JP4997397B2 - 糸状菌およびこれを用いた樹脂の分解方法 - Google Patents
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Description
まず、ぺトリ皿上で0.5mmの厚さに調製したPDA培地(DIFCO社製)から、滅菌したカッターナイフを用いて約10mm四方の培地片を切り出し、滅菌したスライドガラス上に置く。続いて、麦芽エキス斜面培地で30℃、4日間培養したフザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P7株およびフザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P2株の菌糸をそれぞれ1白金耳接種し、カバーグラスをかけ、その三方をワセリンで固定する。その後、30℃で培養しながら12時間ごとに検鏡する。
麦芽エキス寒天培地、ツァペック寒天培地およびサブロー寒天培地の3種の培地(なお、各培地ともpH7.0に調整しておく)上にP7株およびP2株を植菌して、各培地上の生育性、コロニーの表面の形状・色調、コロニー裏面の色調を観察すると、このP7株は、すべての培地で生育するとともに、以下A〜Cで示すようなコロニー形態を観察することができる。また、P2株についても、すべての培地で生育するとともに、以下D〜Fで示すようなコロニー形態を観察することができる。
A)麦芽エキス寒天培地 表面:白色の菌糸を有し、群集状態となる。
裏面:白色に近い淡黄色の菌糸を有し、ビロード状となる。
B)ツァペック寒天培地 表面:透明に近い淡白色の菌糸を有し、群集状態となる。
裏面:透明に近い淡白色の菌糸を有し、群集状態となる。
C)サブロー寒天培地 表面:白色の菌糸を有し、群集状態となる。
裏面:淡白色の菌糸を有し、ビロード状となる。
D)麦芽エキス寒天培地 表面:白色の菌糸を有し、群集状態となる。
裏面:濃黄色の菌糸を有し、ビロード状となる。
E)ツァペック寒天培地 表面:透明に近い淡白色の菌糸を有し、表面に薄く広がる。
裏面:透明に近い淡白色の菌糸を有し、表面に薄く広がる。
F)サブロー寒天培地 表面:透明に近い白色の菌糸を有し、群集状態となる。
裏面:茶色に近い橙色の菌糸を有し、ビロード状となる。
麦芽エキス培地を用いてP7株およびP2株を液体培養すると、温度を30℃に、振とう速度を200spmに固定した場合には、pH5以上10以下の範囲、特にpH6以上9以下の範囲において良好な生育を示し、pH11では生育しないことが観察される。P7株の生育に最適なpHは8であり、P2株の生育に最適なpHは7である。また、pHを7.0に、振とう速度を200spmに固定した場合には、P7株は、15〜40℃の範囲、特に25〜35℃の範囲において良好な生育を示し、4℃以下および45℃以上では生育しないことが観察される。また、この場合、P2株は、10〜45℃の範囲、さらには25〜45℃の範囲、特に30〜40℃の範囲において良好な生育を示し、4℃以下および50℃以上では生育しないことが観察される。
まず、P7株の培養平板から、公知の方法を用いてゲノムDNAを抽出する。例えば、DNeasy Plant Mini Kit(キアゲン社製)を用いることができる。次に、このゲノムDNAをテンプレートとし、所定のプライマーを用いて、18S rDNA 3’末端〜28S rDNA−D1/D2領域DNAフラグメントのPCR増幅を行う。その後、公知のシークエンサー等を用いて、P7株における28S rDNA D1/D2領域の塩基配列を得る。例えば、ABI PRISM 3100 DNA Sequencer(アプライド・バイオシステムズ社製)とAuto Assembler(アプライド・バイオシステムズ社製)とを組み合わせて用いることができる。続いて、配列検索ツール(BLAST)を用い、国際DNAデータベース(GenBank/EMBL/DDBJ)から、P7株における上記塩基配列に対する相同性検索を行う。
Fusarium lichenicola CBS115.40 (AY097325) ・・・ 99.7%
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Fusarium solani CBS490.63 (AY097316) ・・・ 99.3%
RAPD(Random Amplified Polymorphic DNA)法に基づき、下記表1で示す10種類のPCRプライマー(RAPD-01〜10)を用いて、P2株と、Fusarium falciforme CBS101427およびFusarium falciforme CBS475.67との間のゲノムDNAの多型を比較すると、全てのプライマーにおいて、各検体間で異なるバンドパターンを示すPCR増幅産物が検出され、これら3種の検体は相同でないことが確認される。
まず、ポリブチレンサクシネートを主成分とする試験用樹脂(昭和高分子株式会社製 ビオノーレ#1020)の成型品(図2参照、表面積:557mm2)を、イオン交換水を満たしたビーカーに入れ、超音波洗浄機(ヤマト科学株式会社製 BRANSONIC5200)を用いて1時間洗浄した。次に、当該成型品を70体積%のエタノール水溶液で洗浄し、50℃の恒温器中で2日間乾燥させた後に質量を測定し、試験用樹脂成型品の初期質量とした。
図3で示すように、培養プレート3内に配置した、下記表2で示す組成のLB+グルコース寒天培地2上に、滅菌後の試験用樹脂成型品1を置くとともに、フザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P7株4を、当該成型品1を取り囲むようにして、培地2上の三箇所に白金耳5で植菌し、30℃の恒温環境下で静置培養を行った。なお、新しい寒天培地への植え継ぎは1週間毎に行い、合計して28日間の培養を行った。菌体の植え継ぎに際しては、図3で示すように、寒天培地2上に新たな植菌を行わず、成型品1とともに、当該成型品に付着した菌体6を移し替えることにより行った。
実施例2は、試験用樹脂成型品として、ポリブチレンサクシネート・アジペートと米澱粉とを主成分とする試験用樹脂(信和株式会社製 ライスプラ フローラ タイプA)の成型品を用いたこと以外は、上記実施例1と同様にして分解試験を行った実験例である。なお、当該成型品の外形やサイズは実施例1で用いた成型品に等しい。
実施例3は、フザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P7株に代えて、フザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P2株を植菌したこと以外は、上記実施例1と同様にして分解試験を行った実験例である。
実施例4は、フザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P7株に代えて、フザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P2株を植菌したこと以外は、上記実施例2と同様にして分解試験を行った実験例である。
比較例1は、固体培地に代えて液体培地(100ml)を用い、当該液体培地中にフザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P7株およびP2株を植菌せず、未植菌状態として、30℃の恒温環境下で28日間、200spm(毎分ストローク数)で、坂口フラスコ内にて振とう培養したこと以外は、上記実施例1と同様にして分解試験を行った実験例である。なお、液体培地としては、上記表2に記載の培地組成から寒天成分を取り除いたLB+グルコース培地、または下記表3で示すLB培地を用いた。
比較例2は、試験用樹脂成型品として、ポリブチレンサクシネート・アジペートと米澱粉とを主成分とする試験用樹脂(信和株式会社製 ライスプラ フローラ タイプA)の成型品を用いたこと以外は、上記比較例1と同様にして分解試験を行った実験例である。
2 培地
3 培養プレート
4 フザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P7株
5 白金耳
6 成型品に付着した菌体
Claims (8)
- フザリウム(Fusarium)属に属する糸状菌であって、ポリブチレンサクシネート系樹脂の分解能を有する、フザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P7株(FERM P-20610)またはフザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P2株(FERM P-20804)である、糸状菌。
- さらに米澱粉の分解能を有する、請求項1に記載の糸状菌。
- フザリウム(Fusarium)属に属する糸状菌を樹脂に接触させ、当該樹脂を分解する、樹脂の分解方法であって、前記樹脂がポリブチレンサクシネート系樹脂であり、前記糸状菌が、フザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P7株(FERM P-20610)またはフザリウム・エスピー(Fusarium sp.)P2株(FERM P-20804)である、樹脂の分解方法。
- 前記ポリブチレンサクシネート系樹脂に代えて、米澱粉とポリブチレンサクシネート系樹脂とを含む樹脂に、前記糸状菌を接触させる、請求項3に記載の分解方法。
- 前記糸状菌と前記ポリブチレンサクシネート系樹脂とを、土壌中にて接触させる、請求項3に記載の分解方法。
- 前記糸状菌と前記ポリブチレンサクシネート系樹脂とを、25℃以上35℃以下の範囲にある温度環境下で接触させる、請求項3に記載の分解方法。
- 前記糸状菌と前記ポリブチレンサクシネート系樹脂とを、30℃以上40℃以下の範囲にある温度環境下で接触させる、請求項3に記載の分解方法。
- 前記糸状菌と前記ポリブチレンサクシネート系樹脂とを、pHが6以上9以下の範囲にあるpH環境下で接触させる、請求項3に記載の分解方法。
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