JP3944499B2 - タンパク質に結合した糖化最終産物の測定方法 - Google Patents
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(1) タンパク変性剤処理
検体としては、ラットの血清を用いた。マイクロチューブに検体0.01mlと0.1M PBS(pH7.2)0.09mlを加えた。さらに、0.6%SDSを含む0.01M Tris−HCl生理食塩水(pH7.4)を0.1ml加えた。このときのpHは7.2であった。次いで、この混合液を100℃で10分間加熱し、直ちに氷冷した。冷却後、0.1M PBS(pH7.2)0.8mlを加えて希釈した。
(i) 抗AGE抗体の調製
種々のタンパク質と、グルコースとを0.1M PBS(pH7.2)溶液中にて、12〜42週間インキュベートし、各種AGE化タンパク質を調製した。この方法により作製したAGE化KLHを公知の方法(H. Nakayama et al., 上掲)により家兎に免疫し、抗血清を回収し、これを抗AGE抗体とした。作製した抗AGE抗体は、前述の各種AGE化タンパク質と反応した。また、標準AGE化タンパク質として使用しているAGE化ウシ血清アルブミンをNaBH4にて室温30分間還元したものを用い、その処理の有無による作製した抗体との反応性を調べたところ、作製した抗体は両者ともに同程度反応した。このため、作製した抗体はAGEを認識していることが示された。
標準AGE化ウシ血清アルブミンを280ng/mlの濃度で含む0.1M PBS(pH7.2)をELISAプレートに0.1mlずつ分注し、4℃にて一晩固相化した。さらに、このプレートを洗浄し、次いで1%ウシ血清アルブミン含有0.1M PBS(pH7.2)を0.1mlずつ分注し、室温にて4時間インキュベートし、プレートをブロッキングした。
検体をタンパク変性剤で処理する前に、最終濃度0.05MのNaBH4で室温で30分間検体を処理し、その後透析したことを除き、参考例1と同じ操作を行なった。結果を図1に示す。本実施例の結果は、図1中、「中性SDS」の黒塗りの棒グラフで示される。
検体としては、ラットの血清を用いた。マイクロチューブに検体0.01mlと0.1M PBS(pH7.2)0.04mlを加えた。次に0.2M NaOHを0.05ml加えた。さらに、0.6%SDSを含む0.01M Tris−HCl生理食塩水(pH7.4)を0.1ml加えた。このときのpHは11.7であった。次いで、この混合液を100℃で10分間加熱し、直ちに氷冷した。冷却後、0.2Mリン酸0.03mlを加え、中和した。次いで、0.1M PBS(pH7.2)0.77mlを加えて希釈した。
検体をタンパク変性剤で処理する前に、最終濃度0.05MのNaBH4で室温で30分間検体を処理し、その後透析したことを除き、実施例1と同じ操作を行なった。結果を図1に示す。本参考例の結果は、図1中、「塩基性SDS」の黒塗りの棒グラフで示される。
検体としては、ラットの血清を用いた。マイクロチューブに検体0.01mlと0.1M PBS(pH7.2)0.09mlを加えた。さらに、0.6%SDSを含む0.01M Tris−HCl生理食塩水(pH7.4)を0.1ml加えた。さらに、2M NaBH4/0.05M NaOH 0.005mlを加えた。このときのpHは7.5であった。次いで、この混合液を100℃で10分間加熱し、直ちに氷冷した。冷却後、0.1M PBS(pH7.2)0.8mlを加えて希釈した。
検体をタンパク変性剤で処理する前に、最終濃度0.05MのNaBH4で室温で30分間検体を処理し、その後透析したことを除き、参考例4と同じ操作を行なった。結果を図1に示す。本参考例の結果は、図1中、「中性NaBH4 SDS」の黒塗りの棒グラフで示される。
検体としては、ラットの血清を用いた。マイクロチューブに検体0.01mlと0.1M PBS(pH7.2)0.04mlを加えた。次に0.2M NaOH 0.05mlを加えた。さらに、0.6%SDSを含む0.01M Tris−HCl生理食塩水(pH7.4)を0.1ml加えた。さらに、2M NaBH4/0.05M NaOH 0.005mlを加えた。このときのpHは11.7であった。次いで、この混合液を100℃で10分間加熱し、直ちに氷冷した。冷却後、0.1M PBS(pH7.2)0.77mlを加えて希釈した。
検体をタンパク変性剤で処理する前に、最終濃度0.05MのNaBH4で室温で30分間検体を処理し、その後透析したことを除き、参考例6と同じ操作を行なった。結果を図1に示す。本参考例の結果は、図1中、「塩基性NaBH4 SDS」の黒塗りの棒グラフで示される。
検体をタンパク変性剤処理することなく、参考例1と同じ方法により免疫測定を行なった。結果を図1に示す。本比較例の結果は、図1中、「未処理」のハッチングを付した棒グラフで示される。
検体を免疫測定に付する前に、最終濃度0.05MのNaBH4で室温で30分間検体を処理し、その後透析したことを除き、比較例1と同じ操作を行なった。結果を図1に示す。本比較例の結果は、図1中、「未処理」の黒塗りの棒グラフで示される。
SDS処理の際に20mg/mlのプロテイナーK溶液0.001mlを加えたこと、前記SDS溶液中のSDS濃度が最終濃度0.3%であったこと、及びタンパク変性剤処理時の条件が60℃、4時間、その後100℃、5分間であったことを除き、参考例1と同じ操作を行なった。結果を図1に示す。本比較例の結果は、図1中「ProK/SDS」のハッチングを付した棒グラフで示される。
検体を免疫測定に付する前に、最終濃度0.05MのNaBH4で室温で30分間検体を処理し、その後透析したことを除き、比較例3と同じ操作を行なった。結果を図1に示す。本比較例の結果は、図1中、「ProK/SDS」の黒塗りの棒グラフで示される。
参考例1、実施例1、参考例4及び参考例6記載の方法により、糖尿病患者血清、腎臓透析患者の透析前後の血清及び健常人血清についてAGE量を測定した。実施例1の方法により行なった場合(実施例2)の結果を図2に、参考例6の方法により行なった場合(参考例8)の結果を図3に、参考例1の方法により行なった場合(参考例9)の結果を図4に、参考例4の方法により行なった場合(参考例10)の結果を図5に記載する。図2〜5により、本発明の方法が、臨床診断にも適用できることが確認された。
Claims (4)
- タンパク質に結合した糖化最終産物を含む検体に還元剤の非存在下で、pH10〜12.5において、ドデシル硫酸ナトリウムとプロテイナーゼKとを併用することなくタンパク変性剤を作用させ前記タンパク質を変性させ、次いで検体中の糖化最終産物を免疫測定することから成る、タンパク質に結合した糖化最終産物の測定方法。
- 前記タンパク変性剤はドデシル硫酸ナトリウムである請求項1記載の方法。
- 前記タンパク変性剤を作用させる際に加熱する請求項1又は2記載の方法。
- 前記タンパク質変性剤は、タンパク質分解酵素の非存在下で作用させる請求項1ないし3のいずれか1項記載の方法。
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