JP4359520B2 - 細胞播種基材の保管方法 - Google Patents
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Description
しかしながら、本発明者らが検討したところ、この保管時間中における細胞播種基材の保管方法が、治療の成功率に極めて重大な影響を与えることがわかった。
以下に本発明を詳述する。
本発明者らは、更に鋭意検討の結果、患者から採取した骨髄液に由来する血清中に細胞播種基材を浸漬しておけば、通常の手術にかかる1〜6時間程度の間、細胞の組織再生用基材からの剥離を最小限に抑制し、治療効果の高い組織を供することができることを見出し、本発明を完成するに至った。
図1に細胞播種基材の保存容器の一例を示した。図1に示した保存容器3は、本体部32と蓋部31とからなり、支持棒34で支持した状態で筒状の細胞播種基材1を血清2中に浸漬して保存することができる。本体32の蓋側の縁部には切欠33が設けられていることから、血清には気液交換により酸素が供給される。かかる構成において、支持捧34の使用により、筒状の細胞播種基材1を変形しないよう支持すると共に、血清の容量を極限まで少なくする利点がある。かかる構成のものは血管用等、筒状のものを対象としたときに好適である。
また、図2に細胞播種基材の保存容器の別の一例の断面図を示した。図2に示した保存容器4は、本体部42と蓋部41とからなり、蓋部41に設けられた押板43により押さえつけることにより細胞播種基材1を血清2中に浸漬して保存することができ、この場合も血清の使用量を少なくできる。かかる発想は、他に容器全体の大きさを細胞播種基材1に対して適当なものとすることにより、より少量の血清でも保存が可能になる。また、気液界面を大きくとれることから、気液交換による血清への酸素供給効率にも優れる。
上記容器の材質としては特に限定されないが、滅菌や温度管理が容易であることから、ステンレス等からなるものが好適である。
上記細胞播種基材としては、組織再生用基材上に患者から採取した骨髄細胞、又は、骨髄細胞から分化若しくは誘導させてできた細胞を播種することにより作製されたものであれば特に限定されず、その目的により、血管、心筋、軟骨、骨、消化管、皮膚等を再生するのに用いることができる。
上記骨髄細胞は、通常、患者の腸骨から骨髄液を採取し、得られた骨髄液を遠心分離することにより、血清、赤血球及び勾配液等の他の成分から分離したものを用いることができる。なお、上述のように、この際に分離された血清は本発明の保管方法に用いる。
また、上記骨髄細胞から分化若しくは誘導させてできた細胞としては、例えば、間葉系幹細胞、造血幹細胞等が挙げられる。
上記生体内吸収性高分子材料としては特に限定されないが、例えば、ポリラクチド、ポリグリコリド、ラクチド−ε−カプロラクトン共重合体等が好適であり、なかでも、L−ラクチド−ε−カプロラクトン共重合体は、L−ラクチドとε−カプロラクトンとの配合比を調整することにより、強度や柔軟性、生体内に吸収されるまでの期間を調整できることから好ましい。
上記組織再生用基材の形状としては特に限定されず、例えば、シート状、チューブ状等が挙げられる。
200デシテックスのポリグリコリド糸から編成した直径16mmの筒状平編地をテフロンロッドにかぶせ、真空下で120℃、3時間熱処理した。これを−80℃に冷却し、次いでL−ラクチド−ε−カプロラクトン共重合体(重量平均分子量40万、ラクチド含有量50モル%)をジオキサンに溶解して得た4重量%の溶液にディップした。これを−80℃で凍結し、真空度0.1Torrの条件で凍結乾燥した後、70℃、12時間真空乾燥した。更に、ロッドから取り外して、反転してテフロンロッドにかぶせた後、−80℃に冷却し、再度ディップし、−80℃で凍結し、凍結乾燥した後、70℃、12時間真空乾燥し、ポリグリコリド繊維で補強されたL−ラクチド−ε−カプロラクトン共重合体からなる内径16mm、長さ130mmのチューブ状の血管用の組織再生用基材を得た。
骨髄液由来の血清の代わりに、リン酸緩衝食塩水(シグマ社製;PBS)、細胞培養液(シグマ社製;RPMI1640)、成長因子(R&Dシステムズ社製;VEGF、R&Dシステムズ社製;HGF、シグマ社製;bFGF:GF)を1.25μg/500mLの濃度で含有する培養液(RPMI1640+GF)、成長因子GFとウシ胎児血清(モーゲイトエクスポーツプテイ社製;FBS)をそれぞれ1.25μg/500mL及び10重量%の濃度で含有する培養液(RPMI1640+GF+FBS)を用いて保管を行った以外は実施例1と同様の方法により、細胞播種基材を作製し、これを保管した。
実施例1及び比較例1において保管した後、細胞播種基材を直径6mmに打ち抜き、細胞播種基材中の細胞数を、DNAアッセイ法により計数した。即ち、凍結融解法にて細胞膜を破壊した後、流出した細胞核内DNAに蛍光Hoechstを結合させ、蛍光量を測定し、検量線から細胞数を算出した。実験は、各区についてn=3で行い、その平均値を求めた。
結果を表1に示した。
また、6時間保管後の細胞播種基材の一部を採取し、その走査型電子顕微鏡像を、実施例1につていは図3に、比較例1でPBSを用いた場合を図4に、比較例1でRPMI1640を用いた場合を図5に、比較例1でRPMI1640+GFを用いた場合を図6に、比較例1でRPMI1640+GF+FBSを用いた場合を図7にそれぞれ示した。
2 血清
3 細胞播種基材保存容器
31 蓋部
32 本体部
33 切欠
34 支持棒
4 細胞播種基材保存容器
41 蓋部
42 本体部
43 押板
Claims (2)
- 患者から採取した骨髄細胞、又は、骨髄細胞から分化若しくは誘導させてできた細胞を組織再生用基材に播種した細胞播種基材を保管する方法であって、前記患者から採取した骨髄液由来の血清のみの中に前記細胞播種基材を浸漬することを特徴とする細胞播種基材の保管方法。
- 細胞播種基材は、血管、心筋、軟骨、骨、消化管、又は皮膚を再生することを特徴とする請求項1記載の保管方法。
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