JP3093974B2 - 神経細胞用培養液、その製造方法及びこれを用いる神経細胞の培養方法 - Google Patents
神経細胞用培養液、その製造方法及びこれを用いる神経細胞の培養方法Info
- Publication number
- JP3093974B2 JP3093974B2 JP08147158A JP14715896A JP3093974B2 JP 3093974 B2 JP3093974 B2 JP 3093974B2 JP 08147158 A JP08147158 A JP 08147158A JP 14715896 A JP14715896 A JP 14715896A JP 3093974 B2 JP3093974 B2 JP 3093974B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- cells
- culture
- culture solution
- nerve cells
- insulin
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0618—Cells of the nervous system
- C12N5/0619—Neurons
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
- C12N2500/05—Inorganic components
- C12N2500/10—Metals; Metal chelators
- C12N2500/20—Transition metals
- C12N2500/24—Iron; Fe chelators; Transferrin
- C12N2500/25—Insulin-transferrin; Insulin-transferrin-selenium
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
- C12N2500/70—Undefined extracts
- C12N2500/80—Undefined extracts from animals
- C12N2500/84—Undefined extracts from animals from mammals
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2500/00—Specific components of cell culture medium
- C12N2500/90—Serum-free medium, which may still contain naturally-sourced components
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
- C12N2501/30—Hormones
- C12N2501/38—Hormones with nuclear receptors
- C12N2501/39—Steroid hormones
- C12N2501/392—Sexual steroids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
- C12N2502/08—Coculture with; Conditioned medium produced by cells of the nervous system
Landscapes
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Neurology (AREA)
- Neurosurgery (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、神経細胞の培養に
用いるための培養液、当該培養液の製造方法、及びこれ
を用いる神経細胞の培養方法に関する。
用いるための培養液、当該培養液の製造方法、及びこれ
を用いる神経細胞の培養方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】神経細胞を生体外で培養するために、古
くから幾多の検討がなされてきた。神経成長因子（ＮＧ
Ｆ）の発見は、神経細胞に特異的に働く因子のはじめて
の発見であり、神経生物学の分野に大きな影響を与え
た。神経細胞の培養に於いても、神経繊維の成長が誘導
できるようになり、より生体内に近い条件で培養できる
ようになった。
くから幾多の検討がなされてきた。神経成長因子（ＮＧ
Ｆ）の発見は、神経細胞に特異的に働く因子のはじめて
の発見であり、神経生物学の分野に大きな影響を与え
た。神経細胞の培養に於いても、神経繊維の成長が誘導
できるようになり、より生体内に近い条件で培養できる
ようになった。
【０００３】最近になって、毛様体神経栄養因子（ＣＮ
ＴＦ）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、神経栄養因
子−３（ＮＴ−３）、神経栄養因子−４（ＮＴ−４）、
神経栄養因子−５（ＮＴ−５）、グリア細胞株由来神経
栄養因子（ＧＤＮＦ）と、次々に新しい神経成長因子が
発見されてきた。これらは培養神経細胞によって、その
効果や作用メカニズムが検討され、更には実用化されて
いる遺伝子工学の手法により、疾病治療のための医薬と
しての利用も検討されるまでになっている。
ＴＦ）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、神経栄養因
子−３（ＮＴ−３）、神経栄養因子−４（ＮＴ−４）、
神経栄養因子−５（ＮＴ−５）、グリア細胞株由来神経
栄養因子（ＧＤＮＦ）と、次々に新しい神経成長因子が
発見されてきた。これらは培養神経細胞によって、その
効果や作用メカニズムが検討され、更には実用化されて
いる遺伝子工学の手法により、疾病治療のための医薬と
しての利用も検討されるまでになっている。
【０００４】しかし、これらの因子を通常の中枢神経細
胞の培養系で調べてみると、単一物質の添加だけで各種
の神経細胞に対して著しい効果を示すとは言いにくく、
特定の細胞に対してのみ効果を示すという場合が多い。
胞の培養系で調べてみると、単一物質の添加だけで各種
の神経細胞に対して著しい効果を示すとは言いにくく、
特定の細胞に対してのみ効果を示すという場合が多い。
【０００５】中枢神経細胞の培養に関しては、これらと
は別の流れとして、ホルモン（インシュリン、サイロキ
シン、プロジェステロン等）、ビタミン、不飽和脂肪
酸、細胞成長因子（塩基性繊維芽細胞増殖因子等）など
が検討され続けてきており、これらの因子を種々組み合
わせた無血清培養液が報告されている〔ジャーナル・オ
ブ・ニューロサイエンス・メソッド（Journal of Neuro
science Methods, 23:75(1988)等〕。
は別の流れとして、ホルモン（インシュリン、サイロキ
シン、プロジェステロン等）、ビタミン、不飽和脂肪
酸、細胞成長因子（塩基性繊維芽細胞増殖因子等）など
が検討され続けてきており、これらの因子を種々組み合
わせた無血清培養液が報告されている〔ジャーナル・オ
ブ・ニューロサイエンス・メソッド（Journal of Neuro
science Methods, 23:75(1988)等〕。
【０００６】しかしこれらのものも、株化細胞（株化グ
リア細胞等）には効果的であるが、神経細胞に対しては
安定培養ができない場合や、神経細胞には効果があるも
のの、同時にグリア細胞の増殖が促進されてしまい、い
わゆるグリア細胞との混合培養系になってしまう場合な
ど、神経細胞に対する薬理作用を検討する場合には不適
切なものが多い。例えば、ボテンシュタイン（Bottenst
ein）らのＮ２添加物〔インシュリン（５μg ／ml）、
トランスフェリン（１００μg ／ml）、プロジェステロ
ン（２０nM）、プトレシン（１００μM ）、及び亜セレ
ン酸塩（３０nM）〕〔プロスィーディング・オブ・ナシ
ョナル・アカデミー・オブ・サイエンス（Proceeding o
f National Academy of Science, U.S.A.），76:514(19
79)〕は、株化グリア細胞の培養には適しているが、初
代神経細胞の場合は安定した細胞の生存維持が図れな
い。また、ブリュワー（Brewer）らの処方の培養液〔ブ
レイン・リサーチ（Brain.Research), 65:494(1989)〕
も、中枢神経細胞に対して短期間の培養は可能である
が、長期間に渡って培養した場合、細胞機能を安定して
維持することができない。
リア細胞等）には効果的であるが、神経細胞に対しては
安定培養ができない場合や、神経細胞には効果があるも
のの、同時にグリア細胞の増殖が促進されてしまい、い
わゆるグリア細胞との混合培養系になってしまう場合な
ど、神経細胞に対する薬理作用を検討する場合には不適
切なものが多い。例えば、ボテンシュタイン（Bottenst
ein）らのＮ２添加物〔インシュリン（５μg ／ml）、
トランスフェリン（１００μg ／ml）、プロジェステロ
ン（２０nM）、プトレシン（１００μM ）、及び亜セレ
ン酸塩（３０nM）〕〔プロスィーディング・オブ・ナシ
ョナル・アカデミー・オブ・サイエンス（Proceeding o
f National Academy of Science, U.S.A.），76:514(19
79)〕は、株化グリア細胞の培養には適しているが、初
代神経細胞の場合は安定した細胞の生存維持が図れな
い。また、ブリュワー（Brewer）らの処方の培養液〔ブ
レイン・リサーチ（Brain.Research), 65:494(1989)〕
も、中枢神経細胞に対して短期間の培養は可能である
が、長期間に渡って培養した場合、細胞機能を安定して
維持することができない。
【０００７】また、神経細胞の培養に株化グリア細胞な
いしは初代グリア細胞の培養上清を用いる方法が知られ
ている。しかし、株化グリア細胞の培養上清を用いた場
合は、一般的に、神経細胞に対しても作用するが、同時
にグリア細胞にも作用し増殖が促進される。つまり神経
細胞の生存に対する効果だけでなく、それ以上にグリア
細胞に対して効果を示す。グリア細胞増殖因子と呼称さ
れる因子は、これらの培養上清より精製されている〔ジ
ャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（Jour
nal of Biological Chemistry), 268:2857(1993)な
ど〕。
いしは初代グリア細胞の培養上清を用いる方法が知られ
ている。しかし、株化グリア細胞の培養上清を用いた場
合は、一般的に、神経細胞に対しても作用するが、同時
にグリア細胞にも作用し増殖が促進される。つまり神経
細胞の生存に対する効果だけでなく、それ以上にグリア
細胞に対して効果を示す。グリア細胞増殖因子と呼称さ
れる因子は、これらの培養上清より精製されている〔ジ
ャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（Jour
nal of Biological Chemistry), 268:2857(1993)な
ど〕。
【０００８】また特開平７−１０１９９０号公報には株
化グリア細胞であるアストロサイトーマの培養上清を濃
縮したものが神経細胞の培養に３０〜５０％の活性増加
効果を示すことが報告されている。また、神経芽細胞腫
の増殖を抑制することが示されている。これは株化グリ
ア細胞の培養上清を用いた場合の欠点であるグリア細胞
の増殖を抑えるため、培養上清を濃縮し一部の有効成分
をとりだしたものである。しかし神経細胞を安定に培養
するためには単一物質ではなく複数の成分による総合的
な作用が必要である。この濃縮物を用いないものに比べ
た活性増加効果が３０％程度では、安定な神経細胞の培
養系を構成することはできない。
化グリア細胞であるアストロサイトーマの培養上清を濃
縮したものが神経細胞の培養に３０〜５０％の活性増加
効果を示すことが報告されている。また、神経芽細胞腫
の増殖を抑制することが示されている。これは株化グリ
ア細胞の培養上清を用いた場合の欠点であるグリア細胞
の増殖を抑えるため、培養上清を濃縮し一部の有効成分
をとりだしたものである。しかし神経細胞を安定に培養
するためには単一物質ではなく複数の成分による総合的
な作用が必要である。この濃縮物を用いないものに比べ
た活性増加効果が３０％程度では、安定な神経細胞の培
養系を構成することはできない。
【０００９】初代グリア細胞を用いる方法では、培養上
清を得るために、通常の無血清培養液ないしは血清が含
まれている培養液を用いる。しかし、通常の無血清培養
液を用いる培養上清の採取方法では、グリア細胞の生存
に対して充分な培養液とはならず、安定培養ができな
い。このため培養上清に含まれる神経細胞に作用する因
子群の量が少なく、神経細胞の培養に対して効果が低
い。また培養上清の採取には限度があり、数回程度で、
安定した効果を持つ培養上清の採取は難しくなる。血清
含有培養液を用いた場合には、安定した培養上清の採取
は行えるが、神経細胞を培養する際に、神経細胞よりも
共存するグリア細胞に対して増殖因子が作用し細胞増殖
が促進される。その結果、神経細胞の安定培養が障害さ
れる。
清を得るために、通常の無血清培養液ないしは血清が含
まれている培養液を用いる。しかし、通常の無血清培養
液を用いる培養上清の採取方法では、グリア細胞の生存
に対して充分な培養液とはならず、安定培養ができな
い。このため培養上清に含まれる神経細胞に作用する因
子群の量が少なく、神経細胞の培養に対して効果が低
い。また培養上清の採取には限度があり、数回程度で、
安定した効果を持つ培養上清の採取は難しくなる。血清
含有培養液を用いた場合には、安定した培養上清の採取
は行えるが、神経細胞を培養する際に、神経細胞よりも
共存するグリア細胞に対して増殖因子が作用し細胞増殖
が促進される。その結果、神経細胞の安定培養が障害さ
れる。
【００１０】通常、無血清培養液にはホルモン等の栄養
因子を加える方法が採られる。例えば、特開平３−６６
７００号公報には、ダルベッコ改変イーグル培地（以下
ＤＭＥＭと略す）培養液にインシュリン（５μg ／m
l）、トランスフェリン（１μg／ml）、ハイドロコーチ
ゾン（２０nM）、及び３，３′，５−トリヨード−Ｌ−
チロニン（０．３nM）を添加する培養法が開示されてい
る。しかしこの培養上清を用いて神経細胞を培養しても
数日間の培養しか行えず安定した培養を行うことができ
ない。また、同じく神経突起伸展因子として明示されて
いるα２−マクログロブリンは、中枢神経の培養におい
ては安定培養の効果が低く、主要な役割を果たすもので
はなく補助的役割を果たすにすぎないものである。
因子を加える方法が採られる。例えば、特開平３−６６
７００号公報には、ダルベッコ改変イーグル培地（以下
ＤＭＥＭと略す）培養液にインシュリン（５μg ／m
l）、トランスフェリン（１μg／ml）、ハイドロコーチ
ゾン（２０nM）、及び３，３′，５−トリヨード−Ｌ−
チロニン（０．３nM）を添加する培養法が開示されてい
る。しかしこの培養上清を用いて神経細胞を培養しても
数日間の培養しか行えず安定した培養を行うことができ
ない。また、同じく神経突起伸展因子として明示されて
いるα２−マクログロブリンは、中枢神経の培養におい
ては安定培養の効果が低く、主要な役割を果たすもので
はなく補助的役割を果たすにすぎないものである。
【００１１】更に、特開平３−１５５７７７号公報に
は、ミクログリア細胞の産生する因子が、神経細胞の突
起伸展に効果があることが示されている。ミクログリア
細胞は、マクロファージ（貧食細胞）のような免疫系細
胞の機能を示すといわれ、組織が障害を受けたときに活
性化の度合いが高くなる。しかし、一般的に生体内で
は、アストログリア細胞を含むマクログリア細胞の比率
が高く、炎症などの場合を除き、主としてマクログリア
細胞が恒常性を維持していると考えられている。
は、ミクログリア細胞の産生する因子が、神経細胞の突
起伸展に効果があることが示されている。ミクログリア
細胞は、マクロファージ（貧食細胞）のような免疫系細
胞の機能を示すといわれ、組織が障害を受けたときに活
性化の度合いが高くなる。しかし、一般的に生体内で
は、アストログリア細胞を含むマクログリア細胞の比率
が高く、炎症などの場合を除き、主としてマクログリア
細胞が恒常性を維持していると考えられている。
【００１２】
【発明が解決しようとする課題】上記のような従来の培
養液群を中枢神経細胞の培養に用いた場合、その効果は
低く、神経細胞の安定した培養を行うことができない。
すなわち、神経薬理試験等を行った場合に於いて、期待
する充分な結果が得られない。従って本発明は、神経細
胞の培養におけるこのような現状に鑑みてなされたもの
で、神経細胞を長期間安定に培養できる培養液を提供す
ることを目的とするものである。
養液群を中枢神経細胞の培養に用いた場合、その効果は
低く、神経細胞の安定した培養を行うことができない。
すなわち、神経薬理試験等を行った場合に於いて、期待
する充分な結果が得られない。従って本発明は、神経細
胞の培養におけるこのような現状に鑑みてなされたもの
で、神経細胞を長期間安定に培養できる培養液を提供す
ることを目的とするものである。
【００１３】
【課題を解決するための手段】本発明者らは神経細胞を
安定に培養するためには種々の栄養因子が必要であると
考え、これらの栄養因子に関して神経細胞の培養に与え
る効果を検討した。初代アストログリア細胞の培養上清
も栄養因子の一つとし検討したが、これらの栄養素は単
独の使用ではその効果が低い。特に、初代アストログリ
ア細胞の培養上清は、神経細胞の安定培養に対して、こ
れまで報告されて来た程の効果がない事が明らかになっ
た。そこで本発明者らは、栄養因子を複数を用いること
による複合効果、相乗効果の検討をすすめ、種々の培養
効果について鋭意研究を進めた結果、本発明を完成する
に至ったものである。
安定に培養するためには種々の栄養因子が必要であると
考え、これらの栄養因子に関して神経細胞の培養に与え
る効果を検討した。初代アストログリア細胞の培養上清
も栄養因子の一つとし検討したが、これらの栄養素は単
独の使用ではその効果が低い。特に、初代アストログリ
ア細胞の培養上清は、神経細胞の安定培養に対して、こ
れまで報告されて来た程の効果がない事が明らかになっ
た。そこで本発明者らは、栄養因子を複数を用いること
による複合効果、相乗効果の検討をすすめ、種々の培養
効果について鋭意研究を進めた結果、本発明を完成する
に至ったものである。
【００１４】すなわち、本発明は（Ａ）インシュリン及
びトランスフェリンを添加した栄養培地中で初代アスト
ログリア細胞を培養して採取した培養上清に、（Ｂ）ア
ルブミンを配合したことを特徴とする神経細胞用培養液
を提供するものである。
びトランスフェリンを添加した栄養培地中で初代アスト
ログリア細胞を培養して採取した培養上清に、（Ｂ）ア
ルブミンを配合したことを特徴とする神経細胞用培養液
を提供するものである。
【００１５】また、本発明は初代アストログリア細胞を
動物血清を添加した培地中で培養、増殖させた後、イン
シュリン及びトランスフェリンを添加した栄養培地中で
培養し、その上清を採取し、得られた培養上清にアルブ
ミンを添加することを特徴とする上記の神経細胞用培養
液の製造方法を提供するものである。
動物血清を添加した培地中で培養、増殖させた後、イン
シュリン及びトランスフェリンを添加した栄養培地中で
培養し、その上清を採取し、得られた培養上清にアルブ
ミンを添加することを特徴とする上記の神経細胞用培養
液の製造方法を提供するものである。
【００１６】更にまた、本発明は、上記神経細胞用培養
液中で神経細胞を培養することを特徴とする神経細胞の
培養方法を提供するものである。
液中で神経細胞を培養することを特徴とする神経細胞の
培養方法を提供するものである。
【００１７】
【発明の実施の形態】本発明の神経細胞用培養液を調製
するには、まず動物の脳よりアストログリア細胞を採取
し、初代アストログリア細胞を増殖させて充分量の初代
アストログリア細胞を得る。動物の脳よりアストログリ
ア細胞を採取するには、動物の新生仔（１〜２日）の大
脳より採取するのがよい。ここでアストログリア細胞採
取用の動物としては、ラット、マウス、ウシ、ウマ、ブ
タ、サル、ウサギ、ニワトリ等が挙げられるが、ラット
又はマウスが好ましい。具体的には、新生仔の脳より大
脳を切り出し、脳膜を除いた後、トリプシン、ディスパ
ーゼ、コラゲナーゼ、パパイン等の酵素を用いて細胞を
分散させる。これらの中でも特にトリプシン０．０５〜
０．３５ｗ／ｖ％（以下、単に％で示す）を用いるのが
好ましい。この酵素に更に、デオキシリボヌクレアーゼ
０．０１％（１００〜５００Ｕ／ml）や、エチレンジア
ミン−Ｎ，Ｎ，Ｎ′，Ｎ′−四酢酸（ＥＤＴＡ）０．０
１％を加える方法も効果的である。
するには、まず動物の脳よりアストログリア細胞を採取
し、初代アストログリア細胞を増殖させて充分量の初代
アストログリア細胞を得る。動物の脳よりアストログリ
ア細胞を採取するには、動物の新生仔（１〜２日）の大
脳より採取するのがよい。ここでアストログリア細胞採
取用の動物としては、ラット、マウス、ウシ、ウマ、ブ
タ、サル、ウサギ、ニワトリ等が挙げられるが、ラット
又はマウスが好ましい。具体的には、新生仔の脳より大
脳を切り出し、脳膜を除いた後、トリプシン、ディスパ
ーゼ、コラゲナーゼ、パパイン等の酵素を用いて細胞を
分散させる。これらの中でも特にトリプシン０．０５〜
０．３５ｗ／ｖ％（以下、単に％で示す）を用いるのが
好ましい。この酵素に更に、デオキシリボヌクレアーゼ
０．０１％（１００〜５００Ｕ／ml）や、エチレンジア
ミン−Ｎ，Ｎ，Ｎ′，Ｎ′−四酢酸（ＥＤＴＡ）０．０
１％を加える方法も効果的である。
【００１８】採取されたアストログリア細胞の培養、増
殖は動物血清を添加した培地中で行うのが好ましい。こ
こで用いられる動物血清としては、ウシ血清が好まし
く、ウシ胎児血清、仔ウシ血清、新生仔ウシ血清が特に
好ましい。また、動物血清の添加量は５〜２０％となる
量が好ましい。また、培地としては、動物細胞培養用の
栄養培地であれば特に制限されず、イーグルの最小必須
培地（以下ＭＥＭと略す）、ダルベッコ改変イーグル培
地（以下ＤＭＥＭと略す）、ＤＭＥＭ／ハムのＦ−１２
培地（以下、Ｆ−１２と略す）、Ｆ−１２、ハムのＦ−
１０培地（以下Ｆ−１０と略す）などの培地を用いるこ
とができる。ＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合培地は混合比を各
種変えたものが用いられるが、両培地の特徴を合わせ持
つ、６０／４０〜４０／６０（重量比）程度の範囲の混
合培地が特に好ましい。
殖は動物血清を添加した培地中で行うのが好ましい。こ
こで用いられる動物血清としては、ウシ血清が好まし
く、ウシ胎児血清、仔ウシ血清、新生仔ウシ血清が特に
好ましい。また、動物血清の添加量は５〜２０％となる
量が好ましい。また、培地としては、動物細胞培養用の
栄養培地であれば特に制限されず、イーグルの最小必須
培地（以下ＭＥＭと略す）、ダルベッコ改変イーグル培
地（以下ＤＭＥＭと略す）、ＤＭＥＭ／ハムのＦ−１２
培地（以下、Ｆ−１２と略す）、Ｆ−１２、ハムのＦ−
１０培地（以下Ｆ−１０と略す）などの培地を用いるこ
とができる。ＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合培地は混合比を各
種変えたものが用いられるが、両培地の特徴を合わせ持
つ、６０／４０〜４０／６０（重量比）程度の範囲の混
合培地が特に好ましい。
【００１９】培養液に分散したアストログリア細胞は、
細胞培養用のフラスコ、ディッシュ、プレート、もしく
はポリリジンコートを施したフラスコ、ディッシュ、プ
レートやマイクロキャリアーなどを用いて、コンフルエ
ントに（培養面全体に密に）なるまで培養し、増殖させ
る。培養面積は、新生仔１に対して１０〜１００cm2と
するのが好適である。そして、更に継代培養を行うが培
養面積は２〜１０倍程度が適当である。同様にコンフル
エントになるまで培養する。このコンフルエントになっ
た細胞は主として１型アストログリア（又は１型アスト
ロサイト）に分類されるものである。１型アストログリ
アであることは免疫細胞化学染色を行うことにより確認
できる。この細胞は抗ＧＦＡＰ（グリア繊維性酸性蛋白
質）抗体で染色され、抗Ａ２Ｂ５抗体（抗シアル酸含有
糖蛋白質抗体）で染色されない。
細胞培養用のフラスコ、ディッシュ、プレート、もしく
はポリリジンコートを施したフラスコ、ディッシュ、プ
レートやマイクロキャリアーなどを用いて、コンフルエ
ントに（培養面全体に密に）なるまで培養し、増殖させ
る。培養面積は、新生仔１に対して１０〜１００cm2と
するのが好適である。そして、更に継代培養を行うが培
養面積は２〜１０倍程度が適当である。同様にコンフル
エントになるまで培養する。このコンフルエントになっ
た細胞は主として１型アストログリア（又は１型アスト
ロサイト）に分類されるものである。１型アストログリ
アであることは免疫細胞化学染色を行うことにより確認
できる。この細胞は抗ＧＦＡＰ（グリア繊維性酸性蛋白
質）抗体で染色され、抗Ａ２Ｂ５抗体（抗シアル酸含有
糖蛋白質抗体）で染色されない。
【００２０】細胞がコンフルエントの状態になった時点
で培養液を除去し、リン酸塩緩衝液等で洗浄する。
で培養液を除去し、リン酸塩緩衝液等で洗浄する。
【００２１】かくして得られた初代アストログリア細胞
を、インシュリン及びトランスフェリンを添加した栄養
培地中で培養し、その上清を採取する。ここで用いられ
る栄養培地としては、ＭＥＭ、ＤＭＥＭ、Ｆ−１０及び
Ｆ−１２から選ばれる１種又は２種以上が挙げられる
が、ＭＥＭ、ＤＭＥＭ、ＤＭＥＭ／Ｆ−１０又はＤＭＥ
Ｍ／Ｆ−１２が好ましく、ＤＭＥＭ／Ｆ−１２が特に好
ましい。更にＤＭＥＭ／Ｆ−１２は６０／４０〜４０／
６０（重量比）の混合比のものが好ましい。
を、インシュリン及びトランスフェリンを添加した栄養
培地中で培養し、その上清を採取する。ここで用いられ
る栄養培地としては、ＭＥＭ、ＤＭＥＭ、Ｆ−１０及び
Ｆ−１２から選ばれる１種又は２種以上が挙げられる
が、ＭＥＭ、ＤＭＥＭ、ＤＭＥＭ／Ｆ−１０又はＤＭＥ
Ｍ／Ｆ−１２が好ましく、ＤＭＥＭ／Ｆ−１２が特に好
ましい。更にＤＭＥＭ／Ｆ−１２は６０／４０〜４０／
６０（重量比）の混合比のものが好ましい。
【００２２】これらの栄養培地にはインシュリン及びト
ランスフェリンを添加するが、更に亜セレン酸又はその
塩を添加するのがより好ましい。ここでインシュリンは
１〜１００μg ／ml、好ましくは３〜２０μg ／mlの濃
度となるように添加される。トランスフェリンは１〜１
００μg ／ml、好ましくは３〜２０μg ／mlの濃度とな
るように添加される。また、亜セレン酸の塩としては、
亜セレン酸ナトリウム、亜セレン酸カリウム等が挙げら
れる。亜セレン酸又はその塩は１〜１００nM、特に３〜
５０nMの濃度となるように添加するのが好ましい。イン
シュリン、トランスフェリン、亜セレン酸塩はいずれも
水溶性であり、そのまま添加してもよいが、各成分を混
合した高濃度溶液を調製しておき、その一定量加えるの
も好ましい方法である。
ランスフェリンを添加するが、更に亜セレン酸又はその
塩を添加するのがより好ましい。ここでインシュリンは
１〜１００μg ／ml、好ましくは３〜２０μg ／mlの濃
度となるように添加される。トランスフェリンは１〜１
００μg ／ml、好ましくは３〜２０μg ／mlの濃度とな
るように添加される。また、亜セレン酸の塩としては、
亜セレン酸ナトリウム、亜セレン酸カリウム等が挙げら
れる。亜セレン酸又はその塩は１〜１００nM、特に３〜
５０nMの濃度となるように添加するのが好ましい。イン
シュリン、トランスフェリン、亜セレン酸塩はいずれも
水溶性であり、そのまま添加してもよいが、各成分を混
合した高濃度溶液を調製しておき、その一定量加えるの
も好ましい方法である。
【００２３】培養期間は１日程度でよく、上清を採取し
た後、再び新しい培地及び添加剤を加えて培養を行え
ば、上清を繰り返し採取することが出来る。このように
して１日毎に上清を採取すれば、初代アストログリア細
胞の１回の準備操作で、１０回以上、１５回程度まで上
清を採取することが可能である。
た後、再び新しい培地及び添加剤を加えて培養を行え
ば、上清を繰り返し採取することが出来る。このように
して１日毎に上清を採取すれば、初代アストログリア細
胞の１回の準備操作で、１０回以上、１５回程度まで上
清を採取することが可能である。
【００２４】採取した培養上清は、孔径０．０２〜０．
４５μm のフィルターにより濾過滅菌し、細胞片などを
除いて用いるのが好ましい。
４５μm のフィルターにより濾過滅菌し、細胞片などを
除いて用いるのが好ましい。
【００２５】この培養上清のみを培養液として用いても
神経細胞の安定培養はできない。アルブミンを添加する
ことにより安定培養が可能となる。当該アルブミンに加
えてプロジェステロンを添加するのがより好ましい。こ
こでアルブミンは０．５〜２．５mg／mlの濃度となるよ
うに添加するのが好ましく、プロジェステロンは１〜１
００nMの濃度となるように添加するのが好ましい。
神経細胞の安定培養はできない。アルブミンを添加する
ことにより安定培養が可能となる。当該アルブミンに加
えてプロジェステロンを添加するのがより好ましい。こ
こでアルブミンは０．５〜２．５mg／mlの濃度となるよ
うに添加するのが好ましく、プロジェステロンは１〜１
００nMの濃度となるように添加するのが好ましい。
【００２６】また、培養上清中のインシュリン、トラン
スフェリン及び亜セレン酸又はその塩の濃度が低い場合
には、インシュリン１〜１００μg ／ml、トランスフェ
リン１〜１００μg ／ml、亜セレン酸又はその塩１〜１
００nMとなるように添加するのが好ましい。
スフェリン及び亜セレン酸又はその塩の濃度が低い場合
には、インシュリン１〜１００μg ／ml、トランスフェ
リン１〜１００μg ／ml、亜セレン酸又はその塩１〜１
００nMとなるように添加するのが好ましい。
【００２７】更に、前記培養上清中にはスーパーオキシ
ドジスムターゼとカタラーゼの組み合わせ、及び／又は
α−トコフェロール類を添加するのがより好ましい。こ
れらの添加剤の好ましい濃度は、スーパーオキシドジス
ムターゼ１〜１００μg ／ml、カタラーゼ１〜１００μ
g ／ml、α−トコフェロール類１〜１００μg ／mlであ
る。ここでα−トコフェロール類としてはα−トコフェ
ロール、酢酸トコフェロール、コハク酸トコフェロール
等のα−トコフェロールエステルが挙げられる。
ドジスムターゼとカタラーゼの組み合わせ、及び／又は
α−トコフェロール類を添加するのがより好ましい。こ
れらの添加剤の好ましい濃度は、スーパーオキシドジス
ムターゼ１〜１００μg ／ml、カタラーゼ１〜１００μ
g ／ml、α−トコフェロール類１〜１００μg ／mlであ
る。ここでα−トコフェロール類としてはα−トコフェ
ロール、酢酸トコフェロール、コハク酸トコフェロール
等のα−トコフェロールエステルが挙げられる。
【００２８】このように前記培養上清にアルブミン及び
その他の添加剤を加えた培養液では、神経細胞を安定に
培養することが可能で、従来の培養液に見られた低密度
培養時の不安定性も改善され、高い安定性を示す。
その他の添加剤を加えた培養液では、神経細胞を安定に
培養することが可能で、従来の培養液に見られた低密度
培養時の不安定性も改善され、高い安定性を示す。
【００２９】また、前記培養上清には、神経細胞の栄養
源として新たに前記の培地を添加してもよく、より好ま
しい培地としてはＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合培地が挙げら
れる。新たに加える培地の添加量は０〜７５％、特に
０．１〜５０％になる量が好ましい。
源として新たに前記の培地を添加してもよく、より好ま
しい培地としてはＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合培地が挙げら
れる。新たに加える培地の添加量は０〜７５％、特に
０．１〜５０％になる量が好ましい。
【００３０】特に好ましい添加剤の組み合わせとして
は、アルブミン、プロジェステロン、インシュリン、ト
ランスフェリン及び亜セレン酸又はその塩；当該５種と
α−トコフェロール類との組み合わせ；当該５種とスー
パーオキシドジスムターゼ及びカタラーゼとの組み合わ
せ；当該５種とα−トコフェロール類、スーパーオキシ
ドジスムターゼ及びカタラーゼとの組み合わせ；並びに
これらの組み合わせにＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合培地を添
加したもの、等が挙げられる。
は、アルブミン、プロジェステロン、インシュリン、ト
ランスフェリン及び亜セレン酸又はその塩；当該５種と
α−トコフェロール類との組み合わせ；当該５種とスー
パーオキシドジスムターゼ及びカタラーゼとの組み合わ
せ；当該５種とα−トコフェロール類、スーパーオキシ
ドジスムターゼ及びカタラーゼとの組み合わせ；並びに
これらの組み合わせにＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合培地を添
加したもの、等が挙げられる。
【００３１】培養上清への上記添加剤の添加の方法は、
プロジェステロンとして水溶性プロジェステロン、α−
トコフェロールとして水溶性α−トコフェロールを用い
れば、前記と同様に各成分を混合した高濃度溶液として
添加する方法が適用できる。また、非水溶性プロジェス
テロン、非水溶性α−トコフェロールを用いる場合は、
エタノールにあらかじめ溶解したものを用いればよい。
プロジェステロンとして水溶性プロジェステロン、α−
トコフェロールとして水溶性α−トコフェロールを用い
れば、前記と同様に各成分を混合した高濃度溶液として
添加する方法が適用できる。また、非水溶性プロジェス
テロン、非水溶性α−トコフェロールを用いる場合は、
エタノールにあらかじめ溶解したものを用いればよい。
【００３２】培養上清は凍結することにより安定に保存
することが可能である。そこで前記のように１日毎に繰
り返して上清を採取する場合は、その都度インシュリン
等の添加剤を加えるのでなく、凍結して保存しておき、
複数回分の上清の採取が終わった時点で凍結した培養上
清を融解し、全体を均一に混合し、これと上記の添加剤
を混合すれば、より均質な神経細胞用培養液を得ること
ができる。この添加剤はあらかじめ溶液状に溶解したも
のを加える方がよい。
することが可能である。そこで前記のように１日毎に繰
り返して上清を採取する場合は、その都度インシュリン
等の添加剤を加えるのでなく、凍結して保存しておき、
複数回分の上清の採取が終わった時点で凍結した培養上
清を融解し、全体を均一に混合し、これと上記の添加剤
を混合すれば、より均質な神経細胞用培養液を得ること
ができる。この添加剤はあらかじめ溶液状に溶解したも
のを加える方がよい。
【００３３】添加剤は純水ないしは、リン酸塩緩衝液等
の水溶液に溶解し凍結保存すれば安定に使用が可能であ
る。プロジェステロン、α−トコフェロールなどの、非
水溶性の成分はエタノール等に溶解し同様に凍結保存す
ればよい。また、このようにして調製した本発明の培養
液も凍結して安定に保存することができる。培養上清、
上記の添加剤、混合した培養液いずれも凍結保存温度は
−１０〜−８０℃が適しており、冷蔵温度（４〜８℃）
では長期間の安定保存は難しい。また凍結融解の操作は
繰り返さないことが好ましい。
の水溶液に溶解し凍結保存すれば安定に使用が可能であ
る。プロジェステロン、α−トコフェロールなどの、非
水溶性の成分はエタノール等に溶解し同様に凍結保存す
ればよい。また、このようにして調製した本発明の培養
液も凍結して安定に保存することができる。培養上清、
上記の添加剤、混合した培養液いずれも凍結保存温度は
−１０〜−８０℃が適しており、冷蔵温度（４〜８℃）
では長期間の安定保存は難しい。また凍結融解の操作は
繰り返さないことが好ましい。
【００３４】本発明の培養液を用いて神経細胞の培養を
行うには、この培養液に神経細胞を添加し常法に従い、
培養すればよい。神経細胞は、初代アストログリア細胞
と同様の動物から細胞を調製することが可能である。生
後の個体を用いても培養は可能であるが、一般的に胎児
を用いた方が神経細胞の生存率は高くなる。ラットでは
胎生１５〜２０日程が好適であるが、より未熟な胎児を
使用することも可能である。脳の特定領域、例えば、海
馬、線条体、中隔野あるいは中脳、小脳などに限定して
の培養も可能である。小脳の場合は神経細胞の分化にあ
わせた生後１週間ほどの個体を用いると効果的な培養が
可能である。
行うには、この培養液に神経細胞を添加し常法に従い、
培養すればよい。神経細胞は、初代アストログリア細胞
と同様の動物から細胞を調製することが可能である。生
後の個体を用いても培養は可能であるが、一般的に胎児
を用いた方が神経細胞の生存率は高くなる。ラットでは
胎生１５〜２０日程が好適であるが、より未熟な胎児を
使用することも可能である。脳の特定領域、例えば、海
馬、線条体、中隔野あるいは中脳、小脳などに限定して
の培養も可能である。小脳の場合は神経細胞の分化にあ
わせた生後１週間ほどの個体を用いると効果的な培養が
可能である。
【００３５】脳を酵素処理し神経細胞を分散した場合に
は、通常、神経細胞の他にグリア細胞等（初代アストロ
グリア細胞など）が混入してくる。初代アストログリア
細胞には１型と２型があるが、血清添加培養液の場合に
は、このなかで１型アストログリア細胞が増殖し問題と
なる。しかし本発明の培養液にはこの細胞の増殖を抑え
る効果がある。初代アストログリア細胞の形態からの１
型、２型の判別は確実とはいえず、免疫細胞化学染色法
による判別方法を用いる。抗ＧＦＡＰ抗体では１型、２
型両方が染色されるが、抗Ａ２Ｂ５抗体では２型のみが
染色される。この染色性の違いにより１型と２型の判別
が可能である。
は、通常、神経細胞の他にグリア細胞等（初代アストロ
グリア細胞など）が混入してくる。初代アストログリア
細胞には１型と２型があるが、血清添加培養液の場合に
は、このなかで１型アストログリア細胞が増殖し問題と
なる。しかし本発明の培養液にはこの細胞の増殖を抑え
る効果がある。初代アストログリア細胞の形態からの１
型、２型の判別は確実とはいえず、免疫細胞化学染色法
による判別方法を用いる。抗ＧＦＡＰ抗体では１型、２
型両方が染色されるが、抗Ａ２Ｂ５抗体では２型のみが
染色される。この染色性の違いにより１型と２型の判別
が可能である。
【００３６】胎児の脳を用いた場合は未分化細胞の混入
の比率が高くなる。本発明の培養液は、この未分化な幹
細胞の一つであるオリゴデンドログリア（又はオリゴデ
ンドロサイト）−２型アストログリア（又は２型アスト
ロサイト）幹細胞（以下Ｏ−２Ａ幹細胞）の増殖分化を
誘導する効果がある。培養を継続すると、培養系に、当
初認められなかったオリゴデンドログリアを認めること
ができるようになる。これはＯ−２Ａ幹細胞が増殖、分
化したものである。オリゴデンドログリアであること
は、アストログリア細胞を判別する場合と同様の免疫細
胞化学染色の方法で適用できる。例えば抗ＧＣ（ガラク
トセレブロシド）抗体、抗ＭＢＰ（ミエリン塩基性蛋白
質）抗体などを用いて染色すると明確な判別が可能であ
る。
の比率が高くなる。本発明の培養液は、この未分化な幹
細胞の一つであるオリゴデンドログリア（又はオリゴデ
ンドロサイト）−２型アストログリア（又は２型アスト
ロサイト）幹細胞（以下Ｏ−２Ａ幹細胞）の増殖分化を
誘導する効果がある。培養を継続すると、培養系に、当
初認められなかったオリゴデンドログリアを認めること
ができるようになる。これはＯ−２Ａ幹細胞が増殖、分
化したものである。オリゴデンドログリアであること
は、アストログリア細胞を判別する場合と同様の免疫細
胞化学染色の方法で適用できる。例えば抗ＧＣ（ガラク
トセレブロシド）抗体、抗ＭＢＰ（ミエリン塩基性蛋白
質）抗体などを用いて染色すると明確な判別が可能であ
る。
【００３７】具体的な神経細胞の培養方法は、先ず前記
と同様にして脳を切り出す。そしてトリプシン、パパイ
ン、ディスパーゼなどの酵素を用いて神経細胞分散液を
調製する。好ましくはパパイン（１０〜５０Ｕ／ml）を
用いる方がよい。パパインを溶解したリン酸塩緩衝液に
Ｌ−システイン（０．５〜５mM）、グルコース（５〜５
０mM）を加え、３７℃で３０〜１２０分、脳組織を酵素
処理する。分散酵素液を丁寧に攪拌、混和することによ
り神経細胞を分散させる。デオキシリボヌクレアーゼ
（０．０１％）を更に添加した方が漏出した核酸による
細胞の凝集を防ぐことができる。
と同様にして脳を切り出す。そしてトリプシン、パパイ
ン、ディスパーゼなどの酵素を用いて神経細胞分散液を
調製する。好ましくはパパイン（１０〜５０Ｕ／ml）を
用いる方がよい。パパインを溶解したリン酸塩緩衝液に
Ｌ−システイン（０．５〜５mM）、グルコース（５〜５
０mM）を加え、３７℃で３０〜１２０分、脳組織を酵素
処理する。分散酵素液を丁寧に攪拌、混和することによ
り神経細胞を分散させる。デオキシリボヌクレアーゼ
（０．０１％）を更に添加した方が漏出した核酸による
細胞の凝集を防ぐことができる。
【００３８】次に、遠心分離機により細胞を分離し、前
記のように調製した本発明の培養液を用いて１０，００
０〜２，０００，０００cells／mlの細胞液を調製し、
培養用のプレート、ディッシュなどを用いて、３７℃の
５％炭酸ガスインキュベーターで培養する。培養に用い
るプレート、ディッシュ等は、ガラス、プラスチック等
材質は問わないが、ポリリジシン、ポリオルニチン、ポ
リアリルアミン、プロタミン、ラミニン、コラーゲン、
ゼラチン、フィブロネクチン、ビトロネクチン、テネイ
シン、及びこれらを混和したものを、単層ないしは複層
コートしたものを用いるのが良い。
記のように調製した本発明の培養液を用いて１０，００
０〜２，０００，０００cells／mlの細胞液を調製し、
培養用のプレート、ディッシュなどを用いて、３７℃の
５％炭酸ガスインキュベーターで培養する。培養に用い
るプレート、ディッシュ等は、ガラス、プラスチック等
材質は問わないが、ポリリジシン、ポリオルニチン、ポ
リアリルアミン、プロタミン、ラミニン、コラーゲン、
ゼラチン、フィブロネクチン、ビトロネクチン、テネイ
シン、及びこれらを混和したものを、単層ないしは複層
コートしたものを用いるのが良い。
【００３９】
【実施例】以下、実施例に基づいて本発明を具体的に説
明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものでは
ない。
明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものでは
ない。
【００４０】実施例１、比較例１〜２ （１）培養液の調製 ウイスター系ラットの新生仔（生後１日）３匹の脳より
大脳を切り出し、０．２５％のトリプシン／リン酸塩緩
衝液（フロウ・ラボラトリー社製）を用いて３７℃で３
０分酵素処理した。酵素液を除き、１０％牛胎児血清
（ハイクローン社製）及びゲンタマイシン（シグマ社
製）５０μg ／mlを含むＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合培
養液（ライフ・テクノロジー社製）で組織を分散させ、
細胞分離用遠心機（クボタ社製）により９００回転、５
分の条件で細胞を遠心分離した。
大脳を切り出し、０．２５％のトリプシン／リン酸塩緩
衝液（フロウ・ラボラトリー社製）を用いて３７℃で３
０分酵素処理した。酵素液を除き、１０％牛胎児血清
（ハイクローン社製）及びゲンタマイシン（シグマ社
製）５０μg ／mlを含むＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合培
養液（ライフ・テクノロジー社製）で組織を分散させ、
細胞分離用遠心機（クボタ社製）により９００回転、５
分の条件で細胞を遠心分離した。
【００４１】分離した細胞は、１５mlの同じ培養液を加
え７５cm2 の培養フラスコ（住友ベークライト社製）を
用いて、３７℃、５％の炭酸ガスインキュベーター内で
１０日間培養した。培養液を除き、フラスコ内にコンフ
ルエントに増殖した細胞を、リン酸塩緩衝液で洗浄した
後、０．２５％のトリプシン／リン酸塩緩衝液で、３７
℃で５分間酵素処理した。ここで再び同じ培養液１５０
mlを加えて細胞を分散させ、同様に遠心分離し１５０ml
の培養液に再分散させた後、これを２２５cm2の培養フ
ラスコ（住友ベークライト社製）３個に分けて、１０日
間培養した。なお、培養液は２〜３日に１回新しいもの
と交換した。
え７５cm2 の培養フラスコ（住友ベークライト社製）を
用いて、３７℃、５％の炭酸ガスインキュベーター内で
１０日間培養した。培養液を除き、フラスコ内にコンフ
ルエントに増殖した細胞を、リン酸塩緩衝液で洗浄した
後、０．２５％のトリプシン／リン酸塩緩衝液で、３７
℃で５分間酵素処理した。ここで再び同じ培養液１５０
mlを加えて細胞を分散させ、同様に遠心分離し１５０ml
の培養液に再分散させた後、これを２２５cm2の培養フ
ラスコ（住友ベークライト社製）３個に分けて、１０日
間培養した。なお、培養液は２〜３日に１回新しいもの
と交換した。
【００４２】培養液を除去し、リン酸塩緩衝液で２回洗
浄した後、インシュリン（５μg ／ml）、トランスフェ
リン（５μg ／ml）、亜セレン酸ナトリウム（５nM）
（いずれもシグマ社製）を添加したＤＭＥＭ／Ｆ−１２
等比混合培養液を加えて、１日間培養し、その培養上清
を全量採取して、再び同じ培養液を加えた。同様の操作
を１０日間（１０回）繰り返した。比較例１として、上
記の添加物を加えずに、同様に操作して培養上清を採取
した。尚、培養液の量は、培養器の形態により適宜増減
することが可能であるが、プレート、フラスコ、ディッ
シュ、トレーなどでは、培養面積当たりでは０．１５〜
０．３５ml／cm2 の範囲とするのが適切である。
浄した後、インシュリン（５μg ／ml）、トランスフェ
リン（５μg ／ml）、亜セレン酸ナトリウム（５nM）
（いずれもシグマ社製）を添加したＤＭＥＭ／Ｆ−１２
等比混合培養液を加えて、１日間培養し、その培養上清
を全量採取して、再び同じ培養液を加えた。同様の操作
を１０日間（１０回）繰り返した。比較例１として、上
記の添加物を加えずに、同様に操作して培養上清を採取
した。尚、培養液の量は、培養器の形態により適宜増減
することが可能であるが、プレート、フラスコ、ディッ
シュ、トレーなどでは、培養面積当たりでは０．１５〜
０．３５ml／cm2 の範囲とするのが適切である。
【００４３】採取した培養上清は、０．２２μm フィル
ター（ミリポア社製）で濾過滅菌して凍結保存し、１０
回分の上清を採取した後、解凍し全体をまとめて均一に
混合した。これに、アルブミン（ＡＬＢＵＭＡＸTMＩ、
ライフ・テクノロジー社製、２．５mg／ml）を加え、−
７０℃で保存した。
ター（ミリポア社製）で濾過滅菌して凍結保存し、１０
回分の上清を採取した後、解凍し全体をまとめて均一に
混合した。これに、アルブミン（ＡＬＢＵＭＡＸTMＩ、
ライフ・テクノロジー社製、２．５mg／ml）を加え、−
７０℃で保存した。
【００４４】（２）神経細胞の培養試験 試料となる神経細胞は、胎生１７日のラットより大脳を
切り出し、１mMシステイン、２５mMグルコース、１mg／
mlアルブミン（各シグマ社製）を含有するリン酸塩緩衝
液で、２０Ｕ／mlに調製した、パパイン（ワージントン
社製）を用いて３７℃で４５分酵素処理した。酵素液を
除き、ＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合培養液で細胞を分散させ
た後、７００回転、５分の遠心分離条件で細胞を分離し
た。
切り出し、１mMシステイン、２５mMグルコース、１mg／
mlアルブミン（各シグマ社製）を含有するリン酸塩緩衝
液で、２０Ｕ／mlに調製した、パパイン（ワージントン
社製）を用いて３７℃で４５分酵素処理した。酵素液を
除き、ＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合培養液で細胞を分散させ
た後、７００回転、５分の遠心分離条件で細胞を分離し
た。
【００４５】（１）で得られた本発明の培養液を用い
て、６００，０００ｃ／mlの細胞濃度の溶液を調製し、
ポリリジンコート２４ウェルプレート（住友ベークライ
ト社製）を用いて０．５ml／ウェルで培養した。比較例
２としては、本発明の培養液を加えないＤＭＥＭ／Ｆ−
１２液等比混合培養を用いて、同じ条件で培養を行っ
た。
て、６００，０００ｃ／mlの細胞濃度の溶液を調製し、
ポリリジンコート２４ウェルプレート（住友ベークライ
ト社製）を用いて０．５ml／ウェルで培養した。比較例
２としては、本発明の培養液を加えないＤＭＥＭ／Ｆ−
１２液等比混合培養を用いて、同じ条件で培養を行っ
た。
【００４６】４日間培養した後、顕微鏡下で細胞の形態
を観察した。本発明の培養液を用いたものは、良好な生
存と長い神経突起の伸展が観察され、シナプスを形成す
る突起間のコンタクトがたいへん多く認められた。しか
し、比較例１の培養液を用いたものでは、神経突起の伸
展が著しく劣っており、死細胞と思われる形態をしてい
るものが多く認められた。また、比較例２の培養液で
は、生存細胞は認められなかった。
を観察した。本発明の培養液を用いたものは、良好な生
存と長い神経突起の伸展が観察され、シナプスを形成す
る突起間のコンタクトがたいへん多く認められた。しか
し、比較例１の培養液を用いたものでは、神経突起の伸
展が著しく劣っており、死細胞と思われる形態をしてい
るものが多く認められた。また、比較例２の培養液で
は、生存細胞は認められなかった。
【００４７】更に、生細胞と死細胞の比率を求めるた
め、リン酸塩緩衝液に溶解し培養液に加えた二酢酸フル
オレセイン（シグマ社製）１０μg ／mlと、ヨウ化プロ
ピジウム（シグマ社製）１５μg ／mlとを反応させた。
蛍光顕微鏡（オリンパス光学社製）で異なった蛍光を発
する生細胞と死細胞の比率を測定したところ、本発明の
培養液で培養したサンプルでは、生存率は８０％以上の
良好な値を示した。
め、リン酸塩緩衝液に溶解し培養液に加えた二酢酸フル
オレセイン（シグマ社製）１０μg ／mlと、ヨウ化プロ
ピジウム（シグマ社製）１５μg ／mlとを反応させた。
蛍光顕微鏡（オリンパス光学社製）で異なった蛍光を発
する生細胞と死細胞の比率を測定したところ、本発明の
培養液で培養したサンプルでは、生存率は８０％以上の
良好な値を示した。
【００４８】実施例２、比較例３ 実施例１と同様にして初代アストログリア細胞を培養
し、培養上清を採取した。得られた培養上清を用いて、
培養上清とＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合培養液の比率が
７５／２５、５０／５０、２５／７５、及び１０／９０
になるようにそれぞれ調製し、その全体量に対して、プ
ロジェステロン（２０nM）及びアルブミン（２．５mg／
ml）（いずれもコラボレイティブ・リサーチ社製）の添
加物を、各溶液に加えて培養液を調製した。更に、比較
例３として、ＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合液にウシ胎児
血清（ハイクローン社製）１０％を加えたものを用い
た。実施例１と同様にして神経細胞液を５００，０００
ｃ／mlの濃度に調製し、実施例１と同様にして培養を行
った。
し、培養上清を採取した。得られた培養上清を用いて、
培養上清とＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合培養液の比率が
７５／２５、５０／５０、２５／７５、及び１０／９０
になるようにそれぞれ調製し、その全体量に対して、プ
ロジェステロン（２０nM）及びアルブミン（２．５mg／
ml）（いずれもコラボレイティブ・リサーチ社製）の添
加物を、各溶液に加えて培養液を調製した。更に、比較
例３として、ＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合液にウシ胎児
血清（ハイクローン社製）１０％を加えたものを用い
た。実施例１と同様にして神経細胞液を５００，０００
ｃ／mlの濃度に調製し、実施例１と同様にして培養を行
った。
【００４９】４日間培養した後、顕微鏡下で観察したと
ころ、培養上清とＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合液の比を７５
／２５、及び５０／５０とした培養液では、神経細胞の
良好な生存維持と神経突起の伸展が観察された。２５／
７５の培養液では、生存細胞数がやや少なく、１０／９
０の培養液では、生存細胞、神経突起の伸展のいずれも
劣っていた。また、比較例３のウシ胎児血清を用いた培
養液では、生存している神経細胞の数が少なく、グリア
細胞の存在が多く認められた。
ころ、培養上清とＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合液の比を７５
／２５、及び５０／５０とした培養液では、神経細胞の
良好な生存維持と神経突起の伸展が観察された。２５／
７５の培養液では、生存細胞数がやや少なく、１０／９
０の培養液では、生存細胞、神経突起の伸展のいずれも
劣っていた。また、比較例３のウシ胎児血清を用いた培
養液では、生存している神経細胞の数が少なく、グリア
細胞の存在が多く認められた。
【００５０】培養上清とＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合液の比
が７５／２５の培養液で培養したもの、及び比較例３の
血清添加で培養したものについて、神経細胞であること
を確認するため、抗ＭＡＰ２抗体（ベーリンガーマンハ
イム社製）による免疫組織化学染色を行った。培養液を
除きリン酸塩緩衝液で洗浄した後パラフォルムアルデヒ
ド（和光純薬社製）４％のリン酸塩緩衝液で２０分、ト
リトンＸ−１００（ベーリンガーマンハイム社製）の
０．１％リン酸塩緩衝液を２０分、ヒツジ血清１％のリ
ン酸塩緩衝液を２０分、順次反応させ、更に、抗ＭＡＰ
２抗体をリン酸塩緩衝液で５μg ／mlに調製し、３０分
間反応させた。なお、反応はいずれも室温で行い、各反
応後にはリン酸塩緩衝液で洗浄した。
が７５／２５の培養液で培養したもの、及び比較例３の
血清添加で培養したものについて、神経細胞であること
を確認するため、抗ＭＡＰ２抗体（ベーリンガーマンハ
イム社製）による免疫組織化学染色を行った。培養液を
除きリン酸塩緩衝液で洗浄した後パラフォルムアルデヒ
ド（和光純薬社製）４％のリン酸塩緩衝液で２０分、ト
リトンＸ−１００（ベーリンガーマンハイム社製）の
０．１％リン酸塩緩衝液を２０分、ヒツジ血清１％のリ
ン酸塩緩衝液を２０分、順次反応させ、更に、抗ＭＡＰ
２抗体をリン酸塩緩衝液で５μg ／mlに調製し、３０分
間反応させた。なお、反応はいずれも室温で行い、各反
応後にはリン酸塩緩衝液で洗浄した。
【００５１】次にＡＢＣ免疫組織化学キット（ベクター
社製）、及びＤＡＢ基質キット（ベクター社製）で染色
を行った。その結果、前記の形態観察から神経細胞と判
断された細胞は大半が染色され、神経細胞であることが
確認された。しかし、比較例３の血清添加で培養した方
の細胞は染色される細胞が少なく、形態からグリア細胞
と判断されるものは染色されなかった。
社製）、及びＤＡＢ基質キット（ベクター社製）で染色
を行った。その結果、前記の形態観察から神経細胞と判
断された細胞は大半が染色され、神経細胞であることが
確認された。しかし、比較例３の血清添加で培養した方
の細胞は染色される細胞が少なく、形態からグリア細胞
と判断されるものは染色されなかった。
【００５２】実施例３、比較例４ 実施例１と同様にして神経細胞用培養液を調製した。試
料となる神経細胞は、ウイスター系ラットの胎児（胎生
１６日）の海馬より、実施例１と同様にして調製した。
２４ウェルラミニンコートプレート（住友ベークライト
社製）に２５０，０００ｃ／ウェルの細胞を加え、１４
日間培養した。培養３〜５日の間は、シトシンアラビノ
フラノシド（シグマ社製）を５μM 加えた。培養液の交
換は１／２量を週２度交換した。また、比較例４とし
て、ＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合培養液に、インシュリ
ン（５μg ／ml）、トランスフェリン（５μg ／ml）、
プロジェステロン（２０nM）、及び亜セレン酸ナトリウ
ム（２０nM）を加えたが、アルブミンを加えないものを
用いて、同様にして培養を行った。
料となる神経細胞は、ウイスター系ラットの胎児（胎生
１６日）の海馬より、実施例１と同様にして調製した。
２４ウェルラミニンコートプレート（住友ベークライト
社製）に２５０，０００ｃ／ウェルの細胞を加え、１４
日間培養した。培養３〜５日の間は、シトシンアラビノ
フラノシド（シグマ社製）を５μM 加えた。培養液の交
換は１／２量を週２度交換した。また、比較例４とし
て、ＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合培養液に、インシュリ
ン（５μg ／ml）、トランスフェリン（５μg ／ml）、
プロジェステロン（２０nM）、及び亜セレン酸ナトリウ
ム（２０nM）を加えたが、アルブミンを加えないものを
用いて、同様にして培養を行った。
【００５３】培養１４日の時点で観察したところ、比較
例４の培養液を用いた方は細胞が全て死滅していたが、
本発明の培養液を用いた場合では、神経細胞間の緊密な
ネットワーク形成が観察された。
例４の培養液を用いた方は細胞が全て死滅していたが、
本発明の培養液を用いた場合では、神経細胞間の緊密な
ネットワーク形成が観察された。
【００５４】実施例４ （１）培養液の調製 実施例１と同様にして初代アストログリア細胞を培養
し、培養上清を採取した。これに、インシュリン５μg
／ml、トランスフェリン５μg ／ml、スーパーオキシド
ジスムターゼ２．５μg ／ml、カタラーゼ２．５μg ／
ml、亜セレン酸ナトリウム１００nM、プロジェステロン
２０nM、酢酸トコフェロール１μg ／ml、アルブミン
２．５mg／ml（いずれもシグマ社製）で各栄養因子を加
え培養液を調製し、−７０℃で保存した。
し、培養上清を採取した。これに、インシュリン５μg
／ml、トランスフェリン５μg ／ml、スーパーオキシド
ジスムターゼ２．５μg ／ml、カタラーゼ２．５μg ／
ml、亜セレン酸ナトリウム１００nM、プロジェステロン
２０nM、酢酸トコフェロール１μg ／ml、アルブミン
２．５mg／ml（いずれもシグマ社製）で各栄養因子を加
え培養液を調製し、−７０℃で保存した。
【００５５】比較のための培養液として、上記の培養上
清に栄養因子を加えないもの（前記比較例１と同じ）
を、また培養上清に栄養因子としてインシュリン５μg
／ml、トランスフェリン５μg ／ml、プロジェステロン
２０nM及び亜セレン酸ナトリウム１００nMを添加した
が、アルブミンを加えない培養液（前記比較例４と同
じ）を調製した。
清に栄養因子を加えないもの（前記比較例１と同じ）
を、また培養上清に栄養因子としてインシュリン５μg
／ml、トランスフェリン５μg ／ml、プロジェステロン
２０nM及び亜セレン酸ナトリウム１００nMを添加した
が、アルブミンを加えない培養液（前記比較例４と同
じ）を調製した。
【００５６】（２）神経細胞の培養試験 試料となる神経細胞は、胎生１７日のラットより大脳を
切り出し、１mMシステイン、２５mMグルコース、１mg／
mlアルブミン（各シグマ社製）を含有するリン酸塩緩衝
液で、２０Ｕ／mlに調製したパパイン（ワージントン社
製）液５mlを用いて３７℃で４５分酵素処理した。酵素
液を除き、５０μg ／mlのゲンタマイシンを含むＤＭＥ
Ｍ／Ｆ−１２混合培養液で細胞を分散させた後、７００
回転、５分の遠心分離条件で細胞を分離した。上記実施
例、比較例培養液で調製した神経細胞は、５００cells
／mm2の培養密度で、ポリリジンコート４８ウェルプレ
ート（住友ベークライト社製）を用いて培養した。
切り出し、１mMシステイン、２５mMグルコース、１mg／
mlアルブミン（各シグマ社製）を含有するリン酸塩緩衝
液で、２０Ｕ／mlに調製したパパイン（ワージントン社
製）液５mlを用いて３７℃で４５分酵素処理した。酵素
液を除き、５０μg ／mlのゲンタマイシンを含むＤＭＥ
Ｍ／Ｆ−１２混合培養液で細胞を分散させた後、７００
回転、５分の遠心分離条件で細胞を分離した。上記実施
例、比較例培養液で調製した神経細胞は、５００cells
／mm2の培養密度で、ポリリジンコート４８ウェルプレ
ート（住友ベークライト社製）を用いて培養した。
【００５７】４日間培養した後、顕微鏡下で細胞の形態
を観察した。本発明の培養液を用いたものは、生細胞数
が多く、また長い神経突起の伸展が観察された。しかし
比較例１の培養液で神経突起を伸長した良好な生存状態
の細胞は認められず、比較例２の培養液では、一部の細
胞が認められるのみであった。ＭＴＴ（臭化３−（４，
５−ジメチル−２−チアゾリル）−２，５−ジフェニル
−２Ｈテトラゾリウム）細胞増殖測定キット（ケミコン
・インターナショナル社製）を用いて神経細胞の生存度
合いを測定した。実施例の培養液と比較例の培養液との
比率は比較例１／実施例４は５％以下で、比較例２／実
施例４は２０％程であり、本発明の培養液に比べ、比較
例の培養液は、著しく効果が劣っていた。
を観察した。本発明の培養液を用いたものは、生細胞数
が多く、また長い神経突起の伸展が観察された。しかし
比較例１の培養液で神経突起を伸長した良好な生存状態
の細胞は認められず、比較例２の培養液では、一部の細
胞が認められるのみであった。ＭＴＴ（臭化３−（４，
５−ジメチル−２−チアゾリル）−２，５−ジフェニル
−２Ｈテトラゾリウム）細胞増殖測定キット（ケミコン
・インターナショナル社製）を用いて神経細胞の生存度
合いを測定した。実施例の培養液と比較例の培養液との
比率は比較例１／実施例４は５％以下で、比較例２／実
施例４は２０％程であり、本発明の培養液に比べ、比較
例の培養液は、著しく効果が劣っていた。
【００５８】実施例５、比較例５ 実施例４と同様にして初代アストログリア細胞を培養
し、培養上清を採取した。得られた培養上清を用いて、
培養上清とＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合培養液の比率
が、７５／２５、５０／５０、２５／７５、及び１０／
９０になるようにそれぞれ調製し、その全体量に対し
て、インシュリン５μg ／ml、トランスフェリン５μg
／ml、スーパーオキシドジスムターゼ２．５μg ／ml、
カタラーゼ２．５μg ／ml、亜セレン酸ナトリウム１０
０nM、プロジェステロン２０nM、酢酸トコフェロール１
μg ／ml、アルブミン２．５mg／ml（いずれもシグマ社
製）の添加物を、各溶液に加えて培養液を調製した。更
に、比較のためにＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合液にウシ
胎児血清（ハイクローン社製）１０％を加えたもの（前
記比較例３と同じ）を用いた。実施例１と同様にして神
経細胞液を調製し、３００cells／mlの培養密度でポリ
リジンコート２４ウェルプレート（住友ベークライト社
製）で培養した。
し、培養上清を採取した。得られた培養上清を用いて、
培養上清とＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合培養液の比率
が、７５／２５、５０／５０、２５／７５、及び１０／
９０になるようにそれぞれ調製し、その全体量に対し
て、インシュリン５μg ／ml、トランスフェリン５μg
／ml、スーパーオキシドジスムターゼ２．５μg ／ml、
カタラーゼ２．５μg ／ml、亜セレン酸ナトリウム１０
０nM、プロジェステロン２０nM、酢酸トコフェロール１
μg ／ml、アルブミン２．５mg／ml（いずれもシグマ社
製）の添加物を、各溶液に加えて培養液を調製した。更
に、比較のためにＤＭＥＭ／Ｆ−１２等比混合液にウシ
胎児血清（ハイクローン社製）１０％を加えたもの（前
記比較例３と同じ）を用いた。実施例１と同様にして神
経細胞液を調製し、３００cells／mlの培養密度でポリ
リジンコート２４ウェルプレート（住友ベークライト社
製）で培養した。
【００５９】４日間培養した後、顕微鏡下で観察したと
ころ、培養上清とＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合液の比を７５
／２５、５０／５０、とした培養液では、７５／２５の
方がより優っていたが、いずれも良好な生存維持と神経
突起の伸展が観察された。２５／７５では生存細胞は認
められたが数が少なかった。１０／９０の培養液では、
生存細胞は認められなかった。また、比較例のウシ胎児
血清を用いた培養液では、生存している神経細胞の数が
少なく、グリア細胞の存在が多く認められた。
ころ、培養上清とＤＭＥＭ／Ｆ−１２混合液の比を７５
／２５、５０／５０、とした培養液では、７５／２５の
方がより優っていたが、いずれも良好な生存維持と神経
突起の伸展が観察された。２５／７５では生存細胞は認
められたが数が少なかった。１０／９０の培養液では、
生存細胞は認められなかった。また、比較例のウシ胎児
血清を用いた培養液では、生存している神経細胞の数が
少なく、グリア細胞の存在が多く認められた。
【００６０】実施例６、比較例６ 実施例４と同様にして培養液を調製した。比較例として
比較例３の培養液を使用した。実施例１と同様に神経細
胞液を調製し１，２００cells／mm2の培養密度でラミニ
ンコート１２ウェルプレート（住友ベークライト社製）
を用い、８日間培養した。
比較例３の培養液を使用した。実施例１と同様に神経細
胞液を調製し１，２００cells／mm2の培養密度でラミニ
ンコート１２ウェルプレート（住友ベークライト社製）
を用い、８日間培養した。
【００６１】本発明の培養液を用いたものは、安定に培
養された神経細胞の他に、形態からオリゴデンドログリ
アと判断される細胞が認められた。また比較例の方は神
経細胞はわずかであり、形態からアストログリア細胞と
判断される細胞が大半であった。
養された神経細胞の他に、形態からオリゴデンドログリ
アと判断される細胞が認められた。また比較例の方は神
経細胞はわずかであり、形態からアストログリア細胞と
判断される細胞が大半であった。
【００６２】グリア細胞の種類を確認するため、抗ＧＣ
抗体（ベーリンガーマンハイム社製、５μg ／mlに調
製）、抗ＧＦＡＰ抗体（ベーリンガーマンハイム社製、
８μg／mlに調製）、抗Ａ２Ｂ５抗体（ベーリンガーマ
ンハイム社製、５μg ／mlに調製）を用いて免疫細胞化
学染色を行った。培養液を除きリン酸塩緩衝液で洗浄し
た後パラフォルムアルデヒド（和光純薬社製）４％のリ
ン酸塩緩衝液で２０分、トリトンＸ−１００（ベーリン
ガーマンハイム社製）の０．１％リン酸塩緩衝液を２０
分、ヒツジ血清１％のリン酸塩緩衝液を２０分、順次反
応させ、更に上記抗体をそれぞれ３０分間反応させた。
各抗体の反応は比較例、実施例各１ウェルずつ計６ウェ
ル、いずれも室温で行い、各反応液にはリン酸塩緩衝液
で洗浄した。
抗体（ベーリンガーマンハイム社製、５μg ／mlに調
製）、抗ＧＦＡＰ抗体（ベーリンガーマンハイム社製、
８μg／mlに調製）、抗Ａ２Ｂ５抗体（ベーリンガーマ
ンハイム社製、５μg ／mlに調製）を用いて免疫細胞化
学染色を行った。培養液を除きリン酸塩緩衝液で洗浄し
た後パラフォルムアルデヒド（和光純薬社製）４％のリ
ン酸塩緩衝液で２０分、トリトンＸ−１００（ベーリン
ガーマンハイム社製）の０．１％リン酸塩緩衝液を２０
分、ヒツジ血清１％のリン酸塩緩衝液を２０分、順次反
応させ、更に上記抗体をそれぞれ３０分間反応させた。
各抗体の反応は比較例、実施例各１ウェルずつ計６ウェ
ル、いずれも室温で行い、各反応液にはリン酸塩緩衝液
で洗浄した。
【００６３】次に、ＡＢＣ免疫組織化学キット（ベクタ
ー社製）、及びＤＡＢ（３，３′−ジアミノベンジジ
ン）基質キット（ベクター社製）で染色を行った。本発
明の培養液を用いたもので、形態からオリゴデンドログ
リアと判断される細胞はこの細胞と反応する抗ＧＣ抗体
で染色された。一方、比較例の形態からアストログリア
細胞と判断される細胞は、抗ＧＦＡＰ抗体で染色され、
抗Ａ２Ｂ５抗体には染色されないことから１型アストロ
グリア細胞と判断された。
ー社製）、及びＤＡＢ（３，３′−ジアミノベンジジ
ン）基質キット（ベクター社製）で染色を行った。本発
明の培養液を用いたもので、形態からオリゴデンドログ
リアと判断される細胞はこの細胞と反応する抗ＧＣ抗体
で染色された。一方、比較例の形態からアストログリア
細胞と判断される細胞は、抗ＧＦＡＰ抗体で染色され、
抗Ａ２Ｂ５抗体には染色されないことから１型アストロ
グリア細胞と判断された。
【００６４】
【発明の効果】本発明による神経細胞用培養液を用いる
ことにより、中枢神経細胞の培養を安定に行うことがで
き、低密度培養においては神経突起の伸展性に優れ迅速
なシナプス形成が可能であり、高密度培養においては神
経ネットワークを形成した細胞の長期安定性に優れてい
る。これにより神経薬理試験、神経情報伝達試験等を確
度高く実施することができ、神経薬理、衛生化学などの
分野で痴呆症、神経疾患、神経毒性などの研究、病態の
解明等に役立つ。
ことにより、中枢神経細胞の培養を安定に行うことがで
き、低密度培養においては神経突起の伸展性に優れ迅速
なシナプス形成が可能であり、高密度培養においては神
経ネットワークを形成した細胞の長期安定性に優れてい
る。これにより神経薬理試験、神経情報伝達試験等を確
度高く実施することができ、神経薬理、衛生化学などの
分野で痴呆症、神経疾患、神経毒性などの研究、病態の
解明等に役立つ。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.7，ＤＢ名) C12N 5/00 - 5/28 ＢＩＯＳＩＳ（ＤＩＡＬＯＧ) ＷＰＩ（ＤＩＡＬＯＧ) ＪＩＣＳＴファイル（ＪＯＩＳ)
Claims (9)
- 【請求項１】 インシュリン、トランスフェリン及び亜
セレン酸又はその塩を添加した栄養培地中で初代アスト
ログリア細胞を培養して採取した培養上清に、アルブミ
ン、プロジェステロン、インシュリン、トランスフェリ
ン、亜セレン酸又はその塩、スーパーオキシドジスムタ
ーゼ及びカタラーゼを配合したことを特徴とする神経細
胞用培養液。 - 【請求項２】 インシュリン、トランスフェリン及び亜
セレン酸又はその塩を添加した栄養培地中で初代アスト
ログリア細胞を培養して採取した培養上清に、アルブミ
ン、プロジェステロン、インシュリン、トランスフェリ
ン、亜セレン酸又はその塩及びα−トコフェロール類を
配合したことを特徴とする神経細胞用培養液。 - 【請求項３】 インシュリン、トランスフェリン及び亜
セレン酸又はその塩を添加した栄養培地中で初代アスト
ログリア細胞を培養して採取した培養上清に、アルブミ
ン、プロジェステロン、インシュリン、トランスフェリ
ン、亜セレン酸又はその塩、スーパーオキシドジスムタ
ーゼ、カタラーゼ及びα−トコフェロール類を配合した
ことを特徴とする神経細胞用培養液。 - 【請求項４】 更に栄養培地を培養上清に配合するもの
である請求項１〜３のいずれか１項記載の神経細胞用培
養液。 - 【請求項５】 初代アストログリア細胞を動物血清を添
加した培地中で培養、増殖させた後、インシュリン、ト
ランスフェリン及び亜セレン酸又はその塩を添加した栄
養培地中で培養し、その上清を採取し、得られた培養上
清にアルブミン、プロジェステロン、インシュリン、ト
ランスフェリン、亜セレン酸又はその塩、スーパーオキ
シドジスムターゼ及びカタラーゼを添加することを特徴
とする神経細胞用培養液の製造方法。 - 【請求項６】 初代アストログリア細胞を動物血清を添
加した培地中で培養、増殖させた後、インシュリン、ト
ランスフェリン及び亜セレン酸又はその塩を添加した栄
養培地中で培養し、その上清を採取し、得られた培養上
清にアルブミン、プロジェステロン、インシュリン、ト
ランスフェリン、亜セレン酸又はその塩及びα−トコフ
ェロール類を添加することを特徴とする神経細胞用培養
液の製造方法。 - 【請求項７】 初代アストログリア細胞を動物血清を添
加した培地中で培養、増殖させた後、インシュリン、ト
ランスフェリン及び亜セレン酸又はその塩を添加した栄
養培地中で培養し、その上清を採取し、得られた培養上
清にアルブミン、プロジェステロン、インシュリン、ト
ランスフェリン、亜セレン酸又はその塩、スーパーオキ
シドジスムターゼ、カタラーゼ及びα−トコフェロール
類を添加することを特徴とする神経細胞用培養液の製造
方法。 - 【請求項８】 更に栄養培地を培養上清に配合するもの
である請求項５〜７のいずれか１項記載の神経細胞用培
養液の製造方法。 - 【請求項９】 請求項１〜４のいずれか１項記載の神経
細胞用培養液中で神経細胞を培養することを特徴とする
神経細胞の培養方法。
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP08147158A JP3093974B2 (ja) | 1995-06-27 | 1996-06-10 | 神経細胞用培養液、その製造方法及びこれを用いる神経細胞の培養方法 |
| PCT/JP1996/001764 WO1997001628A1 (fr) | 1995-06-27 | 1996-06-26 | Milieu liquide destine a des cellules nerveuses, son procede de production et procede d'incubation de cellules nerveuses dans ce milieu |
| US08/776,525 US6376238B1 (en) | 1995-06-27 | 1996-06-26 | Culture media for neurons, methods for preparing the culture media, and methods for culturing neurons |
| DE69633604T DE69633604T2 (de) | 1995-06-27 | 1996-06-26 | Flüssigmedium für nervenzellen, verfahren für dessen herstellung und eine methode für die inkubation von nervenzellen unter verwendung desselben |
| EP96921088A EP0776968B1 (en) | 1995-06-27 | 1996-06-26 | Liquid medium for nerve cells, process for producing the same and method for incubating nerve cells with the use of the same |
Applications Claiming Priority (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP16038295 | 1995-06-27 | ||
| JP4088996 | 1996-02-28 | ||
| JP8-40889 | 1996-02-28 | ||
| JP7-160382 | 1996-02-28 | ||
| JP08147158A JP3093974B2 (ja) | 1995-06-27 | 1996-06-10 | 神経細胞用培養液、その製造方法及びこれを用いる神経細胞の培養方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH09289891A JPH09289891A (ja) | 1997-11-11 |
| JP3093974B2 true JP3093974B2 (ja) | 2000-10-03 |
Family
ID=27290630
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP08147158A Expired - Lifetime JP3093974B2 (ja) | 1995-06-27 | 1996-06-10 | 神経細胞用培養液、その製造方法及びこれを用いる神経細胞の培養方法 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6376238B1 (ja) |
| EP (1) | EP0776968B1 (ja) |
| JP (1) | JP3093974B2 (ja) |
| DE (1) | DE69633604T2 (ja) |
| WO (1) | WO1997001628A1 (ja) |
Families Citing this family (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5903557A (en) * | 1996-09-30 | 1999-05-11 | Telefonaktiebolaget L M Ericsson (Publ) | Method and apparatus for determining activation status of a receiving station of a radio communication system |
| WO1999004714A1 (en) | 1997-07-24 | 1999-02-04 | Stanislav Georgiev Nestorov | External fixator |
| ES2378227T3 (es) | 2001-08-13 | 2012-04-10 | University Of Florida Research Foundation, Inc. | Materiales y métodos para favorecer la reparación del tejido nervioso |
| CA2493849A1 (en) | 2002-07-12 | 2004-01-22 | University Of Washington | Methods and systems for extended in vitro culture of neuronal cells |
| JP6128677B2 (ja) * | 2013-02-05 | 2017-05-17 | 公立大学法人大阪市立大学 | 神経細胞の遊走障害を伴う疾患の判定方法及びその利用 |
| CN110257334A (zh) * | 2019-07-24 | 2019-09-20 | 安徽科门生物科技有限公司 | 一种神经干细胞培养基以及培养方法 |
Family Cites Families (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5229500A (en) * | 1989-08-30 | 1993-07-20 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Brain derived neurotrophic factor |
| GEP20002243B (en) * | 1991-09-20 | 2000-09-25 | Amgen Inc | Glial Derived Neurotrophic Factor |
| JP2649880B2 (ja) | 1991-10-22 | 1997-09-03 | 株式会社バイオマテリアル研究所 | 中枢神経細胞用培地 |
| JPH05227278A (ja) | 1992-02-10 | 1993-09-03 | Nec Commun Syst Ltd | Ｉｓｄｎ交換機における通信方式 |
| US5766948A (en) * | 1993-01-06 | 1998-06-16 | The Regents Of The University Of California | Method for production of neuroblasts |
| US5565436A (en) * | 1994-02-10 | 1996-10-15 | Kagome Kabushiki Kaisha | Production stimulators of nerve growth factors comprising cyathane derivatives |
| JPH07227278A (ja) * | 1994-02-18 | 1995-08-29 | Kyorin Pharmaceut Co Ltd | 成熟中枢神経細胞用の無血清培地 |
| US5898066A (en) * | 1994-08-26 | 1999-04-27 | Children's Medical Center Corporation | Trophic factors for central nervous system regeneration |
| US5721139A (en) * | 1995-05-10 | 1998-02-24 | Genentech, Inc. | Isolating and culturing schwann cells |
| US5714385A (en) * | 1995-05-10 | 1998-02-03 | Genentech, Inc. | Media for culturing schwann cells |
-
1996
- 1996-06-10 JP JP08147158A patent/JP3093974B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1996-06-26 US US08/776,525 patent/US6376238B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1996-06-26 WO PCT/JP1996/001764 patent/WO1997001628A1/ja active IP Right Grant
- 1996-06-26 EP EP96921088A patent/EP0776968B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1996-06-26 DE DE69633604T patent/DE69633604T2/de not_active Expired - Lifetime
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７６（１），５１４−５１７（１９７９） |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| WO1997001628A1 (fr) | 1997-01-16 |
| EP0776968A4 (en) | 2002-10-30 |
| US6376238B1 (en) | 2002-04-23 |
| DE69633604D1 (de) | 2004-11-18 |
| EP0776968B1 (en) | 2004-10-13 |
| DE69633604T2 (de) | 2006-03-02 |
| EP0776968A1 (en) | 1997-06-04 |
| JPH09289891A (ja) | 1997-11-11 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Brewer | Isolation and culture of adult rat hippocampal neurons | |
| US5429938A (en) | Methods and compositions for isolation and growth of kidney tubule stem cells, in vitro kidney tubulogenesis and ex vivo construction of renal tubules | |
| US20020119566A1 (en) | Methods and compositions for isolation and growth of kidney tubule stem cells, in vitro kidney tubulogenesis and ex vivo construction of renal tubules | |
| JP2008201792A (ja) | 胚性幹細胞と胚性幹細胞由来の神経前駆細胞 | |
| Brunner et al. | Selective cell culture of brain cells by serum-free, hormone-supplemented media: a comparative morphological study | |
| Annis et al. | A chemically-defined medium for organotypic slice cultures | |
| JP2004511266A (ja) | 間葉間質細胞に対する治療的利用法 | |
| JP3093974B2 (ja) | 神経細胞用培養液、その製造方法及びこれを用いる神経細胞の培養方法 | |
| WO2006028049A1 (ja) | アストロサイト様細胞馴化培地の製造方法 | |
| JP3072051B2 (ja) | 神経細胞用培養液、その製造方法及びこれを用いる神経細胞の培養方法 | |
| Poduslo et al. | Purification and characterization of cultures of oligodendroglia from rat brain | |
| AU704976B2 (en) | Normal neural epithelial precursor cells | |
| JPH08191688A (ja) | 神経細胞用培養液およびその製造方法 | |
| Richard et al. | Early, middle, and late stages of neural cells from ovine embryo in primary cultures | |
| US20190345453A1 (en) | Functional feline pancreatic cells from adipose tissue | |
| JP2019083793A (ja) | 卵巣由来幹細胞の減数分裂誘導法 | |
| Bottenstein | Environmental influences on cells in culture | |
| JP2010535020A (ja) | 頚動脈小体由来の幹細胞及びその使用 | |
| JP2007503821A (ja) | 細胞治療用の細胞の延長された増殖及び生存のための卵胞液 | |
| AU671622C (en) | Method for kidney tubulogenesis | |
| Colombo et al. | Forebrain and midbrain astrocytes promote neuritogenesis in cultured chromaffin cells | |
| US20090305403A1 (en) | Isolation and Differentiation of Adult Hippocampal Arctic Squirrel Neural Stem Cells | |
| Schulze | Endothelium of the brain | |
| JPH0425797B2 (ja) | ||
| JP2000316569A (ja) | 細胞培養方法及びその薬理試験法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20090728 Year of fee payment: 9 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20100728 Year of fee payment: 10 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110728 Year of fee payment: 11 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110728 Year of fee payment: 11 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120728 Year of fee payment: 12 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120728 Year of fee payment: 12 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130728 Year of fee payment: 13 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140728 Year of fee payment: 14 |
|
| EXPY | Cancellation because of completion of term |