JP5055551B2 - タンパク等の分離・検出方法 - Google Patents

Description

本発明は、スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）由来のビオチン固定化酵素によるビオチン化反応を利用した、タンパク等の分離・検出方法に関する。

プロテインタグシステムは、タンパクの精製方法並びに分析方法として、幅広い分野で活用されている。この手法では、タグとばれる比較的低分子量のタンパクやペプチドと、目的のタンパクを融合させて細胞内で発現させ、その後、タグを認識する物質を固定化した固相担体を利用して、目的のタンパクを捕捉し精製する方法である。この際、細胞内で目的のタンパクに結合していたタンパク質も同時に捕捉することが可能であるため、タンパク間相互作用の解析にも活用されている。更に、タグを有する目的タンパクを同様の原理で固相担体に固定化し、その後、その固相担体上で目的タンパクと他の物質（タンパク等）との間の相互作用を解析することも可能である。

このような目的に使用するタグとして、これまでに様々なものが開発されてきたが、代表的なものとしては次の様なものがある。（１）抗体によって認識されるペプチドあるいはタンパク（エピトープ）をタグとして利用し、抗体を固定化した固相担体を利用する系（例えば、非特許文献１参照）、（２）ビオチン化ペプチドあるいはタンパクをタグとして利用し、アビジンあるいはストレプトアビジンを固定化した固相担体を利用する系が挙げられる（例えば、非特許文献２、特許文献１、２参照）。
Brizzard, B., L. et al. Biotechniques (1994) 第16巻 第4号p. 730-735 Rodriguez, P. et al. Methods Mol Biol. (2006) 第338巻 p. 305-323 特表２００５−５１６０７４号公報 特開２００３−１５３６９８号公報

しかし、これらの系には問題点が存在する。それは、まず抗体を利用する系の場合、アミノ酸残基間のみの結合を利用しているため、本質的に交差反応性を示し、目的タンパクではない他のタンパクとの結合が起こり得ることである。また、アビジンを利用する系の場合、アビジンはビオチンのみを認識して結合するため、細胞内に元々存在するビオチン化タンパクもすべて結合することになる。従って、これらの既存の手法には結合特異性という観点から改善の余地がある。また、これらの既存の手法では、目的タンパクを固相担体上に捕捉した後、それを溶出させるのに何らかの添加剤が必要であり、精製や解析に手間がかかっている。更に、抗体やアビジンは大腸菌などの原核生物の発現系を利用して調製することが困難であるため、結果として、価格が非常に高額であることも問題点として挙げられる。

上記のように既存のプロテインタグシステムでは、目的タンパクではない他のタンパク質による結合が起こり得ることが問題点として挙げられる。そこで、より特異性の高い結合をプロテインタグシステムとして活用することにより、このような問題を克服することが望まれる。また、捕捉した目的タンパクの溶出に関しても、何らかの物質を添加すること無しに溶出することができれば、より迅速な精製や分析が行えることが期待される。更に、大腸菌などの原核生物の発現系で容易に調製可能なタンパクを、タグを認識する物質として利用することにより、精製・分析のコストを下げることが望まれる。本発明の課題は、このような点を全て解決したタンパク等の分離・検出方法を提供することにある。

上記のような課題を解決するために、本発明では、本発明者が最近見出した、古細菌スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）の特異なビオチン化反応系を利用して、プロティンタグシステムを構築する。ビオチン化反応は、ビオチン固定化酵素（Biotin Protein Ligase、ＢＰＬ）が、その基質タンパク（Biotin Carboxyl Carrier Protein、ＢＣＣＰ）のある特定のリジン残基にビオチンを付加する反応である。このビオチン化反応は、ビオチンを部位特異的にタンパクに導入でき非常に有用性が高いため、これまで様々な生物種から酵素及びその基質タンパクが単離されてきた。その結果、意外にも、このビオチン化反応は異なる生物種間で交差反応性を示し、生物種が異なっても類似の性質を有していることが示されてきた。

しかし、最近、本発明者は、古細菌スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）のビオチン化反応系が、これまでの生物種由来のものには見られない、極めて特異な性質を有していることを発見した。その性質とは、まず、この古細菌のビオチン化反応系が、大腸菌の反応系と完全に交差反応性を有していないことと、反応後、酵素であるＢＰＬが、ビオチン化されたＢＣＣＰと極めて安定な複合体を形成するという性質である。特に後者の、酵素がその反応生成物と非常に安定な複合体を形成するという性質は、他の酵素反応系おいても例を見ない極めて特異な性質である。本発明は、かかる知見に基づき、更に鋭意研究を重ねた結果、達成されたものである。

本発明の請求項１に記載された発明は、スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）由来のビオチン固定化酵素（Ａ）と、該ビオチン固定化酵素の触媒作用によってビオチン化された、スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）由来のビオチン担持タンパクと目的タンパク質との融合タンパク（Ｂ）とから複合体を形成させ、又は、前記ビオチン固定化酵素（Ａ）と、前記融合タンパク（Ｂ）と、目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）とから複合体を形成させ、該複合体として、前記目的タンパク、又は、前記目的タンパクと前記目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を分離・検出することを特徴とするタンパク等の分離・検出方法である。

本発明の請求項２に記載された発明は、ビオチン固定化酵素（Ａ）と融合タンパク（Ｂ）とからなる複合体を加温して、ビオチン固定化酵素（Ａ）と融合タンパク（Ｂ）を解離させ、該融合タンパク（Ｂ）として目的タンパクを分離・検出することを特徴とする請求項１項記載のタンパク等の分離・検出方法である。

本発明の請求項３に記載された発明は、ビオチン固定化酵素（Ａ）と融合タンパク（Ｂ）と目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）とからなる複合体を加温して、ビオチン固定化酵素（Ａ）から、融合タンパク（Ｂ）と目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を解離させ、該融合タンパク（Ｂ）に含まれる目的タンパクと、目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を分離・検出することを特徴とする請求項１項記載のタンパク等の分離・検出方法である。

本発明の請求項４に記載された発明は、目的タンパク質が、ビオチン担持タンパクの活性領域と融合した融合タンパクを形成していることを特徴とする請求項１〜３のいずれか１項記載のタンパク等の分離・検出方法である。

そして、本発明の請求項５に記載された発明は、ビオチン固定化酵素（Ａ）として、固相担体に固定化されたものを用いることを特徴とする請求項１〜４のいずれか１項記載のタンパク等の分離・検出方法である。

本発明によると、古細菌スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）の特異なビオチン化反応系をプロティンタグシステムとして活用し、新規なタンパク等の分離・検出、更には精製系が構築される。具体的には、ＢＣＣＰをタグとして利用し、目的のタンパクと融合させて細胞内で発現させる。一方で、酵素であるＢＰＬを固相担体に固定化し、タグを認識する物質として利用する。そして、ＢＣＣＰタグを有する目的タンパクを含む溶液を、ＢＰＬを固定化した固相担体と接触させビオチン化反応を行うことにより、固相担体上に目的タンパクを結合させ捕捉する。

本発明におけるタグシステムでは、ＢＰＬとビオチン化されたＢＣＣＰ間の結合を利用している。この結合は、後の実施例で示すように、ナノモラー（ｎＭ）オーダーの極めて高い親和性を有している。また、この結合は、ＢＰＬとＢＣＣＰのアミノ酸残基間及び、ＢＰＬとビオチン間の協同的な相互作用に基づいているため、既存のタグシステムのものよりも、明らかに結合特異性が高いものと考えられる。また、タグを認識する物質であるＢＰＬの分子量が２７ｋＤａと、抗体（１５０ｋＤａ）やアビジン（６８ｋＤａ）の分子量と比較して小さく、その分子表面積が小さいため、目的タンパク以外の非特異的な結合をより抑制することが可能である。

また、このＢＰＬ−ＢＣＣＰ間の結合は、温度上昇により解離するので、温度を上昇させるだけで、固相担体から目的タンパクを溶出させることができる。従って、既存の手法よりも分離・精製や検出・解析を迅速に行えることが期待される。更に、ＢＰＬは抗体やアビジンと異なり、大腸菌などの原核生物の発現系で容易に調製することが可能である。

本発明は、スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）由来のビオチン固定化酵素（Ａ）（ＢＰＬ）と、同じく古細菌由来のビオチン担持タンパク（ＢＣＣＰ）と目的タンパク質との融合タンパク（Ｂ）を用い、ＢＰＬの触媒作用によってＢＣＣＰをビオチン化させ、ＢＰＬとビオチン化されたＢＣＣＰが複合体を形成するという性質を利用するものである。かくして形成された複合体として、目的タンパクを分離・検出するものである。

上記と同じ反応は、前記ビオチン固定化酵素（Ａ）と、前記融合タンパク（Ｂ）と、目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）にも適用が可能であり、この場合にも、複合体が形成されるので、形成された複合体として、目的タンパクと、目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を分離・検出することができる。

本発明において用いられるスルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）は、容易に入手可能な古細菌である。スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）（ＪＣＭ１０５４５）は、理化学研究所生物基盤研究部微生物系統保存施設に保存されており、第三者の要求により分譲可能である。また、スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）は、その遺伝子が既に解析され知られている（例えば、Suzuki, T. et al., Extremophiles, 2002 Feb;6(1):39-44、Kawarabayashi,Y. et al.,
DNA Res. 8 (4), 123-140 (2001)）。そして、そのＤＮＡ断片は、独立行政法人製品評価技術基盤機構から入手が可能である。

ビオチン固定化酵素（ＢＰＬ）は、ビオチン担持タンパク（ＢＣＣＰ）のある特定のリジン残基に、ビオチンを共有結合で固定化する反応を触媒する酵素である。本発明者の知見によると、スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）由来のＢＰＬが、他の生物種由来のものには見られないいくつかの特徴を有している。その中の一つが、この酵素ＢＰＬが反応後、ビオチン化されたＢＣＣＰ（Holo ＢＣＣＰともいう）と極めて安定な複合体を形成するという性質である。本発明は、この特異なＢＰＬ−Holo ＢＣＣＰ間の結合を利用して、新規なプロティンタグシステムを構築するものである。

本発明において用いられる古細菌スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）由来のビオチン固定化酵素（ＢＰＬ）、及び同古細菌由来のビオチン担持タンパク（ＢＣＣＰ）
は公知のものである。このＢＰＬの分子量は２７ｋＤａで、ＢＣＣＰの分子量は１７ｋＤａであり、例えば、大腸菌を宿主として大量培養、発現精製を行うことができることが知られている（例えば、Sueda et al、Biochemical and Biophysical Research Communications 344(2006)155-159、Li et al、FEBS Letters
580(2006)1536-1540、末田ら、第６回日本蛋白質科学会年会 京都市 平成１８年４月２４日〜２６日、近藤ら、日本ビタミン学会第５８回年会 徳島市 平成１８年５月２７日〜２８日）。

本発明において、目的タンパク質が、ビオチン担持タンパクの活性領域と融合した融合タンパクを形成しているものが好ましい。ＢＣＣＰの構造は、他の生物由来のものに関する検討から、２つのドメインから構成されており、そのうちビオチン化に必要なのはＣ末側のドメインだけであることが示されている。また、このＣ末側のドメインに関しては、いくつかの生物由来のものに関して立体構造が解析されている。

本発明で使用したスルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）のＢＣＣＰに関しては、まだ、立体構造は分かっていないが、そのアミノ酸配列の相同性から判断して、他の生物のものとほぼ同様の構造を有しているものと推測できる。実際に、このスルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）のＢＣＣＰは、全長が１６７残基のタンパクであるが、そのＮ末から順次欠損させた一連のＢＣＣＰをＧＳＴとの融合タンパクとして構築し、ビオチン化反応並びにＢＰＬとの結合能を検討した。その結果、Ｃ末側のドメインだけに、相当する６７残基のＢＣＣＰだけでも、ビオチン化反応が起こり、また、ＢＰＬに対する強い結合が起こることが確認できた。本発明において、ビオチン担持タンパクの活性領域とは、ＢＣＣＰのＣ末側のドメインであって、ビオチン化反応を起こしうる領域を意味する。

一般にタグの構造としては、タグを認識する物質や固相担体と、目的タンパクとの間の立体障害を避けるために、ある程度の大きさを持ち、目的タンパクと固相担体等との間に一定の距離が保てるような構造を有していることが望ましいと考えられる。しかし、あまりタグが大きいと、目的タンパクへのタグ自身による立体障害が問題となってくる。そのような観点から、このＢＣＣＰのＣ末側ドメインは、７ｋＤａ程度の適度なサイズを有していることから、タグとして最適な構造を有していると考えられる。

複合体中の目的タンパク、あるいは目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を分離・検出する方法は、公知のどのような方法・手段を採用しても良い。特に、ビオチン固定化酵素（Ａ）として、固相担体に固定化されたものを用いるのが好ましい。

目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）とは、目的タンパクと結合し得る物質、例えば、その他のタンパク、ペプチド、ＤＮＡ、ＲＮＡ、糖鎖、脂質が挙げられる。例えば、固相担体上にＢＰＬを介して固定化された目的タンパクに対して、目的タンパクと結合し得る物質（Ｃ）を作用させ、これとの相互作用を表面プラズモン共鳴法（ＳＰＲ法）などを利用して評価する場合には、結合状態だけでなく、解離する過程も評価することも可能であるが、かかる場合も本発明の分離・検出方法に含まれるものである。

本発明はＢＣＣＰタグを導入した目的タンパクを、好ましくは、ＢＰＬを固定化した固相担体で捕捉し、その後、精製や解析を行うものであるが、具体的な手法に関しては、目的に応じて様々な形態が考えられる。例えば、細胞内で発現させた目的タンパクの分離・精製や、細胞内で目的タンパクと相互作用しているタンパクを同定・検出する、いわゆるプルダウアッセイに応用する場合には、ＢＰＬをガラスビーズや磁気ビーズなどの固相担体に共有結合で固定化する。一方で、ＢＣＣＰタグを有する目的タンパクを、細胞内で発現させる。そして、その細胞の破砕を行った後、細胞破砕溶液にＢＰＬ固定化ビーズを作用させビオチン化反応を行い、目的タンパクの捕捉を行う。その後、目的タンパクをビーズから溶出させ分離・回収を行う。目的タンパクに結合しているタンパクを同定・検出する場合には、その後、更に質量分析等を行い、タンパクの分析を行う。

一方、ＢＣＣＰタグを有する目的タンパクを固相担体へ固定化し、その後、その目的タンパクと結合親和性を有する物質（タンパク等）を作用させ、両者の相互作用を解析する場合には、分析手法に応じて、ＢＰＬを様々な固相担体（基板やセンサーチップ等）上に固定化する。その代表的な例としては、プロテインチップや表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）法を利用した、タンパク間相互作用解析等が挙げられる。

プロテインチップは、基板上に他種類の目的タンパクを固定化し、その後、それらに分析対象のタンパクを作用させ、相互作用を一度に解析する手法である。本発明をプロテインチップに応用する場合、基板上にＢＰＬを共有結合で固定化し、その後、ＢＣＣＰタグを有する複数の目的タンパクを、ＢＰＬを介して基板上に固定化する。その後、分析対象のタンパクを作用させ解析を行う。

また、ＳＰＲ法は、センサーチップ上に目的タンパクを固定化し、それと相互作用する物質をフローセル中に流すことにより、両者の相互作用を定量的に評価する方法である。本発明をこのＳＰＲ法に応用する場合、センサーチップ上にＢＰＬを共有結合で固定化し、その後、ＢＣＣＰタグを有する目的タンパクを、ＢＰＬを介してセンサーチップ上に固定化する。その後、分析対象の物質との相互作用を解析する。

本発明においては、ビオチン固定化酵素（Ａ）と融合タンパク（Ｂ）とからなる複合体を加温して、ビオチン固定化酵素（Ａ）と融合タンパク（Ｂ）を解離させることができる。そして 解離した融合タンパク（Ｂ）として目的タンパクを分離・検出することができる。
加温の温度は５０℃以上、好ましく６０℃以上である。

また、同じ反応は、ビオチン固定化酵素（Ａ）と融合タンパク（Ｂ）と目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）とからなる複合体を加温することによっても起こる。そして、この場合には、ビオチン固定化酵素（Ａ）から、融合タンパク（Ｂ）と目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を解離させ、得られた融合タンパク（Ｂ）に含まれる目的タンパクと、目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を分離・検出することができる。

以下、実施例により本発明を詳述するが、本発明はこれに限定されるものではない。実施例では、本発明の基本となっている、ビオチン化酵素ＢＰＬとその基質であるＢＣＣＰ間の結合を、図１に示すように表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）法により定量的に評価した。その後、実際の応用例として、目的タンパクとしてグルタチオン-S-トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）を選択し、ＧＳＴとＢＣＣＰの融合タンパクを構築し、その融合タンパクが、固相担体上のＢＰＬと迅速に反応し、ＢＰＬと結合することを同じくＳＰＲ法により確認した。また、温度上昇に伴いＢＰＬ−ＢＣＣＰ間の結合が解離することを、酵素活性を測定することにより確認した。以下にこれらを具体的に説明する。

［実施例１］センサーチップ上へのＢＰＬの固定化
ＳＰＲ法によりＢＰＬ−ＢＣＣＰ間の結合を評価するにあたり、センサーチップ上へＢＰＬの固定化を行った。なお、センサーチップはビアコア社製のSenosor Chip CM5を使用し、また、ＳＰＲ測定は同じくビアコア社製のBiacore Jを使用して行った。固定化はビアコア社製のプロトコールに従い、アミンカップリング法にて行った。具体的には、まずNHS/EDC混合液を利用し、センサーチップ表面のカルボキシル基を活性化した。その後、１０ｍＭ
酢酸緩衝液（pH 4.5）で、20μｇ／ｍｌに希釈したＢＰＬ溶液を添加し、センサーチップ表面にＢＰＬを固定化した。最後に、エタノールアミン溶液を添加し、残存している活性サイト修飾した。

［実施例２］センサーチップ上に固定化されたＢＰＬとApo型及びHolo型ＢＣＣＰの相互作用の測定
センサーチップ上に固定化されたＢＰＬに対して、ＢＣＣＰを作用させ、両者の相互作用を評価した。この際、ビオチンが付加される前のApo型のＢＣＣＰと、ビオチンが付加されたHolo型のＢＣＣＰに関してそれぞれ評価を行った。具体的には、図１に示すようにフローセルにＢＣＣＰを添加し、ＢＰＬとの結合に伴う物理量変化（反射光におけるエネルギー消失の見られる反射角度）をモニターすることにより、結合能を評価した。なお、この際ランニング緩衝液としては、HBS buffer（１０ｍＭ HEPES (pH 7.4),０．１５Ｍ NaCl）を使用した。

実際に０．２、０．５、１、２μＭのApoＢＣＣＰ及びHoloＢＣＣＰを添加した際に得られた、センサーグラムをそれぞれ図２の（Ａ）と（Ｂ）に示した。これより、ビオチンが付加されたHolo-ＢＣＣＰに関しては、試料添加に伴いレスポンスが大きく増大し、また、試料添加終了後もレスポンスが低下せずに、そのままの強度を維持していることがわかる。このことは、Holo-ＢＣＣＰはＢＰＬに一旦結合すると、殆ど解離が起こらないことを意味している。これらのセンサーグラムを解析し、解離定数を算出すると、ApoＢＣＣＰ、Holo ＢＣＣＰに対して、それぞれ７μＭ、４ｎＭ程度の値が得られた。HoloＢＣＣＰに対して算出されたこのナノモーラーオーダーの解離定数は、ＢＰＬとの極めて高い結合親和性を表している。

ここでこの解析結果から、ＢＰＬは、HoloＢＣＣＰだけでなく、ApoＢＣＣＰに対しても中程度の結合親和性を有していることがわかる。このことはＢＰＬとHoloＢＣＣＰ間の極めて高い結合親和性が、ＢＰＬとＢＣＣＰ部位、並びにＢＰＬとビオチン部位との、協同的な結合に基づいていることを意味している。このことは、上述のようにビオチン−アビジン結合を利用したプロテインタグシステムとは、一線を画する点である。アビジンはビオチンのみを認識して結合するため、このアビジンを利用したタグシステムでは、細胞内に元々存在するビオチン化タンパクも全て結合してしまう。その結果として、細胞溶液から目的のビオチンタグを有するタンパクを回収する場合には、必ず余分なタンパクも含んでいることになる。その点本発明のタグシステムでは、ＢＰＬのＢＣＣＰ及びビオチンとの協同的な結合を利用しているため、極めて特異性が高く、原理的に目的タンパクのみを回収できるものと考えられる。

［実施例３］センサーチップ上でのビオチン化反応の確認
実際の応用では、固相担体上に固定化されたＢＰＬによって迅速にApoＢＣＣＰに対してビオチンの付加反応が起こる必要がある。この点を確認するために、０．１ｍＭ
ビオチン、１ｍＭ ＡＴＰ、５ｍＭ ＭｇＣｌ_２を含むＨＢＳ bufferをランニング緩衝液として使用し、ＢＰＬ固定化センサーチップに対して、ApoＢＣＣＰを添加し、固相担体上でのビオチン化反応について検討した。実際に０．２、０．５、１、２μＭのApoＢＣＣＰを添加し、ビオチン化反応を行った際に得られたセンサーグラムを図３に示した。これより得られたセンサーグラムは、HoloＢＣＣＰを添加した場合（図２の（Ｂ））と同様なものとなり、センサーチップ上でも迅速にビオチンの付加反応が起こり、Holo ＢＣＣＰが生成していることが確認できた。

［実施例４］センサーチップ上でのＢＰＬとＧＳＴ−ＢＣＣＰ融合タンパクの結合
実際の応用例として、目的タンパクとしてグルタチオン-S-トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）を利用し、ＧＳＴとＢＣＣＰの融合タンパクを調製し、そのＢＰＬとの結合を確認した。ＧＳＴ−ＢＣＣＰ融合タンパクを調製するにあたり、まず大腸菌系での発現プラスミドを構築した。発現プラスミドとしては、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製のＧＳＴ発現プラスミド（pGEX-4T-1）を使用し、ＧＳＴをコードする遺伝子のＣ末端側に、ＢＣＣＰをコードする遺伝子を導入し、ＧＳＴ−ＢＣＣＰ発現プラスミドを構築した。構築した発現プラスミドで、大腸菌を形質転換し培養を行った。その後菌破砕を行い、グルタチオンカラム処理を行うことにより、ＧＳＴ融合タンパクを精製した。なお、ＢＣＣＰをＧＳＴとの融合タンパクとして構築するに際しては、ＢＣＣＰのＣ末側６７残基のドメインだけを用い、ＧＳＴとの融合タンパクを得た。

精製したＧＳＴ融合タンパクに関して、実施例３と同様に、センサーチップ上に固定化したＢＰＬによるビオチン化反応を検討した。その結果、この融合タンパクに関しても、センサーチップ上で迅速にビオチンの付加が起こり、ＢＰＬに対する結合が起こることが確認できた。図４に、１μＭと２μＭのＧＳＴ融合タンパクを添加し、ビオチン化反応を行った際のセンサーグラムを示した。この図４より、ＧＳＴ−ＢＣＣＰの添加を終了しても、レスポンスは殆ど低下せずに、ＧＳＴ−ＢＣＣＰはＢＰＬに結合したままであることがわかる。

［実施例５］ＢＰＬ−ＢＣＣＰ間の結合の温度依存性
ＢＰＬ−ＢＣＣＰ間の結合が、温度上昇に伴い解離することを、酵素反応活性を測定することにより確認した。具体的には、様々な温度条件で反応生成物量の経時変化を追跡した。その結果を図５に示した。図５より、低温では、使用した酵素量分だけ反応生成物が生じた後、それ以降は殆ど生成物量は増大しないが、反応温度の上昇に伴い、時間と共に反応生成物量が増大していくのがわかる。このことは、低温では、ＢＰＬと生成物であるHolo ＢＣＣＰが安定な複合体を形成するため、１サイクル目で反応が停止するが、反応温度を上昇させると、複合体が解離し、反応がターンオーバーするようになることを示している。つまり、ＢＰＬとHoloＢＣＣＰ間の結合が、温度上昇により解離することを意味している。

本発明は、タンパク等の分離、精製、同定、検出、並びにタンパク間相互作用の解析などの分野で、広く利用することができる。

ビオチン化酵素ＢＰＬとその基質であるＢＣＣＰ間の結合を、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）法により測定するときの説明図である。 ApoＢＣＣＰ及びHoloＢＣＣＰを添加した際に得られた、センサーグラムを示す図である。 ApoＢＣＣＰのセンサーチップ上でのビオチン化反応で得られた、センサーグラムを示す図である。 ＧＳＴ−ＢＣＣＰ融合タンパクのセンサーチップ上でのビオチン化反応で得られた、センサーグラムを示す図である。 ＢＰＬ−ＢＣＣＰ間の結合が、温度上昇に伴い解離する様子を示す図である。

Claims (5)

1. スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）由来のビオチン固定化酵素（Ａ）と、該ビオチン固定化酵素の触媒作用によってビオチン化された、スルホロバス・トウコウダイ（Sulfolobus tokodaii）由来のビオチン担持タンパクと目的タンパク質との融合タンパク（Ｂ）とから複合体を形成させ、又は、前記ビオチン固定化酵素（Ａ）と、前記融合タンパク（Ｂ）と、目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）とから複合体を形成させ、該複合体として、前記目的タンパク、又は、前記目的タンパクと前記目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を分離・検出することを特徴とするタンパク等の分離・検出方法。
2. ビオチン固定化酵素（Ａ）と融合タンパク（Ｂ）とからなる複合体を加温して、ビオチン固定化酵素（Ａ）と融合タンパク（Ｂ）を解離させ、該融合タンパク（Ｂ）として目的タンパクを分離・検出することを特徴とする請求項１項記載のタンパク等の分離・検出方法。
3. ビオチン固定化酵素（Ａ）と融合タンパク（Ｂ）と目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）とからなる複合体を加温して、ビオチン固定化酵素（Ａ）から、融合タンパク（Ｂ）と目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を解離させ、該融合タンパク（Ｂ）に含まれる目的タンパクと、目的タンパクと結合親和性を有する物質（Ｃ）を分離・検出することを特徴とする請求項１項記載のタンパク等の分離・検出方法。
4. 目的タンパク質が、ビオチン担持タンパクの活性領域と融合した融合タンパクを形成していることを特徴とする請求項１〜３のいずれか１項記載のタンパク等の分離・検出方法。
5. ビオチン固定化酵素（Ａ）として、固相担体に固定化されたものを用いることを特徴とする請求項１〜４のいずれか１項記載のタンパク等の分離・検出方法。
   
   
   

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