JP3892902B2 - グラム陽性細菌及びマイコバクテリアの作用を阻止するための抗体の使用 - Google Patents

Description

関連米国特許出願
本出願は、1992年12月15日に米国特許庁に出願された米国出願番号07/990,378の一部継続出願である。
政府の権利に関する声明
本出願は、米国立衛生研究所からの認可番号AI15136, GM28485, HL23586,及びGM37696によって部分的に援助を受けた。米国政府は、本発明に関して大きな感心を寄せているのであろう。
本発明の背景
１．本発明の分野
本発明は、バクテリアに因って引き起こされる疾患を予防又は治療するための方法及び組成物に関する。特に、本発明は、グラム陽性細菌及びマイコバクテリアに応答した細胞活性化を媒介する抗体及び分子に関する。
２．関連技術の説明
敗血症性ショックは、バクテリア感染の悲劇的な合併症であり、抗療性低血圧によって特徴づけられ、不適当な器官潅流や多臓器不全を起こすとともに、しばしば死に至らしめる(Glauserら.,Lancet,338:732-736,1991;Bone,Chest,100:802-808,1991)。グラム陰性細菌のリポ多糖（エンドトキシン、ＬＰＳ）は、グラム陰性敗血症時に観察されるような細胞性反応及び生理学的反応を惹き起こす(Glauserら.,前掲;UlevitchとTobias,Curr.Opin,Immunol.6:125-130,1994)。免疫系／炎症系の細胞は、血漿タンパク質及び膜タンパク質を伴う経路によってＬＰＳに応答する(UlevitchとTobias,前掲,1994;Tobiasら.,Am.J.Respir.Cell Mol.Biol.,7:239-245,1992)。リポ多糖結合タンパク質（ＬＢＰ）、すなわち、ＬＰＳに結合して第二分子であるＣＤ１４へのＬＰＳの結合を可能にする可溶性血清タンパク質は、この種類のタンパク質に含まれる。ナノモル濃度のＬＰＳを用いる場合、ＬＢＰ／ＣＤ１４依存経路は、生理学的条件の下で機能的であり、細胞活性化を制御する(Schumannら.,Science,249:1429-1433,1990;Wrightら.,Science,249:1431-1433,1990)。ＣＤ１４は、グリコシルフォスファチジルイノシトールが固定された骨髄細胞の膜タンパク質（ｍＣＤ14）として見い出されるか、血漿／血清中に可溶性タンパク質（ｓＣＤ１４）として見い出される(UlevitchとTobias,前掲,1994;Tobiasら.,前掲,1992;Puginら.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,90:2744-2748,1993a)。ＬＰＳがｍＣＤ１４に結合すると、細胞が活性化し、様々な前炎症性分子が生成する(UlevitchとTobias,前掲,1994)。内皮細胞、上皮細胞、血管平滑筋細胞、及び星状細胞などのその他の種類の細胞は、ＣＤ１４を有していないが、可溶性ＣＤ１４−ＬＰＳ複合体に反応する(Puginら.,前掲,1993a;Freyら.,J.Exp.Med.,176:1665-1671,1992)。ＬＰＳ刺激に対するＣＤ１４及びＬＢＰ非依存性経路が観察されるのは、高濃度のＬＰＳを用いる場合にのみである。
敗血症に関する最近の多中心試験(multicenter trial)において、グラム陽性細菌は細菌性敗血症の半分の症例の原因であることが判明した(Bone,Arch.Intern.Med.,154:26-34,1994)。グラム陽性細菌による敗血症の有病数はこの20年間で顕著に増加しており、それらの微生物は次の数年以内に敗血症の原因として優位を占めるであろう(Bone,前掲,1994;Schabergら.,Am.J.Med.,91:72S-75S,1991)。どのようにしてＬＰＳが細胞を刺激するかに関する知見と比較して、グラム陽性細菌による細胞活性化の分子メカニズムに関する知見は少ない。宿主細胞を活性化できるグラム陽性細菌の生産物は、可溶性外毒素及び細胞壁成分を含む(Bone,前掲,1994)。様々なグラム陽性細菌株から単離した細胞壁、及び精製した細胞壁成分（例えば、ペプチドグリカン又はリポテイコ酸等）が、骨髄由来細胞を活性化して、ＬＰＳの細胞応答に非常に類似した細胞応答を引き起こすことが知られている(ChinとKostura,J.Immunol.,151:5574-5585,1993;Mattsonら.,FEMS Immun.Med.Microbiol.,7:281-288,1993;Rotta,Z.Immunol.-Forsch,Bd.,149-230-244,1975)。しかし、哺乳動物細胞に関して、グラム陽性細胞壁成分の受容体依存性認識のメカニズムを扱った研究はほとんどない。
ジェーンウェイ(Janeway)が発展させたパターン認識受容体の仮説(Today,13:11-16,1992)によると、共通の細胞認識経路が、種々の病原体と類似する構造上の特徴を有する分子への応答に関係することが示唆されている。ヒト結核菌(Mycobacterium tuberculosis)に由来するリポアラビノマンナン（ＬＡＭ）が、ＣＤ１４依存メカニズムによってヒト単球細胞系を活性化するという報告(Zhangら.,J.Clin.Invest.,91:2076-2083,1993)以外に、現在、この仮説を支持するデータはない。さらに、Espevikらのグループ(Eur.J.Immunol.,23:255-261,1993;Otterleiら.,infect.Immun.,61:1917-1925,1993)は、様々な細菌源、例えばＣＤ１４に依存した形でヒト単球を刺激する能力を有するシュードモナス属、からＳ１−４に結合したポリウロン酸ポリマーを同定した。しかし、最近の研究において、多量のグラム陽性細胞壁成分によって刺激されたヒト末梢血液単球による腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）の放出が、ある実験条件の下でＬＰＳ誘発ＴＮＦ放出を制御するヒトＣＤ１４に対するモノクローナル抗体ＭＹ４によって阻害されないことが示唆された(Heumannら.,Infect.Immun.,69:2715-1721,1994)。
グラム陽性微生物由来の細胞壁調製物に対する細胞応答及びマイコバクテリアのＬＡＭに対する細胞応答を媒介する際のｍＣＤ１４又はｓＣＤ１４の役割をさらに詳細に探求するために、ＣＤ１４陽性細胞系及びＣＤ１４陰性細胞系のこれらの作用物質に対する応答を、抗ＣＤ１４抗体の存在下及び非存在下で比較した。グラム陽性細胞壁調製物によってもＬＡＭによっても、細胞がＣＤ１４に依存して活性化することの証拠が示される。これらのデータによって、グラム陽性細菌及びマイコバクテリアにより用いられる細胞活性化の経路に関する新しい情報が提供されるとともに、免疫系の細胞におけるパターン認識受容体の概念が支持される。
通説が支持するのは、宿主（ヒトを含む）のＬＰＳに対する第一次応答が、単球／マクロファージ系によるＬＰＳの認識後に、サイトカインとして知られる広範なグループを含む様々な細胞生産物の迅速な生産を伴うという主張である。敗血症、特にＬＰＳに対する応答に関係していると考えられた他の種類の細胞は、多形核白血球及び内皮細胞である。これらの種類の細胞はそれぞれ、強力な炎症性物質の生産を伴ってＬＰＳに対して応答することもできる。
ＬＰＳは、グラム陰性敗血症時の、特に、症状が成人呼吸促進症候群（ＡＲＤＳ）を包含するときの、ヒトの死の主要な原因であると考えられている(van Deventerら.,Lancet.1:605,1988;Zieglerら.,J.Infect.Dis.,136:19-28,1987)。例えば、ある特定のサイトカインである腫瘍壊死因子α/カケクチン（ＴＮＦ）は、敗血症性ショックの主要な媒介物質であることが最近報告されている(Beutlerら.,N.Eng.J.Med.,316:379,1987)。バクテリア由来のＬＰＳエンドトキシンを実験動物およびヒトに静注すると、ＴＮＦの迅速で一過性の放出が生じる(Beutlerら.,J.Immunol.,135:3972,1985;Mathisonら.,J.Clin.Invest.,81:1925,1988)。主として、抗ＴＮＦ抗体で前処理した動物の致死率が減少するという実験(Beutlerら.,Science,229:869.1985;Mathisonら.,J.Chin.Invest.,81:1925,1988)から、ＴＮＦが敗血症ショックの決定的な媒介物質であることは明らかである。これらの報告によって、ＬＰＳ又はその他の因子によるＴＮＦの分泌の阻害が、致死という敗血症でしばしば見られる症状を改善することが示唆される。
ＬＰＳを血液中へ導入すると、ＬＰＳはリポ多糖結合タンパク質（ＬＢＰ）と呼ばれるタンパク質に結合し得る。ＬＢＰは60kDの糖タンパク質であり、健康な動物及びヒトの血清中に100ng/ml未満の濃度で存在する。急性期に、ＬＢＰは肝細胞によって合成され、血清中の濃度は30-50μg/mlに達する。ＬＢＰは急性期のヒト及びウサギの血清から精製することができる(Tobiasら.,J.Exp.Med.,164:777-793,1986)。ＬＢＰはＬＰＳの脂質Ａ領域を認識するとともに、粗い形態及び滑らかな形態のＬＰＳの両方と、高親和性の、1:1化学量論的複合体を形成する(Tobiasら.,264:10867-10871,1989)。ＬＢＰは殺菌性透過性亢進因子（ＢＰＩ）として知られているＬＰＳ結合タンパク質と相同な配列をN-末端に有する(Tobiasら.,前掲,1988)。ＢＰＩはＰＭＮの特定の顆粒の中に蓄えられている(Weissら.,Blood.69:652-659,1987)。また、ＢＰＩはＬＰＳに結合して透過性障壁を破壊することによってグラム陰性細菌を殺す(Weissら.,J.Immunol.,132:3109-3115,1984)。ＢＰＩと対照的に、ＬＢＰはグラム陰性細菌に対して直接細胞毒性を有しておらず(Tobiasら.,J.Biol.Chem.,263:13479-13481,1988)、さらにその詳細な生理学的な機能についてはあまりよく知られていない。
さらに、本発明の背景に関して、単球/マクロファージ系細胞は多様な免疫機能を発揮する。例えば、微生物の食作用、抗原物質の取り込み、及びヘルパーＴ細胞に刺激を与える形態での抗原物質の掲示である。これらの細胞は、おそらく腫瘍に対する免疫監視にも関係しており、補体成分及びサイトカインを分泌する。表面膜抗原は、これらの活性の調節に関して重要な役割を果たす。いくつかの単球／マクロファージ表面抗原は同定され、その分子量が決定された。そのような抗原の一つであるＣＤ１４は、単球、マクロファージ及び活性化顆粒球によって発現される55kDの糖タンパク質であり、MO2, MY4, 3C10,及びLEUM3を含んだ多数のモノクローナル抗体(mAb)によって認識される。ＣＤ１４に関してその生理学的機能は明らかではないが、成熟細胞上に限定された発現によって、重要なエフェクター機能が示唆される。単球細胞表面分化抗原ＣＤ１４をコードする遺伝子のヌクレオチド配列は決定されており、ＣＤ１４のアミノ酸残基配列がそれから推定されている(Ferreroら.,Nucleic Acids Research Vol.,16:4173,1988)。
発明の要約
サイトカインの産生および放出を主として調節するのは、ＣＤ１４受容体、特に、単球／マクロファージ系細胞のＣＤ１４受容体である。サイトカイン分泌が敗血症の症状の発生に関して重要な役割を果たすので、本発明はサイトカイン、特にＴＮＦの分泌を阻害する方法及び薬品を提供することを意図する。
よって、一つの態様において、本発明は、敗血症の危険のある患者、敗血症の症状を呈している患者又はＬＰＳ、グラム陽性細菌の毒素原性細胞壁成分、若しくはサイトカイン分泌を誘導するマイコバクテリア由来のＬＡＭのような細菌毒素への暴露から生じるその他の症状を呈している患者に抗ＣＤ１４抗体を投与すること、好ましくは静脈内に投与することを意図する。
また、一つの態様において、本発明は、サイトカインの分泌を阻止する抗ＣＤ１４抗体の治療に効果的な量を投与することを含んでなる、グラム陽性細菌及びマイコバクテリアの感染に関係する症状の治療方法、並びにグラム陽性細菌の毒素原性細胞壁成分に関係する毒血症の治療方法を提供する。この方法を単独で実施してもよいし、敗血症の症状を予防又は改善するための公知の他の治療様式（例えば、抗生物質、ステロイド、抗ＴＮＦ抗体、ＴＮＦ拮抗薬などのうちの一つ以上を用いた治療）を実質的に同時に投与することと組み合わせて実施してもよい。
さらに、本発明で意図されている治療用組成物は、典型的には１回投与量形態であり、グラム陽性細菌の感染に関連する菌血症及びグラム陽性毒素原性細胞壁成分に関連する毒血症の症状（例えば、敗血症）を予防及び改善するのに有用である。この組成物は、活性成分として、一つ以上の抗ＣＤ１４抗体又はサイトカインの産生を阻害するそのフラグメントを含有する、製剤学的に許容し得る担体を含んでなる。
好ましい態様において、本発明の治療用組成物は、さらに、活性成分として、敗血症の症状を予防又は改善する公知の薬品（例えば抗生物質、ステロイド、抗ＴＮＦ抗体、ＴＮＦ拮抗薬、可溶性ＣＤ１４など）を単独で又はサブコンビネーション(sub-combination)若しくはコンビネーションの形態で含有する。
【図面の簡単な説明】
本発明の明細書に含まれる図面について以下に説明する。
図１はＬＢＰがＥＬＰＳとＭＯとの相互作用を高めることを示す。単層ＭＯを種々の投与量のＬＢＰの存在下で、Ｅ又はＥＬＰ^loと共にインキュベートし、付着指数を記録した。対照急性期タンパク質、即ちマンノース結合タンパク質（ＭＢＰ）（5μg/ml）はＥＬＰＳ^loの結合を高めなかった（付着指数4.9）。結果は４つの別々の実験をまとめたものである。
図２はＬＢＰに依存するＥＬＰＳのＭＯへの結合が、Ｅ膜中のＬＰＳ密度に依存することを示す。ＥＬＰＳはＬＰＳと投与量を変化させることによって調製し、そして5μg/mlのＬＢＰの存在下又は不存在下で単層ＭＯと共にインキュベートした。結果は４つの別々の実験をまとめたものである。
図３はＬＰＳの不存在下ではＭＯがＬＢＰを認識しないことを示す。ビオチン及びストレプタビジン単独で被覆されたＥ（ＥＢＡＶ）をビオチン化したＬＢＰと共にインキュベートし、ＥＬＢＰを得た。ＥＬＢＰ及びＥＢＡＶどちらも、共にインキュベートするＬＰＳの投与量を傾斜させて、３７℃で２０分間インキュベートし、洗浄して、単層ＭＯへの結合を測定した。
図４はＬＢＰがＦｃ−仲介食作用を高めることを示す。単層ＭＯ（５日間培養）を様々な濃度の抗E-IgG存在下で、Ｅ、ＥＬＢＰ、又はＥＣ３ｂｉと共に４５分間インキュベートした。Ｅの食作用は”材料と方法”に記載の方法で測定した。ＥＬＰＳ^lo（0.3μg ＬＰＳ／３×10Ｅ）とＭＯを共にインキュベートしている途中で１μg/mlのＬＢＰを加えることにより、ＥＬＢＰを得た。抗E-IgG不存在下でのこれらＥの付着は次のようであった。Ｅ、付着指数（ＡＩ）−０；ＥＣ３ｂｉ、ＡＩ−417；ＥＬＢＰ、ＡＩ−404。結果は６つの別々の実験をまとめたものである。
図５はリガンド被覆表面上でのＭＯの拡張中における過酸化水素の分泌を示す。３×10⁴のＭＯを被覆微量滴定ウエルに加え、過酸化水素の放出を時間区画ごとに測定した。過酸化物の活発な生成が、免疫複合体上での拡張中に（ＨＳＡ−抗ＨＳＡ、黒丸印）又は可溶性作用薬であるＰＭＡに応答して（黒ダイヤ印）起こった。ＬＰＳ被覆表面との相互作用において、低度であるが再生可能な過酸化物放出が見られた（白三角印）。しかし、ＬＢＰ被覆表面上での拡張では放出はなく（白四角印）、ＬＰＳ被覆表面をＬＢＰで被覆すると、ＬＰＳに誘発される過酸化物の発生が妨げられた（白ダイヤ印）。ＬＢＰ被覆ウエル中のＭＯがＰＭＡへの応答として普通の過酸化物放出を見せることから、ＬＢＰは過酸化物の生成又は測定を害さなかった。
図６はモノクローナル抗ＣＤ14抗体によるＬＰＳ−ＬＢＰ複合体結合の阻害を示す。単層ヒトＭＯを示された濃度のモノクローナル抗体と共に０℃で１５分間インキュベートした。ＬＰＳ、ＬＢＰの順で被覆された赤血球を加え、付着を測定した。結果は３つの別々の投与応答実験をまとめたものであり、固定濃度の抗体について行われた１０の実験をまとめたものである。マクロファージ上の他の測定物に対して行ったｍＡｂの、大パネルの高濃度における実験は結合ＥＬＢＰに対して何の効果も示さなかった。
図７は表面結合抗ＣＤ−１４ｍＡＢがＬＢＰ−ＬＰＳ複合体の結合を抑えることを示す。単層ヒトマクロファージを25μg/mlの示されたモノクローナル抗体で被覆した基質上に設置した。その細胞を洗浄し、ＥＬＰＳ^loを加え、付着を測定した。
図８はＬＰＳがＴＮＦ生成を誘発するには天然ＬＢＰが必要であることを示す。ウサギ腹膜浸出マクロファージ（ＰＥＭ）を、示された濃度の天然ＬＶＰ（ＬＢＰ）、熱したＬＢＰ、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）又はウシ胎児血清（ＦＣＳ）の存在下でＬＰＳと共にチャレンジした。そして、前記ＰＥＭにより生成したＴＮＦの量を測定した。
図９はＬＢＰが結合するリガンド、即ちRe595 ＬＰＳの存在下又は不存在下でのトリプシン消化に対するＬＢＰの感受性を示す。分子量マーカー(Pharmacia,Piscataway,N.J.;カタログ番号17-0446-01;ホスホリラーゼＢ 94キロダルトン(KD)、ウシ血清アルブミン 67kD、オバルブミン 43kD、カルボニックアンヒドラーゼ 30kD、大豆トリプシン阻害剤 20.1kD、及びαラクトアルブミン 14.4kD)はＬＢＰ含有物の隣のレーンに現れる。ＬＢＰがＬＰＳに結合するとＬＢＰの立体配座が変化し、よってＬＰＳ−ＬＢＰ複合体の１部として存在するときだけＬＢＰはＣＤ14に結合できるという現象を説明できる、ということが結果から示唆される。
図10Ａは、実施例２１の記載に従って調製したウサギ抗マウスIgGで着色したホスホイノシトール特異性ホスホリパーゼＣで処理したマウス細胞の上澄み液のウェスタンブロットである。ＲＡＷはマウスマクロファージＲＡＷ細胞系264.7；J774はマウスマクロファージ細胞系J774；LR9はJ774変異体LR9細胞；L929はマウス繊維芽細胞L929細胞；である。
図10Ｂ及び10Ｃはそれぞれ、ＦＩＴＣヤギ抗ウサギ二次抗体を用いて、ウサギ抗マウスＣＤ14IgG抗体由来のＦ(ab')₂断片又は無免疫ウサギ由来の対照Ｆ(ab')₂断片と免疫反応させた、J774細胞及びLR9細胞のＦＡＣＳ分析の結果を示すグラフである。
図11ＡはE.coli 0111:B4 ＬＰＳで刺激したマウスマクロファージ細胞系J774による亜硝酸塩生成を示すグラフである。ＬＰＳのみの場合は白丸印；ＬＰＳに0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合は黒三角印；で示す。
図11ＢはE.coli 0111:B4 ＬＰＳで刺激したマウスマクロファージ細胞系J774変異体LR9細胞による亜硝酸塩生成を示すグラフである。ＬＰＳのみの場合は白丸印；ＬＰＳに0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合に黒三角印；で示す。
図11ＣはB.subtilis細胞壁で刺激したマウスマクロファージ細胞系J774による亜硝酸塩生成を示すグラフである。細胞壁のみの場合は白丸印；細胞壁に0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合は黒三角印；で示す。
図11ＤはB.subtilis細胞壁で刺激したマウスマクロファージ細胞系J774変異体LR9細胞による亜硝酸塩生成を示すグラフである。細胞壁のみの場合は白丸印；細胞壁に0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合は黒三角印；で示す。
図12ＡはE.coli 0111:B4 ＬＰＳへの応答としての、C3H/FeJマウス系統由来のマウス腹膜顕在化マクロファージによる亜硝酸塩生成を示すグラフである。ＬＰＳのみの場合は白丸印；ＬＰＳに0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合は黒三角印；で示す。
図12ＢはE.coli 0111:B4 ＬＰＳへの応答としての、C3H/HeJマウス系統由来のマウス腹膜顕在化マクロファージによる亜硝酸塩生成を示すグラフである。ＬＰＳのみの場合は白丸印；ＬＰＳに0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合は黒三角印；で示す。
図12ＣはB.subtilis細胞壁への応答としての、C3H/FeJマウス系統由来のマウス腹膜顕在化マクロファージによる亜硝酸塩生成を示すグラフである。細胞壁のみの場合は白丸印；細胞壁に0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合は黒三角印；で示す。
図12ＤはB.subtilis細胞壁への応答としての、C3H/HeJマウス系統由来のマウス腹膜顕在化マクロファージによる亜硝酸塩生成を示すグラフである。作用薬のみの場合は白丸印；作用薬に0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合は黒三角印；で示す。
図12ＥはS.aureus細胞壁への応答としての、C3H/FeJマウス系統由来のマウス腹膜顕在化マクロファージによる亜硝酸塩生成を示すグラフである。作用薬のみの場合は白丸印；作用薬に0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合は黒三角印；で示す。
図12FはS.aureus細胞壁への応答としての、C3H/HeJマウス系統由来のマウス腹膜顕在化マクロファージによる亜硝酸塩生成を示すグラフである。作用薬のみの場合は白丸印；作用薬に0.25mg/ml抗マウスＣＤ14IgGを加えた場合は黒三角印；で示す。
図13Ａ、13Ｂ、及び13Ｃは、E.coli 0111:B4 ＬＰＳ（パネルＡ）、B.subtilis細胞壁（パネルＢ）、及びマイコバクテリアのリポアラビノマンナン（ＬＡＭ、パネルＣ）への応答としての、1,25ジヒドロ−ビタミンＤ₃−分化ＴＨＰ-1細胞によるIL-8分泌を示すグラフである。加えた抗体：抗体無しの場合は小点付き四角印；0.25mg/mlヤギ抗ヒトＣＤ14IgGの場合は白丸印；0.25mg/ml無免疫ヤギIgGの場合は黒丸印；0.25mg/mlヤギ抗ヒトＣＤ14Ｆ(ab')₂IgG断片の場合は白四角印；0.25mg/ml無免疫ヤギＦ(ab&aos;)₂IgG断片の場合は黒四角印；10μg/ml抗ＣＤ14 ｍＡｂ 28C5の場合は白三角印；10μg/ml抗ＣＤ14 ｍＡｂ 63D3の場合は黒三角印；である。
図14Ａ、14Ｂ、及び14Ｃは、E.coli 0111:B4 ＬＰＳ（パネルＡ）、B.subtilis細胞壁（パネルＢ）、及びマイコバクテリアのリポアラビノマンナン（ＬＡＭ、パネルＣ）への応答としての、マウスpre-B 70Z/3細胞による表面IgMアップレギュレーション（不定ユニット何で平均チャンネル蛍光として発現した）のＦＡＣＳ分析の結果を示すグラフである。ベクター移入細胞は白丸印；野性型ＣＤ14移入細胞は黒丸印；トランスメンブランキメラＣＤ14移入細胞は黒三角印；である。
図15Ａは、ＬＰＳへの応答としての、SW620細胞によるIL-8分泌のグラフである。作用薬のみの場合は白丸印；作用薬に２％正常とヒト血清(NHS)を加えた場合は白四角印；作用薬に２％NHSと0.25mg/mlヤギ抗ヒトＣＤ14IgG抗体を加えた場合は白三角印；である。
図15Ｂは、B.subtilis細胞壁への応答としての、SW620細胞によるIL-8分泌のグラフである。作用薬のみの場合は白丸印；作用薬に２％正常ヒト血清(NHS)を加えた場合は白四角印；作用薬に２％NHSと0.25mg/mlヤギ抗ヒトＣＤ14IgG抗体を加えた場合は白三角印；である。
図16Ａは³⁵ＳｓＣＤ14のグラム陽性毒素原性細胞壁成分への結合を示すグラフである。
図16Ｂは、ＦＩＴＣ-Re595-ＬＰＳの可溶性ＣＤ14への結合に対する、ＬＡＭによる競合を示すグラフである。ＬＰＳに対して重量／重量で０倍（上方の曲線）、50倍又は250倍（下方の曲線）のＬＡＭを、ＦＩＴＣ-ＬＰＳ、ＬＢＰ、及び可溶性ＣＤ14の混合物に加えた。ＦＩＴＣ-Re595-ＬＰＳの蛍光における変化は、SLM6000蛍光計で時間を追って記録した。
発明の詳細な説明
Ａ．定義
アミノ酸残基：本明細書で記載するアミノ酸残基は「Ｌ」異性体形であるのが好ましい。しかしながら、ポリペプチドによる免疫グロブリン結合性の所望の機能的性質が保持される限り、Ｌ−アミノ酸残基に代えて「Ｄ」異性体形の残基も用いうる。ＮＨ₂は、ポリペプチドのアミノ末端に存在する遊離のアミノ基をいい、ＣＯＯＨはポリペプチドのカルボキシ末端に存在する遊離のカルボキシ基をいう。標準のポリペプチド命名法（J. Biol. Chem., 243:3522-59, 1969）に従い、アミノ酸残基の略語を以下の対応表に示す。

全てのアミノ酸残基配列は本明細書では、その左と右方向がアミノ末端からカルボキシ末端への慣用の方向に記載される式で表されることに注意すべきである。さらに、アミノ酸残基配列の始め又は終わりにあるダッシュは、１以上のアミノ酸残基の別の配列とのペプチド結合を示すことに注意すべきである。
種々の文法形における「抗体」の語は、免疫グロブリン分子及び／又は免疫グロブリン分子の免疫学的活性部分、すなわち抗体断片又は抗体結合部位又はパラトープを含む分子、を含む組成物をいう。好ましい態様では、本発明で使用する抗体はアフィニティ精製されている。
「抗体結合部位」とは、抗原と特異的に結合するＨ鎖及びＬ鎖可変領域及び超可変領域を含む抗体分子の構造部分をいう。
本明細書で種々の文法形で用いる「抗体分子」の用語は、完全な免疫グロブリン分子及び免疫グロブリン分子の免疫学的活性部分を意味する。
抗体分子の例としては、完全な免疫グロブリン分子、実質的に完全な免疫グロブリン分子、及び当業者にＦａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）₂及びＦ（ｖ）として知られている部分を含む、パラトープを含む免疫グロブリン分子の部分があり、これらの部分は本明細書で記載する治療法で使用するのに好ましい。
抗体分子のＦａｂ及びＦ（ａｂ’）₂部分は、公知の方法により実質的に完全な抗体分子をそれぞれパパイン及びペプシンによるタンパク質分解反応によって調製することができる。例えば、Theofilopolousらに付与された米国特許第４，３４２，５６６号（本明細書で引用する文献の開示を参考としてここに組み入れる）を参照されたい。Ｆａｂ’抗体分子部分も公知であり、２つのＨ鎖部分をつなぐジスルフィド結合をメルカプトエタノールなどで還元し、次いで得られるタンパク質メルカプタンをヨードアセタミドなどの試薬でアルキル化することによりＦ（ａｂ’）₂から調製できる。完全な抗体分子を含む抗体が好ましく、ここではこれを説明として用いる。
種々の文法形における「モノクローナル抗体」の用語は、特定抗原と免疫反応することのできる抗体結合部位を１種だけもつ抗体をいう。従って、モノクローナル抗体は典型的にはそれが免疫反応する抗原に対して１つの結合親和性を示す。従ってモノクローナル抗体は、例えば二特異的（キメラ）モノクローナル抗体のように、複数の抗体結合部位をもつ抗体分子を含み、そのそれぞれが異なる抗原と免疫特異的である。
本明細書で用いる「実質的に同時に」の用語は、同時の結果を生じるのに十分な期間内を意味し、例えば抗生物質投与の結果としての細菌溶解、及び本明細書で記載する抗ＣＤ１４抗体、抗ＬＢＰ抗体、ＬＢＰペプチド類似体又はそのサブコンビネーション（subcombination）又はコンビネーションの投与によるその溶解の結果として起こる敗血症の症状改善又は予防をいう。
「製剤学的に許容される」の用語は、生理学的に我慢でき、ヒトに投与したときに典型的にはアレルギー又は同様の好ましくない反応、例えば消化管不良、眠気などを引き起こさない分子及び組成物をいう。
Ｂ．治療法
本発明は、細菌の感染と関連する敗血症などの疾患、特にＴＮＦの血中濃度の一時的増加と関連する疾患の１以上の症状、例えば発熱、低血圧、好中球減少症、白血球減少症、血小板減少症、ショック及び多臓器不全などの症状を治療及び／又は予防する方法を企図する。このような治療を必要とする患者には、グラム陽性、グラム陰性細菌又はマイコバクテリア感染による内毒血症などの毒血症、ヘビ毒中毒、肝臓障害などの危険があるかこれに苦しむ患者を含む。さらに、ウイルス又は真菌感染患者のある者は毒血症の症状を示し、本発明の治療法の恩恵を受けるであろう。本発明の恩恵を特に受ける患者は、大腸菌（E. coli）、Ｂ型インフルエンザ菌（Haemophilus influenza B）、髄膜炎菌（Neisseria meningitides）、ブドウ球菌（staphylococci）又は肺炎球菌（pneumococci）による感染に苦しむ患者である。敗血症の危険のある患者には、火傷、銃撃傷、化学品の中毒又は乱用による腎臓又は肝臓障害などに苦しむ者を含む。
従って、ある態様では、本発明は、ＬＰＳ、グラム陽性細菌毒素原性細胞壁成分又はサイトカイン分泌を誘導するマイコバクテリアからのＬＡＭなどの細胞毒素にさらされることから生じる敗血症又はその他の症状の危険があるか、あるいはこれに苦しむ患者に、抗ＣＤ１４抗体を好ましく静脈内投与することによって、そのような症状の１以上を改善する方法を企図する。
従って、本発明の１態様では、サイトカインの分泌をブロックする治療的有効量の抗ＣＤ１４抗体を投与することを含んでなる、グラム陽性細菌及びマイコバクテリアによって引き起こされる菌血症及び毒血症と関連する症状の治療法を提供する。この方法は、単独で、あるいは１以上の抗生物質、ステロイド、抗ＴＮＦ抗体、ＴＮＦアンタゴニストなどによる治療を含む敗血症及び毒血症を予防又は改善することが知られている他の治療様式を実質的に同時に投与することと組み合わせて実施できる。
さらに本発明では、グラム陰性細菌、グラム陽性細菌及びマイコバクテリア（グラム陽性細菌の抗酸型）によって引き起こされる菌血症、敗血症及びその他の毒血症などの感染症の症状を予防又は改善するのに有用な、典型的には単位投与形での治療組成物を企図する。組成物は、活性成分としてサイトカインの産生を阻害する１以上の抗ＣＤ１４抗体、又はその断片を含む製剤学的に許容される担体を含んでいる。好ましい態様では、本発明の治療組成物は活性成分として、抗性物質、ステロイド、抗ＴＮＦ抗体、ＴＮＦアンタゴニスト、可溶性ＣＤ１４などの細菌症状及び敗血症を予防又は改善することが知られている薬剤を単独又はサブコンビネーション又はコンビネーションで含む。
「治療的有効量」の用語は、血漿中のＴＮＦ濃度の臨床的に有意な上昇を防ぐ、そして好ましくは少なくとも約３０％、より好ましくは約５０％、最も好ましくは約９０％低下するのに十分な量を本明細書中ではいう。本明細書で活性成分として使用する薬剤の好ましい治療的有効量はＣ節で記載するものを含む。血漿中のＴＮＦ濃度の臨床的に有意な上昇とは、少なくとも約２５ｐｇ／ｍｌに上昇することである。血漿ＴＮＦ濃度の測定法は当業界で公知であり、特に好ましい方法は本明細書に記載するものである。
正常な健常人又は健常実験動物におけるＴＮＦ濃度は、ＴＮＦに対して最も感度のよいアッセイでの検出限界値である約１０ｐｇ／ｍｌよりも多くないと推定される（Michie, et al., New Eng. J. Med., 318:1481-1486, 1988; Mathison, et al., J. Clin. Invest., 81:1925, 1988; Waage, et al., Lancet. 1:355-357,1987）。ＬＰＳに接触させた後、ＴＮＦ濃度は４００ｐｇ／ｍｌまで１０−２０倍上昇した（前出参照）。最近になって、血清ＴＮＦ濃度と，ＬＰＳ含有性髄膜炎菌（meningococcal bacteria）であるグラム陽性細菌の感染による致命的結果との良好な相関が観察された（Waage, et al.,前出, 1987）。さらに類人猿の種を用いた敗血症動物モデルで同様のＴＮＦ増加が見られ、これらの変化は直接、致死率と相関する（Tracey, et al., Nature, 330:662-664, 1987）。
別の態様では、この方法は、治療的有効量の抗ＣＤ１４抗体、好ましくは単球／マクロファージ系列、好ましくは単球由来のマクロファージの細胞などの細胞によりin vivoでのＬＰＳ、グラム陽性毒素原性細胞壁成分又はマイコバクテリアのＬＡＭなどによって誘導されるＴＮＦ分泌を阻害するのに十分な量を、敗血症の治療を必要とするか、又はその危険性がある患者に投与することを含む。
好ましくは、本発明の治療法で用いる抗ＣＤ１４抗体はアフィニティ精製されたポリクローナル抗体である。より好ましくは、抗体はモノクローナル抗体（ｍＡｂ）である。さらに、本発明で用いる抗ＣＤ１４抗体分子にとっては、全抗体分子のＦａｂ，Ｆａｂ’，Ｆ（ａｂ’）₂又はＦ（ｖ）部分の形であることが好ましい。
本発明を実施するために用いる好ましいモノクローナル抗体はAshmanら（Blood, 69:886-892, 1987）の記載する６０ｂなどのハイブリドーマから生産されるものであり、最も好ましいのはVan Voorhisら（J. Exp. Med., 158:126-145, 1983）の記載する３Ｃ１０（アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、Rockville, MDに受託番号ＴＩＢ２２Ｂで寄託）から生産されるものである。ｍＡｂ６０ｂ及び３Ｃ１０はハイブリドーマ培養によって生産されるが、本発明はこれによって限定されない。６０ｂ及び／又は３Ｃ１０のようなハイブリドーマからクローニングされた核酸発現する抗ＣＤ１４免疫グロブリンによって産生されるｍＡｂも使用できる。即ち、ハイブリドーマ３Ｃ１０などによって分泌される抗ＣＤ１４抗体分子を発現する核酸を別の細胞系に移して形質転換体を生産することができる。形質転換体はもとのハイブリドーマとは遺伝型的に異なるが、もとのハイブリドーマによって分泌されるものに対応する、全抗体分子の免疫学的に活性な断片を含む抗ＣＤ１４抗体分子を産生できる。例えば、Readingに付与された米国特許第4,642,334号;Robinsonに付与されたＰＣＴ出願公開公報ＷＯ８９００９９；Winterらのヨーロッパ特許出願公開第０２３９４００号及びCabillyらの同第０１２５０２３号を参照されたい。
好ましいモノクローナル抗体は上述のハイブリドーマによって産生されるものと同様のＣＤ１４への免疫反応性を示す。本明細書では、種々の文法形における「免疫反応性」の用語は、一定量の抗体と，ＬＰＳ、グラム陽性毒素原性細胞壁成分由来又はマイコバクテリアのＬＡＭ由来の一定量のＣＤ１４抗原との間の免疫反応を５０％阻害するのに必要な抗原濃度をいう。即ち、免疫反応性とは、Ｂ／Ｂ₀値０．５を達成するのに必要な抗原成分又は毒素原性成分の濃度であり、ここでＢ₀は競合抗原の不在下において結合する抗体の最大量であり、Ｂは競合抗原の存在下において結合する抗体量であり、そしてＢ₀及びＢはいずれもバックグラウンドを予め調整してある（Robard, Clin. Chem., 20:1255-1270, 1974参照）。
別の態様では、本発明の治療法は、治療的有効量の抗ＬＢＰ抗体、好ましくはアフィニティ精製したポリクローナル抗体、より好ましくはｍＡｂを投与することを含む。さらに、本発明で用いる抗ＬＢＰ抗体にとっては、全抗体分子のＦａｂ，Ｆａｂ’，Ｆ（ａｂ’）₂又はＦ（ｖ）部分の形であることが好ましい。好ましくは、投与する抗ＬＢＰ抗体の量は、敗血症の少なくとも１つの症状を示す患者のＴＮＦの血中濃度におけるＬＢＰ−ＬＰＳ複合体に誘導された臨床的に有意な上昇を、少なくとも約３０％、好ましくは約８０％低下させるのに十分な量である。先に議論したように、本発明の方法から恩恵を受けることのできる患者には、グラム陰性細菌感染の結果として内毒血症に苦しむ者を含む。ＬＢＰの単離方法及び抗ＬＢＰ抗体の誘導方法は当業者に公知である。例えば、Tobiasら（J. Exp. Med. 164:777-793, 1986）を参照のこと。ＬＢＰ−ＬＰＳ複合体のＣＤ１４への結合を阻害し、それによってＬＢＰ−誘導のＴＮＦ分泌を阻害するための、抗ＬＢＰ抗体の能力の決定方法及び最適化方法は当業者に公知である。例えば、抗ＬＢＰ抗体は実施例１６に記載のアッセイにおいて抗ＣＤ１４抗体の代わりに使用できる。
本発明の実施に有用な好ましい抗ＬＢＰ抗体は、ＬＢＰのペプチド類似体と免疫学的に交差反応する。”ＬＢＰペプチド類似体”とは、単球由来のマクロファージの表面上で発現するＣＤ１４へのＬＰＳ−ＬＢＰ複合体の結合を競合的に阻害することのできるポリペプチドである。好ましいＬＢＰペプチド類似体を表１に示す。

ポリクローナル抗ポリペプチド抗体の作製法は当業者に公知である。Nestorらに付与された米国特許第４，４９３，７９５号を参照のこと。典型的には、有用な抗体分子のＦａｂ及び／又はＦ（ａｂ’）₂部分を含むモノクローナル抗体は、Antibodies A Lablratoy Manual, Harlow and Lane編集、Cold Spring Harbor Laboratory, New York（1988）（その開示は本明細書に参考文献として含まれる）に記載のハイブリドーマ技術を用いて作製できる。簡単に述べると、モノクローナル抗体組成物が産生されるハイブリドーマを形成するには、ミエローマ又は自己永続性(self-perpetuating)細胞系を、ＣＤ１４又はそのＬＢＰ−結合性部分、あるいはＬＢＰ又はそのＣＤ１４−結合性部分で高度免疫した哺乳動物の脾臓から得たリンパ球と融合する。あるいは、グラム陽性細菌の細菌壁由来の毒素原性成分又はマイコバクテリア由来のＬＡＭ、特にそのＣＤ１４−結合性部分で哺乳動物を高度免疫することができる。
ミエローマ細胞系はリンパ球と同じ種に由来するものであることが好ましい。典型的には、１２９ＧＩＸ⁺株のマウスが好ましい哺乳動物である。本発明で使用するのに適しているマウスミエローマは、ヒポキサンチン−アミノプテリン−チミジン（ＨＡＴ）感受性の細胞系であるＰ３Ｘ６３−Ａｇ８．６５３及びＳｐ２／０−Ａｇ１４を含み、これらはアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、Rockville, MDからそれぞれＣＲＬ１５８０及びＣＲＬ１５８１という名称で入手できる。
典型的にはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）６０００を用いて脾臓細胞をミエローマと融合する。融合したハイブリッドをＨＡＴに対する感受性によって選択する。本発明の実施に使用できるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、ＣＤ１４又はＬＢＰとの免疫反応能及び実施例１６に記載する方法を用いるＬＰＳで誘導したＴＮＦ分泌の阻害能によって同定する。
本発明の実施に使用できるモノクローナル抗体は、適当な抗原特異性の抗体分子を分泌するハイブリドーマを含む栄養培地を含んでなるモノクローナルハイブリドーマ培養を開始することによって産生できる。ハイブリドーマが培地中に抗体分子を分泌するのに十分な条件及び時間で培養物を維持する。次に抗体含有培地を回収する。さらに抗体分子を公知の技術を用いて単離することができる。
これらの組成物の調製に使用できる材料は当業界で公知で市販されており、合成培地、同系交配されたマウスなどを含む。合成培地の例としては、グルコース４．５ｇｍ／ｌ、グルタミン２０ｍＭ、及び２０％ウシ胎児血清を補充したダルベッコの最少必須培地（ＤＭＥＭ；Dulbecco, et al., Virol., 8:396, 1959）が挙げられる。同系交配されたマウス株の例としてはＢａｌｂ／ｃがある。
モノクローナル抗ポリペプチド抗体の産生法も当業界で公知である（Niman, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 80:4949-4953, 1983参照）。典型的には、上述した抗ＣＤ１４モノクローナル抗体の産生法における免疫原と同様に、１以上のＬＢＰペプチド類似体を単独又は免疫原性担体と結合させて用いる。ＬＢＰペプチド類似体及びＬＢＰとの免疫反応をするか、あるいはグラム陽性細菌細胞壁（毒素原性成分）のＣＤ１４結合性部分又はマイコバクテリア由来のＬＡＭとの免疫反応をする抗体の産生能についてハイブリドーマをスクリーニングする。
適当な免疫交差反応を示すモノクローナル抗体による、ＬＰＳ−ＬＢＰ複合体のＣＤ１４への結合を阻害する能力は、実施例１６のアッセイを用いて確認できる。
別の態様では、本発明の治療法は治療的有効量のＬＢＰペプチド類似体、好ましくは表１に示す配列を有する類似体を投与することを含む。
敗血症の危険性又は症状を示す患者は、これらの症状を予防又は改善する当業界で公知の治療様式の恩恵を受けることができる。従って、本発明は、治療的有効量の抗ＣＤ１４抗体、抗ＬＢＰ抗体、ＬＢＰペプチド類似体、そのサブコンビネーション又はコンビネーションを、敗血症の症状を予防又は治療するために知られている治療様式と実質的に同時に投与することを企図する。例えば、抗ＴＮＦ抗体及び／又はＴＮＦアンタゴニストの使用などによって直接又は間接に敗血症におけるＴＮＦの役割に介在することにより、敗血症の症状を予防又は改善できる。特に好ましくは、文献（Tracey, et al., Nature, 330:662-664, 1987）に記載のものに対応するＴＮＦに免疫学的特異性をもつモノクローナル抗体のような抗ＴＮＦ抗体を活性成分として用いる。
同様に、本発明の治療法はコルチゾル、ヒドロコルチゾンなどのステロイドで実質的に同時に治療することをさらに含む。
敗血症の症状を示す患者は通常抗生物質、典型的にはゲンタマイシンなどのアミノグリコシド又はペニシリン、セファロスポリンなどのβ−ラクタムで治療する。従って、好ましい治療法は、治療的有効量の抗ＣＤ１４抗体、抗ＬＢＰ抗体、ＬＢＰペプチド類似体、本明細書で記載するそのサブコンビネーション又はコンビネーションの投与を、殺菌量の抗生物質の投与と実質的に同時に行うことを含む。本明細書における「殺菌量の」の用語は、治療を受ける患者の殺菌性血液濃度を達成するのに十分な量という。ヒトに投与して安全と一般に認識される抗生物質の殺菌量は当業界で公知であり、抗生物質の種類及び治療しようとする細菌感染の型により異なることも当業界で公知である。
好ましい態様では、本明細書で記載する抗ＣＤ１４抗体、抗ＬＢＰ抗体、ＬＢＰペプチド類似体又はそのコンビネーションの投与は、抗生物質投与の約４８時間以内、好ましくは約１２−３６時間以内、より好ましくは約２−８時間以内、そして最も好ましくは実質的に同時に行う。
本発明の実施に有用な抗生物質は、Physicians' Desk Reference, Huff, B.B.編集, Medical Economics Company, Inc., Oradell, N.J., 1989に記載の製剤をもつ抗生物質、殺菌剤及び防腐剤を含む。別の態様では、本発明は治療的有効量のＣＤ１４、好ましくはＬＰＳ−ＬＢＰ複合体と結合するその可溶性部分を単独で、あるいは治療的有効量の抗ＴＮＦ抗体、抗ＬＢＰ抗体及び抗生物質とサブコンビネーション又はコンビネーションで投与することを企図する。ＣＤ１４をコードするｃＤＮＡ及びその推定アミノ酸残基配列は当業界で公知である。Goyert, et al., Science, 139:497-500, 1988; Ferrero, et al., Nuc. Acids Res., 16:4173, 1988; Bazil, et al., Eur. J. Immunol., 16:1583-1589, 1986を参照のこと。
Ｃ．治療用組成物
本発明はさらに本発明の治療法を実施するのに有用な治療用組成物を企図する。主題の治療用組成物には、製剤学的に許容される賦形剤（担体）、及び活性成分として本明細書で記載する１以上の抗ＣＤ１４抗体、抗ＬＢＰ抗体及びＬＢＰポリペプチド類似体を混合物の形で含む。好ましい態様では、組成物はＣＤ１４へのＬＰＳ−ＬＢＰ複合体の結合を阻害することのできる抗ＣＤ１４ｍＡｂを含んでなる。好ましいｍＡｂは６０ｂ、より好ましくは３Ｃ１０である。グラム陽性細菌又はマイコバクテリアによって引き起こされるサイトカン産生と関連する敗血症又はその他の疾患状態を治療するための好ましいモノクローナル抗体は６３Ｄ３ ｍＡｂ （ＡＴＣＣ＃ＨＢ４４）及び２８Ｃ５（ＡＴＣＣ＃ＨＢ１１３６４）である。
別の好ましい態様では、組成物はＣＤ１４へのＬＰＳ−ＬＢＰ複合体の結合を阻害する抗ＬＢＰ抗体、好ましくはｍＡｂを含んでなる。特に好ましいのは、抗ＬＢＰ抗体が、表１に示す配列をもつＬＢＰペプチド類似体と免疫反応するような組成物である。
好ましい組成物は、ＣＤ１４へのＬＰＳ−ＬＢＰ複合体の結合のアンタゴニストとして作用するＬＢＰペプチド類似体を含んでなる。本発明の組成物に用いる好ましいＬＢＰペプチド類似体は表１に示す配列をもつものである。
好ましい治療用組成物には、有効量の１以上の以下の活性成分をさらに含む：抗性物質、ステロイド、及び抗ＴＮＦ抗体及びＴＮＦアンタゴニスト。製剤例を以下に示す：

別の態様では、本発明は、製剤学的に許容される担体中にＣＤ１４又はそのＬＢＰ結合性の可溶性部分を含む敗血症の治療に有用な治療用組成物を企図する。好ましくは、組成物は治療的に有効な濃度の１以上の抗ＴＮＦ抗体、抗ＬＢＰ抗体及び抗生物質をさらに含む。
活性成分としてポリペプチド又は抗体分子を含む治療用組成物の調製は当業界でよく知られている。典型的には、このような組成物は注射可能な溶液又は懸濁液として調製されるが、注射前に溶液又は懸濁液とするのに適した固形も調製できる。調製物は乳化されていてもよい。活性治療用成分は製剤学的に許容され、かつ活性成分と適合性の賦形剤と混合することが多い。適当な賦形剤には例えば、水、生理食塩水、デキストロース、グリセロール、エタノールなど並びにそのコンビネーションがある。さらに、所望するならば、組成物には湿潤剤又は乳化剤、活性成分の有効性を増強するｐＨ緩衝剤などの補助物質を少量含むことができる。
ポリペプチド又は抗体は中和された製剤学的に許容される塩の形で治療用組成物中に製剤化することができる。製剤学的に許容される塩には、酸付加塩（ポリペプチド又は抗体分子の遊離アミノ基と形成される）が含まれ、これらは例えば酸塩又はリン酸などの無機酸、あるいは酢酸、シュウ酸、酒石酒、マンデル酒などの有機酸とで形成される。遊離のカルボキシル基から形成される塩も、例えば水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化アンモニウム、水酸化カルシウム又は水酸化鉄などの無機塩基、ならびにイソプロピルアミン、トリメチルアミン、２−エチルアミノエタノール、ヒスチジン、プロカインなどの有機塩基から誘導できる。
治療用ポリペプチド又は抗体を含む組成物は、例えば単位用量を注射することによって静脈内投与するのが便利である。本発明の治療用組成物について本明細書で用いる「単位用量」の用語は、それぞれの単位が所望の治療的効果を生じるように必要な希釈剤、すなわち担体又はベヒクルと関連する予め定められた量の活性物質を含む、ヒトに１回の投与を行うのに適した物理的に分かれた単位をいう。
組成物は投与製剤と適合した方法、及び治療的に有効な量で投与する。投与量は治療すべき被験者、被験者の活性成分を用いる免疫系の能力、及び所望するＣＤ１４又はＬＰＳ−ＬＢＰ複合体結合能の阻害又は中和程度に依存する。投与に必要な活性成分の正確な量は医師の判断により、個々の場合によって異なる。しかしながら、適当な投与量は、１日当たり体重１ｋｇにつき活性成分０．１−２０ｍｇ、好ましくは約０．５−約１０ｍｇ、より好ましくは１−数ｍｇであり、投与経路にも依存する。最初の投与と追加免疫に適した処方もまた変更しうるものであるが、最初の投与を行った後１−数時間の間隔で追加免疫を繰り返すか別の投与を行うのが一般的である。あるいは、１０ナノモルから１０マイクロモルの血中濃度を維持するのに十分な静脈内連続注入でもよい。
本明細書では「ｐｇ」はピコグラム、「ｎｇ」はナノグラム、「ｕｇ」はマイクログラム、「ｍｇ」はミリグラム、「ｕｌ」はマイクロリットル、「ｍｌ」はミリリットル、「ｌ」はリットルを意味する。
抗マウスＣＤ１４抗体は細胞活性化をブロックする
抗マウスＣＤ１４抗体がＬＰＳで誘導した細胞活性化をブロックするかどうかを確証するために、まずマウス単球／マクロファージの活性化に対するその効果を測定した。ウサギ抗マウスＣＤ１４のポリクローナルＩｇＧ調製物は、ＲＡＷ細胞及びマウス血中におけるＬＰＳで誘導したＴＮＦ産生を阻害したが、免疫しなかったウサギからのＩｇＧには何ら効果を示さなかった（データ示さず）。本明細書では示さない実験において、ＲＡＷ細胞及びＪ７７４細胞によるＬＰＳ依存性の亜硝酸塩産生も抗マウスＣＤ１４ＩｇＧによってブロックされた。抗ＣＤ１４抗体は同じ細胞中でＴＮＦで誘導した亜硝酸塩の産生に何ら効果を示さず、これは抗ＣＤ１４抗体による阻害の特異性を示す（データ示さず）。抗マウスＣＤ１４ＩｇＧのＦ（ａｂ’）₂ＩｇＧ断片な完全な抗体と同様に阻害し、これはＦｃドメインが細胞との相互作用に何ら関与していないことを示す（データ示さず）。
図１０に示す結果は、ポリクローナル抗マウスＣＤ１４抗体が天然のマウスＣＤ１４を認識し、ＣＤ１４を経由して起こるＬＰＳで誘導される細胞活性化をブロックすることを示す（データ示さず）。これらの知見に基づき、ＣＤ１４がグラム陽性細菌細胞壁及びＬＡＭに対するマウスマクロファージの応答にある役割を果たしているという仮説を試験するためにさらに実験を行った。
図１１に示すように、抗マウスＣＤ１４ポリクローナル抗体が、Ｊ７７４細胞中におけるＬＰＳ依存性又はＢ．サブチリス細胞壁依存性の亜硝酸塩の産生を阻害することが見いだされた。ＬＲ９細胞はＬＰＳ又は図１１Ｂに示すようにグラム陽性細菌細胞壁のいずれかによる刺激に対して顕著に低応答性であった。ＬＰＳ濃度を３ｎｇ／ｍｌまで、又は細胞壁濃度を１０００ｎｇ／ｍｌまで増加してもこれらの細胞中における亜硝酸塩の産生を誘導しなかったが、この実験条件で抗ＣＤ１４抗体を投与しても応答が低下しなかった（図１１）。Ａ群のストレプトコッカス（Streptococcus）株由来の細胞壁でも同様のデータが得られた（データ示さず）。図１２に示すように、Ｃ３Ｈ／ＦｅＪ（ＬＰＳ応答性マウス）由来のＰＥＭはＬＰＳ及びＢ．サブチリス又はＳ．アウレウス由来の細胞壁調製物に応答し；抗マウスＣＤ１４ポリクローナル抗体はＬＰＳ及び細胞壁のいずれに対する応答も阻害した。Ｃ３Ｈ／ＨｅＪマウス（ＬＰＳに非応答性であることが知られている株）由来のＰＥＭがＬＰＳに応答しないのは驚くことではないが、２つの異なるグラム陽性微生物由来の細胞壁調製物で処理した後に亜硝酸塩を産生した（図１２）。細胞壁調製物に対する濃度応答特性は２つの異なるマウス株からのＰＥＭの場合と非常によく似ていた。Ｂ群のストレプトコッカスからの別の細胞壁調製物もＰＥＭにおける亜硝酸塩の産生を刺激した（データ示さず）。
全く予期しないことに、図１２に示すように、Ｃ３Ｈ／ＨｅＪ ＰＥＭによる細胞壁で誘導した亜硝酸塩の産生が抗ＣＤ１４ポリクローナル抗体によって阻害されることが観察された。さらに、Ｃ３Ｈ／ＨｅＪマウス由来のマクロファージであるＧＧ２ＥＥ細胞（Blasi, et al., 1987）はＬＡＭによって刺激されて亜硝酸塩応答を生じ、これは抗マウスＣＤ１４ＩｇＧによってブロックされた（データを示さず）。
グラム陽性細胞壁調製物又はＬＰＳによる刺激に対するＣＤ１４非依存性の経路も働いていることが見いだされた。なぜなら、刺激する濃度を増加することによって抗ＣＤ１４の阻害効果が常に弱まってしまうからである。それでも、図１１及び図１２に示す知見は全体として、ＬＰＳ及びグラム陽性細胞壁の両方に対する応答にＣＤ１４が重要な役割を果たしており、抗ＣＤ１４抗体により治療的介入によってグラム陰性及びグラム陽性細菌の哺乳動物における毒性効果を調節及び改善できることを支持する。
ＣＤ１４陽性及びＣＤ１４陰性細胞系における応答
Ｊ７７４（ＣＤ１４陽性）及びＬ９（ＣＤ１４陰性）細胞系で得られた結果は、グラム陽性細胞壁に対する応答にＣＤ１４が重要な役割を果たすことを示唆するが、これらのデータは注意深く解釈しなければならない。ＬＲ９細胞系は化学的に突然変異誘発したＪ７７４細胞から選択したので、ＬＲ９細胞はＣＤ１４を欠失することを本発明者らは示してきたが、ＬＰＳ低応答性の完全な理由は分っていない。従って、１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３で処理した後に高濃度でＣＤ１４を発現するＴＨＰ−１細胞（Tobias, et al., J. Immunol., 150:3011-3021, 1993）、又はヒトＣＤ１４を発現する形質転換した７０Ｚ／３細胞（Lee, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:9930-9934, 1993）のいずれかを用いて、追加の実験を行った。ＴＨＰ−１細胞をＬＰＳ又はグラム陽性毒素原性細胞壁成分で刺激してＩＬ−８を放出させるにはビタミンＤ３で前処理する必要があった（データ示さず）。
これらの細胞におけるＣＤ１４発現の役割を決定するために、種々の抗ヒトＣＤ１４抗体の細胞活性化をブロックする能力を試験した。まずＬＰＳ、グラム陽性細胞壁調製物、及びＬＡＭによるＴＨＰ−１活性化に及ぼす、ヒトＣＤ１４に対するポリクローナル及びモノクローナル抗体の効果を比較した。図１３に示すように、ポリクローナル抗ｈＣＤ１４抗体（ＩｇＧ画分又はＦ（ａｂ’）₂断片）はＬＰＳで、グラム陽性細胞壁で、及びＬＡＭで誘導したＩＬ−８放出をブロックしたが、一方非免疫ＩｇＧ又はそのＦ（ａｂ’）₂断片は何も効果を示さなかった。ヒトＣＤ１４に対するモノクローナル抗体である６３Ｄ３（ＡＴＣＣ＃ＨＢ４４）及び２８Ｃ５（ＡＴＣＣ＃ＨＢ１１３６４）を用いて、ＬＰＳ又はグラム陽性細胞壁調製物を加える前に細胞を前処理した。
図１３に示すように、ｍＡＢ ２８Ｃ５はＬＰＳ、細胞壁調製物、及びＬＡＭに対する応答をブロックした。これとは対照的に、ｍＡＢ ６３Ｄ３はＬＰＳ刺激を阻害しなかったが、細胞壁調製物及びＬＡＭによる刺激を部分的にブロックした。１−３ｐｇ／ｍｌ濃度でのＢ．サブチリス細胞壁又はＬＡＭによるＴＨＰ−１細胞の活性化は、ポリクローナル抗ｈＣＤ１４抗体によってブロックされなかった（図１３）。アゴニスト濃度がナノグラム／ｍｌ範囲にあるときには、ＴＨＰ−１細胞の活性化はＣＤ１４依存性であることが観察された。別の研究では、Ｓ．ニューモニアエ（pneumoniae）からの細胞壁調製物による刺激もＣＤ１４を必要とした（データ示さず）が、Ｓ．アウレウスからの可溶性ペプチドグリカンによるＴＨＰ−１細胞の刺激は、抗ＣＤ１４ポリクローナルＩｇＧを含めることによってブロックされなかった（データ示さず）。
マウスプレ−Ｂ細胞系である７０Ｚ／３のＬＰＳ応答におけるＣＤ１４発現の効果が報告されている（Lee， et al., J. Exp. Med. 174:1697-1705, 1992; Lee, et al.,前出, 1993）。ＣＤ１４で形質転換した７０Ｚ／３細胞（７０Ｚ／３−ｈＣＤ１４細胞）は、ＬＰＳ結合及び初期シグナル伝達事象に関してはマクロファージと同様に挙動する（Lee, et al.,前出, 1993）。ｈＣＤ１４形質転換細胞と空ベクターで形質転換した細胞との唯一の違いはヒトＣＤ１４の発現であるので、こらの細胞を用いてＣＤ１４媒介性の事象の役割をさらに決定的に分析することができる。図１４は、７０Ｚ／３−ｈＣＤ１４細胞をＬＰＳ、Ｂ．サブチリス細胞壁又はＬＡＭのいずれかとインキュベートする実験の結果を示す。ｈＣＤ１４が細胞表面上に発現しているときには、ＬＰＳと同様に、細胞壁及びＬＡＭはＩｇＭの上方制御に有意な増加を誘導し、これはこれらの異なるアゴニストの応答にＣＤ１４が決定的に関与していることを示す。ＬＰＳについて既に報告されているように（Lee, et al.,前出, 1993）、グラム陽性細胞壁及びＬＡＭによる細胞活性化は、ＣＤ１４がＧＰＩ−付着性タンパク質として発現しているか、又は膜貫通タンパク質として発現しているかとは無関係であった。
次に、膜結合したＣＤ１４を欠失するが、可溶性ＣＤ１４（ｓＣＤ１４）依存性経路を介してＬＰＳと応答することが知られている細胞系が、ｓＣＤ１４依存性メカニズムを介してグラム陽性細菌細胞壁によって活性化されるかを決定するための研究を行った。Puginらによる先の研究（前出、1993a）では、慢性腺癌に由来するＳＷ６２０細胞などの細胞系の活性化におけるｓＣＤ１４の重要性を指摘している。ＳＷ６２０細胞をＢ．サブチリス細胞壁で刺激したところ、この応答には血清の存在を必要とした。図１５に示すように、ウサギ抗マウスＣＤ１４ポリクローナル抗体は、ＬＰＳで刺激した活性化システムで観察されたのと同程度にこれらの細胞によるＩＬ−８放出をブロックした。本明細書では示さない研究において、グラム陽性細菌細胞壁調製物が、ＬＰＳで観察されたのと同程度にヒト内皮細胞活性化を誘導することも見いだされた。これらの結果は、可溶性ＣＤ１４が、ヒト非ＣＤ１４保持細胞のグラム陽性細胞壁依存性の活性化を媒介することを示す。
グラム陽性細胞壁又はリポアラビノマンナンのＣＤ１４への結合
ＣＤ１４と細菌の細胞エンベロープ成分との間の直接的相互作用を示す生化学的証拠を２つの独立した実験によって提供する。グラム陽性細胞壁へのｓＣＤ１４の結合を³⁵Ｓ−ｓＣＤ１４を用いて得た。図１６に示すように、³⁵Ｓ−ｓＣＤ１４は細胞壁に結合し、その結合は過剰の未標識ｓＣＤ１４の存在によって阻害され、また図１６Ａに示すように³⁵Ｓ−ｓＣＤ１４を１００℃、５分加熱して変性することによって結合はなくなった。
ＦＩＴＣ−ＲｅＳ９５／ＬＰＳとｓＣＤ１４との間の相互作用をモニターするために分光蛍光アッセイを開発した。ＦＩＴＣ−ＲｅＳ９５／ＬＰＳがｓＣＤ１４と結合すると、蛍光強度の顕著な増加が観察され、これは迅速に数分間起きる（図１６Ｂ、上の線）。反応混合物に過剰のＬＡＭを添加すると、ＦＩＴＣ−ＲｅＳ９５−ＬＰＳの蛍光強度の増加の顕著な抑制が観察された（図１６Ｂ、中間及び下の線）。これらのデータはｓＣＤ１４への結合に関してＬＡＭとＬＰＳが競合することを示す。
ここに示す研究に基づいて、骨髄受容体ＣＤ１４がグラム陰性細菌由来のＬＰＳ、マイコバクテリアリポアラビノマンナン及びグラム陽性細胞壁の成分などの広範な種類の細菌エンベロープ分子を認識する分子として作用すると考えられる。ＣＤ１４を介するこれらのアゴニストとマクロファージとの相互作用が細胞活性化に導く。分子認識のメカニズムに限定されることを望むものではないが、ＣＤ１４は複数の微生物リガンド結合特異性をもつパターン認識受容体であると考えられる。
脊椎動物における感染性微生物に対する免疫応答は、２段階で起こり、最初は非適応性（先天性）免疫で、次いで特異的クローン防御の発展による適応性免疫が起こる。骨髄細胞は微生物に対する防御の非適応期（初期）で中心的役割を果たす。マクロファージによる感染性粒子の認識によって、非特異的防御の迅速な活性化が起こり、モノカイン（ＴＮＦ、ＩＬ−１又はＩＬ−６）、各種酵素、及び酸素及び窒素ラジカルが産生される。Janeway,前出, 1992が最近提案するように、非クローン性の免疫受容体が病原性微生物の共通の又は高度に保存された構成物を検出する可能性が極めて高い。進化の過程で広い認識性質をもつこのような受容体を選択してきたのであろう。同じ受容体を介する異なる微生物の表面構造の相互作用が先天性免疫に典型的な非特異的応答の引き金を引くのであろう。本明細書の実施例で示すような微生物構造に対する多特異性をもつＣＤ１４はこのような受容体の原型となる例である。哺乳動物細胞のその他の表面タンパク質は種々の細菌成分を認識する。スカベンジャー受容体ファミリーのメンバーは確かにこのような性質をもつことが示されている（Krieger, et al., J. Bio. Chem., 268:4569-4572, 1993）。しかしながら、ＣＤ１４とは異なり、この群のタンパク質は細胞活性化に関与しないが、細胞外環境からリガンドを取り込む機能をするように思える。
多特異性の非適応性受容体によって認識される微生物構造は病原体の間で高度に保存されており、また微生物の完全性又は病原性にとって決定的であらねばならない。ＬＰＳはグラム陰性細菌群にとってこれらの基準を満たす。ＬＰＳはグラ陰性病原性にとって必要であり、高度に保存されており、ＣＤ１４によって認識される。リポアラビノマンナン（ＬＡＭ）もマイコバクテリアにおける保存された決定的病原性エンベロープ構造であり（Chatterjee, et al., Infect. Immun., 60:1249-1253, 1992）、ＣＤ１４を介して細胞活性化の引き金となる。ＬＰＳとＬＡＭ構造には有意な類似がある。どちらの分子も両親媒性であり、一端に疎水性の脂質アシル鎖と、他端に親水性の多糖をもつ（Tobias, et al.,前出; Prinzis, et al., J. Gen. Microbiol., 139:2649-2658, 1993）。
グラム陽性細胞壁では、ＣＤ１４を介するマクロファージ活性化を司る構造はまだ分かっていない。しかしながら、試験した全ての株由来の細胞壁がＣＤ１４依存的にマクロファージを活性化したので、この構造は種々のグラム陽性細菌で高度に保存されていると思われる。ＣＤ１４と結合するグラム陽性細胞壁の主要なリガンドとなる候補には、ムロペプチドのモノマー又はオリゴマー、あるいはテイコ酸断片が含まれる。
ＣＤ１４をもたない細胞、即ち内皮細胞及び上皮細胞が可溶性ＣＤ１４依存性経路を介して広範な種々の微生物構造に応答することを本発明者らは発見した。これらの細胞はいったん活性化されると、組織中で白血球をやり取り（trafficking）するのに決定的であり、サイトカイン、酸素及び窒素ラジカルを分泌し、凝集を調節する。従ってこれらの細胞はマクロファージと協力して感染性微生物に対する免疫の初期の非特異的事象に関与するのかも知れない。内皮細胞及び一部の上皮細胞も有力な抗原提示細胞であり、免疫の適応性クローン期の開始にマクロファージ又は樹枝状細胞とともに関与するかもしれないことは興味深いことである（Hughes, et al., Immunol. Rev. 117:85-102, 1990）。
最近の研究（Heumann, et al.,前出）において、グラム陽性細胞壁産物によるヒト単球の活性化には血清が必要であることが示された（Heumann, et al.,前出）。この著者は、大量の（１−１０μｇ／ｍｌ）グラム陽性細胞壁によって引き起こされた一次的ヒト単球の活性化を抗ＣＤ１４ｍＡｂ（ＭＹ４）がブロックしないことを見いだした。我々の研究では、低濃度のアゴニスト（３００ｎｇ／ｍｌ及びそれ以下）の場合のみでＣＤ１４依存性が観察された。さらに、抗ＣＤ１４ｍＡｂであるＭＹ４はＣＤ１４へのグラム陽性細胞壁の結合にとって決定的でない機能的ドメインを認識する。これらの事実によりこれらの研究の明らかに矛盾した結果を説明することができるであろう。
Ｃ３Ｈ／ＨｅＪマウス由来のマクロファージを用いる実験は、各種のアゴニストがＣＤ１４を介する同様の細胞応答を誘導するという事実にもかかわらず、これらのアゴニストは同じ活性化経路を共有しないように思われる。Ｃ３Ｈ／ＨｅＪマクロファージは典型的にはＬＰＳに耐性であるが、その他のアゴニスト、例えばＬＡＭ（Chatterjee, et al.,前出）又は完全加熱殺菌したグラム陽性細菌（Freudenberg and Galanos, Infect. Imuun., 59:2110-2115, 1991）で活性化されうる。重要なことは，Ｃ３Ｈ／ＨｅＪマクロファージがＣＤ１４依存的にＬＡＭ及びグラム陽性細胞壁と応答することを我々が見いだしたことである。ＣＤ１４ＧのＰＩに付着した膜形が推定の膜貫通トランスデューサーを介する細胞内シグナル伝達を仲介することが以前に提案されている（Ulevitch and Tobias,前出）。本明細書で議論する実験の結果は、同じ推定のトランスデューサーが異なるアゴニストに対する異なるエピトープをもつか、あるいは細胞表面に異なるトランスデューサー分子が存在し、ＣＤ１４によって提示される特異的アゴニストだけを認識するかのいずれかであることを示唆する。そうするとＣ３Ｈ／ＥｌｅＪマウスにおける非常に特異的なＬＰＳ欠失が多特異的シグナルトランスデューサーのＬＰＳ部位における突然変異によって、あるいはＬＰＳ特異的シグナルトランスデューサーの機能的欠失によって説明できる。
総括すると、ＣＤ１４はその膜結合形（骨髄細胞）においてか、あるいはその可溶性形（内皮細胞及び上皮細胞）において、病原性細菌のエンベロープからの広範な種類の保存性分子に応答して細胞活性化を媒介することを我々は示す。我々は、ＣＤ１４が病原性微生物に対する非適応性で非特異的な初期免疫応答のための受容体／媒介体の原型であることを提案する。ＣＤ１４機能を調節する治療剤は多くの致死的細菌性疾患の治療及び／又は予防に大きな希望を与える。細菌性敗血症の場合、抗ＣＤ１４抗体を用いてＣＤ１４機能をブロックすることにより、グラム陰性細菌及びグラム陽性細菌に対する有害かつ圧倒的な宿主の応答を防止することができる。
実施例
以下に実施例を開示するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
実施例１〜11は、単球／マクロファージ系のヒト細胞が膜平面で移動可能な細胞表面受容体を介してLPS-LBP複合体に結合することを確立した実験である。実施例12は、抗ＣＤ１４抗体がLPS-LBP複合体のＣＤ１４に対する結合を特異的に阻害できることを説明する。実施例13〜15は、ＣＤ１４がLPS-LBP複合体に特異的に結合し、そしてその結合がＭＯからのＴＮＦ分泌を誘導するということを証明する。実施例16は、抗ＣＤ１４mAbsが、ヒト血中でLPS-LBP複合体誘導ＴＮＦ分泌を阻害するということを証明する。実施例17は、実施例１〜16の結果の概要と検討とを提供する。
１．試薬
ＬＢＰは、ウサギ急性期血清（Tobiasら、前出、1986）から精製し、銀染色ゲル上で均一であると思われた。抗−ウサギＬＢＰはヤギ中で増加させた。ＭＢＰは、R.A.B.Ezekowitz博士(Boston, MA)より入手した。細菌／透過性−増殖因子(BPI)は、J.Gabay博士(New York, NY)より入手した。Salmonella minnesota（Re595または野性型）からのＬＰＳはList Biological(Cambell, CA)から入手した。ＣＤ１８に対するモノクローナル抗体(mAbs)ＩＢ４およびFcyRIIIに対するモノクローナル抗体(mAbs)３Ｇ８は、Wrightらの論文(Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 80:5699-5703, 1983)に掲載されている。ＣＲ１に対するmAB 543はShhreiber博士(St. Louis, MO)より、FcyRIおよびFcyRIIに対するmAbs 22およびIV. 3は、Fanger博士(Hanover, NH)より入手した。パイロジェンフリーのヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）は、Armour Pharmaceuticalsより入手し、パイロジェンフリーのＰＢＳとDGVB++はWhitaker MA Bioproductsから入手した。ＮＨＳ−ビオチン、スルフォ−ＮＨＳ−ビオチン、およびストレプトアビジンはPierce Chemicalから入手した。
２．表面
組織培養用プラスチック表面を、25μg/mLのタンパク質（抗体、ＬＢＰ、またはＨＳＡ）、または１（μg/mL)/μg/mLのＬＰＳで、20℃にて１時間、インキュベートした。免疫複合体を形成するために、ＨＳＡ−被覆表面を、抗ＨＳＡ抗血清（1:50）とともに、さらに30分間、インキュベートした。いくつかの場合には、その後、ＬＰＳ被覆表面を10μg/mLのＬＢＰとともに20℃にて30分間インキュベートした。過酸化水素産生のアッセイのために、すべての被覆表面を、貪食細胞を添加する前に１時間、１mg/mLのＨＳＡと接触させた。被覆表面は、アッセイ前に注意深くパイロジェンフリーのＰＢＳで洗浄した。
３．細胞
単球由来マクロファージ（ＭＯ）は、Wrightら（J. Exp. Med., 156:1149-1164, 1982）が記載したように、テフロンビーカー中で３〜10日間、精製したヒト単球を培養して得た。新鮮な単球の単層を、末梢血単核球をタンパク質被覆プラスチックに37℃で45分間付着させて得た。ＰＭＮは、Englishら（J. Immunol. Methods, 5:249, 1974））の方法によって、新鮮血から精製した。Ｔ細胞は、赤血球とのロゼット形成により精製したが、J. Ming(Rockfeller U.)より入手した。ヒト臍帯血内皮細胞単層（Loら、J. Exp. Med., 169:1779-1793, 1989）は、S.K.Lo博士（Rochfeller U.）より入手した。
ヒツジ赤血球（Ｅ）を、Wright（前出、1982）の記載のように、IgG(EIgG)またはIgM(EIgM)で被覆した。
C3biを、２〜10×10⁸EIgMを10％のC5−欠乏ヒト血清(Sigma)１mL中で37℃にて30分間インキュベートすることによって、EIgM上に堆積(deposit)させた。ついで、赤血球を洗浄し、2.5mMのエチレンジアミン四酢酸塩(EDTA)を含む緩衝液中で、10分間、0℃にてインキュベートした。得られたEC3biは、ＭＯとのEDTA−抵抗性ロゼット形成によってアッセイしたように、C3bを有していなかった。
Ｅを、Wrightら(J. Exp. Med., 164:1876-1888,1986)による記載に従って、ＬＰＳで被覆した。調製に使用したＬＰＳの量は、ELPS^hi(1〜10μg/４×10⁷E)またはELPS^lo（0.2〜１μg/４×10⁷E）を得るために変化させた。等容のELPS^lo(10⁸/mL)とＬＢＰ(10μg/mL)とで37℃で20分間インキュベートすることによって、ELPS^loをＬＢＰで被覆した。得られたＬＢＰ被覆ELPS（リガンド被覆Ｅ）を洗浄し、直ちに使用した。
幾つかの実験においては、Ｅはまた別の方法によってＬＢＰで被覆された。最初に、５×10⁸Ｅを250μgのスルホ−ＮＨＳ−ビオチンとともに0.1Mの炭酸ナトリウム液(pH 9.2)中にて５℃で20分間インキュベートすることによってＥをビオチニル化し、そして、50μgのＬＢＰを５μgスルホ−ＮＨＳ−ビオチンとともにインキュベートしてＬＢＰをビオチニル化し、ＰＢＳに対して透析した。次に、ビオチニル化タンパク質を、ストレプトアビジン架橋を介してビオチニル化されたＥと連結した。10⁸の、洗浄され、ビオチニル化されたＥ（ＥＢ）を10μgのストレプトアビジンとともに20℃にて30分間インキュベートし、アビジン被覆赤血球(EBAV)を得た。蛍光化したストレプトアビジンを用いた予備実験では、EBAVが均一で強い蛍光性を示し、凝集は見られなかったことが示された。2.5×10⁷の洗浄されたEBAVを、2.5μgのビオチニル化ＬＢＰとともに、30分間、20℃にてインキュベートし、EBAV-LBPを得た。
Salmonella typhimurium LT2 Ga/Eを、ガラクトースの存在下または非存在下で増殖させて、完全なＬＰＳまたは末端切断型のＬＰＳを有する細胞をそれぞれ得た（Wrightら、前出、1986）。対数増殖培養物を洗浄し、フルオレセインで標識し、そしてすでに記載したように（Wrightら、前出、1986）、ＰＢＳ中で２×10⁸/μLに調整した。
４．アッセイ
ＬＰＳ−被覆赤血球の凝集（実施例３）は、丸底のマイクロテストプレートにおいて10μLの希釈ＬＢＰ中に含まれる10⁶のELPS^hiを21℃で30分間振盪して測定した。凝集は、沈降パターン(settling pattern)から読み取った。
リガンド被覆Ｅの（実施例３）ＭＯに対する結合は、Wrightら、前出、1982に記載されたように測定した。すなわち、Terasakiの組織培養プレートをＨＳＡまたは他のタンパク質（実施例２）で被覆し、そして５μLの細胞（３mMのグルコース、0.5mg/mLのＨＳＡ、および0.3u/mLのアプロチニン(Sigma)を含むPBS中0.5×10⁶/mL）を37℃にて45分間インキュベーションして樹立した。リガンド被覆Ｅおよび示されたタンパク質を単層に添加した。Ｅを10分間０℃にて静置し、その後、プレートを37℃で15分間温めた。付着しなかったＥを洗浄して除去し、接着したＥを位相差顕微鏡で点数付けを行なった。フルオレセイン化Salmonellaの結合を、Wrightら、前出、1986に記載されたような、37℃にて15分間のインキュベーションを採用する同様の方法で評価した。結果を、100ＭＯあたりのＥの数または細菌数である付着指数として報告した。リガンド被覆Ｅの貪食は、ＥとＭＯとのインキュベーションを37℃にて45分間行うことを除いては同様の方法（Wrightら、前出、1986）によって測定し、そして、摂取されなかったＥをウェルの点数付けの前に低張の培地に軽く接触させて溶解させた。
５．ＬＢＰは、赤血球膜に挿入されたＬＰＳに結合する。
ELPS^hiに、できる限り少量の0.5μg/mLのＬＢＰを添加すると、凝集が起こった。ＬＰＳはリン脂質との疎水的な相互作用によってＥの膜中に分配する（partition）ため、この観察はＬＢＰはマルチmerを形成するための能力を有するということを示唆する。ELPSは強くは凝集されず、穏やかなピペッティングで分裂され得る。
６．ＬＢＰは、ＥＬＰＳ及びSalmonellaのマクロファージに対する結合を増強する
グラム陰性菌およびＬＰＳ被覆赤血球は、白血球上の受容体のCD18複合体のメンバーとの相互作用を介してＭＯに結合する（Wrightら，前出、1986）。それゆえ、その相互作用を乱すためのＬＢＰの能力を試験した。初期の研究では、高レベルのＬＰＳで調製されたＥを使用した。これらのELPS^hiはＭＯに貪欲に結合し、そしてＬＢＰを添加すると結合がわずかに増強された。この増強の性質を試験するために、Ｅを低レベルのＬＰＳで調製した。ＭＯの単層を５μg/mLのＬＢＰの存在下または非存在下でELPS^loとインキュベートした。ELPS^loにはＭＯはほとんど結合しないが、ＬＢＰを添加することにより結合が劇的に増強された（図１）。増強された結合は、１μg/mLのＬＢＰで最大効果を示し、濃度依存的であった。この結果の特異性は、他の急性期反応物であるマンノース結合タンパク質が100μg/mLの高濃度でELPS^hiのＭＯに対する結合に影響しないこと；他のＬＰＳの結合タンパク質であるＢＰＩが10μg/mLの高濃度で結合に影響しないこと；そして、ポリクローナル抗ＬＢＰ抗血清（１:200）がＬＢＰによるELPS^loのロゼット形成において20倍の減少を引き起こしたという観察によって示された。
ELPSとＭＯとの相互作用を増強するためのＬＢＰの能力もまた、赤血球膜中のＬＰＳの量に依存した（図２）。ＬＢＰは、ELPSとＭＯとの間の直接的な相互作用を持続させるために必要とされる量よりも20〜100倍少ないＬＰＳで調製されたＥの結合を、効果的に仲介することができた。
末端切断型のＬＰＳを発現するグラム陰性菌株（Ｒ型株；（rough strain））にはＭＯが貪欲に結合するが、完全なＬＰＳを有するＳ型株（smooth strain）にはほとんど結合しない（Wrightら、前出、1986）。ＬＢＰはＳ型およびＲ型のＬＰＳのいずれにも均等によく結合するため(Tobiasら,前出, 1989)、ＬＢＰがＳ型のSalmonellaにオプソニン作用をするための能力を試験した。表IIに示したように、ＬＢＰを添加するとＳ型SalmonellaのＭＯへの結合が劇的に増強された。

表IIより、ＬＢＰの添加またはＲ型Salmonellaの結合を増強させたが、その効果は、オプソニン作用を受けていない菌の貪欲な結合のため、Ｓ型のS.typhimuriumで見られたものよりも劇的に現れなかった。
７．ＭＯは、ＬＢＰのＬＰＳとの複合体を認識する。
実施例６においては、ＬＢＰをＭＯとELPSとともに加えた。ＬＢＰがＭＯまたはELPSに結合するかどうかを決定するために、細胞をそれぞれＬＢＰとともにインキュベート（ＬＢＰで処理）し、洗浄し、ついで一緒にした。この研究の結果を表IIIに示した。

ＬＢＰによるELPS^loの前処理は、共培養実験で観察されたと同じ濃度依存曲線（データは示していない）で、ＭＯに対する結合を大きく増強した（表III）。この結果より、ＬＢＰがELPSと安定的に結合し、そして表面結合ＬＢＰがＭＯによって認識されることを示した。他方、ＭＯの前処理は、ELPSのその次の結合に影響しなかった（表III）。
ELPSの表面上のＬＢＰはＬＰＳと複合体化する。ＭＯが、ＬＰＳの非存在下でＬＢＰに結合するかどうかを決定するために、ＬＢＰをビオチニル化し、そしてストレプトアビジン被覆赤血球に接着させた。生じたEBAV-LBPにはＭＯが結合しないが（図３）、ＬＰＳの添加により、ＭＯに対するELPSの強い付着を引き起こした。ＬＰＳは、ＬＢＰに結合することによって、EBAV-LBPの付着を増強するように思われる。ELPSの付着を引き起こすために必要とされるＬＰＳの量は、ＬＢＰを欠いているＥの付着を引き起こすのに必要とされる量よりも50倍少なかったためである（図３）。さらに、ＬＰＳ処理ELBPは、ELPSに結合しないＣＤ１８−欠損ＭＯに貪欲に結合する。従って、ＬＰは、ＭＯに認識されるためにＬＰＳと複合体化されなければならない。
８．ＬＢＰは単核貪食細胞に限定される可動性受容体によって認識される
ＬＢＰ処理ELPSは事実上100％の単球およびＭＯに結合し、これは、結合活性がこれらの集団のすべてのメンバー上に存在することを示唆する。ＬＢＰが他の細胞型と相互作用するかどうかを決定するために、ＰＭＮの単層、Ｔ細胞、および臍帯血管内皮細胞をＬＢＰ処理ELPS^loとともにインキュベートした。結合は観察されなかった。同様に、時折ＭＯ標品を混入するリンパ球は、ＬＢＰ被覆Ｅへの結合を示さなかった。従って、ＬＢＰ被覆粒子への結合能は、単核球貪食細胞に限定される性質であるらしい。
ＬＢＰの特異的受容体の存在は、ＭＯをＬＰＳとＬＢＰとの複合体で被覆した表面上に広げることによって証明した。表IVには、表面結合ＬＢＰは強力にＬＢＰ処理ELPSの結合をダウンモジュレート（down-modulated）するが、結合しているEIgGまたはEC3biに影響しなかった。

上記の結果より、ＬＢＰは膜の平面において移動性である分子によって認識されることが示され、この受容体はＣＲ３およびFcRと異なることが示された。
９．ＬＢＰはＣＲ３またはＦｃＲと相互作用しない
ＬＰＳはＣＲ３およびCD18複合体の他のメンバー（LFA-1およびp150,95）（Wrightら、前出、1986）によって認識されることが知られていることから、少量のＬＰＳのこれら受容体との相互作用を促進することによって、ＬＢＰがELPSの結合を増強するということが可能のようである。しかしながら、幾つかの観察によれば、この可能性は除外される。表Vに示された結果から、ＬＢＰは、先天的なＣＤ１８欠損症の患者２例から単離された単球に対するELPSの強力な結合を引き起こすことが示された。

ＬＢＰ処理ELPS^loの認識におけるＣＤ１８分子の関与についてのさらなる証拠は、ＭＯを抗CD18mAbsで被覆した表面上に広げることによって、ＭＯの頂表面（apical surface）からＣＤ１８分子を消失させるという実験から得られた。MaIB4は、EC3biおよびELPS^hiの結合を低下させるが、ＬＢＰ処理ELPS^loはこれらの細胞に正常に結合する（表４）ということによって示されるＣＤ１８分子をダウンモジュレートする。最終的に、Ca++およびMg++の消失は、ＣＤ１８複合体へのC3biおよびLPS双方の結合を完全に阻害する（Wrightら、前出、1982；およびWrightら、前出、1986）が、ＬＢＰ処理ELPS^loの結合はEDTA含有緩衝液中で均等であった。
ＬＢＰ認識におけるFc受容体の関与もまた除外される。免疫複合体被覆表面上に細胞が広がると、EIgGの結合によってアッセイされたようなFc受容体を強力にダウンモジュレートする。しかしながら、ＬＢＰ被覆ELPS^loの結合は影響を受けない（表IV）。同様の研究から、FcRI、FcRII、FcRIII、およびCR1に対する表面結合マンノース結合タンパク質および表面結合mAbsは、ＬＢＰとＭＯとの結合に対して全く影響しないということが示された。これらのデータは、ＬＢＰはＣＲ１、ＣＲ３、ＦｃＲ又はマンノース結合タンパク質によって認識されないことを示唆する。
10．ＬＢＰ受容体はＦｃ−仲介貪食能を増強する
抗EIgGの添加が、ＭＯによって貪欲に貪食されるＬＢＰ被覆ELPS^loを生じさせた。最大貪食の半分（half-maximal phagocytosis）に必要な抗EIgGの用量は、被覆されていないＥの貪食を誘導するために必要とされる量の１／５であった（図４）。かくして、ＬＢＰは貪食応答を誘導するために相乗的にIgGと作用するように思われる。以前の報告（Ehlenbergerら、J. Exp. Med., 145:357-371, 1977）と一致して、Ｅ上のC3biの堆積が、IgGによって仲介される貪食を増強し、そしてこの増強の程度はＬＢＰに起因するそれと同様であった（図４）。
ＬＢＰのみによって仲介される貪食もまた試験された。ＬＢＰ被覆ELPSはＭＯと華麗なロゼットを形成するが、結合されたＥは、休止ＭＯ、フィブロネクチン−ＭＯ、またはＰＭＡ刺激−ＭＯのいずれによっても貪食されなかった。並行して行った研究より、EC3biのフィブロネクチン−およびＰＭＡ−刺激の強い貪食が示された。ＬＢＰ仲介貪食が存在しないことについて考えられる説明は、赤血球の表面上のＬＰＳの高度の横方向の移動性である。ＬＰＳはＭＯに付着したＥの極を「キャップ」できるはずであり、進化している仮足をもつ原生動物を導くためのＥの周辺上に不適当なリガンドが残っている。このようなキャッピングを妨げるために、上記実施例４に記載されたように、ビオチニル化ＬＢＰをビオチニル化Ｅに連結した。再び、この方法で結合されたＥは、Ｅ被覆休止ＭＯまたはＥ被覆ＰＭＡ二重刺激ＭＯ（食作用係数＝０）のいずれによっても貪食されなかった。並行して行った研究から、抗ＣＤ１８mAb(IB4)のビチオニル化F(ab)₂を用いたものは速やかに貪食されるということを示した（食作用係数−482）。従って、ＬＢＰの受容体は、それら自身によっては被覆赤血球の貪食を開始できない。
11．ＬＢＰ受容体は酸化的破裂（burst）を開始しない
ＬＢＰとその受容体との相互作用がＭＯからの細胞障害性応答を開始させるかどうかを決定するために、被覆表面とＭＯとの相互作用の間の過酸化水素の産生を測定した。
被覆表面上にＭＯが拡散する間の過酸化水素の遊離は、delaHarpeら（J. Immunol. Methods, 78:323-336, 1985）によって記載されたように測定した。すなわち、３〜４×10⁴のＭＯ（第３日または４日）を、西洋ワサビペルオキシダーゼと2.4nmoleのスコポレチンを含む、タンパク質で被覆した組織培養ウェルに加えた。このプレートを37℃でインキュベートし、スコポレチンの消費を一定間隔で自動化蛍光プレートリーダーを用いて測定した。１試料について３ウェルで試験した結果を平均し、ウェル当たりで産生されたnmole過酸化水素として表した。対照に刺激剤であるＰＭＡ（100ng/ml）を添加することにより、過酸化水素が速やかに放出され、この放出は試験されたすべての被覆表面について速度および程度が同じであった。
図５は、ＬＰＳ被覆表面に対するＭＯの結合が過酸化水素のわずかな放出を引き起こすことを示す（免疫複合体またはＰＭＡによって刺激された場合の12％）。しかしながら、ＬＢＰで被覆した表面は、ベースラインを超える過酸化水素の遊離を生じさせなかった。さらに、ＬＰＳ被覆表面に対するＬＢＰの添加により、ＬＰＳに起因する遊離がブロックされ、こうしてこの実験においてＬＢＰがＬＰＳと効果的に相互作用することが確認された。並行して行った実験より、ＬＢＰまたはＬＰＳ＋ＬＢＰ被覆表面上におけるＭＯの拡散がＬＢＰ処理ELPS^loの結合のダウンモジュレーションを引き起こすことが示され、かくしてＬＢＰ受容体の連結が起こることが確認された。従って、ＬＢＰ受容体は酸化的破裂の引き金となることはできないようである。
12．抗ＣＤ１４抗体によるＭＯに結合するLPS-LBP複合体の阻害
ＭＯに対するLPS-LBP複合体の結合を阻害する３つの抗ＣＤ14 mAbsの能力を試験した。ヒトＭＯの単層を、０μg/mL、0.15μg/mL、0.5μg/mL、1.5μg/mL、５μg/mL、および15μg/mLの濃度のmAbである3C10、60bまたは26icとともに０℃にて15分間インキュベートした。ＬＢＰ処理ELPS^lo（実施例３）への単層の結合能を実施例４で記載したようにアッセイした。
この研究の結果を実施例６に示したが、mAb 3C10と60bは、使用されたmAbの濃度が高くなるにつれて減少する付着指数を与える一方、mAb 3C10と60bによって認識されるものとは異なるエピトープを認識するmAb 26icは、対照のmAb濃度（０μg/mL）で達成されるレベル以下ではこの指数を減少させず、すなわち、結合を阻害しなかったことを示す。このため、mAbs 3C10と60bとはＭＯに対するLPS-LBP複合体の結合阻害能を有している。阻害の特異性は、ＣＤ１１ｂ、ＣＤ１８、ＣＤ１６およびＨＬＡに対するmAbsが結合を阻害しなという観察によって示される（データは示していない）。
対照的に、図７は、mAbs 26ic、3C10および60bが、すべてＭＯに対するLPS-LBP複合体の結合をダウンモジュレーションすることができたことを示す。モノクローナル抗体は、ＭＯ単層を樹立する前に組織培養プレートに付着させた。これは、mAbを25μgタンパク質/mLの濃度でプレート中に混合し、プレート中のmAbを60分間20℃にて維持し、その後、ＭＯをまく前にプレートから未結合のmAbを洗い落とすことによって達成される。他のmABsではなく、抗ＣＤ１４ mAbで被覆された表面に付着するＭＯは、LPS-LBP複合体で被覆された赤血球の結合を減少させることを示した。かくして、付着したマクロファージの基底表面に再分散されるＣＤ１４は、LPS-LBP複合体の結合に必要である。この結果より、ＣＤ１４がLPS-LBP複合体の受容体として作用するという図６の結論が確認された。
13．ＣＤ１４は、LPS-LBP ＬＢＰ複合体に特異的に結合する
精製されたＣＤ１４の、LPS-LBP複合体への特異的結合能を試験した。ＣＤ１４を最初に抗ＣＤ１４ mAbで表面を被覆し、次に単球のTriton X-100抽出物で被覆することによってＣＤ１４を表面に固定した。10⁸個の単球を１％のTritonを含むＰＢＳに懸濁し、０℃で15分間インキュベートし、その後、不溶性物質を遠心して除去した。ＣＤ１４を含む抽出液を抗体被覆表面にアプライした。この操作により、ＣＤ１４で被覆された表面が得られた。ＣＤ１４以外の抗原に対する抗体を担持している対照ウェルでは、この操作により、ＣＤ１４以外のタンパク質で被覆された表面が得られた。完全に洗浄した後、LPS-LBP複合体で被覆された赤血球を被覆したウェルに添加し、そして赤血球（ELPS^lo）の付着を写真によって詳細に記録した。mAb 26icを介して表面に吸着されたＣＤ１４は、LPS-LBP結合部位への結合をブロックしないＣＤ１４に対する抗体であるが、被覆された赤血球に強く結合された。他の抗原で被覆された表面はこの活性をもっていなかった。このため、精製されたＣＤ１４分子はLPS-LBP複合体への結合能を有する。この観察は、ＣＤ１４がLPS-LBP複合体のための受容体として作用するということを立証した。
14．LPS-LBP複合体は、ＭＯ中のＴＮＦ分泌を誘導する
ＬＢＰ、加熱処理ＬＢＰ、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）またはウシ胎児血清（ＦＣＳ）の存在下における、ＬＰＳの、腹腔浸出マクロファージ（ＰＥＭ）におけるＴＮＦ分泌誘導能を試験した。
ウサギPEMを産生させるために、ＮＺＷウサギ（２〜2.5kg）に10μgのＢＣＧ細胞壁標品（ＢＣＧ細胞壁、Ｒ−200、Ribi Immunochem Research, Inc. Hamilton, MT）を含む35鉱物油（Drakeol 6VR, Pennereco, Bulter, PA）を腹腔内投与した。３日後、120mgのペントバルビタールナトリウム（Western Medical Supply Inc., Arcadia, CA）を静脈内に単回投与し、続いて、２mMのＬ−グルタミン、１mMのピルビン酸ナトリウム、50U/50μgのペニシリン／ストレプトマイシン／mL、10mMのHepes、２％のウシ胎児血清および５U/mLのヘパリンを添加した500mLの氷冷RPMI-1640(GIBCO, Grand Island, NY)で腹膜の無菌的洗浄を行った。回収された細胞を遠心し（1000×g、10分間、４℃）、ＦＢＳを含まない上記の培地（無血清培地）に再懸濁した。さらに遠心し、無血清培地に再懸濁し、血球計算板を用いて細胞数を数え、150cm²のフラスコに８〜10×10⁷マクロファージ／フラスコの密度でまいた。37℃、５％CO₂で２時間後、激しく洗浄することによって非付着細胞をフラスコから除去し、20mLの無血清培地を再補充した。鉱物油誘導腹腔浸出細胞は、Wrightの染色を行った細胞遠心調製物を用いて試験したときには、約60％のマクロファージ、35％の好中球および５％のリンパ球を含んでいた。プレーティングと洗浄の後、付着細胞は、90％以上のマクロファージを含んでいた。かくして、産生されたウサギＰＥＭをSalmonella minesota Re595から単離したＬＰＳ(100pg/mL)で上記のタンパク質の存在下または非存在下に12時間処理し、無細胞上清をMathisonら（J. Clin. Invest., 81:1925, 1988）に記載されたRuffら（Lymphokines, 2:235-242, 1981）のL929アッセイの改良法を用いて、上記のようにＴＮＦについてアッセイした。
すなわち、L929細胞（CCL1、American Type Culture Collection, Rockville, MD）を10mMのHepesと10％ウシ胎児血清（Hyclone, Rehatuin F.S., Reheis Chemical Co., Pheonix, AZ）を添加したRPMI 1640中で維持した。集密状の培養物（３〜４×10⁷ cells/75cm²フラスコ）を0.5％トリプシンを含む５mMのＤＥＴＡおよび10mMのHepes含有生理食塩水、pH7.4でさっと洗浄し、アクチノマイシンＤ（１μg/mL）を含む新鮮培地に再懸濁し、96ウェルプレートに添加した（５〜７×10⁴ cells/ウェル）。培養２時間後、段階希釈サンプルを各ウェルに添加し、プレートを終夜インキュベートした（５％CO₂、37℃）。ついで顕微鏡で判定し、培地をデカントして捨て、ウェルを0.2％のクリスタルバイオレット、10％のホルマリンおよび0.01Ｍのリン酸塩の溶液、pH７〜7.5で５分間満たし、水で完全に洗浄して乾燥した。溶解の程度を、IBM-PCコンピューターと接続したBio-Tek Model EL310プレートリーダー（Bio-Tek instruments, Inc., Burlington, VT）を用いて分光分析（550nm）して定量した。アッセイ結果を、50％の細胞の溶解を生じさせるＴＮＦの量として１単位（Ｕ）が定義される、U/mLで表した。
通常、１アッセイあたり８〜12枚のプレートを使用する。各プレートには、２つの実験室標準品、Re595 LPS処理RAW246.7細胞（６×10³U/mL）からの馴らし培地、およびRe595 LPS処理ウサギＰＥＮ（1.3×10³U/mL）からの馴らし培地が含まれる。これらの標準品は、順番に、ヒト組換え型TNF（Cetus Corporation, Emeryville, CA, ２×10⁷U/mg）に対してキャリブレーションし、アッセイの結果をそれに応じて標準化した。１サンプルについて４ウェルを用いてアッセイし、0.12±0.08（ＳＤ）の変動係数（ＳＤ／平均値）を観察した。このアッセイを用いて、10pg/mL程の少量のウサギマクロファージ由来ＴＮＦ（比活性１×10⁸U/mg）が検出された。しかしながら、10％を超える血清濃度は非特異的なL929細胞の球形化と付着の低下の原因となるため、血清中のウサギＴＮＦの低濃度側の検出限界は20U/mL（0.2ng ＴＮＦ/mLに相当）であった。
図８に示したように、この研究の結果から、ＴＮＦはＬＰＳと活性なＬＢＰとが両方存在する場合に産生されるに過ぎないことが示された。Re595LPSはSalmonellaのＲ型株由来であり、E.coli 0111:B4からのＬＰＳなどのＳ型株の生物が用いられた場合にも同じ結果が得られ、ここで観察された効果の普遍性が示された。
15．ＬＳＰのＬＢＰへの結合は、トリプシン分解からＬＢＰを保護する
50mMのHepes、10mMのEDTA含有緩衝液pH7.4中に、終濃度0.3mg/mLのＬＢＰを含むサンプルを調製した。１アンプルについて、ＬＰＳを終濃度0.125mg/mLとなるように混合した。第二のサンプルに硫酸デキストランを終濃度0.125mg/mLとなるように混合した。ついで、３つのサンプルすべてトリプシンを終濃度２μg/mLとなるように混合した。アリコートを、37℃で維持しながら５分、25分、60分および120分の間隔でトリプシン処理サンプルからとった。その後、このアリコートを，12％ゲルを用いたドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（SDS-PAGE）で分析した。図９に示したように、この研究の結果より、ＬＢＰによりＬＰＳの結合は酵素的な分解からＬＢＰを保護することを示した。ＬＰＳは、分解を妨げるようにＬＢＰのコンフォメーション変化を誘導するか、または分解部位への接近を立体的に障害することによって、ＬＢＰを保護することができる。
16．抗−ＣＤ１４モノクローナル抗体は、ヒト全血中におけるLPS-LBP誘導ＴＮＦ産生を阻害する
抗ＣＤ１４ mAbの、ヒト血液におけるＭＯによるＴＮＦの分泌阻害能を、Espevikら(J. Immunol. Meth., 95:99-105, 1986)によって記載されたＴＮＦ−誘導細胞障害活性アッセイを用いて試験した。すなわち、ヘパリンで抗凝固処理したヒト全血を調製し、終濃度１μg/mLのmAb 3c10、60bまたはIB4とともに、37℃にて30分間インキュベートした。次いで、終濃度０、0.01、0.1、または1.0ng/mLのRe595 LPSとともに、細胞を、加湿した10％CO₂インキュベーター中で37℃で12時間インキュベートした。その後、各サンプルから血漿を集め、ＴＮＦの存在を試験した。
これらの研究のために、健常被験者の血中におけるＬＢＰの本質的なレベルは100〜250ng/mLと概算されるため、さらにＬＢＰを添加することは不要である（Tobiasら、前出、1986;及びTobiasら、Infect. Immun., 50:73-76, 1985）。Tobiasら、前出、1989のＬＢＰに対するＬＰＳの親和性の概算に基づいて、ＬＢＰの本質的レベルは添加されたＬＰＳ全量に結合するために十分な量を越えるものである。
WEHIクローン13細胞は、Trondheim大学（Norway）のT. Ezpevikから供与され、10％のＦＣＳ、0.1mMのグルタミンおよび30μg/mLのゲンタマイシンを含むRPMI1640培地（Gibco）で培養した。10μlのRPMI1640培養培地中、細胞を２×10⁴cells/wellの濃度でマイクロタイタイープレートにまいた。次に、５〜50μLのＭＯ培養上清をWEHIクローン13細胞の増殖用培地に混合し、37℃で20時間インキュベートした。続いて、５mg/mlの濃度でＭＴＴテトラゾリウム(M-2128 Sigma Chemical Company, St. Louis, MO)を含むＰＢＳ10μLを、各マイクロタイタープレートのウェルに添加し、さらに37℃で４時間インキュベートした。各ウェルから100μLの上清を吸引して除き、0.04ＮのＨＣｌを含むイソプロパノール100μLを各ウェルに添加した。暗青色のホルマザンの結晶を溶解させた後、試験波長570nm及び対照波長630nmを用いて、プレートをプレートリーダーで読んだ。
死滅標的細胞のパーセンテージは以下のようにして決定した：

次に、実験の培地において得られた死細胞のパーセンテージを、種々の既知の希釈のTNFから得られたパーセンテージと比較し、各実験培地の対応するＴＮＦ濃度を決定した。この研究の結果を表VIに示した。

表VIから、ヒト全血中でのＬＰＳ誘導ＴＮＦ産生はＬＰＳの濃度の上昇につれて多くなることが示された。加えて、LPS-LBP複合体誘導TNF産生が、抗CD14モノクローナル抗体である3C10及び60bによって、有意に阻害されることが示された。一方、抗CD18 IB4モノクローナル抗体は、TNF産生を有意に阻害しなかった。同じ実験を、Ｓ型の菌であるE.coli 0111:B4から単離されたＬＰＳを用いて行ない、様々な炭化水素含量のＬＰＳ標品に対する効果は一般的であるが、保存された脂質Ａ構造が含まれることが示された。
全血中で見られる細胞障害活性のTNF特異性を、ポリクローナルのヤギ抗ヒトTNF IgG抗体を用いて、Mathisonら(J. Clin. Invest., 81:1925, 1988)の記載にしたがって確立した。この抗体は、ＬＰＳ処理全血のサンプル中に見出される細胞障害活性すべてを完全に中和した。
17．実施例１〜16の結果の検討
以上より、LBPが細菌と結合して、それらの結合とマクロファージによる貪食を促進することによって、ＬＰＳがオプソニンとして機能することが証明された。ＬＢＰはＢＰＩのＬＰＳ結合ドメインと相同なドメインを介してＬＰＳに結合するが、ＬＢＰの細胞への接着はＬＢＰに独特のドメインで仲介されると考えられる。
ＬＰＳ被覆粒子の表面上のＬＢＰは特異的受容体、ＣＤ１４によって認識され、ＭＯ上のＣＤ１４は膜表面を移動することができる。ＬＢＰ被覆粒子は、ＭＯなどのＣＤ１４発現細胞に結合するが、他の血液細胞には結合しない。ＭＯの先端表面上のこの活性は、LPS-LBP複合体で被覆された基質上の細胞が伸張することによって失われる。ＬＢＰの受容体、ＣＤ１４は、CR1、CR3およびFcRに対する表面結合抗体がＬＢＰ被覆粒子の結合を減少させないことから、他のオプソニン受容体とは区別される。
敗血症誘導感染物質（例えば、グラム陰性細菌）のクリアランスをオプソニンＬＢＰが誘導する。しかしながら、敗血症の間、細菌の溶解が、補体および分解酵素を含む内因性の溶解機構の作用またはそれに続く抗生物質治療によって起こり得る。溶解は、ＬＰＳの全身的な遊離を惹起し、ＬＰＳの血中レベルを上昇させる。これらのレベルは１〜1000pg LPS/mLと概算されるため、十分なＬＢＰが存在し、高親和性のＬＰＳ−ＬＢＰ複合体が形成される（Sturkら, in Detection of Bacterial Endotoxins with the Limulus Amebocyte Lystate Test., Wats on, S.W. Allan R. Liss編、NY 1987:371-385; van Deventer, S.J.H.ら, Lancet, 1:605-608, 1988）。LPS-LBP複合体はマクロファージ／単球系統の細胞上のＣＤ１４に結合し、モノカイン、ＴＮＦの速やかな合成と遊離とを開始させ、それによって、全面的な敗血症の進行に有意に寄与する。
古典的なオプソニンであるIgGは、IgG被覆粒子の結合、それらの貪食取込み、および過酸化水素などの毒性化合物の遊離を促す。他の古典的オプソニン、Ｃ３は、原理的に、Ｃ３被覆粒子の結合を促進させる。刺激されていないＭＯによる貪食は、Ｃ３被覆粒子がIgGを担持している場合にのみ観察され（Ehlenbergerら, J. Exp. Med., 145:357-371, 1977）、そして過酸化水素の放出はされなかった（Wright, J. Exp. Med., 158:2016-2023, 1983）。
ＬＢＰのオプソニン活性はＣ３のそれにもっとも似ている。ＬＢＰ被覆粒子にはＭＯが貪欲に結合するが、結合によって貪欲が開始されず、または過酸化水素も遊離されない（図５）。ＬＢＰはまたＣ３のように作用し、少量のIgGで被覆された貪食を増強した（図４）。ＬＢＰのオプソニン効果は、Ｃ３のそれとわずか１つの点で相違するにすぎない。ＭＯをPMA(Wrightら,前出,1982)またはフィブロネクチン(Wrightら.,前出, 1983)などの補助刺激剤で処理したときに、補体タンパク質が貪食を開始させることができるが、ＬＢＰがこのような好適に刺激された細胞であっても貪食を仲介しない。
オプソニンとして作用することによって、ＬＢＰは動物中におけるグラム陰性細菌の拡散を制限する。急性期の間のＬＢＰの出現は、感染とたたかうためによく適合し、それゆえ、ＬＢＰがグラム陰性細菌などの感染性物質に体する防御機構を表すと考えられている。
18．細胞
マウスマクロファージ RAW細胞系統264.7(RAW264.7)(ATCC#TIB71)、マウスマクロファージ細胞系統J744.1(J774.1)(ATCC#TIB67)、L929、SW620(ATCC#CCL227)およびTHP-1(ATCC#TIB202)をATCCから入手した。突然変異させたマウスマクロファージ細胞系統J774.1から単離したＬＲ９細胞は、本明細書中に参考文献として取込まれている、Hara-Kuge, J. Biol. Chem., 265:6606-6610, 1990の記載のようにして得た。C3H/HeJマウス細胞由来のマクロファージ、GG2EE細胞は、L. Varesio(National Cancer Institute, Frederick, MD)から提供され、本明細書中に参考文献として取込まれている、Blasiら(Eur. J. Immunol., 17:1491-1498, 1987)の文献のようにして調製した。全ての細胞系統は、10％のウシ胎児血清（FCS）（HyClone, Logan, Utah）、2mMのL-グルタミン（GIBCO, Grand Island, NY）、50μg/mLのストレプトマイシン（GIBCO）および50U/mLのペニシリン（GIBCO）を添加した無エンドトキシンRPMI 1640（完全RPMI）(GIBCO)中で培養した。SW620細胞は、RPMI 1640をDMEMとした他は同じ培地（完全DMEM）で維持した。THP-1細胞を、Tobiasらの文献（前出、1993）に記載されたように、0.1μＭの1,25ジヒドロキシビタミンＤ３（Biomol Research Lab, Plymouth Meeting, PA）で処理してＣＤ１４を発現させるために誘導した。グリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）アンカーを発現しているマウスプレＢ70Z/3細胞（70Z-3hCD14）、もしくは全体膜ヒトＣＤ１４を発現しているマウスプレＢ70Z/3細胞（70Z/3-hCD14Cl）、または空ベクターでトランスフェクションしたマウスプレＢ70Z/3細胞（70Z/3-RSV）を産生し、参考文献として本明細書に取込まれている、Leeら(Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:9930-9934, 1993)の文献に記載されたように維持した。チオグリコレート浸出マウス腹腔浸出マクロファージ（PEM）を、参考文献としてここに取込まれているHanら(J. Biol. Chem., 268:25009-25014, 1993)の文献に記載されたようにして得た。ヒトの臍帯血管内皮細胞（HUVEC）の単離と維持は、参考文献としてここに取込まれているPuginら（前出、1993a）およびPuginら（前出、1993b）の文献に記載されたように行なった。
ヘパリン処理（10U/mL）の全血は、心臓採血によってBalb/cマウスから得た。
19．試薬
Bacillus subtilis、Staphylococcus aureus、StreptococciのＡ群およびＢ群、Streptococcus pneumoniae、およびStreptococcus mitisからの細胞壁調製物は、他の文献(Graciaら, J. Biol. Chem., 262:15400-15405, 1987; DeJongeら, J.Biol. Chem., 267:11248-11254, 1992;Heumannら,前出)に記載されたようにして入手し、精製した。S. aureusの可溶性ペプチドグリカンは、R.Dziarski(Indiana University, Gary, IN)から供与された。ヒト結核菌H37Ra株のリポアラビノマンナン（LAM）は、P. Brennan(Colorado State University, Ft. Collins, CO)から供与された。マウスγ−インターフェロン（γ-IFN）は、Robert Schreiber博士(Washington University, St. Louis, MO)から供与され、そしてE.coli 0111:B4のＬＰＳはList(Campbell, CA)から入手した。蛍光化ReS95(FITC-LPS)は、Skellyら(Infect. Immun., 23:287-283, 1979)に記載されたように産生した。抗CD14 63D3 mAb(ATCC, Rockville, MD)は、腹水から精製した。抗CD14 28C5 mAbは、D. LeturcqおよびA. Moriarty(R.W. Johnson Pharmaceutical Research Institute, San Diegeo, CA)から入手した。抗hIL-8抗血清は、S.L. Kunkel(University of Michigan Medical School, Ann Arbor, MI)から供与された。
LAM、グラム陽性細胞壁調製物、または可溶性ペプチドグリカンのＬＰＳ混入は、常に考慮する。検出可能なＬＰＳがアゴニスト調製物に混入していないことは、クロモジェニック リムルス アッセイ（chromogenic limulus assay）（BioWhittaker, Walkersville, MD）を用いて確認した。50μg/mLのポリミキシンＢ（CalBiochem, San Diego, CA）が、ＬＰＳそれ自身を除いて試験されたいずれのアゴニストによる刺激をブロックした場合はなかった。さらに、LAMとグラム陽性細菌壁は100ng/mLのE.Coli 0111:B4のＬＰＳに応答しないが、ＬＰＳ−耐性C3H/HeJマクロファージを活性化した。
20．マウスＣＤ１４およびＴＮＦの発現
マウスＣＤ１４のｃＤＮＡは、マウスマクロファージであるRAW細胞系統264.7（RAW細胞）ｃＤＮＡをLeeら（J. Exp.Med., 175:1697-1705, 1992）の論文に記載されたプライマーを用いたPCRによって得、E.coli DHSa^TMの形質転換に使用されるpDSps3原核細胞発現ベクターにサブクローニングした。0.5Lの終夜培養物から細菌をペレットにし、洗浄し、分解酵素ベースの緩衝液を用いて溶解させ、超音波処理し、そして７Ｍの塩酸グアニジンで可溶化する。可溶化タンパク質を、Ｃ−４カラム(Pierce Chemicals, Rockford, IL)とアセニトリル／トリフロロ酢酸の濃度勾配を用いた逆相HPLCによって精製した。画分をSDS-PAGEゲル上で41kDaのバンド（予想されるグリコシル化されていないマウスＣＤ１４の分子量）についてスクリーニングした。精製された材料のタンパク質のマイクロシーケンシング(microsequencing)を、Matsuuraら(Nucleic Acids Res., 17:2132, 1989)に提供されたようなマウスのＣＤ１４の予想されたNH₂-末端配列が明らかになった。
組換えマウスＴＮＦ−α(ｍＴＮＦ−α）を、Kravchenkoらが提出した論文（1994）に記載されたようにマウスのＴＮＦ−αをコードするｃＤＮＡを含むプラスミドを除いて、上記と同じ発現手順および可溶化手順を用いて得た。精製は、DE-52およびヒドロキシアパタイトのイオン交換クロマトグラフィーを用いて行なった。精製された材料のＮ−末端の最初の20アミノ酸のマイクロシーケンシングは、マウスＴＮＦαの公表されたN-末端配列とと同一であった。精製されたマウスＴＮＦ−αの生物活性を、EspevikとNissen-Meyer（J. Immunol. Methods, 95:99-105, 1986）に記載されたように、WEHIクローン13マウス線維芽細胞アッセイで測定し、７×10⁷単位/mgタンパク質であることが明らかになった。
21．抗−マウスＣＤ１４抗体の産生および特徴付け
フロイントの完全アジュバントで初回免疫し、その後はすべてフロイントの不完全アジュバントで免疫することによって、ニュージーランド白ウサギに100μgの組換えマウスＣＤ１４で24週にわたって８回皮下免疫した。図10Ｂに示すように、３匹のウサギのうちの一匹からの抗血清は、FACSの研究が実施されたときに（FACScan^▲Ｒ▼, Becton Dickinson, Lincoln Park, NJ）、RAW264およびJ774細胞と反応した。AndrewとTitusによって記載されたように（Current Protocols in Immunology,編、New York: John Wiley & Sons, pp.2.8.5, 1991）調製した精製IgGのF(ab')₂断片を全血清に代えて使用したときに、同様の染色が顕著に観察された。対照的に、ＬＲ９細胞は抗ＣＤ１４抗体で染色されなかった。同様に、免疫していないウサギIgGから調製したF(ab')₂のIgG断片は、いかなる細胞系統でも染色されなかった（示していない）。
天然のマウスＣＤ１４を認識する抗マウスＣＤ１４ IgG抗体の能力を評価するための別の実験を、天然のマウスＣＤ１４のソースとして、１ U/mLのホスファチジルイノシトール特異的ホスホリパーゼＣ（PI-PLC, Sigma）で37℃にて１時間処理したRAWまたはJ774細胞（５×10⁶ cells/mL）の無細胞上清を使用して行なった。無細胞上清はまた、PI-PLCで処理したＬＲ９またはマウス線維芽L929細胞から調製した。これらの上清と等量のタンパク質をSDS-RAGEに供し、その後ニトロセルロースにトランスファーした。イムノブロティングを、上記のようにして得たウサギ抗マウスＣＤ１４ IgGまたは非免疫IgGのいずれかを用いて行ない、ついでペルオキシダーゼ結合ヤギ抗ウサギIgGを添加した。図10Ａに示したように、PI-PLC処理により、RAWおよびJ774細胞から免疫反応性タンパク質の遊離が生じた。しかし、ＬＲ９およびL929細胞からの対応する画分は抗マウスＣＤ１４に反応しなかった。これらのデータを総合すると、抗マウスＣＤ１４抗体が天然のマウスＣＤ１４を認識するという主張、およびＬＲ９細胞はＣＤ１４を発現できないという主張が支持された。同様の試験で、マウスＣＤ１４は市販の抗ｈＣＤ１４モノクローナル抗体、MY-4、6303、3C10のいずれによっても検出できなかった。
22．抗−ヒトＣＤ１４抗体の調製
Hanら（前出）によって記載されたように調製した組換えヒトｓＣＤ１４を、固定化抗ＣＤ１４ mAbである63D3を用いた細胞培養上清から免疫精製し、抗原として用いてヤギを免疫した。精製したIgGとF(ab')₂IgG断片を、AndrewとTitus（前出）の論文に記載されたように調製した。これらの抗体画分の特異性を、表面に組換えＣＤ１４を発現している。トランスフェクションしたＣＨＯ細胞を用いて、ウェスタンブロッティング法、ELISA（ｓＣＤ１４を抗原として用いて）、およびFACSによって決定した（示していない）。
23．細胞活性化の測定
RAW、J774、GG2EE細胞並びにC3H/FeJマウスからの腹腔浸出マクロファージ（PEM）（ＬＰＳ応答株）またはC3H/HeJマウスからの腹腔浸出マクロファージ（PEM）（ＬＰＳ非応答株）を、滅菌したイマクロタイタープレートに、RAWおよびJ774細胞については２〜３×10⁵ cells/ウェル、PEM細胞については10⁵ cells/ウェルの密度でまいた。５時間インキュベートした後、完全RPMIを除去し、無血清RPMIで洗浄した。(1)ＬＰＳ、(2)グラム陽性菌の細胞壁、(3)ＬＡＭ、(4)マウスＴＮＦ−α、(5)実施例22に記載の精製抗ヒトＣＤ１４抗体画分の異なる混合物を、0.5mg/mLのヒト血清アルブミンを含む無血清RPMI 1640で希釈し、１サンプルを２ウェルまたは３ウェルに添加した。実験を終濃度５％のウシ胎児血清（Sigma）を含む200μLの容量で行なった。
いくつかの実験においては、WEHIクローン13バイオアッセイ（Espevik）を用いてＴＮＦを測定するために、４時間後に上清をサンプリングした。他の実験では、混合物に10U/mLのマウスγ-IFNを添加し、15時間以上インキュベートした。上清は、Dingら(J. Immunol., 141:2407-2412, 1988)の論文に記載されたように、亜硝酸塩産生アッセイした。異なるアゴニストおよび抗体は、比色MTTアッセイ（Mosmann, J. Immunol. Methods, 65:56-63, 1983）で評価したときに、細胞の生存率に影響を及ぼさなかった（示していない）。図11に示したように、抗マウスＣＤ１４抗体は、J774細胞におけるＬＰＳ−またはB.subtilis細胞壁依存的亜硝酸塩産生を阻害した。ＬＲ９細胞は、ＬＰＳまたはグラム陽性細胞壁のいずれかによる刺激に対して、著しく低応答であった。ＬＰＳ濃度を３ng/mLに増やすか、グラム陽性細胞濃度を1000ng/mLに増やすと、これらの細胞において亜硝酸産生が誘導されたが、これらの実験条件の下では、抗ＣＤ１４は応答を低下させなかった。
ヘパリン処理したマウス全血をマイクロタイタープレート（200μL/ウェル）でまき、ＬＰＳとポリクローナル抗マウスＣＤ１４ IgGの存在下に、37℃で４時間インキュベートし、コンディションされた血漿をEspevikとNissen-Meyer（前出）の方法を用いたＴＮＦ生物活性について試験した。ＴＨＰ−１細胞を用いた実験では、細胞を0.5mg/mLのヒト血清アルブミンを含む無血清RPMIで２回洗浄し、無血清培地に再懸濁し、５〜７×10⁴ cells/ウェルでまいた。ウシ胎児血清（Sigma）を終濃度５％となるように添加した。種々の濃度のＬＰＳ、細胞壁調製物、LAMまたは可溶性ペプチドグリカンを抗体とともにまたは抗体なしで２ウェルずつ添加し、37℃で７時間インキュベートした。無細胞上清を、その後サンプリングし、-20℃で凍結した。IL-8を上述したStandifordら(J. Immunol., 145:1435-1439, 1990)に記載されたようにELISAで測定し、図13に結果を示した。
70Z/3細胞によって発現されたIgMをLeeら（前出）に記載された方法で測定した。細胞を完全RPMIに懸濁し、48ウェルプレート（Costar）に５×10⁵ cells/ウェル/0.5mLでまいた。５％ウシ胎児血清中で、種々の濃度のＬＰＳ、B.subtilis細胞壁調製物、またはマイコバクテリアのＬＡＭで刺激した。IgMの発現は、37℃で18時間インキュベートした後に、FACS分析で評価した。図14に示したように、ＬＰＳ、細胞壁およびLAMは、細胞表面にｈＣＤ１４が発現されたときにIgMのアップレギュレーションを有意に上昇させ、これらの異なるアゴニストの応答においてＣＤ１４の明確な寄与が示唆された。
24．可溶性ＣＤ１４と細胞壁またはリポアラビノマンナンとの間の生化学的相互作用
³⁵Ｓ−ｓＣＤ１４を、Hanら（前出）によるＣＤ１４のｃＤＮＡでトランスフェクションしたチャイニーズハムスター卵巣細胞を用いて産生し、その後³⁵Ｓ−メチオニン（Dupont NEN, Boston, MA）とともにインキュベートした。³⁵Ｓ−ｓＣＤ１４を固定化抗ＣＤ１４ mAbである63D3を用いて細胞の培養上清から精製した。
³⁵Ｓ−ｓＣＤ１４の濃度をPuginら（前出）1993aに記載されたようにElISAで定量し、SDS-PAGEで95％を超える純度を有することが明らかになった。その特異性は、150cpm/ngであった。³⁵Ｓ−ｓＣＤ１４の細胞壁に対する結合を以下のようにして評価した：120μg/mLのS.mitisの細胞壁（水に不溶性の画分）を、2mg/mLの低エンドヒドトキシンヒト血清アルブミンを添加したリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）、pH7.3に懸濁させ、120ng/mLの³⁵Ｓ−ｓＣＤ１４と37℃で１時間インキュベートした。その後、細胞壁を高速遠心（13,000g）を用いてペレットにし、再懸濁し、ボルテックスし、氷冷ＰＢＳ／ＨＳＡで３回洗浄し、放射活性をシンチレーションカウンターで計測した。
別の実験において、Skellyら（前出）の方法によって調製した、共有結合したフルオレセインを含むReS95（FITCReS95-LPS）の蛍光強度が、ｓＣＤ１４に結合した後に顕著に上昇することが示された。このような蛍光の変化は、ｓＣＤ１４を含むＬＰＳ結合タンパク質に結合しているＬＰＳのリアルタイム分析を可能にした。マイコバクテリアのLAMを、この蛍光ベースのアッセイにおいて使用し、FITC-ReS95-LPSの、ｓＣＤ１４への結合を妨害する能力を試験した。この実験においては、LPSに対して50〜250倍（w/w）過剰のLAMを20ng/mLのFITC-ReS95ＬＰＳに、0.1μg/mLの精製ウサギＬＢＰと10μg/mLの組換え可溶性ＣＤ１４（最終容量0.25mL）の存在下に添加した。蛍光の変化は、SLM6000蛍光測定器（SLM, Amico, Urbana, IL）を用いて、励起波長490nmおよび発光波長520nmで、各々記録した（結果は示していない）。
上記の明細書は、態様および実施例を含めて、本発明を説明するものであり、限定するものではない。非常に多くの変形および改良が本発明の本意と範囲とから離れることなく可能である。

Claims (12)

1. グラム陽性細菌感染に関連した患者の毒血症を緩和する治療用組成物を製造するための、グラム陽性毒素原性細胞壁成分とＣＤ１４との結合を阻害する抗ＣＤ１４抗体の使用であって、前記抗体がハイブリドーマＡＴＣＣ＃ＨＢ４４から、または該抗体をコードする核酸によって形質転換されて該抗体を発現する細胞から産生されるモノクローナル抗体６３Ｄ３である、上記使用。
2. 毒血症が敗血症である、請求項１に記載の使用。
3. 敗血症がグラム陽性細菌の感染によって起こる、請求項２に記載の使用。
4. 敗血症がマイコバクテリアによって起こり、細胞壁がリポアラビノマンナン（ＬＡＭ）を含む、請求項２に記載の使用。
5. グラム陽性細菌感染に関連した患者の菌血症の症状を緩和する治療用組成物を製造するための、単球マクロファージ系統の細胞による腫瘍壊死因子のグラム陽性細胞壁毒素誘導分泌を該患者において阻害する抗ＣＤ１４抗体の使用であって、前記抗体がハイブリドーマＡＴＣＣ＃ＨＢ４４から、または該抗体をコードする核酸によって形質転換されて該抗体を発現する細胞から産生されるモノクローナル抗体６３Ｄ３である、上記使用。
6. グラム陽性細菌がＡ群およびＢ群の連鎖球菌、黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus）、肺炎連鎖球菌（Staphylococcus pneumoniae）、およびヒト結核菌のようなマイコバクテリアからなる群より選択される、請求項５に記載の使用。
7. グラム陽性細菌感染に関連した患者の毒血症を緩和するための治療用組成物であって、製剤学的に許容される賦形剤中に、治療に有効な量の、グラム陽性毒素原性細胞壁成分とＣＤ１４との結合を阻害する抗ＣＤ１４抗体を含んでなり、前記抗体がハイブリドーマＡＴＣＣ＃ＨＢ４４から、または該抗体をコードする核酸によって形質転換されて該抗体を発現する細胞から産生されるモノクローナル抗体６３Ｄ３である、上記組成物。
8. 毒血症が敗血症である、請求項７に記載の組成物。
9. 敗血症がグラム陽性細菌の感染によって起こる、請求項８に記載の組成物。
10. 敗血症がマイコバクテリアによって起こり、細胞壁がリポアラビノマンナン（ＬＡＭ）を含む、請求項８に記載の組成物。
11. グラム陽性細菌感染に関連した患者の菌血症の症状を緩和するための治療用組成物であって、製剤学的に許容される賦形剤中に、治療に有効な量の、単球マクロファージ系統の細胞による腫瘍壊死因子のグラム陽性細胞壁毒素誘導分泌を該患者において阻害する抗ＣＤ１４抗体を含んでなり、前記抗体がハイブリドーマＡＴＣＣ＃ＨＢ４４から、または該抗体をコードする核酸によって形質転換されて該抗体を発現する細胞から産生されるモノクローナル抗体６３Ｄ３である、上記組成物。
12. グラム陽性細菌がＡ群およびＢ群の連鎖球菌、黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus）、肺炎連鎖球菌（Staphylococcus pneumoniae）、およびヒト結核菌のようなマイコバクテリアからなる群より選択される、請求項１１に記載の組成物。

Images