JP3972218B2

JP3972218B2 - 特に伝染性ネコ腹膜炎に対する、ネコヘルペスウイルス１型をベースとした組換え生ワクチン

Info

Publication number: JP3972218B2
Application number: JP52022497A
Authority: JP
Inventors: オドネ，ジャン―クリストフ，フランシス; ボードゥ，フィリップ，ギィ，ニコラス; リヴィエール，ミシェル，アルベール，エミール
Original assignee: メリアルエスアーエス
Priority date: 1995-11-30
Filing date: 1996-11-19
Publication date: 2007-09-05
Anticipated expiration: 2016-11-19
Also published as: US6074649A; EP0870046A1; AU725846B2; DE69637807D1; WO1997020059A1; CA2239072A1; JP2000501927A; PT870046E; AU7630196A; ZA969951B; JP2006320337A; EP0870046B1; FR2741806B1; BR9611845A; ATE420190T1; US6387376B1; ES2320938T3; FR2741806A1; DK0870046T3; NZ322526A

Description

本発明は組換えネコヘルペスウイルス（herpesvirus felins）から製造される猫用のワクチンと、この組換えウイルスの製造方法に関するものであり、特に、一つまたは複数の異種遺伝子の表現カセットを含むネコヘルペスウイルス組換型に関するものである。
ネコの伝染性鼻気管炎はネコヘルペスウイルス１型（FHV-1）が原因となって起こる。このネコヘルペスウイルス（FHV-1）はアルファヘルペスウイルス属に分類される。ネコ伝染性鼻気管炎は猫の間で流行する疾病であり、実際に、医療を施されたネコには全てこのウイルスの予防接種がなされている。この伝染性鼻気管炎の予防ワクチンはいくつか存在する。これらのワクチンは弱毒された生タイプか、不活性化タイプ（ウイルス全体または精製サブユニット）のいずれかである。現在使用されている生ワクチンの弱毒化は細胞株を数世代通過させる繰り返しによって行われるが、その弱毒化の原因はわかっていない。さらに、これらのワクチンは一般に残留毒性を示し、そのために鼻腔内投与（ウイルスの局部複製の点からこれが好ましい経路であるが）よりも非経口（皮下または筋肉）投与される。不活性化ワクチンは安全性が優れているが、免疫原性が弱いため、満足のゆく防御を誘導するには複数回の注射することが必要である。
イエネコはその他の多くの病原にさらされており、ネコ病原体の種々の抗原を表現できるワクチンのベクターの開発で予防接種プログラムを単純化され、効果が改善されてきた。
家ネコの病原の中で従来のワクチンに対して耐性があるものがあり、最もよく知られているものはコロナウイルス（ネコ伝染性腹膜炎（FIP）ウイルスまたはFIPV）を原因とするネコ伝染性腹膜炎である。
FHV-1ベクターの弱毒化度は局部および／または全体的病状を引き起こさずに口鼻腔経路で猫に投与可能な程度で、ネコの伝染性鼻気管炎および他の病原体の両方に対して防御免疫応答を誘導できるので、このベクターはイエネコの予防接種の分野で目覚ましい進歩を遂げてきた。
多くのFHV遺伝子が挿入部位として提案されている：
欧州特許出願第0,447,303号にはFHVを含むアルファヘルペスウイルスのRR2部位への挿入を提案している。この特許は七面鳥ヘルペスウイルス(HVTウイルス)のRR2部位への挿入手段を開示している。
国際特許出願第WO-A-90 01547号はヘテロ構造遺伝子表現用のFHV TK-ベクターを提案している。
国際特許出願第WO-A-93 09238号はFHVウイルスのTK遺伝子中にFeLV遺伝子を挿入したFHVベクターから成るネコ白血病に対するワクチンを提案している。R.C.ワードレイ達のJ.Gen.Virol、第73号、1811〜1818頁、1992年およびG.E.Cole達のJ.Virol、第64号、4930〜4938頁、1990年も参照のこと。
国際特許出願第WO-A-94 03621号はgI、gE、US9、US10およびUS11遺伝子中への挿入を提案している。
国際特許出願第WO-A-95 00172号はgIおよびgE遺伝子から成るゲノム領域に標識の役目をするDNAを挿入することを提案している。
欧州特許出願第0,576,092号はFHVゲノム中への挿入のための好ましい部位としてgC遺伝子とHSV-1 UL46遺伝子の相同遺伝子との間に位置するオープンリーディングフレーム（ORF）を提案している。M.J.ウィレムス達の1994年遺伝子ウイルス学第75号の3107〜3116頁も参照のこと。
商業的に入手可能なものを含めて上記従来技術では種々のプロモーターが使用されてきており、その中にはHCMVIE（ヒトCMV即時早期型）プロモーター、RSVウイルス（ラウス肉腫ウイルス）のLTR領域のプロモーター配列およびSV40ウイルス早期プロモーターがある。
本発明の目的は伝染性鼻気管炎に対して猫を免疫化するための生体内で複製可能な弱毒された生FHVワクチンを提供することにある。
本発明の他の目的はFHVをベースとした猫の他の病原体に対しても有効な組換え生ワクチンを提供することにある。特に、不活性化または弱毒化生ワクチンによるネコ伝染性腹膜炎に対する予防接種の失敗、主として「促進」現象（病状の悪化）による失敗が多く認められているため、FIPに対して本当に有効なワクチンが依然として求められている。ネコ伝染性腹膜炎に対しては満足のゆくワクチンは市販されていないので、本当に有効な組換えFHV-1をベースとするワクチンができれば、それはさらに、例えばネコ白血病、FIVによるネコ免疫不全症候群あるいはネコ全白血球減少症のような他の猫の疾病に対する有効なワクチンへの道を開くことになる。
本発明のさらに他の目的はネコに口鼻腔経路で有効な予防接種ができるようにすることにある。
本出願人はFHVゲノムの新しい部分の特性を決定した。これはFHVウイルスゲノムの新しい領域（以後、FHV ORF2およびFHV ORF5とよぶ。実施例３参照）の特性を決定した。これらの領域は上記の目的を満たすことを可能な条件下で異種遺伝子を挿入するのに使用できること証明された。
従って、本発明の対象はORF5部位および/またはORF2部位中に挿入される、ポリペプチドをコード化する少なくとも一つのヌクレオチド配列を含みかつ表現するネコヘルペスウイルスをベクターとして用いた組換え生ワクチンにある。
挿入される配列は抗原性ポリペプチド、さらに好ましくは猫の病原体の抗原性ポリペプチドをコード化するのが好ましい。シトキン等の免疫賦活タンパク質をコード化する配列を挿入することができる。有利な態様では、シトキン等をコード化する配列と、抗原をコード化する配列とを組み合わせることもできる。必要な場合には、複数のシトキン配列を組み合わせることができ、場合によっては抗原をコードする一つまたは複数の配列と組み合わせることもできる。
本発明で新たに特性決定された上記二つの部位への挿入は単純挿入（欠失なしの挿入）にするか、挿入部位として用いたORFを部分的または完全に欠失した後に行うことができる。
本発明の特に好ましい態様では上記二つの部位で挿入および／または欠失を行う。これは組換え型獲得用のFHV-1の有毒な野生型菌株の使用時に特に適している。すなはち、少なくとも一つのヌクレオチド配列を各部位に挿入したり、必要な場合には一つの部位、好ましくはORF5のみに挿入し、他方の部位は全部または一部を欠失することができる。
弱毒化ワクチン菌株に多く適用される別の態様では、挿入が二つの部位の一方、好ましくはORF5のみで行われる。しかし、これに限定されるものではない。
本発明によるネコヘルペスウイルスはFHVウイルス１型が好ましい。
特に、ゲノム領域の配列（ORF1〜ORF8）が配列一覧表で基準となる配列番号SEQ ID No.1で表されるFHV-1 CO菌株を使用することができる（実施例３の表１を参照）（上記「配列ＳＥＱＩＤＮｏ．」は「配列番号」を意味し、両者は同じものを表す）。ORF2部位はヌクレオチド1655から2596の間に位置する。ORF5部位はヌクレオチド5869から7113の間に位置する。
本発明に従ってFHV-1ゲノム中に挿入された異種遺伝子を表現するためには、CMV即時早期型(IE)プロモーターのような強力な真核生物をプロモーターを使用するのが好ましい。CMV IEプロモーターとは実施例に示すような断片および同じプロモーター活性を保存したそのサブユニットを意味する。このCMV IEプロモーターはヒトプロモーター（HCMV IE）またはネズミプロモーター（MCMV IE）にするか、その他、例えばラット、モルモットまたはブタから得られたCMV IEプロモーターにすることができる。
各種プロモーターの制御下でORF2またはORF5部位の一方に少なくとも二つのヌクレオチド配列を挿入することができる。特に種々の種から得られたCMV IEにすることができる。
本発明の有利な態様ではCMV IEプロモーターと組み合わせて、別のプロモーターを両プロモーターの5"末端が互いに隣接する直列構成か、これらプロモーターからの転写が逆方向に行われる構成で挿入領域に二つのヌクレオチド配列を、一つはCMV IEプロモーターの制御下、他方はそれと組み合わせたプロモーターの制御下に、挿入することができる。この構成はCMV IEプロモーター、特にそのエンハンサー部の存在によって、それと組み合わせたプロモーターによって誘導される転写を強化し得る点において優れている。組み合わせるプロモーターとしては、例えば第１のプロモーターとは異なる種から得られたCMVプロモーターを挙げることができる。また、マレック病ウイルス（MDV）からのRNA1.8のような他のプロモーターの使用も考えられる（G．ブラッドレイ達、J.Virol,第63号、2534〜2542頁、1989年）。
FHVベクター中に挿入される表現すべきヌクレオチド配列は、本発明の好ましい条件下で表現されたときに予防接種を受けた動物に病原体に対する有効な防御を誘導する免疫作用を与えることができる任意の猫病原体の抗原性ポリペプチドコード化配列にすることができる。従って、所与の疾病に有効な抗原をコード化するヌクレオチド配列を本発明に記載の条件下で挿入することができる。
本発明の典型的態様は、ネコ伝染性腹膜炎ウイルス（FIPまたはFIPV）のポリペプチド、好ましくはFIPV Mポリペプチドまたは変更FIPV Sポリペプチドをコード化する少なくとも一つのヌクレオチド配列の挿入である。これによって得られる組換え生ワクチンはネコ伝染性鼻気管炎に対する防御、ネコ猫伝染性腹膜炎に対する防御ができる。所望であれば、Ｎタンパク質、7bタンパク質および/またはFIPウイルスのポリメラーゼ(polB)遺伝子によってコード化されたポリペプチド等のFIPウイルスの別の抗原をコード化する配列を上記配列に加えて、あるいはこれに代えて挿入することもできる。
本発明の別の態様では、ネコ白血病ウイルス（FeLV）、特にネコ免疫不全症ウイルス（FIV）（ジャロットO.達、AIDS、1990年、第４号（付録１）、S163〜S165頁；宮沢T.達、Archウイルス学、1994年、第134号、221〜234頁；ドゥ・ロンドA.達、ウイルス学、1994年、第198号、257〜264頁）のenv、gagおよびpol遺伝子（オスターハウスA.達、免疫学ジャーナル、1985年、第135号、591〜596頁；クラークN.達、JAVMA、1991年、第199号、1433〜1443頁；トムセンD.達、遺伝子ウイルス学、1992年、第73号、1819〜1824号）、特に、ネコ全白血球減少症ウイルス（FPV）のenv、gagおよびpol遺伝子（カールソンJ.達、ウイルス学ジャーナル、1985年、第55号、574〜582頁；マーティンJ.達、遺伝子ウイルス学ジャーナル、1990年、第71号、2747〜2753頁）、特にネコカリシウイルス（FCV）のVP2キャプシド遺伝子（ネイルJ.達、ウイルス学ジャーナル1991年第65号5440〜5447頁；カーターM.達、ウイルス学、1992年、第190号、443〜448頁）、特にキャプシド遺伝子の抗原または抗原の断片をコード化するヌクレオチド配列を挿入する。
本発明の典型的な態様は、CMV IEの制御下でFIPウイルスの抗原をコードするヌクレオチド配列と、別のプロモーターに制御下で別のネコウイルス性疾病の抗原（特に上記のもの）をコード化するヌクレオチド配列とからなるワクチンにある。
本発明の他の対象は、上記の少なくとも二つの組換え生ワクチンを混合物または混合すべき形態で含む多価ワクチン処方、特に異なる病原体からの異なる挿入配列からなる多価ワクチン処方にある。
本発明のさらに他の対象は、既に述べたように、ORF2およびORF5部位の一方または両方で変更されたFHVウイルスにある。
本発明のさらに他の対象は、上記ワクチンに有効量を非経口または局所経路、好ましくは口鼻腔経路で投与することを特徴とする猫の予防接種方法にある。ワクチンの投与量は、10²CCID50〜10⁷CCID50の間とする。既に述べたように、ワクチンは一般に口鼻腔経路の１回の投与で有効であるが、複数回の投与を必要とする場合もある。
本発明のさらに他の対象は、SEQ ID No.1の位置1〜8193で定義される配列の全部または一部、特に、定義されたORF2およびORF5部位および／またはこれらの部位の上流および下流に位置する側面配列(sequences flanquantes)の全部または一部を含むDNA切断にある。この断片は非経口FHVウイルスのゲノムとの相同組換えのための側面アームとして利用できる。本発明はさらに、その他のFHV菌株の同等な配列に相当するそれらの断片の変形例にも関するものである。当業者は選択した挿入（欠失の有無にかかわらず）もしくは欠失（一部または全部）のタイプに応じて、側面アームの役目をする領域を任意に選択することができる。一般に、側面アームは100〜800の塩基対を有することができる。
以下、図面を参照して本発明を非制限的な実施例を用いてさらに詳細に説明する。
図１：FHV-1領域（10803の塩基対）の配列と、この配列（ORF2〜ORF8）に存在する各オープンリーディングフレーム（ORF）の翻訳
図２：プラスミドpPB107（FHV-1 ORF2部位への表現カセット挿入のためのドナープラスミド）
図３：プラスミドpPB110の構成（FHV-1 ORF5部位における表現カセット挿入のためのドナープラスミド）
図４：FIPV M遺伝子（プラスミドpPB105）用の表現カセットの構成
図５：FIPV S遺伝子（プラスミドpPB055）用の表現カセットの構成
図６：FIPV S遺伝子（プラスミドpJCA084）のA1部位の突然変異生成
図７：FIPV S遺伝子（プラスミドpJCA085）のA2部位の突然変異生成
図８：FIPV S遺伝子（＝FIPV S^*）（プラスミドpJCA087）のA1＋A2部位の突然変異生成
図９：変更FIPV S^*遺伝子（A1およびA2部位における突然変異）（プラスミドpPB056）用の表現カセットの構成
図10：FIPV N遺伝子（プラスミドpJCA091）用の表現カセットの構成
図11：FHV-1 ORF2部位（pPB111）中へのFIPV M遺伝子表現カセット挿入のためのドナープラスミドの構成
図12：FHV-1 ORF2部位（pPB112）中へのFIPV S^*遺伝子表現カセット挿入のためのドナープラスミドの構成
図13：FHV-1 ORF2部位（pPB113）中へのFIPV N遺伝子表現カセット挿入のためのドナープラスミドの構成
図14：FHV-1 ORF5部位（pPB114）中へのFIPV M遺伝子表現カセット挿入のためのドナープラスミドの構成
図15：FHV-1 ORF5部位（pPB115）中へのFIPV S^*遺伝子表現カセット挿入のためのドナープラスミドの構成
図16：FHV-1 ORF5部位（pPB116）中へのFIPV N遺伝子表現カセット挿入のためのドナープラスミドの構成
ORF2およびORF5部位での構造のためのSEQ IDの配列一覧
SEQ ID No.1 図１に示したFHV-1 ORF1-->ORF8の完全配列
SEQ ID No.2 図１の部分アミノ酸配列ORF FHV-1 ORF1
SEQ ID No.3 図１のアミノ酸配列ORF FHV-1 ORF2
SEQ ID No.4 図１のアミノ酸配列ORF FHV-1 ORF3
SEQ ID No.5 図１のアミノ酸配列ORF FHV-1 ORF4
SEQ ID No.6 図１のアミノ酸配列ORF FHV-1 ORF5
SEQ ID No.7 図１のアミノ酸配列ORF FHV-1 ORF6
SEQ ID No.8 図１のアミノ酸配列ORF FHV-1 ORF7
SEQ ID No.9 図１の部分アミノ酸配列ORF FHV-1 ORF8
SEQ ID No.10 オリゴヌクレオチドJCA054
SEQ ID No.11 オリゴヌクレオチドJCA055
SEQ ID No.12 オリゴヌクレオチドPB080
SEQ ID No.13 オリゴヌクレオチドPB081
SEQ ID No.14 オリゴヌクレオチドPB082
SEQ ID No.15 オリゴヌクレオチドPB083
SEQ ID No.16 オリゴヌクレオチドPB084
SEQ ID No.17 オリゴヌクレオチドPB085
SEQ ID No.18 オリゴヌクレオチドJCA056
SEQ ID No.19 オリゴヌクレオチドJCA057
SEQ ID No.20 オリゴヌクレオチドPB088
SEQ ID No.21 オリゴヌクレオチドPB089
SEQ ID No.22 オリゴヌクレオチドJCA058
SEQ ID No.23 オリゴヌクレオチドJCA059
SEQ ID No.24 オリゴヌクレオチドJCA060
SEQ ID No.25 オリゴヌクレオチドJCA061
SEQ ID No.26 オリゴヌクレオチドJCA062
SEQ ID No.27 オリゴヌクレオチドJCA063
SEQ ID No.28 オリゴヌクレオチドJCA064
SEQ ID No.29 オリゴヌクレオチドJCA065
SEQ ID No.30 オリゴヌクレオチドJCA066
SEQ ID No.31 オリゴヌクレオチドJCA067
SEQ ID No.32 オリゴヌクレオチドJCA068
SEQ ID No.33 オリゴヌクレオチドJCA069
２．実施例
プラスミドの構成は全てサンブルックJ.らによって記載された標準分子生物学技術（分子クローニング：研究所便覧第２版、コールドスプリングハーバー研究所、コールドハーバー、ニューヨーク、1989年）を用いて実施した。本発明で使用した制限断片は全て「遺伝子洗浄（Geneclean）」キット（BIO101社、La Jolla、カリフォルニア州）を用いて分離した。
親ウイルスとして使用するウイルスは、ネコヘルペスウイルス１型（FHV-1）のCO菌株である。このウイルスは、伝染性鼻気管炎の母親を持つ新生猫からの腎細胞から分離した（C.ブノワ・ジャニン、博士課程第３論文、リヨン大学、1983年）。このウイルスを培養するための条件は既に記載した（Fargeaud D.達、Arch.ウイルス学、1984年、第80号、69〜82頁）。簡単に言えば、イーグルの最少必須培地（MEM培地）で培養されたCRFK細胞（クランデル・リーズネコ腎臓細胞）を感染多重度１を用いたFHV-1 CO菌株で予防接種し、次に、完全な細胞病理作用が現れるまで、感染した細胞を37℃に約36時間保温する。
実施例１
ネコヘルペスウイルス１型からのDNAの抽出
培養後、上澄みと分離した細胞とを回収し、ウイルス懸濁液全体を1000gで10分間＋４℃で遠心分離して細胞屑を除去する。次に、400,000gで１時間＋４℃の超遠心分離によってウイルス粒子を回収する、最小量の緩衝剤（10mMTris、１mMEDTA）中でペレットを溶解する。硫酸ナトリウムドデシル（SDS）の存在（最終0.5％）下で37℃で２時間、この濃縮ウイルス懸濁液をプロテイナーゼK（最終100μg／ml）で処理する。フェノール／クロロフォルム混合物でウイルスDNAを抽出した後、２容量の無水エタノールを用いて沈殿させた。−20℃で一晩放置した後、DNAを10,000gで15分間＋４℃で遠心分離にかけた。DNAペレットを乾燥させ、最小容量の無菌超純水中で溶解する。
実施例２
FIPV 79-1146菌株からのゲノムRNAの分離と相補DNAのクローニング
FIPV 79-1146菌株をDMEM培地（Gibco）中のCRFKセルで培養した。チオシアン酸グアニジウム／フェノール／クロロフォルム抽出方法（Chomczynski P.およびSacchi N.、分析生物化学、1987年、第162号、156〜159頁）を用いてゲノムウイルスRNAを分離した。特定のオリゴヌクレオチド（5'末端に、増幅断片のクローニングを促進するための制限部位を備える）を合成し、これらが、増幅すべき遺伝子の暗号付け領域（それぞれＭ、ＳおよびＮ）を完全に覆うようにする。逆転写（RT）反応およびポリメラーゼ鎖反応（PCR）を標準的方法（サンブルックJ.ら、1989年）に従って実施した。各RT-PCR反応を特定アンプリマーを用いて、また、鋳型として、抽出したゲノムRNAを使用することによって実施した。フェノール／クロロフォルム／イソアミルアルコール（25：24：１）によって、増幅した相補DNAを抽出した後、これを制限酵素で消化した。
実施例３
FHV-1 ORF1〜ORF7領域のクローニングと特性決定（EcoRIDおよびEcoRIF断片）
FHV-1ウイルスのCO菌株から精製したゲノムDNAは、EcoRIで消化し、Ｄ（約9200bp）およびＦ（7600bp）断片をベクターpBlueScript SKII+中でクローニングすることにより、それぞれプラスミドpFHVEcoRIDおよびpFHVEcoRIFを得た。プラスミドpFHVEcoRIDは、EcoRIおよびPstIで消化し、979bpのEcoRI-PstI断片を分離して、予めEcoRIおよびPstIで消化していたベクターpBS-SKII+によって連結反応を起こすことにより、プラスミドpPB050を得た。プラスミドpFHVEcoRIDをPstIで消化し、2388bpPstI-PstI断片を分離して、予めPstIで消化していたベクターpBS-SKII+によって連結反応を起こすことにより、プラスミドpPB051を得た。プラスミドpFHVEcoRIF、pPB050およびpPB051に含まれるインサートを両ストランド上に完全に配列することにより、図１の配列が得られた（SEQ ID No.1）。
この配列上に、大きさが65個以上のアミノ酸から成るオープンリーディングフレームを確認した（図１）。
第１オープンリーディングフレーム（ORF1）（位置１〜1587）は不完全で、529個のアミノ酸から成る平頭タンパク質をコードする（SEQ ID No.2）。
第２オープンリーディングフレーム（ORF2）（位置1655〜2596）は、314個のアミノ酸から成るポリペプチドをコードする（SEQ ID No.3）。
第３オープンリーディングフレーム（ORF3）（位置2733〜4094）は相補ストランド上に位置し、454個のアミノ酸から成るポリペプチドをコードする（SEQ ID No.4）。
第４オープンリーディングフレーム（ORF4）（位置4476〜5660）は、395個のアミノ酸から成るポリペプチドをコードする（SEQ ID No.5）。
第５オープンリーディングフレーム（ORF5）（位置5869〜7113）は、415個のアミノ酸から成るポリペプチドをコードする（SEQ ID No.6）。
第６オープンリーディングフレーム（ORF6）（位置7449〜8900）は、484個のアミノ酸から成るポリペプチドをコードする（SEQ ID No.7）。
図１の配列に確認される第７オープンリーディングフレーム（ORF7）（位置9153〜9731）は、193個のアミノ酸から成るタンパク質をコードする（SEQ ID No.8）。
図１の配列に確認される第８の最後のオープンリーディングフレーム（ORF8）（位置9908〜10803）は不完全である。これは相補ストランド上に位置し、298個のアミノ酸から成る平頭タンパク質をコードする（SEQ ID No.9）。
各オープンリーディングフレームは下記の表にまとめてある（表１）：

新たに特性決定されたオープンリーディングフレームFHV ORF2は、HSV-1 UL40（RR2）と相同であると考えられる。
実施例４
FHV-1 ORF2部位（pPB107）用のドナープラスミドの製造（図２）
プラスミドpFHVEcoRIDをEcoRIおよびSacIIで消化して、1509bpのEcoRI-S acII断片を得た。下記の２つの合成オリゴヌクレオチドのハイブリッド形成によってPmeI部位を含むKpnI-EcoRIアダプターが得られた：
JCA054（24mer）（SEQ ID No.10）：

およびJCA055（32mer）（SEQ ID No.11）

EcoRI-SacII断片と二重ストランドのオリゴヌクレオチドとを予めKpnIおよびSacIIで消化したベクターpBS-SKII+中で連結反応させることによって、プラスミドpPB106（4407bp）を得た。下記の二つのオリゴヌクレオチドのハイブリッド形成によりクローニング部位HindIII、ClaIおよびApaIを含む二重ストランド合成オリゴヌクレオチドが得られた：
PB080（32mer）（SEQ ID No.12）：

およびPB081（32mer）（SEQ ID No.13）：

このようにして得られたオリゴヌクレオチドを、予めPstI（pPB106上の唯一の部位）で消化したプラスミドpPB106で連結反応させ、アルカリホスファターゼで処理することによってプラスミドpPB107（4439bp）を得た（図２）。このプラスミドは、FHV-1 ORF2部位の5'（SacII-PstI530bp）および3'（PstI-EcoRI 979bp）側面アームと、表現カセットの挿入を可能にする多重クローニング部位とを含んでいる。
実施例５
FHV-1 ORF5部位（pPB110）用のドナープラスミドの製造（図３）
プラスミドpFHVEcoRIF（図３参照のこと）をSacIおよびSmaIで消化することによって、1367bpのSacI-SmaI断片を分離した。下記の二つのオリゴヌクレオチドのハイブリッド形成により、PmeI部位を含むSalI-KpnIアダプターが得られた：
PB082（21mer）（SEQ ID No.14）：

およびPB083（17mer）（SEQ ID No.15）：

このようにして得られた二重ストランドオリゴヌクレオチドおよびSacI-SmaI断片を、予めKpnIおよびSacIで消化したプラスミドpBS-SKII+で連結反応させ、プラスミドpPB109（4247bp）を得た。下記の二つの合成オリゴヌクレオチドのハイブリッド形成により多重クローニング部位が得られた：
PB082（28mer）（SEQ ID No.16）：

およびPB085（28mer）（SEQ ID No.17）：

このようにして得られた二重ストランドオリゴヌクレオチドを予めSalIで消化したプラスミドpPB109で連結反応させ、アルカリホスファターゼで処理することによってプラスミドpPB110（4275bp）を得た（図３参照）。
このプラスミドは、FHV-1 ORF5部位の5'（SacI-SalI 699bp）および3'（SalI-SmaI 668bp）側面アームと、表現カセットの挿入を可能にする多重クローニング部位とを含んでいる。
実施例６
FIPV M遺伝子用の表現カセットの製造（図４）
FIPV 79-1146菌株からのゲノムRNAと下記オリゴヌクレオチドとを用いて、RT-PCR反応を実施した：
JCA056（40mer）（SEQ ID No.18）：

JC057（27mer）（SEQ ID No.19）：

これによって、SacI-KpnIカセットの形態で膜糖タンパク質（FIPVM）をコードする遺伝子を精密に分離した。精製後、823bpのRT-PCR生成物をKpnIおよびSacIで消化して、813bpのKpnI-SacI断片を分離した。この断片をアームKpnIおよびSacIで予め消化したベクターpBS-SKII+で連結反応させることによってベクターpJCA080（3668bp）を得た。Ｍ遺伝子の配列をシークエンシングで確認し、Ｍ遺伝子の配列は既に発表されているもの（ベヌマH達、ウイルス学、1991年、第181号、327〜335頁）と同一であることがわかった。この配列は、本出願に参照として含まれる。
プラスミドpCMVβ（CLONTECH）をEcoRIおよびNotIで消化し、ヒトシトメガロウイルス即時早期遺伝子のプロモーター領域を含む819bpのEcoRI-NotI断片（断片Ａ）を分離した。プラスミドpJCA080をKpnIおよびNotIで消化し、804bpのNotI-KpnI断片（FIPV Ｍ遺伝子）（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を予めEcoRIおよびNotIで消化したベクターpGEM-7Zf+（プロメガ）で連結反応させることによりプラスミドpPB104（4614bp）を得た。
下記オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応を実施した：
PB088（30mer）（SEQ ID No.20）

PB089（32mer）（SEQ ID No.21）

鋳型pCMVβでSV40ウイルス早期遺伝子のポリアデニル化信号を含む252bp断片を作った。この断片をKpnIで消化し、233bpのKpnI-KpnI断片（断片Ｂ）を分離した。次に、この断片をKpnIで予め消化したプラスミドpPB104で連結反応させ、アルカリホスファターゼで処理することによりプラスミドpPB105（4847bp）を得た（図４）。このプラスミドは、表現カセットHCMV-IEプロモーター-FIPV M遺伝子-SV40polyAを含んでおり、このカセットはApaI-ClaIまたはApaI-HindIII消化によって可動化することができる。
実施例７
FIPV S遺伝子用の表現カセットの製造（図５）
FIPV 79-1146菌株からのゲノムRNAと下記オリゴヌクレオチドとを用いてRT-PCR反応を実施した：
JCA058（39mer）（SEQ ID No.22）：

JCA059（38mer）（SEQ ID No.23）：

これによってスパイク糖タンパク質（FIPV S）をコードする遺伝子（以後“Ｓ”と呼ぶ）を精密分離した。精製後、4387bpのRT-PCR生成物をKpnIおよびSacIで消化して4375bpのKpnI-SacI断片を分離した。この断片を予めKpnIおよびSacIで消化したベクターpBS-SKII+で連結反応させることによりベクターJCA081（7234bp）を得た。Ｓ遺伝子の配列をシークエンシングによって確認したところ、Ｍ遺伝子の配列は既に発表されているもの（グルートR.ら、遺伝子ウイルス学ジャーナル、1987年、第68号、2639〜2646頁）と同一であることがわかった。この配列は、本出願に参照として含まれる。
プラスミドpCMVβをEcoRIおよびNotIで消化し、ヒトシトメガロウイルス即時早期遺伝子のプロモーター領域を含む819bpのEcoRI-NotI断片（断片Ａ）を分離した。プラスミドpJCA081をKpnIおよびNotIで消化して、4372bpのNotI-KpnI断片（FIPV Ｓ遺伝子）（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を予めEcoRIおよびNotIで消化したベクターpGEM-7Zf+で連結反応させることにより、プラスミドpJCA082（8180bp）を得た。
PCR反応を下記オリゴヌクレオチドを用いて実施した：PB088（SEQ ID No.20）とPB089（SEQ ID No.21）（図６参照）と鋳型pCMVβ。
これによってSV40ウイルス早期遺伝子のポリアデニル化信号を含む252bp断片を作った。この断片をKpnIで消化して、233bpのKpnI-KpnI断片（断片Ｂ）を分離した。
次に、この断片を、KpnIで予め消化したプラスミドpJCA082で縛り、アルカリホスファターゼで処理することによってプラスミドpPB055（8413bp）を得た（図５）。このプラスミドは、表現カセットHCMV-IEプロモーター-FIPV Ｓ遺伝子-SV40 polyAを含んでおり、このカセットは、ApaI-ClaI消化によって可動化することができる。
実施例８
変性スパイク遺伝子（FIPV S ^* ）の製造
FIPV S遺伝子の配列を突然変異生成にかけ、Ｓ糖タンパク質の機能を変えることなく、抗体の促進誘導の原因となる領域を変更するようにする。この変更は、フランス国特許出願第94 10379号（公開番号2,724,385号、参照として本発明に含まれる）に記載されており、以下のように実施する。
8.1. A1部位の突然変異生成（図６）
1723bpのHindIII-HindIII FIPV S遺伝子中央断片（ヌクレオチド1696〜3418）を予めHindIIIで消化したベクターpBS-SKII+中にクローニングし、アルカリホスファターゼで処理することによってプラスミドpJCA083（4678bp）を得た。A1部位をこの断片のHindIII-SspI小断片（位置1696〜1845）に位置させる。
A1部位を下記の方法を用いたPCRによって突然変異にかけた。
下記のヌクレオチドを合成した：
JCA060（95mer）（SEQ ID No.24）

JCA061（88mer）（SEQ ID No.25）

JCA062（20mer）（SEQ ID No.26）

JCA063（20mer）（SEQ ID No.27）

オリゴヌクレオチドJCA060およびJCA061を、これら共通の23塩基対の相補配列を用いて互いにハイブリッド形成した。このようにして得られたハイブリッドの3'末端の延長後、オリゴヌクレオチドJCA062およびJCA063を用いたPCR反応用の鋳型として使用した。このPCR増幅反応によって159bp断片を得ることができた。この断片をHindIIIおよびSspIで消化することにより、149bpのHindIII-SspI断片を製造した（断片Ａ）。この断片は、二つの位置で変更されたA1部位（位置568でAspに代わりVal、位置591でAspに代わりTyr）を含んでいる。プラスミドpJCA083をHindIIIで消化し、SspIで部分的に消化して、ジーンクリーン（Geneclean）（BIO101社、La Jolla.、カリフォルニア州）により1569bpのSspI-HindIII断片（断片Ｂ）を分離した。
ベクターpBS-SKII+をHindIIIで消化し、アルカリホスファターゼで処理することにより、Ｃ断片（2960bp）を生成する。
次に、Ａ、ＢおよびＣ断片を一緒に連結反応させてプラスミドpJCA084（4678bp）を製造した（図６）。このプラスミドはA1部位の二つのアミノ酸について変更されたFIPV S遺伝子のHindIII-HindIII断片を含んでいる。次に、自然HindIII-HindIII断片（位置1696〜3418）の代わりにプラスミドpJCA084に含まれるHindIII-HindIII断片を用いることによって、FIPV S遺伝子を再構成することができる。このようにして、A1部位で変更された完全なFIPV S遺伝子を表現プラスミドまたは組換えウイルスの製造のために使用することができる。
8.2. A2部位の突然変異生成（図７）
下記のオリゴヌクレオチドを合成した：
JCA064（20mer）（SEQ ID No.28）

JCA065（36mer）（SEQ ID No,29）

JCA066（36mer）（SEQ ID No.30）

JCA067（36mer）（SEQ ID No.31）

オリゴヌクレオチドJCA064およびJCA065と、鋳型としてプラスミドpJCA083を用いて、PCR反応（PCR A）を実施し、199bpのPCR断片を合成した（断片Ａ）。
オリゴヌクレオチドJCA066およびJCA067と、鋳型としてプラスミドpJCA083を用いて、PCR反応（PCR B）を実施し、273bpのPCR断片を合成した（断片Ｂ）。
46bpの相補領域を用いて、PCR AおよびB断片を互いにハイブリッド形成し、ハイブリッド形成によって得られた生成物を3'末端の延長後、オリゴヌクレオチドJCA064およびJCA067を用いたPCR反応（PCR C）によって増幅することにより、424bpのPCR断片を得た。このPCR断片をSspIおよびDraIで消化し、402bpのSspI-DraI制限断片（断片Ｃ）を得た。
プラスミドpJCA083をHindIIIおよびSspIで消化し、149bpのHindIII-SspI断片（断片Ｄ）を分離した。
プラスミドpJCA083をHindIIIおよびDraIで消化し、1170bpのDraI-HindIII制限断片（断片Ｅ）を分離した。
ベクターpBS-SKII+をHindIIIで消化し、アルカリホスファターゼで処理することにより断片Ｆ（2960bp）を分離した。
次に、Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦ断片を一緒に連結反応させプラスミドpJCA085（4678bp）を得た（図７）。pJCA085に含まれるFIPV S遺伝子の1723bpのHindIII-HindIII中央断片は、三つのアミノ酸（位置643でAspに代わりTyr、位置649でArgに代わりGly、位置656でArgに代わりにLys）のレベルで変更されたA2部位を備えている。
次いで、天然HindIII-HindIII断片（位置1696〜3418）の代わりにプラスミドpJCA085に含まれるHindIII-HindIIIを用いることによって断片FIPV S遺伝子を再構成することができる。また、A2部位で変更された完全FIPV S遺伝子を表現プラスミドもしくは組換えウイルスの製造用に使用することも可能である。
8.3. A1およびA2部位の突然変異生成（図８）
断片Ａ（実施例８．１）、ＣおよびＥ（実施例８．２）を、予めHindIIIで消化したベクターpBS-SKII+で連結反応させ、アルカリホスファターゼで処理することによりプラスミドpJCA085を得た。pJCA085に含まれるFIPV S遺伝子のHindIII-HindIII中央断片は、A1部位（実施例８．１）のレベルでの２アミノ酸変更と、A2部位（実施例８．２）のレベルでの３アミノ酸変更を示す。
プラスミドpJCA081（実施例７）をHindIIIで消化し、5511bpのHindIII-HindIII断片（断片Ａ）を分離した。プラスミドpJCA085をHindIIIで消化し、1723bpのHindIII-HindIII断片（断片Ｂ）（菌株79-1146の配列に対して５アミノ酸変更を示す）を分離した。ＡおよびＢ断片を一緒に連結反応させることによりプラスミドpJCA087（7234bp）を得た（図８）。このプラスミドは、A1およびA2部位のレベルで変更されたFIPV S遺伝子（＝FIPV S^*遺伝子）を含む。
8.4 ：FIPV S^*遺伝子用の表現カセットの製造（図９）
プラスミドpCMVβをEcoRIおよびNotIで消化し、ヒトシトメガロウイルス即時早期遺伝子のプロモーター領域を含む819bpのEcoRI-NotI断片（断片Ａ）を分離した。プラスミドpJCA087（実施例８．３）をKpnIおよびNotIで消化し、4372bpのNotI-KpnI断片（FIPV S遺伝子）（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を予めEcoRIおよびNotIで消化したベクターpGEM-7Zf+で連結反応させることによりプラスミドpJCA088（8180bp）を得た。
PCR反応を下記オリゴヌクレオチドを用いて実施した：
PB088（SEQ ID No.20）とPB089（SEQ ID No.21）（実施例６参照）および鋳型pCMVβ。
これによってSV40ウイルス早期遺伝子のポリアデニル化信号を含む252bp断片を作った。この断片をKpnIで消化して、233bpのKpnI-KpnI断片（断片Ｂ）を分離した。次に、この断片を、KpnIで予め消化したプラスミドpJCA088で連結反応させ、アルカリホスファターゼで処理することによりプラスミドpPB056（8413bp）を得た（図９）。このプラスミドは表現カセットHCMV-IEプロモーター-FIPVＳ^*遺伝子-SV40polyAを含んでおり、このカセットは、ApaI-ClaI消化によって可動化できる。
実施例９
FIPV N遺伝子用の表現カセットの製造（図10）
FIPV 79-1146菌株からのゲノムRNAと下記オリゴヌクレオチドとを用いて、RT-PCR反応を実施した：
JCA068（37mer）（SEQ ID No.32）：

JCA069（33mer）（SEQ ID No.33）：

これによってヌクレオチドタンパク質“Ｎ”（FIPV N）をコードする遺伝子を精密分離した。精製後、1161bpのRT-PCR生成物をKpnIおよびSacIで消化して、1148bpのSacI-KpnI断片を分離した。この断片を、KpnIおよびSacIで予め消化したベクターpBS-SKII+で連結反応させることによりベクターpJCA089（4007bp）を得た。Ｎ遺伝子の配列をシークエンシングによって確認したところ、既に発表されているもの（ベヌマH.ら、ウイルス学、1991年、第181号、327〜335頁）と同一であることがわかった。この配列は本出願に参照として含まれる。
プラスミドpCMVβ（CLONTECH）をEcoRIおよびNotIで消化し、ヒトシトメガロウイルス即時早期遺伝子のプロモーター領域を含む819bpのEcoRI-NotI断片（断片Ａ）を分離した。プラスミドpJCA089をKpnIおよびNotIで消化し、1137bpのNotI-KpnI断片（FIPV Ｎ遺伝子）（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を、予めEcoRIおよびNotIで消化したベクターpGEM-7Zf+で連結反応させることによりプラスミドpPB090（4953bp）を得た。
PCR反応を下記オリゴヌクレオチドを用いて実施した：
PB088（SEQ ID No.20）と、PB089（SEQ ID No.21）（実施例６）ならびに鋳型pCMVβ。
これによってSV40ウイルス早期遺伝子のポリアデニル化信号を含む252bp断片（断片Ｂ）を製造した。この断片をKpnIで消化して、233bpのKpnI-KpnI断片（断片Ｂ）を分離した。次に、この断片をKpnIで予め消化したプラスミドpPB090で連結反応させ、アルカリホスファターゼで処理することにより、プラスミドpPB091（5186bp）を得た（図10）。このプラスミドは表現カセットHCMV-IEプロモーター-FIPV N遺伝子-SV40 polyAを含んでおり、このカセットはApaI-ClaIまたはApaI-HindIII消化によって起動することができる。
実施例10
ドナープラスミドpPB117の製造とvFHV01の分離（図11）
プラスミドpPBl05（実施例６、図４）をApaIおよびHindIIIで消化して、1925bpのHindIII-HindIII断片（断片Ａ）を分離した。pPB107プラスミド（実施例４、図２）をApaIおよびHindIIIで消化して、4419bpのApaI-HindIII断片（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を一緒に連結反応することにより、プラスミドpPB111（6332bp）を得た（図11）。プラスミドは、FHV ORF2部位における表現カセットHCMV-IE／FIPV N遺伝子／SV40 polyAを含む。
プラスミドpPB111をPmeIで消化することによって線状化し、フェノール−クロロホルム混合物で抽出し、無水エタノールで沈殿させた後、無菌水中に溶解させる。
ペトリ皿（直径4.5cmのコーニング）中によく定着した細胞芝（lawn）を形成するCRFK細胞のトランスフェクションを下記混合物を用いて実施した：
１μgの線状化プラスミドpPB111と、300μlのMEM培地中のFHV-1からの５μgのウイルスDNAと、300μlの培地で希釈した100μgのリポフェクトアミン（Gibcl-BRL Cat#18324-012）（混合物の最終容量は600μl）。
次に、この600μlを3ml（最終容量）のMEM培地で希釈し、３×10⁶CRFK細胞に塗布した。混合物を細胞と接触させたまま５時間放置した後に除去し、５mlの培地に代える。次に、細胞を培地中に＋37℃で24時間放置する。24〜48時間の培養後、１mlの培養上澄みを回収し、この上澄みの希釈溶液を用いて、新しいCRFK細胞（直径4.5cmのコーニングペトリ皿で培養）を感染させ、分離したプラークを得た。尚、各皿は、初期上澄みの１mlの希釈によって感染している。37℃で１時間接触させた後、感染培地を除去し、１％のアガロースを含む５mlのMEM培地に代える。このとき、培地は42℃で注ぎ続ける。アガロースが凝固したら、プラークが現れるまで、皿を37℃で48時間ＣＯ2中で保温した。次に、アガロース層を除去し、培養基として働くペトリ皿と同じ無菌ニトロセルロース膜上にウイルスプラークを移す。この膜自体を、別のニトロセルロース膜上に移し、第１移動の逆「コピー」を得る。次に、このコピー上に移したプラークに対して、当業者には公知の従来の方法によって、ジゴキシジェニン（DNA標識付けキット、Boehringer Mannheim、CAT#1175033）で標識付けしたFIPV M遺伝子の断片とのハイブリッド形成を行った。ハイブリッド形成し、洗浄し、露出培養基との接触後にニトロセルロース膜を放射能写真フイルムと接触させた。この膜上の正のハイブリッド形成像はどのプラークがFIPV Ｍカセットを挿入した組換えFHVウイルスを含んでいるかを示していた。これら正のプラークに対応するプラークを第１ニトロセルロース膜から無菌状態で切り取り、0.5mlのMEM培地を含むエッペンドルフ管に入れ、超音波処理することによって、膜からビリオンを放出させた。次に、エッペンドルフ管に含まれる培地を希釈し、このようにして得た希釈溶液を用いて、CRFK細胞の新しい培養物を感染させた。このようにして、ORF2部位中に挿入したカセットHCMV-IE／FIPV M／polyAを含む組換えウイルス（100％純粋）は、３回の生成サイクル後に分離し、vFHV01と呼ぶ。組換えの相同性を、挿入部位のいずれかの側に位置するオリゴヌクレオチドを用いて、PCRによって確認した。組換え領域以外での組換えウイルスvFHV01のゲノム上の再配列の不在は、サザンブロット（Southern blot）法により確認した。
実施例11
ドナープラスミドpPB112の製造とvFHV02の分離（図12）
プラスミドpPB056（実施例８．４、図９）をApaIおよびClaIで消化し、5466bpのApaI-ClaI断片（断片Ａ）を分離した。pPB107プラスミド（実施例４、図２）をApaIおよびClaIで消化し、4426bpのApaI-ClaI断片（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を一緒に連結反応することによりプラスミドpPB112（9898bp）を得た（図12）。プラスミドは、FHV-1 ORF2部位における表現カセット（HCMV-IE／FIPV S^*遺伝子／SV40 polyA）を含む。
CRFK細胞のトランスフェクションを、プラスミドpPB112（PmeIで線状化）とFHV-1からのウイルスDNAとの混合物を用いて実施した。カセットHCMV-IE／FIPV S^*遺伝子用の正のウイルスプラークを、相同プローブFIPV S^*の使用を除いて実施例10と同様に精製し、増幅して、組換えウイルスvFHV02を得た。
実施例12
ドナープラスミドpPB113の製造とvFHV03の分離（図13）
プラスミドpJCA091（実施例９、図10）をApaIおよびHindIIIで消化し、2244bpのApaI-HindIII断片（断片Ａ）を分離した。pPB107プラスミド（実施例４、図２）をApaIおよびHindIIIで消化し、4419bpのApaI-HindIII断片（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を一緒に連結反応させることにより、プラスミドpPB113（6671bp）を得た（図13）。このプラスミドは、FHV-1 ORF2部位における表現カセット（HCMV-IE／FIPV N遺伝子／SV40 polyA）を含む。
CRFK細胞のトランスフェクションを、プラスミドpPB113（PmeIで線状化）とFHV-1からのウイルスDNAとの混合物を用いて実施した。カセットHCMV-IE／FIPV N遺伝子用の正のウイルスプラークを、相同プローブFIPV Nの使用を除いて実施例10と同様に精製し、増幅して、組換えウイルスvFHV03を得た。
実施例13
ドナープラスミドpPB114の製造とvFHV04の分離（図14）
プラスミドpPB105（実施例６、図４）をApaIおよびHindIIIで消化し、1925bpのApaI-HindIII断片（断片Ａ）を分離した。pPB110プラスミド（実施例５、図３）をApaIおよびHindIIIで消化し、4256bpのApaI-HindIII断片（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を一緒に連結反応させることによってプラスミドpPB114（6169bp）を得た（図14）。このプラスミドは、FHV-1 ORF5部位における表現カセット（HCMV-IE／FIPV M遺伝子／SV40 polyA）を含む。
実施例10と同様に、プラスミドpPB114（PmeIで線状化）と、FHV-1からのウイルスDNAとの混合物を用いて、CRFK細胞のトランスフェクションを実施した。カセットHCMV-IE／FIPV M遺伝子用の正のウイルスプラークを、実施例10と同様に精製し、増幅して、組換えウイルスvFHV04を得た。
実施例14
ドナープラスミドpPB115の製造とvFHV05の分離（図15）
プラスミドpPB056（実施例８．４、図９）をApaIおよびClaIで消化し、5466bpのApaI-ClaI断片（断片Ａ）を分離した。pPB110プラスミド（実施例５、図３）をApaIおよびClaIで消化し、4263bpのApaI-ClaI断片（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を一緒に連結反応させることによりプラスミドpPB115（9735bp）を得た（図５）。このプラスミドは、FHV-1 ORF5部位における表現カセット（HCMV-IE／FIPV S^*遺伝子／SV40 polyA）を含む。
実施例10と同様に、プラスミドpPB115（PmeIで線状化）と、FHV-1からのウイルスDNAとの混合物を用いて、CRFK細胞のトランスフェクションを実施した。カセットHCMV-IE／FIPV S^*遺伝子用の正のウイルスプラークを、相同プローブFIPV S^*の使用以外は実施例10と同様に精製し、増幅して、組換えウイルスvFHV05を得た。
実施例15
ドナープラスミドpPB116の製造とvFHV06の分離（図16）
プラスミドpJCA091（実施例９、図10）をApaIおよびHindIIIで消化し、2244bpのApaI-HindIII断片（断片Ａ）を分離した。pPB110プラスミド（実施例５、図３）をApaIおよびHindIIIで消化し、4256bpのApaI-HindIII断片（断片Ｂ）を分離した。次に、ＡおよびＢ断片を一緒に連結反応させることにより、プラスミドpPB116（6508bp）を得た。このプラスミドは、FHV-1 ORF5部位における表現カセット（HCMV-IE／FIPV N遺伝子／SV40 polyA）を含む。
実施例10と同様に、プラスミドpPB116（PmeIで線状化）とFHV-1からのウイルスDNAとの混合物を用いて、CRFK細胞のトランスフェクションを実施した。カセットHCMV-IE／FIPV N遺伝子用の正のウイルスプラークを、相同プローブFIPV Nの使用を除いて実施例10と同様に精製し、増幅して、組換えウイルスvFHV06を得た。
実施例16
FHV-1のORF2部位への表現カセットの挿入用ドナープラスミドの製造
前述したものと同じORF2部位への表現カセット（HCMV-IEまたはMCMV-IEプロモーターもしくは二重プロモーターMCMV-IE/RNA1.8kbpの制御下に置かれる遺伝子）挿入方法に従って、ネコカリシウイルス（FCV）、ネコ全白血球減少症ウイルス（FPV）、ネコ白血病ウイルス（FeLV）、ネコ免疫不全症ウイルス（FIV）、もしくはその他のネコ病原体、あるいはまたネコサイトカンを高レベル免疫原で表現する組換えネコヘルペスウイルスを製造することができる。
実施例17
FHV-1のORF5部位への表現カセットの挿入用ドナープラスミドの製造
前述したものと同じORF5部位への表現カセット（HCMV-IEまたはMCMV-IEプロモーターもしくは二重プロモーターMCMV-IE/RNA1.8kbpの制御下に置かれる遺伝子）挿入方法に従って、FCV、FPV、FcLVまたはFIVウイルス、もしくはその他のネコ病原体、あるいはまたネコサイトカンを高レベル免疫原で表現する組換えネコヘルペスウイルスを製造することができる。
実施例18
ワクチンの製造
ワクチンを製造するために、本発明により得られた組換えウイルスをCRFK細胞で培養する。細胞病理学上の作用が完全になったとき、組換えウイルスを回収する。溶解した細胞と培養上澄みを回収する。細胞溶解物を洗浄して細胞屑を除去した後、ウイルス溶液を滴定する。次に、ウイルス溶液を凍結乾燥用の安定溶液で希釈し、容器ごとに１回のワクチン投与量（10²CCID50〜10⁷CCID50）を注ぎ、最後に凍結乾燥する。
［配列表］
配列番号１

配列番号２

配列番号３

配列番号４

配列番号５

配列番号６

配列番号７

配列番号８

配列番号９

配列番号１０

配列番号１１

配列番号１２

配列番号１３

配列番号１４

配列番号１５

配列番号１６

配列番号１７

配列番号１８

配列番号１９

配列番号２０

配列番号２１

配列番号２２

配列番号２３

配列番号２４

配列番号２５

配列番号２６

配列番号２７

配列番号２８

配列番号２９

配列番号３０

配列番号３１

配列番号３２

配列番号３３

Claims

ポリペプチドをコードする少なくとも一つの核酸分子を含み且つ発現する組換えネコヘルペスウイルス（ＦＨＶ）を含む免疫組成物であって、
上記の少なくとも一つの核酸分子が、配列番号１のＦＨＶ−１ＣＯ株の位置５８６９〜７１１３および１６５５〜２５９６のヌクレオチド配列を有するＦＨＶのＯＲＦ５および／またはＯＲＦ２部位中に挿入されていることを特徴とする免疫組成物。
上記の少なくとも一つの核酸分子がＯＲＦ５および／またはＯＲＦ２部位中に単純挿入されたものか、またはこれら部位の全部もしくは一部を欠失した後に挿入されたものである請求項１に記載の免疫組成物。
上記の少なくとも一つの核酸分子がＯＲＦ５および／またはＯＲＦ２部位のいずれか一方の部位に挿入され、他方の部位では欠失が行われたものである請求項１に記載の免疫組成物。
上記の組換えネコヘルペスウイルス（ＦＨＶ）が上記の少なくとも一つの核酸分子を発現する強い真核生物のプロモーターを含む請求項１〜３のいずれか一項に記載の免疫組成物。
上記の強いプロモーターがＣＭＶ即時早期プロモーターである請求項４に記載の免疫組成物。
上記の組換えネコヘルペスウイルス（ＦＨＶ）が互いに異なる真核生物プロモーターの制御下でＯＲＦ５またはＯＲＦ２中に挿入された少なくとも２つの核酸分子を含む請求項１〜５のいずれか一項に記載の組換え免疫組成物。
上記の真核生物プロモーターが異なる動物から得られたＣＭＶ即時早期プロモーターである請求項６に記載の免疫組成物。
上記の組換えネコヘルペスウイルス（ＦＨＶ）がＣＭＶ即時早期プロモーターと組み合わされた第１のヌクレオチド配列と、別のプロモーターと組み合わ第２のヌクレオチド配列とを含み、これらプロモーターの５≡末端が互いに隣接する請求項６記載の免疫組成物。
上記の組換えネコヘルペスウイルス（ＦＨＶ）が抗原ポリペプチドをコードする核酸分子を含む請求項１に記載の免疫組成物。
上記核酸分子がネコ病原体の抗原ポリペプチドをコードする請求項９に記載の免疫組成物。
上記核酸分子がネコ伝染性腹膜炎ウイルス、ネコ白血病ウイルス、ネコ免疫不全症ウイルス、ネコ伝染性全白血球減少症ウイルス、ネコカリシウイルスの抗原からなる群の中から選択される抗原をコードする請求項１０に記載の免疫組成物。
上記核酸分子がＭ、変性ＳおよびＮからなる群の中から選択されるネコ伝染性腹膜炎ウイルスからのポリペプチドをコードする請求項１０に記載の免疫組成物。
上記の少なくとも一つの核酸分子がネコ白血病ウイルスのｅｎｖ、ｇａｇおよびｐｏｌ抗原、ネコ免疫不全症ウイルスのｅｎｖ、ｇａｇおよびｐｏｌ抗原、ネコ伝染性全白血球減少症ウイルスのカプシド抗原、ネコカリシウイルスのカプシド抗原、ネコ伝染性腹膜炎ウイルスのＭ抗原、変性Ｓ抗原、Ｎ抗原、７ｂ抗原、ポリメラーゼ抗原からなる群の中から選択される抗原をコードする一つの核酸分子からなる請求項１０に記載の免疫組成物。
上記の組換えネコヘルペスウイルス（ＦＨＶ）がＣＭＶ即時早期プロモーターの制御下にあるネコ伝染性腹膜炎ウイルスからのＭ、Ｎまたは変性Ｓポリペプチドをコードする第１の核酸分子と、別のプロモーターの制御下にある別の疾病に対する抗原をコードする第２の核酸分子とを有する請求項６に記載の免疫組成物。
上記核酸分子が免疫賦活ポリペプチドをコードする請求項１〜１４のいずれか一項に記載の免疫組成物。
上記核酸分子がサイトカンをコードする請求項１５に記載の免疫組成物。
第１のポリペプチドをコードする、配列番号１のＦＨＶ−１ＣＯ株の位置５８６９〜７１１３および１６５５〜２５９６のヌクレオチド配列を有するＦＨＶのＯＲＦ５および／またはＯＲＦ２部位中に挿入された第１の核酸分子を有し且つ発現する、少なくとも一つの第１の組換えネコヘルペスウイルス（ＦＨＶ）と、第２のポリペプチドをコードする、配列番号１のＦＨＶ−１ＣＯ株の位置５８６９〜７１１３および１６５５〜２５９６のヌクレオチド配列を有する第２のＦＨＶのＯＲＦ５および／またはＯＲＦ２部位中に挿入された第２の核酸分子を有し且つ発現する、少なくとも一つの第２の組換えネコヘルペスウイルス（ＦＨＶ）とからなる免疫組成物。
請求項１〜１７のいずれか一項に記載の免疫組成物の有効量をネコに投与することを特徴とする猫の予防接種方法。
上記免疫組成物を口鼻腔経路で投与する請求項１８に記載の方法。
投与量が１０²〜１０⁷ＤＩＣＣ５０である請求項１８または１９に記載の方法。
投与が１回だけである請求項１８〜２０のいずれか一項に記載の方法。
上記免疫組成物を非経口投与する請求項１８に記載の方法。
上記免疫組成物を局所投与する請求項１８に記載の方法。
プロモーターがネズミのプロモーターである請求項５に記載の免疫組成物。
プロモーターがヒトＣＭＶ即時早期プロモーターである請求項５に記載の免疫組成物。