JP3862703B2 - 物質のホルモン作用を判定する方法 - Google Patents
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Description
)又はEWS誘導体ならびにこれらをコードする核酸を使用する方法に関する。
似して構成されていることにある。それが原因となって、核受容体の的確な応答を引き起こすために、とりわけ受容体に媒介される転写活性の特異性を強化する特殊な補因子との相互作用が必要とされている。
ビートら(Beato et al.), 2000, Human Reproduct.Update, 6, 225-236 マンゲルドルフおよびエバンス(Mangelsdorf & Evans), 1995, Cell, 83, 841-850 ロバイアら(Robyr et al.)2000, Mol. Endorinol, 14. 329-347 ブリンクマンら(Brinkmann et al.), 1999, J.Steroid Biochem. and Mol.Biol., 69, 307-313 デラットレら(Delattre et al.), 1992, Nature 359;162-165 ザックマンら(Zucman et al.), 1993, Nature Genet. 4; 341-345 ジェラルドら(Gerald et al.), 1995, Proc.Natl.Acad.Sci. USA 92: 1028-1032 ラバレら(Laballe et al.), 1995, Hum.Mol.Genet.4; 2219-2226 オオノら(Ohno et al.), 1994, Oncogene 9: 3087-3097 メローら(Melot et al.), 2001, Eur. J.Biochem.268, 3483-3489 マッケンナら(McKenna et al.), 1999, Endocr.Rev., 20, 321-347 ディンら(Ding et al.), 1998, Mol.Endocrinol., 12, 302-313 ロダーら(Roder et al.), 1996, Analytical Biochemistry 241, 260-62
物質と接触させて、
a.被験物質がEWS又はその誘導体及びNR又はその誘導体の結合に及ぼす影響を判定する
か、又は
b.被験物質がNRのリガンド誘発活性に及ぼす影響を判定する、という各工程からなるようにした。
は、核受容体(もしくはその誘導体)と相互作用をして、その活性を調節する能力を有するという驚くべき認識に基づいている。
に分類される(非特許文献1)。NR特有の特徴は、機能的ドメイン(名称A〜Fを有する)の構造が、自律性の構成的活性化機能(AF-1)を有していて、可変性が高く保存性の低いN末端領域、2つの亜鉛フィンガー型モチーフからなり、特殊なDNA反応エレメントの
識別を可能にする保存性の高いDNA結合ドメイン(DBD)、可変ヒンジ部、及び二量化とリガンドに依存するトランス活性化機能(AF-2)を有する保存された多機能型C末端リガ
ンド結合ドメイン(LBD)と一致していることである。その後に最も離れたC末端部が続
くが、その機能は知られておらず、PR(プロゲステロン受容体)、PPAR(ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体)及びRXR(レチノイドX受容体)などの受容体には欠如してい
る(非特許文献2、3)。若干のNR(たとえばアンドロゲン受容体(AR))については、N末端領域はC末端領域と相互作用できることが証明された(非特許文献4)。ステロイ
ドホルモン受容体、たとえばエストロゲン受容体(ER)、プロゲステロン受容体(PR)、グルココルチコイド受容体(GR)、ミネラルコルチコイド受容体(MR)、及びアンドロゲン受容
体(AR)は、プレグネノロンから導かれるステロイドリガンド、たとえばプロゲスチン、エストロゲン、グルココルチコイド、ミネラルコルチコイド及びアンドロゲンを結合する。リガンド結合は受容体を活性化し、相応の目標遺伝子の発現を制御する。
及び円形細胞の線維形成性腹腔内腫瘍、ならびに骨格外軟骨肉腫の前癌原遺伝子として知られている(非特許文献5〜8)。これらすべての腫瘍において、EWS遺伝子座は置き換
えられるので、タンパク質のアミノ酸末端(N末端)はFLI1、ERG1、ATF1又はWT1のDNA
結合ドメインと融合する。この融合タンパク質のN末端は、EWSエクソン1-7又は1-8又は1-9を含む。欠損部位がエクソン7とエクソン8との間にある場合、融合によって生じたタンパク質のEWS部分は、ここで定義されたアンドロゲン受容体結合ドメインとは一致して
いない。これに対して欠損部位がエクソン8と9又はエクソン9と10の間にある場合は、2つの癌原遺伝子EWS融合タンパク質の5個もしくは20個のアミノ酸のみが、アンドロゲ
ン受容体結合ドメインを含むEWS部分と一致する。このことから、置き換えられたEWS融合タンパク質はアンドロゲン受容体に結合する能力を失ったことが推定される。
と5の間に追加のエクソン4′を含み、脳特異的アイソフォームと呼ばれている。
れまでわずかしか知られていなかった。特に従来技術では、EWSが核受容体を結合してそ
の活性を調節する能力を有しており、そのためNRコモジュレーターのクラスに帰属すべきであることは知られていなかった。
干のコモジュレーターについても記述された(非特許文献12)。さらに、数種類のNRと類似の仕方で相互作用する多数のコモジュレーターが識別された。
ド媒介転写活性化の効果は細胞の生理学的関連において特に良好に確認し得るからである。したがって本発明には特に真核細胞が適しており、一次細胞と樹立細胞系のいずれも使用できる。樹立細胞系を使用すると、特に良好な再現性及び低コストが達成される。これに対して一次細胞を使用すると、突然変異とクローン選択に起因する細胞培養の欠陥をほぼ回避できる。特に適しているのは前立腺細胞、神経細胞、グリア細胞、線維芽細胞、血球、骨芽細胞、破骨細胞、肝細胞、上皮細胞又は筋肉細胞である。
a.最初にEWS又はその誘導体及びNR又はその誘導体を発現する細胞を被験物質に暴露す
る。
b.受容体又はその誘導体とEWS又はその誘導体との間の相互作用に及ぼす物質の影響を
、タンパク質・タンパク質相互作用又はタンパク質・タンパク質・DNA相互作用を測定す
ることによって判定する。
発現は細胞内で自然に、あるいは一過性の、もしくは安定したトランスフェクションの結果として行われ得る。適当な細胞タイプ及び場合によってベクター系を選択することは専門の当業者にとって通例の方策である。真核生物系において発現させるには、たとえばpCMX又はpSG5がベクターとして適している。
、あるいはDNA目標配列を有する上記要素のタンパク質・タンパク質・DNA相互作用の測定は、当業者により公知の方策によって行われる。このために、たとえばtwo-hybrid法、共免疫沈降法、GSTプルダウン・アッセイ、FRET分析、ABCDアッセイもしくはゲル遅延アッ
セイなどの技術がタンパク質・タンパク質・DNA相互作用の分析に適している。
a.EWSタンパク質又はその誘導体及びNR又はその誘導体を発現し、レポーター遺伝子構
築物でトランスフェクションされた細胞を核受容体及び被験物質のリガンドに曝露し、
b.NRのレポーター遺伝子活性を測定することによってNRの転写活性を判定し、
c.被験物質の非存在下で工程a及びbを実施した際の転写活性と比較する。
ーの例は、物質のアンドロゲン作用の測定に使用されるMMTVルシフェラーゼである。
証明可能で無視できない仕方、たとえばEMSAなどのタンパク質・タンパク質相互作用アッセイで行う。これは専門の当業者であれば判断できる)。同様のことはNR誘導体にも当てはまる。ここでも、EWS又はその機能的誘導体によって調節されるか、又は少なくとも結
合される能力を維持した誘導体が優先される。
もしくはそこから派生した誘導体が適している(特に機能的誘導体)。特に好ましいのは、配列ID番号1に記述された配列のアミノ酸319〜656を有するEWS誘導体、特にそのアミ
ノ酸からなる断片である。
くはその誘導体を使用することにも関する。
さらに本発明は、核受容体の活性に影響する物質の識別及び特性把握のために、配列ID番号1に対して、又は配列ID番号1の配列範囲8〜2032もしくは配列範囲1000〜2011に対して少なくとも70%の相同性を有する核酸を使用することにも関する。このような核酸は
、適当な発現ベクター、特に真核生物の発現ベクターの発現カセットにクローン化されていることが好ましい。
いう概念は、70%と100%(したがって配列ID番号1と完全に一致)の間の相同性全範囲を
対象とするものとして理解される。相同性の全範囲においてそれぞれの目的に適した核酸を選択することは、従来の専門家の能力の範囲に含まれる。核酸の相同性の判定は、専門の当業者においては慣用的に行われている。この目的のために、当業者に公知の種々のコンピューター・プログラムを使用することができる(例:BLAST; BLAST-2,ALIGN又はMegalign(DNASTAR))。
巣機能低下症及びアンドロゲン抵抗性症候群、たとえば睾丸性女性化症の臨床的指示薬として使用される。これらの疾患はアンドロゲン受容体(AR)とEWSとの間の共同調節機構の
欠陥に基づくものと推測される。したがってそのような疾患のある患者において納得のいく診断の可能性は、ARとEWSの相対量を測定することであろう。これはそれぞれの患者で
目標細胞内の分子の相対量を測定する定量的方法によって可能である。
によってコードされたタンパク質に対して設けられた抗体を、NR活性、好ましくはアンドロゲン受容体活性の機能不全を伴う疾患の診断に使用することである。
る障害を判定するために、アンドロゲン受容体とEWSの細胞濃度又は組織濃度を測定する
ようにした方法の枠内において使用される。これについて当業者が適当と認めている種々の技術のうち、特にラジオイムノアッセイ、ELISA、免疫染色法、RT-PCR又はウェスタン
ブロットが適している。
標細胞内におけるAR優勢とEWS優勢との間の平衡の障害に基づいているという理論である
。EWSが過多になるとAR系が過敏になって、必ずしもアンドロゲン作用を持たない分子に
反応する。EWSの欠如又は誤機能により感度不足になると、あらゆるレベルでアンドロゲ
ン抵抗性を招く。
において正常なDNA配列の突然変異を検出し、又はノーザンブロットアッセイ用の転写物
もしくはin-situ-ハイブリダイゼーション用のDNAを生成することが可能である。
又はEWS誘導体に対するアンチセンス核酸や類似の技術を適用して、臨床条件下で当該患
者のEWS力価を下げることが妥当である。同様のことは、ARとEWSとの相互作用を阻止する分子によっても達成できよう。
例1
(使用したオリゴヌクレオチド)
ライブラリーインサートのPCR増幅に対するプライマー
Act2c5050Eco:gattacgctagcttgggtgg(SEQ ID No.3)
Act2-4939Xho:gttgaagtgaacttggcgggg(SEQ ID No.4)
完全長EWS-cDNAの増幅に対するプライマー
EWS-8-Sal:ggtcgacggacgttgagagaacgagg(SEQ ID No.5)
C3ESW-c2032-Eco:gggaattctgcggggtctctgcatctagtaggg(SEQ ID No.6)
シーケンスプライマー
XII-139a1:gcttgggtggtcatatgg(SEQ ID No.7)
(使用したベクター)
ライブラリー用のpACT2(Genbankアクセス番号U29899);
プローブに対するpGBT9誘導体: pGBT9rev及びpGBT(+1)rev (非特許文献13);
PCR断片のクローニング用の.pCR2.1Topoベクター(Invitrogen社);
哺乳類細胞内の発現用のCMXベクター;
レポーター遺伝子アッセイ用のpAHluc(MMTVプロモーターとルシフェラーゼ・レポータ
ー遺伝子を含む;A.Cato社);
pSG5AR(アンドロゲン受容体に対するヒト遺伝子を有するpSG5;Genbankアクセス番号AAA51775)
(使用した生体)
酵母株:Y187及びPJ69-2A
E.-coli株:DH5α
哺乳類細胞:SH-SY5Y(ドイツ微生物・培養細胞バンク(DSMZ)DSM ACC209);
PC3(アメリカ培養細胞バンク(ATCC):CRL-1435);
PC3AR: pSG5ARで安定にトランスフェクションしたPC3(A.Cato社、カールスルーエ、ドイツ)
アンドロゲン受容体の新しいコモジュレーターを識別するために、酵母 Tw o-Hybrid
法を用いて胎児の脳由来のcDNAライブラリー・ヒト・cDNAライブラリー(Clontech社の「Matchmaker(登録商標)」No.:HY4028AH)をアンドロゲン受容体(AR)の3種類の断片をプローブとしてスクリーニングした。
ーとともにインキュベートした(Humane Multiple-Tissue-cDNA(MTC), Clontech社のPanel II、カタログ番号K1421-1)。また、製造者(Clontech)の指示に従い、3×108クローンをスクリーニングした。さらに陽性クローンを選別して、製造者(Clontech)の指示に従いそのβ−ガラクトシダーゼ活性を試験した。ライブラリーに由来する青色コロニーのインサートを、PCRを用いてプライマーAct2c5050Eco及びAct2-4939Xho を使用して直接酵母細胞から増幅した。
はエクソン1〜17が示されている。ボールド体の文字は、酵母 Two-Hybrid 法で検出され、AR部分AS325-919に結合する酵母断片を示している。下線部はスプライス異型ESW1-b(
実線による下線)もしくはESW1-c(点線による下線)では欠如している配列範囲である。
離され、胸腺からはエクソン15の代わりにエクソン15Bを有する異型が単離された。次い
で、増幅されたcDNAはEcoRIとSalIで哺乳類発現ベクターCMXの発現カセットにクローニングされた。
強い共同活性化を誘発する能力がある。このためにそれぞれ6個の反応溝を有する反応プレート上でSH-SY5Y細胞を、ヒトアンドロゲン受容体に対するcDNAを含むベクター(pSG5AR)0.75μg、ルシフェラーゼ遺伝子の前にMMTVプロモーターを含む受容体遺伝子構築物pAHluc 1.5μg、及びEWS-CMXベクター 1μgとコトランスフェクションさせた。トランス
フェクションはGibeo BRC社のリポフェクチンを使用して、製造者の指示に従って行った。トランスフェクション後、細胞を種々のアンドロゲン量で24時間培養した。細胞は慣用的な溶菌緩衝剤を用いて溶菌し、BMG Lab Technologiesのルミスター・ルミノメーターでルシフェラーゼ活性を測定した。EWS−CMXルシフェラーゼ活性を対照活性と比較した(ブランクCMXベクター)。各々の反応溝内の混合物は微量滴定プレートの4つの溝内で測定
した。DHTのない物質の対照値を差し引いた。図4に標準偏差を棒で示した。
ーに基づいて示されている。このためにEWSの244-656をコードするEWS-cDNA断片を、Me gaprime(登録商標)DNAマーキング法(Amersham Life Science)に従い、32P-α-dATP
及びクレノウフラグメントで標識した。標識されたフラグメントをニックカラム(Pharmacia)上で製造者の指示に従い純化し、Clontech社のヒューマン・ノーザン・ブロット(MTN)No.7760-1及び7759-1を用いてハイブリダイゼーションした。図5(a)から明らか
なように、EWS-RNAは主として睾丸で発現する。さらに、調査したほとんどの器官で種々
のEWS量が検出可能である。
図5の(a)及び(b)から、組織内の上記2種類のタンパク質の基準発現を読み取ることができる。
反応溝を有する反応プレートで、溝当り1μgコアクチベーター、1.5μgMMTV-ルシフェラーゼ及び0.75μg pSG5ARプラスミドを添加した。これら6個の混合物をそれぞれ微量滴定プレートの4つの溝に移して測定した。DHTのない物質の対照値を差し引いた。標準偏
差をSDで示した。すべてのシグナルにおいてDHTのない対応する対照値を差し引いた。
ムプライマー法を適用し、32P-α-dATP及びクレノウフラグメントで標識した。ブロット
をプローブでハイブリダイゼーションし、洗浄してフィルムに移し、現像した。
Claims (10)
- 物質のホルモン作用を判定する方法であって、
a.EWSタンパク質又はその誘導体を、アンドロゲン受容体又はその誘導体及び被験物質と接触させる工程と、
b.被験物質がEWSタンパク質又はその誘導体及びアンドロゲン受容体又はその誘導体の結合に及ぼす影響を判定する工程、又は
c.被験物質がアンドロゲン受容体の活性に及ぼす影響を判定する工程と
からなる方法。 - 少なくとも1つの工程が細胞系において行われることを特徴とする請求項1に記載の方法であって、
a.EWSタンパク質又はその誘導体及びアンドロゲン受容体又はその誘導体を発現する細胞を被験物質に曝露する工程と、
b.アンドロゲン受容体又はその断片とEWSタンパク質又はその誘導体との間の相互作用に及ぼす物質の影響を、アンドロゲン受容体タンパク質・EWSタンパク質相互作用又はアンドロゲン受容体タンパク質・EWSタンパク質・DNA相互作用を測定することによって判定する工程と
からなる方法。 - 少なくとも1つの工程が細胞系において行われることを特徴とする請求項1に記載の方法であって、
a.EWSタンパク質又はその誘導体及びアンドロゲン受容体又はその誘導体を発現し、レポーター遺伝子構築物でトランスフェクションされた細胞をアンドロゲン受容体のリガンド及び被験物質に曝露する工程と、
b.レポーター遺伝子活性を測定することによってアンドロゲン受容体の転写活性を判定する工程と、
c.被験物質の非存在下で工程a及びbを実施した際の転写活性と比較する工程と
からなる方法。 - 前記細胞が真核細胞であることを特徴とする請求項2又は3に記載の方法。
- 前記細胞が、前立腺細胞、神経細胞、グリア細胞、線維芽細胞、血球、骨芽細胞、破骨細胞、肝細胞、上皮細胞又は筋肉細胞であることを特徴とする請求項4に記載の方法。
- アンドロゲン受容体の活性に影響を与える物質を識別して特性を把握するために、アンドロゲン受容体の活性を調節する機能を有するEWSタンパク質又はその誘導体を使用する方法。
- EWS誘導体が、アミノ酸欠失、置換、挿入、逆位、付加又は交換によって生じる、配列ID番号1でコードされたポリペプチドの誘導体を包含していることを特徴とする請求項1乃至6のいずれか1項に記載の方法。
- アンドロゲン受容体の活性に影響を与える物質を識別して特性を把握するために、EWS又はEWS誘導体をコードする核酸を使用する方法。
- 前記核酸が、配列ID番号1に対して、又は配列ID番号1の配列範囲8〜2032もしくは配列範囲1000〜2011に対して少なくとも70%の相同性を有することを特徴とする請求項8に記載の方法。
- 前記核酸が発現ベクターの発現カセットにクローン化されていることを特徴とする、請求項8又は9に記載の方法。
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