JP4541699B2 - カルボキシレート−ゲート−ニトロキシド(cgn)化合物および組成物ならびにその使用方法 - Google Patents
カルボキシレート−ゲート−ニトロキシド(cgn)化合物および組成物ならびにその使用方法 Download PDFInfo
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Description
本出願は、米国特許出願09/948,505の部分継続出願であり、その出願を出典明示により本明細書の一部とし、米国法による優先権を持つ。
本発明は、酸化的ストレスから生じる慢性および急性の疾患および障害の治療および予防に関する。新規な化合物、組成物およびその使用法は、治療薬および診断薬の分野に関する。
多くの急性および慢性の疾患および障害は、内因的および外因的に生じた活性酸素種(ROS)からの損傷に原因がある。ROS損傷が起きるのは、抗酸化酵素およびビタミンの正常な解毒能が破壊されたときである。ROSを処置するための組換え抗酸化酵素およびビタミンを含有する補助剤はいくつかの利点と限界を有する。一酸化窒素(NO・)およびスーパーオキシド(O2・−)はいずれも、単独または協力してROSカスケードおよび損傷を開始し得る生理的ガス状の遊離ラジカルである。進行中の薬剤開発プログラムは、NO・の補充または除去を標的としている。モデルとしてスーパーオキシドディムスターゼ(SOD)を用いて、代替薬剤を開発する戦略は、O2・−の除去および後に続くROSカスケードの弱化を目的としている。後者のプログラムは、「金属中心」または「金属フリー」合成分子における、例えば、それぞれキレート遷移金属またはニトロキシドにおけるSODの触媒活性を模倣することを含む。ポリニトロキシル化「金属中心」(すなわち、ポリニトロキシルヘモグロビン)および「金属フリー」(すなわち、ポリニトロキシルアルブミン)血液タンパク質を脈管ROS損傷の保護剤および造影剤として使用することは、米国特許 5,725,839; 5,741,893; 5,767,089; 5,804,561; 5,807,831; 5,817,632; 5,824,781; 5840,701; 5,591,710; 5,789,376; 5,811,005; 6,048,967 などの特許に記載されている。しかし、一般的に認識されているように、ひとつの方法がすべてのROS損傷を処置できるわけでない。事実、継続的な研究努力が前に予想できないような新しい挑戦に取り組むのに必要である。本発明は、活性中心である「カルボキシレート−ゲート−ニトロキシド(CGN)」の新しい合成類似体の存在を示す。
カルボキシレート−ゲート−ニトロキシド(CGN)化合物、そのエステル化誘導体組成物、ROS損傷に由来の疾患および障害の治療および予防のための使用法を開示する。本発明の組成物は、CGNを含み、望ましくない高レベルの活性酸素種(ROS)に暴露された組織を処置するのに有用である。CGNに加えて、その有用な誘導体を適当な医薬製剤、化粧品製剤、診断製剤において、静脈内、腹腔内、筋肉内、経口、局所的、経鼻、経肺、直腸内投与のために使用できる。CGNおよびその誘導体の例には、エステル化CGN、エステル化ジカルボキシルアミノ酸CGN、エステル化カルボキシルジアミノ酸CGN、その誘導体、例えば、ジニトロキシド、トリニトロキシド誘導体または共役体があり、単独で、または存在する薬物または標的分子と組み合わせて使用する。ニトロキシドの医薬製剤および投与経路を記載する。特に、本発明の組成物の局所適用によると、細胞内へのCGNの標的化送達が、プロドラッグとしての疎水性エステル化CGNの、遊離酸形の親水性CGNへの細胞エステラーゼ解裂を介して達成される様式を示す。
図1は、エステル化カルボキシレート−ゲート−ニトロキシド(CGN)およびその誘導体の一般的構造式を示す。
図2は、エステル化ジカルボキシルアミノ酸CGNの一般的構造式を示す。
図3は、エステル化カルボキシルジアミノ酸およびその誘導体の一般的構造式を示す。
図4は、選択された化合物の一般的構造を示す。これは、実施例で例示する。
図5は、一般化合物、2,2,6,6−テトラメチル−1−オキシル−ピペリジリデン−4−スクシネートを示す。
図7は、水素で置換されたR2およびR3を有する図5の構造式を示す。これを、化合物2,2,6,6−テトラメチル−1−オキシル−ピペリジリデン−4−スクシネート(TOPS)と称する。
図8は、水素およびエチルでそれぞれ置換されたR2およびR3を有する図5の構造式を示す。これを、化合物モノエチル−2,2,6,6−テトラメチル−1−オキシル−4−ピペリジリデン−スクシネート(E−TOPS)と称する。
図9は、両R2およびR3ともエチルである図5の構造式を示す。これを、化合物ジエチル−2,2,6,6−テトラメチル−1−オキシル−4−ピペリジリデン−スクシネート(DE−TOPS)と称する。
図10は、両R2およびR3ともtert−ブタノールである図5の構造式、すなわちジ−tert−ブチル−2,2,6,6−テトラメチル−1−オキシル−4−ピペリジリデン−スクシネート(DB−TOPS)を示す。
図12は、両R2およびR3ともTempolである図5の構造式、すなわちTT−TOPSを示す。
図13は、一般環が5員環である図4の構造式を示す。
図14は、TOPSならびにそのカルボン酸エステル誘導体、E−TOPSおよびDE−TOPSを同定する液体クロマトグラフィー・スペクトルを示す。
図15は、水環境における水酸化ナトリウム(NaOH)によるDE−TOPSからTOPSへの加水分解を示す。EPRシグナルから明白なように、加水分解の前後にDE−TOPSからTOPSへの完全な転換が起きる。
図17(AおよびB)は、14N−15N−TE−TOPSの2モノラジカルへのインビトロおよびインビボでの加水分解を示す。
図18は、14NE−TOPSのインビボ血漿半減期が15N−Tempolに比して、両者のマウス腹腔への共投与時に、伸長することを示す。
図19は、14NE−TOPSのインビボ血漿半減期が15N−Tempolに比して、両者のマウス静脈への共投与時に、伸長することを示す。
図20は、14NE−TOPSのインビボ血漿半減期が15N−Tempolに比して、両者のマウス筋肉内への共投与時に、伸長することを示す。
図22A−Cは、14NE−TOPSおよび15N−Tempolを毛無しマウス皮膚に適用するときに、フランツ型拡散セルにおけるDE−TOPSの皮膚透過および区分化(compartmentalization)を示す。22Aは適用前;22Bはレセプターセルにおいて;22Cは皮膚において20時間である。
図23は、EPRIによるDE−TOPSの皮膚透過および区分化を示す。
図24は、マウスLD50試験におけるE−TOPSについて生存率と用量の関係をTempolに比して示す。
図25は、毎日の適用10日後の尿中への排泄および血漿での減少を介するDE−TOPSの代謝を示す。
図27は、DE−TOPS、E−TOPS、TOPSの、皮質ニューロンに対するヘモグロビン誘導毒性の用量依存的阻害を示す。
図28は、DE−TOPS、E−TOPS、TOPSの、皮質ニューロンに対するペルオキシ亜硝酸塩誘導毒性の用量依存的阻害を示す。
図29は、DE−TOPS、E−TOPS、TOPSが、ペルオキシ亜硝酸によるヒドロキシフェノール酢酸(HPA)のニトロ化を用量依存的に阻害することを示す。
図30は、E−TOPSが、種々のインキュベーション時間でY−79細胞系に対する腫瘍壊死因子α(TNF−α)により起こされたアポトーシスを減少することを示す。
図32は、11日間のUVB照射後での毛無しマウスの組織病理学的変化を、対照または照射前適用のDE−TOPSで示す。
図33は、DE−TOPSの照射前局所適用が毛無しマウスでのUVB誘導の皮膚障害を4か月の慢性的に防止することを示す。
図34は、DE−TOPSの照射後局所適用が毛無しマウスでのUVB誘導の皮膚障害を急性的に防止することを示す。
図35は、11日間のUVB照射後での毛無しマウスの組織病理学的変化を、対照または照射後適用のDE−TOPSで示す。
図37は、DE−TOPS、プラセボおよびレチン−Aを比較し、DE−TOPS処置および紫外線照射15日後で示す。
本化合物、製剤および使用を記述する前に、本発明が特定の構造に限定されず、説明の処方および使用はもちろん変化の多いものであると理解されるべきである。また、使用された用語が特定の実施態様のみを説明する目的のためにであって、限定の意図は存するものでないことが理解されるべきである。本発明は添付の特許請求の範囲によってのみ限定される。
本発明に多くの態様があり、その態様は、化合物、適当な担体中に化合物を含む製剤、処置方法を含む。構成される化合物は、生物(例えばヒト)に対してCGNの抗酸化作用を提供し、およびこの作用を所望の治療結果が得られるような十分に長い期間で提供する。本発明のCGNは、NO基が同じ分子内でカルボキシレートにより「ゲート」されるように構成することで、そのレドックス変調機能がインビボで長時間維持される。CGNのNO基を2カルボキシレート基に対して対称的にまたは非対称的に位置せしめ得る。
簡単にいうと、本発明は細胞内カルボキシレート部分を持つCGNを開示する。このカルボキシレートがニトロキシド部分のインビボ還元を、その触媒活性に影響を与えないで「防衛」する。
CGNの3一般構造式を図1、2、3に示す。構造Iは図1に記載のCGNである。これは、ケトンまたはアルデヒドニトロキシドとエステル化ジカルボン酸との反応から合成する。構造IIは図2に記載のモノアミノCGNである。これは、カルボキシルまたはアセトアミドニトロキシドとジエステル化ジカルボキシルα−アミノ酸との反応から合成する。構造IIIは図3に記載のジアミノCGNである。これは、カルボキシルまたはアセトアミドニトロキシドとジエステル化およびアミジオジアミノ酸(エステル化基は既存の薬物を含むOH官能基を持ついかなる化合物でもある)との反応から合成する。構造IIIにおいて、2アミノ基はニトロキシドおよび任意的に他の部分とカルボキシル基を結合するのに役立つ。このように、CGNの例には、エステル化ジカルボキシレートCGN、エステル化モノアミノ酸CGN、およびジニトロキシドやトリニトロキシドの誘導体、または単独あるいは既存の薬物や標的分子と併せて使用されるコンジュゲートがある。
用語「ニトロキシド」を、互いに結合している酸素および窒素を含む分子を記述するために、本明細書で用いる。ニトロキシドは電子の供与体または受容体であり得る。ニトロキシドは、前駆物質(N−H形など)を含む安定なニトロキシル遊離ラジカルおよびその対応のヒドロキシルアミン誘導体(N−OH)を含む誘導体を含み得る。その場合、酸素がヒドロキシル基で置換され、ハロゲン化水素の形態で存在する。本発明のニトロキシドをヒトなどの生体に投与できる。ニトロキシドは電子の供与または受容により酸化および還元反応を変調する。ニトロキシドの不対電子は、窒素核において、強力な電子供与基で置換された2つの隣接炭素原子により安定となる。N−O結合の酸素上の部分的負電荷と、2つの隣接炭素原子が一緒になって窒素核上に不対電子を局在化させる。ニトロキシドは一般的に複素環または直鎖構造のいずれかを有し得る。
(b)疾患を阻止すること、すなわち、その進展を阻止すること、および/または、
(c)疾患および/またはその症候を除くこと、すなわち、疾患および/またはそれにより起こされる症候の低減を図ること。
「含む」およびその同義語は「含んでいること」を意味する。
本発明によるCGNの生理的区画化すなわち部位指向送達は、いくつかの個々の化学構造または分子の修飾により達成できる。本明細書に開示された基準に従って分子を設計し、選択された透過および反応についての特性を得る。修飾CGN化合物を局所的に適用し、特殊な細胞、例えば、表皮の生存細胞に標的化する。ニトロキシドの膜溶解性を、本明細書に記載のようにCGNを修飾形に転換して変える。例えば、エステル基を加えて、よりリピド溶解性の分子をつくる。この基を細胞エステラーゼにより触媒される反応で除去すると、より水溶性が高く脂溶性が低い分子を得る(例えば、1log、2logs、3logs またはそれ以上までヒトリピドに溶性が低い)。一旦、修飾CGNが細胞に入ると、内因性エステラーゼの通常の細胞内加水分解メカニズムがCGNの誘導体をつくる。このものは膜透過性が低下している。このように、これらの化合物は細胞に容易に入るが(脂溶性のとき)、細胞から去りにくく(より水溶性が高く、より脂溶性が低いとき)、結果として、生存細胞に膜貫通で入るための透過性が増加する。脂溶性の減少および水溶性の増加はまた、通常の生理的クリアランス過程により生存の細胞あるいは組織からニトロキシドがにじみ出るのを減少させやすい。この特性がインビボでの選択可能な優先的区画化および持続的な治療または診断の能力を生み出す。
nは0から18の整数(例えば、1−6または1−4)であり、特に、1,2または3であり得る。
構造I、II、IIIの各々においてR1は、1不対電子を有するニトロキシルラジカルであり得、ニトロキシラジカルは下記の構造IVに示される環状ニトロキシルであり得る。
図4
ニトロキシドの安定な化学的性質からして、本明細書に開示の組成物は、種々の経路で投与できる。本発明の目的のために、「医薬」組成物または「薬学的に許容される」組成物は、非毒性に既知の技術で製剤でき、所望により、ヒトに投与するのが許容されている担体または補助剤とともに使用できる。実施例に下記するように、投与経路には、筋肉内、皮下、静脈内を含むすべての形の注射;眼、眼内、経口投与;口腔、鼻、肛門、膣を含むすべての形の粘膜貫通送達;皮膚または皮膚貫通の投与;胸内投与がある。このような組成物は、ワクチンに活性を溶液に保存するのに、当業者に既知の緩衝液、塩または他の溶媒を含み得る。
ヒドロキシフェニルトリアゾール誘導体の具体例は、例えば、2,4−ビス−{[4−(2−エチル‐ヘキシルオキシ)−2−ヒドロキシ]−フェニル}−6−(4−メトキシフェニル)−1,3,5−トリアジンなどのヨーロッパ特許-A1-775,698 に記載のものである。
ビス−レゾルシノール−ジアルキルアミノトリアジンの具体例は、例えば、ヨーロッパ特許-A1-780,382 に記載のものである。
ポリマー空洞球成分、本発明の新しい日光保護剤の成分c)は、例えば、ヨーロッパ特許-A-761,201 に記載のものである。
ニトロキシド化合物を医療的に有効な量で患者に投与する処置方法を開示する。ニトロキシド化合物は、直接一緒に結合する窒素原子と酸素原子および不対電子(・NO)を含む第1部分ならびに負電荷を提供する第2部分からなる。第1部分と第2部分は、両者の間に位置し両者と結合する連結基により結合され、ニトロキシドが患者中に存在するときに、第2部分の負電荷が第1部分の・NOを安定にする。分子の・NO部分を安定にすることにより、ニトロキシドが反応性酸素種と、患者中で長い時間相互作用し、これらの反応性酸素種の有害作用を変調する。
下記の化学合成プロトコールにより安定なニトロキシド遊離ラジカルを得る。その生理区画化は、インビボ膜透過性およびクレアランスの機能で、モノまたはジカルボン酸などの負電荷アニオンにより調整される。エステル誘導体の皮膚適用が特に利点を有する。このエステル誘導体は、増加した細胞内停留を有する第2ニトロキシド種に比して増加した膜透過性を有する第1ニトロキシド種でもって疎水性バリアーを通過する種々の透過性を提供し、細胞内エステラーゼによる加水分解後の抗酸化の医療上の有用性を提供する。
還流冷却器および磁気攪拌器を設置した乾燥の2首フラスコに45mlの無水tert−ブタノールおよび6.72gのカリウムtert−ブトキシドを窒素気の下に入れる。混合物を沸騰せしめ、すべての固体が溶解するまで加熱還流する。ついで、フラスコを冷やし、6.8gの4−オキソ−[TPO]、12mlのジエチルスクシネート、15mlの第3級ブタノールを加える。反応混合物を10分間加熱する。氷で冷やし、稀HCLで中和した後、アルコール分を減圧で留去する。残渣を350mlの氷水に注ぎ、稀塩酸でpH3の酸性とし、メチレンクロリドで抽出する。合わせた抽出物を1%アンモニアで数回洗う。溶液を氷で冷やし、酸性にし、メチレンクロリドで再度抽出する。得られた抽出物を硫酸ナトリウムで乾燥する。メチレンクロリドを蒸発せしめた後、残りの油状赤色液体をヘキサンで粉砕する。モノエステルの結晶を多孔磁器プレート上で押しつぶし、エーテルとヘキサンの混合物から再結晶する。産物は黄色角柱であり、融点が103℃、収率が60−70%である。
図14は、液体クロマトグラフィーによるTOPS、E−TOPS、DE−TOPSの分離を示す。
図15に示されるDE−TOPSから非エステル化TOPS形への加水分解という機構によって、選択的細胞膜透過性と、ニトロキシド化合物がエステラーゼなどの細胞内酵素またはエステル基を解裂する他の生化学的反応に暴露されたときの細胞内停留の増大とが得られる。疎水性プロドラッグとしてのDE−TOPSの適用により、角質層(死細胞)を通り、代謝的に活性の基底−膜層に浸透する。DE−TOPSの酵素性加水分解によって、産物TOPSが水層に、望ましくはそして主に細胞内物に停留できる。この反応を明らかにするために、DE−TOPSの化学的加水分解がオクタノールに対し水中に優先的に分散する化合物をつくることを示す。
このパイロット試験は、Tempolの証明としてのTE−TOPSの合成に関し、切除化合物をTOPS−エステルプロドラッグ構造中に組み込み得る。TE−TOPSを14N−E−TOPSおよび15N−Tempolから合成した。合成は複数工程であり、オキソ−Tempo(4−オキソ−2,2,6,6−テトラメチル−ピペリジン−1−オキシル)とジエチル−スクシネートとの縮合、続く14N−E−TOPSの15N−Tempolまたはエタノールによるエステル化を含み、それぞれ14N−DE−TOPSまたは14N−、15N−TE−TOPSを得る。ビラジカル14N−、15N−TE−TOPSを形成する反応は、HPLCおよびEPRでモニターした。14N−E−TOPSは、図16A左パネルに示すように、三重項EPRスペクトルを与える。そのHPLC溶出時間は、図16A右パネルに示すように、6.3分である。15N−Tempolは、図16B左パネルに示すように、二重項EPRスペクトルを与える。そのHPLC溶出時間は、図16B右パネルに示すように、5.3分である。反応3時間後に、5.3分および6.3分でのHPLCピークの高さが低下し、一方、13.9分で新たなピークが現れた(参照、図16C右パネル)。反応6時間後、15N−Tempolおよび14N−E−TOPSのピークがほとんど消失した(図16D右パネル)。13.9分のHPLCピークが14N−、15N−TE−TOPSからなることを確認するために、ピークを集めてEPRで分析した。EPRスペクトルを図16D左パネルに示す。新ピークの拡大および出現は、ビラジカル間のスピン−スピンおよびスピン−スピン二極相互反応による。
20mgの14N−、15N−TE−TOPSを1mlの10mM KOHに混合し、室温で一夜インキュベートした。溶液を塩酸で中和し、EPRスペクトルを Varian E9 分光器で測定した。掃引幅は100G、周波数は9.535GHz、マイクロ波は2mV、変調周波数は100Hzであった。図17Aにおける鋭いEPRスペクトルが、図16D左パネル中の幅広いスペクトルに比して、TE−TOPSが完全に加水分解されたことを示す。14N−、15N−TE−TOPSの皮膚用クリームをマウスの皮膚に用いた。尿サンプルがインビボでのエステラーゼ解裂を示した(参照、図17B)。
上記のように、インビボ治療的または診断的使用での既存ニトロキシド組成物の主な欠点は、これらの分子の半減期が限定されることおよびそのインビボ減少およびクリアランスが速いことである。Tempolの比較的短い半減期のために完全な治療または診断の効果を得るために、用量を多くして投与する必要が生じる。下記の図24に示すように、ニトロキシドの用量増加は、急性および慢性の毒性をもたらしかねない。しかし、化合物の血漿半減期が増加すると、急性または慢性期での全用量を減じ得る。
図21に示すように、両化合物を経口投与すると、E−TOPSのインビボ半減期はTempolよりも大きい。図18−21に示すように、用量は、E−TOPSが120mg/kg、Tempolが80mg/kgであり、モル比が1:1である。
図22に示すように、フランツ型拡散セルを用いて、DE−TOPS(100mM)の石油基剤を新鮮なヒト皮膚に適用した。レセプター緩衝液は0.01%ナトリウムアジドを有するPBSである。緩衝液を常に攪拌した。セルを37℃に循環湯浴で維持した。図22は皮膚浸透の程度を示す。レセプターセルの上部を覆うようにマウス皮膚(または供与体ヒト皮膚)を設置し、DE−TOPSを皮膚の上部に適用する。皮膚の下に、皮膚の生存を保つためにPBS緩衝液を適用する。24時間後に緩衝液をEPRアッセイのために収集する。皮膚の表面を清潔にし、皮膚サンプルをEPRシグナルについて試験する。TempolとDE−TOPSは適用前に同じシグナル強度を有するが、適用から24時間後には緩衝液中にTempolがDE−TOPSよりも大きく存在する。しかし、皮膚においてDE−TOPSシグナルはTempolよりも強い。すなわち、DE−TOPSは、皮膚においてTempolよりも局在する。DE−TOPSは、表皮および真皮の細胞に浸透し、そこで酵素的に加水分解されて、区画化される。遊離で溶性のTempol に比べると、これらの皮膚層においてDE−TOPSの均一の分散がある。
上記したように、非結合の小分子ニトロキシドの実際的臨床適用は、インビボでの活性の低下および比較的短いインビボ半減期により限定されている。インビボ半減期の低下の結果、同じ治療的または診断的効果を得るのに大きい用量を投与する必要がある。Tempolの毒性は、LD50モデルで測定でき、種々の用量でのマウスの生存率を調べる。図24は、用量増加を伴う生存率の関数としてのTempolについての急性毒性曲線を示す。E−TOPS製剤は用量3.5mmol/kgまで生存率に基本的に低下を示さないが、Tempolは低い用量2.0mmol/kgで生存率が0である。生存率における有意の差異は用量2.0−2.5mmol/kgで現れる。図25は、6時間後での血漿に対する尿化合物におけるE−TOPSからの強いEPRシグナル(濃度に対する比率で)を示す。正常な代謝による排泄およびクリアランスである。
図26は、E−TOPSのスーパーオキシドディムスターゼ活性をTempolと比較して示す。E−TOPSおよびTempolのSOD様活性を電子常磁共鳴により測定した。高ファイルEPRピークを時間とともにモニターした。NADHのない(−NADH)E−TOPSおよびTempol曲線はニトロキシドとスーパーオキシドの酵素的反応を示した。NADHのある(+NADH)E−TOPSおよびTempol曲線はオキソアンモニウムからヒドロキシルアミンへの2電子の減少を示した。結果からすると、E−TOPSはTempolに類似のSOD活性を有する。
E−TOPSは卒中での出血性形質転換のモデルにおいてニューロン保護性である。最初のニューロン培養基をラット胚(胚形成15日)の前脳からつくった。機械的粉砕を繰り返して、細胞をニューロン培養基(MEM Eagle (Sigma, M4526)) に分散した。この培養基には、グルタミン(2mM)、ペニシリン−ストレプトマイシン(50 units/ml-0.05mg/ml)、熱不活化ウマ血清(10%)、ウシ胎児血清(10%)、グルコース(0.5%, 28mM)を補充してあった。遠心分離(900g;5分間)後、細胞をポリ−L−リシン被覆96ウエルプレート上に密度5x106細胞/ウエルで入れた。ヘモグロビン塩類溶液を10μMの最終濃度で加え、E−TOPSを10μM、1μM、0.1μMの最終濃度で加えた。インキュベーション24時間後にニューロン生存能を、比色MTTアッセイで定量測定した。MTTを各ウエルに加え、染料の最終濃度を0.15mg/mlとした。プレートをインキュベーターに1時間もどし、取り込まれていないMTTを除去し、プレートを空気乾燥した。生存細胞に存在する紫色のホルマザン産物を(0.1N HClによる)酸性イソプロパノールの添加で溶解し、吸収強度(540nm)を96ウエルプレートリーダーで測定した。%対照=(試験A540/平均対照)x100%。図27は、E−TOPSサンプルでのニューロン生存能の増加を示す。
SIN−1毒性を、ペルオキシニトリートの生成に基づく培養ラット皮質ニューロンで調べる。このモデルでTOPSまたはTOPSエステルがニューロン保護性であることは、SIN−1によるEGFR活性のニトロキシド依存性遮断に翻訳できる。
DE−TOPS、E−TOPS、TOPSのインビトロ抗酸化活性を明らかにするために、ゴールド標準としてのTempolと比較した。Tempolはインビトロでペルオキシニトリートによる4−ヒドロキシフェニル酢酸(HPA)のニトロ化を防止した。この予備的試験において、HPAのペルオキシニトリート依存性ニトロ化のTempol、DE−TOPS、E−TOPSまたはTOPSによる阻害%を測定した。
UV光誘発アポトーシスを、アポトーシスが腫瘍壊死因子アルファ(TNF-α)への暴露により誘発されるモデルで測定できる。図30に示すように、TNF-αプラスE−TOPSに暴露された細胞について、時間経過でのアポトーシス強度を対照とともに測定する。培養されたヒトY−79細胞をpH7.4で培養フラスコに保持し、アンホテリシン/ペニシリン/ストレプトマイシン処理(1%v/v)RPMI1640倍地とL−グルタミンおよび10%ウシ胎児血清の混合物中、インキュベーターにおいて10%CO2/90%空気条件で、37℃、湿度20%で保持した。E−TOPSを10mg/ml製剤として調製した。この保存溶液から、10μlを1mlの細胞懸濁液に加え、E−TOPSの最終濃度を100μg/mlとした。連続的培地希釈を調製するためにヒトTNF-α(10μg/1ml)を用い、TNF-α濃度5.0ng/mlを得た。細胞の密度および生存能を、Zeiss 逆送顕微鏡のトリパンブルー排除アッセイで調べ、サイトメトリー・アッセイの前の細胞濃度を確認した。TNF-αを緩やかに混合した後、バイアルを所定の濃度で6、24、48時間セットし、サイトカイン処理細胞をPBSに再懸濁した。細胞をアネキシンV−FITCコンジュゲート溶液に再懸濁し、室温で暗所で15分間インキュベートした。結合緩衝液を各サンプルに加え、細胞密度を約1.0x106細胞/mlまでとした。結合緩衝液は下記のものを混合して調製した:10mlの1M HEPES/NaOH、pH7.4、30mlの5M NaCl、5mlの1M MgCl2、1.8mlの1M CaCl2、52.2mlのDDW。
図32に示すように、UVBに11日間暴露すると、UVB暴露のない正常なマウス皮膚に比して顕著な皮膚肥厚が生じる。組織病理学的検査によると、DE−TOPSの皮膚適用がUVB誘発の皮膚肥厚を劇的に低下する。皮膚適用はUVB照射の10分前に毎日行った。UVB量は200mJ/cm2、15分間である。UVBランプは、スペクトル分散が80%で290−310nm、20%で310以下である。DE−TOPS製剤は石油基剤中100mMである。図31に示すように、類似のプロトコールで、皮膚焼けはDE−TOPSにより急性的に阻止される。図33に示すように、同じマウスで4か月間、皮膚損傷がDE−TOPSにより慢性的に阻止された。このサンプルでDE−TOPSをUVB照射の2時間前に適用した。
DE−TOPSを照射15分後に適用した以外は、実施例13と同じプロトコールを用いた。DE−TOPSの保護効果を図34に、組織病理学的変化を図35に示す。
本試験では、実施例13と同じプロトコールを用いた。UVB誘発皮膚障害に対する保護についてのDE−TOPSの作用を、照射10分前または2時間前の適用で、Tempolと比較して試験した。図36の結果は、DE−TOPSがTempolよりも長い治療作用を提供することを示す(参照、図36BおよびC)。
市販の皮膚治療薬に比してのCGNの利点を調べるために、BE−TOPS、レチン−Aおよびプラセボを、交互の日のUVB照射に暴露されたマウスの皮膚に投与した。レチン−Aでの処置で、対照マウスに比して皮膚のしわが減少した(参照、図37)。レチン−Aの光感受性は背面皮膚の脱色および剥離を起こすが、背面皮膚の組織的検査によると、レチン−A処置は開および深シスト(cysts)の密度を減少せしめた。
BE−TOPSもレチン−Aに勝る利点を有し、DE−TOPS処置マウスはUVB感受性である。
Claims (18)
- 薬学的に許容される担体および請求項1の化合物を含む医薬組成物。
- 薬学的に許容される担体が、ゲル、クリーム、軟膏、エマルション、固体不活性粉末および塩類溶液から選択される、請求項2の医薬組成物。
- ポリニトロキシルアルブミンをさらに含む、活性酸素種損傷に由来の疾患または障害の治療または予防用途の組成物である、請求項2の医薬組成物。
- 非ステロイド性抗炎症剤をさらに含む、抗炎症用途の組成物である、請求項2の医薬組成物。
- 抗生物質をさらに含む、抗菌用途の組成物である、請求項2の医薬組成物。
- 哺乳類の細胞に投与して酸化反応を変調するための、請求項1の化合物を含む医薬組成物。
- 局所適用のために製剤されている、請求項2〜7のいずれかの組成物。
- ヒトへの注射用に製剤されている、請求項2〜7のいずれかの組成物。
- 経口投与のために製剤されている、請求項2〜7のいずれかの組成物。
- 眼投与のために製剤されている、請求項2〜7のいずれかの組成物。
- エアロゾル投与のために製剤されている、請求項2〜7のいずれかの組成物。
- 直腸投与のために製剤されている、請求項2〜7のいずれかの組成物。
- 化粧品的に許容される担体および請求項1の化合物を含む化粧料組成物。
- 化粧品的に許容される担体が、ゲル、クリーム、軟膏、エマルション、固体不活性粉末および塩類溶液から選択される、請求項14の化粧料組成物。
- ポリニトロキシルアルブミンをさらに含む、請求項14の化粧料組成物。
- 非ステロイド性抗炎症剤をさらに含む、請求項14の化粧料組成物。
- 抗生物質をさらに含む、請求項14の化粧料組成物。
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