JP4769247B2 - ヒトパピローマウイルス16型に対するSalmonellaワクチン株に関するコドン最適化されたHPV16L1 - Google Patents
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Description
子宮頚ガンは、全世界で女性におけるガンの死因の第2位であり、これらの腫瘍の事実上全てがヒトパピローマウイルス(HPV)のサブセットの感染に起因しうる。このHPVのうち、HPV16が最も高頻度に見い出される(6, 41)。したがって、これらのHPVに対する有効なワクチンは、本ガンおよびその前駆病変の発生率に、ならびにこれらのウイルスに起因しうるあまり一般的ではない腫瘍に劇的な影響を有すると予想されよう。その有力な候補は、予防用HPVウイルス様粒子(VLP)サブユニットワクチン((35)および(24)により総説されている)である。概念の証明(proof of principle)のための有効性臨床試験は、HPV16 VLPをワクチン接種された女性が、このウイルス型による性器粘膜感染に対して高度に防御されたことを示した(19)。しかし、予測されたターゲット集団が小児期ワクチンのターゲット集団よりも年齢が高いであろうワクチンについて、多回注射の必要性は、広範囲に及ぶ実用化への実質的な障壁となりうる。これは、全世界の子宮頚ガン症例を4分の3よりも大きく占める開発途上世界で特にあてはまる(6)。弱毒化されているが、なお侵入性であるリコンビナント弱毒化Salmonella株が、病原体特異的防御エピトープを粘膜関連リンパ組織に送達するために粘膜ワクチンベクターとして広く使用されてきた。この経路を介して、担体および外来抗原に対する粘膜免疫応答と全身免疫応答との両方を得ることができる((11, 22, 36)に総説されている)。VLPに自己集合するHPV16主要キャプシドタンパク質L1を発現しているそのSalmonellaを用いたマウスの経鼻ワクチン接種は、その弱毒化Salmonella enterica serovar Typhimurium株がPhoPc表現型を示すならば、血清および性器分泌物中に抗HPV16コンフォメーション抗体および中和抗体を誘導することを本発明者らは示した(3, 4, 31)。しかし、本来のPhoPc株でさえも、高い抗HPV16 VLP抗体力価を誘導するには2回の経鼻免疫処置が必要であり、一方で経口免疫は無効であった(31)。抗生物質による選択の不在下で、L1をコードするプラスミドの高い不安定性と共に、低レベルのL1発現が観察されたことにより、L1タンパク質またはL1遺伝子のいずれかが細菌に有毒でありうることが強く示唆された。ウイルスL1遺伝子がSalmonellaにおいて発現するために高度に都合の悪いコドン使用頻度を示すことから、Salmonellaでの翻訳のために最適化されたコドンを有する、L1タンパク質をコードする合成ヌクレオチド配列(以下L1Sと呼ぶ)を本明細書において設計して試験した。
表1および1Aは、本研究に使用したSalmonella株を表す。
表2は、経鼻または経口免疫処置の2週間後の、L1またはL1SをコードするプラスミドをもつSalmonella PhoPcの回収を表す。
表2Aは、経口免疫処置の2週間後の、アンピシリン耐性遺伝子またはカナマイシン耐性遺伝子をもつ、Salmonella PhoPcL1Sをコードするプラスミドの回収を表す。
表3は、経鼻免疫処置の1週間後のkan L1SプラスミドをもつSalmonella enterica serovar Typhiの回収を表す。
本発明の主目的は、抗原性HPV16 L1タンパク質をコードする、配列番号1に提供される新規な核酸配列(HPV16 L1S)を提供することであり、ここで、前記配列は、原核微生物にトランスフォーメーションされて、結果として生じた原核微生物の免疫原性改善を目的とされた場合に、リコンビナントプラスミドベクターの安定性を最適にするための少なくとも一つの改変されたコドンを有する。
したがって、本発明は、ヒトパピローマウイルス16型(HPV16)に基づく、抗原性HPV16 L1タンパク質をコードする、配列番号1に提供される新規な核酸配列(HPV16 L1S)を提供し、ここで、前記配列は、原核微生物にトランスフォーメーションされて、結果として生じた原核微生物の免疫原性改善を目的とされた場合に、リコンビナントプラスミドベクターの安定性を最適にするための少なくとも一つの改変されたコドンを有し、好ましくは、その株はSalmonella speciesに属する。本発明は、配列番号1を内部に有するリコンビナントベクターpFS14nsdHPV16L1、pFS14nsdHPV16 kan L1SおよびpFSnsd−kan HinS−HPV16L1Sを構築することにさらに関するものであり、前者ベクターはアンピシリンを、後者ベクターはカナマイシンを選択マーカーとしてもつ。本発明は、配列番号1を内部に有するpFS14nsdHPV16L1、pFS14nsdHPV16 kan L1SおよびpFSnsd−kan HinS−HPV16L1SでトランスフォーメーションされたSalmonella speciesに属する弱毒化株をさらに提供する。さらに、本発明は、パピローマウイルス感染および関連するガンのリスクの処置のための、Salmonellaに基づくワクチンを製造するための工程を開示する。
HPV感染および関連する病変に対する、Salmonellaに基づくワクチンの開発は、単回経口ワクチン接種で長期持続する全身免疫および粘膜免疫を誘導する理論的な利点を有して、全世界での実用化に大きな価値があるであろう。しかし、そのような戦略がマウスにおいて実行可能であることを示したにもかかわらず(31)、Salmonellaに基づくワクチンが女性において安全に試験できるまでには、いくつかの障害に取り組まねばならなかった。これらの障害には、中和抗体応答を効果的に誘導するために特定のSalmonella表現型(PhoPc、(3, 4))および経鼻経路の免疫処置の必要性、ならびにL1をコードするプラスミドが抗生物質による選択なしでは不安定であった(31, 4)か、または半致死相補性系で安定化した場合にあまり発現されなかった((3)という観察が含まれた。本明細書において、HPV16 L1キャプシド遺伝子(HPV16 L1S)の発現のためにコドン最適化戦略を使用することによって、これら問題の大部分が解決されることを報告する。実際に、合成L1S遺伝子の発現は、Salmonellaにおいて安定であり、異なって弱毒化された細菌が経鼻または経口経路のいずれかにより送達された場合に、より高い免疫原性を招く。
a. コドン使用頻度を改変することにより、抗原性HPV16 L1タンパク質をコードする配列番号1に示された新規な核酸を合成すること、
b. プラスミドベクターpFS14nsdHPV16L1、pFS14nsdHPV16kanL1SまたはpFSnsd−kan HinS−HPV16L1S中の本来のHPV16 L1遺伝子を置換することにより、配列番号1に示す核酸配列を有するリコンビナントプラスミドベクターを構築すること、
c. 段階(b)からのリコンビナントプラスミドベクターを弱毒化微生物に導入してリコンビナント接種材料を得ること、
d. マウスにリコンビナント接種材料を投与すること。
実施例1
プラスミドの構築および使用した細菌株
L1S遺伝子をMicrosynth(Buchs, Switzerland)により合成した。そのオープンリーディングフレームには5’にNcoI制限部位が、3’にHindIIIが隣接した。L1S NcoI−HindIIIフラグメントを、プラスミドpFS14nsdHPV16−L1の本来のL1 NcoI−HindIIIフラグメント代わりに挿入した(31)。結果として生じたプラスミドpFS14nsdHPV16−L1Sを弱毒化Salmonella enterica serovar Typhimurium株であるPhoPc(CS022(27))およびPhoP”(CS015(26))(共にJohn Mekalanos, Boston, USAから親切に分与いただいた)、x4989(Acya Acrp,(4))、x4990(Acya Acrp-cdt, (4))およびAaroA(SL7207(16))(Irene Corthesy-Theulaz, Lausanne, CHから親切に分与いただいた)にエレクトロポレーション(37)により導入した。
抗HPV16 L1 mAbであるCAMVIR−1(Anawa)を用いて、以前に記載されたように15(31)ウエスタンブロットによりSalmonella溶解液中のL1の発現を分析した。培養物のCD600により測定された細菌含量に対してデータを基準化した。HPV16 VLP上のコンフォメーションエピトープを認識する二つのモノクローナル抗体H16E70およびH16V5を使用して、以前に記載された(4)サンドイッチELISAによりHPV16 VLPの含量を測定した、(9)。20。
Iffa Credo、フランスからの6週齢雌性BALB/cマウスを全ての実験に使用した。以前に記載された(17, 31)、麻酔下で細菌接種材料20JLLIを経口(108〜9CFU)投与または鼻腔内(1067CFU)投与した。血液および膣洗浄液の採取、ならびにELISAによる抗HPV16 VLP抗体力価の決定を、先に報告されたように実施した(17, 31)。以前に記載されたように、安楽死させたマウス由来の器官におけるSalmonella enterica serovar Typhimuriumの回収を決定した(31)。
最適化されたL1オープンリーディングフレーム(orf)を設計するために、Salmonella enterica serovar. Typhimuriumの主要内因性タンパク質(7,14)の翻訳に使用されるコドンを考慮した。本来のHPV16 L1配列(HPV16 114/B(18))のコドン506個のうち、163個をSalmonellaで最も頻繁に使用されているコドンに改変した(図1−配列番号1参照)。これには、Salmonellaにまれにしか見出されない本来のL1配列のコドンの全て(136個)およびあまり頻繁に使用されないコドンの一部(27/72個)が含まれた。次に、プラスミドpFS14nsd−HPV16L1(31)中のL1のorfを新しいL1Sのorfに置換して、pFS14nsd−HPV16L1Sを得た。この新しいプラスミドを弱毒化Salmonella enterica serovar Typhimurium株PhoPc(27)にまず導入して、以後PhoPcL1Sと呼ばれるリコンビナント株を発生させた。その他のL1Sリコンビナント弱毒化Salmonellaの4株をその後産生させた(本明細書の以下を参照)。表1に、本研究に使用した種々の株および略語を要約する。
PhoPcL1およびPhoPcL1Sの対数増殖期培養物の溶解液中でのL1タンパク質の発現をウエスタンブロットにより比較した(図2A参照)。驚くことに、細菌培養物中のL1の発現は、新しいL1S配列では改善せず、むしろ2分の1に減少した(図2B)。二つのリコンビナント株で産生されたVLPの量をサンドイッチELISAにより比較した場合、この結果が確認された(図2C参照)。LB50mlにコロニー1個を接種した後の対数中期に達するまでの時間を比較した場合、二つの株の成長速度に著しい差が認められた(PhoPcL1Sについて約7時間およびPhoPcL1について約15時間)。これは、対応する同族tRNAに関するL1の最適化されたコドン使用頻度により、成長速度が最大になったが、L1Sの翻訳は同時に増加しなかったことを示唆しうる。
本発明者は、抗生物質による選択の不在下ではSalmonellaにおけるL1をコードする本来のプラスミドはプラスミド分離によりin vivoで速やかに失われたと以前に報告した(4,31)。L1SをコードするプラスミドおよびL1をコードするプラスミドの安定性をまずin vitroで比較した。このために、L1をコードするプラスミドまたはL1Sをコードするプラスミドをまだ内部に有する細菌の率を、抗生物質による選択の不在下で4回連続のO/N培養の間に比較した(図3参照)。予想通り、L1をコードするプラスミドは速やかに失われた。対照的に、L1Sをコードするプラスミドは、抗生物質による選択の不在下で約50世代時間の後でも大部分の細菌から回収された。マウスに経鼻および経口免疫処置した後の、L1Sをコードするプラスミドの安定性をさらにin vivoで検討した(表2参照)。L1をコードする本来のプラスミド(4)とは対照的に、L1Sをコードするプラスミドは、感染/侵入部位に近い器官で少なくとも2週間完全に安定であった。しかし、脾臓などのさらに離れた器官ではL1Sプラスミドの不安定性が幾分観察された。脾臓ではこれらの細菌の約10%がL1Sプラスミドをまだ内部に有したが、L1プラスミドを内部に有するものは全く検出されなかった。in vitroで観察されたこれらの細菌のより速い成長能にかかわらず、L1Sを内部に有する細菌の侵入性または残留性がより高いという証拠がないことにも留意すべきである。
最終目標は、Salmonella enterica serovar TyphimuriumにおいてHPV16 L1S遺伝子の発現がHPV16 VLP抗原の免疫原性を改善するかどうかを試験することであった。したがって、PhoPcL1S株を用いて、経鼻または経口経路で雌性BALB/cマウスの群を免疫処置した。単回免疫処置の4から6、8および24週間後のマウスの血清および膣分泌物中から測定された抗VLP抗体力価を図4に示す。単回経鼻ワクチン接種は、血清中に高い長期持続性の抗HPV16 VLP IgG力価および膣洗浄液中に特異的IgGおよびIgA力価を誘導した。これらの抗体力価は、本来のPhoPcL1株を2回経鼻ワクチン接種した後に誘導された力価と同様であるが、主な改善は、これらの力価が本来のPhoPcL1株を用いた単回経鼻ワクチン接種で実現された力価よりも1から2オーダー高いことである(4, 31)。興味深いことに、経鼻ワクチン接種よりも低いものの、PhoPcL1Sを用いた経口ワクチン接種も高度に免疫原性であった。一方で、本来のPhoPc株を2回経口ワクチン接種しても無効であった(31)。PhoPcL1Sの2回経鼻投与または3回経口投与(データは示さず)により、免疫応答は増加しなかった。
本発明者は、異なって弱毒化された、L1をコードする本来のプラスミドを発現しているSalmonella enterica serovar Typhimurium株をマウスに経鼻ワクチン接種することで、抗HPV16 VLP抗体が低くしか、または全く誘導されなかったことを以前に示した(4)。L1Sをコードするプラスミドを発現しているPhoPc株で観察された高い免疫原性を考えて、%4989、Λ4990、PhoP”およびAroAを含めた種々の株に本プラスミドをさらに導入した(正確な弱毒化、略語および参照については表1を参照されたい)。これらの新しいリコンビナント株を単回経鼻または経口ワクチン接種した7週間後にマウスにおいて測定された抗HVP16 VLP IgG力価を図5に示す。我々の以前の観察とは対照的に、新しいリコンビナント株の全ては、単回経鼻ワクチン接種後に一貫した抗HPV16 VLP体液性応答を誘導したが、これらの力価はPhoPcL1S株で実現された力価よりも約1オーダー低い(図4参照)。両経路のワクチン接種後に類似した抗HPV16 VLP IgG力価を誘導したAroAL1S株を除いて、予想通り、免疫原性は経口ワクチン接種の方が低かった。
プラスミド構築および使用した細菌株
プラスミドpFS14nsdHPV16−L1S[Baud, 2004 #1439]において、アンピシリン耐性コード配列を以下のようにカナマイシン耐性コード配列に置換した。テンプレートとしてpET−9a(Novagen)プラスミドDNAを使用した。PCRにより、カナマイシンコード配列およびプロモーターを含むSacII−XbaIフラグメントを発生させた。使用したプライマーは、カナマイシンの最初のATGから54ヌクレオチド上流に位置する、SacII制限部位(下線部)を含む25塩基:
抗HPV16 L1 mAbであるCAMVIR−1(Anawa)を使用して、以前に記載されたように[Nardellihaefliger, 1997 #742]ウエスタンブロットにより、Salmonella溶解液中のL1の発現を分析した。細菌中の含量に対してデータを基準化した。HPV16 VLP上のコンフォメーションエピトープを認識する二つのモノクローナル抗体であるH16E70またはH161Aと、H16V5とを使用して、以前に記載されたように[Benyacoub, 1999 #1050]、サンドイッチELISAによりHPV16 VLPの含量を測定した。
Iffa Credo、フランスからの6週齢雌性BALB/cマウスを全ての実験に使用した。以前に記載されたように[Hopkins, 1995 #381; Nardellihaefliger, 1997 #742]、細菌接種材料20μlを麻酔下で経口(109CFU)または鼻腔内(107〜9CFU)投与した。先に報告されたように[Hopkins, 1995 #381; Nardellihaefliger, 1997 #742]、血液および膣洗浄液の採取ならびにELISAによる抗HPV16 VLP抗体力価の決定を行った。以前に記載されたように[Nardellihaefliger, 1997 #742]、安楽死させたマウスからの器官でのSalmonella enterica serovar TyphimuriumまたはSalmonella enterica serovar Typhiの回収を決定した。
[Pastrana DV, 2004 #1429]に詳細に記載されているように、分泌型アルカリホスファターゼ(SEAP)HPV16シュードウイルスを用いて中和アッセイを行った。簡潔には、optiprepで精製して2000倍に希釈したSEAP HPV16シュードウイルスを血清で2倍系列希釈して、氷冷しながら1時間インキュベーションして、このシュードウイルス−抗体混合物を使用して293TT細胞に3日間感染させた。清澄にした細胞上清10μl中のSEAP含量をGreat ESCAPE SEAP化学ルミネセンスキット(BD Clontech)を使用して決定した。SEAP活性に少なくとも50%の現象を引き起こす最高の血清希釈倍率として中和力価を定義した(SEAP活性100%は50から100相対光単位の範囲)。
以前に記載されたように[Balmelli, 2002 #1357]、機械的解離により脾臓細胞を単離した。製造業者の使用説明書により抗CD4+を被覆したマイクロビーズ(Miltenyi Biotec, Galdbach, Germany)を用いた磁気抗体細胞ソーティング(MACS)によりCD4+T細胞を精製した。陰性および陽性対照として培地単独と共に、またはコンカナバリンA(2.5μg/ml)と共に、ならびにHPV16 VLP(2μg/ml、GMP調製物)およびフラジェリン(10μg/ml、Ty21aから精製)と共に、ナイーブマウスまたは免疫処置されたマウス由来のCD4+T細胞を3日間インキュベーションして、0.5μキュリーの3Hチミジンを一晩添加して、取込みをcpm単位で測定した。
本来のpFSnsdHPV16L1S[Baud, 2004 #1439]中のアンピシリン耐性遺伝子をカナマイシン選択マーカーに置換することによって、HPV16 L1Sを発現しているカナマイシン耐性プラスミドを構築した。逆PCR戦略を使用して、アンピシリン耐性遺伝子配列に隣接するプラスミド全体を増幅させ、結果として得られたフラグメントを、カナマイシン耐性をコードする配列に連結した(詳細は材料および方法を参照)。結果として得られたプラスミドをpFSnsd−kanL1Sと呼び、PhoPcにエレクトロポレーションさせてPhoPc−kanL1Sを得た(本研究で用いた株の略語および参照については表1A参照)。予想通り、この新しい株におけるHPV16 VLPのin vitro発現は、アンピシリン耐性株PhoPc−L1S(約10μgVLP/1011CFU, [Baud, 2004 #1439])で測定された発現と同様であった。これら2株の間でもまた、同様の成長速度が観察され、対数増殖中期まで約7時間であり、プラスミド安定性は非常に高く、抗生物質の不在下で4晩連続して培養後にプラスミドをまだ内部に有する細菌はほとんど100%であった。kan L1Sプラスミドの安定性は、アンピシリンプラスミドに比較してin vivoで増加して、全ての細菌が経口免疫処置の2週間後にkan L1Sプラスミドを内部に有し、これは検査した全ての器官にあてはまった(表2A参照)。
弱毒化Salmonella enterica serovar Typhimuriumの2株であるPhoP−およびAroAにkan L1Sプラスミドをさらに導入した(表1A参照)。Salmonella enterica serovar Typhiワクチン株におけるこれらの株の弱毒化突然変異は、ヒトにおいて安全であるとすでに示されている。リコンビナントSalmonella enterica serovar Typhimuriumの3株を経口経路によりマウス5〜10匹の3群に1回免疫処置して、血清および膣洗浄液中のHPV16 VLP特異的抗体応答を免疫処置の6週間後に比較する(図6参照)。興味深いことに、AroAkanL1S株により誘導された抗VLP抗体力価は、PhoPckanL1S株および以前のPhoPcL1S株により誘導された力価と同様に高いと思われる[Baud, 2004 #1439]。これらの抗体力価は、少なくとも4か月間安定であった(データは示さず)。対照的に、PhoP−kanL1sにより誘導された抗VLP抗体力価は、Phop−L1Sで以前に報告されたように[Baud, 2004 #1439]低い。PhoPcおよびAroakanL1Sを免疫処置されたマウスの膣分泌物中にもHPV16 VLP特異的IgGおよびIgAが誘導されたが、PhoP−kanL1Sの後には何も検出されなかった。経口免疫処置を使用してマウスモデルで得られたこれらのデータは、Δaro欠失を内部に有するリコンビナントSalmonella enterica serovar TyphiがΔPhoP/phoQ欠失を内部に有する細菌よりも免疫原性が高くありうることを示唆している。
本発明者らに入手可能であった三つのSalmonella enterica serovar Typhiワクチン株、すなわちTy800(ΔPhoP/phoQ, [Hohmann, 1996 #596])、CVD908−htrA(ΔaroC、ΔaroD、htraA[Tacket, 1997 #643])および認可された腸チフスワクチン株Ty21a[Germanier, 1975 #103]にkan L1Sプラスミドを導入した(略語および参照については表1Aを参照されたい)。VLPのin vitro発現は、これら3株で同様であった(20から30μg VLP/1011CFU)。抗生物質不在下でのこれら三つのワクチン株におけるkan L1Sプラスミドの安定性を、まずin vitroで検討した(図7参照)。Salmonella enterica serovar Typhimurium株を用いた以前の結果とは対照的に、ワクチン株ではkan L1Sが低安定性であることが観察された。2晩目の後でプラスミドの緩やかな喪失が起こったが、5晩連続の後で、Ty21akanL1S、Ty800kanL1SおよびCVD908−htrAkanL1Sで細菌のそれぞれ9、7および18%にプラスミドは依然として保持されていた。Salmonella enterica serovar Typhiワクチン株は、ヒトにおいて限定された循環または複製だけを経るのであろう。そして、これらの株はマウスにおいて経口経路では侵入性ではない。リコンビナントCVD908htrAで示されたように[Pickett, 2000 #1158][Pasetti, 2000 #1494]、これらの細菌を経鼻経路により高用量で投与するならば、マウスを一過性に感染することができる。このように、109CFUのCVD908−htrAkanL1SおよびTy21akanL1Sまたは107CFUのTy800kanL1Sを鼻腔内免疫処置した1週間後のマウスの肺および脾臓から回収されたSalmonellaにおけるkan L1Sプラスミドの安定性を検討した。この後者の株は、低用量で投与しなければならなかった。それは、ブタ胃ムチンと共にそのようなPhoPQ欠失細菌をマウスに腹腔内注射した後の以前の結果と一致して[Baker, 1997 #659]、低用量で投与しないと、この株はマウスに致死的であったからである。興味深いことに、Ty21akanL1Sを免疫処置後に肺から回収された全ての細菌がkan L1Sを内部に有したが、Ty800kanL1SおよびCVD908−htrAkanL1Sの免疫処置後に、少数(それぞれ7.9および0.8%)がkan L1Sプラスミドを内部に有した(表3参照)。これは、経鼻マウスモデルにおいて、試験された他のSalmonella enterica serovan Typhiワクチン株よりもTy21a中の方がkan L1Sプラスミドが安定であることを示している。
三つのリコンビナントSalmonella enterica serovar Typhi株の免疫原性を、5〜0匹の雌性BALB/cマウスの群で1か月間隔を空けた鼻腔内の2回投与後に評価した(CVD908−htraおよびTy21aリコンビナント株について109CFUならびにTy800リコンビナント株について107CFU)。異種HPV16 VLP抗原に対するIgG力価ならびに二つの同種抗原LPSおよびフラジェリンに対するIgG力価を8週間にわたり血清から測定した(図8参照)。興味深いことに、Ty21akanL1Sの2回免疫処置後に初めて高い抗VLP IgG力価が誘導されたが、その他の2株により低いか、またはほとんど検出できない力価が誘導された。対照的に、Ty800kanL1SおよびCVD908htrakanL1Sは、Ty21kanL1Sよりも高い抗LPS IgGおよび抗フラジェリンIgG力価を誘導した(8週間目でp<0.01)。これは、二つの前者リコンビナントカブがマウスにうまく感染して、同種抗原に対する体液性応答を誘導したことを示している。
0および4週間目に雌性BALB/cマウス5匹の追加の群に経鼻Ty21kanL1S(約109CFU)の2回の投与を受けさせ、血液および膣分泌物の採取を8週間目に行った。抗HPV16 VLP中和抗体および抗HPV中和抗体の力価を、血清および膣分泌物の両方でELISAおよびSEAP HPV16シュードビリン中和アッセイによりそれぞれ決定した(図10参照)。リコンビナントSalmonella enterica serovar typhimurium L1S株を用いた免疫処置後に以前に報告されたように、HPV16中和力価は抗VLP ELISA力価よりもやや低かった[Baud, 2004 #1439]。さらに、抗HPV16 VLP IgGおよびIgAが膣分泌物中に誘導され、これらの分泌物がHPV16中和抗体を含有することを本明細書に示す(図10−B参照)。精製VLP1μgを用いた皮下(s.c.)感作がTy21kanL1Sを用いた最適以下の免疫処置(すなわち109CFUの単回経鼻投与)により誘導される免疫応答に及ぼす効果も研究した。データ(図11)は、実際にVLP1μgを用いたs.c.感作の結果として、Ty21kanL1Sを用いた単回経鼻追加免疫後に血清抗VLP IgG力価の有意な増加が生じたことを示している(VLPによる感作なしに比べてp<0.01)。対照的に、誘導された、膣の抗VLP IgGに統計的な差はないが、VLPおよびTy21kanL1Sの両方が投与された場合にのみ、膣に抗VLP IgAが誘導された。中和力価は今後決定。
Claims (9)
- 抗原性HPV16 L1タンパク質をコードし、野生型配列に比較して一つまたは複数の改変されたコドンを有する、配列番号1に示す核酸配列からなるDNAであって、Salmonella spsに導入された場合に、該改変された配列が該改変された配列を内部に有するリコンビナントプラスミドベクターを安定化するDNA。
- 請求項1記載のDNAを含むリコンビナントプラスミドベクター。
- 請求項2記載のリコンビナントプラスミドベクターを含むSalmonella sps。
- Salmonella spsが、Salmonella enterica serovar typhi、Salmonella enterica serovar typhimurium、Salmonella enterica serovar dublinおよびSalmonella enterica serovar enteritidisからなる群より選択される、請求項3記載のSalmonella sps。
- ワクチンとして使用するためのリコンビナントSalmonella spsを産生するための、下記:
a. 抗原性HPV16 L1タンパク質をコードする、配列番号1に示す核酸配列からなるDNAを合成すること、
b. 配列番号1に示す核酸配列からなるDNAを内部に有するリコンビナントプラスミドベクターを構築すること、および
c. Salmonella spsに該リコンビナントプラスミドベクターを導入して、リコンビナントSalmonella spsを得ること
を含む方法。 - リコンビナントプラスミドベクターの導入がエレクトロポレーションにより行われる、請求項5記載の方法。
- パピローマウイルス感染および関連するガンのリスクの予防的または治療的処置のための薬剤を製造する方法であって、請求項3から4のいずれか一項記載のSalmonella spsの弱毒化株の使用を含む方法。
- パピローマウイルス感染および関連するガンのリスクの予防的または治療的処置のための薬剤の調製への、請求項3から4のいずれか一項記載のSalmonella spsの弱毒化株の使用。
- 請求項1記載のDNAを含み、リコンビナントSalmonella spsを含むワクチンであって、Salmonella spsに導入された場合に、該改変されたDNAが、該改変されたDNAを内部に有するリコンビナントプラスミドベクターを安定化するワクチン。
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