JP4059627B2 - グルタチオン誘導体とその投与形態 - Google Patents
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Description
技術分野
本発明は造血促進を目的として生体に投与した際に、その造血促進活性を作用部位である骨髄で効率的に発現させ得るグルタチオン誘導体とその投与形態に関する。更に詳しくは、γ−ｇｌｕｔａｍｙｌ Ｓ（ｂｅｎｚｙｌ）ｃｙｓｔｅｉｎｙｌ−Ｒ（−）−ｐｈｅｎｙｌ−ｇｌｙｃｉｎｅを炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとすることで、その生理活性を損なうことなく生体中での安定化をはかるとともに、標的組織である骨髄に効率的に分布し得る構造を付与し、さらに、特にその投与法として重要な注射剤における安全かつ効果的なコロイド状組成物の投与形態を提供することに関する。
背景技術
癌の治療における化学療法剤投与、或いは放射線療法による造血機能抑制は、副作用として好中球減少症や血小板減少症を引き起こす。このうち好中球減少症では、健常状態に比べて免疫力が低下して、重症の感染症に曝される危険性が高まるため、末梢血中の好中球数の回復促進効果のある生理活性タンパクである顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）などが臨床的に投与され、十分な薬理効果が得られているものの、遺伝子組換技術を用いた培養細胞で製造しているために、高い薬価が医療経済学的に見て問題である。また、これらはその投与法についても、現状で実用的に確立されているのは注射に限られ、患者の苦痛や簡便性を考えると、注射剤とともに経口剤などの別の投与形態も可能な薬物が望まれている。
このようなＧ−ＣＳＦなどの生理活性タンパク医薬品に代替して、低コストで供給し得てかつ非注射ルートでの投与の可能性もある低分子性造血促進物質が望まれる状況下で、ＷＯ９６４０２０５号明細書で開示されるγ−ｇｌｕｔａｍｙｌ ｅｔｈｙｌ ｅｓｔｅｒ Ｓ（ｂｅｎｚｙｌ）ｃｙｓｔｅｉｎｙｌ−Ｒ（−）−ｐｈｅｎｙｌ−ｇｌｙｃｙｌ ｅｔｈｙｌ ｅｓｔｅｒ（ＴＥＲ１９９）とその類縁低分子化合物に、ｉｎ ｖｉｔｒｏで顆粒球・マクロファージ前駆細胞コロニー形成を促進させる効果が見出された。また当該化合物は、ｉｎ ｖｉｖｏでも６０〜１２０ｍｇ／ｋｇ−体重という非常に高用量で、かつ必ずしも臨床的には許容し得ない投与法（腹腔内投与）での実験だが、化学療法剤（５−フルオロウラシル）投与による造血機能抑制モデルラットにおいて、末梢血中の好中球、血小板などの細胞数の回復を促進する活性があることも確認された。しかしながら本発明者らの実験によると、ＴＥＲ１９９はラットの血液などの生体試料溶液中では極めて不安定で、かかる造血促進作用を発現させるには非効率的であることがわかった。さらにＷＯ９６４０２０５号明細書の実施例のような高用量を、例えば静脈内投与した場合に、その溶解度の低さや組織移行性など物性に起因する性質から、投与部位に炎症を生じるなどの問題があることがわかった。以上のことからＷＯ９６４０２０５号明細書の実施例に記載のＴＥＲ１９９は、そのデータから実用に耐え得る有効性を有していないと考えられた。
次に、ＴＥＲ１９９はグルタチオンを基本骨格構造とするグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）の阻害剤であることがＷＯ９６４０２０５号明細書他に記載されている。ＧＳＴは、抗癌剤アルキル化剤などに対する耐性に関連している可能性が報告されているいる他、利尿剤として利用されるエタクリン酸や非ステロイド系消炎鎮痛剤として利用されるインドメタシン、ケトプロフェン等にも、ＴＥＲ１９９同様にこのＧＳＴの作用を阻害する活性があることが知られている（臨床検査，Ｖｏｌ．３９（４），ｐ４５０−４５３（１９９５））。
また、骨髄における造血促進作用にもＧＳＴ阻害能が関係している可能性が十分にある。実際に、ＴＥＲ１９９とは全く異なる構造を有するエタクリン酸が、ｉｎ ｖｉｔｒｏで活性型ビタミンＤ３と協同的に白血病細胞の分化を誘導するような作用を有することが報告されている（Ｌｅｕｋｅｍｉａ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｖｏｌ．２０（９），ｐ７８１−７８９（１９９６））。
発明の開示
以上ような従来技術における課題の解決法を鋭意検討した結果、本発明者らは以下の事実を見出し本発明に到達した。
すなわち、まずγ−ｇｌｕｔａｍｙｌ Ｓ（ｂｅｎｚｙｌ）ｃｙｓｔｅｉｎｙｌ−Ｒ（−）−ｐｈｅｎｙｌ−ｇｌｙｃｉｎｅ（ＴＥＲ１１７）を炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとすることで、その造血促進に関わる生理活性を損なうことなく生体中での安定化をはかるとともに、標的組織である骨髄に効率的に分布し得る構造を付与することができた。ここで炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとはＴＥＲ１１７に２ヶ所あるカルボキシル基のどちらか一方のみをエステル化したモノエステル、どちらか一方を炭素数１２未満の短鎖または中鎖のアルキルまたはアルケニルとし、もう一方を炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとしたジエステル、または両方を炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとしたとしたジエステルのいずれでも一定の効果が得られた。尚、本発明においては、炭素数１〜２のを短鎖、炭素数３〜１１を中鎖および、炭素数１２以上を長鎖と定義する。長鎖エステルとすることで、ＷＯ９６４０２０５号明細書に好適例として開示されるジエチルエステル体ＴＥＲ１９９に比較して、生体中での安定性、具体的にはエステラーゼによる分解に対する安定性が向上した。一方で、ｉｎ ｖｉｔｒｏ実験で造血促進に関わる生理活性がＴＥＲ１９９と同等であることを知見した。さらに、このＴＥＲ１１７の炭素数１２以上の長鎖エステルでは、脂肪乳剤のようなコロイド状の医薬組成物を利用することで、薬物動態学的パラメーターの分布容積とクリアランスをいずれも低下させることができ、結果的に標的組織である骨髄での薬理作用の効率的発現と、物性や生理作用そのものに関連する安全性上の問題回避を達成し得ることを知見した。
すなわち本発明は下記式（Ｉ）：
（式中ＡはＨまたはＣ１−Ｃ２０のアシル基を表わし、Ｒ１はＣ１−Ｃ２６のアルキル基またはＣ３−Ｃ２６のアルケニル基を表わし、Ｒ２はＨ，Ｃ１−Ｃ２６のアルキル基またはＣ３−Ｃ２６のアルケニル基を表わすが、ただし、Ｒ１がＣ１−Ｃ１０のアルキル基またはＣ３−Ｃ１０のアルケニル基で、かつＲ２がＨ，Ｃ１−Ｃ１０のアルキル基またはＣ３−Ｃ１０のアルケニル基である場合を除く）
で表されるグルタチオン誘導体またはその塩に関する。
発明を実施するための形態
本発明のグルタチオン誘導体は、下記式（Ｉ）：
（式中ＡはＨまたはＣ１−Ｃ２０のアシル基を表わし、Ｒ１はＣ１−Ｃ２６のアルキル基またはＣ３−Ｃ２６のアルケニル基を表わし、Ｒ２はＨ，Ｃ１−Ｃ２６のアルキル基またはＣ３−Ｃ２６のアルケニル基を表わすが、ただし、Ｒ１がＣ１−Ｃ１０のアルキル基またはＣ３−Ｃ１０のアルケニル基で、かつＲ２がＨ，Ｃ１−Ｃ１０のアルキル基またはＣ３−Ｃ１０のアルケニル基である場合を除く）
で表すことができる。
上記式（Ｉ）においてＡはＨまたはＣ１−Ｃ２０のアシル基を表わす。かかるＣ１−Ｃ２０のアシル基は飽和または不飽和のアシル基のうち、炭素数１〜２０の直鎖状または分枝鎖状のアシル基を表わし、例えば、ホルミル基、アセチル基、プロピオニル基、ブチリル基、イソブチリル基、バレリル基、イソバレリル基、ヘキサノイル基、ヘプタノイル基、オクタノイル基、ノナノイル基、デカノイル基、ラウロイル基、ミリストイル基、パルミトイル基、ステアロイル基、リノレオイル基、アラキドノイル基等が挙げられる。
Ａの好ましい基としてはＨ、ホルミル基、アセチル基等が挙げられる。
上記式（Ｉ）においてＲ１はＣ１−Ｃ２６のアルキル基またはＣ３−Ｃ２６のアルケニル基を表わす。かかるＲ１のＣ１−Ｃ２６のアルキル基は炭素数１〜２６の直鎖または分枝鎖アルキル基を表わす。直鎖アルキル基またはアルケニル基としては、酵素分解を受けてアルコールを生成した場合を想定すると、代謝異常以外で天然に存在する長鎖脂肪酸等は炭素数が偶数であることが一般的であることから、主に炭素数が偶数のアルキル基またはアルケニル基を例示するが、奇数のアルキル基またはアルケニル基を除外するわけではない。
かかるＲ１のＣ１−Ｃ２６のアルキル基としては、例えばメチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、イソブチル基、ｓｅｃ−ブチル基、ｔ−ブチル基、ｎ−ペンチル基、イソペンチル基、３−ペンチル基、ヘキシル基、オクチル基、デシル基、ドデシル基、テトラデシル基、ヘキサデシル基、オクタデシル基、イコシル基、ドコシル基、テトラコシル基、ヘキサコシル基等が挙げられる。
Ｒ１がＣ３−Ｃ２６のアルケニル基である場合、かかるアルケニル基は炭素数３〜２６の直鎖または分枝鎖アルケニル基を表わすが、例えばアリル基、ブテニル基、ペンテニル基、ヘキセニル基、ヘプテニル基、オクテニル基、ノネニル基、デセニル基、ドデセニル基、テトラデセニル基、ヘキサデセニル基、オクタデセニル基、オクタデカジエニル基、オクタデカトリエニル基、イコサトリエニル基、イコサテトラエニル基、イコサペンタエニル基、ドコサペンタエニル基、ドコサヘキサエニル基、テトラコセニル基等が挙げらる。
上記式（Ｉ）においてＲ２はＨ，Ｃ１−Ｃ２６のアルキル基またはＣ３−Ｃ２６のアルケニル基を表わす。かかるＲ２のＣ１−Ｃ２６のアルキル基およびＣ３−Ｃ２６のアルケニル基は、それぞれＲ１で例示したＣ１−Ｃ２６のアルキル基およびＣ３−Ｃ２６のアルケニル基と同様の基を表わす。
式Ｉの化合物は、このようなＡ，Ｒ１、Ｒ２の組み合わせの全てを含むが、中でも好ましい組み合わせの具体例を表１に例示する。
このようなＡ，Ｒ１，Ｒ２の特に好ましい組み合わせとしては、ＡがＨで、Ｒ１がエチル基で、Ｒ２がテトラデシル基、ヘキサデシル基、オクタデシル基、オクタデカジエニル基、オクタデカトリエニル基、イコシル基、イコサトリエニル基、イコサテトラエニル基、イコサペンタエニル基またはドコシル基の組み合わせ；ＡがＨで、Ｒ１がドデシル基で、Ｒ２がデシル基またはドデシル基の組み合わせ；ＡがＨで、Ｒ１がテトラデシル基、ヘキサデシル基、オクタデシル基またはイコシル基で、Ｒ２がＨまたはエチル基の組み合わせ等が挙げられる。
さらにこの中でも、エステラーゼによる分解物として生じる副生成物の高級アルコールの毒性が、炭素数８〜１２のものよりも炭素数１６や１８のものの方がより低いことが知られていること（Ｔｈｅ Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ Ｌｉｂｒａｒｙ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓａｆｅｔｙ Ｄａｔａ，Ｅｄｉｔｉｏｎ Ｉ）などを考慮すると、ＡがＨで、Ｒ１がエチル基で、Ｒ２がテトラデシル基、ヘキサデシル基、オクタデシル基、オクタデカジエニル基、オクタデカトリエニル基、イコシル基、イコサトリエニル基、イコサテトラエニル基、イコサペンタエニル基またはドコシル基の組み合わせか、ＡがＨで、Ｒ１がテトラデシル基、ヘキサデシル基、オクタデシル基またはイコシル基で、Ｒ２がエチル基の組み合せが最も好ましい例として挙げることができる。
本発明のグルタチオン誘導体を構成する３つのアミノ酸はそれぞれキラル中心を有するが、そのコンフィギュレーションはＬＬＤかＬＬＬで、好ましくはＬＬＤである。
また、上記式（Ｉ）で表される化合物は酸付加塩、あるいは塩基付加塩を形成する場合がある。かかる酸付加塩としては、具体的には例えば塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸等の鉱酸；ギ酸、酢酸、トリフルオロ酢酸、プロピオン酸、シュウ酸、マロン酸、コハク酸、フマール酸、マレイン酸、乳酸、リンゴ酸、酒石酸、クエン酸、メタンスルホン酸、エタンスルホン酸等の有機酸；アスパラギン酸、グルタミン酸などの酸性アミノ酸との付加塩が挙げられ、また、塩基付加塩としては、具体的には例えばリチウム、ナトリウム、カリウム等の１価の金属塩；マグネシウム、カルシウム、亜鉛、アルミニウム等の２価もしくは３価の金属塩；リジン、アルギニン等の塩基性アミノ酸との付加塩；アンモニウム、あるいはメチルアンモニウム、ジメチルアンモニウム、トリメチルアンモニウム、ベンジルアンモニウム、モノエタノールアンモニウム等の有機アンモニウム塩が挙げられる。さらに本発明には、上記式（Ｉ）で表される化合物の水和物、各種の溶媒和物や結晶多形の物質も含まれる。
本発明のグルタチオン誘導体は、この分野で公知のペプチドの合成法にならって合成することができる。そのような公知の方法としては、例えば「ペプチド合成の基礎と実験」（泉屋信夫、加藤哲夫、青柳東彦、脇道典著：丸善）、あるいは「第４版実験化学講座２２−有機合成ＩＶ 酸・アミノ酸・ペプチド」（相本三郎、楠本正一、竜田邦明、早川芳宏、山本景祚、若宮建昭著：丸善）等に記載の通常のペプチド合成法により合成後、精製する方法や、さらに、本発明のグルタチオン誘導体、またはその塩を構成する各アミノ酸残基の側鎖および／またはペプチドアミノ末端および／またはペプチドカルボキシ末端が化学修飾や保護がなされている場合には、ペプチド合成後に化学修飾するか、あるいは化学修飾されたアミノ酸を用いてペプチド合成するか、あるいはペプチド合成の最終脱保護の反応条件を適当に選ぶ等、ペプチド合成化学の分野において従来公知の方法（「ペプチド合成の基礎と実験」（泉屋信夫、加藤哲夫、青柳東彦、脇道典著：丸善）、「続医薬品の開発−第１４巻−ペプチド合成」（矢島冶明監修：広川書店）、「生化学実験講座−１−タンパク質の化学ＩＶ−化学修飾とペプチド合成」（日本生化学会編、東京化学同人）、「タンパク質の化学修飾」上・下（大野素徳、金岡祐一、崎山文夫、前田浩））を挙げることができる。
好ましい合成スキームを実施例に記載したが、これにより本発明の化合物の合成方法を限定するものではない。
本発明のグルタチオン誘導体を有効成分とする医薬組成物は、錠剤、丸剤、カプセル剤、散剤、顆粒剤、液剤、懸濁剤、乳剤、クリーム剤、軟膏剤、エアゾール剤、シロップ剤、トローチ剤、ローション剤、パップ剤、および坐剤等の形態を利用することができる。このような形態を利用することによって経口、経腸、経粘膜、経皮、点眼、経気道、および注射等でヒトまたは動物に投与することができる。
この内、好ましい投与ルートのひとつである注射剤の場合、コロイド状組成物を好ましい形態として挙げることができる。
尚、本発明のコロイド状組成物は以下のように定義する。
薬科学大辞典（第２版；廣川書店）によれば、「コロイド」は、「分散状態の１種。光学顕微鏡では直接見えない微粒子（直径１〜１００ｎｍ）が分散している状態をいう。また分散相（粒子）のみを呼ぶこともある。分散媒及び分散相には固、液、気体があり、気−気以外の全ての組合わせが有り得る。コロイド分散系ともいう。膠質とも呼ぶ。」と説明されている。本発明のコロイド状組成物とは、通常のコロイドの定義よりその分散粒子がやや大きい粒度のものも含まれ、光学顕微鏡では分散粒子が容易には観察できず、９０％以上の分散粒子の直径が１ｎｍ〜１μｍの範囲に入る固体−液体、液体−液体、又は固体及び液体−液体分散液の状態である組成物を意味し、その中には日本薬局方（第十二改正）に記載の懸濁剤・乳剤が、その粒度分布の限定される範囲において含まれるとともに、脂肪乳剤、リポソームもこの中に含まれるものとし、さらに、乾燥固形状態のものを使用時に水を添加して、上記のコロイド状組成物を調製する場合も含まれるものとする。
本発明のコロイド状組成物としては、脂肪乳剤、リポソーム、及び固体懸濁物等を挙げることが出来る。このうち低コストで供給できることや、用時混合調製して投与することも可能であることから、脂肪乳剤が特に好ましい。
また、経口投与や経腸投与の場合にも、コロイド状組成物を用いることができる。この場合も脂肪乳剤を好ましいコロイド状組成物として挙げることができる。ここで用いる脂肪乳剤としては、後述する一般的な脂肪乳剤以外に、消化管でより速やかに代謝や吸収が進み、有効成分をリンパ液中キロミクロンを経由するルートで効率的に血流に乗せることができる中鎖脂肪酸を含有する脂肪乳剤や、ジグリセリドを含有する脂肪乳剤がより好ましい例として挙げられる。また、経口ルート等からリンパ指向性を目的として投与する医薬組成物は、コロイド状組成物に限定されるわけではなく、錠剤等の投与形態であっても良い。
本発明の脂肪乳剤は、全成分中約０．１〜５０（ｗ／ｖ）％の油成分（ただし、脂肪乳剤と有効成分を用時混合調製して投与するような場合、全成分中の油成分の割合はこのさらに５分の１から１０００分の１程度になることもある）、油成分１００部に対して１〜３００部（質量比）の乳化剤、適当量の水よりなる。さらに、必要に応じて乳化補助剤、安定化剤、等張化剤、抗酸化剤、ｐＨ調整剤などを添加することができる。また脂肪乳剤の油成分を核とする粒子（以下油相エマルション粒子と記述する）の表面を糖、ポリエチレングリコールなどの合成高分子、タンパク質などで修飾して、体内分布を変化させて効果を向上させることも可能である。そして、本発明の好ましい投与形態である脂肪乳剤に含まれる有効成分のグルタチオン誘導体の濃度は全成分に対して０．０００１〜１０（ｗ／ｖ）％である。
本発明の脂肪乳剤の油成分としては、大豆油、綿実油、サフラワー油、トウモロコシ油、ゴマ油、硬化油、ツバキ油、オリーブ油、ナタネ油、ヤシ油、ユーカリ油、ラッカセイ油、小麦胚芽油、中鎖脂肪酸トリグリセリド、ジグリセリド、セチルアルコール、ステアリルアルコール、トリアセチン、エイコサペンタン酸、ドコサヘキサン酸等が使用できるが、医薬品用として使用可能なものであれば特に制限はない。中でも高純度の精製大豆油（純度：トリグリセリド、ジグリセリド及びモノグリセリドとして９９．９％以上含有）が注射剤として用いる脂肪乳剤には好適である。
本発明の脂肪乳剤の乳化剤としては、レシチン、水素添加レシチン、リン脂質とその誘導体、コレステロールとその誘導体、非イオン性界面活性剤等が使用できるが、医薬品用として使用可能なものであれば制限はない。レシチン、水素添加レシチン、リン脂質はその由来を特に限定されず、例えば、大豆油等の植物由来のものや卵黄等の動物由来のもの等が用いられる。レシチンは不飽和脂肪酸を持つものが多く、その不飽和結合部を接触還元などにより水素添加し酸化しにくくさせたものが水素添加レシチンである。また高純度のジパルミトイルホスファチジルコリン等を乳化剤として添加することも可能である。さらに血中のアポタンパクのリポ粒子への吸着を低下させて肝臓への取込みを抑制し、血中滞留性を向上させるような目的で、ポリエチレングリコール等で修飾されたリン脂質であるジステアロイル−Ｎ−（モノメトキシポリエチレングリコールスクシニル）−ホスファチジルエタノールアミン等を乳化剤に混合することも可能である。
本発明の脂肪乳剤の乳化補助剤としては炭素数６〜３０、好ましくは１２〜２４の脂肪酸またはその塩が使用できるが、医薬品用に添加可能なものであれば特に制限はない。中でも天然脂肪酸が最も好ましくその具体例としてステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、パルミチン酸、リノレン酸が挙げられる。生理的に受け入れられる脂肪酸の塩としてはアルカリ金属塩、アルカリ土類金属塩を挙げることができる。
本発明の脂肪乳剤の安定化剤としてはコレステロール、ホスファチジン酸、アルブミン、ビニル重合体、非イオン性界面活性剤が好ましいが、医薬品に添加可能なものであれば特に制限しない。この中でビニル重合体にはポリビニルピロリドン等が、非イオン性界面活性剤にはポリアルキレングリコール、ポリオキシアルキレン共重合体、硬化ヒマシ油ポリオキシアルキレン誘導体、ヒマシ油ポリオキシアルキレン誘導体等を用いることができる。
本発明の脂肪乳剤の等張化剤としては、例えばグリセリン、グルコース等が挙げられるが医薬品に添加可能な等張化剤について特に制限はない。
本発明の脂肪乳剤の抗酸化剤は、該乳化剤がリン脂質の場合に配合することが好ましく、このようなものとしては医薬品に使用可能なものであれば特に制限はないが、ビタミンＥを好ましいものとしてあげることができる。
本発明の脂肪乳剤のｐＨ調整剤としては、例えば水酸化ナトリウム、塩酸等が使用できるが医薬品に添加可能なｐＨ調整剤であれば特に限定されない。
本発明の脂肪乳剤の油相エマルション粒子の平均的な大きさは２００〜４００ｎｍ程度のものが好ましいが、血漿リポタンパクのように５〜１００ｎｍ程度のより小さい粒子径を持つものもまた好ましい例として挙げられる。
本発明のリポソームの脂質二重膜を構成する脂質成分としては、レシチン、水素添加レシチン、リン脂質とその誘導体、コレステロールとその誘導体等が使用できるが、医薬品用として使用可能なものであれば制限はない。レシチン、水素添加レシチン、リン脂質はその由来を特に限定されず、例えば、大豆油等の植物由来のものや卵黄等の動物由来のもの等が用いられる。レシチンは不飽和脂肪酸を持つものが多く、その不飽和結合部を接触還元などにより水素添加し酸化しにくくさせたものが水素添加レシチンである。また高純度のジパルミトイルホスファチジルコリン等のリン脂質を添加することも可能である。さらに血中滞留性を向上させるような目的で、ポリエチレングリコール等で修飾されたリン脂質であるジステアロイル−Ｎ−（モノメトキシポリエチレングリコールスクシニル）−ホスファチジルエタノールアミン等を混合することも可能である。また標的組織への指向性を高めるために、標的組織の抗原を認識する免疫グロブリン等を膜脂質成分に結合させることも可能である。
本発明の固体懸濁液の懸濁化剤としては、非イオン性界面活性剤、セルロースエーテル、デンプンとその誘導体、プルラン、ビニル重合体、アクリル酸重合体、アラビアゴム、アルギン酸とその誘導体、カンテン、ゼラチン、キサンタンガム、レシチン、水素添加レシチン、リン脂質等を用いることができるが、医薬品用に添加可能な懸濁化剤であれば特に制限はしない。この中で非イオン性界面活性剤としてはポリアルキレングリコール、ポリオキシアルキレン共重合体、硬化ヒマシ油ポリオキシアルキレン誘導体、ヒマシ油ポリオキシアルキレン誘導体等を挙げることができる。セルロースエーテルとしてはヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、メチルセルロース等を挙げることができる。デンプン誘導体としてはヒドロキシエチルスターチ等を、アルギン酸誘導体としてはアルギン酸プロピレングリコールエステルを挙げることができる。
また本発明の固体懸濁液にはショ糖脂肪酸エステル、ポリソルベート、ソルビタンモノ脂肪酸エステル、ステアリン酸ポリオキシル、ポリアルキレングリコール等を安定化剤として添加することができる。
さらに、本発明のグルタチオン誘導体を有効成分とする医薬組成物は、ポリ乳酸、ポリグリコール酸やその共重合体等の生体内分解吸収性ポリマーを用いて調製したマイクロスフェアに封入または混合したものであっても良く、注射、経口、経気道粘膜、経消化管粘膜または点眼により投与することができる。
本発明のグルタチオン誘導体を有効成分とするコロイド状組成物は例えば以下のような方法によって製造することが可能であるが、これら以外の方法による製造を制限するものではない。
脂肪乳剤では、大豆油等の油成分と精製卵黄レシチン等の乳化剤を約４０〜９０℃の加温下で混合し、これに必要量の水を添加してミキサーを用いて粗乳化を行う。次にフレンチプレス、マントンゴーリン等の高圧噴射型ホモジナイザーや、超音波破砕・分散装置を用いて精乳化して均一でサイズ調節されたエマルションとした後、さらにフィルター濾過し、高圧蒸気滅菌等の方法で滅菌することにより製造される。ここで有効成分であるグルタチオン誘導体は最初に油成分と乳化剤を混合する段階や粗乳化の段階で、固体状のものを直接添加するか、エタノール、ポリエチレングリコール、ベンジルアルコール等の医薬品に添加可能な微量の溶剤に混和した後に添加することができる。また有効成分であるグルタチオン誘導体を医薬品用に使用可能な溶剤に溶解してフィルター滅菌等の処理を施した後、別途精乳化、フィルター濾過、高圧蒸気滅菌の処理を終えた脂肪乳剤に後添加するか、或いは用時調製方式で投与前に混合して医薬組成物を得ることも可能である。
リポソームでは、レシチン、リン脂質、コレステロール等の脂質二重膜構成成分と、有効成分であるグルタチオン誘導体をクロロホルム、テトラヒドロフラン等の溶媒に完全に溶解した後、ロータリーエバポレーター等を用いて溶媒を蒸発させることによりキャスト薄膜を作成し、これを注射用水かまたは塩、糖等の等張化水溶液中で超音波照射等の方法で分散させ、さらに高圧噴射型破砕処理やゲル濾過により粒子径が均一化された医薬組成物を構成するリポソームを得ることができる。或いは、レシチン、リン脂質等の脂質二重膜構成成分と、有効成分であるグルタチオン誘導体を、エタノール、ジエチルエーテル等に溶解し、加温下で注射用水などに低速度注入した後、これらの有機溶媒を限外濾過や蒸発によって除去することによってもリポソームからなる医薬組成物を得ることができる。
固体懸濁物では、有効成分のグルタチオン誘導体を、ヒドロキシプロピルセルロース等のセルロース低級アルキルエーテルや、ポリオキシエチレン［１６０］ポリオキシプロピレン［３０］グリコール等のポリオキシアルキレン共重合体とともに媒体攪拌ミルで乾式混合粉砕した後、注射用水に懸濁してナノマイザー等の高圧噴射型破砕・分散装置や、アッペクスミル等の媒体攪拌湿式粉砕機を用いて平均粒子径１μｍ以下の固体懸濁液を調製する。これをフィルター濾過後に高圧蒸気滅菌等の方法で滅菌処理してコロイド状の医薬組成物を得ることができる。
本発明の医薬組成物は血球産生の低下或いは血球機能の異常に起因する疾患、または末梢血幹細胞移植における造血幹細胞の採取に際し、造血促進剤として使用することができる。血球産生の低下或いは血球機能の異常に起因する疾患としては、例えば骨髄移植或いは癌化学療法による造血機能抑制、骨髄異形成症候群、再生不良性貧血、先天性または特発性好中球減少症或いは血小板減少症、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）感染症の治療に支障を来す好中球減少症、免疫抑制療法（腎移植、肝移植等）に伴う好中球減少症、難治性感染症或いは幼児重症感染症の治療に支障を来す好中球減少症等が挙げられる。また本発明の医薬組成物は予防の目的でも使用することができる。
本発明のコロイド状組成物は皮下注、筋注、迅速静注、または単独或いは糖類、アミノ酸、電解質等からなる栄養等の補給用輸液に混合して点滴静注するか、もしくは経口または経腸的に投与して用いることができる。これらの場合有効成分の投与量は０．２μｇ／ｋｇ／ｄａｙ〜６０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙで、通常２０μｇ／ｋｇ／ｄａｙ〜３０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ程度である。
本発明で知見した、グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）の阻害または結合能を有するγ−ｇｌｕｔａｍｙｌ Ｓ（ｂｅｎｚｙｌ）ｃｙｓｔｅｉｎｙｌ−Ｒ（−）−ｐｈｅｎｙｌ−ｇｌｙｃｉｎｅ（ＴＥＲ１１７）等の医薬物質を、カルボキシル基がある場合にそれを炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステル化すること、さらには、コロイド状医薬物質組成物を利用することによって、その標的組織である骨髄での造血促進作用を効率的に発現させる方法、或いはそのＧＳＴの多彩な機能に関連する非選択的な生理作用の発現を抑制して安全性を高める方法は、ＴＥＲ１１７のようなグルタチオン誘導体に限らず例えばエタクリン酸等の構造が全く異なるグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ阻害または結合性医薬物質にも利用することができる。
実施例
以下に本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
実施例を含めて本明細書中において使用されている誘導体、あるいはこれらの構造中に存在する官能基、反応試薬等の略号は、有機化学の分野で慣用されているものであり、下記にその略語の意味をを示す。
Ｅｔ２Ｏ：ジエチルエーテル、ＤＭＦ：Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、ＡｃＯＥｔ：酢酸エチル、ＥｔＯＨ：エタノール、ＤＭＳＯ：ジメチルスルホキシド、Ｇｌｕ：グルタミン酸、Ｃｙｓ：システイン、Ｐｈｇ：フェニルグリシン、ＷＳＣ：１−（３−ジメチルアミノプロピル）−３−エチルカルボジイミド塩酸塩、ＨＯＢｔ：１−ヒドロキシベンゾトリアゾール、ＮＭＭ：Ｎ−メチルモルホリン、ＳＯＣｌ２：塩化チオニル、ＮａＨＣＯ３：炭酸水素ナトリウム、Ｐｄ／Ｃ：パラジウム炭素、Ｂｏｃ：ｔ−ブトキシカルボニル、Ｐｈ：フェニル、Ｂｚｌ：ベンジル、Ａｃ：アセチル
本発明のグルタチオン誘導体は図１に示す一般ルートに従って合成した。以下に具体的な合成例を示す。
製造例１．Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ塩酸塩の合成
Ｄ−フェニルグリシン（８．００ｇ）のＥｔＯＨ（１５０ｍｌ）懸濁液に−５０℃でＳＯＣｌ２（４．３ｍｌ）を加え、冷却を止めて室温で７１時間攪拌した。反応液を減圧で濃縮した後に、粗結晶にＥｔ２Ｏを加えて濾取することでＤ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ塩酸塩を得た。
収量 １１．３ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：１．１５（ｔ，Ｊ＝７．１Ｈｚ，３Ｈ） ４．０８−４．２１（ｍ，２Ｈ） ５．１２（ｓ，１Ｈ） ７．３０−７．３９（ｍ，３Ｈ） ７．４９−７．５９（ｍ，２Ｈ）
製造例２．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔの合成
Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−ＯＨ（４．３４ｇ）およびＤ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ・塩酸塩（３．００ｇ）のＤＭＦ（５０ｍｌ）溶液にＨＯＢｔ（１．９０ｇ）を加え、０℃でＮ−メチルモルホリン（１．６５ｍｌ）とＷＳＣ（４．００ｇ）を加えた。反応液を０℃で２０分間攪拌し、さらに室温で８０分間攪拌した後に水に注ぎ、ＡｃＯＥｔで抽出した。有機層を飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、濾過、濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマト（ｎ−ｈｅｘａｎｅ７／ＡｃＯＥｔ＝４／１→２／１）で精製することによってＢｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔを得た。
収量 ６．４１ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：１．２１（ｔ，Ｊ＝７．１Ｈｚ，３Ｈ） １．４５（ｓ，９Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．８，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．０７−４．３６（ｍ，３Ｈ） ５．１８−５．３８（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１８−７．３９（ｍ，１１Ｈ）
製造例３．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１３−１．３５（ｍ，２６Ｈ） １．３９−１．６１（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．７Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．７，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４，１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３４（ｍ，１Ｈ） ５．２１−５．３４（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．３７（ｍ，１１Ｈ）
製造例４．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １，１３−１．３５（ｍ，２２Ｈ） １．３９−１．６３（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．９，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３５（ｍ，１Ｈ） ５．２１−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．３９（ｍ，１１Ｈ）
製造例５．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１１−１．３５（ｍ，１８Ｈ） １．３９−１．６６（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，４．０Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．８，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２４−４．３５（ｍ，１Ｈ） ５．２１−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．４２（ｍ，１１Ｈ）
製造例６．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｅｃｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１３−１．３５（ｍ，１４Ｈ） １．３７−１．６６（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．９，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３５（ｍ，１Ｈ） ５．１９−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４，４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．４２（ｍ，１１Ｈ）
製造例７．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ．ＣＤＣｌ３）：０．８７（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１３−１．３４（ｍ，１０Ｈ）１．３９−１．６６（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．９，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１２（ｔ，Ｊ＝４．２Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３５（ｍ，１Ｈ） ５．１９−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．４２（ｍ，１１Ｈ）
製造例８．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８４（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，３Ｈ） １．１３−１．３０（ｍ，６Ｈ） １．３７−１．６５（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．７Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．７，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１２（ｔ，Ｊ＝４．２Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３９（ｍ，１Ｈ） ５．１９−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．４２（ｍ，１１Ｈ）
製造例９．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）の合成
Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−ＯＨ（１．５０ｇ）のＤＭＦ（４０ｍｌ）溶液に１−ブロモオクタデカン（４．４５ｇ）とＮａＨＣＯ３（１．９０ｇ）を加え、室温で２４時間攪拌した。反応液を水に注ぎ、ＡｃＯＥｔで抽出した。有機層を水洗し、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、濾過、濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマト（ｎ−ｈｅｘａｎｅ／ＡｃＯＥｔ＝２５／１→８／１）で精製することによってＢｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）を得た。
収量 １．６４ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１９−１．３５（ｍ，３０Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５９−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．９０−２．０１（ｍ，１Ｈ） ２．１５−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０５−５．１６（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１０．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｄｏｃｏｃｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，３８Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．８９−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２７（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５３（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２６−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０５−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１１．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，２６Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．８９−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２７（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．２Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１２．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）の合成製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３７（ｍ，２２Ｈ） １．４４（ｓ，９Ｈ） １．５８−１．６８（ｍ，２Ｈ） １．９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１５−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ）５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１３．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，１８Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５８−１．６８（ｍ，２Ｈ） １．９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１４．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｄｅｃｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，１４Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５８−１．６８（ｍ，２Ｈ） １，９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１２（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１５．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，１０Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５８−１．６８（ｍ，２Ｈ） １．９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１２（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１６．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−ＯＥｔの合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：１．２７（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１５−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１９（ｑ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０５−５．１８（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１７．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（ Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）の合成
Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）（１．４０ｇ）のジオキサン（４０ｍｌ）溶液に１０％Ｐｄ／Ｃ（２００ｍｇ）を加え、水素ガス雰囲気下で１４時間攪拌した後に反応液を濾過し、母液を減圧で濃縮した。残渣にＤＭＦ（４０ｍｌ）、Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ・塩酸塩（９４５ｍｇ）およびＨＯＢｔ（３４５ｍｇ）を加えて攪拌し、０℃でＮ−メチルモルホリン（０．２８ｍｌ）とＷＳＣ（６７０ｍｇ）を加えた。反応液を０℃で３０分間攪拌し、さらに室温で４時間攪拌した後に水に注ぎ、ＡｃＯＥｔで抽出した。有機層を水洗し、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、濾過、濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマト（ｎ−ｈｅｘａｎｅ／ＡｃＯＥｔ＝２／１→５／３）で精製することによってＢｏｃ−Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）を得た。
収量 １．７５ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，３Ｈ） １．１８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３６（ｍ，３０Ｈ） １．４４（ｓ，９Ｈ） １．５４−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．８４−１．９８（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．３３（ｍ，３Ｈ） ２．６９（ｄｄ，Ｊ＝８．７Ｈｚ，４．３Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．７，３．８Ｈｚ，１Ｈ） ３．７１（ｓ，２Ｈ） ４．０７−４．２６（ｍ，４Ｈ） ４．３２−４．４２（ｍ，１Ｈ） ４．４８−４．５８（ｍ，１Ｈ） ５．３０（ｄ，Ｊ＝５．０Ｈｚ，１Ｈ） ５．４８（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ６．６７（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ７．２０−７．４０（ｍ，１１Ｈ）
実施例１．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）塩酸塩の合成
Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）（１．７３ｇ）のジオキサン（１０ｍｌ）溶液に４Ｎ塩酸のジオキサン溶液（５ｍｌ）を加えて室温で２０時間攪拌した後に、反応液を減圧で濃縮した。残渣をジオキサンに溶かし、Ｅｔ２Ｏを加えて終夜攪拌した。析出した固体を濾取し、Ｅｔ２Ｏで洗浄後に乾燥することでＧｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）塩酸塩を得た。
収量 １．５０ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３４（ｍ，３０Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３４（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６２−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．８０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．０３−４．２５（ｍ，５Ｈ） ４．５６−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ７．１３−７．３４（ｍ，１０Ｈ） ７．７４（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝５．０Ｈｚ，１Ｈ） ８．７２（ｂｒｓ，３Ｈ）
前記実施例並びに製造例と類似の方法、並びに当業者に周知の有機化学的手法を用いることによって以下の化合物を製造した。
実施例２．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｄｏｃｐｏｓｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２０−１．３４（ｍ，３８Ｈ） １．５４−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２０−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．３９−２．５４（ｍ，１Ｈ） ２．６２−２．７４（ｍ，２Ｈ） ２．８０（ｄ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ３．６７（ｓ，２Ｈ） ４．０５−４．２５（ｍ，５Ｈ） ４．５４−４．６６（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１６−７．３９（ｍ，１０Ｈ） ７．７３（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝４．７Ｈｚ，１Ｈ） ８．７０（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例３．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（９，１２，１５−Ｏｃｔａｄｅｃａｔｒｉｅｎｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．９７（ｔ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２３−１．４３（ｍ，１０Ｈ） １．５６−１．６９（ｍ，２Ｈ） １．９３−２．１３（ｍ，４Ｈ） ２．２０−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．３９−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．５９−２．８９（ｍ，８Ｈ） ３．６５（ｓ，２Ｈ） ４．０３−４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５７−４．６９（ｍ，１Ｈ） ５．２８−５．６４（ｍ，６Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．４１（ｍ，１０Ｈ） ７．７６（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ８．６９（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例４．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２０−１．３４（ｍ，２６Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６１−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．７９（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．０３〜４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５６−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．７４（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝５．０Ｈｚ，１Ｈ） ８．７２（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例５．ＡＣ−Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１８−１．３６（ｍ，２９Ｈ） １．５７−１．６９（ｍ，２Ｈ） １．９２−２．０５（ｍ，１Ｈ） ２．０１（ｓ，３Ｈ） ２．１６−２．３６（ｍ，３Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．４Ｈｚ，１Ｈ） ２．８５（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ３．７１（ｓ，２Ｈ） ４．０７−４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５２−４．５８（ｍ，１Ｈ） ４．６４−４．７０（ｍ，１Ｈ） ５．４９（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ６．５５（ｄ，Ｊ＝４．７Ｈｚ，１Ｈ） ６．８３（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ７．２０−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．４０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ）
実施例６．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２０−１．３４（ｍ，２２Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６１−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．８０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．０３−４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５４−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．７３（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝５．０Ｈｚ，１Ｈ） ８．７１（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例７．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２０−１．３４（ｍ，１８Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２０−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６１−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．７９（ｄ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．０３−４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５４−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．７３（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８６（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ８．７０（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例８．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，３Ｈ） １．０７−１．３４（ｍ，２９Ｈ） １．４６−１．５６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６１−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．７９（ｄ，Ｊ＝４．０Ｈｚ，２Ｈ） ３．６７（ｓ，２Ｈ） ４．００−４．２５（ｍ，５Ｈ） ４．５６−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．１６−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．７５（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．８２（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ８．７３（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例９．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．０６−１．３４（ｍ，２５Ｈ） １．４６−１．５６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．３９−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．５９−２．７０（ｍ，２Ｈ） ２．７８（ｄ，Ｊ＝４．０Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．００−４．２５（ｍ，５Ｈ） ４．５６−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．３９（ｍ，１０Ｈ） ７．７５（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８２（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ８．７２（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例１０．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．０７−１．３６（ｍ，２１Ｈ） １．４６−１．５６（ｍ，２Ｈ） ２．２３−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．３９−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．５９−２．７０（ｍ，２Ｈ） ２．７８（ｄ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．００−４．３０（ｍ，５Ｈ） ４．５７−４．６９（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１６−７．４３（ｍ，１０Ｈ） ７．７５（ｄ，Ｊ＝４，４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８２（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ８．７３（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例１１．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ））塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＤＭＳＯ−ｄ６）：０．８５（ｔ，Ｊ＝４．２Ｈｚ，３Ｈ） １．１７−１．３６（ｍ，２６Ｈ） １．５４−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．９５−２．１２（ｍ，２Ｈ） ２．２６−２．５３（ｍ，３Ｈ） ２．６２（ｄｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７２（ｓ，２Ｈ） ４．０４（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，１Ｈ） ４．１４（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．７５−４．８５（ｍ，１Ｈ） ５．３６−５．４３（ｍ，１Ｈ） ７．１７−７．４６（ｍ，１０Ｈ） ８．２９（ｄ，Ｊ＝５．４Ｈｚ，１Ｈ） ９．０５（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ）
さらに、前記製造例で合成した中間体を用いることによって以下の化合物を製造した。
実施例１２．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘｙｌ））−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
実施例１３．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘｙｌ））−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
実施例１４．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ））−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）塩酸塩
実施例１５．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ））−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
実施例１６．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｅｃｙｌ））−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）塩酸塩
同様にして、以下の対比化合物を製造した。
比較例１．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｅｔ））−ＯＥｔ塩酸塩
前述のＴＥＲ１９９
比較例２．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
比較例３．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＨ）−ＯＨ塩酸塩
前述のＴＥＲ１１７
比較例４．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｅｃｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
本発明のグルタチオン誘導体のコロイド状組成物の具体的な製造例を以下に示す４。
実施例１７．
実施例４のグルタチオン誘導体を有効成分とする脂肪乳剤の製造を、高圧噴射型ホモジナイザーを用いて行った。
（１）高圧噴射型ホモジナイザーはナノマイザー社のナノマイザーＬＡを用いた。精製卵黄レシチン、精製大豆油、グリセリンは静脈内注射可能なものを使用した。
（２）精製卵黄レシチン６ｇと精製大豆油５５ｇを加温しながら混合しミキサーで均一化した。これに実施例４のグルタチオン誘導体を５６０ｍｇを加えさらに攪拌して均一化した。適量のグリセリンと注射用水を加えてミキサーで粗乳化して水酸化ナトリウム水溶液でｐＨを７．４に調整した。さらに水を加えて全量で５６０ｇとしたものを、ナノマイザーＬＡを用いて５５０ｋｇｆ／ｃｍ２の乳化圧で１１回乳化部を通過させることにより精乳化を実施した。精乳化したものを１．２μｍフィルターで濾過したのち適当なガラスバイアルに封入した。
（３）このようにして得られたグルタチオン誘導体の医薬組成物は、動的光散乱法によるＮＩＣＯＭＰ−３７０（野崎産業）にて３回測定した油相エマルション粒子の粒度分布が平均径（標準偏差）＝１７４．４ｎｍ（７５．０ｎｍ），１９４．５ｎｍ（７７．６ｎｍ），１８９．１ｎｍ（８７．９ｎｍ）であった。また１．２μｍフィルター濾過前後にテトラヒドロフランでエマルションを破壊してＨＰＬＣで実施例４のグルタチオン誘導体含量を測定したところ、濾過前の９０％以上の含量を維持しており、均一性が良好であるとともに油相エマルション粒子に実施例４のグルタチオン誘導体が安定に混合されていることが確認された。なお、実施例４のグルタチオン誘導体のアルコール溶液を終濃度がほぼ同じ１ｍｇ／ｍＬとなるように注射用水に５％以下の容量比率で混合した場合には、直ちにグルタチオン誘導体の析出を来たし１．２μｍフィルター濾過後の含量は７５％以下になることが確認された。
実施例１８．
実施例４で得られたグルタチオン誘導体を簡易に小スケールで脂肪乳剤と混合する方法で製造した。
（１）実施例１７の方法に従ってグルタチオン誘導体を添加しない空の脂肪乳剤を調製した。必要時に小スケールで使用できるように、ガラスバイアルに封入し高圧蒸気滅菌したものを冷蔵保存した。
（２）実施例４のグルタチオン誘導体を４０ｍｇ／ｍＬでエタノール：ベジルアルコール＝４：１の混液中に溶解させたものを、２．５〜７．５％の容量比率で（１）で得られた空の脂肪乳剤に混合した。
（３）得られた医薬組成物は、少なくとも混合から５時間を経過しても（１）の空の脂肪乳剤と同程度の油相エマルションの粒度分布を呈し、また、１．２μｍフィルターパス画分中のグルタチオン誘導体含量は仕込み値の９０％以上を維持した。
以下、実施例１〜１６で合成したグルタチオン誘導体の有効性を確認した
実施例１９．グルタチオン誘導体の生理的な安定性の比較
（１）Ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ ａｌｂｕｍｉｎ（以下ＢＳＡと称す）、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ（以下Ｄ−ＰＢＳと称す）、ブタ肝臓エステラーゼ及びウサギ肝臓エステラーゼはＳｉｇｍａ社より、雄性ＳＤ系ラットは６週齢のものを日本エスエルシー社より、雄性Ｊａｐａｎｅａｓｅ ｗｈｉｔｅウサギは１２週齢以上のものを市川屋よりそれぞれ購入した。そして、以下のインキュベーション実験当日に動物よりヘパリン存在下で採血・分離した血漿を使用した。ヒト血漿は健常な男性より同意を得て取得した。
（２）本発明の実施例及び比較例に記したグルタチオン誘導体を以下の組成の酵素液または血漿中で一定時間インキュベーションした後、反応液にアセトニトリルを添加して酵素を失活させて反応を停止し、徐タンパクした上澄液中のグルタチオン誘導体濃度をＨＰＬＣで測定した。エステラーゼ酵素実験では各時間点は２回以上の測定の平均値、またラット及びウサギは３個体の血漿サンプルの平均値を求めた。その一部の実験データについて、グルタチオン誘導体の初期濃度に対する百分率の経時変化を図２〜４に示した。
・ブタ肝臓エステラーゼ、ウサギ肝臓エステラーゼ実験
３０ｍｇ−ＢＳＡ／ｍＬ−Ｄ−ＰＢＳ（ｐＨ７．４）：３６〜４５部
ブタまたはウサギ肝臓エステラーゼ／Ｄ−ＰＢＳ：４〜５部
１０ｍｇ−グルタチオン誘導体／ｍＬ−エタノール：１部（反応液中の終濃度は、１９６〜２４４μｇ／ｍＬ）
・ラット、ウサギ、ヒト血漿
ヘパリン処理血漿：３０〜４０部
（ラット血漿は３０ｍｇ−ＢＳＡ／ｍＬ−Ｄ−ＰＢＳ（ｐＨ７．４）で必要に応じて希釈使用）
１０ｍｇ−グルタチオン誘導体／ｍＬ−エタノール：１部（反応液中の終濃度は、２５０〜３２３μｇ／ｍＬ）
（３）図２〜４で得られたグルタチオン誘導体分解の経時変化が、一次の消失曲線に従うとみなすことが妥当であると考えられたため、これらのグラフから分解速度定数や半減期をを求めて、表２、３に示した。
（４）以上の結果より本発明の炭素数１２以上アルキルエステルからなるグルタチオン誘導体は、比較例の炭素数１０以下のアルキルエステルからなるグルタチオン誘導体に比べて、相対的に生理的安定性が高いことがわかった。
実施例２０．グルタチオン誘導体のｉｎ−ｖｉｔｒｏのＨＬ−６０
細胞分化誘導・増殖促進活性の比較実験−１
ヒト白血病細胞ＨＬ−６０を９−シス−レチノイン酸（９−ｃｉｓ−ＲＡ）または活性型ビタミンＤ３（１α，２５（ＯＨ）２Ｄ３）の存在下で培養して得られる顆粒球系または単球・マクロファージ系細胞への分化誘導作用を利用して、さらに本発明実施例及び比較例のグルタチオン誘導体を共存させた時の増殖促進活性を試験した。
（１）ＨＬ−６０細胞は細胞バンク（ジャパニーズ・キャンサー・リサーチ・リソース・バンク、細胞番号：ＪＣＲＢ００８５）から購入したものを用いた。常法により、細胞凍結保存ストックを実験開始前に解凍して継代培養を始めたものを使用した。継代は、浮遊培養状態の細胞を遠心回収（毎分１５００回転、５分）して新鮮な培養液に１／１００程度の濃度（１〜２×１０４細胞／ｍＬ）に希釈することで実施した。なお、培養液としては１０％ウシ胎児血清を含むＲＰＭＩ−１６４０培地を用いた。
（２）（１）で継代培養していた細胞を遠心回収（毎分１５００回転、５分）して培養液に２×１０４細胞／ｍＬに分散させ、２４ウェル培養プレートに１ｍＬ／ウェルで播種した。この系に実施例４、実施例１１、比較例１及び比較例２のグルタチオン誘導体と分化誘導物質（９−ｃｉｓ−ＲＡまたは１α，２５（ＯＨ）２Ｄ３）を添加した。すなわち、分化誘導物質である９−ｃｉｓ−ＲＡは５×１０−６Ｍ、１αおよび２５（ＯＨ）２Ｄ３は２×１０−６Ｍでエタノール溶液としたものをそれぞれ１ウェルあたり１μＬ添加した。続いて、グルタチオン誘導体を１×１０−４〜１×１０−２Ｍでエタノール溶液としたものを１ウェルあたり１μＬ添加した。なお、対照となる溶媒処理としてはグルタチオン誘導体の代わりにエタノールを１ウェルあたり１μＬ添加し、グルタチオン誘導体単独処理としては分化誘導物質の代わりにエタノールを１ウェルあたり１μＬ添加した。３７℃、５％ＣＯ２下で４日間培養した後、細胞を遠心回収（毎分１５００回転、５分）した。
（３）単球・マクロファージ系あるいは顆粒球系細胞への分化誘導作用の評価によく用いられる生物学的指標の一つであるニトロブルーテトラゾリウム（以下ＮＢＴ）還元活性の測定は以下の手順に従って実施した。すなわち、（２）で記載した遠心回収した細胞を新鮮な培養液に浮遊させた後、ＮＢＴ１００ｎｇ／ｍＬ、１２−Ｏ−テトラデカノイルホルボール−１３−アセテート１００ｎＭとなるように添加し、３７℃で２５分間インキュベートした後、サイトスピン標本を作製した。風乾後、ケルネヒトロート染色を施し、光学顕微鏡下で標本１枚あたり５００個の細胞を観察し、ＮＢＴ還元活性陽性細胞の比率を求めた。
（４）グルタチオン誘導体を１０−７〜１０−５Ｍで、分化誘導物質とともに処理した結果を表４に示す。各グルタチオン誘導体はいずれも１０−５Ｍまでの単独処理ではＮＢＴ還元活性の上昇は認められなかった。グルタチオン誘導体と分化誘導物質との組み合わせ処理では、分化誘導物質単独での処理と比較して、ＮＢＴ還元活性陽性細胞の比率がグルタチオン誘導体の濃度に依存して上昇することが認められた。なお、本発明の実施例４、１１と比較例１、２のグルタチオン誘導体間で作用強度に大きな差は認められなかった。
実施例２１．グルタチオン誘導体のｉｎ−ｖｉｔｒｏのＨＬ−６０細胞分化
誘導・増殖促進活性の比較実験−２
実施例２０と同様の手法で、実施例４、５、８及び比較例３のグルタチオン誘導体のｉｎ−ｖｉｔｒｏ活性を比較した。
（１）実施例２０との相違点としては、一点は、化合物の溶解性の理由から実施例及び比較例のグルタチオン誘導体は、溶媒としてジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を用いたため、系中にエタノールではなく０．１〜０．３（ｖ／ｖ）％のＤＭＳＯが入った条件となった。また二つ目に、９−ｃｉｓ−ＲＡの濃度を５×１０−９Ｍから２×１０−９Ｍに変更した。これらの影響で、実施例４のグルタチオン誘導体の試験結果に若干の感受性の差異を生じた。さらに、実施例２１では９−ｃｉｓ−ＲＡを共存させてＨＬ−６０細胞の顆粒球系細胞への分化誘導のみを評価した。
（２）実施例４は比較例３のグルタチオン誘導体より高い活性を示した。実施例５及び８のグルタチオン誘導体は比較例３と同程度の分化誘導能を示した。
実施例２２．比較例１及び２のグルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混
合したものと実施例１８との効果の比較
グルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合したものをブタ肝臓エステラーゼとインキュベーションし、その分解に対する抵抗性を比較した。
（１）実施例１８と同一の条件で比較例１及び２のグルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合した。このとき脂肪乳剤中の実施例４、比較例１及び比較例２のグルタチオン誘導体濃度はいずれも１ｍｇ／ｍＬとした。
（２）実施例１８、比較例１または比較例２のグルタチオン誘導体の脂肪乳剤を１５（ｖ／ｖ）％でブタ肝臓エステラーゼの反応液中に添加し、実施例１９と同様に一定時間インキュベーション後のグルタチオン誘導体含量をＨＰＬＣで定量分析した。また対照実験として、実施例４、比較例１または比較例２のグルタチオン誘導体のアルコール溶液を、総容量調整のための生理食塩水とともにエステラーゼ反応液中に添加して、同じようにインキュベーションしてＨＰＬＣで分析した。
（３）実施例１９と同様に一次の消失曲線に従ったので、それぞれの分解速度定数を求めてその比較を行い表６にまとめた。
（４）脂肪乳剤と混合することで、いずれのグルタチオン誘導体も分解速度が低下したが、その分解速度の低下度合は実施例４のグルタチオン誘導体でより強く現れた。
実施例２３．比較例１のグルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合した
ものと実施例１８との効果の比較
グルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合したものをグリセリン水溶液中で透析し、脂肪乳剤中のグルタチオン誘導体含量の変化を比較した。
（１）実施例１８と同様に比較例１の脂肪乳剤を調製した。このときのグルタチオン誘導体の濃度は脂肪乳剤中２ｍｇ／ｍＬとした。
（２）これらの脂肪乳剤を１４ｍＬを１Ｌの２．３（ｗ／ｖ）％グリセリン水溶液中で透析した。透析は２日間室温で行い、グリセリン水溶液を途中１回交換した。透析後の脂肪乳剤はいずれも約１５．６ｍＬとなっていた。これを１．２μｍのフィルターで濾過してそのグルタチオン誘導体含量を測定した。
（３）実施例１８（実施例４）のグルタチオン誘導体含量は、透析による容量増加を補正しない値で初期仕込み値の８５．７％であったが、比較例１の含量は透析後に１４．０％に低下していた。
この結果は次のように解釈される。すなわち、実施例４のグルタチオン誘導体は、透析膜をほとんど透過し得ない油相エマルション粒子に強く封入されるため、透析後も脂肪乳剤中の含量はあまり低下しないが、比較例１のグルタチオン誘導体は容易にエマルション粒子と強い相互作用をもたず、透析膜を透過して脂肪乳剤中の含量低下を来たしたと考察できる。
（４）この結果から、実施例４のグルタチオン誘導体は脂肪乳剤とともに投与した場合、ｉｎ ｖｉｖｏでも血管を油相エマルション粒子を透過させない透析膜に見なした時に同様の効果が期待できると考えられた。
実施例２４．実施例１８の脂肪乳剤と比較例１の水溶液をマウスに
静脈内投与した時の血中グルタチオン誘導体濃度推移
の比較
血中のエステラーゼ活性が高い種であるマウスにおける血中動態を実施例４と比較例１のグルタチオン誘導体について比較した。
（１）マウスは日本エスエルシーから雄性８週齢のＢＤＦ１マウスを購入し実験に用いた。９週齢で実験に供するまでの期間、動物飼育用飼料（ＭＦ、オリエンタル酵母株式会社）および飲料水（０．４±０．２ｐｐｍの次亜塩素酸を処理した井水）を自由摂取できる条件下、温度２４±２℃、湿度５５±５％で飼育した。
（２）実施例４のグルタチオン誘導体濃度を３ｍｇ／ｍＬとした実施例１８の脂肪乳剤と、比較例１のグルタチオン誘導体を５ｍｇ／ｍＬの濃度で含有する２．５（ｗ／ｖ）％−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリンの生理食塩溶液を、それぞれ有効成分用量が３０ｍｇ／ｋｇ−体重、５０ｍｇ／ｋｇ−体重となるように、液量としてともに１０ｍＬ／ｋｇ−体重をマウスに尾静脈内投与した。一定時間後エーテル麻酔下で心臓より約１ｍＬの血液を採取した。（各マウスの個体からは１回採血して殺処分する。）各試料群−各時間ポイントのＮ数は２で実施した。採血後の血液は直ちに氷冷し、クエン酸ナトリウム存在下で血漿を遠心分離した。得られた血漿は、アセトニトリルで除タンパク後、トリフルオロ酢酸水溶液／アセトニトリル系を移動相としてＣ１８の逆相クロマトグラフィーカラムで分析し、血漿中の各グルタチオン誘導体濃度を測定した。
（３）各グルタチオン誘導体の血漿中濃度結果を表７、８にまとめた。比較例１のグルタチオン誘導体は投与５分後ですでに血漿中濃度が定量限界の約１μｇ／ｍＬ以下であった。一方、実施例１８の脂肪乳剤を投与したマウスでは、グルタチオン誘導体が血漿中に投与後２時間まで検出された。
（４）以上の結果から、従来技術の比較例１は、マウスの血漿中から極めて速く消失するのに対して、本発明の実施例４のグルタチオン誘導体は、血漿中に比較的長時間に亘って存在し得ることがわかった。
各採血時間でそれぞれ２匹のマウスからほぼ全血を採血し殺処分した。
表中の単位はμｇ／ｍＬ、定量限界は約１μｇ／ｍＬ
各採血時間でそれぞれ２匹のマウスからほぼ全血を採血し殺処分した。
表中の単位はμｇ／ｍＬ、定量限界は約１μｇ／ｍＬ
実施例２５．炭素数１２以上の長鎖エステルを有するグルタチオン
誘導体の脂肪乳剤と比較例１の水溶液及び比較例２の
脂肪乳剤をウサギに静脈内投与した時の血中グルタチ
オン誘導体濃度推移の比較
血中のエステラーゼ活性が低い種であるウサギにおける血中動態を、炭素数１２以上の長鎖エステルを有する本発明のグルタチオン誘導体と、従来技術である比較例１及び２のグルタチオン誘導体について比較した。
（１）ウサギは市川屋から雄性で１２週齢以上の日本白色種を購入し、１５週齢以上で体重が約３ｋｇに達したものを実験に用いた。実験に供するまでの期間、動物飼育用飼料及び飲料水は自由に摂取させ、温度２４±２℃、湿度５５±５％の条件下で飼育した。
（２）炭素数１２以上の長鎖エステルを有するグルタチオン誘導体と比較例２のグルタチオン誘導体は、エタノールまたはエタノール：ベンジルアルコール混液で２０〜２００ｍｇ／ｍＬの溶液を調製し、これを投与直前に脂肪乳剤に混合した後１．２μｍフィルターで濾過したものを静脈内投与液とした。一方、比較例１のグルタチオン誘導体は、６％−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン／５％−グルコース水溶液に１５ｍｇ／ｍＬで溶解させたものを投与液とした。
（３）投与容量２ｍＬ／ｋｇで（２）で得られたグルタチオン誘導体の投与液を、無麻酔拘束下のウサギの左耳介静脈から１ｍＬ／ｍｉｎの速度で急速にインフュージョン投与した。各グルタチオン誘導体は３匹以上のウサギに投与した。投与終了時点から５，１０，１５，３０，６０，１２０及び２４０分後に右耳介静脈からヘパリン存在下で１ｍＬの血液を採取し直ちに氷冷した。血液から血漿を遠心分離して、アセトニトリルを１〜２倍容量加えてタンパクを沈殿させた後遠心分離し、さらに０．５μｍのフィルターで濾過した上澄み液をＨＰＬＣで定量分析した。
（４）各グルタチオン誘導体の血漿中濃度の推移を投与用量で補正したものを図５に示した。また、これらのデータから２−コンパートメントモデルによる薬物動態解析を行い分布容積とクリアランスを算出し表９にまとめた。
（５）以上の血中エステラーゼ活性が比較的低いウサギの動態実験から、本発明の炭素数１２以上のグルタチオン誘導体は、従来技術である比較例１及び２のグルタチオン誘導体と比較して、極めて顕著に高濃度で持続的に維持される傾向が確認された。
実施例２６．実施例４と比較例１のグルタチオン誘導体の５−フル
オロウラシル投与造血機能抑制モデルラットにおける
薬理効果の比較
５−フルオロウラシル（以下５−ＦＵと略す）投与造血機能抑制モデルラットにおける好中球数回復促進作用について、対照群との統計学的な有意性を比較することにより、本発明の実施例４を有効成分として含有する医薬組成物と、従来技術である比較例１の医薬組成物、顆粒球コロニー刺激因子Ｇ−ＣＳＦとを比較した。
（１）使用動物および飼育条件；ラットは日本エスエルシーから購入した６週齢の雄性ＳＤ系ラットを用いた。動物飼育用飼料（ＭＦ、オリエンタル酵母株式会社製）および飲料水（０．４±０．２ｐｐｍの次亜塩素酸を処理した井水）は実験期間を通して自由摂取させた。動物は１匹ずつ吊式ラットケージ（日本ケージ株式会社製）に収容し、温度２４±２℃、湿度５５±５％の条件下で飼育した。
（２）５−ＦＵ投与ラット造血機能抑制モデルの作製；５−ＦＵ（協和発酵工業株式会社製）投与ラット造血機能抑制モデルの作製は、赤松ら（薬理と治療、１８（Ｓｕｐｐｌ．９），３１７−３５６（１９９０））の方法を参考に実施した。すなわち、実験１日目に（１）記載のラットに５−ＦＵ ５０ｍｇ／ｋｇ−体重（投与容量は１ｍＬ／ｋｇ−体重）、または同容量の生理食塩液（扶桑薬品工業株式会社製）を腹腔内投与した。実験４、７〜１２日目に頸静脈から採血してＥＤＴＡ−２Ｋ処理血液を得て、この血液について総合血液学検査装置（Ｔｅｃｈｎｉｃｏｎ Ｈ・１Ｅ、バイエル・三共株式会社製）を用いて好中球数を、網状赤血球測定装置（ＥＰＩＣＳ ＸＬ−ＭＣＬ、コールター株式会社製）を用いて網状赤血球率を測定した。なお、採血は実験１日目にも実施し、その血液について測定した結果を投与前値とした。また、実験４日目の時点で網状赤血球率の減少が認められなかったラット（５−ＦＵ投与ラットのうちの約１０％）は、５−ＦＵ投与の効果が認められなかったと判断して実験から除外して評価した。
生理食塩液投与群では実験期間を通じて好中球数に変化が認められなかったのに対し、５−ＦＵ投与群では、実験８日目を最低値とした好中球数の減少が認められ、実験１０日目以降、好中球数は５−ＦＵ投与前値かそれ以上までに回復が認められた。以上の結果から、５−ＦＵを５０ｍｇ／ｋｇ−体重で単回腹腔内投与することにより、ラット造血機能抑制モデルが作製できることを確認した。
（３）実施例４及び比較例１の上記記載のモデルによる評価；（２）に記載のモデルに、実施例４のグルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合したものを１０〜３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で、また、比較例１のグルタチオン誘導体を、２．５％のヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン（以下ＨＰＣＤ）を含む生理食塩水に溶解したものを５０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で、実験２日目から１０日目まで９日間反復尾静脈内投与した。また、陽性対照群として、遺伝子組換えヒトＧ−ＣＳＦ製剤（以下Ｇ−ＣＳＦ、中外製薬株式会社製）を１０μｇ／ｋｇ−体重／日で、陰性対照群として空の脂肪乳剤を同様に投与した。なお、投与容量は陰性対照群、実施例４−脂肪乳剤群及び比較例１−ＨＰＣＤ溶液群は１０ｍＬ／ｋｇ−体重／日、Ｇ−ＣＳＦ群は１ｍＬ／ｋｇ−体重／日とした。
（４）５−ＦＵ投与ラット造血機能抑制モデルにおける好中球数回復促進作用の評価結果を図６、図７に示す。Ｇ−ＣＳＦ １０μｇ／ｋｇ−体重／日投与群では、実験４日目に陰性対照群に対して統計学的に有意な好中球数の増加が認められ、一旦、実験７日目に陰性対照群とほぼ変わらない値まで減少した後、実験８日目以降は再び好中球数の統計学的に有意な増加（有意水準５％−０．１％）が継続して認められた。実施例４−脂肪乳剤群では、３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群で実験８日目から継続して陰性対照群に対して統計学的に有意な好中球数の増加（有意水準５％−０．１％）が認められ、その程度はＧ−ＣＳＦ １０μｇ／ｋｇ−体重／日投与群とほぼ同等であった。２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群では、実験８日目から継続して好中球数の増加傾向が認められ、実験９〜１１日目には陰性対照群に対して統計学的な有意差（有為水準１％−０．１％）をもって増加が認められた。１０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群は陰性対照群と比較して変化は認められなかった。一方、比較例１−ＨＰＣＤ溶液群では５０ｍｇ／ｋｇ−体重／日まで投与しても、実験１２日目に陰性対照群に対して統計学的に有意な好中球数の増加（有意水準５％）が認められたのみで、陰性対照群と比較して変化は認められなかった。
上記結果より、比較例１は溶解補助剤ＨＰＣＤとともに５０ｍｇ／ｋｇ−体重／日まで投与しても陰性対照群と比較して変化は認められなかった。一方、実施例４−脂肪乳剤の２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日以上の投与群において、５−ＦＵ投与ラット造血機能抑制モデルにおける投与量依存的な好中球数の回復促進作用を有することが示され、実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群ではＧ−ＣＳＦ １０μｇ／ｋｇ−体重／日投与群とほぼ同等の好中球数の回復促進作用を有することが明らかとなった。
実施例２７．実施例１、４および７の５−フルオロウラシル投与造
血機能抑制モデルラットにおける薬理効果の比較
（１）使用動物は実施例２６と同じで、飼育条件は温度２３±２℃、湿度５５±１５％であった。
（２）５−ＦＵ投与モデルの作製、被験物質の投与及び採血スケジュールは実施例２６と同様に実施した。血液学的検査には東亜多項目自動血球計数装置Ｋ−４５００または東亜シスメックスＣＣ−１８０Ａ自動血球計数装置を用い、白血球百分率はメイ・ギムザ染色後鏡検で、網状赤血球数はＢｒｅｃｈｅｒ法でそれぞれ計測した。
（３）実施例２６と同一スケジュールで、５−ＦＵ投与後に脂肪乳剤のみを投与する陰性対照群、被験物質として実施例４のグルタチオン誘導体を３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で脂肪乳剤とともに投与する群、同様に実施例１のグルタチオン誘導体を１０または３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で投与する群、実施例７のグルタチオン誘導体を３０または６０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で投与する群を試験した。また、網状赤血球が減少しなかったラットは、５−ＦＵの効果が認められなかったとして実験から除外した（１例）。
（４）試験期間中の好中球分節核球比の変化を図８に示す。実施例２６と同様に実施例４−３０ｍｇ／ｋｇ群で、好中球分節核球数の回復促進傾向（実験日９〜１２日で有意水準５％−１％）が観察された。また、実施例１のグルタチオン誘導体では１０，３０ｍｇ／ｋｇの両群で好中球数の回復促進作用（それぞれ実験日８〜１２日、７〜１２日で陰性対照群に対して有意水準１％）が見られた。さらに、実施例７のグルタチオン誘導体では３０ｍｇ／ｋｇ群では陰性対照と比較して変化がなかったが、６０ｍｇ／ｋｇの高用量を投与した群では好中球数回復促進傾向（実験日１１，１２日でそれぞれ有意水準５％，１％）が確認された。
実施例２８．実施例４のグルタチオン誘導体の正常ラットにおける
薬理効果
実施例４の化合物の正常ラットにおける好中球増加作用について検討した。
（１）ラットは日本エスエルシー株式会社から購入した６週齢の雄性ＳＤ系ラットを用いた。動物飼育用飼料（ＭＦ，オリエンタル酵母株式会社製）および飲料水（０．４±０．２ｐｐｍの次亜塩素酸を処理した井水）は実験期間を通して自由摂取させた。動物は１匹ずつ吊式ラットケージ（日本ケージ株式会社製）に収容し、温度２４±２℃、湿度５５±５％の条件下で飼育した。
（２）実施例４のグルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合したものを１０，２０または３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日、及び、陰性対照群として脂肪乳剤のみをそれぞれ実験１日目から６日目まで６日間反復尾静脈内投与した。投与容量は１０ｍＬ／ｋｇ−体重／日で行った。実験１日目から１０日目まで毎日頸静脈から採血してＥＤＴＡ−２Ｋ処理血液を得た後、総合血液学検査装置（Ｔｅｃｈｎｉｃｏｎ Ｈ・１Ｅ，バイエル・三共株式会社製）を用いて好中球数を測定した。
実験１，７，１０日目に陰性対照群の一部、実験３，５，７，１０日目に実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群の一部についてペントバルビタール・ナトリウム腹腔内麻酔下で腹大動脈より放血致死させた後、大腿骨骨髄を採取し、ウエッジ法にて塗抹標本を作製し、メイ・ギムザ染色を施して顕微鏡下で骨髄有核細胞分画を行った。
陰性対照群および実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群の一部については、実験３，５，７日目のＥＤＴＡ−２Ｋ処理血液から得た血漿を用いて血漿中インターロイキン１β（以下ＩＬ−１β）量および腫瘍壊死因子（以下ＴＮＦα）量を測定した。測定にはラットＩＬ−１β−ＥＬＩＳＡシステム（アマシャムファルマシアバイオテク株式会社製）、ラットＴＮＦα−ＥＬＩＳＡシステム（アマシャムファルマシアバイオテク株式会社製）およびバイオラッドマイクロプレートリーダー（ＭＯＤＥＬ５５０，日本バイオ・ラッド・ラボラトリーズ株式会社製）を使用した。
（３）正常ラットにおける好中球増加作用の評価結果を図９に示す。実施例４−脂肪乳剤群では、３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群において実験２日目、５日目から８日目に陰性対照群に対して統計学的に有意な好中球数の増加が認められた（有意水準５％−１％）。
実験１，３，５，７，１０日目に骨髄に対する影響を検討した結果を図１０，１１に示す。好中球性骨髄球系細胞を分裂能を有する好中球性骨髄球（骨髄芽球、前骨髄球、好中球性骨髄球、骨髄球系分裂細胞）と分裂能を有さない好中球性骨髄球（好中球性後骨髄球、桿状核好中球、分葉核好中球）に分けて評価すると、分裂能を有する好中球性骨髄球は実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群において実験３，５日目に増加し、実験７日目に陰性対照群とほぼ同程度の値に戻った。一方、分裂能を有さない好中球性骨髄球は実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ投与群において実験３日目は陰性対照群とほぼ同程度であったが、実験７日目を最大として実験５，７，１０日目に増加が認められた。
実験３，５，７日目に血漿中ＩＬ−１β量およびＴＮＦａ量を検討した結果を図１２，１３に示す，ＩＬ−１βおよびＴＮＦαともに、実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群は陰性対照群と比較していずれの実験日においても増加は認められなかった。
（４）上記結果より、本発明の実施例４のグルタチオン誘導体を含有する脂肪乳剤からなる医薬組成物は、正常ラットにおいても好中球数の増加作用が確認され、末梢血での好中球数の増加変動に対応した形で骨髄における造血亢進作用も認められた。さらに、これらの好中球数の増加作用には炎症性サイトカイン（ＩＬ−１β，ＴＮＦα）の変動は関与していないことも明らかとなった。
実施例２９．シクロフォスファミド投与造血機能抑制モデルウサギ
における薬理効果の比較
シクロホスファミド（以下ＣＰ）投与造血機能抑制モデルウサギにおける好中球数回復促進作用について、本発明の実施例４のグルタチオン誘導体を有効成分として含有する医薬組成物と、従来技術である比較例１の医薬組成物とを比較した。
（１）使用動物および飼育条件；ウサギは北山ラベスから購入した１７週齢の雄性日本白色種（Ｋｂｌ：ＪＷ）を用いた。動物飼育用飼料（ＬＲＣ４、オリエンタル酵母株式会社製）および飲料水（０．４±０．２ｐｐｍの次亜塩素酸を処理した井水）は実験期間を通して自由摂取させた。動物は１匹ずつ吊式ウサギケージ（日本ケージ株式会社製）に収容し、温度２４±２℃、湿度５５±５％の条件下で飼育した。
（２）ＣＰ投与ウサギ造血機能抑制モデルの作製；実験１日目および２日目に（１）記載のウサギにＣＰ（和光純薬工業株式会社製）６０ｍｇ／ｋｇ−体重／日（投与容量は２ｍＬ／ｋｇ−体重）を静脈内投与した。次に実験３日目から９日目まで左後耳介静脈から採血してヘパリンナトリウム処理血液を得た。この血液について総合血液学的検査装置（Ｔｅｃｈｎｉｃｏｎ Ｈ・１Ｅ、バイエル・三共株式会社製）を用いて好中球数を測定した。なお、採血は実験１日目の投与前にも実施し、その血液について測定した結果を投与前値とした。その結果、実験５日目から７日目を低値として好中球数の減少が認められ、その後、実験８日目以降は投与前値かそれ以上までに回復していた。以上の結果からＣＰ ６０ｍｇ／ｋｇ−体重を２日間投与することによりウサギ造血機能抑制モデルが作製できることを確認した。
（３）実施例４及び比較例１のグルタチオン誘導体の上記記載のモデルにおける評価；（２）に記載のモデルにおいて、被験物質として、実施例４−脂肪乳剤を２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で、また、比較例１−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン（以下ＨＰＣＤ）溶液（比較例１の誘導体を３％ＨＰＣＤ−２．２％グリセリン水溶液に溶解したもの）を２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で実験３日目から７日目に投与した。なお、陰性対照群には空の脂肪乳剤を投与した。
ＣＰ投与ウサギ造血機能抑制モデルにおける好中球数回復促進作用の評価結果を図１４に示す。実施例４−脂肪乳剤群では実験６日目から８日目に継続して統計学的に有意な好中球数の増加（有意水準１％）が認められた。一方、比較例１−ＨＰＣＤ溶液群では対照群と比較して変化は認められなかった。
上記結果より、比較例１は溶解補助剤ＨＰＣＤとともに２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で投与しても陰性対照群と比較して変化が認められなかった。一方、実施例４−脂肪乳剤の２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日はＣＰ投与ウサギ造血機能抑制モデルにおける好中球数の回復促進作用を有することが示された。
また、薬剤による造血促進刺激というものをここで考え直してみると、以下のような点を考慮することが重要であると思われる。自然に任せた造血には生体の定常状態における構成的造血と、感染や出血を始めとするさまざまな刺激に対する誘導的造血がある。好中球減少症や血小板減少症における造血機能抑制状態から、末梢血血球数を回復させるためには誘導的造血を起こす必要があり、現在臨床的に行われているＧ−ＣＳＦなどのようないわゆる生体由来の造血因子の場合、直接的に骨髄に存在する造血幹細胞や前駆細胞の分化や増殖を刺激して成熟血球が産生されるに至る。本発明者らが考える臨床上好ましい造血機構としては、感染や出血などの刺激と同様に炎症を伴って種々のサイトカインを変動させ、結果として二次的にＧ−ＣＳＦ等の造血因子産生を引起こすものではなく、Ｇ−ＣＳＦ等と同じように骨髄の幹細胞や前駆細胞の分化・増殖を直接誘導し得ることが必要である。従って、Ｇ−ＣＳＦ等生体由来の生理活性タンパク性医薬品に代替し得る低分子性造血物質には、骨髄の幹細胞や前駆細胞に直接的に作用して造血促進作用を発揮するとともに、この薬物自体が骨髄に効率的に運ばれる形態で投与されるか、または生体内で効率的に骨髄に到達する仕組みを利用し得る性質がなければならないと思われる。実際に、造血幹細胞や顆粒球コロニー形成細胞などに作用するＧ−ＣＳＦは、高分子であるがゆえに小さい分布容積を示し（診療と新薬、Ｖｏｌ、２６（１１）、ｐ１６６０〜、（１９９０）の実験データから本発明者らが試算した。）、骨髄に到達するのに効率的であると考えられる。ＷＯ９６４０２０５号明細書には、ＴＥＲ１９９が直接骨髄の前駆細胞に作用する可能性が示唆されているものの、炎症反応に伴う二次的な造血促進である可能性を否定するデータはなく、また、骨髄に効率的に送達され得る構造や投与形態についての明確な記載はない。
事実、以上の本発明者らの実験により、ＴＥＲ１９９はマウス、ラットなどの実験動物の血漿中で極めて半減期が短く、また、骨髄に効率的に達する構造や形態を有していない。したがって、ＷＯ９６４０２０５号明細書に開示されるＴＥＲ１９９とその類縁化合物は、ドラッグデリバリーの観点から、造血促進作用を効率的に発現することができないのである。
【図面の簡単な説明】
第１図は、本発明のグルタチオン（中−長鎖アルキルエステル）誘導体の合成スキームである。
第２図は、実施例１９のブタ肝エステラーゼ実験である。なお反応液中エステラーゼ濃度は、実施例４が、７５ユニット／ｍＬ、比較例１が３．７５ユニット／ｍＬであった。
第３図は、実施例１９のラット血漿実験である。なお比較例１では４００倍にＢＳＡ溶液で希釈した血漿を用いた。
第４図は、実施例１９のヒト血漿実験である。
第５図は、ウサギにおける静脈内投与後の血漿中グルタチオン誘導体濃度推移の比較である。
第６図は、実施例４と比較例１のグルタチオン誘導体の５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）投与造血機能抑制モデルラットにおける薬理効果の比較であり、実施例４のグルタチオン誘導体の好中球数の変化を示している。各データはｎ＝５〜８の平均値を用いた。
第７図は、実施例４と比較例１のグルタチオン誘導体の５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）投与造血機能抑制モデルラットにおける薬理効果の比較であり、比較例１のグルタチオン誘導体の好中球数の変化を示している。各データはｎ＝６〜８の平均値を用いた。
第８図は、実施例１、４および７のグルタチオン誘導体の５−フルオロウラシル投与造血機能抑制モデルラットにおける薬理効果の比較であり、該モデルラットにおける好中球分節核球比の変化を示している。各データはｎ＝４〜８の平均値±標準偏差を用いた。
第９図は、実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに反復投与した時の末梢血中の好中球数の変化である。各データはｎ＝６〜１２の平均値を用いた。
第１０図は、実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに投与した時の、分裂能を有する好中球性骨髄球（骨髄芽球、前骨髄球、好中球性骨髄球、骨髄球系分裂細胞）の変化である。各データはｎ＝６の平均値を用いた。
第１１図は実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに投与した時の、分裂能を有さない好中球性骨髄球（好中球性後骨髄球、桿状核好中球、分葉核好中球）の変化である。各データはｎ＝６〜１２の平均値を用いた。
第１２図は実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに投与した時の、血漿中のＩＬ−１β量の変化を示す、各データはｎ＝２〜３の平均値±標準偏差を用いた。
第１３図は実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに投与した時の、血漿中のＴＮＦα量の変化を示す。各データはｎ＝２〜３の平均値±標準偏差を用いた。
第１４図はシクロフォスファミド投与造血機能抑制モデルウサギにおける薬理効果の比較を示す。各データはｎ＝４の平均値を用いた。
本発明は造血促進を目的として生体に投与した際に、その造血促進活性を作用部位である骨髄で効率的に発現させ得るグルタチオン誘導体とその投与形態に関する。更に詳しくは、γ−ｇｌｕｔａｍｙｌ Ｓ（ｂｅｎｚｙｌ）ｃｙｓｔｅｉｎｙｌ−Ｒ（−）−ｐｈｅｎｙｌ−ｇｌｙｃｉｎｅを炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとすることで、その生理活性を損なうことなく生体中での安定化をはかるとともに、標的組織である骨髄に効率的に分布し得る構造を付与し、さらに、特にその投与法として重要な注射剤における安全かつ効果的なコロイド状組成物の投与形態を提供することに関する。
背景技術
癌の治療における化学療法剤投与、或いは放射線療法による造血機能抑制は、副作用として好中球減少症や血小板減少症を引き起こす。このうち好中球減少症では、健常状態に比べて免疫力が低下して、重症の感染症に曝される危険性が高まるため、末梢血中の好中球数の回復促進効果のある生理活性タンパクである顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）などが臨床的に投与され、十分な薬理効果が得られているものの、遺伝子組換技術を用いた培養細胞で製造しているために、高い薬価が医療経済学的に見て問題である。また、これらはその投与法についても、現状で実用的に確立されているのは注射に限られ、患者の苦痛や簡便性を考えると、注射剤とともに経口剤などの別の投与形態も可能な薬物が望まれている。
このようなＧ−ＣＳＦなどの生理活性タンパク医薬品に代替して、低コストで供給し得てかつ非注射ルートでの投与の可能性もある低分子性造血促進物質が望まれる状況下で、ＷＯ９６４０２０５号明細書で開示されるγ−ｇｌｕｔａｍｙｌ ｅｔｈｙｌ ｅｓｔｅｒ Ｓ（ｂｅｎｚｙｌ）ｃｙｓｔｅｉｎｙｌ−Ｒ（−）−ｐｈｅｎｙｌ−ｇｌｙｃｙｌ ｅｔｈｙｌ ｅｓｔｅｒ（ＴＥＲ１９９）とその類縁低分子化合物に、ｉｎ ｖｉｔｒｏで顆粒球・マクロファージ前駆細胞コロニー形成を促進させる効果が見出された。また当該化合物は、ｉｎ ｖｉｖｏでも６０〜１２０ｍｇ／ｋｇ−体重という非常に高用量で、かつ必ずしも臨床的には許容し得ない投与法（腹腔内投与）での実験だが、化学療法剤（５−フルオロウラシル）投与による造血機能抑制モデルラットにおいて、末梢血中の好中球、血小板などの細胞数の回復を促進する活性があることも確認された。しかしながら本発明者らの実験によると、ＴＥＲ１９９はラットの血液などの生体試料溶液中では極めて不安定で、かかる造血促進作用を発現させるには非効率的であることがわかった。さらにＷＯ９６４０２０５号明細書の実施例のような高用量を、例えば静脈内投与した場合に、その溶解度の低さや組織移行性など物性に起因する性質から、投与部位に炎症を生じるなどの問題があることがわかった。以上のことからＷＯ９６４０２０５号明細書の実施例に記載のＴＥＲ１９９は、そのデータから実用に耐え得る有効性を有していないと考えられた。
次に、ＴＥＲ１９９はグルタチオンを基本骨格構造とするグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）の阻害剤であることがＷＯ９６４０２０５号明細書他に記載されている。ＧＳＴは、抗癌剤アルキル化剤などに対する耐性に関連している可能性が報告されているいる他、利尿剤として利用されるエタクリン酸や非ステロイド系消炎鎮痛剤として利用されるインドメタシン、ケトプロフェン等にも、ＴＥＲ１９９同様にこのＧＳＴの作用を阻害する活性があることが知られている（臨床検査，Ｖｏｌ．３９（４），ｐ４５０−４５３（１９９５））。
また、骨髄における造血促進作用にもＧＳＴ阻害能が関係している可能性が十分にある。実際に、ＴＥＲ１９９とは全く異なる構造を有するエタクリン酸が、ｉｎ ｖｉｔｒｏで活性型ビタミンＤ３と協同的に白血病細胞の分化を誘導するような作用を有することが報告されている（Ｌｅｕｋｅｍｉａ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，Ｖｏｌ．２０（９），ｐ７８１−７８９（１９９６））。
発明の開示
以上ような従来技術における課題の解決法を鋭意検討した結果、本発明者らは以下の事実を見出し本発明に到達した。
すなわち、まずγ−ｇｌｕｔａｍｙｌ Ｓ（ｂｅｎｚｙｌ）ｃｙｓｔｅｉｎｙｌ−Ｒ（−）−ｐｈｅｎｙｌ−ｇｌｙｃｉｎｅ（ＴＥＲ１１７）を炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとすることで、その造血促進に関わる生理活性を損なうことなく生体中での安定化をはかるとともに、標的組織である骨髄に効率的に分布し得る構造を付与することができた。ここで炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとはＴＥＲ１１７に２ヶ所あるカルボキシル基のどちらか一方のみをエステル化したモノエステル、どちらか一方を炭素数１２未満の短鎖または中鎖のアルキルまたはアルケニルとし、もう一方を炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとしたジエステル、または両方を炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステルとしたとしたジエステルのいずれでも一定の効果が得られた。尚、本発明においては、炭素数１〜２のを短鎖、炭素数３〜１１を中鎖および、炭素数１２以上を長鎖と定義する。長鎖エステルとすることで、ＷＯ９６４０２０５号明細書に好適例として開示されるジエチルエステル体ＴＥＲ１９９に比較して、生体中での安定性、具体的にはエステラーゼによる分解に対する安定性が向上した。一方で、ｉｎ ｖｉｔｒｏ実験で造血促進に関わる生理活性がＴＥＲ１９９と同等であることを知見した。さらに、このＴＥＲ１１７の炭素数１２以上の長鎖エステルでは、脂肪乳剤のようなコロイド状の医薬組成物を利用することで、薬物動態学的パラメーターの分布容積とクリアランスをいずれも低下させることができ、結果的に標的組織である骨髄での薬理作用の効率的発現と、物性や生理作用そのものに関連する安全性上の問題回避を達成し得ることを知見した。
すなわち本発明は下記式（Ｉ）：
で表されるグルタチオン誘導体またはその塩に関する。
発明を実施するための形態
本発明のグルタチオン誘導体は、下記式（Ｉ）：
で表すことができる。
上記式（Ｉ）においてＡはＨまたはＣ１−Ｃ２０のアシル基を表わす。かかるＣ１−Ｃ２０のアシル基は飽和または不飽和のアシル基のうち、炭素数１〜２０の直鎖状または分枝鎖状のアシル基を表わし、例えば、ホルミル基、アセチル基、プロピオニル基、ブチリル基、イソブチリル基、バレリル基、イソバレリル基、ヘキサノイル基、ヘプタノイル基、オクタノイル基、ノナノイル基、デカノイル基、ラウロイル基、ミリストイル基、パルミトイル基、ステアロイル基、リノレオイル基、アラキドノイル基等が挙げられる。
Ａの好ましい基としてはＨ、ホルミル基、アセチル基等が挙げられる。
上記式（Ｉ）においてＲ１はＣ１−Ｃ２６のアルキル基またはＣ３−Ｃ２６のアルケニル基を表わす。かかるＲ１のＣ１−Ｃ２６のアルキル基は炭素数１〜２６の直鎖または分枝鎖アルキル基を表わす。直鎖アルキル基またはアルケニル基としては、酵素分解を受けてアルコールを生成した場合を想定すると、代謝異常以外で天然に存在する長鎖脂肪酸等は炭素数が偶数であることが一般的であることから、主に炭素数が偶数のアルキル基またはアルケニル基を例示するが、奇数のアルキル基またはアルケニル基を除外するわけではない。
かかるＲ１のＣ１−Ｃ２６のアルキル基としては、例えばメチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、イソブチル基、ｓｅｃ−ブチル基、ｔ−ブチル基、ｎ−ペンチル基、イソペンチル基、３−ペンチル基、ヘキシル基、オクチル基、デシル基、ドデシル基、テトラデシル基、ヘキサデシル基、オクタデシル基、イコシル基、ドコシル基、テトラコシル基、ヘキサコシル基等が挙げられる。
Ｒ１がＣ３−Ｃ２６のアルケニル基である場合、かかるアルケニル基は炭素数３〜２６の直鎖または分枝鎖アルケニル基を表わすが、例えばアリル基、ブテニル基、ペンテニル基、ヘキセニル基、ヘプテニル基、オクテニル基、ノネニル基、デセニル基、ドデセニル基、テトラデセニル基、ヘキサデセニル基、オクタデセニル基、オクタデカジエニル基、オクタデカトリエニル基、イコサトリエニル基、イコサテトラエニル基、イコサペンタエニル基、ドコサペンタエニル基、ドコサヘキサエニル基、テトラコセニル基等が挙げらる。
上記式（Ｉ）においてＲ２はＨ，Ｃ１−Ｃ２６のアルキル基またはＣ３−Ｃ２６のアルケニル基を表わす。かかるＲ２のＣ１−Ｃ２６のアルキル基およびＣ３−Ｃ２６のアルケニル基は、それぞれＲ１で例示したＣ１−Ｃ２６のアルキル基およびＣ３−Ｃ２６のアルケニル基と同様の基を表わす。
式Ｉの化合物は、このようなＡ，Ｒ１、Ｒ２の組み合わせの全てを含むが、中でも好ましい組み合わせの具体例を表１に例示する。
さらにこの中でも、エステラーゼによる分解物として生じる副生成物の高級アルコールの毒性が、炭素数８〜１２のものよりも炭素数１６や１８のものの方がより低いことが知られていること（Ｔｈｅ Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ Ｌｉｂｒａｒｙ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓａｆｅｔｙ Ｄａｔａ，Ｅｄｉｔｉｏｎ Ｉ）などを考慮すると、ＡがＨで、Ｒ１がエチル基で、Ｒ２がテトラデシル基、ヘキサデシル基、オクタデシル基、オクタデカジエニル基、オクタデカトリエニル基、イコシル基、イコサトリエニル基、イコサテトラエニル基、イコサペンタエニル基またはドコシル基の組み合わせか、ＡがＨで、Ｒ１がテトラデシル基、ヘキサデシル基、オクタデシル基またはイコシル基で、Ｒ２がエチル基の組み合せが最も好ましい例として挙げることができる。
本発明のグルタチオン誘導体を構成する３つのアミノ酸はそれぞれキラル中心を有するが、そのコンフィギュレーションはＬＬＤかＬＬＬで、好ましくはＬＬＤである。
また、上記式（Ｉ）で表される化合物は酸付加塩、あるいは塩基付加塩を形成する場合がある。かかる酸付加塩としては、具体的には例えば塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸等の鉱酸；ギ酸、酢酸、トリフルオロ酢酸、プロピオン酸、シュウ酸、マロン酸、コハク酸、フマール酸、マレイン酸、乳酸、リンゴ酸、酒石酸、クエン酸、メタンスルホン酸、エタンスルホン酸等の有機酸；アスパラギン酸、グルタミン酸などの酸性アミノ酸との付加塩が挙げられ、また、塩基付加塩としては、具体的には例えばリチウム、ナトリウム、カリウム等の１価の金属塩；マグネシウム、カルシウム、亜鉛、アルミニウム等の２価もしくは３価の金属塩；リジン、アルギニン等の塩基性アミノ酸との付加塩；アンモニウム、あるいはメチルアンモニウム、ジメチルアンモニウム、トリメチルアンモニウム、ベンジルアンモニウム、モノエタノールアンモニウム等の有機アンモニウム塩が挙げられる。さらに本発明には、上記式（Ｉ）で表される化合物の水和物、各種の溶媒和物や結晶多形の物質も含まれる。
本発明のグルタチオン誘導体は、この分野で公知のペプチドの合成法にならって合成することができる。そのような公知の方法としては、例えば「ペプチド合成の基礎と実験」（泉屋信夫、加藤哲夫、青柳東彦、脇道典著：丸善）、あるいは「第４版実験化学講座２２−有機合成ＩＶ 酸・アミノ酸・ペプチド」（相本三郎、楠本正一、竜田邦明、早川芳宏、山本景祚、若宮建昭著：丸善）等に記載の通常のペプチド合成法により合成後、精製する方法や、さらに、本発明のグルタチオン誘導体、またはその塩を構成する各アミノ酸残基の側鎖および／またはペプチドアミノ末端および／またはペプチドカルボキシ末端が化学修飾や保護がなされている場合には、ペプチド合成後に化学修飾するか、あるいは化学修飾されたアミノ酸を用いてペプチド合成するか、あるいはペプチド合成の最終脱保護の反応条件を適当に選ぶ等、ペプチド合成化学の分野において従来公知の方法（「ペプチド合成の基礎と実験」（泉屋信夫、加藤哲夫、青柳東彦、脇道典著：丸善）、「続医薬品の開発−第１４巻−ペプチド合成」（矢島冶明監修：広川書店）、「生化学実験講座−１−タンパク質の化学ＩＶ−化学修飾とペプチド合成」（日本生化学会編、東京化学同人）、「タンパク質の化学修飾」上・下（大野素徳、金岡祐一、崎山文夫、前田浩））を挙げることができる。
好ましい合成スキームを実施例に記載したが、これにより本発明の化合物の合成方法を限定するものではない。
本発明のグルタチオン誘導体を有効成分とする医薬組成物は、錠剤、丸剤、カプセル剤、散剤、顆粒剤、液剤、懸濁剤、乳剤、クリーム剤、軟膏剤、エアゾール剤、シロップ剤、トローチ剤、ローション剤、パップ剤、および坐剤等の形態を利用することができる。このような形態を利用することによって経口、経腸、経粘膜、経皮、点眼、経気道、および注射等でヒトまたは動物に投与することができる。
この内、好ましい投与ルートのひとつである注射剤の場合、コロイド状組成物を好ましい形態として挙げることができる。
尚、本発明のコロイド状組成物は以下のように定義する。
薬科学大辞典（第２版；廣川書店）によれば、「コロイド」は、「分散状態の１種。光学顕微鏡では直接見えない微粒子（直径１〜１００ｎｍ）が分散している状態をいう。また分散相（粒子）のみを呼ぶこともある。分散媒及び分散相には固、液、気体があり、気−気以外の全ての組合わせが有り得る。コロイド分散系ともいう。膠質とも呼ぶ。」と説明されている。本発明のコロイド状組成物とは、通常のコロイドの定義よりその分散粒子がやや大きい粒度のものも含まれ、光学顕微鏡では分散粒子が容易には観察できず、９０％以上の分散粒子の直径が１ｎｍ〜１μｍの範囲に入る固体−液体、液体−液体、又は固体及び液体−液体分散液の状態である組成物を意味し、その中には日本薬局方（第十二改正）に記載の懸濁剤・乳剤が、その粒度分布の限定される範囲において含まれるとともに、脂肪乳剤、リポソームもこの中に含まれるものとし、さらに、乾燥固形状態のものを使用時に水を添加して、上記のコロイド状組成物を調製する場合も含まれるものとする。
本発明のコロイド状組成物としては、脂肪乳剤、リポソーム、及び固体懸濁物等を挙げることが出来る。このうち低コストで供給できることや、用時混合調製して投与することも可能であることから、脂肪乳剤が特に好ましい。
また、経口投与や経腸投与の場合にも、コロイド状組成物を用いることができる。この場合も脂肪乳剤を好ましいコロイド状組成物として挙げることができる。ここで用いる脂肪乳剤としては、後述する一般的な脂肪乳剤以外に、消化管でより速やかに代謝や吸収が進み、有効成分をリンパ液中キロミクロンを経由するルートで効率的に血流に乗せることができる中鎖脂肪酸を含有する脂肪乳剤や、ジグリセリドを含有する脂肪乳剤がより好ましい例として挙げられる。また、経口ルート等からリンパ指向性を目的として投与する医薬組成物は、コロイド状組成物に限定されるわけではなく、錠剤等の投与形態であっても良い。
本発明の脂肪乳剤は、全成分中約０．１〜５０（ｗ／ｖ）％の油成分（ただし、脂肪乳剤と有効成分を用時混合調製して投与するような場合、全成分中の油成分の割合はこのさらに５分の１から１０００分の１程度になることもある）、油成分１００部に対して１〜３００部（質量比）の乳化剤、適当量の水よりなる。さらに、必要に応じて乳化補助剤、安定化剤、等張化剤、抗酸化剤、ｐＨ調整剤などを添加することができる。また脂肪乳剤の油成分を核とする粒子（以下油相エマルション粒子と記述する）の表面を糖、ポリエチレングリコールなどの合成高分子、タンパク質などで修飾して、体内分布を変化させて効果を向上させることも可能である。そして、本発明の好ましい投与形態である脂肪乳剤に含まれる有効成分のグルタチオン誘導体の濃度は全成分に対して０．０００１〜１０（ｗ／ｖ）％である。
本発明の脂肪乳剤の油成分としては、大豆油、綿実油、サフラワー油、トウモロコシ油、ゴマ油、硬化油、ツバキ油、オリーブ油、ナタネ油、ヤシ油、ユーカリ油、ラッカセイ油、小麦胚芽油、中鎖脂肪酸トリグリセリド、ジグリセリド、セチルアルコール、ステアリルアルコール、トリアセチン、エイコサペンタン酸、ドコサヘキサン酸等が使用できるが、医薬品用として使用可能なものであれば特に制限はない。中でも高純度の精製大豆油（純度：トリグリセリド、ジグリセリド及びモノグリセリドとして９９．９％以上含有）が注射剤として用いる脂肪乳剤には好適である。
本発明の脂肪乳剤の乳化剤としては、レシチン、水素添加レシチン、リン脂質とその誘導体、コレステロールとその誘導体、非イオン性界面活性剤等が使用できるが、医薬品用として使用可能なものであれば制限はない。レシチン、水素添加レシチン、リン脂質はその由来を特に限定されず、例えば、大豆油等の植物由来のものや卵黄等の動物由来のもの等が用いられる。レシチンは不飽和脂肪酸を持つものが多く、その不飽和結合部を接触還元などにより水素添加し酸化しにくくさせたものが水素添加レシチンである。また高純度のジパルミトイルホスファチジルコリン等を乳化剤として添加することも可能である。さらに血中のアポタンパクのリポ粒子への吸着を低下させて肝臓への取込みを抑制し、血中滞留性を向上させるような目的で、ポリエチレングリコール等で修飾されたリン脂質であるジステアロイル−Ｎ−（モノメトキシポリエチレングリコールスクシニル）−ホスファチジルエタノールアミン等を乳化剤に混合することも可能である。
本発明の脂肪乳剤の乳化補助剤としては炭素数６〜３０、好ましくは１２〜２４の脂肪酸またはその塩が使用できるが、医薬品用に添加可能なものであれば特に制限はない。中でも天然脂肪酸が最も好ましくその具体例としてステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、パルミチン酸、リノレン酸が挙げられる。生理的に受け入れられる脂肪酸の塩としてはアルカリ金属塩、アルカリ土類金属塩を挙げることができる。
本発明の脂肪乳剤の安定化剤としてはコレステロール、ホスファチジン酸、アルブミン、ビニル重合体、非イオン性界面活性剤が好ましいが、医薬品に添加可能なものであれば特に制限しない。この中でビニル重合体にはポリビニルピロリドン等が、非イオン性界面活性剤にはポリアルキレングリコール、ポリオキシアルキレン共重合体、硬化ヒマシ油ポリオキシアルキレン誘導体、ヒマシ油ポリオキシアルキレン誘導体等を用いることができる。
本発明の脂肪乳剤の等張化剤としては、例えばグリセリン、グルコース等が挙げられるが医薬品に添加可能な等張化剤について特に制限はない。
本発明の脂肪乳剤の抗酸化剤は、該乳化剤がリン脂質の場合に配合することが好ましく、このようなものとしては医薬品に使用可能なものであれば特に制限はないが、ビタミンＥを好ましいものとしてあげることができる。
本発明の脂肪乳剤のｐＨ調整剤としては、例えば水酸化ナトリウム、塩酸等が使用できるが医薬品に添加可能なｐＨ調整剤であれば特に限定されない。
本発明の脂肪乳剤の油相エマルション粒子の平均的な大きさは２００〜４００ｎｍ程度のものが好ましいが、血漿リポタンパクのように５〜１００ｎｍ程度のより小さい粒子径を持つものもまた好ましい例として挙げられる。
本発明のリポソームの脂質二重膜を構成する脂質成分としては、レシチン、水素添加レシチン、リン脂質とその誘導体、コレステロールとその誘導体等が使用できるが、医薬品用として使用可能なものであれば制限はない。レシチン、水素添加レシチン、リン脂質はその由来を特に限定されず、例えば、大豆油等の植物由来のものや卵黄等の動物由来のもの等が用いられる。レシチンは不飽和脂肪酸を持つものが多く、その不飽和結合部を接触還元などにより水素添加し酸化しにくくさせたものが水素添加レシチンである。また高純度のジパルミトイルホスファチジルコリン等のリン脂質を添加することも可能である。さらに血中滞留性を向上させるような目的で、ポリエチレングリコール等で修飾されたリン脂質であるジステアロイル−Ｎ−（モノメトキシポリエチレングリコールスクシニル）−ホスファチジルエタノールアミン等を混合することも可能である。また標的組織への指向性を高めるために、標的組織の抗原を認識する免疫グロブリン等を膜脂質成分に結合させることも可能である。
本発明の固体懸濁液の懸濁化剤としては、非イオン性界面活性剤、セルロースエーテル、デンプンとその誘導体、プルラン、ビニル重合体、アクリル酸重合体、アラビアゴム、アルギン酸とその誘導体、カンテン、ゼラチン、キサンタンガム、レシチン、水素添加レシチン、リン脂質等を用いることができるが、医薬品用に添加可能な懸濁化剤であれば特に制限はしない。この中で非イオン性界面活性剤としてはポリアルキレングリコール、ポリオキシアルキレン共重合体、硬化ヒマシ油ポリオキシアルキレン誘導体、ヒマシ油ポリオキシアルキレン誘導体等を挙げることができる。セルロースエーテルとしてはヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、メチルセルロース等を挙げることができる。デンプン誘導体としてはヒドロキシエチルスターチ等を、アルギン酸誘導体としてはアルギン酸プロピレングリコールエステルを挙げることができる。
また本発明の固体懸濁液にはショ糖脂肪酸エステル、ポリソルベート、ソルビタンモノ脂肪酸エステル、ステアリン酸ポリオキシル、ポリアルキレングリコール等を安定化剤として添加することができる。
さらに、本発明のグルタチオン誘導体を有効成分とする医薬組成物は、ポリ乳酸、ポリグリコール酸やその共重合体等の生体内分解吸収性ポリマーを用いて調製したマイクロスフェアに封入または混合したものであっても良く、注射、経口、経気道粘膜、経消化管粘膜または点眼により投与することができる。
本発明のグルタチオン誘導体を有効成分とするコロイド状組成物は例えば以下のような方法によって製造することが可能であるが、これら以外の方法による製造を制限するものではない。
脂肪乳剤では、大豆油等の油成分と精製卵黄レシチン等の乳化剤を約４０〜９０℃の加温下で混合し、これに必要量の水を添加してミキサーを用いて粗乳化を行う。次にフレンチプレス、マントンゴーリン等の高圧噴射型ホモジナイザーや、超音波破砕・分散装置を用いて精乳化して均一でサイズ調節されたエマルションとした後、さらにフィルター濾過し、高圧蒸気滅菌等の方法で滅菌することにより製造される。ここで有効成分であるグルタチオン誘導体は最初に油成分と乳化剤を混合する段階や粗乳化の段階で、固体状のものを直接添加するか、エタノール、ポリエチレングリコール、ベンジルアルコール等の医薬品に添加可能な微量の溶剤に混和した後に添加することができる。また有効成分であるグルタチオン誘導体を医薬品用に使用可能な溶剤に溶解してフィルター滅菌等の処理を施した後、別途精乳化、フィルター濾過、高圧蒸気滅菌の処理を終えた脂肪乳剤に後添加するか、或いは用時調製方式で投与前に混合して医薬組成物を得ることも可能である。
リポソームでは、レシチン、リン脂質、コレステロール等の脂質二重膜構成成分と、有効成分であるグルタチオン誘導体をクロロホルム、テトラヒドロフラン等の溶媒に完全に溶解した後、ロータリーエバポレーター等を用いて溶媒を蒸発させることによりキャスト薄膜を作成し、これを注射用水かまたは塩、糖等の等張化水溶液中で超音波照射等の方法で分散させ、さらに高圧噴射型破砕処理やゲル濾過により粒子径が均一化された医薬組成物を構成するリポソームを得ることができる。或いは、レシチン、リン脂質等の脂質二重膜構成成分と、有効成分であるグルタチオン誘導体を、エタノール、ジエチルエーテル等に溶解し、加温下で注射用水などに低速度注入した後、これらの有機溶媒を限外濾過や蒸発によって除去することによってもリポソームからなる医薬組成物を得ることができる。
固体懸濁物では、有効成分のグルタチオン誘導体を、ヒドロキシプロピルセルロース等のセルロース低級アルキルエーテルや、ポリオキシエチレン［１６０］ポリオキシプロピレン［３０］グリコール等のポリオキシアルキレン共重合体とともに媒体攪拌ミルで乾式混合粉砕した後、注射用水に懸濁してナノマイザー等の高圧噴射型破砕・分散装置や、アッペクスミル等の媒体攪拌湿式粉砕機を用いて平均粒子径１μｍ以下の固体懸濁液を調製する。これをフィルター濾過後に高圧蒸気滅菌等の方法で滅菌処理してコロイド状の医薬組成物を得ることができる。
本発明の医薬組成物は血球産生の低下或いは血球機能の異常に起因する疾患、または末梢血幹細胞移植における造血幹細胞の採取に際し、造血促進剤として使用することができる。血球産生の低下或いは血球機能の異常に起因する疾患としては、例えば骨髄移植或いは癌化学療法による造血機能抑制、骨髄異形成症候群、再生不良性貧血、先天性または特発性好中球減少症或いは血小板減少症、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）感染症の治療に支障を来す好中球減少症、免疫抑制療法（腎移植、肝移植等）に伴う好中球減少症、難治性感染症或いは幼児重症感染症の治療に支障を来す好中球減少症等が挙げられる。また本発明の医薬組成物は予防の目的でも使用することができる。
本発明のコロイド状組成物は皮下注、筋注、迅速静注、または単独或いは糖類、アミノ酸、電解質等からなる栄養等の補給用輸液に混合して点滴静注するか、もしくは経口または経腸的に投与して用いることができる。これらの場合有効成分の投与量は０．２μｇ／ｋｇ／ｄａｙ〜６０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙで、通常２０μｇ／ｋｇ／ｄａｙ〜３０ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ程度である。
本発明で知見した、グルタチオンＳ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）の阻害または結合能を有するγ−ｇｌｕｔａｍｙｌ Ｓ（ｂｅｎｚｙｌ）ｃｙｓｔｅｉｎｙｌ−Ｒ（−）−ｐｈｅｎｙｌ−ｇｌｙｃｉｎｅ（ＴＥＲ１１７）等の医薬物質を、カルボキシル基がある場合にそれを炭素数１２以上の長鎖アルキルまたはアルケニルエステル化すること、さらには、コロイド状医薬物質組成物を利用することによって、その標的組織である骨髄での造血促進作用を効率的に発現させる方法、或いはそのＧＳＴの多彩な機能に関連する非選択的な生理作用の発現を抑制して安全性を高める方法は、ＴＥＲ１１７のようなグルタチオン誘導体に限らず例えばエタクリン酸等の構造が全く異なるグルタチオンＳ−トランスフェラーゼ阻害または結合性医薬物質にも利用することができる。
実施例
以下に本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
実施例を含めて本明細書中において使用されている誘導体、あるいはこれらの構造中に存在する官能基、反応試薬等の略号は、有機化学の分野で慣用されているものであり、下記にその略語の意味をを示す。
Ｅｔ２Ｏ：ジエチルエーテル、ＤＭＦ：Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、ＡｃＯＥｔ：酢酸エチル、ＥｔＯＨ：エタノール、ＤＭＳＯ：ジメチルスルホキシド、Ｇｌｕ：グルタミン酸、Ｃｙｓ：システイン、Ｐｈｇ：フェニルグリシン、ＷＳＣ：１−（３−ジメチルアミノプロピル）−３−エチルカルボジイミド塩酸塩、ＨＯＢｔ：１−ヒドロキシベンゾトリアゾール、ＮＭＭ：Ｎ−メチルモルホリン、ＳＯＣｌ２：塩化チオニル、ＮａＨＣＯ３：炭酸水素ナトリウム、Ｐｄ／Ｃ：パラジウム炭素、Ｂｏｃ：ｔ−ブトキシカルボニル、Ｐｈ：フェニル、Ｂｚｌ：ベンジル、Ａｃ：アセチル
本発明のグルタチオン誘導体は図１に示す一般ルートに従って合成した。以下に具体的な合成例を示す。
製造例１．Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ塩酸塩の合成
Ｄ−フェニルグリシン（８．００ｇ）のＥｔＯＨ（１５０ｍｌ）懸濁液に−５０℃でＳＯＣｌ２（４．３ｍｌ）を加え、冷却を止めて室温で７１時間攪拌した。反応液を減圧で濃縮した後に、粗結晶にＥｔ２Ｏを加えて濾取することでＤ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ塩酸塩を得た。
収量 １１．３ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：１．１５（ｔ，Ｊ＝７．１Ｈｚ，３Ｈ） ４．０８−４．２１（ｍ，２Ｈ） ５．１２（ｓ，１Ｈ） ７．３０−７．３９（ｍ，３Ｈ） ７．４９−７．５９（ｍ，２Ｈ）
製造例２．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔの合成
Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−ＯＨ（４．３４ｇ）およびＤ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ・塩酸塩（３．００ｇ）のＤＭＦ（５０ｍｌ）溶液にＨＯＢｔ（１．９０ｇ）を加え、０℃でＮ−メチルモルホリン（１．６５ｍｌ）とＷＳＣ（４．００ｇ）を加えた。反応液を０℃で２０分間攪拌し、さらに室温で８０分間攪拌した後に水に注ぎ、ＡｃＯＥｔで抽出した。有機層を飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、濾過、濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマト（ｎ−ｈｅｘａｎｅ７／ＡｃＯＥｔ＝４／１→２／１）で精製することによってＢｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔを得た。
収量 ６．４１ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：１．２１（ｔ，Ｊ＝７．１Ｈｚ，３Ｈ） １．４５（ｓ，９Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．８，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．０７−４．３６（ｍ，３Ｈ） ５．１８−５．３８（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１８−７．３９（ｍ，１１Ｈ）
製造例３．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１３−１．３５（ｍ，２６Ｈ） １．３９−１．６１（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．７Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．７，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４，１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３４（ｍ，１Ｈ） ５．２１−５．３４（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．３７（ｍ，１１Ｈ）
製造例４．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １，１３−１．３５（ｍ，２２Ｈ） １．３９−１．６３（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．９，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３５（ｍ，１Ｈ） ５．２１−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．３９（ｍ，１１Ｈ）
製造例５．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１１−１．３５（ｍ，１８Ｈ） １．３９−１．６６（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，４．０Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．８，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２４−４．３５（ｍ，１Ｈ） ５．２１−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．４２（ｍ，１１Ｈ）
製造例６．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｅｃｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１３−１．３５（ｍ，１４Ｈ） １．３７−１．６６（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．９，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３５（ｍ，１Ｈ） ５．１９−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４，４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．４２（ｍ，１１Ｈ）
製造例７．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ．ＣＤＣｌ３）：０．８７（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１３−１．３４（ｍ，１０Ｈ）１．３９−１．６６（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．９，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１２（ｔ，Ｊ＝４．２Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３５（ｍ，１Ｈ） ５．１９−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．４２（ｍ，１１Ｈ）
製造例８．Ｂｏｃ−Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘｙｌ）の合成
製造例２と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８４（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，３Ｈ） １．１３−１．３０（ｍ，６Ｈ） １．３７−１．６５（ｍ，１１Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．７Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．７，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７０（ｓ，２Ｈ） ４．１２（ｔ，Ｊ＝４．２Ｈｚ，２Ｈ） ４．２３−４．３９（ｍ，１Ｈ） ５．１９−５．３５（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１９−７．４２（ｍ，１１Ｈ）
製造例９．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）の合成
Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−ＯＨ（１．５０ｇ）のＤＭＦ（４０ｍｌ）溶液に１−ブロモオクタデカン（４．４５ｇ）とＮａＨＣＯ３（１．９０ｇ）を加え、室温で２４時間攪拌した。反応液を水に注ぎ、ＡｃＯＥｔで抽出した。有機層を水洗し、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、濾過、濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマト（ｎ−ｈｅｘａｎｅ／ＡｃＯＥｔ＝２５／１→８／１）で精製することによってＢｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）を得た。
収量 １．６４ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１９−１．３５（ｍ，３０Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５９−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．９０−２．０１（ｍ，１Ｈ） ２．１５−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０５−５．１６（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１０．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｄｏｃｏｃｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，３８Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．８９−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２７（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５３（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２６−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０５−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１１．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，２６Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．８９−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２７（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．２Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１２．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）の合成製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３７（ｍ，２２Ｈ） １．４４（ｓ，９Ｈ） １．５８−１．６８（ｍ，２Ｈ） １．９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１５−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ）５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１３．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，１８Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５８−１．６８（ｍ，２Ｈ） １．９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１１（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１４．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｄｅｃｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，１４Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５８−１．６８（ｍ，２Ｈ） １，９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１２（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１５．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ）の合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３５（ｍ，１０Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．５８−１．６８（ｍ，２Ｈ） １．９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１２（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０６−５．１５（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１６．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−ＯＥｔの合成
製造例９と同様の方法によって得た。
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：１．２７（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．４３（ｓ，９Ｈ） １．９０−２．０２（ｍ，１Ｈ） ２．１５−２．２６（ｍ，１Ｈ） ２．３７−２．５５（ｍ，２Ｈ） ４．１９（ｑ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，２Ｈ） ４．２７−４．３７（ｍ，１Ｈ） ５．０５−５．１８（ｍ，１Ｈ） ５．１２（ｓ，２Ｈ） ７．２９−７．３９（ｍ，５Ｈ）
製造例１７．Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（ Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）の合成
Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）（１．４０ｇ）のジオキサン（４０ｍｌ）溶液に１０％Ｐｄ／Ｃ（２００ｍｇ）を加え、水素ガス雰囲気下で１４時間攪拌した後に反応液を濾過し、母液を減圧で濃縮した。残渣にＤＭＦ（４０ｍｌ）、Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ・塩酸塩（９４５ｍｇ）およびＨＯＢｔ（３４５ｍｇ）を加えて攪拌し、０℃でＮ−メチルモルホリン（０．２８ｍｌ）とＷＳＣ（６７０ｍｇ）を加えた。反応液を０℃で３０分間攪拌し、さらに室温で４時間攪拌した後に水に注ぎ、ＡｃＯＥｔで抽出した。有機層を水洗し、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、濾過、濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマト（ｎ−ｈｅｘａｎｅ／ＡｃＯＥｔ＝２／１→５／３）で精製することによってＢｏｃ−Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）を得た。
収量 １．７５ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，３Ｈ） １．１８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３６（ｍ，３０Ｈ） １．４４（ｓ，９Ｈ） １．５４−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．８４−１．９８（ｍ，１Ｈ） ２．１３−２．３３（ｍ，３Ｈ） ２．６９（ｄｄ，Ｊ＝８．７Ｈｚ，４．３Ｈｚ，１Ｈ） ２．８６（ｄｄ，Ｊ＝８．７，３．８Ｈｚ，１Ｈ） ３．７１（ｓ，２Ｈ） ４．０７−４．２６（ｍ，４Ｈ） ４．３２−４．４２（ｍ，１Ｈ） ４．４８−４．５８（ｍ，１Ｈ） ５．３０（ｄ，Ｊ＝５．０Ｈｚ，１Ｈ） ５．４８（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ６．６７（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ７．２０−７．４０（ｍ，１１Ｈ）
実施例１．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）塩酸塩の合成
Ｂｏｃ−Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）（１．７３ｇ）のジオキサン（１０ｍｌ）溶液に４Ｎ塩酸のジオキサン溶液（５ｍｌ）を加えて室温で２０時間攪拌した後に、反応液を減圧で濃縮した。残渣をジオキサンに溶かし、Ｅｔ２Ｏを加えて終夜攪拌した。析出した固体を濾取し、Ｅｔ２Ｏで洗浄後に乾燥することでＧｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｏｃｔａｄｅｃｙｌ）塩酸塩を得た。
収量 １．５０ｇ
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２１−１．３４（ｍ，３０Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３４（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６２−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．８０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．０３−４．２５（ｍ，５Ｈ） ４．５６−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ７．１３−７．３４（ｍ，１０Ｈ） ７．７４（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝５．０Ｈｚ，１Ｈ） ８．７２（ｂｒｓ，３Ｈ）
前記実施例並びに製造例と類似の方法、並びに当業者に周知の有機化学的手法を用いることによって以下の化合物を製造した。
実施例２．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｄｏｃｐｏｓｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２０−１．３４（ｍ，３８Ｈ） １．５４−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２０−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．３９−２．５４（ｍ，１Ｈ） ２．６２−２．７４（ｍ，２Ｈ） ２．８０（ｄ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ３．６７（ｓ，２Ｈ） ４．０５−４．２５（ｍ，５Ｈ） ４．５４−４．６６（ｍ，１Ｈ） ５．５１（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１６−７．３９（ｍ，１０Ｈ） ７．７３（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝４．７Ｈｚ，１Ｈ） ８．７０（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例３．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（９，１２，１５−Ｏｃｔａｄｅｃａｔｒｉｅｎｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．９７（ｔ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２３−１．４３（ｍ，１０Ｈ） １．５６−１．６９（ｍ，２Ｈ） １．９３−２．１３（ｍ，４Ｈ） ２．２０−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．３９−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．５９−２．８９（ｍ，８Ｈ） ３．６５（ｓ，２Ｈ） ４．０３−４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５７−４．６９（ｍ，１Ｈ） ５．２８−５．６４（ｍ，６Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．４１（ｍ，１０Ｈ） ７．７６（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ８．６９（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例４．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２０−１．３４（ｍ，２６Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６１−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．７９（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．０３〜４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５６−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．７４（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝５．０Ｈｚ，１Ｈ） ８．７２（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例５．ＡＣ−Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．１８−１．３６（ｍ，２９Ｈ） １．５７−１．６９（ｍ，２Ｈ） １．９２−２．０５（ｍ，１Ｈ） ２．０１（ｓ，３Ｈ） ２．１６−２．３６（ｍ，３Ｈ） ２．７１（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．４Ｈｚ，１Ｈ） ２．８５（ｄｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，４．１Ｈｚ，１Ｈ） ３．７１（ｓ，２Ｈ） ４．０７−４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５２−４．５８（ｍ，１Ｈ） ４．６４−４．７０（ｍ，１Ｈ） ５．４９（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ６．５５（ｄ，Ｊ＝４．７Ｈｚ，１Ｈ） ６．８３（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ７．２０−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．４０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ）
実施例６．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２０−１．３４（ｍ，２２Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６１−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．８０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．０３−４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５４−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．７３（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．８７（ｄ，Ｊ＝５．０Ｈｚ，１Ｈ） ８．７１（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例７．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＥｔ）−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．６Ｈｚ，３Ｈ） １．１６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．２０−１．３４（ｍ，１８Ｈ） １．５６−１．６６（ｍ，２Ｈ） ２．２０−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６１−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．７９（ｄ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．０３−４．２６（ｍ，５Ｈ） ４．５４−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．７３（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８６（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ８．７０（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例８．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，３Ｈ） １．０７−１．３４（ｍ，２９Ｈ） １．４６−１．５６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．４１−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．６１−２．７２（ｍ，２Ｈ） ２．７９（ｄ，Ｊ＝４．０Ｈｚ，２Ｈ） ３．６７（ｓ，２Ｈ） ４．００−４．２５（ｍ，５Ｈ） ４．５６−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．１６−７．３８（ｍ，１０Ｈ） ７．７５（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ） ７．８２（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ８．７３（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例９．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．０６−１．３４（ｍ，２５Ｈ） １．４６−１．５６（ｍ，２Ｈ） ２．２１−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．３９−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．５９−２．７０（ｍ，２Ｈ） ２．７８（ｄ，Ｊ＝４．０Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．００−４．２５（ｍ，５Ｈ） ４．５６−４．６４（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１５−７．３９（ｍ，１０Ｈ） ７．７５（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８２（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ８．７２（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例１０．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＣＤＣｌ３）：０．８８（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ） １．０７−１．３６（ｍ，２１Ｈ） １．４６−１．５６（ｍ，２Ｈ） ２．２３−２．３６（ｍ，１Ｈ） ２．３９−２．５２（ｍ，１Ｈ） ２．５９−２．７０（ｍ，２Ｈ） ２．７８（ｄ，Ｊ＝４．３Ｈｚ，２Ｈ） ３．６６（ｓ，２Ｈ） ４．００−４．３０（ｍ，５Ｈ） ４．５７−４．６９（ｍ，１Ｈ） ５．５０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，１Ｈ） ７．１６−７．４３（ｍ，１０Ｈ） ７．７５（ｄ，Ｊ＝４，４Ｈｚ，１Ｈ） ７．８２（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ） ８．７３（ｂｒｓ，３Ｈ）
実施例１１．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ））塩酸塩
１Ｈ ＮＭＲ（δｐｐｍ，ＤＭＳＯ−ｄ６）：０．８５（ｔ，Ｊ＝４．２Ｈｚ，３Ｈ） １．１７−１．３６（ｍ，２６Ｈ） １．５４−１．６６（ｍ，２Ｈ） １．９５−２．１２（ｍ，２Ｈ） ２．２６−２．５３（ｍ，３Ｈ） ２．６２（ｄｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，３．７Ｈｚ，１Ｈ） ３．７２（ｓ，２Ｈ） ４．０４（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，１Ｈ） ４．１４（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，２Ｈ） ４．７５−４．８５（ｍ，１Ｈ） ５．３６−５．４３（ｍ，１Ｈ） ７．１７−７．４６（ｍ，１０Ｈ） ８．２９（ｄ，Ｊ＝５．４Ｈｚ，１Ｈ） ９．０５（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ，１Ｈ）
さらに、前記製造例で合成した中間体を用いることによって以下の化合物を製造した。
実施例１２．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘｙｌ））−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
実施例１３．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｈｅｘｙｌ））−Ｏ（Ｈｅｘａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
実施例１４．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ））−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）塩酸塩
実施例１５．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ））−Ｏ（Ｔｅｔｒａｄｅｃｙｌ）塩酸塩
実施例１６．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｅｃｙｌ））−Ｏ（Ｄｏｄｅｃｙｌ）塩酸塩
同様にして、以下の対比化合物を製造した。
比較例１．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｅｔ））−ＯＥｔ塩酸塩
前述のＴＥＲ１９９
比較例２．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｏｃｔｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
比較例３．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−ＯＨ）−ＯＨ塩酸塩
前述のＴＥＲ１１７
比較例４．Ｇｌｕ（Ｃｙｓ（Ｂｚｌ）−Ｄ−Ｐｈｇ−Ｏ（Ｄｅｃｙｌ））−ＯＥｔ塩酸塩
本発明のグルタチオン誘導体のコロイド状組成物の具体的な製造例を以下に示す４。
実施例１７．
実施例４のグルタチオン誘導体を有効成分とする脂肪乳剤の製造を、高圧噴射型ホモジナイザーを用いて行った。
（１）高圧噴射型ホモジナイザーはナノマイザー社のナノマイザーＬＡを用いた。精製卵黄レシチン、精製大豆油、グリセリンは静脈内注射可能なものを使用した。
（２）精製卵黄レシチン６ｇと精製大豆油５５ｇを加温しながら混合しミキサーで均一化した。これに実施例４のグルタチオン誘導体を５６０ｍｇを加えさらに攪拌して均一化した。適量のグリセリンと注射用水を加えてミキサーで粗乳化して水酸化ナトリウム水溶液でｐＨを７．４に調整した。さらに水を加えて全量で５６０ｇとしたものを、ナノマイザーＬＡを用いて５５０ｋｇｆ／ｃｍ２の乳化圧で１１回乳化部を通過させることにより精乳化を実施した。精乳化したものを１．２μｍフィルターで濾過したのち適当なガラスバイアルに封入した。
（３）このようにして得られたグルタチオン誘導体の医薬組成物は、動的光散乱法によるＮＩＣＯＭＰ−３７０（野崎産業）にて３回測定した油相エマルション粒子の粒度分布が平均径（標準偏差）＝１７４．４ｎｍ（７５．０ｎｍ），１９４．５ｎｍ（７７．６ｎｍ），１８９．１ｎｍ（８７．９ｎｍ）であった。また１．２μｍフィルター濾過前後にテトラヒドロフランでエマルションを破壊してＨＰＬＣで実施例４のグルタチオン誘導体含量を測定したところ、濾過前の９０％以上の含量を維持しており、均一性が良好であるとともに油相エマルション粒子に実施例４のグルタチオン誘導体が安定に混合されていることが確認された。なお、実施例４のグルタチオン誘導体のアルコール溶液を終濃度がほぼ同じ１ｍｇ／ｍＬとなるように注射用水に５％以下の容量比率で混合した場合には、直ちにグルタチオン誘導体の析出を来たし１．２μｍフィルター濾過後の含量は７５％以下になることが確認された。
実施例１８．
実施例４で得られたグルタチオン誘導体を簡易に小スケールで脂肪乳剤と混合する方法で製造した。
（１）実施例１７の方法に従ってグルタチオン誘導体を添加しない空の脂肪乳剤を調製した。必要時に小スケールで使用できるように、ガラスバイアルに封入し高圧蒸気滅菌したものを冷蔵保存した。
（２）実施例４のグルタチオン誘導体を４０ｍｇ／ｍＬでエタノール：ベジルアルコール＝４：１の混液中に溶解させたものを、２．５〜７．５％の容量比率で（１）で得られた空の脂肪乳剤に混合した。
（３）得られた医薬組成物は、少なくとも混合から５時間を経過しても（１）の空の脂肪乳剤と同程度の油相エマルションの粒度分布を呈し、また、１．２μｍフィルターパス画分中のグルタチオン誘導体含量は仕込み値の９０％以上を維持した。
以下、実施例１〜１６で合成したグルタチオン誘導体の有効性を確認した
実施例１９．グルタチオン誘導体の生理的な安定性の比較
（１）Ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ ａｌｂｕｍｉｎ（以下ＢＳＡと称す）、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ（以下Ｄ−ＰＢＳと称す）、ブタ肝臓エステラーゼ及びウサギ肝臓エステラーゼはＳｉｇｍａ社より、雄性ＳＤ系ラットは６週齢のものを日本エスエルシー社より、雄性Ｊａｐａｎｅａｓｅ ｗｈｉｔｅウサギは１２週齢以上のものを市川屋よりそれぞれ購入した。そして、以下のインキュベーション実験当日に動物よりヘパリン存在下で採血・分離した血漿を使用した。ヒト血漿は健常な男性より同意を得て取得した。
（２）本発明の実施例及び比較例に記したグルタチオン誘導体を以下の組成の酵素液または血漿中で一定時間インキュベーションした後、反応液にアセトニトリルを添加して酵素を失活させて反応を停止し、徐タンパクした上澄液中のグルタチオン誘導体濃度をＨＰＬＣで測定した。エステラーゼ酵素実験では各時間点は２回以上の測定の平均値、またラット及びウサギは３個体の血漿サンプルの平均値を求めた。その一部の実験データについて、グルタチオン誘導体の初期濃度に対する百分率の経時変化を図２〜４に示した。
・ブタ肝臓エステラーゼ、ウサギ肝臓エステラーゼ実験
３０ｍｇ−ＢＳＡ／ｍＬ−Ｄ−ＰＢＳ（ｐＨ７．４）：３６〜４５部
ブタまたはウサギ肝臓エステラーゼ／Ｄ−ＰＢＳ：４〜５部
１０ｍｇ−グルタチオン誘導体／ｍＬ−エタノール：１部（反応液中の終濃度は、１９６〜２４４μｇ／ｍＬ）
・ラット、ウサギ、ヒト血漿
ヘパリン処理血漿：３０〜４０部
（ラット血漿は３０ｍｇ−ＢＳＡ／ｍＬ−Ｄ−ＰＢＳ（ｐＨ７．４）で必要に応じて希釈使用）
１０ｍｇ−グルタチオン誘導体／ｍＬ−エタノール：１部（反応液中の終濃度は、２５０〜３２３μｇ／ｍＬ）
（３）図２〜４で得られたグルタチオン誘導体分解の経時変化が、一次の消失曲線に従うとみなすことが妥当であると考えられたため、これらのグラフから分解速度定数や半減期をを求めて、表２、３に示した。
（４）以上の結果より本発明の炭素数１２以上アルキルエステルからなるグルタチオン誘導体は、比較例の炭素数１０以下のアルキルエステルからなるグルタチオン誘導体に比べて、相対的に生理的安定性が高いことがわかった。
細胞分化誘導・増殖促進活性の比較実験−１
ヒト白血病細胞ＨＬ−６０を９−シス−レチノイン酸（９−ｃｉｓ−ＲＡ）または活性型ビタミンＤ３（１α，２５（ＯＨ）２Ｄ３）の存在下で培養して得られる顆粒球系または単球・マクロファージ系細胞への分化誘導作用を利用して、さらに本発明実施例及び比較例のグルタチオン誘導体を共存させた時の増殖促進活性を試験した。
（１）ＨＬ−６０細胞は細胞バンク（ジャパニーズ・キャンサー・リサーチ・リソース・バンク、細胞番号：ＪＣＲＢ００８５）から購入したものを用いた。常法により、細胞凍結保存ストックを実験開始前に解凍して継代培養を始めたものを使用した。継代は、浮遊培養状態の細胞を遠心回収（毎分１５００回転、５分）して新鮮な培養液に１／１００程度の濃度（１〜２×１０４細胞／ｍＬ）に希釈することで実施した。なお、培養液としては１０％ウシ胎児血清を含むＲＰＭＩ−１６４０培地を用いた。
（２）（１）で継代培養していた細胞を遠心回収（毎分１５００回転、５分）して培養液に２×１０４細胞／ｍＬに分散させ、２４ウェル培養プレートに１ｍＬ／ウェルで播種した。この系に実施例４、実施例１１、比較例１及び比較例２のグルタチオン誘導体と分化誘導物質（９−ｃｉｓ−ＲＡまたは１α，２５（ＯＨ）２Ｄ３）を添加した。すなわち、分化誘導物質である９−ｃｉｓ−ＲＡは５×１０−６Ｍ、１αおよび２５（ＯＨ）２Ｄ３は２×１０−６Ｍでエタノール溶液としたものをそれぞれ１ウェルあたり１μＬ添加した。続いて、グルタチオン誘導体を１×１０−４〜１×１０−２Ｍでエタノール溶液としたものを１ウェルあたり１μＬ添加した。なお、対照となる溶媒処理としてはグルタチオン誘導体の代わりにエタノールを１ウェルあたり１μＬ添加し、グルタチオン誘導体単独処理としては分化誘導物質の代わりにエタノールを１ウェルあたり１μＬ添加した。３７℃、５％ＣＯ２下で４日間培養した後、細胞を遠心回収（毎分１５００回転、５分）した。
（３）単球・マクロファージ系あるいは顆粒球系細胞への分化誘導作用の評価によく用いられる生物学的指標の一つであるニトロブルーテトラゾリウム（以下ＮＢＴ）還元活性の測定は以下の手順に従って実施した。すなわち、（２）で記載した遠心回収した細胞を新鮮な培養液に浮遊させた後、ＮＢＴ１００ｎｇ／ｍＬ、１２−Ｏ−テトラデカノイルホルボール−１３−アセテート１００ｎＭとなるように添加し、３７℃で２５分間インキュベートした後、サイトスピン標本を作製した。風乾後、ケルネヒトロート染色を施し、光学顕微鏡下で標本１枚あたり５００個の細胞を観察し、ＮＢＴ還元活性陽性細胞の比率を求めた。
（４）グルタチオン誘導体を１０−７〜１０−５Ｍで、分化誘導物質とともに処理した結果を表４に示す。各グルタチオン誘導体はいずれも１０−５Ｍまでの単独処理ではＮＢＴ還元活性の上昇は認められなかった。グルタチオン誘導体と分化誘導物質との組み合わせ処理では、分化誘導物質単独での処理と比較して、ＮＢＴ還元活性陽性細胞の比率がグルタチオン誘導体の濃度に依存して上昇することが認められた。なお、本発明の実施例４、１１と比較例１、２のグルタチオン誘導体間で作用強度に大きな差は認められなかった。
誘導・増殖促進活性の比較実験−２
実施例２０と同様の手法で、実施例４、５、８及び比較例３のグルタチオン誘導体のｉｎ−ｖｉｔｒｏ活性を比較した。
（１）実施例２０との相違点としては、一点は、化合物の溶解性の理由から実施例及び比較例のグルタチオン誘導体は、溶媒としてジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を用いたため、系中にエタノールではなく０．１〜０．３（ｖ／ｖ）％のＤＭＳＯが入った条件となった。また二つ目に、９−ｃｉｓ−ＲＡの濃度を５×１０−９Ｍから２×１０−９Ｍに変更した。これらの影響で、実施例４のグルタチオン誘導体の試験結果に若干の感受性の差異を生じた。さらに、実施例２１では９−ｃｉｓ−ＲＡを共存させてＨＬ−６０細胞の顆粒球系細胞への分化誘導のみを評価した。
（２）実施例４は比較例３のグルタチオン誘導体より高い活性を示した。実施例５及び８のグルタチオン誘導体は比較例３と同程度の分化誘導能を示した。
合したものと実施例１８との効果の比較
グルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合したものをブタ肝臓エステラーゼとインキュベーションし、その分解に対する抵抗性を比較した。
（１）実施例１８と同一の条件で比較例１及び２のグルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合した。このとき脂肪乳剤中の実施例４、比較例１及び比較例２のグルタチオン誘導体濃度はいずれも１ｍｇ／ｍＬとした。
（２）実施例１８、比較例１または比較例２のグルタチオン誘導体の脂肪乳剤を１５（ｖ／ｖ）％でブタ肝臓エステラーゼの反応液中に添加し、実施例１９と同様に一定時間インキュベーション後のグルタチオン誘導体含量をＨＰＬＣで定量分析した。また対照実験として、実施例４、比較例１または比較例２のグルタチオン誘導体のアルコール溶液を、総容量調整のための生理食塩水とともにエステラーゼ反応液中に添加して、同じようにインキュベーションしてＨＰＬＣで分析した。
（３）実施例１９と同様に一次の消失曲線に従ったので、それぞれの分解速度定数を求めてその比較を行い表６にまとめた。
（４）脂肪乳剤と混合することで、いずれのグルタチオン誘導体も分解速度が低下したが、その分解速度の低下度合は実施例４のグルタチオン誘導体でより強く現れた。
ものと実施例１８との効果の比較
グルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合したものをグリセリン水溶液中で透析し、脂肪乳剤中のグルタチオン誘導体含量の変化を比較した。
（１）実施例１８と同様に比較例１の脂肪乳剤を調製した。このときのグルタチオン誘導体の濃度は脂肪乳剤中２ｍｇ／ｍＬとした。
（２）これらの脂肪乳剤を１４ｍＬを１Ｌの２．３（ｗ／ｖ）％グリセリン水溶液中で透析した。透析は２日間室温で行い、グリセリン水溶液を途中１回交換した。透析後の脂肪乳剤はいずれも約１５．６ｍＬとなっていた。これを１．２μｍのフィルターで濾過してそのグルタチオン誘導体含量を測定した。
（３）実施例１８（実施例４）のグルタチオン誘導体含量は、透析による容量増加を補正しない値で初期仕込み値の８５．７％であったが、比較例１の含量は透析後に１４．０％に低下していた。
この結果は次のように解釈される。すなわち、実施例４のグルタチオン誘導体は、透析膜をほとんど透過し得ない油相エマルション粒子に強く封入されるため、透析後も脂肪乳剤中の含量はあまり低下しないが、比較例１のグルタチオン誘導体は容易にエマルション粒子と強い相互作用をもたず、透析膜を透過して脂肪乳剤中の含量低下を来たしたと考察できる。
（４）この結果から、実施例４のグルタチオン誘導体は脂肪乳剤とともに投与した場合、ｉｎ ｖｉｖｏでも血管を油相エマルション粒子を透過させない透析膜に見なした時に同様の効果が期待できると考えられた。
実施例２４．実施例１８の脂肪乳剤と比較例１の水溶液をマウスに
静脈内投与した時の血中グルタチオン誘導体濃度推移
の比較
血中のエステラーゼ活性が高い種であるマウスにおける血中動態を実施例４と比較例１のグルタチオン誘導体について比較した。
（１）マウスは日本エスエルシーから雄性８週齢のＢＤＦ１マウスを購入し実験に用いた。９週齢で実験に供するまでの期間、動物飼育用飼料（ＭＦ、オリエンタル酵母株式会社）および飲料水（０．４±０．２ｐｐｍの次亜塩素酸を処理した井水）を自由摂取できる条件下、温度２４±２℃、湿度５５±５％で飼育した。
（２）実施例４のグルタチオン誘導体濃度を３ｍｇ／ｍＬとした実施例１８の脂肪乳剤と、比較例１のグルタチオン誘導体を５ｍｇ／ｍＬの濃度で含有する２．５（ｗ／ｖ）％−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリンの生理食塩溶液を、それぞれ有効成分用量が３０ｍｇ／ｋｇ−体重、５０ｍｇ／ｋｇ−体重となるように、液量としてともに１０ｍＬ／ｋｇ−体重をマウスに尾静脈内投与した。一定時間後エーテル麻酔下で心臓より約１ｍＬの血液を採取した。（各マウスの個体からは１回採血して殺処分する。）各試料群−各時間ポイントのＮ数は２で実施した。採血後の血液は直ちに氷冷し、クエン酸ナトリウム存在下で血漿を遠心分離した。得られた血漿は、アセトニトリルで除タンパク後、トリフルオロ酢酸水溶液／アセトニトリル系を移動相としてＣ１８の逆相クロマトグラフィーカラムで分析し、血漿中の各グルタチオン誘導体濃度を測定した。
（３）各グルタチオン誘導体の血漿中濃度結果を表７、８にまとめた。比較例１のグルタチオン誘導体は投与５分後ですでに血漿中濃度が定量限界の約１μｇ／ｍＬ以下であった。一方、実施例１８の脂肪乳剤を投与したマウスでは、グルタチオン誘導体が血漿中に投与後２時間まで検出された。
（４）以上の結果から、従来技術の比較例１は、マウスの血漿中から極めて速く消失するのに対して、本発明の実施例４のグルタチオン誘導体は、血漿中に比較的長時間に亘って存在し得ることがわかった。
表中の単位はμｇ／ｍＬ、定量限界は約１μｇ／ｍＬ
表中の単位はμｇ／ｍＬ、定量限界は約１μｇ／ｍＬ
実施例２５．炭素数１２以上の長鎖エステルを有するグルタチオン
誘導体の脂肪乳剤と比較例１の水溶液及び比較例２の
脂肪乳剤をウサギに静脈内投与した時の血中グルタチ
オン誘導体濃度推移の比較
血中のエステラーゼ活性が低い種であるウサギにおける血中動態を、炭素数１２以上の長鎖エステルを有する本発明のグルタチオン誘導体と、従来技術である比較例１及び２のグルタチオン誘導体について比較した。
（１）ウサギは市川屋から雄性で１２週齢以上の日本白色種を購入し、１５週齢以上で体重が約３ｋｇに達したものを実験に用いた。実験に供するまでの期間、動物飼育用飼料及び飲料水は自由に摂取させ、温度２４±２℃、湿度５５±５％の条件下で飼育した。
（２）炭素数１２以上の長鎖エステルを有するグルタチオン誘導体と比較例２のグルタチオン誘導体は、エタノールまたはエタノール：ベンジルアルコール混液で２０〜２００ｍｇ／ｍＬの溶液を調製し、これを投与直前に脂肪乳剤に混合した後１．２μｍフィルターで濾過したものを静脈内投与液とした。一方、比較例１のグルタチオン誘導体は、６％−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン／５％−グルコース水溶液に１５ｍｇ／ｍＬで溶解させたものを投与液とした。
（３）投与容量２ｍＬ／ｋｇで（２）で得られたグルタチオン誘導体の投与液を、無麻酔拘束下のウサギの左耳介静脈から１ｍＬ／ｍｉｎの速度で急速にインフュージョン投与した。各グルタチオン誘導体は３匹以上のウサギに投与した。投与終了時点から５，１０，１５，３０，６０，１２０及び２４０分後に右耳介静脈からヘパリン存在下で１ｍＬの血液を採取し直ちに氷冷した。血液から血漿を遠心分離して、アセトニトリルを１〜２倍容量加えてタンパクを沈殿させた後遠心分離し、さらに０．５μｍのフィルターで濾過した上澄み液をＨＰＬＣで定量分析した。
（４）各グルタチオン誘導体の血漿中濃度の推移を投与用量で補正したものを図５に示した。また、これらのデータから２−コンパートメントモデルによる薬物動態解析を行い分布容積とクリアランスを算出し表９にまとめた。
（５）以上の血中エステラーゼ活性が比較的低いウサギの動態実験から、本発明の炭素数１２以上のグルタチオン誘導体は、従来技術である比較例１及び２のグルタチオン誘導体と比較して、極めて顕著に高濃度で持続的に維持される傾向が確認された。
オロウラシル投与造血機能抑制モデルラットにおける
薬理効果の比較
５−フルオロウラシル（以下５−ＦＵと略す）投与造血機能抑制モデルラットにおける好中球数回復促進作用について、対照群との統計学的な有意性を比較することにより、本発明の実施例４を有効成分として含有する医薬組成物と、従来技術である比較例１の医薬組成物、顆粒球コロニー刺激因子Ｇ−ＣＳＦとを比較した。
（１）使用動物および飼育条件；ラットは日本エスエルシーから購入した６週齢の雄性ＳＤ系ラットを用いた。動物飼育用飼料（ＭＦ、オリエンタル酵母株式会社製）および飲料水（０．４±０．２ｐｐｍの次亜塩素酸を処理した井水）は実験期間を通して自由摂取させた。動物は１匹ずつ吊式ラットケージ（日本ケージ株式会社製）に収容し、温度２４±２℃、湿度５５±５％の条件下で飼育した。
（２）５−ＦＵ投与ラット造血機能抑制モデルの作製；５−ＦＵ（協和発酵工業株式会社製）投与ラット造血機能抑制モデルの作製は、赤松ら（薬理と治療、１８（Ｓｕｐｐｌ．９），３１７−３５６（１９９０））の方法を参考に実施した。すなわち、実験１日目に（１）記載のラットに５−ＦＵ ５０ｍｇ／ｋｇ−体重（投与容量は１ｍＬ／ｋｇ−体重）、または同容量の生理食塩液（扶桑薬品工業株式会社製）を腹腔内投与した。実験４、７〜１２日目に頸静脈から採血してＥＤＴＡ−２Ｋ処理血液を得て、この血液について総合血液学検査装置（Ｔｅｃｈｎｉｃｏｎ Ｈ・１Ｅ、バイエル・三共株式会社製）を用いて好中球数を、網状赤血球測定装置（ＥＰＩＣＳ ＸＬ−ＭＣＬ、コールター株式会社製）を用いて網状赤血球率を測定した。なお、採血は実験１日目にも実施し、その血液について測定した結果を投与前値とした。また、実験４日目の時点で網状赤血球率の減少が認められなかったラット（５−ＦＵ投与ラットのうちの約１０％）は、５−ＦＵ投与の効果が認められなかったと判断して実験から除外して評価した。
生理食塩液投与群では実験期間を通じて好中球数に変化が認められなかったのに対し、５−ＦＵ投与群では、実験８日目を最低値とした好中球数の減少が認められ、実験１０日目以降、好中球数は５−ＦＵ投与前値かそれ以上までに回復が認められた。以上の結果から、５−ＦＵを５０ｍｇ／ｋｇ−体重で単回腹腔内投与することにより、ラット造血機能抑制モデルが作製できることを確認した。
（３）実施例４及び比較例１の上記記載のモデルによる評価；（２）に記載のモデルに、実施例４のグルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合したものを１０〜３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で、また、比較例１のグルタチオン誘導体を、２．５％のヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン（以下ＨＰＣＤ）を含む生理食塩水に溶解したものを５０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で、実験２日目から１０日目まで９日間反復尾静脈内投与した。また、陽性対照群として、遺伝子組換えヒトＧ−ＣＳＦ製剤（以下Ｇ−ＣＳＦ、中外製薬株式会社製）を１０μｇ／ｋｇ−体重／日で、陰性対照群として空の脂肪乳剤を同様に投与した。なお、投与容量は陰性対照群、実施例４−脂肪乳剤群及び比較例１−ＨＰＣＤ溶液群は１０ｍＬ／ｋｇ−体重／日、Ｇ−ＣＳＦ群は１ｍＬ／ｋｇ−体重／日とした。
（４）５−ＦＵ投与ラット造血機能抑制モデルにおける好中球数回復促進作用の評価結果を図６、図７に示す。Ｇ−ＣＳＦ １０μｇ／ｋｇ−体重／日投与群では、実験４日目に陰性対照群に対して統計学的に有意な好中球数の増加が認められ、一旦、実験７日目に陰性対照群とほぼ変わらない値まで減少した後、実験８日目以降は再び好中球数の統計学的に有意な増加（有意水準５％−０．１％）が継続して認められた。実施例４−脂肪乳剤群では、３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群で実験８日目から継続して陰性対照群に対して統計学的に有意な好中球数の増加（有意水準５％−０．１％）が認められ、その程度はＧ−ＣＳＦ １０μｇ／ｋｇ−体重／日投与群とほぼ同等であった。２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群では、実験８日目から継続して好中球数の増加傾向が認められ、実験９〜１１日目には陰性対照群に対して統計学的な有意差（有為水準１％−０．１％）をもって増加が認められた。１０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群は陰性対照群と比較して変化は認められなかった。一方、比較例１−ＨＰＣＤ溶液群では５０ｍｇ／ｋｇ−体重／日まで投与しても、実験１２日目に陰性対照群に対して統計学的に有意な好中球数の増加（有意水準５％）が認められたのみで、陰性対照群と比較して変化は認められなかった。
上記結果より、比較例１は溶解補助剤ＨＰＣＤとともに５０ｍｇ／ｋｇ−体重／日まで投与しても陰性対照群と比較して変化は認められなかった。一方、実施例４−脂肪乳剤の２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日以上の投与群において、５−ＦＵ投与ラット造血機能抑制モデルにおける投与量依存的な好中球数の回復促進作用を有することが示され、実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群ではＧ−ＣＳＦ １０μｇ／ｋｇ−体重／日投与群とほぼ同等の好中球数の回復促進作用を有することが明らかとなった。
実施例２７．実施例１、４および７の５−フルオロウラシル投与造
血機能抑制モデルラットにおける薬理効果の比較
（１）使用動物は実施例２６と同じで、飼育条件は温度２３±２℃、湿度５５±１５％であった。
（２）５−ＦＵ投与モデルの作製、被験物質の投与及び採血スケジュールは実施例２６と同様に実施した。血液学的検査には東亜多項目自動血球計数装置Ｋ−４５００または東亜シスメックスＣＣ−１８０Ａ自動血球計数装置を用い、白血球百分率はメイ・ギムザ染色後鏡検で、網状赤血球数はＢｒｅｃｈｅｒ法でそれぞれ計測した。
（３）実施例２６と同一スケジュールで、５−ＦＵ投与後に脂肪乳剤のみを投与する陰性対照群、被験物質として実施例４のグルタチオン誘導体を３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で脂肪乳剤とともに投与する群、同様に実施例１のグルタチオン誘導体を１０または３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で投与する群、実施例７のグルタチオン誘導体を３０または６０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で投与する群を試験した。また、網状赤血球が減少しなかったラットは、５−ＦＵの効果が認められなかったとして実験から除外した（１例）。
（４）試験期間中の好中球分節核球比の変化を図８に示す。実施例２６と同様に実施例４−３０ｍｇ／ｋｇ群で、好中球分節核球数の回復促進傾向（実験日９〜１２日で有意水準５％−１％）が観察された。また、実施例１のグルタチオン誘導体では１０，３０ｍｇ／ｋｇの両群で好中球数の回復促進作用（それぞれ実験日８〜１２日、７〜１２日で陰性対照群に対して有意水準１％）が見られた。さらに、実施例７のグルタチオン誘導体では３０ｍｇ／ｋｇ群では陰性対照と比較して変化がなかったが、６０ｍｇ／ｋｇの高用量を投与した群では好中球数回復促進傾向（実験日１１，１２日でそれぞれ有意水準５％，１％）が確認された。
実施例２８．実施例４のグルタチオン誘導体の正常ラットにおける
薬理効果
実施例４の化合物の正常ラットにおける好中球増加作用について検討した。
（１）ラットは日本エスエルシー株式会社から購入した６週齢の雄性ＳＤ系ラットを用いた。動物飼育用飼料（ＭＦ，オリエンタル酵母株式会社製）および飲料水（０．４±０．２ｐｐｍの次亜塩素酸を処理した井水）は実験期間を通して自由摂取させた。動物は１匹ずつ吊式ラットケージ（日本ケージ株式会社製）に収容し、温度２４±２℃、湿度５５±５％の条件下で飼育した。
（２）実施例４のグルタチオン誘導体を脂肪乳剤に混合したものを１０，２０または３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日、及び、陰性対照群として脂肪乳剤のみをそれぞれ実験１日目から６日目まで６日間反復尾静脈内投与した。投与容量は１０ｍＬ／ｋｇ−体重／日で行った。実験１日目から１０日目まで毎日頸静脈から採血してＥＤＴＡ−２Ｋ処理血液を得た後、総合血液学検査装置（Ｔｅｃｈｎｉｃｏｎ Ｈ・１Ｅ，バイエル・三共株式会社製）を用いて好中球数を測定した。
実験１，７，１０日目に陰性対照群の一部、実験３，５，７，１０日目に実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群の一部についてペントバルビタール・ナトリウム腹腔内麻酔下で腹大動脈より放血致死させた後、大腿骨骨髄を採取し、ウエッジ法にて塗抹標本を作製し、メイ・ギムザ染色を施して顕微鏡下で骨髄有核細胞分画を行った。
陰性対照群および実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群の一部については、実験３，５，７日目のＥＤＴＡ−２Ｋ処理血液から得た血漿を用いて血漿中インターロイキン１β（以下ＩＬ−１β）量および腫瘍壊死因子（以下ＴＮＦα）量を測定した。測定にはラットＩＬ−１β−ＥＬＩＳＡシステム（アマシャムファルマシアバイオテク株式会社製）、ラットＴＮＦα−ＥＬＩＳＡシステム（アマシャムファルマシアバイオテク株式会社製）およびバイオラッドマイクロプレートリーダー（ＭＯＤＥＬ５５０，日本バイオ・ラッド・ラボラトリーズ株式会社製）を使用した。
（３）正常ラットにおける好中球増加作用の評価結果を図９に示す。実施例４−脂肪乳剤群では、３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群において実験２日目、５日目から８日目に陰性対照群に対して統計学的に有意な好中球数の増加が認められた（有意水準５％−１％）。
実験１，３，５，７，１０日目に骨髄に対する影響を検討した結果を図１０，１１に示す。好中球性骨髄球系細胞を分裂能を有する好中球性骨髄球（骨髄芽球、前骨髄球、好中球性骨髄球、骨髄球系分裂細胞）と分裂能を有さない好中球性骨髄球（好中球性後骨髄球、桿状核好中球、分葉核好中球）に分けて評価すると、分裂能を有する好中球性骨髄球は実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群において実験３，５日目に増加し、実験７日目に陰性対照群とほぼ同程度の値に戻った。一方、分裂能を有さない好中球性骨髄球は実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ投与群において実験３日目は陰性対照群とほぼ同程度であったが、実験７日目を最大として実験５，７，１０日目に増加が認められた。
実験３，５，７日目に血漿中ＩＬ−１β量およびＴＮＦａ量を検討した結果を図１２，１３に示す，ＩＬ−１βおよびＴＮＦαともに、実施例４−脂肪乳剤の３０ｍｇ／ｋｇ−体重／日投与群は陰性対照群と比較していずれの実験日においても増加は認められなかった。
（４）上記結果より、本発明の実施例４のグルタチオン誘導体を含有する脂肪乳剤からなる医薬組成物は、正常ラットにおいても好中球数の増加作用が確認され、末梢血での好中球数の増加変動に対応した形で骨髄における造血亢進作用も認められた。さらに、これらの好中球数の増加作用には炎症性サイトカイン（ＩＬ−１β，ＴＮＦα）の変動は関与していないことも明らかとなった。
実施例２９．シクロフォスファミド投与造血機能抑制モデルウサギ
における薬理効果の比較
シクロホスファミド（以下ＣＰ）投与造血機能抑制モデルウサギにおける好中球数回復促進作用について、本発明の実施例４のグルタチオン誘導体を有効成分として含有する医薬組成物と、従来技術である比較例１の医薬組成物とを比較した。
（１）使用動物および飼育条件；ウサギは北山ラベスから購入した１７週齢の雄性日本白色種（Ｋｂｌ：ＪＷ）を用いた。動物飼育用飼料（ＬＲＣ４、オリエンタル酵母株式会社製）および飲料水（０．４±０．２ｐｐｍの次亜塩素酸を処理した井水）は実験期間を通して自由摂取させた。動物は１匹ずつ吊式ウサギケージ（日本ケージ株式会社製）に収容し、温度２４±２℃、湿度５５±５％の条件下で飼育した。
（２）ＣＰ投与ウサギ造血機能抑制モデルの作製；実験１日目および２日目に（１）記載のウサギにＣＰ（和光純薬工業株式会社製）６０ｍｇ／ｋｇ−体重／日（投与容量は２ｍＬ／ｋｇ−体重）を静脈内投与した。次に実験３日目から９日目まで左後耳介静脈から採血してヘパリンナトリウム処理血液を得た。この血液について総合血液学的検査装置（Ｔｅｃｈｎｉｃｏｎ Ｈ・１Ｅ、バイエル・三共株式会社製）を用いて好中球数を測定した。なお、採血は実験１日目の投与前にも実施し、その血液について測定した結果を投与前値とした。その結果、実験５日目から７日目を低値として好中球数の減少が認められ、その後、実験８日目以降は投与前値かそれ以上までに回復していた。以上の結果からＣＰ ６０ｍｇ／ｋｇ−体重を２日間投与することによりウサギ造血機能抑制モデルが作製できることを確認した。
（３）実施例４及び比較例１のグルタチオン誘導体の上記記載のモデルにおける評価；（２）に記載のモデルにおいて、被験物質として、実施例４−脂肪乳剤を２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で、また、比較例１−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン（以下ＨＰＣＤ）溶液（比較例１の誘導体を３％ＨＰＣＤ−２．２％グリセリン水溶液に溶解したもの）を２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で実験３日目から７日目に投与した。なお、陰性対照群には空の脂肪乳剤を投与した。
ＣＰ投与ウサギ造血機能抑制モデルにおける好中球数回復促進作用の評価結果を図１４に示す。実施例４−脂肪乳剤群では実験６日目から８日目に継続して統計学的に有意な好中球数の増加（有意水準１％）が認められた。一方、比較例１−ＨＰＣＤ溶液群では対照群と比較して変化は認められなかった。
上記結果より、比較例１は溶解補助剤ＨＰＣＤとともに２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日で投与しても陰性対照群と比較して変化が認められなかった。一方、実施例４−脂肪乳剤の２０ｍｇ／ｋｇ−体重／日はＣＰ投与ウサギ造血機能抑制モデルにおける好中球数の回復促進作用を有することが示された。
また、薬剤による造血促進刺激というものをここで考え直してみると、以下のような点を考慮することが重要であると思われる。自然に任せた造血には生体の定常状態における構成的造血と、感染や出血を始めとするさまざまな刺激に対する誘導的造血がある。好中球減少症や血小板減少症における造血機能抑制状態から、末梢血血球数を回復させるためには誘導的造血を起こす必要があり、現在臨床的に行われているＧ−ＣＳＦなどのようないわゆる生体由来の造血因子の場合、直接的に骨髄に存在する造血幹細胞や前駆細胞の分化や増殖を刺激して成熟血球が産生されるに至る。本発明者らが考える臨床上好ましい造血機構としては、感染や出血などの刺激と同様に炎症を伴って種々のサイトカインを変動させ、結果として二次的にＧ−ＣＳＦ等の造血因子産生を引起こすものではなく、Ｇ−ＣＳＦ等と同じように骨髄の幹細胞や前駆細胞の分化・増殖を直接誘導し得ることが必要である。従って、Ｇ−ＣＳＦ等生体由来の生理活性タンパク性医薬品に代替し得る低分子性造血物質には、骨髄の幹細胞や前駆細胞に直接的に作用して造血促進作用を発揮するとともに、この薬物自体が骨髄に効率的に運ばれる形態で投与されるか、または生体内で効率的に骨髄に到達する仕組みを利用し得る性質がなければならないと思われる。実際に、造血幹細胞や顆粒球コロニー形成細胞などに作用するＧ−ＣＳＦは、高分子であるがゆえに小さい分布容積を示し（診療と新薬、Ｖｏｌ、２６（１１）、ｐ１６６０〜、（１９９０）の実験データから本発明者らが試算した。）、骨髄に到達するのに効率的であると考えられる。ＷＯ９６４０２０５号明細書には、ＴＥＲ１９９が直接骨髄の前駆細胞に作用する可能性が示唆されているものの、炎症反応に伴う二次的な造血促進である可能性を否定するデータはなく、また、骨髄に効率的に送達され得る構造や投与形態についての明確な記載はない。
事実、以上の本発明者らの実験により、ＴＥＲ１９９はマウス、ラットなどの実験動物の血漿中で極めて半減期が短く、また、骨髄に効率的に達する構造や形態を有していない。したがって、ＷＯ９６４０２０５号明細書に開示されるＴＥＲ１９９とその類縁化合物は、ドラッグデリバリーの観点から、造血促進作用を効率的に発現することができないのである。
【図面の簡単な説明】
第１図は、本発明のグルタチオン（中−長鎖アルキルエステル）誘導体の合成スキームである。
第２図は、実施例１９のブタ肝エステラーゼ実験である。なお反応液中エステラーゼ濃度は、実施例４が、７５ユニット／ｍＬ、比較例１が３．７５ユニット／ｍＬであった。
第３図は、実施例１９のラット血漿実験である。なお比較例１では４００倍にＢＳＡ溶液で希釈した血漿を用いた。
第４図は、実施例１９のヒト血漿実験である。
第５図は、ウサギにおける静脈内投与後の血漿中グルタチオン誘導体濃度推移の比較である。
第６図は、実施例４と比較例１のグルタチオン誘導体の５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）投与造血機能抑制モデルラットにおける薬理効果の比較であり、実施例４のグルタチオン誘導体の好中球数の変化を示している。各データはｎ＝５〜８の平均値を用いた。
第７図は、実施例４と比較例１のグルタチオン誘導体の５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）投与造血機能抑制モデルラットにおける薬理効果の比較であり、比較例１のグルタチオン誘導体の好中球数の変化を示している。各データはｎ＝６〜８の平均値を用いた。
第８図は、実施例１、４および７のグルタチオン誘導体の５−フルオロウラシル投与造血機能抑制モデルラットにおける薬理効果の比較であり、該モデルラットにおける好中球分節核球比の変化を示している。各データはｎ＝４〜８の平均値±標準偏差を用いた。
第９図は、実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに反復投与した時の末梢血中の好中球数の変化である。各データはｎ＝６〜１２の平均値を用いた。
第１０図は、実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに投与した時の、分裂能を有する好中球性骨髄球（骨髄芽球、前骨髄球、好中球性骨髄球、骨髄球系分裂細胞）の変化である。各データはｎ＝６の平均値を用いた。
第１１図は実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに投与した時の、分裂能を有さない好中球性骨髄球（好中球性後骨髄球、桿状核好中球、分葉核好中球）の変化である。各データはｎ＝６〜１２の平均値を用いた。
第１２図は実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに投与した時の、血漿中のＩＬ−１β量の変化を示す、各データはｎ＝２〜３の平均値±標準偏差を用いた。
第１３図は実施例４のグルタチオン誘導体を正常ラットに投与した時の、血漿中のＴＮＦα量の変化を示す。各データはｎ＝２〜３の平均値±標準偏差を用いた。
第１４図はシクロフォスファミド投与造血機能抑制モデルウサギにおける薬理効果の比較を示す。各データはｎ＝４の平均値を用いた。
Claims (15)
- 下記式（Ｉ）：
で表されるグルタチオン誘導体またはその塩。 - Ｒ1がＣ1−Ｃ22のアルキル基またはＣ10−Ｃ22のアルケニル基である請求項１に記載のグルタチオン誘導体またはその塩。
- Ｒ1がエチル基、Ｃ10−Ｃ22のアルキル基またはＣ16−Ｃ20のアルケニル基である請求項１に記載のグルタチオン誘導体またはその塩。
- Ｒ2がＨ，Ｃ1−Ｃ22のアルキル基またはＣ3−Ｃ22のアルケニル基である請求項１〜３のいずれか一項に記載のグルタチオン誘導体またはその塩。
- Ｒ2がＨ，エチル基またはＣ10−Ｃ18のアルキル基である請求項１〜３のいずれか一項に記載のグルタチオン誘導体またはその塩。
- ＡがＨまたはアセチル基である請求項１〜５のいずれか一項に記載のグルタチオン誘導体またはその塩。
- Ｒ1がＣ12−Ｃ22のアルキル基またはＣ18−Ｃ20のアルケニル基で、Ｒ2がエチル基であるか、または、Ｒ1がエチル基で、Ｒ２がＣ12−Ｃ18のアルキル基である請求項１または６に記載のグルタチオン誘導体またはその塩。
- 請求項１〜７のいずれか一項に記載のグルタチオン誘導体またはその塩を含んで成る医薬組成物。
- 該医薬組成物がコロイド状である請求項８に記載の医薬組成物。
- 該医薬組成物が脂肪乳剤、リポソーム及び固体懸濁物からなる群から選ばれる少なくとも一つの形態である請求項８に記載の医薬組成物。
- 該医薬組成物が脂肪乳剤である請求項８に記載の医薬組成物。
- 請求項１〜７のいずれか一項に記載のグルタチオン誘導体またはその塩を含んで成る造血促進剤。
- 該造血促進剤がコロイド状の医薬組成物である請求項12に記載の造血促進剤。
- 該造血促進剤が脂肪乳剤、リポソーム及び固体懸濁物からなる群の少なくとも一つの形態を呈する医薬組成物である請求項１２に記載の造血促進剤。
- 該造血促進剤が脂肪乳剤である請求項12に記載の造血促進剤。
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