JP4889054B2 - ドセタキセル免疫測定方法 - Google Patents
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Description
・器官機能
・遺伝子調節
・病状
・年齢
・薬物間相互作用
・薬物接摂取時間
・投薬の方法
・投薬に関するテクニック
この可変性の結果、異なる個人が同じ薬を等しい量で服用して、結果的に劇的に異なる臨床結果をもたらされることもある(非特許文献1参照)。同じドセタキセル投薬の有効性は、個々の薬物クリアランスおよび患者の中の最終の血清薬物濃度に基づいて著しく変わる。治療薬管理によって、臨床医は静脈注射用薬の投与で患者の個々の変化を洞察することができるだろう。治療薬管理によって、患者への投薬を個別的に取り扱うことができるかもしれない。また、望まない副作用なしで癌を有効に治療する見込みは、はるかに高いだろう。
この記述の全体にわたって、次の定義の意に解釈される。
免疫測定方法を構築する際、ドセタキセルの共役は、抗体上の結合部位に対して試料中のドセタキセルと競合するために構築される。本発明の免疫測定方法では、試薬は、担体と、a)一般式II−Aの化合物の10位置換ドセタキセル誘導体、b)一般式II−Bの7−ドセタキセル誘導体、及びc)一般式II−Cのドセタキセルの7,10位二置換誘導体又はそれの混合物との共役である。一般式III−A、III−B及びIII−Cの化合物では、リンカースぺーサは、この分子の‘−B−(Y)p−X´−’の部分を構成する。リンカーX´及びスぺーサ‘−B−(Y)p−’は、共役及び免疫原の従来の生成方法で生成される。免疫測定方法のために共役と免疫原を生成するために利用される、従来のスペーサー結鎖基(spacer-linking group)のうちのどれでも、一般式III-A,III−B及びIII−Cの化合物において使用することができる。そのような従来のリンカーおよびスペーサは米国特許5,501,987及び米国特許5,101,015に開示されている。
式中、p、Y及びXは上述のとおりである。
NH−CH2−(Y)p−X VI
(式中、X、Y及びpは上述のとおりである)
のアミノ化合物とを反応させることにより生成される。
本発明は、さらに前述の免疫原の利用により生成されたドセタキセルに対するモノクロナール抗体を含む新規の抗体に関する。本発明によれば、本発明に従って生成されたこれらの抗体は、ドセタキセルに反応的で、ドセタキセル免疫測定法を邪魔するドセタキセル誘導体の代謝物質と反応しないことが分かった。さらに、本発明の抗体は、実質的にタキソールに反応しない。タキソールは、その化学名はパクリタクセルであり、ドセタキセル又はタキソール環構造を含む10−O−デアセチルバッカチンIIIのような化合物のようなドセタキセルである。化合物10−O−デアセチルバッカチンIIIは一般式
本発明によれば、一般式II−A、II−B及びII−Cの化合物又はそれの混合物の免疫原から生じた共役および抗体は、患者試料中のドセタキセルの測定試薬として利用することができる。この測定は免疫測定法によって行なわれる。一般式II−A、II−B及びII−Cの化合物から形成された試薬共役は、本発明に従って生じた抗体中の結合部位に向けて試料中のドセタキセルと競合するどんな免疫測定法も、患者試料中のドセタキセルの存在を決定するために使用することができる。ドセタキセルを含んでいるという疑いをかけられた試料中のドセタキセルの測定を行うための方法は、(a)水性媒質試料、(b)本発明に従って生成されたドセタキセルの抗体、(c)一般式II−A、II−B及びII−Cの化合物又はそれの混合物から形成された共役を、混合することを含む。試料中のドセタキセル量は、試料と抗体との混合物に既知量で加えられた共役の特異抗体への結合の阻害を測定することにより決定することができる。未知の試料による既知量の共役のそのような結合の阻害の結果は、ドセタキセルの既知の標準溶液を使用して同じ測定で得られた結果と比較される。未知の試料中のドセタキセルの量を測定する際、試料、一般式II−A、II−B及びII−Cの化合物から形成された共役、および抗体は、任意の順に加えられてもよい。
例において、次の略語は、下記に指し示すように使用される。
EA エチルアルコール
MeOH メタノール
EtOAc 酢酸エチル
DCM ジクロロメタン
DMAP ジメチルアミノピリジン
Et3N トリエチルアミン
NHS N−ヒドロキシ−スクシンイミド
EDC 1−(3−ジメチルアミノプロピル)−3−エチルカルボジイミド塩酸塩
TLC 薄層クロマトグラフィー
KLH キーホールリンペットヘモシアニン
ANS 8−アニリノ-1-ナフタリンスルホン酸
i.p. 腹腔内の
HRP 西洋わさびペルオキシダーゼ
TMB 3,3´,5,5´―テトラメチルベンチジン
TRIS トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン塩酸塩
BSA ウシ血清アルブミン
BTG ウシチログロブリン
PBS リン酸塩緩衝生理的食塩水
HEPES 4−(2−ヒドロキシエチル)ピペラジン−1−エタンスルホン酸
di 脱イオン水
例において、図式1及び図式2は、例の番号に従って生成され言及された特異化合物を下記に示す。図式は以下の通りである。
(例1)
C7,C10ドセタキセルジアシッド誘導体[4]の生成 図式1
ドセタキセル[1](500mg)を、アルゴンを連続的に流した状態で、新しく蒸留して得たジクロロメタン20mlが入った三つ口フラスコに加えた。温度を−15℃に保ち、その時にジイソプロピルエチアミン(2当量)及びアリルクロロギ酸塩(1.1当量)を加えた。反応混合物温度を室温にし、5時間攪拌した。ジクロロメタン20mlを加え、混合物を0.1Nの塩酸(60ml)で洗浄し、Na2SO4で乾燥し、ロータリーエバポレータで濃縮した。そのままの物質を、EtOAc/DCMのグラディエント(30%EtOAc:71%DCM)のシリカゲルカラムで精製し、オフホワイト固形物の[2](468mg、84.78%)を得た。
化合物[4]からの活性化C7,C10ドセタキセルジアシッド誘導体の生成
ジグルタル酸誘導体[4](125.1mg、0.121mmol)を無水のDMSO10ml中に溶解した。窒素下攪拌しながら、EDC(102.4mg、0.534mmol、4.4当量)の後に続いてN-ヒドロキシスルホスクシンイミドナトリウム塩(114.7g、0.528mmol、4.4当量)を加えた。追加EDCを加えた時(96mg、0.501mmol、4.15当量)、反応を室温で夜通し起こした。室温で継続的に起こされた7時間の反応後、反応はTLCによって完了した。TLC条件は、酢酸2滴を伴う酢酸エチル:ジクロロメタン(3:2)だった。
活性化C7,C10ドセタキセルジアシッド誘導体を伴うドセタキセル−BSA共役(1:1比率)の生成
氷上で攪拌しながら50mMリン酸緩衝液(50mM、pH7.5)中にBSA(50mg/mL)を溶解した20ml溶液に、例2で生成された活性化N−ヒドロキシスルホスクシンイミドエステルドセタキセル誘導体1.34mL(0.016mmol)を滴下して加えた。BSAに対するジアシッド共役を生成するため、室温で反応混合物を夜通し攪拌した。その後この共役は、以前に記載した手順(Wu et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998)に従って透析によって精製され、特色づけられた。
BTGを伴うC7,C10ドセタキセルジアシッド誘導体免疫原の生成
氷上で攪拌しながらリン酸緩衝液(50mM、pH7.5)中にBTG(32.9mg/mL)を溶解した6.1ml溶液に、例2で生成された活性化N−ヒドロキシスルホスクシンイミドエステルドセタキセル誘導体5.1mL(0.0617mmol)を滴下して加えた。BTGに対するジアシッド共役を生成するため、室温で反応混合物を夜通し攪拌した。その後免疫原共役は、以前に記載した手順(Wu et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998)に従って透析によって精製され、特色づけられた。
KLHを伴うC7,C10ドセタキセルジアシッド誘導体免疫原の生成
氷上で攪拌しながらリン酸緩衝液(50mM、pH7.5)中にKLH(8.9mg/mL)を溶解した5.4ml溶液に、例2で生成された活性化N−ヒドロキシスルホスクシンイミドエステルドセタキセル誘導体5.1mL(0.0145mmol)を滴下して加えた。KLHに対するジアシッド共役を生成するため、室温で反応混合物を夜通し攪拌した。その後免疫原共役は、以前に記載した手順(Wu et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998)に従って透析によって精製され、特色づけられた。
C7置換ドセタキセル酸誘導体[6]の生成 図式2
窒素下、DCM(6ml)中にアロック保護ドセタキセル、[2](201mg、0.23mmol)及びDMAP(110mg、0.9mmol)を溶解した溶液に、p−ニトロフェニルクロロギ酸塩(54.6mg、0.27mmol)に続いてEt3N(0.9mmol、0.13mL)を加えた。反応混合物を室温で3.5時間攪拌し、その後DCM(2mL)中に6−アミノ−ヘキサン酸アリルエステル(52.6mg、0.29mmol)を溶解した溶液を加えた。得られる混合物を室温で夜通し攪拌した。DCMを真空下で除去し、そのままの物質をEtOAc/ヘキサンのグラディエント(Rf=0.39、50%EtOAc/ヘキサン)のシリカゲルカラムで精製し、オフホワイト粘性ゴムとして[5](81.4mg、35%)を得た。
化合物[6]からの活性化C7置換ドセタキセル酸誘導体の生成
誘導体[6](39.6mg、0.042mmol)を無水DCM5mLに溶解した。窒素下攪拌しながらEDC(24.0mg、0.126mmol、3.0当量)の後に続いてNHS(14.5mg、0.126mmol、3.0当量)を加えた。室温で29時間反応を起こさせ、その後、塩酸(3mL、0.3N)及びDCM15mLを加えることによって急冷した。混合物を10分間攪拌し、有機相を分離し、乾燥(Na2SO4)し、濾過し、DCMを真空内で除去し、オフホワイトのアモルファスの固形物を得た。
活性化C7置換ドセタキセル酸誘導体を伴うドセタキセル-BSA共役(1:1比率)の生成
例6で生成された活性化エステルを700μLのDMSOに溶解し、この溶液50μLをBSA溶液(4mLDMSO/4mL50mMリン酸塩、pH7.5)に滴下法で加えた。BSAの共役とドセタキセル誘導体[6]を生成するため溶液を室温で24時間攪拌した。この共役を前述した手順(Wu et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998)で透析によって精製した。
BTGを伴うC7置換ドセタキセル酸誘導体免疫原の生成
氷上で攪拌している50mMリン酸緩衝液(50mM、pH7.5)中にBTG(21.1mg/mL)を溶解した6.3mlの溶液に、12.6mLのDMSOをゆっくり滴下法で加えた。この溶液に、例7(650μL、DMSO中に62mg/mL)で生成したC7置換ドセタキセル(誘導体[6])の活性化NHSエステルを滴下法で加えた。C7ドセタキセル誘導体にBTGを共役させるために、生じる混合物を室温で夜通し攪拌した。その後免疫原共役は、以前に記載した手順(Wu et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998)に従って透析によって精製され特色づけられた。
KLHを伴うC7置換ドセタキセル酸誘導体免疫原の生成
66.6%DMSO/43.4%50mMリン酸緩衝液(50mM、pH7.5)中にKLH(4.92mg/mL)を溶解した27.02mlの溶液に、例7(1000μL、DMSO中に62mg/mL)で生成したC7置換ドセタキセル(誘導体[6])の活性化NHSエステルを滴下法で加えた。C7ドセタキセル誘導体にKLHを共役させるために生じる混合物を室温で夜通し攪拌した。その後免疫原共役は、以前に記載した手順(Wu et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998)に従って透析によって精製され、特色づけられた。
C7,C10ドセタキセルジアシッド誘導体抗体の生成
10匹の雌のBALB/cのマウスを、完全フロイントアジュバントで乳化された、例4で生成したドセタキセル−BTG又は例5で生成したドセタキセル−KLHのどちらかのドセタキセル免疫原で、一匹につき100μg、腹腔内投与(i.p.)で免疫した。マウスに、不完全フロイントアジュバントで乳化された同じ免疫原を一匹につき100μgで最初の注射の4週間後に追加免疫した。追加免疫テストの6〜10日後、各マウスからの出血を、眼窩出血によって得た。マウスそれぞれからのドセタキセル抗体を含む最後のテスト出血からの抗血清は、ドセタキセルへの反応性及び10−O−デアセチルバッカチンIII及びパクリタクセル[タキソール]への交差反応性を測定するために、例14a及び15の手順によって評価した。ドセタキセルに対して選択的で10−O−デアセチルバッカチンIIIを伴うドセタキセルに交差反応性を有する抗体を有する抗血清及びこれらの選別手順によって測定された6%以下のパクリタクセルだけが選択された。
C7置換ドセタキセル酸誘導体抗体の生成
10匹の雌のBALB/cのマウスを、完全フロイントアジュバントで乳化された、例9aで生成したドセタキセル−BTG又は例9bで生成したドセタキセル−KLHのどちらかのドセタキセル免疫原で、一匹につき100μg、腹腔内投与(i.p.)で免疫した。マウスは、不完全フロイントアジュバントで乳化された同じ免疫原を一匹につき100μgで最初の注射の4週間後に追加免疫した。追加免疫テストの10日後、各マウスからの出血を、眼窩出血によって得た。マウスそれぞれからのドセタキセル抗体を含む最後のテスト出血からの抗血清は、ドセタキセルへの反応性及び10−O−デアセチルバッカチンIII及びパクリタクセル[タキソール]への交差反応性を測定するために、例14a及び16の手順によって評価した。ドセタキセルに対して選択的で10−O−デアセチルバッカチンIIIを伴うドセタキセルに交差反応性を有する抗体を有する抗血清及びこれらの選別手順によって測定された6%以下のパクリタクセルだけが選択された。
C7,C10ドセタキセルジアシッド誘導体―BSA共役を伴うマイクロタイタープレート感作手順
酵素免疫測定法(ELISA)によって抗体を選別し、ドセタキセル濃度を測定する目的のために、タンパク質結合に最適化されたプレートにつき96ウェルを含むポリスチレンマイクロタイタープレートを用いた。pH9.6の0.05M重炭酸ナトリウム中に10μg/mLでドセタキセル―BSA共役を混合したもの300μLを加え、室温で3時間培養することによって、各ウェルをドセタキセル−BSA共役(例3でのように生成)でコーティングした。ウェルをpH9.6の0.05M重炭酸ナトリウムで洗浄し、その後5%スクロース、0.2%カゼインナトリウム溶液400μLで室温で30分間ブロックした。ポストコート溶液を除去したのち、プレートを37℃で夜通し乾燥した。
C7置換ドセタキセル酸誘導体―BSA共役を伴うマイクロタイタープレート感作手順
酵素免疫測定法(ELISA)によって抗体を選別しドセタキセル濃度を測定する目的のために、タンパク質結合に最適化されたプレートにつき96ウェルを含むポリスチレンマイクロタイタープレートを用いた。pH9.6の0.05M重炭酸ナトリウム中に10μg/mLでドセタキセル―BSA共役を混合したもの300μLを加え、室温で3時間培養することによって、各ウェルをドセタキセル−BSA共役(例8でのように生成)でコーティングした。ウェルをpH9.6の0.05M重炭酸ナトリウムで洗浄し、その後5%スクロース、0.2%カゼインナトリウム溶液400μLで室温で30分間ブロックした。ポストコート溶液を除去したのち、プレートを37℃で夜通し乾燥した。
抗体選別手順−滴定量
抗体を酵素免疫測定法(ELISA)によって選別した。ドセタキセル抗体(例10及び11で生成される)を選別するこの方法は、例12及び13で記載されるようなドセタキセル―BSAで感作されたマイクロタイタープレートで行なった。抗体選別検査を、ドセタキセル抗体を含む抗血清を、0.1%BSA及び0.01%チメロサールを含むリン酸緩衝生理食塩水で1:100、1:1000、1:10,000及び1:100,000に希釈することによって行った。感作されたドセタキセル―BSAウェル(例12,13で生成)のそれぞれのウェルに、希釈抗体100μLを加え、振動させながら室温で10分間培養した。この培養中、抗体はウェル内でドセタキセル共役に結合する。未結合抗体を除去するために、プレートのウェルを、3回、0.02Mのトリス、0.9%塩化ナトリウム、0.5%Tween−80及び0.001%チメロサール、pH7.8で、洗浄した。ウェル内でドセタキセル―BSA共役に結合するドセタキセル抗体の量を検出するために、培養基で培養する時、特にマウス科の免疫グロブリンに結合可能で有色の生成物を生成することが可能な、0.1%BSA、0.05%ANS、0.01%チメロサールを伴うPBSに予め決められた比活性に希釈(約1/2400)されたヤギ抗マウス抗体―HRP酵素共役(ジャクソン イムノリサーチ)100μLを、各ウェルに加えた。振動させながら室温で10分間培養した後、ヤギ抗マウス抗体―HRP酵素共役がウェル内でドセタキセル抗体に結合する間、未結合ヤギ抗マウス抗体―HRP酵素共役を除去するために、プレートを再び3回洗浄した。ウェル内に適度な色をつけるために、洗浄後TMB(TMB Liquid Substrate、HRP用培養基)100μLを加え、室温で振動させながら10分培養する間に適度な色をつけた。着色のための培養に続いて、停止液(1.5%フッ化ナトリウムの脱イオン水)50μLを着色を停止するために各ウェルに加え、10秒間の振動後、650nmの吸光度を96ウェルプレートリーダ-で測定した。ウェル内の抗体量は、測定される吸光度に比例し、1.5の吸光度となる希釈(滴定量)として表わされる。滴定量は、測定された抗体の抗体希釈(x軸)対650nmでの吸光度(y軸)をログで図示し、1.5の吸光度での滴定量を推定することによって測定される。滴定量は、例15及び16に記載された間接競合マイクロタイタープレート測定で使用された抗体の濃度(希釈)を決定した。
抗体選別手順―モノクロナール選別
抗体を酵素免疫測定法(ELISA)によって選別した。ドセタキセルモノクロナール抗体(例11で生成される)を選別するこの方法は、例13で記載されるようなドセタキセルC7置換―BSA(例8)で感作されたマイクロタイタープレートで行なった。ドセタキセルC7置換―BSA感作ウェル(例13で生成)の各ウェルに、0.1%BSA及び0.01%チメロサールを含む50μLリン酸緩衝生理食塩水と、そして次にモノクロナール培養上澄み50μLを加え、10分間室温で振動させながら培養した。この培養の間、抗体はウェル内でドセタキセルC7置換共役に結合する。未結合抗体を除去するために、プレートのウェルを3回、0.02Mトリス、0.9%塩化ナトリウム、0.5%Tween−80及び0.001%チメロサール、pH7.8で、洗浄した。ウェル内でドセタキセルC7置換―BSA共役に結合するドセタキセル抗体の量を検出するために、培養基で培養する時、特にマウス科の免疫グロブリンに結合可能で有色の生成物を生成することが可能な、0.1%BSA、0.05%ANS、0.01%チメロサールを伴うPBS中に予め決められた比活性に希釈(約1/2400)されたヤギ抗マウス抗体―HRP酵素共役(ジャクソン イムノリサーチ)100μLを各ウェルに加えた。振動させながら室温で10分間培養した後、ヤギ抗マウス抗体―HRP酵素共役がウェル内でドキソルビシン抗体に結合する間、未結合ヤギ抗マウス抗体―HRP酵素共役を除去するためにプレートを再び3回洗浄した。ウェル内に適度な色をつけるために、洗浄後TMB(TMB Liquid Substrate、HRP用培養基)100μLを加え、室温で振動させながら10分培養する間に着色した。着色のための培養に続いて、停止液(1.5%フッ化ナトリウムの脱イオン水)50μLを着色を停止するために各ウェルに加え、10秒間の振動後、96ウェルプレートリーダ−で650nmの吸光度を測定した。ウェル内の抗体量は、測定される吸光度に比例した。バックグラウンドの3倍以上の大きい吸光度を有する試料を陽性とした。
C7、C10ドセタキセルジアシッド誘導体共役の抗体におけるIC50及び交差反応性を測定する間接競合マイクロタイタープレート免疫測定手順
ドセタキセル濃度を間接競合酵素免疫測定法(ELIZA)によって測定した。ドセタキセル濃度を測定するこの方法を、例13に記載するドセタキセル―BSAで感作したマイクロタイタープレートで行った。ドセタキセル、パクリタクセル及び10−O−デアセチルバッカチンIIIは、0.01〜10,000ng/mLの濃度範囲の間で、0.1%BSA及び0.01%チメロサールを伴うPBS中に10倍希釈された。測定は、例14aで測定された滴定量に希釈された50μLの抗体(例5の免疫原を用いて例10で生成)で測定するために、50μLの分析物を培養することによって行った。10分間の培養(振動を伴うローテーター(R.T.))の間、ウェル内のドセタキセル共役及び溶液中の分析物に結合する抗体の競合が生じる。この培養に続いて、結合しないあらゆる物質を除去するために、プレートのウェルを、0.02Mトリス、0.9%塩化ナトリウム、0.5%Tween−80及び0.001%チメロサール、pH7.8で、3回洗浄した。ウェル内のドセタキセル―BSA共役に結合したドセタキセル抗体の量を検出するために、培養基で培養するとき、特にマウス科の免疫グロブリンに結合可能で有色の生成物を生成することが可能な、0.1%BSA、0.05%ANS、0.01%チメロサールを伴うPBS中に予め決められた比活性に希釈(約1/2400)されたヤギ抗マウス抗体−HRP酵素共役(ジャクソン イムノリサーチ)100μLを、各ウェルに加えた。振動させながら室温で10分間培養した後、ヤギ抗マウス抗体−HRP酵素共役がウェル内のドセタキセル抗体に結合する間、結合していない第二の共役を除去するために、プレートを再び3回洗浄した。ウェル内で測定可能な色をつけるために、洗浄後、TMB(TMB Liquid Substrate、HRP用培養基)を100μL加え、室温で振動させながら10分培養して着色した。着色のための培養に続いて、停止液(1.5%フッ化ナトリウムの脱イオン水)50μLを、着色を停止するために各ウェルに加え、10秒間の振動後、96ウェルプレートリーダ−で650nmの吸光度を測定した。ウェル内の抗体量は、測定される吸光度に比例し、試料中のドセタキセル量に反比例した。分析物を含むウェル内の色の吸光度を、分析物のないものと比較し、標準曲線を形成した。与えられた分析物に対するIC50値は、分析物を含んでいないウェルにおける吸光度の50%を阻害するために欠かせない分析物の濃度と定義した。与えられた分析物の交差反応性は、ドセタキセルに対するIC50とパクリタクセル及び10−O−デアセチルバッカチンIIIに対するIC50との比率で、パーセント表示で計算した。例4及び例5の免疫原で例10で生成した抗体で測定するとき、パクリタクセル及び10−O−デアセチルバッカチンIIIに対するドセタキセルに関連するパーセント表示で表わした交差反応性は6%以下であった。
C7置換ドセタキセル酸誘導体共役の抗体におけるIC50及び交差反応性を測定する間接競合マイクロタイタープレート免疫測定手順
ドセタキセル濃度を間接競合酵素免疫測定法(ELIZA)によって測定した。ドセタキセル濃度を測定するこの方法を、モノクロナール抗体に対して例13及びポリクロナール抗体に対して例12及び13に記載するドセタキセル-BSAで感作したマイクロタイタープレートで行った。ドセタキセル、パクリタクセル及び10−O−デアセチルバッカチンIIIは、0.01〜10,000ng/mLの濃度範囲の間で、0.1%BSA及び0.01%チメロサールを伴うPBS中に10倍希釈された。測定は、例14aで測定された滴定量に希釈された50μLの抗体(例11で生成)で測定するために、50μLの分析物を培養することによって行った。10分間の培養(振動を伴うローテーター(R.T.))の間、ウェル内及び溶液中の分析物にドセタキセル共役に結合する抗体の競合が生じる。この培養に続いて、結合しないあらゆる物質を除去するために、プレートのウェルを、0.02Mトリス、0.9%塩化ナトリウム、0.5%Tween−80及び0.001%チメロサール、pH7.8で、3回洗浄した。ウェル内のドセタキセル―BSA共役に結合したドセタキセル抗体の量を検出するために、培養基で培養するとき、特にマウス科の免疫グロブリンに結合可能で有色の生成物を生成することが可能な、0.1%BSA、0.05%ANS、0.01%チメロサールを伴うPBS中に予め決められた比活性に希釈(約1/2400)されたヤギ抗マウス抗体−HRP酵素共役(ジャクソン イムノリサーチ)100μLを、各ウェルに加えた。振動させながら室温で10分間培養した後、ヤギ抗マウス抗体−HRP酵素共役がウェル内のドセタキセル抗体に結合する間、結合していない第二の共役を除去するために、プレートを再び3回洗浄した。ウェル内で測定可能な色をつけるために、洗浄後、TMB(TMB Liquid Substrate、HRP用培養基)を100μL加え、室温で振動させながら10分培養して着色した。着色のための培養に続いて、停止液(1.5%フッ化ナトリウムの脱イオン水)50μLを、着色を停止するために各ウェルに加え、10秒間の振動後、96ウェルプレートリーダ−で650nmの吸光度を測定した。ウェル内の抗体量は、測定される吸光度に比例し、試料中のドセタキセル量に反比例した。分析物を含むウェル内の色の吸光度を、分析物のないものと比較し、標準曲線を形成した。与えられた分析物に対するIC50値は、分析物を含んでいないウェルにおける吸光度の50%を阻害するために欠かせない分析物の濃度と定義した。与えられた分析物の交差反応性は、ドセタキセルに対するIC50とパクリタクセル及び10−O−デアセチルバッカチンIIIに対するIC50との比率で、パーセント表示で計算した。例9aの免疫原で例11で生成した抗体で測定したとき、例12のように生成されたマイクロタイタープレート上でパクリタクセルに対するドセタキセルに関するパーセント表示で表わした交差反応性は2%未満で、10−O−デアセチルバッカチンIIIに対しては0.02%未満であった。例9aの免疫原で例11で生成された抗体で測定した場合、例13のように生成されたマイクロタイタープレート上でパクリタクセルに対するドセタキセルに関するパーセント表示で表わした交差反応性は1%未満で、10−O−デアセチルバッカチンIIIに対しては0.01%未満であった。例9a及び9bの免疫原で例11で生成された抗体で測定した場合、例13のように生成されたマイクロタイタープレート上でパクリタクセルに対するドセタキセルに関するパーセント表示で表わした交差反応性は12%未満で、10−O−デアセチルバッカチンIIIに対しては1.0%未満であった。
Claims (26)
- 試料と、ドセタキセルに反応する抗体と、一般式
の化合物、
一般式
の化合物、
の化合物
及びその混合物から選択された配位子を伴う担体の共役とを含む混合物を準備することを含む試料中のドセタキセル検出のための免疫測定法であって、
試料中のドセタキセル及び前記共役を前記抗体と結合させ、その後、前記抗体に結合又は未結合の前記混合物中の前記共役量を測定し、それによって試料中のドセタキセルの存在を測定することができることを特徴とする免疫測定法。 - 請求項1記載の免疫測定法であって、一般式II−A、II−B及び/またはII−Cの化合物においてpは0であることを特徴とする免疫測定法。
- 請求項1記載の免疫測定法であって、一般式II−A、II−B及び/またはII−Cの化合物においてpは1であることを特徴とする免疫測定法。
- 請求項7記載の免疫測定法であって、一般式II−A、II−B及び/またはII−Cの化合物において、形成されたエステルは低級アルキルエステル、イミドエステル又はアミドエステルであることを特徴とする免疫測定法。
- 請求項1から8いずれか一項に記載の免疫測定法であって、試料はヒトの試料であることを特徴とする免疫測定法。
- 請求項1から13いずれか一項に記載の免疫測定法であって、前記抗体は固形支持体に付着していることを特徴とする免疫測定法。
- 請求項14記載の免疫測定法であって、前記固形支持体はマイクロタイタープレートであることを特徴とする免疫測定法。
- 請求項14記載の免疫測定法であって、前記固形支持体は微粒子であることを特徴とする免疫測定法。
- 請求項1から16いずれか一項に記載の免疫測定法であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする免疫測定法。
- 請求項1から16いずれか一項に記載の免疫測定法であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする免疫測定法。
- ドセタキセルに反応し、ドセタキセルと比較したタキソールとの交差反応率が20%以下であることを特徴とする抗体。
- 請求項19から23いずれか一項に記載の抗体であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする抗体。
- 請求項19から24いずれか一項に記載の抗体であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする抗体。
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