JP4793714B2 - 新規クロスリンカー化合物 - Google Patents
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- 0 **N(*N(C(C=C1)O)C1=O)*N(C(C=C1)=O)C1=O Chemical compound **N(*N(C(C=C1)O)C1=O)*N(C(C=C1)=O)C1=O 0.000 description 2
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ながら、IgGのFcドメインはマクロファージなどに存在するFcレセプターなどに認識され
るため肝臓や脾臓に取り込まれやすく、さらに免疫原性を高める原因になっているため、最近では抗体の可変部のみを用いる傾向にある。また、ファージディスプレイ法などにより様々なレセプターに結合する一本鎖抗体なども報告されている。これら抗体のフラグメントは生産コストも安く、免疫原性も低い点で有利であるが、体内での安定性が抗体に比べて低く、また抗原認識部位が一つしか持たないため結合能力が低い。
例を示す。本発明者はbのような分子の構築を可能とするクロスリンカー化合物の開発を
行った。
[1] 少なくとも2つのマレイミド基ならびに活性エステル基、ヒドラジン基およびアミノ基からなる群から選択される官能基を有するクロスリンカー化合物。
[2] 2つのマレイミド基ならびに活性エステル基、ヒドラジン基およびアミノ基からなる群から選択される官能基を有する[1]のクロスリンカー化合物。
[式中、R1およびR2は独立に炭素数2〜10のアルキル、アルコキシ、アルコシキカルボニ
ル、アラルキル、シクロアルキルまたは-(CH2-CH2-O)m-であり、R4は活性エステル基、ヒドラジン基またはアミノ基であり、R4-R3は活性エステル基-(CH2)n-O-(CH2)o-(CO)-もし
くは活性エステル基-(CH2)p-(CO)-、ヒドラジン基-(CO)-(CH2)q-O-(CH2)r-(CO)-もしくはヒドラジン基-(CO)-(CH2)s-(CO)-、またはアミノ基-(CH2)t-(CO)-であり、m〜tは独立に
1〜10である。]
[8] マレイミド基に結合させたリガンドが抗体の機能性断片である[7]の多機能性分子。
[式中、R1およびR2は独立に炭素数2〜10のアルキル、アルコキシ、アルコシキカルボニ
ル、アラルキル、シクロアルキルまたは-(CH2-CH2-O)m-であり、R4は活性エステル基、ヒドラジン基またはアミノ基であり、R4-R3は活性エステル基-(CH2)n-O-(CH2)o-(CO)-もし
くは活性エステル基-(CH2)p-(CO)-、ヒドラジン基-(CO)-(CH2)q-O-(CH2)r-(CO)-もしくはヒドラジン基-(CO)-(CH2)s-(CO)-、またはアミノ基-(CH2)t-(CO)-であり、m〜tは独立に
1〜10である。]
で表される化合物において、マレイミド基を-N-(CO)-CH2-O-CH2-(CO)-N-で表される基で
置換し、さらに該置換基のNにR5-マレイミド基で表される基を2つ結合させたクロスリンカー化合物であって、R5はR1またはR2であり、マレイミド基の前記の置換および結合が繰り返された少なくとも4つのマレイミド基を有するクロスリンカー化合物。
[12] マレイミド基の置換および結合を2回行い得られる、8つのマレイミド基を有する[10]のクロスリンカー化合物。
て、本発明のクロスリンカー化合物を用いることにより、特定のレセプターに対してターゲティング機能を有し、なおかつ薬剤や標識化合物としての特定の機能を兼ね備える多機能性分子を得ることができる。
ル基-(CH2)n-O-(CH2)o-(CO)-もしくは活性エステル基-(CH2)p-(CO)-、ヒドラジン基-(CO)
-(CH2)q-O-(CH2)r-(CO)-もしくはヒドラジン基-(CO)-(CH2)s-(CO)-、またはアミノ基-(CH2)t-(CO)-であり、m〜tは独立に1〜10である。
れる化合物、ヒドラジン基を有する式(VI)で表される化合物およびアミノ基を有する式(VII)で表される化合物が挙げられる。以下の式(VI)および(VII)は塩で示されている。
ず一般式(VIII)で表される化合物と無水マレイン酸を反応させてマレイル化を行い、一般式(VIIII)で表される化合物を得て、さらにジグリコール酸無水物を反応させて-(CO)-CH2-O-CH2-(CO)-OHを導入し、さらに脱水環化により一般式(X)で表される化合物を得
る。
スクシンイミド等を反応させることにより、一般式(I)におけるR4が活性エステル基で
ある本発明のクロスリンカー化合物を得ることができる。
般式(I)におけるR4がヒドラジン基である本発明のクロスリンカー化合物を得ることが
できる。
ー化合物は複数の化合物と結合し得る多価性のクロスリンカー化合物であり、マレイミド基が2つ存在する場合は、3つの化合物と結合し得る3価性のクロスリンカー化合物である。もう1つの官能基が活性エステルの場合は化合物のアミノ基と結合し、ヒドラジン基の場合は化合物のカルボシル基と結合し、アミノ基の場合は、カルボジイミドを介して化合物のカルボキシル基と結合し、グルタルアルデヒド基を介してアミノ基と結合し得る。
。
用いることができる。また、この場合、マレイミド基以外の官能基がヒドラジン基である場合、ヒドラジンと物質はシフ塩基錯体を形成し、pH条件を変えることにより、該物質は遊離し得る。従って、生体内に投与し、特定の部位に送達させ、生体内のpHを調整することにより、薬剤のみをその部位で遊離させることが可能である。また、放射線物質と結合させた場合、放射線物質は癌の放射性治療用薬剤として利用することもできる。例えば、本発明の化合物6は、カルボシル基を有する多官能性の化合物と結合を形成することが可
能である。この際生じるシフ塩基は図6に示す様にpH5以下の酸性溶液において解離する。
このことを利用して薬を放出することなどが可能となる。
センスRNA鎖、およびこれらRNAを発現するDNA鎖、アンチセンスDNA鎖等が挙げられ、この場合、細胞内で特定の遺伝子の転写・発現を抑制することができる。また、形質転換のための導入遺伝子を本発明のクロスリンカー化合物を用いて導入することもできる。
置換し、さらに該置換基のNにR5-マレイミド基で表される基を2つ結合させたクロスリンカー化合物であって、マレイミド基の前記の置換および結合を繰り返すことにより得られる。ここで、R5はR1またはR2である。マレイミド基の置換および結合の繰り返し回数は限定されず、繰り返し回数が1回ならば、マレイミド基を4つ有するクロスリンカー化合物が得られ、繰り返し回数が2回ならば、マレイミド基を8つ有するクロスリンカー化合物が得られる。即ち、マレイミド基の置換および結合をn回繰り返すことにより2(n-1)個の
マレイミド基を有するクロスリンカー化合物が得られる。なお、マレイミド基の置換および結合をn回繰り返した場合、クロスリンカー中のR5に相当する部分は、2(n-1)個存在す
るが、それぞれのR5に相当する部分は同じ構造を有するものであっても、異なる構造を有するものであってもよい。マレイミド基の数は限定はないが、好ましくは32個以下、16個以下または8個以下である。
レイミド基以外の官能基が活性エステルの場合の例であり、式(XI)はマレイミド基が4つある場合、式(XII)はマレイミド基が8つある場合を示す。
化合物4の合成
速く撹拌したDMF(30mL)に無水マレイン酸(10g)のDMF溶液(30MmL)とDiethylenetriamine(5.4mL)のDMF溶液(30mL)を同時に滴下した。滴下終了後さらに3時間室温で撹拌し
た。生じる白い沈殿物を濾過し、DMF及びクロロホルムで洗浄し化合物1を得た。収率9
5%であった。
1H NMR (400 MHz) d 3.06 (t, 4H, J = 5.6 Hz), 3.43 (t, 4H, J = 5.6 Hz), 6.07 (d, 2H, J = 12.4 Hz), 6.31 (d, 2H, J = 12.4 Hz). 13 C NMR d 36.45, 47.50, 131.51, 133.66, 167.59, 168.30. MS(FAB)m/e 300(MH+)
ターで除いた。得られた粗生成物(化合物2を含む)と酢酸ナトリウム(2.1g)を無水酢酸に溶解させ90度で3時間反応させた。不要物を濾別しエバポレーターで溶媒を除いた。残留物に水(30ml)を加え室温で3時間撹拌した。溶媒をエバポレーターで除いた後、クロロホルムと飽和食塩水で抽出した。有機層から硫酸ナトリウムで水分を除いた後、エバポレーターで溶媒を除いた。
DMFから化合物3の反応を化学式1および図2に示す。
1H NMR (400 MHz) d 3.36 (t, 2H, J = 6.8 Hz), 3. 63 (m, 2H), 3.70 (t, 2H, J = 6.8 Hz), 3. 75 (m, 2H), 4.15 (s, 2H), 4.31 (s, 2H). 6.70 (s, 2H), 6.78 (s, 2H). ).
13C NMR d 35.34, 35.64, 44.47, 44.81, 70.64, 71.45, 134.58, 134.67, 170.44, 172.67, 175.85 Anal. Calcd for C16H18N4O6: C, 50.65; H, 4.48; N, 11.08. Found: C, 50.58; H, 4.43; N, 10.87.
拌した。3時間後、酢酸を数滴滴下し、0℃でさらに1時間撹拌した。生じる白い沈殿物をろ過して除き、ろ液からエバポレーターで溶媒を除いた。得られた物質に沸騰したイソプロパノールを加え、再結晶により化合物4を得た。
化合物3から化合物4の反応式を化学式2および図2に示す。
1H NMR (400 MHz) d 2.83 (s, 4H), 3.40 (t, 2H, J = 7.2 Hz), 3. 57 (m, 2H), 3.67 (t, 2H, J = 7.2 Hz), 3. 71 (m, 2H), 4.24 (s, 2H), 4.53(s, 2H), 6.68 (s, 2H), 6.71
(s, 2H). ). 13 C NMR d 25.80, 35.23, 35.66, 44.02, 44.71, 67.89, 69.25,134.54, 134.59, 165.76, 168.95, 169.01, 170.52, 170.59,
化合物6の合成
化合物3(100mg)のジメチルアセトアミド溶液(1ml)に1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド(49.8mg)、N-ヒドロキシベンゾトリアゾール(35mg)
及びtertブチルカルバゼート(34mg)を室温で12時間撹拌した。12時間後、水1.2mlを滴
下し、酢酸エチル(5ml)で二回抽出した。有機層をさらに0.25Mの塩酸水溶液、飽和炭
酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水で洗浄し化合物5を得た。収率は79%であった。1H NMR (400 MHz) d 1.40 (s, 9H), 3.36 (t, 2H, J = 7.1 Hz), 3. 55 (t, 2H, J= 5.1 Hz), 3.64 (t, 2H, J = 7.1 Hz), 3. 66 (t, 2H, J = 5.1 Hz), 4.06 (s, 2H), 4.12(s, 2H), 6.64 (br s, 1H), 6.69 (s, 2H), 6.72 (s, 2H). 9.09 (br s, 1H),
をエバポレーターで除いた。イソプロパノールで再結晶により化合物6を得た。
化合物3から化合物6の反応式を化学式3および図3に示す。
Hz), 3. 72 (m, 2H), 4.13 (s, 2H), 4.18(s, 2H), 6.68 (s, 2H), 6.72 (s, 2H). 6.76
(br s, 1H),
13 C NMR d 34.85, 35.15, 44.21, 44.44, 67.71, 68.82,134.41, 134.48, 169.98, 170.75, 171.09, 171.36.
化合物9の合成
化合物1(4.38g)をDMF(125ml)に溶解させBoc-Gly-ONp(5.0g)をDMF(30ml)に溶解させたものを滴下した。ジイソプロピルエチルアミン(2.08g)を滴下し60℃で16時間反応し
た。エバポレーターで溶媒を除き、得られる粗生成物(化合物7を含む)をそのまま次の反応へ進めた。
1H NMR (CDCl3) d 1.43 (s, 9H), 3.42 (t, 2H, J = 7.0 Hz), 3.60 (t, 2H, J= 5.1 Hz), 3.70 (t, 2H, J = 7.0 Hz), 3. 72 (t, 2H, J = 5.1 Hz), 3.87 (d, 2H), 6.68 (s, 2H), 6.75 (s, 2H). 13 C NMR d 28.53, 35.61, 35.63, 42.03, 44.19, 44.57, 79.76, 134.43, 134.56, 155.55, 170.04, 170.41, 170.80
エバポレーターで飛ばし、残留物にジエチルエーテルを加えて沈澱を生じさせ、ろ過することにより化合物9を得た。収率は82%であった。化合物1から化合物9の反応式を化学式4および図4に示す。
合成した化合物4を用いて特定のタンパク質に対するリガンドを二量体化しさらに蛍光器で修飾することを試みた。ここでは先の論文(Protein engineering design and selection.vol.17no.5pp455-462,2004)にある乳ガンの細胞表面特異的に発現しているHER2/neuに対するリガンドを二量体化した。
現させ精製したリガンドに対し等モル比で加え0.1Mのリン酸緩衝液中(pH7)で12時間反応させた。結果を図5に示す。
実施例4で構築した蛍光ラベルした二量化されたリガンドをHER2/neuを過剰に発現している細胞(SKBR-3)に添加した。48wellプレートに細胞を20000個蒔き3日後、培地
に蛍光ラベルしたリガンド、及び、ネガティブコントロールとして蛍光器のみを加えた。一日後、細胞を氷水で冷却した培地で10回洗い、観察した。結果を図9に示す。1a及び1bはネガティブコントロール、2a及び2bは蛍光ラベルしたリガンドを加えた細胞の様子である。UV照射した1b,2bを比べると、リガンドを蛍光ラベルしたときのみ蛍光が観測されて
いることがわかる
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