥＯＬ ＤＡＴＵＭ ＬＴＤ．）を用いた。測定は、ＣＤ_３ＯＤとＣＦ_３ＣＯＯＤの９対１混合溶液を用いて行った。その結果を表１３及び表１４に示す。表中の数値はデルタ（δ、ｐｐｍ）で示す。また、二番目に表された数値は、カップリング定数（Ｊ値）を示している。表中の記号で、ｂｒは、ｂｒｏａｄ、ｓはｓｉｎｇｌｅｔ、ｄはｄｏｕｂｌｅｔ、ｄｄはｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅｔ、ｄｄｄはｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅ ｄｏｕｂｌｅｔ、ｔはｔｒｉｐｌｅｔ、ｍはｍｕｌｔｉｐｌｅｔを示す。

単離・精製したアントシアニン色素の炭素１３核磁気共鳴スペクトル（^１３Ｃ-Ｎｕｃｌｅａｒ ｍａｇｎｅｔｉｃ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ［ＮＭＲ］ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定装置は、ＪＮＭ-ＥＣＡ６００型核磁気共鳴装置（ＪＥＯＬ ＪＮＭ-ＥＣＡ６００ＫＳ、日本電子データム株式会社、ＪＥＯＬ ＤＡＴＵＭ ＬＴＤ．）を用いた。測定は、ＣＤ_３ＯＤとＣＦ_３ＣＯＯＤの９対１混合溶液を用いて行った。その結果を表１５に示す。表中の数値はデルタ（δ、ｐｐｍ）で示す。また表中、Ｃ（Ｚ）はパラクマル酸のＺ型、Ｃ（Ｅ）はパラクマル酸のＥ型、Ｃａｆ（Ｅ）はカフェー酸のシグナルであることを示す。

図４で示した（１）〜（５）及び（１０）〜（１４）のアントシアニン色素の紫外部吸収スペクトル（Ｕｌｔｒａ Ｖｉｏｌｅｔ ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を測定した。測定には、島津製作所株式会社の分光機器（ＵＶ−ｖｉｓｉｂｌｅ ｒｅｃｏｒｄｉｎｇ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ、ＵＶ−２１００）を用いた。その結果は次の通りである。測定溶媒はメタノールである。ｓｈはｓｈｏｕｌｄｅｒを示す。
色素（１）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８２ （４．３１）， ３７９ （３．１０）， ５３８ （３．４７）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８２ （４．３７）， ３３２ （３．６８）， ５３０ （４．５９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４０）， ３１２ （４．００）， ４１１ （３．８１）， ５６４ （４．６２）。
色素（２）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．５１）， ３１１ｓｈ （４．４０）， ５５３ （３．１８）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８４ （４．５３）， ３１４ （４．４０）， ５３０ （４．５４）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４６）， ３１３ （４．４９）， ５７０ （４．６１）。
色素（３）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８４ （４．５８）， ３１１ｓｈ （４．４８）， ５５３ （３．２５）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８４ （４．６０）， ３１４ （４．４８）， ５３０ （４．６１）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．５３）， ３１３ （４．５６）， ５７０ （４．６９）。
色素（４）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．６１）， ３３１ （４．４６）， ５３２ （４．５３）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８４ （４．６５）， ３３０ （４．５０）， ５３０ （４．６９）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．４８）， ３１４ （４．４７）， ３４９ （４．４９）， ５７１ （４．７５）。
色素（５）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８３ （４．１７）， ３４０ （３．２２）， ３６１ （３．２５）， ５３１ （３．５８）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８３ （４．２２）， ３３６ （３．５６））， ３８２ （３．６５）， ５３１ （４．４５）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８６ （４．０９）， ３１３ （３．８９）， ４０９ （３．７１）， ５７０ （４．５２）。
色素（１０）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８２ （４．１２）， ３３３ （３．２６）， ５３０ （４．２７）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８２ （４．１９）， ３３２ （３．４０）， ５３０ （４．４２）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８７ｓｈ （４．００）， ３１３ （３．８２）， ４０９ （３．５７）， ５７０ （４．５０）。
色素（１１）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．３９）， ３１３ｓｈ（４．２２）， ５３４ （４．３８）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．４１）， ３１１ （４．２３）， ５３４ （４．４８）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．３２）， ３１１ （４．３１）， ４０５ （３．８０）， ５７４ （４．５７）。
色素（１２）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．２２）， ３０８ｓｈ （４．１２）， ５３５ （３．３６）； ０．０１％ ＨＣｌ-ＭｅＯＨ： ２８４ （４．２４）， ３１２ （４．１２）， ５３１ （４．２５）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２９０ （４．１８）， ３１３ （４．２０）， ４０７ （３．４６）， ５７１ （４．３３）。
色素（１３）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８５ （４．３０）， ３３０ （４．１２）， ５３２ （３．４０）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８４ （４．３２）， ３３１ （４．１８）， ５３１ （４．４０）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８９ （４．１２）， ３１５ （４．１２）， ３５５ （４．１８）， ５６７ （４．４８）。
色素（１４）：赤色無晶形粉末、ＵＶ−ｖｉｓ λ_ｍａｘ ＭｅＯＨ （ｎｍ） （ｌｏｇ ε）： ２８３ （４．１０）， ３４７ （３．２９）， ５５０ （２．９９）； ０．０１％ ＨＣｌ−ＭｅＯＨ： ２８３ （４．１４）， ３３５ （３．５５）， ３８１ （３．５６）， ５３１ （４．３６）； ＡｌＣｌ_３−ＭｅＯＨ： ２８７ （３．９７）， ３１２ （３．７９）， ４０３ （３．６３）， ５７２ （４．４３）。

質量分析計（ｐｏｓｉｔｉｖｅ-ｉｏｎ Ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ-Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ；ＥＳＩ−ＭＳ）を用いて、図４で示した（１）〜（５）、（１０）〜（１４）のアントシアニン色素の質量を測定した。
色素（１）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５８１．３７ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２６Ｈ_２９Ｏ_１５ ５８１．４１）。
色素（２）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７２７．３７ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３５Ｈ_３５Ｏ_１７ ７２７．５３）。
色素（３）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７２７．３８ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３５Ｈ_３５Ｏ_１７ ７２７．５３）。
色素（４）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７４３．３５ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３５Ｈ_３５Ｏ_１８ ７４３．５３）。
色素（５）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ６２３．２５ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２８Ｈ_３１Ｏ_１６ ６２３．４４）。色素（１０）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ５８２．２２ ［Ｍ＋Ｈ］^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２６Ｈ_２９Ｏ_１５ ５８１．４１）。
色素（１１）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７２７．３７ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３５Ｈ_３５Ｏ_１７ ７２７．５３）。
色素（１２）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７２７．３２ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３５Ｈ_３５Ｏ_１７ ７２７．５３）。
色素（１３）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ７４３．４８ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_３５Ｈ_３５Ｏ_１８ ７４３．５３）。
色素（１４）：ＥＳＩ−ＭＳ （ｍ／ｚ）： ６２３．３８ Ｍ^＋ （Ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２８Ｈ_３１Ｏ_１６ ６２３．４４）。
以上の結果、理論値と測定値がよく一致した。

〔実施例５〕ＨＰＬＣによる各種ツバキの花弁に含まれる色素の分析
（１）トウツバキ（Ｃ．ｒｅｌｉｃｕｌａｔａ Ｌｉｎｄｌ．）の分析
トウツバキ（Ｃ．ｒｅｌｉｃｕｌａｔａ Ｌｉｎｄｌ．）の花弁（花）０．５ｇを採集し、予め準備した抽出溶媒１０ｍｌで２０℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出溶媒の組成は、メタノール−ギ酸−トリフルオロ酢酸−水（ＭｅＯＨ−ＨＣＯＯＨ−ＣＦ_３ＣＯＯＨ−Ｈ_２Ｏ）の７０：２：１：２７（ｖ／ｖ％）である。抽出液は、ミリポアフィルター（メッシュは０．４５μＭ）で通導後、下記のＨＰＬＣ分析条件にて分析した。その結果を図５に示す。色素がよく分離していることが分かる。
（ＨＰＬＣ分析条件）
ＨＰＬＣの溶出溶媒としては、Ａ液として１．５％リン酸を含む水溶液と、Ｂ液としてリン酸−ギ酸−アセトニトリル−テトラヒドロフラン−水の１．４：１９：２３．８：５：５０．８の比率で混合した溶液を用い、流速を１分間に０．８ｍｌ、カラムの温度を４０℃に保ち、検出波長を５２５ｎｍに設定し、Ａ液とＢ液との比率を８２：１８から３０：７０の比率で３５分かけてリニアーグラジエント溶出させた。

（２）ピタールツバキ雲南種（西南山茶雲南種、Ｃ．ｐｉｔａｒｄｉｉ ｖａｒ． ｙｕｎｎａｎｉｃａ）の分析
ピタールツバキ雲南種（西南山茶雲南種、Ｃ．ｐｉｔａｒｄｉｉ ｖａｒ． ｙｕｎｎａｎｉｃａ）の花弁（花）０．５ｇを採集し、予め準備した抽出溶媒１０ｍｌで２０℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出溶媒の組成は、メタノール−ギ酸−トリフルオロ酢酸−水（ＭｅＯＨ−ＨＣＯＯＨ−ＣＦ_３ＣＯＯＨ−Ｈ_２Ｏ）の７０：２：１：２７（ｖ／ｖ％）である。抽出液は、ミリポアフィルター（メッシュは０．４５μＭ）で通導後、前記ＨＰＬＣ条件にて分析した。その結果を図６に示す。色素がよく分離していることが分かる。また、トウツバキ（Ｃ．ｒｅｌｉｃｕｌａｔａ Ｌｉｎｄｌ．）の花弁（花）から得られたアントシニン色素組成と類似しているが、両者のＨＰＬＣ分析のデータによる品種識別は可能であると考える。

（３）ホンコンツバキ（Ｃ．ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ Ｓｅｅｍ．）の分析
ホンコンツバキ（Ｃ．ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ Ｓｅｅｍ．）の花弁（花）０．５ｇを採集し、予め準備した抽出溶媒１０ｍｌで２０℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出溶媒の組成は、メタノール−ギ酸−トリフルオロ酢酸−水（ＭｅＯＨ−ＨＣＯＯＨ−ＣＦ_３ＣＯＯＨ−Ｈ_２Ｏ）の７０：２：１：２７（ｖ／ｖ％）である。抽出液は、ミリポアフィルター（メッシュは０．４５μＭ）で通導後、前記ＨＰＬＣ条件にて分析した。その結果を図７に示す。色素がよく分離していることが分かる。

（４）ヤブツバキ（Ｃ．ｊａｐｏｎｉｃａ）の分析
ヤブツバキ（Ｃ．ｊａｐｏｎｉｃａ）の花弁（花）０．５ｇを採集し、予め準備した抽出溶媒１０ｍｌで２０℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出溶媒の組成は、メタノール−ギ酸−トリフルオロ酢酸−水（ＭｅＯＨ−ＨＣＯＯＨ−ＣＦ_３ＣＯＯＨ−Ｈ_２Ｏ）の７０：２：１：２７（ｖ／ｖ％）である。抽出液は、ミリポアフィルター（メッシュは０．４５μＭ）で通導後、前記ＨＰＬＣ条件にて分析した。その結果を図８に示す。色素がよく分離していることが分かる。また、ホンコンツバキ（Ｃ．ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ）の花弁（花）から得られたアントシニン色素組成とは違い、デルフィニジン（ｄｅｌｐｈｉｎｉｄｉｎ）系の配糖体が認められないことが分かる。

（５）サルウィンツバキ（Ｃ．ｓａｌｕｅｎｅｎｓｉｓ Ｓｔaｐｆ ｅｘ Ｈｅａｍ）の分析
サルウィンツバキ（Ｃ．ｓａｌｕｅｎｅｎｓｉｓ Ｓｔaｐｆ ｅｘ Ｈｅａｍ）の花弁（花）２５ｇを採集し、予め準備した抽出溶媒１０ｍｌで２０℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出溶媒の組成は、メタノール−ギ酸−トリフルオロ酢酸−水（ＭｅＯＨ−ＨＣＯＯＨ−ＣＦ_３ＣＯＯＨ−Ｈ_２Ｏ）の７０：２：１：２７（ｖ／ｖ％）である。抽出液は、ミリポアフィルター（メッシュは０．４５μＭ）で通導後、前記ＨＰＬＣ条件にて分析した。その結果を図９に示す。色素がよく分離していることが分かる。

（６）ピタールツバキピタール種（西南山茶西南種、Ｃ．ｐｉｔａｒｄｉｉ ｖａｒ． ｐｉｔａｒｄｉｉ）の分析
ピタールツバキピタール種（西南山茶西南種、Ｃ．ｐｉｔａｒｄｉｉ ｖａｒ． ｐｉｔａｒｄｉｉ）の花弁（花）０．５ｇを採集し、予め準備した抽出溶媒１０ｍｌで２０℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出溶媒の組成は、メタノール−ギ酸−トリフルオロ酢酸−水（ＭｅＯＨ−ＨＣＯＯＨ−ＣＦ_３ＣＯＯＨ−Ｈ_２Ｏ）の７０：２：１：２７（ｖ／ｖ％）である。抽出液は、ミリポアフィルター（メッシュは０．４５μＭ）で通導後、前記ＨＰＬＣ条件にて分析した。その結果を図１０に示す。色素がよく分離していることが分かる。また、サルウィンツバキ（Ｃ．ｓａｌｕｅｎｅｎｓｉｓ Ｓｔaｐｆ ｅｘ Ｈｅａｍ）の花弁（花）から得られたアントシニン色素組成と類似しているが、両者のＨＰＬＣ分析データによる品種識別は可能であると考える。

（７）園芸品種ツバキ：大理茶（Ｄａｌｉｃｈａ）の分析
園芸品種ツバキ：大理茶（Ｄａｌｉｃｈａ）の花弁（花）０．２５ｇを採集し、予め準備した抽出溶媒１０ｍｌで２０℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出溶媒の組成は、メタノール−ギ酸−トリフルオロ酢酸−水（ＭｅＯＨ−ＨＣＯＯＨ−ＣＦ_３ＣＯＯＨ−Ｈ_２Ｏ）の７０：２：１：２７（ｖ／ｖ％）である。抽出液は、ミリポアフィルター（メッシュは０．４５μＭ）で通導後、前記ＨＰＬＣ条件にて分析した。その結果を図１１に示す。色素がよく分離していることが分かる。

〔実施例６〕ツバキ花弁より抽出した抽出エキス、及び単離・精製したアントシアニン色素の生物活性試験
（１）アントシアニンサンプルの調製
実施例２と同様に、ホンコンツバキの花弁からアントシアニンを抽出した。採集した花弁８ｋｇに直接、酢酸とメタノールを１対１で混合した溶液（５０％酢酸−メタノール）２０Ｌを加え、２０−２５℃でアントシアニン色素を抽出した。抽出液を綿栓でろ過した後、溶媒を減圧下、ロータリーエバポレーターで留去した。抽出残渣を５％酢酸水溶液に溶解し、オープンカラムクロマトグラフィーに付した。オープンカラムクロマトグラフィーの条件は、固定相にエムシーアイゲルＣＨＰ−２０Ｐ（ＭＣＩ ｇｅｌ ＣＨＰ−２０Ｐ、三菱化学株式会社、Ｍｉｔｓｕｂｉｓｈｉ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）、移動相にＡ液として５％酢酸水溶液、Ｂ液として５％酢酸−メタノールを用い、Ａ液からＢ液の含量を１０％ずつ増やすことによって、ＭＣＩｇｅｌのカラム（以下ＭＣＩカラム）クロマトグラフィーを行い、６つの分画を得た。

ＤＰＰＨラジカル消去能とヒト白血病細胞増殖抑制作用の実験に用いたサンプル名とサンプル量は以下の通りである。ツバキ花弁の抽出エキス（抽出溶媒を留去した原液）は８５５．７ｍｇ、分画１は０．８４ｇ、分画２は０．２３ｇ、分画３は０．２０ｇ、分画４は１０６．７ｍｇ、分画５は１０１．２ｍｇ、分画６は１０３．４ｍｇであった。

また、これらの分画の他に、精製したアントシアニン類を実験に供試した。それらのアントシアニンの種類と供試量は以下の通りである。ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）は２１．３ｍｇ、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３，５−ｄｉ−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２３）は２１．２ｍｇ、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（８）は２２．７ｍｇ、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１）は２０．２ｍｇ、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（３）は１５．５ｍｇ、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１２）は１５．３ｍｇ、を供試した。

（２）ＤＰＰＨラジカル消去能の実験方法
抗酸化作用の実験は、以下の文献に記載の方法を用いて行った（Ｈａｒｗａｔ， Ｋ．Ｓ．Ｍ． ｅｔ ａｌ， Ｆｒｅｅ Ｒａｄｉｃａｌ Ｒｅｓ．， ３６：１７７−１８７， ２００２）。

サンプルは、前記（１）で得られた６つの粗製分画物と抽出エキス及び６種のアントシアニンをそれぞれ２０から１６０μｇ／ｍｌ以下の濃度で調整したものを順次半等分に希釈して用いた。

これらのサンプルを平底のプレート（９６ｗｅｌｌ）に加え、更にＤＰＰＨ（１，１−ｄｉｐｈｅｎｙｌ−２−ｐｉｃｒｙｌｈｙｄｒａｚｙｌ、マイクロモーラーの濃度で調整したもの）を１９０μｌ加え、１０秒間混合した後、遮光して３０分間放置した。この反応後、各ウエルの反応溶液を、４９０ｎｍの波長の吸光度を用いてマイクロプレートリーダーで測定し、その吸光度の値からＴｒｏｌｏｘの吸光度標準曲線を用いてＴｒｏｌｏｘ濃度を換算した。その換算値より、Ｔｒｏｌｏｘのラジカル消去能標準曲線からラジカル消去率を算出した。

ＤＰＰＨラジカル消去能の結果を表１６に示した。アントシアニンでは、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（６）が最も強い抗酸化作用を示すことが分かる。続いて、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３，５−ｄｉ−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２３）が強い抗酸化作用を示した。

ＤＰＰＨラジカル消去能の結果を表１７に示した。分画では、分画３が最も強い抗酸化作用を示し、続いて、分画４，分画５の順で強い抗酸化活性を示した。このように、ツバキの抽出エキスのみならず、分画が強い活性を示したことから、ツバキ花弁のエキスが抗酸化作用に有効であることが分かった。

（３）ヒト急性前骨髄性白血病細胞（ＨＬ−６０細胞）に対する抑制効果を見るための実験方法
ＨＬ−６０細胞増殖抑制作用の実験は、特開２００５−０７５７９０号公報に記載の方法を用いて行った。

［ヒト急性前骨髄性白血病細胞（ＨＬ−６０細胞）の調製］
ＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地の作成：
ＲＭＰＩ１６４０を２．０４ｇ秤取し、蒸留水にて全量を２００ｍｌとし、攪拌して溶解した後、溶液をオートクレーブで滅菌した（１２１℃、２０分）。冷却後、これに、１０％炭酸水素ナトリウム（ＮａＨＣＯ_３）を４ｍｌ、ＦＢＳ（予め非動化したもの）を２０ｍｌ、抗生物質溶液（ペニシリン・ストレプトマイシン）２ｍｌを加え、４℃で保存した。

ＨＬ−６０細胞の融解と増殖：
−８０℃で保管しておいたＨＬ−６０細胞を３７℃で溶解し、予め３７℃で保温したＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地５ｍｌに混入し、よく混合した。培地は、遠心分離（１２００ｒｐｍ、５分間）を行った後、上澄みを除去した。これにＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地１ｍｌを加え、軽く攪拌し、更にＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地５ｍｌを加え、混合した後、遠心分離（１２００ｒｐｍ、５分間）を行い、上澄みを除去した。これにＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地１ｍｌを加え、軽く攪拌し、更にＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地５ｍｌを加え、混合した後、シャーレ（６ｃｍ）に培地を入れ、５％二酸化炭素含有大気中３７℃の条件で、インキュベーターでＨＬ−６０細胞を培養した。

ＨＬ−６０細胞の継代：
培養し、増殖されたＨＬ−６０細胞を１５ｍｌチューブで回収し、丁寧に攪拌した後、その少量を血球計算盤に採取し、細胞数をカウントした。１５ｍｌチューブで回収したＨＬ−６０細胞は、遠心分離（１２００ｒｐｍ、５分間）を行った後、上澄みを除去した。これに予め３７℃で保温したＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地１ｍｌを加え、軽く攪拌し、先の細胞数を計算した値から、培地中の細胞の濃度が２ｘ１０^６ｃｅｌｌｓ／６ｍｌとなるように、ＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地で濃度を調整した。調製した培地は、５％二酸化炭素含有大気中３７℃の条件で、インキュベーターでＨＬ−６０細胞を継代した。

ＨＬ−６０細胞の保存：
継代されたＨＬ−６０細胞を１５ｍｌチューブで回収し、丁寧に攪拌した後、その少量を血球計算盤に採取し、細胞数をカウントした。１５ｍｌチューブで回収したＨＬ−６０細胞は、遠心分離（１２００ｒｐｍ、５分間）を行った後、上澄みを除去した。これに予め３７℃で保温したＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地１ｍｌを加え、軽く攪拌し、先の細胞数を計算した値から、培地中の細胞の濃度が２ｘ１０^６ｃｅｌｌｓ／１ｍｌとなるように、ＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地を８０％、ＦＢＳを１０％、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を１０％の組成を有する培地で、濃度を調整した。これをセラムチューブに１ｍｌずつ分注し、−２０℃で一夜保存後、翌日より−８０℃にて
保存した。

［細胞増殖抑制実験（ＭＴＴ ａｓｓａｙ）；ＨＬ−６０細胞の５０％生存率の検定方法］
本法は、文献記載の方法を参考にした（Ｍｏｓｍａｎｎ、Ｔ．：Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ、６５：５５−６３、１９８３）。２ｘ１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍｌのＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地で継代したＨＬ−６０細胞を、平底の９６ ｗｅｌｌのプレート１ ｗｅｌｌあたり２ｘ１０^４ｃｅｌｌｓ／１００μｌのＨＬ−６０細胞数になるように培地でＲＭＰＩ１６４０（１０％ＦＢＳ＋）培地で希釈し、２ｘ１０^４ｃｅｌｌｓ／１００μｌのＨＬ−６０細胞を各ｗｅｌｌへ分注した。これを５％二酸化炭素含有大気中３７℃の条件で、インキュベーターで２４時間培養した。

培養後各ｗｅｌｌに、各アントシアニン及び分画の濃度が０、５０、１００、２００、４００マイクログラム／ｍｌの濃度になるように、また、各ｗｅｌｌの培地量が全量で１１０μｌとなるように添加した。添加後、プレート毎に規定した時間について、５％二酸化炭素含有大気中３７℃の条件下、インキュベーターで４８時間培養した。

培養後、各ｗｅｌｌにＭＴＴ溶液（３−（４，５−ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニル テトラゾリウム ブロミド；３−（４，５−ｄｉｍｅｔｈｙｌｔｈｉａｚｏｌ−２−ｙｌ）−２，５−ｄｉｐｈｅｎｙｌ ｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ、ＭＴＴ、の１５０ｍｇをＰＢＳの３０ｍｌに溶解したもの）を１０μｌずつ分注した。プレート毎に４時間、５％二酸化炭素含有大気中３７℃の条件下、インキュベーターで培養した。培養終了後、各ｗｅｌｌに０．０４Ｎ ＨＣｌ−イソプロパノール（ｉｓｏｐｒｏｐａｎｏｌ）溶液を１００μｌずつ分注した。室温で１０分間放置した後、マイクロプレートリーダーのマルチラベルカウンター（５９５ｎｍ）で吸光度を測定した。細胞生存率（％）は、アントシアニン又は分画を添加していない（コントロール細胞の）吸光度から各アントシアニン又は分画の吸光度を引いたものを、コントロール細胞の吸光度で割った値に１００を乗じて算出した。

ヒト急性前骨髄性白血病細胞（ＨＬ−６０細胞）に対する抑制効果の結果を表１８に示した。アントシアニンでは、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３，５−ｄｉ−Ｏ−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（２３）が最も強いＨＬ−６０細胞の増殖抑制活性を示した。続いて、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−βｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（１）が強いＨＬ−６０細胞の増殖抑制活性を示した。このように、ツバキ花弁由来のアントシアニン色素がＨＬ−６０細胞の増殖抑制に有効であることが分かった。

ヒト急性前骨髄性白血病細胞（ＨＬ−６０細胞）に対する抑制効果の結果を表１９に示した。分画では、分画５が最も強いＨＬ−６０細胞の増殖抑制活性を示し、続いて、分画３，分画２、分画４の順で強いＨＬ−６０細胞の増殖抑制活性を示した。このように、ツバキ花弁抽出エキスの分画が強い活性を示したことから、ツバキ花弁のエキスがＨＬ−６０細胞の増殖抑制に有効であることが分かった。

本発明のアントシアニン色素は、飲食品、医薬品、化粧品の添加剤として有用である。本発明のツバキの色素による品種識別方法は、ツバキの品種を決定する方法として利用することができる。

実施例１においてトウツバキ（Ｃ．ｒｅｌｉｃｕｌａｔａ Ｌｉｎｄｌ．）の花弁より単離されたアントシアニン類の詳細な構造を示す図である。 実施例２においてホンコンツバキ（Ｃ．ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ Ｓｅｅｍ．）の花弁より単離されたアントシアニン類の詳細な構造を示す図である。 実施例３においてサルウィンツバキ（Ｃ．ｓａｌｕｅｎｅｎｓｉｓ Ｓｔaｐｆ ｅｘ Ｈｅａｍ）の花弁より単離されたアントシアニン類の詳細な構造を示す図である。 実施例４において園芸品種ツバキ：大理茶（Ｄａｌｉｃｈａ）の花弁より単離されたアントシアニン類の詳細な構造を示す図である。 実施例５においてトウツバキ（Ｃ．ｒｅｌｉｃｕｌａｔａ Ｌｉｎｄｌ．）の花弁より抽出された粗抽出物中のアントシアニン色素を調べた結果を示す図である。 実施例５においてピタールツバキ雲南種（西南山茶雲南種、Ｃ．ｐｉｔａｒｄｉｉ ｖａｒ． ｙｕｎｎａｎｉｃａ）の花弁より抽出された粗抽出物中のアントシアニン色素を調べた結果を示す図である。 実施例５においてホンコンツバキ（Ｃ．ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ Ｓｅｅｍ．）の花弁より抽出された粗抽出物中のアントシアニン色素を調べた結果を示す図である。 実施例５においてヤブツバキ（Ｃ．ｊａｐｏｎｉｃａ）の花弁より抽出された粗抽出物中のアントシアニン色素を調べた結果を示す図である。 実施例５においてサルウィンツバキ（Ｃ．ｓａｌｕｅｎｅｎｓｉｓ Ｓｔaｐｆ ｅｘ Ｈｅａｍ）の花弁より抽出された粗抽出物中のアントシアニン色素を調べた結果を示す図である。 実施例５においてピタールツバキピタール種（西南山茶西南種、Ｃ．ｐｉｔａｒｄｉｉ ｖａｒ． ｐｉｔａｒｄｉｉ）の花弁より抽出された粗抽出物中のアントシアニン色素を調べた結果を示す図である。 実施例５において園芸品種ツバキ：大理茶（Ｄａｌｉｃｈａ）の花弁より抽出された粗抽出物中のアントシアニン色素を調べた結果を示す図である。

Claims (5)

1. ツバキの花又は花弁の抽出物から、
   次式（Ｉ）
   

   

   （式中、Ｒはアセチル基を表す。）
   で示される化合物、
   次式（II）
   

   

   （式中、Ｒは（Ｚ）−ｐ−クマロイル基、（Ｅ）−ｐ−クマロイル基、（Ｅ）−カフェオイル基又はアセチル基を表す。）
   で示される化合物、又は
   次式（III）
   

   

   （式中、Ｒは（Ｚ）−ｐ−クマロイル基、（Ｅ）−ｐ−クマロイル基又は（Ｅ）−カフェオイル基を表す。）
   で示される化合物（但し、シアニジン−３−ｐ−クマロイルガラクトシドを除く。）を単離及び精製し、前記式（Ｉ）、式（II）又は式（III）で示される化合物を採取することを特徴とするアントシアニン色素の製造方法。
2. 前記ツバキがホンコンツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ ｈｏｎｇｋｏｎｇｅｎｓｉｓ Ｓｅｅｍ．）であり、アントシアニン色素がｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅである請求項１記載の製造方法。
3. 前記ツバキが園芸品種のツバキ：大理茶（Ｄａｌｉｃｈａ）であり、アントシアニン色素がｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｚ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｐ−ｃｏｕｍａｒｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ、ｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−（Ｅ）−ｃａｆｆｅｏｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ又はｃｙａｎｉｄｉｎ ３−Ｏ−（２−Ｏ−β−ｘｙｌｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−６−Ｏ−ａｃｅｔｙｌ）−β−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅである請求項１記載の製造方法。
4. 前記単離及び精製手段がカラムクロマトグラフィーである請求項１〜３のいずれか１項に記載の製造方法。
5. 抽出溶媒が酢酸−メタノール混合溶媒である請求項１〜４のいずれか１項に記載の製造方法。

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