JP3025625B2 - アルカリα−アミラーゼ活性を有するアルカリプルラナーゼ遺伝子 - Google Patents

アルカリα−アミラーゼ活性を有するアルカリプルラナーゼ遺伝子

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Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明はアルカリα−アミラーゼ
活性を有するアルカリプルラナーゼをコードする遺伝
子、当該遺伝子の一部の発現によって得られるアルカリ
α−アミラーゼ及びこれをコードする遺伝子、並びにこ
れらの遺伝子を含む組換えDNA及び形質転換体に関す
る。
【0002】
【従来の技術】古くから醸造産業で穀類やイモ類の糖
化、繊維産業で澱粉糊抜き剤、医薬品産業で消化剤、食
品産業で水飴の製造等に広く利用されてきたα−アミラ
ーゼは、澱粉、アミロース、アミロペクチン等の澱粉系
多糖類の分子中のα−1,4グルコシド結合のみを切断
する酵素で細菌、黴類、植物の種子及び動物の消化腺な
ど多くの生物から結晶標品あるいは電気泳動的に均一な
標品として得られている。一方、プルラナーゼは、澱
粉、グリコーゲン、アミロペクチンあるいはプルラン分
子中に存在するα−1,6グルコシド結合のみを切断
し、最終的にマルトトリオースを生成する酵素であり、
アエロバクター アエロゲネス(Aerobacter
aerogenes)の一菌株から発見され〔Ben
der,H.and Wallenfels,K.,
iochem.,334,79(1961)〕、更
に、その後、バチルス ストレプトコッカス(Stre
ptococcus)、クロストリジウム(Clost
ridium)等の多くの微生物から発見されている。
このプルラナーゼは、エンド型アミラーゼ及びエキソ型
アミラーゼと併用することにより、澱粉からグルコース
やマルトース、マルトトリオース、マルトテトラオー
ス、マルトペンタオース、マルトヘキサオース等のマル
トオリゴ糖を生産することができるので、澱粉製造工業
において注目されている酵素である。
【0003】更に、この様な2種以上の酵素を用いた糖
の製造工程を簡略化するために、α−1,4グルコシド
結合に対しても反応する、すなわちα−アミラーゼ活性
を有するプルラナーゼの探索が行われてきた。枯草菌
Bacillus subtilis)TU株〔Ta
kasaki,Y.,AgricBiolChe
.,51,9(1987)、特公平1−18717号
公報〕はプルラナーゼ−アミラーゼ複合酵素を生産する
ことが知られている。両酵素活性を有する単一酵素、所
謂アミロプルラナーゼとしては、バチルス サーキュラ
ンス(Bacillus circulans)〔特開
昭64−60376号公報〕の生産するアミラーゼ、バ
チルス エスピー(Bacillus sp.)〔Sa
ha,B.C.et al.,Enzyme Micr
obTechnol.,11,760(198
9)〕、サーモアンアエロビウム ブロキイ(Ther
moanaerobium brockii)〔Col
eman,R.D.et al.,Bacteri
ol.,169,4302(1987)〕、サーモアン
アエロビウム エスピー(Thermoanaerob
ium sp.)〔Plant,A.R.et a
l.,ApplMicrobiolBiotech
nol.,26,427(1987)〕、クロストリジ
ウム サーモハイドロスルフリカム(Clostrid
ium thermohydrosulfuricu
)〔Saha,B.C.et al.,Bioche
.,252,343(1988)〕、クロストリ
ジウム サーモスルフロゲネス(Clostridiu
thermosulfurogenes)〔Spr
einat,A.et al.,ApplMicro
biolBiotechnol.,33,511(1
990)〕、サーマス アキュアティキス(Therm
us aquaticus)〔Plant,A.R.e
t al.,Enzyme MicrobTechn
ol.,8,668(1986)〕、サーマス エスピ
ー(Thermus sp.)〔Nakamura,
N.et al.,Starch/Starke,4
1,112(1989)〕、サーモアンアエロバクテリ
ウム サッカロリティカム(Thermoanaero
bacterium saccharolyticu
)〔Saha,B.C.et al.,Appl
nvironMicrobiol.,56,881
(1990)〕、ピロコッカス フリオサス(Pyro
coccus furiosus)及びサーモコッカス
リトラリス(Thermococcus litor
alis)〔Brown,S.H.and Kell
y,R.M.,ApplEnvironMicro
biol.,59,2614(1993)〕など数多く
の好(耐)熱性微生物で報告例がある。
【0004】一方、ごく近年になって本発明者らは、α
−アミラーゼとプルラナーゼを共に食器洗浄剤及び衣料
洗浄剤に配合することによって、主に澱粉汚れに対する
洗浄力が飛躍的に向上することを明らかにした(特開平
2−132193号公報)。しかしながら、自然界にお
いて従来見出されているα−アミラーゼ及びプルラナー
ゼのほとんどが、中性ないし酸性領域において最大且つ
安定な酵素活性を示し、pH9〜10のアルカリ性溶液中
ではほとんど作用しないものであった。アルカリ領域に
おいて最大活性を示すいわゆるアルカリプルラナーゼの
存在は、極めて少なく、わずかに中村ら〔Nakamu
ra,N.and Horikoshi,K.,Bio
chimBiophysActa,397,188
(1975),特公昭53−27786号公報〕と荒ら
(特公平6−32613号公報)によって報告されてい
るのみである。更にアルカリα−アミラーゼ活性とアル
カリプルラナーゼ活性を有した単一酵素(アミロプルラ
ナーゼ)に至っては、全く見出されていないのが実情で
あった。しかしながら、本発明者らがアルカリプルラナ
ーゼを生産する微生物を自然界に求めて鋭意探索を続け
たところ、生育の至適pHをアルカリ性領域に有する、い
わゆる好アルカリ性バチルス エスピー(Bacill
us sp.)KSM−AP1378(FERM BP
−3048)がアルカリα−アミラーゼ活性を有する新
規なアルカリプルラナーゼYを生産することを発見し、
本酵素が自動食器洗浄機用洗浄剤組成物並びに衣料用洗
浄剤組成物の添加成分として有用であることを明らかに
した(特開平3−290498号公報)。本酵素は一酵
素分子でありながらアルカリα−アミラーゼ活性及びア
ルカリプルラナーゼ活性の両者を有しており、本酵素の
利用は工業生産過程において、別々の菌体から2種各々
の酵素を生産する場合と比較して、菌体の培養あるいは
酵素の精製等に極めて効率的である。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】本発明者らは、アルカ
リプルラナーゼYの生産菌であるバチルス エスピーK
SM−AP1378株に対して培養方法の検討による生
産性の向上を試みたが、本酵素を工業的に有利に実生産
するためには、更にその生産性を向上させることが必要
である。また、近年、遺伝子工学の手法を用いて酵素の
生産量を向上せしめることや、蛋白質工学的手法によっ
て当該酵素の遺伝子を改変して当該酵素の改良を行うこ
とも可能となっている。その為には当該酵素の遺伝子が
必要であるが、アルカリα−アミラーゼ活性を有するア
ルカリプルラナーゼ(アルカリアミロプルラナーゼ)を
コードする遺伝子は未だ取得されていなかった。
【0006】従って、本発明の目的はアルカリアミロプ
ルラナーゼをコードする遺伝子、これを含有する組換え
DNA及び当該組換えDNAを保持する形質転換体を提
供することにある。
【0007】
【課題を解決するための手段】そこで本発明者らは、好
アルカリ性バチルス属細菌の染色体DNAからアルカリ
アミロプルラナーゼをコードする遺伝子を含むDNA断
片を取得すべく、ショットガンクローニングとPCR法
を併用することによってアルカリアミロプルラナーゼを
コードするDNA断片を単離した。このDNA断片を適
当なベクターに連結して微生物に導入したところ、得ら
れた組換え微生物がアルカリアミロプルラナーゼを生産
することが確認できた。更に、コードされるアルカリア
ミロプルラナーゼのアミノ酸配列がこれまでに知られて
いる他のアミラーゼやプルラナーゼとは全く異なり、酵
素分子のアミノ末端側がアルカリα−アミラーゼであ
り、カルボキシ末端側がアルカリプルラナーゼであると
いう特徴を有していることが明らかとなり、本発明を完
成した。
【0008】すなわち、本発明は、配列番号1に記載の
アミノ酸配列、又は配列番号1に記載のアミノ酸配列に
対して1若しくは2以上のアミノ酸が置換、付加、欠
失、逆位若しくは挿入されたアミノ酸配列を有し、かつ
アルカリα−アミラーゼ活性及びアルカリプルラナーゼ
活性を有する蛋白質(アルカリアミロプルラナーゼ)を
コードするDNA断片を提供するものである。
【0009】また、本発明は配列番号3に記載のアミノ
酸配列からなるアルカリα−アミラーゼ及びこれをコー
ドするDNA断片を提供するものである。
【0010】
【0011】更に本発明は上記アルカリアミロプルラナ
ーゼ又はアルカリα−アミラーゼをコードするDNA断
片を有する組換えDNAを提供するものである。
【0012】更にまた、本発明は上記アルカリアミロプ
ルラナーゼ又はアルカリα−アミラーゼをコードするD
NA断片を有する組換えDNAを保持する形質転換微生
物を提供するものである。
【0013】本発明においてアルカリアミロプルラナー
ゼ遺伝子の供与体となる微生物としては、例えば、好ア
ルカリ性バチルスの1種、バチルス エスピー KSM
−AP1378株を用いることができる。本菌株は、本
発明者らが、菌体外に著量のアルカリアミロプルラナー
ゼの1種であるアルカリプルラナーゼYを生産する菌株
として栃木県栃木市の土壌より分離したものであり、微
工研条寄第BP−3048号として寄託されている。
【0014】供与菌株から染色体DNAを得る方法とし
ては、例えばマーマーの方法〔Marmur,J.,
MolBiol.,3,208(1961)〕や
斉藤と三浦の方法〔Saito,H.and Miur
a,K.,BiochemBiophysAct
,72,619(1963)〕等が挙げられるが、他
の類似な方法を用いることもできる。
【0015】かくして得られた染色体DNAを制限酵素
で切断することによって、アルカリアミロプルラナーゼ
遺伝子を含むDNA断片を調製することができるが、用
いる制限酵素の種類としては、当該遺伝子を分断しない
ものであれば、いかなるものでも使用できる。アルカリ
アミロプルラナーゼ遺伝子の取得法については、PCR
法を用いることもできる。例えば、配列番号2に記載の
塩基配列を基にして必須領域の5′末端の上流及び3′
末端の下流位置にあたる配列のプライマーを合成し、ア
ルカリアミロプルラナーゼ生産菌の染色体DNAを鋳型
としてPCR反応を行うことによってアルカリアミロプ
ルラナーゼ遺伝子を取得できる。あるいは、アルカリア
ミロプルラナーゼ生産菌より何らかの方法によってアル
カリプルラナーゼ遺伝子断片を取得した後、PCR法に
よってその上流部分のアルカリα−アミラーゼ遺伝子断
片を増幅し、完全な遺伝子を取得する方法、反対にアル
カリα−アミラーゼ遺伝子を取得した後、PCR法によ
ってその下流部分のアルカリプルラナーゼ遺伝子断片を
増幅し、完全な遺伝子を取得することもできる。
【0016】こうして調製した当該遺伝子の断片をクロ
ーニングするが、この際用いる宿主・ベクター系として
は、宿主菌株が本発明のアルカリアミロプルラナーゼ遺
伝子を発現させることができ、また、組換えDNAが宿
主菌中で複製可能であり、組み込んだ当該遺伝子を安定
に保持できるものであれば、いかなるものも使用するこ
とができる。例えば、大腸菌K−12系統株を宿主とす
るEK系や枯草菌(Bacillus subtili
)Marburg系統株を宿主とするBS系等が挙げ
られるが、好適には、遺伝学的に最も良く研究されてお
り、ベクターの種類が豊富であるEK系を用いると良い
結果が得られる。宿主菌株の具体例としては、EK系で
は、HB101株、C600株、JM109株、BS系
ではBD170株、MI112株、ISW1214株な
どが挙げられる。また、ベクターとしては、EK系では
pBR322やpUC18等のベクター、またBS系で
はpUB110、pHY300PLKなどのベクターが
挙げられる。ベクターを制限酵素で切断し、上記の染色
体DNA断片と結合させ、組換えプラスミドDNAを作
成するが、結合の方法としては、例えばDNAリガーゼ
によって結合させる方法等が挙げられる。
【0017】組換えDNAによる宿主菌株の形質転換の
方法は特に限定されないが、例えば、EK系宿主菌株の
場合、塩化カルシウム法〔Mandel,M.and
Higa,A.,MolBiol.,53,15
9(1970)〕等、またBS系宿主菌株の場合には、
プロトプラスト法〔Chang,C.and Cohe
n.S.N.,MolGenGenet.,16
8,111(1978)〕等を用いることができる。
【0018】組換え微生物の選択は、先ずベクターDN
A上にコードされている抗生物質耐性等の形質のうち、
外来染色体DNA断片の挿入によって失活しない形質を
指標として、ベクター由来のDNA断片を含むDNAに
よって形質転換されたものを一次選択する。具体的に
は、例えばベクターとしてEK系のpBR322を用
い、このBamHI切断部位に染色体DNAのBam
I断片を挿入した場合には、テトラサイクリン耐性遺伝
子が失活するので、遺伝子中にBamHI切断部位を持
たないアンピシリン耐性を指標として一次選択を行えば
良い。次にこれを澱粉あるいはプルランを含む寒天プレ
ートにそれぞれレプリカ法等によって移植して培養した
後、集落を出現させる。澱粉を含む寒天プレート上で澱
粉を分解したことによってコロニーの周囲にハローを形
成し、なおかつプルラン寒天プレート上でもハローを形
成することのできるコロニーを検出する。
【0019】斯くして得られた組換え微生物が保持する
組換えDNAは、通常のプラスミド調製法あるいはファ
ージDNA調製法〔Maniatis,T.et a
l.,Molecular Cloning,Cold
Spring HarborLaboratory,
New York,(1982)〕を用いて抽出でき、
更に各種制限酵素による切断パターンを電気泳動法等に
よって解析することによって、組換えDNAがベクター
DNAとアルカリアミロプルラナーゼ遺伝子を含むDN
A断片が結合したものであることを確認できる。
【0020】本発明に於けるアルカリアミロプルラナー
ゼのうち、アルカリプルラナーゼY遺伝子は図1に示し
た制限酵素地図を有する約9.4kbのDNA断片に含
まれており、斜線で示した約6.2kbの部分に存在し
ている。
【0021】アルカリプルラナーゼY遺伝子を含む約
6.2kb断片は配列番号2に示したヌクレオチド配列
を有している。本配列は配列番号2に示した約6.2k
b断片の左側から右側に向けての配列を5′から3′の
方向に示したものである。本配列中にヌクレオチド番号
145番のATGから翻訳を開始し、配列番号1記載の
アミノ酸1938残基から成る配列をコードするオープ
ン・リーディング・フレーム(ORF)が認められる。
ORFの15ベース(b)上流に枯草菌の16Sリボゾ
ームRNAの3′末端の配列〔McLaughlin,
J.R.et al.,BiolChem.,2
56,11283(1981)〕と相補性が高いGAAAGG
GG配列が存在し、更に上流には、ヌクレオチド番号35
以降にσA型プロモーターの共通配列〔Gitt,M.
A.et al.,BiolChem.,26
0,7178(1985)〕と相同性の高いTTTACA----
20 b----TAAATT配列が存在する。また、ヌクレオチド
番号の5959番の翻訳終止コドンTAAの下流には転写
ターミネーターと思われるインバーティッド・リピート
配列が存在する(ヌクレオチド番号5961−601
5)。また、バチルス エスピー KSM−AP137
8株の培養液から精製したアルカリプルラナーゼYのア
ミノ末端側14残基のアミノ酸配列は、当該DNA断片
中のヌクレオチド配列から推定されるアミノ酸配列の1
番号以降の配列と一致した(配列番号2のアミノ酸配列
1−14)。
【0022】本発明の遺伝子のヌクレオチド配列及び推
定されるアミノ酸配列をこれまでに知られているα−ア
ミラーゼ及びプルラナーゼと比較したところ、本遺伝子
は独自のヌクレオチド配列を有しており、且つコードさ
れるアミノ酸の配列も他のα−アミラーゼ及びプルラナ
ーゼのものとは異なっており新規なものであった。
【0023】一方、本遺伝子は一つの酵素がアルカリα
−アミラーゼ活性中心及びアルカリプルラナーゼ活性中
心の二つの活性中心を有しているという特徴を持ってい
る。即ち、アミラーゼやプルラナーゼの活性中心に共通
に見られる4種(I〜IV領域)の配列〔Nakajim
a,R.et al.,ApplMicrobio
Biotechnol.,23,355(198
6)〕がそれぞれアミノ酸配列430〜613と136
4〜1549の間に存在する(配列番号2のアミノ酸配
列において、アルカリα−アミラーゼのI領域=430
〜435、アルカリα−アミラーゼのII領域=514〜
522、アルカリα−アミラーゼのIII領域=547〜
550、アルカリα−アミラーゼのIV領域=608〜6
13、アルカリプルラナーゼのI領域=1364〜13
69、アルカリプルラナーゼのII領域=1428〜14
36、アルカリプルラナーゼのIII領域=1461〜1
464、アルカリプルラナーゼのIV領域=1544〜1
549)。また、アルカリα−アミラーゼとアルカリプ
ルラナーゼをコードしていると思われる構造遺伝子の間
には33アミノ酸よりなる介在配列が2回繰り返して存
在する(配列番号2のアミノ酸配列において、802〜
834及び912〜944)。従って、この特徴を利用
することによってアルカリα−アミラーゼ部分とアルカ
リプルラナーゼ部分とを別々に発現させることも可能で
ある。例えば、開始コドンから介在配列直前までのアミ
ノ酸を含む遺伝子をプラスミドベクターDNAに挿入し
適当な宿主菌に導入することによってアルカリα−アミ
ラーゼだけを生産させることが可能である(配列番号
3)。また、介在配列直後のアミノ酸から1906番目
までのアミノ酸を含む遺伝子を発現可能なプラスミドベ
クターDNAに挿入し適当な宿主菌に導入することによ
ってアルカリプルラナーゼだけを生産させることも可能
である(配列番号4)。
【0024】アルカリプルラナーゼY遺伝子の全領域を
含む組換えDNAの好適な例として、プラスミドpAP
101(図2)等が挙げられる。本プラスミドはアルカ
リプルラナーゼY遺伝子6.2kbを含む断片とpUC
18、pHY300PLKの一部からなる13.4kb
の組換えプラスミドである。組換えDNAを含有する組
換え微生物の好適な例としては、大腸菌HB101(p
AP101)株が挙げられる。この菌株は組換えプラス
ミドpAP101を大腸菌HB101株に通常の形質転
換法を用いて導入したものであり、大腸菌の培養に通常
用いられる培地で培養することにより菌体内にアルカリ
プルラナーゼYを生産する。生産された当該酵素の最適
反応pHはα−アミラーゼ活性がpH8〜9、プルラナーゼ
活性がpH9〜10であり、遺伝子供与菌株であるバチル
ス エスピー KSM−AP1378株が生産するアル
カリプルラナーゼYの値(図3)と良く一致する。
【0025】目的とする酵素活性を有する蛋白をコード
する限り、本発明のDNA断片には、後記配列表記載の
アミノ酸配列をコードするもの以外に、このアミノ酸配
列に1又は2以上のアミノ酸が置換、付加、欠失、逆位
又は挿入されたアミノ酸配列をコードするDNAが含ま
れる。その例としては、配列番号1のアミノ酸配列か
ら、N末端側32アミノ酸が欠失したアミノ酸配列をコ
ードするDNAが挙げられる。
【0026】
【発明の効果】本発明によればアルカリ性側pH領域にお
いて最大の活性を示すアルカリアミロプルラナーゼの遺
伝子及びこれを含有する微生物が得られ、これらを利用
すれば当該アルカリアミロプルラナーゼの大量生産が可
能である。アルカリアミロプルラナーゼは単一蛋白質
で、α−アミラーゼ及びプルラナーゼ活性それぞれの活
性部位が異なるという特徴を持つ。
【0027】
【実施例】以下に、実施例を挙げて本発明を具体的に説
明するが、本発明はこれに何ら限定されるものではな
い。尚、本実施例中の濃度は何れも重量%で示してあ
る。
【0028】実施例1 α−アミラーゼ活性を有するアルカリプルラナーゼYを
生産するバチルス エスピー KSM−AP1378株
を5mlのA培地(表1)に接種し、30℃で24時間振
盪培養を行った後、この1mlを100mlの同培地に接種
して30℃で更に12時間振盪培養した。この後、遠心
分離によて菌体を集め、斉藤と三浦の方法〔Sait
o,H.and Miura K.,Biochim
BiophysActa,72,619(196
3)〕に従って約1mgの染色体DNAを得た。
【0029】
【表1】
【0030】実施例2 実施例1で得られた染色体DNA10μg を制限酵素
stIによって切断したのち、同じくPstIで切断し
たベクタープラスミドpBR322(ベーリンガー マ
ンハイム社製)1μg を加え、T4DNAリガーゼによ
る結合反応を行って組換えプラスミドを作製した。この
組換えプラスミド混合物による形質転換処理を行った大
腸菌懸濁液を15μg /mlテトラサイクリンを含むLB
寒天プレート培地〔1.0%トリプトン(ディフコ社
製)、0.5%酵母エキス(ディフコ社製)、1.0%
NaCl、1.5%寒天(和光純薬社製)〕に塗抹し3
7℃で12時間培養した。更に、出現した形質転換コロ
ニー上に、0.2%プルラン、0.8%レッドプルラン
〔Kanno,M.and Tomiura,E.,
gricBiolChem.,49,1529(1
985)〕、1mg/mlリゾチーム、グリシン−NaCl
−水酸化ナトリウム緩衝液(pH9.0)を含む0.8%
寒天を重層し、37℃にて5時間反応させた。この結
果、レッドプルランの分解によってコロニー周辺に透明
なハローを形成した株1株が得られ、これをアルカリプ
ルラナーゼを生産する組換え微生物として分離した。
【0031】実施例3 実施例2で得られた組換え微生物を、15μg /mlテト
ラサイクリンを含む5mlのLB培地〔1.0%トリプト
ン(ディフコ社製)、0.5%酵母エキス(ディフコ社
製)、1.0%NaCl〕に接種し、37℃で一夜培養
した後、これを500mlのLB培地に移植し、更に24
時間振盪培養した。この培養液より遠心分離によって菌
体を集め、常法〔Maniatis T.et a
l.,Molecular Cloning,Cold
Spring Harbor Laboratory
(1982)〕に従って、組換えプラスミド約500μ
g を調製した。得られた組換えプラスミドの制限酵素切
断地図を作製したところ、図1に示した約6.3kbの
PstI断片(断片A)が含まれていることが明らかに
なり、これをプラスミドpPU100と命名した。ま
た、pPU100によって形質転換された大腸菌HB1
01株をHB101(pPU100)株と命名した。
【0032】実施例4 5mlのLB培地(テトラサイクリンを含む)で一晩培養
したHB101(pPU100)株の培養液1mlを10
0mlのLB培地(テトラサイクリンを含む)に接種し、
37℃で24時間振盪培養した。培養後、遠心分離によ
って集めた菌体をトリス−塩酸緩衝液(pH8.0)に懸
濁し、超音波による破砕を行った。破砕後、遠心分離に
よって不溶物を取り除き、得られた上清液を無細胞抽出
液とした。対照として、HB101(pBR322)株
についても同様に無細胞抽出液を調製し、これらの抽出
液中のプルラナーゼ活性を測定した。尚、プルラナーゼ
活性は、40mMグリシン−NaCl−NaOH緩衝液
(pH10)とプルラン(終濃度0.25%)を含む反応
液中で、40℃、30分間の反応を行った後、生成した
還元糖を3,5−ジニトロサリチル酸〔3,5−din
itrosalicylic acid(DNS)〕法
にて定量することによって測定し、1分間に1μmolの
グルコースに相当する還元糖を生成する酵素量を1単位
とした。この結果、HB101(pPU100)株の無
細胞抽出液にはプルラナーゼ活性が認められた。更に、
生産されたプルラナーゼの作用至適pHを測定した結果、
本酵素におけるプルラナーゼ活性はpH9.5に最適作用
pHを有するアルカリプルラナーゼであることが明らかと
なった。尚、酵素活性の測定には、次に示した緩衝液
(各々40mM)を用いた。
【0033】 pH 3.5〜5.5 ;酢酸緩衝液。 pH 5.5〜8.5 ;トリス−マレイン酸緩衝液。 pH 8.5〜10.5 ;グリシン−NaCl−NaOH緩衝液。 pH 10.5〜11.0;Na2CO3−NaHCO3緩衝液。
【0034】実施例5 約5μg のpPU100を制限酵素PstIによって切
断後、アガロースゲル電気泳動を行い、ゲルからジーン
クリーンキット(フナコシ社製)によって、約6.3k
bのPstI断片約0.5μg を単離した。このPst
I断片をDNAラベリング&ディテクション キット
(ベーリンガー マンハイム社製)を用いて標識化する
ことによって、プローブDNAを調製した。一方、Ps
Iによって切断したバチルス エスピー KSM−A
P1378株由来の染色体DNA(各3μg )をアガロ
ースゲル電気泳動後、DNAバンドをサザンの方法〔S
outhern,E.M.,MolBiol.,
98,503(1975)〕によって、ナイロンメンブ
ラン(アマーシャム社製)に移した後、DNAラベリン
グ&ディテクションキットを用いてプローブDNAとの
ハイブリダイゼーション解析を行った。この結果、図4
に示したように、KSM−AP1378株由来の染色体
DNAのPstI切断物中には、用いたプローブDNA
とバイブリダイズする約6.3kbのDNA断片が存在
することが認められ、プラスミドpPU100に含まれ
る約6.3kbのPstI断片が、バチルス エスピー
KSM−AP1378株の染色体DNA由来であるこ
とが確認された。
【0035】実施例6 プラスミドpPU100に含まれる約6.3kbのPs
I断片をBamHIで切断した時に得られる約3.5
kbの断片(断片B,図1)をプラスミドpHY300
PLKのPstI部位からBamHI部位の間に挿入し
た組換えプラスミドpHYPULを調製した。これを大
腸菌HB101に導入し、実施例4と同様にプルラナー
ゼ活性を測定した結果、pH9〜10の範囲に最適作用pH
を有するプルラナーゼ活性が認められた。この結果アル
カリプルラナーゼ遺伝子の必須領域はPstI部位から
BamHI部位までの約3.5kbであることが明らか
になった。
【0036】実施例7 実施例6で得られた断片Bから更に、市販のキロシーク
エンス用デレーションキット(宝酒造社製)と適当な2
種類の制限酵素を用いて、各小断片を含む組換えプラス
ミドDNAを作成し、これらの挿入断片のヌクレオチド
配列を決定した。尚、ヌクレオチド配列の決定は蛍光プ
ライマーを用いる方法〔Smith,L.M.et a
l.,Nature,321,674(1986)〕に
従って、アプライド バイオシステム社製のモデル37
0A DNAシークエンサーを用いて行った。各DNA
試料から得られた約300〜450bpのヌクレオチド
配列を重ね合わせることによって、断片BのうちPst
I部位側の3038bpの配列を決定した。この結果、
アルカリプルラナーゼ遺伝子のオープンリーディングフ
レーム(ORF)は取得した約6.3kb断片の末端で
あるPstI部位よりも上流に続いていることが明らか
になった。
【0037】実施例8 図1に示した約6.3kb断片から、PstI−Xba
I 1.5kb断片(断片C)を調製し、これを実施例
5と同様にして標識し、プローブDNAを作成した(プ
ローブ1)。一方、XbaIによって切断したバチルス
エスピー KSM−AP1378株由来の染色体DN
A(各3μg )をアガロースゲル電気泳動後、実施例5
と同様にしてナイロンメンブラン(アマーシャム社製)
に移した後、プローブとのハイブリダイゼーションを行
った。この結果、図5に示したように、プローブ1は約
2.3kbのXbaI断片とハイブリッドすることが明
らかになり、KSM−AP1378株由来の染色体DN
A上においてPstI−PstI6.3kb断片の約
0.8kb上流にXbaI部位が存在することが推定さ
れた(図1)。そこで実施例7において決定された塩基
配列を基にして合成した24塩基配列から成るプライマ
ー1及びプライマー2(図1、図6)と、鋳型として
baIで切断したKSM−AP1378株の染色体DN
Aを分子内結合した環状DNA群を用い、PCRキット
(アプライド バイオシステム社製)によって逆PCR
法〔Triglia,T.et al.,Nuclei
Acids Res.,16,81(1988)〕
で(94℃ 1分,55℃ 1分,72℃ 3分を1サ
イクルとし、これを30サイクル繰り返す)PstI部
位から上流のXbaI部位までの約0.8kb間を増幅
させた。更に、増幅させた0.8kb断片を実施例7と
同様にその配列を決定した。この結果、断片Cから続く
アルカリプルラナーゼのORFが断片Dよりも更に上流
に続いていることが明らかになった(図1)。
【0038】実施例9 実施例8で取得したXbaIからPstIまでの約0.
8kb断片を実施例5と同様に標識し、プローブDNA
(プローブ2)を作成した。一方、EcoRIによって
切断したバチルス エスピー KSM−AP1378株
由来の染色体DNA(各3μg )をアガロースゲル電気
泳動後、実施例5と同様にしてナイロンメンブラン(ア
マーシャム社製)に移し、プローブ2とのハイブリダイ
ゼーションを行った。その結果、ハイブリッドしたEc
RI断片のサイズ(3.6kb,図7)からKSM−
AP1378株由来の染色体DNA上に、実施例8で得
られた断片Dの1.2kb上流にEcoRI部位が存在す
ることが推定された。そこで、実施例8において決定さ
れた塩基配列を元にして合成された24塩基からなるプ
ライマー3及びプライマー4(図1,図6)と、鋳型と
してEcoRIで切断したKSM−AP1378株の染
色体DNAを分子内結合した環状DNA群を用いて、実
施例8と同様にして逆PCR法によってXbaI部位か
ら更に上流の1.2kb間を増幅させた(断片E)。実
施例7と同様に、増幅させた1.2kbの配列を決定し
たところ、断片Dから続くアルカリプルラナーゼのOR
Fが断片Eよりも更に上流に続いていることが明らかに
なった。
【0039】実施例10 実施例9で得られた断片Eを実施例5と同様に標識し
て、プローブDNA(プローブ3)を作成した。バチル
ス エスピー KSM−AP1378株由来の染色体D
NAのXbaI切断物のハイブリダイゼーション解析を
実施例8、9と同様にして行った(図8)。この結果、
図1に示したように、KSM−AP1378株由来の染
色体DNAにおいて断片EのEcoRI部位より1.1
kb上流にXbaI部位が存在することが推定された。
そこで実施例9において決定された塩基配列を元にして
合成された24塩基のプライマー5及びプライマー6
(図1,図6)と、鋳型としてXbaIで切断したKS
M−AP1378株の染色体DNAを分子内結合した環
状DNA群を用い、実施例8と同様にして逆PCR法に
よってEcoRIから更に上流の1.1kb間を増幅さ
せた。この1.1kbの増幅断片Fの配列を実施例7と
同様に決定したところ、本断片中に断片Eから続くアル
カリプルラナーゼ遺伝子のORFの5′末端が確認され
た。本遺伝子の全ヌクレオチド配列及び推定されるアミ
ノ酸配列を配列番号1に示したが、アミノ酸番号1から
14までの推定配列が、バチルス エスピー KSM−
AP1378株のアルカリプルラナーゼYを用いて実際
に決定したアミノ末端配列と一致したことから、本遺伝
子がアルカリプルラナーゼYをコードしていることが推
定された。
【0040】実施例11 実施例7及び実施例10において決定された塩基配列を
基にして合成された25塩基からなるプライマーA及び
プライマーB(図1,図6)と、鋳型としてKSM−A
P1378株の染色体DNA及び、PCRキット(アプ
ライド バイオシステム社製)を用いてPCR法(94
℃ 1分,55℃ 1分,72℃ 3分を1サイクルと
し、これを30サイクル繰り返す。)によって、アルカ
リプルラナーゼY遺伝子のアルカリα−アミラーゼ領域
を含む3.5kb断片(断片G)を増幅させた。得られ
たDNA断片をpUC18プラスミドベクターのSma
I部位に挿入し、市販のE.coliHB101コンピ
テントセルを用いて形質転換を行った。得られた形質転
換体を0.4%ブルースターチ及び50μg /mlのアン
ピシリンを含んだLB培地にレプリカ法で移植して37
℃において培養を行い、ブルースターチを分解してコロ
ニーの周辺にハローを形成する株を1株分離した。更に
実施例3と同様にこの株からプラスミド(pAMY10
0)を調製した。
【0041】実施例12 アルカリプルラナーゼY遺伝子のアルカリプルラナーゼ
領域を含むプラスミドpHYPUL(実施例3)をPs
Iで切断して得られた7.7kb の断片と同遺伝子のア
ルカリα−アミラーゼ領域を含むpAMY100(実施
例11)をPstIで切断して調製した5.7kbの断
片をT4リガーゼによって結合させた組換えプラスミド
混合物を大腸菌HB101に導入し、出現してきた形質
転換体を0.4%ブルースターチとアンピシリン50μ
g /mlを含むLB培地及び、0.8%レッドプルラン
〔Kanno,M.and Tomiura,E,.
gricBiolChem.,49,1529(1
985)〕とアンピシリン50μg /mlを含むLB培地
に各々レプリカ法で移植し37℃にて12時間生育させ
た。この結果、両プレート上で透明なハローをコロニー
周辺に形成した株をα−アミラーゼ活性を有するアルカ
リプルラナーゼYを生産する組換え大腸菌として分離し
た。
【0042】実施例13 実施例12で得られた組換え大腸菌から、実施例3と同
様にして組換えプラスミド約500μg を調製した。得
られた組換えプラスミドの制限酵素切断地図を作成した
ところ、図1に示した約7.0kbのDNA断片(断片
H)が含まれていることが明らかになり、これをプラス
ミドpAP101と命名した(図2)。また、pAP1
01によって形質転換された大腸菌HB101株をHB
101(pAP101)株と命名した。
【0043】実施例14 実施例4と同様にしてHB101(pAP101)株か
ら無細胞抽出液を調製し、また対照として、HB101
(pBR322)株の無細胞抽出液を調製し、これらの
α−アミラーゼ活性及びプルラナーゼ活性を測定した。
尚、α−アミラーゼ活性は50mMグリシン−NaCl−
NaOH緩衝液(pH10)中に可溶性澱粉を含む反応液
中、50℃で、15分間の反応を行った後生成した還元
糖をDNS法で定量することによって測定した。また、
プルラナーゼ活性は実施例4と同様にして測定した。い
ずれも酵素の力価は、1分間に1μmolのグルコースに
相当する還元糖を生成する酵素量を1単位とした。この
結果、HB101(pAP101)株の無細胞抽出液に
はアルカリα−アミラーゼ活性及びアルカリプルラナー
ゼ活性が認められ、実施例4と同様にα−アミラーゼと
プルラナーゼの作用至適pHを求めたところ、α−アミラ
ーゼ活性がpH8〜9の範囲、プルラナーゼ活性がpH9〜
10の範囲であることが明らかとなった。
【0044】実施例15 本発明者らにより、バチルス エスピー KSM−AP
1378株の培養液より精製された50mgのアルカリプ
ルラナーゼY酵素〔210キロダルトン(KDa);特
公平6−32613号公報〕に0.1mgのパパイン(シ
グマ社製;5U/mg)を加え、10mMトリス−HCl緩
衝液(pH8.0)中で30℃、2分間の加水分解反応を
行った後、10μg のアンチパイン(フルカ社製)を添
加することによって反応を停止した。この分解産物をD
EAE 5PWカラム(7.5mm×7.5cm;東ソー社
製)を用いて分画すると、114KDa及び102KD
aの蛋白断片が得られた。これら2つの蛋白断片の酵素
活性を測定した結果、114KDa蛋白断片はアルカリ
プルラナーゼ活性のみを有し、102KDa蛋白断片は
アルカリα−アミラーゼ活性のみを有することが明らか
となった。プルラナーゼ活性のみを有する114KDa
蛋白断片のN末アミノ酸配列を決定したところThr-Val-
Pro-Leu-Ala-Leu-Val-Ser-Gly-Glu-Val-Leu-Ser-Asp-Ly
s-Leu からなる配列が認められ、この配列は配列番号2
の塩基配列から推定されるアミノ酸配列1014番号目
から1029番号目までと完全に一致した。同様に、α
−アミラーゼ活性のみを有する102KDa蛋白断片の
N末アミノ酸配列Glu-Thr-Gly-Asp-Lys-Arg-Ile-Glu-Ph
e-Ser-Tyr-Glu-Arg-Pro は配列番号2の1番号目から1
4番号目までの推定アミノ酸配列と完全に一致した。以
上の結果からも本遺伝子がプルラナーゼ活性及びα−ア
ミラーゼ活性をそれぞれ異なった活性中心を持つアルカ
リプルラナーゼY蛋白をコードしていることが証明され
た。
【0045】参考例1 α−アミラーゼ活性を有するアルカリプルラナーゼYを
生産するバチルス エスピー KSM−AP1378株
を10mlのA培地(表1)に接種し、30℃で2日間振
盪培養を行った後、この10mlを1リットルの同培地に
接種して30℃で更に3日間振盪培養した後、遠心分離
してアルカリプルラナーゼYの粗酵素液を得た。粗酵素
液に対しDEAE−セルロースによる吸着、セファロー
ス−α−サイクロデキストリン アフィニティーカラム
処理、セファクリルS−200カラム処理の順での精製
過程を経て、電気泳動的に均一な酵素標品を得た。本酵
素のN末アミノ酸配列をプロテインシークエンサー47
6A(アプライド バイオシステム社製)を用いて決定
したところGlu-Thr-Gly-Asp-Lys-Arg-Ile-Glu-Phe-Ser-
Tyr-Glu-Arg-Pro であることが判明した。
【0046】参考例2 参考例1で得られたアルカリプルラナーゼYの完全精製
標品のα−アミラーゼ活性とプルラナーゼ活性の最適pH
を実施例4及び実施例14に示した酵素活性測定法を用
いて測定したところ図3に示したように、前者でpH8.
5付近、後者でpH9.5付近であった。
【0047】
【配列番号】
配列番号:1 配列の長さ:1938 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Met Lys Lys Arg Phe Gln Arg Gly Met Ala Gly Leu Leu Ser Ile Leu -30 -25 -20 Leu Ile Val Ser Met Phe Ala Gly Tyr Leu Pro Ala Arg Ala Ala Ala -15 -10 -5 Glu Thr Gly Asp Lys Arg Ile Glu Phe Ser Tyr Glu Arg Pro Asp Gly 1 5 10 15 Asn Tyr Glu Gly Trp Asn Leu Trp Val Trp Gly Thr Gly Val Lys Asp 20 25 30 Asp Gln Ile Asp Phe Thr Glu Phe Lys Glu Gly Lys Ala Tyr Ala Asp 35 40 45 Ile Ala Val Ser Asp Asn Ala Asp Lys Val Gly Phe Ile Ile Arg Lys 50 55 60 Gly Asp Trp Glu Glu Lys Asp Phe Asp Gly Asp Arg Ser Ile Thr Ile 65 70 75 80 Asn Lys Ile Asp Asn Ile Thr Lys Val His Val Thr Ser Gln Gln Glu 85 90 95 Lys Phe Gly Gln Ile Pro Asp Gly Ser Pro Pro Val Val Ala Asp Gly 100 105 110 Asn Ala Asp Phe Phe Phe Arg Asp Lys Glu Leu Tyr Ala Ala Gly Glu 115 120 125 Met Asp Lys Val Glu Lys Val Glu Leu Ser Ile Leu Gly Glu Lys Tyr 130 135 140 Glu Met Asn Gly Glu Pro Glu Lys Glu Arg Phe Thr Tyr Thr Leu Ser 145 150 155 160 Asp Leu Pro Thr Gly Glu His Glu Tyr Thr Tyr Leu Val Thr Val Asp 165 170 175 Gly Gln Thr Glu Glu Val Thr Asp Pro Tyr Asn Thr Val Asp Gly Arg 180 185 190 Ser Val Val Glu Tyr Val Thr Ser Asp Val Gln Val Ser Ala Ser Phe 195 200 205 Ile Pro Ala Lys Val Asp Tyr Asn Gln Asn Ala Val Val Lys Val Asp 210 215 220 Ile Glu Ser Glu Thr Glu Thr Lys Ile Arg Glu Met Ser Ile Asn Leu 225 230 235 240 Ser Glu Ile Gly Gly Lys Glu Lys Ala Thr Ile Asp Pro Ala Leu Asn 245 250 255 Glu Leu Thr Val Ala Val Lys Gln Gly Val Thr Ala Gly Val Lys Asn 260 265 270 Leu Pro Ile Thr Ala Ile Asp Glu Phe Gly Asn Arg His Glu Gly Ser 275 280 285 Ala Thr Leu Glu Val Gln Ala Arg Thr Ile Thr Gly Glu Lys Ala Asp 290 295 300 Phe Asp Trp Asp Gln Ser Val Val Tyr Phe Met Leu Thr Asp Arg Phe 305 310 315 320 Phe Asp Gly Asp Ser Ser Asn Asn Asp Pro His Gly Ile Gly Tyr Asp 325 330 335 Thr Ser Lys Ser Gly Thr Tyr Gln Gly Gly Asp Phe Lys Gly Ile Thr 340 345 350 Gln Arg Leu Asp Tyr Leu Asp Glu Leu Gly Ile Asn Thr Ile Trp Ile 355 360 365 Ser Pro Val Val Asp Asn Ile Lys Phe Asp Val Arg His Ser Glu Gly 370 375 380 Pro Asp Thr Pro Tyr Tyr Ala Tyr His Gly Tyr Trp Ala Asp Asn Phe 385 390 395 400 Gly Glu Leu Asn Pro His Phe Gly Ser Met Ala Asp Phe His Glu Met 405 410 415 Ile Asp Ala Ala His Glu Arg Gly Ile Lys Ile Met Val Asp Val Val 420 425 430 Leu Asn His Thr Gly Tyr Gly Leu Lys Pro Gly Asp Ser Ser Ser Val 435 440 445 Ala Asn Phe Pro Thr Asp Glu Asp Arg Ala Arg Phe Asp Gly Met Leu 450 455 460 Arg Asp Gly Gly Ser Gly Glu Val Arg Gly Glu Leu Ala Gly Leu Pro 465 470 475 480 Asp Phe Leu Thr Glu Asn Pro Asp Val Arg Glu Gln Val Val Gln Trp 485 490 495 Gln Thr Asp Trp Ile Glu Lys Ser Arg Thr Ala Lys Gly Asn Thr Ile 500 505 510 Asp Tyr Phe Arg Val Asp Thr Val Lys His Val Glu Asp Thr Thr Trp 515 520 525 Met Ala Phe Lys Asn Ala Leu Thr Lys Ala Met Pro Glu His Lys Leu 530 535 540 Ile Gly Glu Ala Trp Gly Ala Asn Val Asn Asp Asp Leu Gly Tyr Leu 545 550 555 560 Asn Ser Gly Met Met Asp Ser Leu Leu Asp Phe Asp Phe Lys Asn Tyr 565 570 575 Ala Arg Asp Phe Ala Asn Gly Gln Leu Asp Ala Val Gln Gln Lys Leu 580 585 590 Glu Ala Arg Asn Ser Lys Leu Asn Asn Thr Ala Thr Leu Gly Gln Phe 595 600 605 Leu Gly Ser His Asp Glu Asp Arg Phe Tyr Glu Val Val Glu Gly Asp 610 615 620 Leu Gly Lys Tyr Gln Val Ala Ala Ser Leu Gln Leu Thr Ala Lys Gly 625 630 635 640 Gln Pro Val Ile Tyr Tyr Gly Glu Glu Leu Gly Leu Pro Gly Lys Asn 645 650 655 Asp Tyr Pro Tyr Tyr Thr Asn Arg Gln Asn Met Pro Trp Asp Asp Val 660 665 670 Asp Gly Asn Glu Ile Leu Glu His Tyr Gln Lys Leu Leu Ala Phe Arg 675 680 685 Asn Asp Asn Pro Asn Thr Phe Ala Lys Gly Asp Arg Lys Lys Val Ala 690 695 700 Gly Ser Asp Ser Glu Gly Tyr Leu Leu Phe Ser Arg Thr Tyr Gly Glu 705 710 715 720 Asn Ser Val Tyr Val Gly Leu Asn Thr Glu Ala Ala Ala Lys Asp Val 725 730 735 Thr Leu Asn Phe Gly Ser Ser Glu Ala Val Val Thr Asp Arg Tyr Ser 740 745 750 Gly Gln Glu Tyr Gln Ala Asn Glu Glu Gly Gln Val Thr Phe Ser Ile 755 760 765 Pro Ala Met Glu Asp Gly Gly Thr Val Leu Leu Glu Val Glu Asn Gly 770 775 780 Ala Val Pro Pro Val Glu Glu Glu Pro Thr Glu Pro Gly Glu Ile Glu 785 790 795 800 Glu Asn Thr Leu Arg Ile His Tyr Gln Arg Thr Asp Asn Ser Tyr Glu 805 810 815 Asn Leu Gly Leu Trp Leu Trp Gly Asp Val Ala Ala Pro Ser Glu Asn 820 825 830 Trp Pro Ser Gly Gly Thr Pro Phe Gln Ala Gly Asn Val Thr Asp Tyr 835 840 845 Gly Ala Tyr Val Asp Val Glu Leu Ala Glu Asp Ala Gln Asn Ile Gly 850 855 860 Phe Leu Val Leu Asn Thr Thr Asn Gly Asp Lys Asp Gly Gly Asp Lys 865 870 875 880 Ala Val Glu Leu Phe Ser Pro Asp Leu Asn Glu Ile Trp Ile Lys Gln 885 890 895 Gly Ser Asp Glu Val Phe Leu Tyr Glu Pro Val Asp Leu Pro Ala Asn 900 905 910 Thr Val Arg Ile His Tyr Glu Arg Thr Asn Ala Asp Tyr Glu Gly Trp 915 920 925 Gly Leu Trp Asn Trp Glu Asp Val Glu Ser Pro Ser Asp Gly Trp Pro 930 935 940 Asn Gly Ala Ala Asp Ala Ala Gly Ile Gly Lys Tyr Gly Ala Tyr Tyr 945 950 955 960 Asp Ile Lys Leu Lys Glu Asp Ala Asn Lys Ile Gly Phe Leu Phe Val 965 970 975 Asn Lys Gln Ser Gly Gly Gln Thr Gly Asp Met Thr Phe Asp Met Leu 980 985 990 Lys Gln Tyr Asn Gln Leu Phe Val Lys Glu Gly Glu Asp Lys 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【0048】配列番号:2 配列の長さ:6142 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 起源 生物名:バチルス エスピー 株名:KSM−AP1378 配列 TCTA GATGTGCAAT TTTGCGCAAA 24 CGATTTCACA TTTACATAAA CAATCTTGGC ATCAATTAAA TTATTTATTG TGCAACTTTG 84 TGCAAACGCT TCCACATTTT AGCAAGAAAT GCAAATCATT GTATGGAAAG GGGCAGGGAT 144 ATG AAG AAA AGG TTT CAA AGG GGT ATG GCT GGT TTA CTT TCT ATT TTA 192 Met Lys Lys Arg Phe Gln Arg Gly Met Ala Gly Leu Leu Ser Ile Leu -30 -25 -20 CTT ATT GTT TCC ATG TTT GCA GGC TAT CTA CCG GCA AGA GCA GCG GCC 240 Leu Ile Val Ser Met Phe Ala Gly Tyr Leu Pro Ala Arg Ala Ala Ala -15 -10 -5 GAA ACG GGA GAC AAG CGG ATA GAA TTC AGT TAT GAA CGG CCA GAT GGA 288 Glu Thr Gly Asp Lys Arg Ile Glu Phe Ser Tyr Glu Arg Pro Asp Gly 1 5 10 15 AAT TAT GAA GGC TGG AAT TTA TGG GTC TGG GGA ACT GGT GTG AAG GAT 336 Asn Tyr Glu Gly Trp Asn Leu Trp Val Trp Gly Thr Gly Val Lys Asp 20 25 30 GAC CAG ATA GAC TTT ACA GAA TTC AAG GAA GGC AAG GCA TAT GCC GAC 384 Asp Gln Ile Asp Phe Thr Glu Phe Lys Glu Gly Lys Ala Tyr Ala Asp 35 40 45 ATA GCA GTA AGC 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Lys Ala 1250 1255 1260 CAG TTC GGT ACA TTT GCT TCT TTC GTG GAA AAG CTG GAT TAC ATT CAA 4080 Gln Phe Gly Thr Phe Ala Ser Phe Val Glu Lys Leu Asp Tyr Ile Gln 1265 1270 1275 1280 GAG TTA GGT GTC ACT CAC ATT CAA TTG TTG CCT GTG ATG AGC TAT TAT 4128 Glu Leu Gly Val Thr His Ile Gln Leu Leu Pro Val Met Ser Tyr Tyr 1285 1290 1295 TTC AGC AAT GAA TTT GAG TCT GGG GAG CGC ATG CTG GAG TAT GCT TCA 4176 Phe Ser Asn Glu Phe Glu Ser Gly Glu Arg Met Leu Glu Tyr Ala Ser 1300 1305 1310 ACG GGG ACG AAT TAC AAT TGG GGC TAT GAC CCG CAC AAT TAC TTC TCC 4224 Thr Gly Thr Asn Tyr Asn Trp Gly Tyr Asp Pro His Asn Tyr Phe Ser 1315 1320 1325 TTA TCC GGC ATG TAC TCC GAA AAC CCT GAG GAC CCG GAA CTG AGA ATC 4272 Leu Ser Gly Met Tyr Ser Glu Asn Pro Glu Asp Pro Glu Leu Arg Ile 1330 1335 1340 AAA GAA TTC AAG AAT CTG ATC AAC GAG ATT CAT AAG CGC GAC ATG GGT 4320 Lys Glu Phe Lys Asn Leu Ile Asn Glu Ile His Lys Arg Asp Met Gly 1345 1350 1355 1360 GTG GTA CTT GAT GTG GTG TTT AAC CAC ACC GCA CAG GTT CAC ATT TTC 4368 Val Val Leu Asp Val Val Phe Asn His Thr Ala Gln Val His Ile Phe 1365 1370 1375 GAG GAC CTT GTA CCA AAC TAC TAT CAC TTC ATG GAT GCG GAC GGA ACC 4416 Glu Asp Leu Val Pro Asn Tyr Tyr His Phe Met Asp Ala Asp Gly Thr 1380 1385 1390 CCA AGA ACT AGC TTT GGC GGT GGA CGT CTT GGA ACG ACA CAT GAA ATG 4464 Pro Arg Thr Ser Phe Gly Gly Gly Arg Leu Gly Thr Thr His Glu Met 1395 1400 1405 TCC CGC CGT GTG CTC GTA GAT TCC ATC AAG CAT TGG GTG GAT GAA TAT 4512 Ser Arg Arg Val Leu Val Asp Ser Ile Lys His Trp Val Asp Glu Tyr 1410 1415 1420 AAG GTG GAC GGA TTC CGT TTT GAC ATG ATG GGT GAC CAT GAT GCA GAG 4560 Lys Val Asp Gly Phe Arg Phe Asp Met Met Gly Asp His Asp Ala Glu 1425 1430 1435 1440 AGT ATT CAG ATT GCT TTT GAC GAA GCC AAA AAA TTG AAC CCG AAT ATC 4608 Ser Ile Gln Ile Ala Phe Asp Glu Ala Lys Lys Leu Asn Pro Asn Ile 1445 1450 1455 GTC ATG ATC GGG GAA GGC TGG GTA ACA TTT GCT GGT GAC GAG GGC GAG 4656 Val Met Ile Gly Glu Gly Trp Val Thr Phe Ala Gly Asp Glu Gly Glu 1460 1465 1470 CCG GTC CAG GCG GCC GAT CAA CAA TGG ATG CAA TAT ACC GAA GCA GTG 4704 Pro Val Gln Ala Ala Asp Gln Gln Trp Met Gln Tyr Thr Glu Ala Val 1475 1480 1485 GGT AGC TTC TCG GAT GAA TTC CGC AAC GAG CTG AAA TCC GGT TTC GGA 4752 Gly Ser Phe Ser Asp Glu Phe Arg Asn Glu Leu Lys Ser Gly Phe Gly 1490 1495 1500 AGC GAA GGA CAG CCA CGT TTC ATC ACA GGT GGC GCG GTC AAT GTG CAA 4800 Ser Glu Gly Gln Pro Arg Phe Ile Thr Gly Gly Ala Val Asn Val Gln 1505 1510 1515 1520 CAA ATT TTC GAT AAC ATC AAA GCA CAG CCT CAT AAC TTT ATG GCC GAT 4848 Gln Ile Phe Asp Asn Ile Lys Ala Gln Pro His Asn Phe Met Ala Asp 1525 1530 1535 CAA CCA GGC GAT GTG GTC CAA TAC ATC GAG GCC CAT GAC AAC CTG ACG 4896 Gln Pro Gly Asp Val Val Gln Tyr Ile Glu Ala His Asp Asn Leu Thr 1540 1545 1550 TTA TAC GAT GTC ATC GCA CAA TCT ATC AAA AAA GAT CCG GAA ATC GCG 4944 Leu Tyr Asp Val Ile Ala Gln Ser Ile Lys Lys Asp Pro Glu Ile Ala 1555 1560 1565 GAA AAC GAT TTA GAG ATT CAT AAG CGT ATT CGC GTG GGT AAT GCC ATG 4992 Glu Asn Asp Leu Glu Ile His Lys Arg Ile Arg Val Gly Asn Ala Met 1570 1575 1580 GTC TTG ACG TCT CAA GGT ACG GCA TTC TTA CAC GCA GGA CAG GAA TTT 5040 Val Leu Thr Ser Gln Gly Thr Ala Phe Leu His Ala Gly Gln Glu Phe 1585 1590 1595 1600 GGT CGT ACA AAG CAA TGG AGA GCA CCT GCA ACG GAG GCA CCG TAC AAG 5088 Gly Arg Thr Lys Gln Trp Arg Ala Pro Ala Thr Glu Ala Pro Tyr Lys 1605 1610 1615 TCT ACG TAT ATG ACA GAT GCT GAT GGC AAT CCG TTC GTG TAT CCA TAT 5136 Ser Thr Tyr Met Thr Asp Ala Asp Gly Asn Pro Phe Val Tyr Pro Tyr 1620 1625 1630 TTC ATC CAC GAT TCC TAT GAT TCC TCG GAT ATC ATC AAT CGT TTT GAT 5184 Phe Ile His Asp Ser Tyr Asp Ser Ser Asp Ile Ile Asn Arg Phe Asp 1635 1640 1645 TGG GAA AAA GCG ACA GAT GCC GAG AAA TAC CCT GTC AAC AAT GTG ACA 5232 Trp Glu Lys Ala Thr Asp Ala Glu Lys Tyr Pro Val Asn Asn Val Thr 1650 1655 1660 CGT GAC TAC ACG GCA GGC TTG ATC GAG CTG CGT CGT TCA TCT GAT GCT 5280 Arg Asp Tyr Thr Ala Gly Leu Ile Glu Leu Arg Arg Ser Ser Asp Ala 1665 1670 1675 1680 TTC CGT TTA GGT TCT CGT GAA TTG GTC GAT TCC AAT GTG ACA ATG GTT 5328 Phe Arg Leu Gly Ser Arg Glu Leu Val Asp Ser Asn Val Thr Met Val 1685 1690 1695 GAT GCC CCG GAA ATC AAG GAG CAG GAT CTC GTT GTT GCC TAC CGC AGT 5376 Asp Ala Pro Glu Ile Lys Glu Gln Asp Leu Val Val Ala Tyr Arg Ser 1700 1705 1710 GTT TCG ACT GCC GGT GTG GAG TAT TAC ACA TTC GTG AAT GCG GAC ACT 5424 Val Ser Thr Ala Gly Val Glu Tyr Tyr Thr Phe Val Asn Ala Asp Thr 1715 1720 1725 TCC AGT AGA ACA TTG ACC TTA GGG CAG GAT TTG ACA GAG GGC GTA GTG 5472 Ser Ser Arg Thr Leu Thr Leu Gly Gln Asp Leu Thr Glu Gly Val Val 1730 1735 1740 GTG GTC GAT GCA GAA GAG GCT AAT GTA GCC GGT GTA GCT GAG CCT GCT 5520 Val Val Asp Ala Glu Glu Ala Asn Val Ala Gly Val Ala Glu Pro Ala 1745 1750 1755 1760 GGT TTC GAA TTG ACG GCA GAA GGC ATC ACA CTT GAG CCA TTG ACT ACG 5568 Gly Phe Glu Leu Thr Ala Glu Gly Ile Thr Leu Glu Pro Leu Thr Thr 1765 1770 1775 GTT GTC GTC CGT GTA GGC GAG CAG GAA GGG ACA GAC CCG GGT GAT GGG 5616 Val Val Val Arg Val Gly Glu Gln Glu Gly Thr Asp Pro Gly Asp Gly 1780 1785 1790 GAC GGC GAT GGC AAT ACG CCG CCA CCA GGC GAC GGC GAT GGC GAT GGA 5664 Asp Gly Asp Gly Asn Thr Pro Pro Pro Gly Asp Gly Asp Gly Asp Gly 1795 1800 1805 AAC ACG CCA CCA CCA GGG GAT GGG GAT GGC GAT GGA AAC ACG CCT CCT 5712 Asn Thr Pro Pro Pro Gly Asp Gly Asp Gly Asp Gly Asn Thr Pro Pro 1810 1815 1820 CCA GGC AAC GGT AAT GGC AAT AAT CCA GGA ACA CCA CCA GGA AAG GGT 5760 Pro Gly Asn Gly Asn Gly Asn Asn Pro Gly Thr Pro Pro Gly Lys Gly 1825 1830 1835 1840 GGA GAA AAC CCT GGT AAA GGC AAA AAC GAC AAA ACA CCG CCT GGC AAA 5808 Gly Glu Asn Pro Gly Lys Gly Lys Asn Asp Lys Thr Pro Pro Gly Lys 1845 1850 1855 GGT GGG GAC AAT CCA GGT AAG GGG AAC AAG CTA CCA CTT ACC GCA ACC 5856 Gly Gly Asp Asn Pro Gly Lys Gly Asn Lys Leu Pro Leu Thr Ala Thr 1860 1865 1870 GGA ACA CTT AAT TAC ATC CTG TTT GGT GCA ATA ATG TTG GTT CTT GGG 5904 Gly Thr Leu Asn Tyr Ile Leu Phe Gly Ala Ile Met Leu Val Leu Gly 1875 1880 1885 ACG CTG CTG TAT CTA GGG GTC AGA AGA AAA GCA GGA TTG AAA GAA AAA 5952 Thr Leu Leu Tyr Leu Gly Val Arg Arg Lys Ala Gly Leu Lys Glu Lys 1890 1895 1900 ACC TTA TAA AAACAACGGA AAAGTGTGGC AGGGGAATAT CCCGCCACAC 6001 Thr Leu 1905 TTTTTCGTTA TTATAAGGCA TTATTTGCTT GTAGATTAAG GATTCGCTAT 6051 AGGTTATTTT GTGTAACGTA CATTACTTTT CCGTTGGGCC ATATTTATTT 6101 TCCATACCGC TCATTTTTCT TTTCCATTGG GACCACATTT A 6142
【0049】配列番号:3 配列の長さ:801 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Met Lys Lys Arg Phe Gln Arg Gly Met Ala Gly Leu Leu Ser Ile Leu -30 -25 -20 Leu Ile Val Ser Met Phe Ala Gly Tyr Leu Pro Ala Arg Ala Ala Ala -15 -10 -5 Glu Thr Gly Asp Lys Arg Ile Glu Phe Ser Tyr Glu Arg Pro Asp Gly 1 5 10 15 Asn Tyr Glu Gly Trp Asn Leu Trp Val Trp Gly Thr Gly Val Lys Asp 20 25 30 Asp Gln Ile Asp Phe Thr Glu Phe Lys Glu Gly Lys Ala Tyr Ala Asp 35 40 45 Ile Ala Val Ser Asp Asn Ala Asp Lys Val Gly Phe Ile Ile Arg Lys 50 55 60 Gly Asp Trp Glu Glu Lys Asp Phe Asp Gly Asp Arg Ser Ile Thr Ile 65 70 75 80 Asn Lys Ile Asp Asn Ile Thr Lys Val His Val Thr Ser Gln Gln Glu 85 90 95 Lys Phe Gly Gln Ile Pro Asp Gly Ser Pro Pro Val Val Ala Asp Gly 100 105 110 Asn Ala Asp Phe Phe Phe Arg Asp Lys Glu Leu Tyr Ala Ala Gly Glu 115 120 125 Met Asp Lys Val Glu Lys Val Glu Leu Ser Ile Leu Gly Glu Lys Tyr 130 135 140 Glu Met Asn Gly Glu Pro Glu Lys Glu Arg Phe Thr Tyr Thr Leu Ser 145 150 155 160 Asp Leu Pro Thr Gly Glu His Glu Tyr Thr Tyr Leu Val Thr Val Asp 165 170 175 Gly Gln Thr Glu Glu Val Thr Asp Pro Tyr Asn Thr Val Asp Gly Arg 180 185 190 Ser Val Val Glu Tyr Val Thr Ser Asp Val Gln Val Ser Ala Ser Phe 195 200 205 Ile Pro Ala Lys Val Asp Tyr Asn Gln Asn Ala Val Val Lys Val Asp 210 215 220 Ile Glu Ser Glu Thr Glu Thr Lys Ile Arg Glu Met Ser Ile Asn Leu 225 230 235 240 Ser Glu Ile Gly Gly Lys Glu Lys Ala Thr Ile Asp Pro Ala Leu Asn 245 250 255 Glu Leu Thr Val Ala Val Lys Gln Gly Val Thr Ala Gly Val Lys Asn 260 265 270 Leu Pro Ile Thr Ala Ile Asp Glu Phe Gly Asn Arg His Glu Gly Ser 275 280 285 Ala Thr Leu Glu Val Gln Ala Arg Thr Ile Thr Gly Glu Lys Ala Asp 290 295 300 Phe Asp Trp Asp Gln Ser Val Val Tyr Phe Met Leu Thr Asp Arg Phe 305 310 315 320 Phe Asp Gly Asp Ser Ser Asn Asn Asp Pro His Gly Ile Gly Tyr Asp 325 330 335 Thr Ser Lys Ser Gly Thr Tyr Gln Gly Gly Asp Phe Lys Gly Ile Thr 340 345 350 Gln Arg Leu Asp Tyr Leu Asp Glu Leu Gly Ile Asn Thr Ile Trp Ile 355 360 365 Ser Pro Val Val Asp Asn Ile Lys Phe Asp Val Arg His Ser Glu Gly 370 375 380 Pro Asp Thr Pro Tyr Tyr Ala Tyr His Gly Tyr Trp Ala Asp Asn Phe 385 390 395 400 Gly Glu Leu Asn Pro His Phe Gly Ser Met Ala Asp Phe His Glu Met 405 410 415 Ile Asp Ala Ala His Glu Arg Gly Ile Lys Ile Met Val Asp Val Val 420 425 430 Leu Asn His Thr Gly Tyr Gly Leu Lys Pro Gly Asp Ser Ser Ser Val 435 440 445 Ala Asn Phe Pro Thr Asp Glu Asp Arg Ala Arg Phe Asp Gly Met Leu 450 455 460 Arg Asp Gly Gly Ser Gly Glu Val Arg Gly Glu Leu Ala Gly Leu Pro 465 470 475 480 Asp Phe Leu Thr Glu Asn Pro Asp Val Arg Glu Gln Val Val Gln Trp 485 490 495 Gln Thr Asp Trp Ile Glu Lys Ser Arg Thr Ala Lys Gly Asn Thr Ile 500 505 510 Asp Tyr Phe Arg Val Asp Thr Val Lys His Val Glu Asp Thr Thr Trp 515 520 525 Met Ala Phe Lys Asn Ala Leu Thr Lys Ala Met Pro Glu His Lys Leu 530 535 540 Ile Gly Glu Ala Trp Gly Ala Asn Val Asn Asp Asp Leu Gly Tyr Leu 545 550 555 560 Asn Ser Gly Met Met Asp Ser Leu Leu Asp Phe Asp Phe Lys Asn Tyr 565 570 575 Ala Arg Asp Phe Ala Asn Gly Gln Leu Asp Ala Val Gln Gln Lys Leu 580 585 590 Glu Ala Arg Asn Ser Lys Leu Asn Asn Thr Ala Thr Leu Gly Gln Phe 595 600 605 Leu Gly Ser His Asp Glu Asp Arg Phe Tyr Glu Val Val Glu Gly Asp 610 615 620 Leu Gly Lys Tyr Gln Val Ala Ala Ser Leu Gln Leu Thr Ala Lys Gly 625 630 635 640 Gln Pro Val Ile Tyr Tyr Gly Glu Glu Leu Gly Leu Pro Gly Lys Asn 645 650 655 Asp Tyr Pro Tyr Tyr Thr Asn Arg Gln Asn Met Pro Trp Asp Asp Val 660 665 670 Asp Gly Asn Glu Ile Leu Glu His Tyr Gln Lys Leu Leu Ala Phe Arg 675 680 685 Asn Asp Asn Pro Asn Thr Phe Ala Lys Gly Asp Arg Lys Lys Val Ala 690 695 700 Gly Ser Asp Ser Glu Gly Tyr Leu Leu Phe Ser Arg Thr Tyr Gly Glu 705 710 715 720 Asn Ser Val Tyr Val Gly Leu Asn Thr Glu Ala Ala Ala Lys Asp Val 725 730 735 Thr Leu Asn Phe Gly Ser Ser Glu Ala Val Val Thr Asp Arg Tyr Ser 740 745 750 Gly Gln Glu Tyr Gln Ala Asn Glu Glu Gly Gln Val Thr Phe Ser Ile 755 760 765 Pro Ala Met Glu Asp Gly Gly Thr Val Leu Leu Glu Val Glu Asn Gly 770 775 780 Ala Val Pro Pro Val Glu Glu Glu Pro Thr Glu Pro Gly Glu Ile Glu 785 790 795 800 Glu
【0050】配列番号:4 配列の長さ:893 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Thr Val Pro Leu Ala Leu Val Ser Gly Glu Val Leu Ser Asp Lys Leu 1 5 10 15 Ile Ser Leu Thr Phe Thr Arg Thr Glu Gly Leu Asp Leu Glu Glu Leu 20 25 30 Lys Glu Gln Leu Glu Ile Lys Asp Val Asp Gly Asn Asp Val Ser Phe 35 40 45 Thr Asp Val Thr Ile Glu Gly Glu Lys Thr Val His Val His Gly Glu 50 55 60 Phe Asp Leu Glu Lys Ile Pro Phe Ser Val Thr Tyr Leu Asp Arg Thr 65 70 75 80 Ile Ser Val Lys Ser Gly Trp Lys Leu Ile Asp Glu Met Tyr Ala Tyr 85 90 95 Asp Gly Lys Leu Gly Ala Glu Leu His Glu Asp Gly Thr Ala Thr Leu 100 105 110 Lys Val Trp Ser Pro Lys Ala Asp Asn Val Ser Val Val Leu Tyr Asp 115 120 125 Lys Val Asp Gln Asn Glu Val Val Asp Thr Ile Glu Met Val Lys Gly 130 135 140 Asp Arg Gly Val Trp Ser Val Lys Leu Thr Lys Asp Asn Thr Gly Leu 145 150 155 160 Asp Ser Leu Lys Gly Tyr Tyr Tyr His Tyr Glu Ile Thr His Gly Asp 165 170 175 Val Thr Asn Leu Ala Leu Asp Pro Tyr Ala Lys Ser Met Ala Ala Trp 180 185 190 Asn Asn Glu Ala Gly Asp Lys Val Gly Lys Ala Ala Ile Val Asp Ile 195 200 205 Gly Ser Ile Gly Pro Glu Leu Asp Tyr Ala Asp Ile Pro Gly Phe Glu 210 215 220 Lys Arg Glu Asp Thr Ile Ile Tyr Glu Val His Val Arg Asp Phe Thr 225 230 235 240 Ser Asp Pro Asn Ile Gly Glu Asp Leu Lys Ala Gln Phe Gly Thr Phe 245 250 255 Ala Ser Phe Val Glu Lys Leu Asp Tyr Ile Gln Glu Leu Gly Val Thr 260 265 270 His Ile Gln Leu Leu Pro Val Met Ser Tyr Tyr Phe Ser Asn Glu Phe 275 280 285 Glu Ser Gly Glu Arg Met Leu Glu Tyr Ala Ser Thr Gly Thr Asn Tyr 290 295 300 Asn Trp Gly Tyr Asp Pro His Asn Tyr Phe Ser Leu Ser Gly Met Tyr 305 310 315 320 Ser Glu Asn Pro Glu Asp Pro Glu Leu Arg Ile Lys Glu Phe Lys Asn 325 330 335 Leu Ile Asn Glu Ile His Lys Arg Asp Met Gly Val Val Leu Asp Val 340 345 350 Val Phe Asn His Thr Ala Gln Val His Ile Phe Glu Asp Leu Val Pro 355 360 365 Asn Tyr Tyr His Phe Met Asp Ala Asp Gly Thr Pro Arg Thr Ser Phe 370 375 380 Gly Gly Gly Arg Leu Gly Thr Thr His Glu Met Ser Arg Arg Val Leu 385 390 395 400 Val Asp Ser Ile Lys His Trp Val Asp Glu Tyr Lys Val Asp Gly Phe 405 410 415 Arg Phe Asp Met Met Gly Asp His Asp Ala Glu Ser Ile Gln Ile Ala 420 425 430 Phe Asp Glu Ala Lys Lys Leu Asn Pro Asn Ile Val Met Ile Gly Glu 435 440 445 Gly Trp Val Thr Phe Ala Gly Asp Glu Gly Glu Pro Val Gln Ala Ala 450 455 460 Asp Gln Gln Trp Met Gln Tyr Thr Glu Ala Val Gly Ser Phe Ser Asp 465 470 475 480 Glu Phe Arg Asn Glu Leu Lys Ser Gly Phe Gly Ser Glu Gly Gln Pro 485 490 495 Arg Phe Ile Thr Gly Gly Ala Val Asn Val Gln Gln Ile Phe Asp Asn 500 505 510 Ile Lys Ala Gln Pro His Asn Phe Met Ala Asp Gln Pro Gly Asp Val 515 520 525 Val Gln Tyr Ile Glu Ala His Asp Asn Leu Thr Leu Tyr Asp Val Ile 530 535 540 Ala Gln Ser Ile Lys Lys Asp Pro Glu Ile Ala Glu Asn Asp Leu Glu 545 550 555 560 Ile His Lys Arg Ile Arg Val Gly Asn Ala Met Val Leu Thr Ser Gln 565 570 575 Gly Thr Ala Phe Leu His Ala Gly Gln Glu Phe Gly Arg Thr Lys Gln 580 585 590 Trp Arg Ala Pro Ala Thr Glu Ala Pro Tyr Lys Ser Thr Tyr Met Thr 595 600 605 Asp Ala Asp Gly Asn Pro Phe Val Tyr Pro Tyr Phe Ile His Asp Ser 610 615 620 Tyr Asp Ser Ser Asp Ile Ile Asn Arg Phe Asp Trp Glu Lys Ala Thr 625 630 635 640 Asp Ala Glu Lys Tyr Pro Val Asn Asn Val Thr Arg Asp Tyr Thr Ala 645 650 655 Gly Leu Ile Glu Leu Arg Arg Ser Ser Asp Ala Phe Arg Leu Gly Ser 660 665 670 Arg Glu Leu Val Asp Ser Asn Val Thr Met Val Asp Ala Pro Glu Ile 675 680 685 Lys Glu Gln Asp Leu Val Val Ala Tyr Arg Ser Val Ser Thr Ala Gly 690 695 700 Val Glu Tyr Tyr Thr Phe Val Asn Ala Asp Thr Ser Ser Arg Thr Leu 705 710 715 720 Thr Leu Gly Gln Asp Leu Thr Glu Gly Val Val Val Val Asp Ala Glu 725 730 735 Glu Ala Asn Val Ala Gly Val Ala Glu Pro Ala Gly Phe Glu Leu Thr 740 745 750 Ala Glu Gly Ile Thr Leu Glu Pro Leu Thr Thr Val Val Val Arg Val 755 760 765 Gly Glu Gln Glu Gly Thr Asp Pro Gly Asp Gly Asp Gly Asp Gly Asn 770 775 780 Thr Pro Pro Pro Gly Asp Gly Asp Gly Asp Gly Asn Thr Pro Pro Pro 785 790 795 800 Gly Asp Gly Asp Gly Asp Gly Asn Thr Pro Pro Pro Gly Asn Gly Asn 805 810 815 Gly Asn Asn Pro Gly Thr Pro Pro Gly Lys Gly Gly Glu Asn Pro Gly 820 825 830 Lys Gly Lys Asn Asp Lys Thr Pro Pro Gly Lys Gly Gly Asp Asn Pro 835 840 845 Gly Lys Gly Asn Lys Leu Pro Leu Thr Ala Thr Gly Thr Leu Asn Tyr 850 855 860 Ile Leu Phe Gly Ala Ile Met Leu Val Leu Gly Thr Leu Leu Tyr Leu 865 870 875 880 Gly Val Arg Arg Lys Ala Gly Leu Lys Glu Lys Thr Leu 885 890
【図面の簡単な説明】
【図1】アルカリプルラナーゼY遺伝子の制限酵素地図
及び各プライマー位置を示す図である。
【図2】サブクローニングによるアルカリプルラナーゼ
Y遺伝子の構築説明図である。
【図3】アルカリプルラナーゼYのα−アミラーゼ及び
プルラナーゼ活性のpHプロフィールを示す図である。
【図4】KSM−AP1378株染色体DNAのPst
I消化物をサザンブロッティングし、断片Aをプローブ
としてハイブリダイゼーションを行った結果を示す図で
ある。サザンフィルターの左側には同時に電気泳動した
λDNA−HindIII消化サイズマーカー(ベーリン
ガー社製)の泳動位置及びその各DNA断片のサイズを
示した。
【図5】KSM−AP1378株染色体DNAのXba
I消化物をサザンブロッティングし、断片Cをプローブ
としてハイブリダイゼーションを行った結果を示す図で
ある。サザンフィルターの左側には同時に電気泳動した
λDNA−HindIII消化物サイズマーカー(ベーリ
ンガー社製)の泳動位置及びその各DNA断片のサイズ
を示した。
【図6】PCRに用いたプライマー位置の塩基配列を示
す図である。
【図7】KSM−AP1378株染色体DNAのEco
RI消化物をサザンブロッティングし、断片Dをプロー
ブとしてハイブリダイゼーションを行った結果を示す図
である。サザンフィルターの左側には同時に電気泳動し
たλDNA-HindIII消化物サイズマーカー(ベーリ
ンガー社製)の泳動位置及びその各DNA断片のサイズ
を示した。
【図8】KSM−AP1378株染色体DNAのXba
I消化物をサザンブロッティングし、断片Eをプローブ
としてハイブリダイゼーションを行った結果を示す図で
ある。サザンフィルターの左側には同時に電気泳動した
λDNA−HindIII消化物サイズマーカー(ベーリ
ンガー社製)の泳動位置及びその各DNA断片のサイズ
を示した。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI C12R 1:19) (C12N 9/28 C12R 1:19) (C12N 9/44 C12R 1:19) (C12N 15/09 ZNA C12R 1:07) (72)発明者 荒 勝俊 栃木県芳賀郡市貝町赤羽2606 花王株式 会社研究所内 (72)発明者 川合 修次 栃木県芳賀郡市貝町赤羽2606 花王株式 会社研究所内 (72)発明者 伊藤 進 栃木県芳賀郡市貝町赤羽2606 花王株式 会社研究所内 (56)参考文献 特開 平6−245768(JP,A) 特開 平6−245772(JP,A) 特開 平3−290498(JP,A) Appl.Environ.Micr obiol.,Vol.60,No.10, (1994),p.3764−3773 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C12N 15/00 - 15/90 C12N 1/00 - 5/28 C12N 9/00 - 9/99 BIOSIS(DIALOG) GenBank/EMBL/DDBJ/ (GENETYX) WPI(DIALOG)

Claims (6)

    (57)【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 配列番号1に記載のアミノ酸配列、又は
    配列番号1に記載のアミノ酸配列に対して1若しくは2
    以上のアミノ酸が置換、付加、欠失、逆位若しくは挿入
    されたアミノ酸配列を有し、かつアルカリα−アミラー
    ゼ活性及びアルカリプルラナーゼ活性を有する蛋白質を
    コードするDNA断片。
  2. 【請求項2】 配列番号3に記載のアミノ酸配列からな
    るアルカリα−アミラーゼ。
  3. 【請求項3】 配列番号3に記載のアミノ酸配列、又は
    配列番号3に記載のアミノ酸配列に対して1若しくは2
    以上のアミノ酸が置換、付加、欠失、逆位若しくは挿入
    されたアミノ酸配列を有し、かつアルカリα−アミラー
    ゼ活性を有する蛋白質をコードするDNA断片。
  4. 【請求項4】 遺伝子の発現調節のための塩基配列を有
    するものである請求項1又は3記載のDNA断片。
  5. 【請求項5】 請求項1、3又は4記載のDNA断片を
    含有する組換えDNA。
  6. 【請求項6】 請求項5記載の組換えDNAを保持する
    形質転換微生物。
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