JP2024026851A - 羊水細胞由来細胞外マトリックスおよびその使用 - Google Patents

羊水細胞由来細胞外マトリックスおよびその使用 Download PDF

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Abstract

【課題】羊水細胞由来細胞外マトリックスおよびその使用の提供。【解決手段】羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られた細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）、ならびに幹細胞を含む接着細胞の単離、維持、および増殖のための使用ならびに幹細胞の分化のための使用の方法が開示される。本発明は、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）および胚性幹細胞（ＥＳ）を含むがこれらに限定されない多能性幹細胞（ＰＳＣ）の単離、拡大、および増殖を支持する細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）に関連する当技術における上述の限界および欠陥の少なくともいくつかに対する解決策を提供する。【選択図】なし

Description

関連出願への相互参照
本出願は、２０１８年１０月３日出願の米国仮特許出願第６２／７４０，８１７号の利益を主張し、該出願は参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
本発明は一般に、細胞由来の細胞外マトリックスならびに、哺乳動物細胞の単離、維持、および増殖、ならびに幹細胞の分化を含むその使用に関する。
ｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞培養はおそらく、全ての細胞生物学ならびに再生医療および組織工学の発展している分野において最も普遍的で重要、かつあまりよく理解されていない一面である。第１に、これによって細胞の挙動の観察が可能になり、それにより細胞機能の種々の態様を詳細に研究することができる。第２に、これによって特定の細胞群の数を増加させることができる。基礎研究ならびに多くの臨床応用のためには、少量の生体試料から大量の比較的まれな細胞を獲得することが必要である。ｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞培養によって、少数の細胞を体外で拡大してより適切な数の細胞を獲得することが可能になる。最後に、これにより細胞を後日の使用のために保存することが可能になる。ｉｎ ｖｉｔｒｏで細胞数を拡大し、後日の使用のために生存している細胞を凍結することによって、比較的少量の生体試料から数日、数か月、またはさらには数年もの期間にわたって複数の実験のための細胞を獲得することができる。
細胞培養が普遍的に存在しているにも関わらず、ｉｎ ｖｉｔｒｏ培養が細胞の生来の特徴に及ぼす効果は比較的理解が不十分なままである。本発明者らの現在の実施の多くは意図的な思想、計画、および実験からではなく、その代わりに偶然の観察から生じている。哺乳動物細胞の培養は１９００年代の初期に始まり、１９１１年にＡｌｅｘｉｓ ＣａｒｒｅｌおよびＭｏｎｔｒｏｓｅ Ｂｕｒｒｏｗｓが最初にｉｎ ｖｉｔｒｏにおける哺乳動物組織の培養について科学論文に発表した。彼らは、哺乳動物組織の切片を切り出してこれを顕微鏡のスライド上に置くことによって組織の生理学および解剖学を研究していた。その際、彼らはいくつかの細胞が組織からスライド上に遊走することに気付いた。彼らは続いて細胞を永久的に培養するための技法を記述した。現在では彼らの観察のいくつかは妥当でないようであるが、彼らの研究は現代の細胞培養の道を開くものであった。
造血幹細胞（ＨＳＣ）の発見の後、世界中のグループが（ＨＳＣ）を研究していた。ＨＳＣの（懸濁液中での）培養の間、骨髄細胞の副集団がプラスチックフラスコの底に固着して増殖し始めることが観察された。これらの細胞は後にＨＳＣとは区別できることが認識され、最終的に間葉系幹細胞（ＭＳＣ）と名付けられた。ＭＳＣの発見に繋がるこの偶然の観察のために、ＭＳＣおよびその他の多くの哺乳動物の細胞型を定義する属性としてプラスチックへの接着が今でも広く用いられている。
プラスチック基材上で細胞を培養することには問題があり、これはなぜなら、細胞機能の調節における微小環境の重要な役割を実証する、現在では文献で広く受け入れられている実質的な証拠が存在するからである。微小環境は幹細胞および前駆細胞の分化を方向づけるのに役立ち、成熟した細胞型の挙動を調節していることが示されてきた。
細胞を天然の環境から取り出してｉｎ ｖｉｔｒｏで拡大すると、細胞はその周囲の細胞外マトリックスまたは微小環境から、細胞の周囲の組成および状況に関する重要な情報を細胞に中継する重要な手掛りを失う。細胞の微小環境の変化は、これらの細胞の挙動に重大な影響を有する。大部分の接着細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで単離し拡大する現在の標準法は、ポリスチレン（プラスチック）からなる培養容器中に細胞を入れることである。ポリスチレンは細胞の接着および成長を促進するために何らかの方法で処理されているが、多くの場合、表面は細胞にとって完全に異物である。他の場合には、表面は個別のマトリックスタンパク質（たとえばフィブロネクチンまたはコラーゲン）またはタンパク質のある種の組合せでコーティングされていることもある。これらの単純な基材は、天然の微小環境の複雑さならびに正常な細胞機能における微小環境の重要な役割を無視している。細胞は直ちに、細胞がその天然の環境にある場合とは大きく異なる様式で、異物環境に応答し始める。
プラスチック基材上で細胞を培養することにおけるこの問題に対処するために、５つの主なアプローチが現在採用されている。
１．問題を無視する。ｉｎ ｖｉｖｏで期待される機能と一致する所望の機能を達成する試みの代わりに、適切なマトリックス基材がなくても特定の所望の機能を示す細胞を発見するために、種々の培地の中で数多くの細胞型を試験することができる。このアプローチは洗練されておらず、変数の複雑な相互干渉および細胞と細胞外マトリックスとの間の相互作用の幅広さのために、所望の結果を得ることに失敗することが多い。
２．重要な成分を同定する。多くの学究的な研究室およびいくつかの企業は、細胞を単離した元の組織を考慮し、その組織の中で細胞機能に重要であり得る特有の要素を探すというアプローチをとってきた。次いで僅か１つのまたは数個のマトリックス成分からなる単純な基材上で細胞を培養する。天然には、マトリックスはある場合には１００を超える異なるタンパク質を含む極めて複雑な環境であるため、このアプローチは失敗することが多い。細胞は、細胞が必要とせず受容するシグナルに対するのとちょうど同じように、細胞が必要とするが受容できないシグナルに強く応答する。
３．ショットガンアプローチ。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（商標）等のタンパク質ゲルの使用は、一種のショットガンアプローチを採用している。ゲルが多くの異なる細胞型のための必要な結合モチーフを含むと予想されるという希望のもとに、多くの異なるマトリックスタンパク質を含むゲルが生み出される。このアプローチは、細胞を特定の方向に押しやる手掛りを提供すること、または細胞が期待している全ての手掛りを提供できないことによって、失敗することがある。
４．組織由来のマトリックス。これは、典型的には遺伝的に同様の動物から目的の組織を単離し、組織を物理的に破壊しまたは化学的に消化して溶液または均一な懸濁液を得て、次いで分解した組織で培養容器をコーティングすることを含む、生物模倣アプローチである。たとえば、サテライト細胞を培養しようとすれば、筋肉を収集し、組織をホモジナイズし、次いでホモジナイズした筋肉で培養容器をコーティングして、細胞を播種してもよい。この方法はいくつかの重要な理由で失敗することが多い。第１に、特定の組織型の中であっても、幹細胞／前駆細胞のニッチは組織のそれ以外とは異なっていることがある。筋肉を単純にホモジナイズしても、適切なニッチが生み出されることを保証するものではない。第２に、ニッチは生化学的な手掛りに加えて構造的および物理的な手掛りからなっている。生化学的手掛りの多く／大部分が組織ホモジネート中に存在しても、構造は破壊されており、細胞は極めて異なる機械的手掛りを感知し得る。最後に、組織由来マトリックスの生産性は組織の利用可能性による。これは可能な細胞培養の全量に影響し、ロット間の変動の原因となる。
５．細胞由来のマトリックス。培養中の細胞を誘導してその培養容器中にマトリックスを分泌させることができる。このマトリックスはｉｎ ｖｉｖｏのニッチについて利用可能な最良の近似であり、ｉｎ ｖｉｔｒｏで製造することができる。細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで誘導してマトリックスを作り出すことができ、その後、続いてたとえばマトリックスの構造および化学反応性を保持するように非イオン化界面活性剤を用いることによって、細胞をマトリックスから除去することができる。このアプローチは、いくつかの重要な利点を有している。（１）マトリックス構造を再形成して撹乱されないようにすることができる。（２）目的の組織／細胞型に基づいてマトリックスをカスタマイズできる。（３）マトリックスは幹細胞および前駆細胞のニッチに特異的であることができる。（４）マトリックスを大量に製造することができる。
細胞由来のマトリックスに関しては、全ての細胞型を効率よく単離して任意の所与の細胞由来マトリックス上で拡大できるわけではない。実際上、多能性幹細胞（ＰＳＣ）は、支持成長基材について他の細胞の型とは極めて異なる要件を有しているようである。マトリックスを産生するために用いられる特定の細胞型はマトリックスの組成に影響を及ぼし、したがってそのマトリックスに対する種々の細胞型の反応に影響を及ぼすことが知られている（Ｍａｒｉｎｋｏｖｉｃ， Ｍ． ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｅ ｓｉｚｅ ｄｏｅｓ
ｎｏｔ ｆｉｔ ａｌｌ： ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇ ａ ｃｅｌｌ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ
ｎｉｃｈｅ ｆｏｒ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｓｔｕｄｙ ｏｆ ｃｅｌｌ ｂｅｈａｖｉｏｒ． Ｍａｔｒｉｘ Ｂｉｏｌ． ５４－５５， ４２６－４４１ （２０１６）を参照）。米国特許第８，０８４，０２３号で開示された以前の研究は、骨髄間質または間葉系幹細胞によって産生された細胞外マトリックスの産生および組成を記載している（Ｃｈｅｎ， Ｘ． ｅｔ ａｌ．， Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ Ｍａｔｒｉｘ Ｍａｄｅ
ｂｙ Ｂｏｎｅ Ｍａｒｒｏｗ Ｃｅｌｌｓ Ｆａｃｉｌｉｔａｔｅｓ Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ｏｆ Ｍａｒｒｏｗ－Ｄｅｒｉｖｅｄ Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ Ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ Ｃｅｌｌｓ ａｎｄ Ｐｒｅｖｅｎｔｓ Ｔｈｅｉｒ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｉｎｔｏ Ｏｓｔｅｏｂｌａｓｔｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｎｅ ａｎｄ Ｍｉｎｅｒａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ２２， １９４３－１９５６ （２００７）およびＬａｉ， Ｙ． ｅｔ ａｌ．， Ｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｒｒｏｗ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｍａｔｒｉｘ ｅｘ ｖｉｖｏ： ａ ｒｏｂｕｓｔ ｃｕｌｔｕｒｅ ｓｙｓｔｅｍ ｆｏｒ ｅｘｐａｎｄｉｎｇ
ｌａｒｇｅ－ｓｃａｌｅ ｈｉｇｈｌｙ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｈｕｍａｎ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ． Ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ １９， １０９５－１０７ （２０１０）も参照）。この骨髄細胞由来マトリックスは他のＭＳＣの拡大を支持することが示されたが、他の型の幹細胞、具体的には人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）の接着および成長には効果的ではなかった。ｉＰＳＣは、ＭＳＣよりもずっと広いカテゴリーから細胞および組織を形成する拡張された可能性を示した。これは特に興味深い課題を表しており、これはなぜなら、標準的な培養条件下でｉＰＳＣのコンフルエントな単層を成長させることが困難なため、ｉＰＳＣから細胞由来マトリックスを産生させることが実用的でないためである。以前の細胞由来マトリックスの主な限界は、組織特異的マトリックス（たとえば骨髄ＭＳＣからの骨髄マトリックス、脂肪ＭＳＣからの脂肪マトリックス、またはｈＵＶＥＣからの内皮マトリックス）を作製するために、標的の細胞集団が既に出発基材に接着できることが必要であることである。ｉＰＳＣ、胚性幹細胞（ＥＳ）、および多くの他の細胞型における困難さは、これらが単純な基材には容易に接着しないことである。
米国特許第８，０８４，０２３号明細書
Ｍａｒｉｎｋｏｖｉｃ， Ｍ． ｅｔ ａｌ．， Ｏｎｅ ｓｉｚｅ ｄｏｅｓ ｎｏｔ ｆｉｔ ａｌｌ： ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇ ａ ｃｅｌｌ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｎｉｃｈｅ ｆｏｒ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｓｔｕｄｙ ｏｆ ｃｅｌｌ ｂｅｈａｖｉｏｒ． Ｍａｔｒｉｘ Ｂｉｏｌ． ５４－５５， ４２６－４４１ （２０１６） Ｃｈｅｎ， Ｘ． ｅｔ ａｌ．， Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ Ｍａｔｒｉｘ Ｍａｄｅ ｂｙ Ｂｏｎｅ Ｍａｒｒｏｗ Ｃｅｌｌｓ Ｆａｃｉｌｉｔａｔｅｓ Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ｏｆ Ｍａｒｒｏｗ－Ｄｅｒｉｖｅｄ Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ Ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ Ｃｅｌｌｓ ａｎｄ Ｐｒｅｖｅｎｔｓ Ｔｈｅｉｒ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｉｎｔｏ Ｏｓｔｅｏｂｌａｓｔｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｎｅ ａｎｄ Ｍｉｎｅｒａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ２２， １９４３－１９５６ （２００７） Ｌａｉ， Ｙ． ｅｔ ａｌ．， Ｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｒｒｏｗ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｍａｔｒｉｘ ｅｘ ｖｉｖｏ： ａ ｒｏｂｕｓｔ ｃｕｌｔｕｒｅ ｓｙｓｔｅｍ ｆｏｒ ｅｘｐａｎｄｉｎｇ ｌａｒｇｅ－ｓｃａｌｅ ｈｉｇｈｌｙ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｈｕｍａｎ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ． Ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ １９， １０９５－１０７ （２０１０）
本発明は、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）および胚性幹細胞（ＥＳ）を含むがこれらに限定されない多能性幹細胞（ＰＳＣ）の単離、拡大、および増殖を支持する細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）に関連する当技術における上述の限界および欠陥の少なくともいくつかに対する解決策を提供する。解決策は羊水細胞由来の細胞外マトリックスの使用を前提としている。羊水中に見出される、拘束されておらず（ｕｎｃｏｍｍｉｔｔｅｄ）容易に接着し、高度に増殖性の周産期の細胞の使用により、驚くべきことにこれらのＰＳＣの接着、単離、拡大、および増殖を支持する細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の創製が可能になる。この技術的達成は、従来技術の細胞由来ＥＣＭでは不可能であった。さらに、本発明の羊水細胞由来細胞外マトリックス（ＡＦＣ－ＥＣＭ）は、間葉系幹細胞、体細胞、前駆細胞、成熟細胞、および複数の胚葉由来の細胞等の他の幹細胞を含むがこれらに限定されない接着細胞型の単離、拡大、および増殖に有効である。驚くべきことに、本発明のＡＦＣ－ＥＣＭは、骨髄細胞由来のＥＣＭと比較して、骨髄によって産生されたＭＳＣの増殖の増大を支持する。さらに、本発明のＡＦＣ－ＥＣＭは、幹細胞の分化細胞型への分化を支持することができる。
本発明の一態様では、羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られた細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）が開示される。一部の実施形態では、ＥＣＭは、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む。一部の実施形態では、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）のアイソフォームは、アイソフォーム２である。一部の実施形態では、アグリンのアイソフォームは、アイソフォーム６である。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、デコリン、ペルレカン、およびコラーゲン（ＩＩＩ）のいずれか１つまたは全てを含まない。一部の実施形態では、羊水から単離された細胞は幹細胞を含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは脱細胞化される。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、表２（実施例２を参照）に列挙した成分の任意の１つ、任意の組合せ、もしくは全て、および／または表２に列挙した成分の任意のバリアント、誘導体、もしくはアイソフォーム、好ましくは表２に列挙した成分の全て、および／またはその任意の誘導体もしくはアイソフォームを含む。
本発明の別の態様では、培養中の接着細胞を増殖させる方法であって、接着細胞を培養培地中で細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で培養してそれにより接着細胞を増殖させるステップを含み、細胞由来のＥＣＭが、羊水から単離された細胞からｉｎ
ｖｉｔｒｏで得られる、方法が開示される。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む。一部の実施形態では、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）のアイソフォームは、アイソフォーム２である。一部の実施形態では、アグリンのアイソフォームは、アイソフォーム６である。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、デコリン、ペルレカン、またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない。一部の実施形態では、羊水から単離された細胞は、幹細胞を含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、脱細胞化される。一部の実施形態では、接着細胞は、哺乳動物の接着細胞を含む。一部の実施形態では、接着細胞は、幹細胞、体細胞、前駆細胞、成熟細胞、または複数の胚葉由来の細胞を含む。一部の実施形態では、接着細胞は、幹細胞を含む。一部の実施形態では、幹細胞は、未分化の状態で維持されている。一部の実施形態では、幹細胞は、多能性幹細胞（ＰＳＣ）を含む。一部の実施形態では、ＰＳＣは、人工ＰＳＣ（ｉＰＳＣ）および／または胚性幹細胞（ＥＳ）を含む。一部の実施形態では、幹細胞は、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を含む。一部の実施形態では、ＭＳＣは、骨髄から得られる。一部の実施形態では、接着細胞は、前駆細胞を含む。一部の実施形態では、前駆細胞は、内皮前駆細胞を含む。一部の実施形態では、接着細胞は、成熟細胞を含む。一部の実施形態では、成熟細胞は、軟骨細胞を含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、表２に列挙した成分の任意の１つ、任意の組合せ、もしくは全て、および／または表２に列挙した成分の任意のバリアント、誘導体、もしくはアイソフォーム、好ましくは表２に列挙した成分の全て、および／またはその任意の誘導体もしくはアイソフォームを含む。
本発明の別の態様では、幹細胞の分化細胞型への分化を誘導する方法であって、分化培地中の細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で幹細胞を培養するステップを含み、細胞由来ＥＣＭが、羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる、方法が開示される。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む。一部の実施形態では、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）のアイソフォームは、アイソフォーム２である。一部の実施形態では、アグリンのアイソフォームは、アイソフォーム６である。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、デコリン、ペルレカン、またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない。一部の実施形態では、羊水から単離された細胞は、幹細胞を含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、脱細胞化される。一部の実施形態では、幹細胞は、多能性幹細胞（ＰＳＣ）を含む。一部の実施形態では、ＰＳＣは、人工ＰＳＣ（ｉＰＳＣ）を含む。一部の実施形態では、ＰＳＣは、胚性幹細胞（ＥＳ）を含む。一部の実施形態では、幹細胞は、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を含む。一部の実施形態では、ＭＳＣは、骨髄から得られる。一部の実施形態では、分化細胞型は、脂肪細胞、骨芽細胞、軟骨細胞、または筋細胞を含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、表２に列挙した成分の任意の１つ、任意の組合せ、もしくは全て、および／または表２に列挙した成分の任意のバリアント、誘導体、もしくはアイソフォーム、好ましくは表２に列挙した成分の全て、および／またはその任意の誘導体もしくはアイソフォームを含む。
本発明の別の態様では、細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）をｉｎ ｖｉｔｒｏで産生する方法であって、
（ａ）羊水から細胞を単離するステップ、
（ｂ）単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種するステップ、
（ｃ）培養培地を細胞培養容器に添加するステップ、および
（ｄ）細胞を培養し、それにより細胞由来のＥＣＭを産生するステップ、および
（ｅ）必要に応じて細胞由来のＥＣＭを脱細胞化するステップ
を含む方法が開示される。一部の実施形態では、羊水からの単離された細胞は、幹細胞を含む。一部の実施形態では、基材は、フィブロネクチンである。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む。一部の実施形態では、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）のアイソフォームは、アイソフォーム２である。一部の実施形態では、アグリンのアイソフォームは、アイソフォーム６である。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、デコリン、ペルレカン、およびコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、表２に列挙した成分の任意の１つ、任意の組合せ、もしくは全て、および／または表２に列挙した成分の任意のバリアント、誘導体、もしくはアイソフォームを含む。
本発明の別の態様では、羊水細胞由来細胞外マトリックス（ＡＦＣ－ＥＣＭ）が開示され、これは、
（ａ）羊水から細胞を単離するステップ、
（ｂ）単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種するステップ、
（ｃ）培養培地を細胞培養容器に添加するステップ、および
（ｄ）細胞を培養し、それによりＡＦＣ－ＥＣＭを産生するステップ、および
（ｅ）必要に応じてＡＦＣ－ＥＣＭを脱細胞化するステップ
を含む方法によってｉｎ ｖｉｔｒｏで産生される。一部の実施形態では、羊水からの単離された細胞は、幹細胞を含む。一部の実施形態では、基材は、フィブロネクチンである。一部の実施形態では、ＡＦＣ－ＥＣＭは、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む。一部の実施形態では、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）のアイソフォームは、アイソフォーム２である。一部の実施形態では、アグリンのアイソフォームは、アイソフォーム６である。一部の実施形態では、ＡＦＣ－ＥＣＭは、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む。一部の実施形態では、ＡＦＣ－ＥＣＭは、デコリン、ペルレカン、およびコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない。一部の実施形態では、ＡＦＣ－ＥＣＭは、表２に列挙した成分の任意の１つ、任意の組合せ、もしくは全て、および／または表２に列挙した成分の任意のバリアント、誘導体、もしくはアイソフォームを含む。
本発明の別の態様では、臍帯から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られた細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）が開示される。一部の実施形態では、臍帯から単離された細胞は、臍帯血および／またはＷｈａｒｔｏｎのゼリーからのものである。
本発明の別の態様では、胎盤組織から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られた細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）が開示される。一部の実施形態では、胎盤組織から単離された細胞は、膜シート（羊膜および／または絨毛膜）、絨毛、および／または血液からのものである。
本発明の文脈において、実施形態１～５３も開示される。実施形態１は、羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られた細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）である。実施形態２は、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、実施形態１に記載の細胞由来のＥＣＭである。実施形態３は、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、実施形態２に記載の細胞由来のＥＣＭである。実施形態４は、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、実施形態２または３のいずれか一項に記載の細胞由来のＥＣＭである。実施形態５は、デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、実施形態１から４のいずれか一項に記載の細胞由来のＥＣＭである。実施形態６は、羊水から単離された前記細胞が、幹細胞を含む、実施形態１から５のいずれか一項に記載の細胞由来のＥＣＭである。実施形態７は、脱細胞化されている、実施形態１から６のいずれか一項に記載の細胞由来のＥＣＭである。
実施形態８は、培養中の接着細胞を増殖させる方法であって、前記接着細胞を培養培地中で細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で培養してそれにより前記接着細胞を増殖させるステップを含み、前記細胞由来のＥＣＭが、羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる、方法である。実施形態９は、前記細胞由来のＥＣＭが、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、実施形態８に記載の方法である。実施形態１０は、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、実施形態９に記載の方法である。実施形態１１は、前記細胞由来のＥＣＭが、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、実施形態９または１０のいずれか一項に記載の方法である。実施形態１２は、前記細胞由来のＥＣＭが、デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、実施形態８から１１のいずれか一項に記載の方法である。実施形態１３は、羊水から単離された前記細胞が、幹細胞を含む、実施形態８から１２のいずれか一項に記載の方法である。実施形態１４は、前記細胞由来のＥＣＭが、前記接着幹細胞と接触する前に脱細胞化される、実施形態８から１３のいずれか一項に記載の方法である。実施形態１５は、前記接着細胞が、哺乳動物の接着細胞を含む、実施形態８から１４のいずれか一項に記載の方法である。実施形態１６は、前記接着細胞が、幹細胞、体細胞、前駆細胞、成熟細胞、または複数の胚葉由来の細胞を含む、実施形態８から１５のいずれか一項に記載の方法である。実施形態１７は、前記接着細胞が、幹細胞を含む、実施形態１６に記載の方法である。実施形態１８は、前記幹細胞が、未分化の状態で維持されている、実施形態１７に記載の方法である。実施形態１９は、前記幹細胞が、多能性幹細胞（ＰＳＣ）を含む、実施形態１７または１８のいずれか一項に記載の方法である。実施形態２０は、前記ＰＳＣが、人工ＰＳＣ（ｉＰＳＣ）を含む、実施形態１９に記載の方法である。実施形態２１は、前記ＰＳＣが、胚性幹細胞（ＥＳ）を含む、実施形態１９に記載の方法である。実施形態２２は、前記幹細胞が、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を含む、実施形態１７または１８のいずれか一項に記載の方法である。実施形態２３は、前記ＭＳＣが、骨髄から得られる、実施形態２２に記載の方法である。実施形態２４は、前記接着細胞が、前駆細胞を含む、実施形態１６に記載の方法である。実施形態２５は、前記前駆細胞が、内皮前駆細胞を含む、実施形態２４に記載の方法である。実施形態２６は、前記接着細胞が、成熟細胞を含む、実施形態１６に記載の方法である。実施形態２７は、前記成熟細胞が、軟骨細胞を含む、実施形態２６に記載の方法である。
実施形態２８は、幹細胞の分化細胞型への分化を誘導する方法であって、分化培地中の細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で前記幹細胞を培養するステップを含み、前記細胞由来ＥＣＭが、羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる、方法である。実施形態２９は、前記細胞由来のＥＣＭが、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、実施形態２８に記載の方法である。実施形態３０は、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、実施形態２９に記載の方法である。実施形態３１は、前記細胞由来のＥＣＭが、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、実施形態２９または３０のいずれか一項に記載の方法である。実施形態３２は、前記細胞由来のＥＣＭが、デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、実施形態２８から３１のいずれか一項に記載の方法である。実施形態３３は、羊水から単離された前記細胞が、幹細胞を含む、実施形態２８から３２のいずれか一項に記載の方法である。実施形態３４は、前記幹細胞が、多能性幹細胞（ＰＳＣ）を含む、実施形態２８から３３のいずれか一項に記載の方法である。実施形態３５は、前記ＰＳＣが、人工ＰＳＣ（ｉＰＳＣ）を含む、実施形態３４に記載の方法である。実施形態３６は、前記ＰＳＣが、胚性幹細胞（ＥＳ）を含む、実施形態３４に記載の方法である。実施形態３７は、前記幹細胞が、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を含む、実施形態２８から３３のいずれか一項に記載の方法である。実施形態３８は、前記ＭＳＣが、骨髄から得られる、実施形態２２に記載の方法である。実施形態３９は、前記分化細胞型が、脂肪細胞、骨芽細胞、軟骨細胞、または筋細胞を含む、実施形態３７または３８のいずれか一項に記載の方法である。
実施形態４０は、細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）をｉｎ ｖｉｔｒｏで産生する方法であって、（ａ）羊水から細胞を単離するステップ、（ｂ）前記単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種するステップ、（ｃ）培養培地を前記細胞培養容器に添加するステップ、および（ｄ）前記細胞を培養し、それにより細胞由来のＥＣＭを産生するステップ、および（ｅ）必要に応じて前記細胞由来のＥＣＭを脱細胞化するステップを含む方法である。実施形態４１は、前記羊水からの前記単離された細胞が、幹細胞を含む、実施形態４０に記載の方法である。実施形態４２は、前記基材が、フィブロネクチンである、実施形態４０または４１に記載の方法である。実施形態４３は、前記細胞由来のＥＣＭが、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、実施形態４０から４２のいずれか一項に記載の方法である。実施形態４４は、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、実施形態４３に記載の方法である。実施形態４５は、前記細胞由来のＥＣＭが、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、実施形態４３または４４のいずれか一項に記載の方法である。実施形態４６は、前記細胞由来のＥＣＭが、デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、実施形態４０から４５のいずれか一項に記載の方法である。
実施形態４７は、羊水細胞由来細胞外マトリックス（ＡＦＣ－ＥＣＭ）であって、（ａ）羊水から細胞を単離するステップ、（ｂ）前記単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種するステップ、（ｃ）培養培地を前記細胞培養容器に添加するステップ、および（ｄ）前記細胞を培養し、それにより前記ＡＦＣ－ＥＣＭを産生するステップ、および（ｅ）必要に応じて前記ＡＦＣ－ＥＣＭを脱細胞化するステップを含む方法によってｉｎ ｖｉｔｒｏで産生されたＡＦＣ－ＥＣＭである。実施形態４８は、前記羊水からの前記単離された細胞が、幹細胞を含む、実施形態４７に記載の方法である。実施形態４９は、前記基材が、フィブロネクチンである、実施形態４７または４８に記載の方法である。実施形態５０は、前記細胞由来のＥＣＭが、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、実施形態４７から４９のいずれか一項に記載の方法である。実施形態５１は、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、実施形態５０に記載の方法である。実施形態５２は、前記細胞由来のＥＣＭが、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、実施形態５０または５１のいずれか一項に記載の方法である。実施形態５３は、前記細胞由来のＥＣＭが、デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、実施形態４７から５２のいずれか一項に記載の方法である。
用語「幹様特徴」または「幹細胞性」は、幹細胞においてまたは幹細胞に関連して観察され得る特徴を意味する。たとえば、幹様特徴の１つは、異なる細胞型に分化する能力、自己再生の能力、ある条件（低酸素条件を含む）における生存の能力、化学療法剤に対する耐性の能力、および広範囲のマーカーの発現から選択することができる。
用語「アイソフォーム」は、生体分子またはタンパク質の異なる形態を意味する。生体分子またはタンパク質の異なる形態は、種々のプロセスまたは機構によって産生され得る。生体分子がタンパク質である実施形態では、アイソフォームは配列中で１つまたは複数のアミノ酸が異なるタンパク質であり得る。たとえば、タンパク質のアイソフォームは遺伝子の対立形質であり得る。あるいは、タンパク質のアイソフォームは、代替のスプライシング、ＲＮＡ編集、翻訳後プロセシング等の産生物であり得る。
用語「約」または「ほぼ」は、当業者に理解されるものと近いものとして定義され、１つの非限定的な実施形態では、この用語は１０％以内、好ましくは５％以内、より好ましくは１％以内、最も好ましくは０．５％以内であると定義される。
用語「実質的に」およびその変形形態は、１０％以内、５％以内、１％以内、または０．５％以内の範囲を含むと定義される。
用語「ｗｔ％」、「ｖｏｌ％」、または「ｍｏｌ％」は、それぞれその成分を含む全重量、材料の総体積、または全モル数に基づく成分の重量パーセント、成分の体積パーセント、または成分のモルパーセントを意味する。非限定的な例では、材料１００グラム中の成分１０グラムは、成分１０ｗｔ％である。
用語「阻害する」もしくは「低減する」もしくは「防止する」もしくは「回避する」、またはこれらの用語の任意の変形形態は、特許請求の範囲および／または明細書中で使用される場合には、所望の結果を達成するための任意の測定可能な低減または完全な阻害を含む。
用語「有効な」は、その用語が明細書および／または特許請求の範囲で使用される場合には、所望の、期待した、または意図した結果を達成するために適切であることを意味する。
単語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」（ならびに「ｃｏｍｐｒｉｓｅ」および「ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ」等の任意の形のｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）、「有する（ｈａｖｉｎｇ）」（ならびに「ｈａｖｅ」および「ｈａｓ」等の任意の形のｈａｖｉｎｇ）、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」（ならびに「ｉｎｃｌｕｄｅｓ」および「ｉｎｃｌｕｄｅ」等の任意の形のｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）、または「含む（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」（ならびに「ｃｏｎｔａｉｎｓ」および「ｃｏｎｔａｉｎ」等の任意の形のｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）は包括的またはオープンエンドであり、さらなる、言及していない要素や方法ステップを排除しない。
単語「１つの（「ａ」または「ａｎ」）」の使用は、用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「有する（ｈａｖｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」、または「含む（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」（またはこれらの単語の任意の変形形態）と併せて使用される場合、「１つの（ｏｎｅ）」を意味し得るが、「１つまたは複数の（ｏｎｅ ｏｒ ｍｏｒｅ）」、「少なくとも１つの（ａｔ ｌｅａｓｔ ｏｎｅ）」、および「１つまたは２つ以上の（ｏｎｅ ｏｒ ｍｏｒｅ ｔｈａｎ ｏｎｅ）」の意味とも一致する。
組成物およびその使用のための方法は、本明細書全体で開示する成分またはステップのいずれか「を含み」、「本質的にそれらからなり」、または「それらからなる」ことができる。１つの非限定的な態様において、移行句「本質的に～からなる」に関して、本発明の細胞由来の細胞外マトリックスの基礎的で新規な特徴は、これが（１）羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られ、（２）ＰＳＣの接着、単離、拡大、および／または増殖を支持する環境を提供することである。
本明細書で論じるいずれの実施形態も、本発明のいずれの方法または組成物に関しても実施可能であり、逆もそうであることが意図されている。さらに、本発明の組成物は、本発明の方法を達成するために用いることができる。
本発明のその他の目的、特色、および利点は、以下の詳細な説明から明らかになる。しかし、詳細な説明および特定の実施例は、本発明の特定の実施形態を示しているが、説明のためのみに提供していることを理解されたい。それは、本発明の精神および範囲内で種々の変形および改変がこの詳細な説明から当業者には明らかになるからである。
図１は、１０倍の対物レンズを用いる倍率１００倍における羊水細胞由来ＥＣＭの明視野画像の顕微鏡写真である。
図２は、トポグラフィー、接着、および剛性を示す、羊水細胞由来ＥＣＭおよび骨髄細胞由来ＥＣＭの３つの代表的な４０×４０μｍの切片の原子間力顕微鏡写真である。
図３ａは、骨髄細胞由来および羊水細胞由来のＥＣＭの接着性の定量を示す散布図である。それぞれの点は独立の測定点を表す。
図３ｂは、骨髄細胞由来および羊水細胞由来のＥＣＭの剛性（弾性率）の定量を示す散布図である。それぞれの点は独立の測定点を表す。
図４は、羊水細胞由来ＥＣＭおよび骨髄細胞由来ＥＣＭ上におけるｉＰＳＣの０日目および２日目の培養を示す顕微鏡写真である。
図５は、羊水細胞由来ＥＣＭおよび骨髄細胞由来ＥＣＭの存在下で培養したｉＰＳＣの成長曲線のプロットである。
図６は、羊水細胞由来ＥＣＭ上で培養したｉＰＳＣにおける多能性転写因子の発現の棒グラフである。
図７は、羊水細胞由来ＥＣＭと、骨髄ＥＣＭと、組織培養プラスチック上で培養したＭＳＣ、ＥＰＣ、および軟骨細胞の明視野画像の顕微鏡写真である。
図８ａは、羊水細胞由来ＥＣＭ上で４日間培養した後のＭＳＣの増殖を定量する棒グラフである。
図８ｂは、羊水細胞由来ＥＣＭ上で４日間培養した後のＥＰＣの増殖を定量する棒グラフである。
図８ｃは、羊水細胞由来ＥＣＭ上で４日間培養した後の軟骨細胞の増殖を定量する棒グラフである。
図９は、羊水細胞由来ＥＣＭ上、骨髄細胞ＥＣＭ上、組織培養プラスチック上で４日間培養した後のフローサイトメトリーによって測定したＳＳＥＡ－４を発現するＭＳＣのパーセンテージの棒グラフである。
図１０は、羊水細胞由来マトリックス上で４日間培養したＭＳＣの脂肪生成分化の顕微鏡写真である。
図１１は、羊水細胞由来マトリックス上で４日間培養したＭＳＣの骨形成分化の顕微鏡写真である。
本発明は、羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）およびＥＣＭを作製する方法を開示する。哺乳動物細胞であってよい接着細胞の単離、維持、および拡大／増殖のためにＥＣＭを用いる方法も開示される。
哺乳動物細胞の機能は、主としてそれが存在する環境、たとえば細胞外マトリックスによって決定される。細胞はその環境に存在するシグナル（ポジティブシグナル）に、また必要ではあるが存在しないシグナル（ネガティブシグナル）に、反応する。非拘束幹細胞は、幹細胞の生存および幹細胞性を維持するために必要なニッチモチーフを含むマトリックスを産生することができるが、より成熟した細胞が分泌できる、幹細胞を特定の運命に進める多くの系列特異的シグナルを欠いている可能性がある。理論に縛られるわけではないが、未成熟の細胞、たとえば周産期の細胞または周産期の幹細胞は、骨髄間質細胞由来のＥＣＭ等の当技術で以前開示されたＥＣＭとは異なるＥＣＭを産生しており、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）よりも高い潜在性を有する多能性幹細胞（ＰＳＣ）等の幹細胞のより良い単離および拡大／増殖を可能にし得ることが示唆される。質量分析によって、以前から知られていた細胞由来のＥＣＭと比較して、本発明の羊水細胞由来のＥＣＭは、３種の胚葉の全てに見出されるマトリックスタンパク質を含み、骨形成系列に強く関連する特定のタンパク質を欠いていることが示された。さらに、本発明のＥＣＭは多能性細胞の接着および拡大を促進することが知られているラミニン等の特定のモチーフを含んでいた。
Ａ．羊水細胞由来細胞外マトリックス（ＡＦＣ－ＥＣＭ）
周産期の細胞は３つの群、即ち羊水からの細胞、胎盤からの細胞、および臍帯からの細胞に分けることができる。羊水は、胎児の羊膜、皮膚、ならびに消化管、呼吸器官、および尿生殖器官から脱落した発育中の胎児由来の細胞を含むいくつかの細胞源を有している。胎盤も、膜シート（羊膜および絨毛膜）、絨毛、および血液を含むいくつかの細胞源を有している。臍帯細胞は一般に２つの供給源、即ち臍帯血およびＷｈａｒｔｏｎのゼリーに由来する。これら３つの周産期供給源からの細胞は、幹細胞を含み得る。本発明の羊水細胞由来ＥＣＭを産生するために用いられる細胞は、ヒト（ｈｏｍｏ ｓａｐｉｅｎｓ）、マウス、ウサギ、ネコ、イヌ、ブタ、ウマ、または霊長類を含むがこれらに限定されない哺乳動物の羊水から得られる。好ましい実施形態では、細胞はヒトの羊水からのものである。羊水は満期産（妊娠期間約３７週より長い）、または早期産（妊娠期間約３７週未満）のヒトから供給を受けることができる。早期産は、後期早期産（妊娠期間約３３週～約３７週）、中期早期産（妊娠期間約２９週～約３３週）、および極早期産（妊娠期間約２３週～約２９週）を含む。羊水は羊水が存在する任意の妊娠期間で出生の前にヒトから供給を受けることができ、出生の際の羊水の供給源と合わせることができる。一般には、出生に先立って羊水穿刺の術式によって羊水を収集する。一部の実施形態では、羊水は満期産、早期産、後期早期産、中期早期産、極早期産において、もしくは出生前に、またはそれらの組合せで、ヒトから供給を受ける。一部の実施形態では、羊水は出生前に供給を受け、妊娠期間約１０週から出生まで、または妊娠期間約１０週から約２３週まで、または妊娠期間約１０週から約１６週まで、または妊娠期間約１２週から出生まで、または妊娠期間約１２週から約２３週まで、または妊娠期間約１２週から約１６週まで、収集する。一部の実施形態では、出生前に供給を受ける羊水は、羊水穿刺の手順によって収集する。細胞は当技術で公知の技法、たとえばＭｕｒｐｈｙ ｅｔ． ａｌ．， Ａｍｎｉｏｔｉｃ Ｆｌｕｉｄ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ， Ｐｅｒｉｎａｔａｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ， Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄ． ２０１３に開示された技法によって羊水から得られ、単離され得る。
羊水は、自発的に、または当業者には公知の特定の成長因子もしくは成長因子の組合せによる処置の結果として、３つの胚葉（外胚葉、内胚葉、中胚葉）の全てから得られる細胞型に分化する能力を有する細胞を含む。即ち、単一の細胞が、３つの胚葉のいずれかに特異的な遺伝子を発現するように誘導される能力を有している。羊水はまた、胎児の羊膜、皮膚、ならびに消化管、呼吸器官、および尿生殖器官から脱落した発育中の胎児由来の細胞を含む異なる細胞型の混合物を含む。羊水および胎盤膜の起源により、これらの細胞は高度に複能性の分化の潜在性を維持し、３つの胚葉全ての細胞を含む細胞集団を含むことができる。羊水細胞は幹細胞を含み得る。一部の実施形態では、羊水細胞は単離された幹細胞である。一部の実施形態では、羊水細胞は３つの胚葉（外胚葉、内胚葉、中胚葉）の全てから得られる細胞型および／または複能性幹細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）および／または多能性幹細胞（ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）に分化する能力を有する幹細胞を含む。
本発明の羊水細胞由来ＥＣＭは、種々のタンパク質を含む。ＥＣＭのタンパク質は質量分析および免疫組織化学染色を含む当技術で公知の技法によって同定することができる。ＥＣＭは、表２（以下の実施例２を参照）に列挙した成分およびそれらの任意のバリアント、誘導体、またはアイソフォームを含み得るが、これらに限定されない。羊水細胞由来ＥＣＭは、表２の成分のいずれかおよびそれらの任意のバリアント、誘導体、またはアイソフォームの任意の組合せを含み得る。一部の実施形態では、組合せは、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含み、それらから本質的になり、またはそれらからなり得る。一部の実施形態では、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）のアイソフォームはアイソフォーム２である。一部の実施形態では、アグリンのアイソフォームはアイソフォーム６である。一部の実施形態では、細胞由来ＥＣＭは、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含み、それらから本質的になり、またはそれらからなる。一部の実施形態では、羊水細胞由来ＥＣＭは、デコリン、ペルレカン、およびコラーゲン（ＩＩＩ）のうちいずれか１つまたはその全てを含まない。表２において最も豊富なコラーゲンはコラーゲンＩ、ＩＶ、およびＸＶＩＩＩである。本発明の羊水細胞由来ＥＣＭと骨髄細胞由来マトリックスのタンパク質の間のいくつかの注目すべき相違を、表１に記載している。
本発明の羊水細胞由来ＥＣＭ（ＡＦＣ－ＥＣＭ）は、以下のプロセス：
（ａ）羊水から細胞を単離するステップ、
（ｂ）単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種するステップ、
（ｃ）培養培地を細胞培養容器に添加するステップ、および
（ｄ）細胞を培養し、それによりＡＦＣ－ＥＣＭを産生するステップ、および
（ｅ）必要に応じてＡＦＣ－ＥＣＭを脱細胞化するステップ
によってｉｎ ｖｉｔｒｏで産生され得る。
本明細書には、細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）をｉｎ ｖｉｔｒｏで産生する方法が開示され、方法は、
（ａ）羊水から細胞を単離するステップ、
（ｂ）単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種するステップ、
（ｃ）培養培地を細胞培養容器に添加するステップ、および
（ｄ）細胞を培養し、それにより細胞由来のＥＣＭを産生するステップ、および
（ｅ）必要に応じて細胞由来のＥＣＭを脱細胞化するステップ
を含む。
本明細書には、羊水細胞由来細胞外マトリックス（ＡＦＣ－ＥＣＭ）が開示され、これは、
（ａ）羊水から細胞を単離するステップ、
（ｂ）単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種するステップ、
（ｃ）培養培地を細胞培養容器に添加するステップ、および
（ｄ）細胞を培養し、それによりＡＦＣ－ＥＣＭを産生するステップ、および
（ｅ）必要に応じてＡＦＣ－ＥＣＭを脱細胞化するステップ
を含む方法によってｉｎ ｖｉｔｒｏで産生される。
細胞が直ちにまたは培養のある期間の後にコンフルエントな単層を形成することを可能にする任意の播種密度を用いてよい。一部の実施形態では、播種密度は約１０細胞／ｃｍ２～約１００，０００細胞／ｃｍ２、または約１００細胞／ｃｍ２～約７５，０００細胞／ｃｍ２、または約５００細胞／ｃｍ２～約５０，０００細胞／ｃｍ２、または約５００細胞／ｃｍ２～約１０，０００細胞／ｃｍ２、または約５００細胞／ｃｍ２～約５，０００細胞／ｃｍ２、または約５００細胞／ｃｍ２～約２，５００細胞／ｃｍ２、または約１，０００細胞／ｃｍ２～約２５，０００細胞／ｃｍ２、または約２，０００細胞／ｃｍ２～約１０，０００細胞／ｃｍ２、または約３，０００細胞／ｃｍ２～約５，０００細胞／ｃｍ２である。
本発明のため、細胞の培養に適した任意の型の容器を用いることができる。その例は細胞培養フラスコ、Ｔフラスコ、撹拌フラスコ、回転フラスコ、発酵槽、およびバイオリアクターを含むが、これらに限定されない。ロッキングボトル、振盪フラスコ、チューブ、およびその他の容器も、ロッキングプラットフォームまたは振とう機上に設置する場合には好適な容器である。細胞培養容器は、細胞の接着を改良するために基材でコーティングすることができる。細胞容器をコーティングするための好適な基材の非限定的な例は、フィブロネクチンである。
種々の市販の細胞培養用培地、たとえばアルファ最小必須培地（α－ＭＥＭ）培養培地（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ、ＮＹ）が羊水細胞の培養のために好適である。種々の補助的な物質、たとえば重炭酸ナトリウム、Ｌ－グルタミン、ペニシリン、ストレプトマイシン、アンホテリシンＢ、および／または血清を培地に添加することによって、市販の培養培地を改変することができる。血清はウシ胎児血清であってよい。培地は無血清であってもよい。さらに、ＥＣＭにおける細胞の産生を誘導するために、Ｌ－アスコルビン酸等の物質を培地または改変した培地に添加することができる。
当初の培養培地を培養プロセスの間の種々の時間で別の培地に交換および／または置き換えることができる。たとえば、当初の培地は「完全培地」であり、次いで培養プロセスの間に「誘導培地」に置き換えることができる。「完全培地」の非限定的な例は、（α－ＭＥＭ）プラス２ｍＭのＬ－グルタミンプラス抗生剤－抗真菌剤プラス１５％のウシ胎児血清を含む。「誘導培地」の非限定的な例は、「完全培地」プラス５０ｍＭのＬ－アスコルビン酸を含む。
羊水細胞の培養はインキュベーター中３７℃で、５％のＣＯ２および９０％の湿度で行なうことができる。培養は、正常酸素、即ち大気中２０～２１％の酸素中、または低酸素条件を含むが、これらに限定されない種々の環境条件下で行なうことができる。
羊水細胞の羊水細胞由来ＥＣＭの脱細胞化は、生きている羊水細胞を除去することまたは羊水細胞を生存不能にすることを含み得る。羊水細胞は、羊水細胞を溶解し、次いで溶解した羊水細胞を洗浄によって除去することを含み得るが、これらに限定されない当技術で公知の方法を用いてＥＣＭから脱細胞化することができる。ＥＣＭから羊水細胞を除去するために種々の物質を用いることができる。非限定的な例は、ＰＢＳ緩衝液中にＴＲＩＴＯＮ（登録商標） Ｘ－１００および水酸化アンモニウムを含む「抽出緩衝液」を含む。羊水細胞からＥＣＭが脱細胞化された後、得られるＥＣＭは実質的に細胞を含まず、または生きている羊水細胞を含まない。フィーダー細胞を用いる場合には、脱細胞化法はＥＣＭ上に存在するいずれの生きているフィーダー細胞にも適用され、したがってＥＣＭは生きているフィーダー細胞を実質的に含まないか、または含まない。脱細胞化法はＥＣＭ上に存在するいずれの生きている細胞にも適用され、したがってＥＣＭはいずれの生きている細胞も実質的に含まないか、または含まない。したがって、脱細胞化されたＥＣＭはＥＣＭが無細胞であることを意味し、ＥＣＭがいずれの生きている細胞をも含まないことを意味する。
一部の実施形態では、羊水細胞由来ＥＣＭは三次元（３Ｄ）ＥＣＭである。
上記の方法は、臍帯血およびＷｈａｒｔｏｎのゼリーを含む臍帯からの細胞、ならびに膜シート（羊膜および絨毛膜）、絨毛、および血液を含む胎盤組織からの細胞等の他の周産期細胞からの細胞由来ＥＣＭの産生にも適用される。
一実施形態では、周産期細胞由来ＥＣＭは以下のプロセスによってｉｎ ｖｉｔｒｏで産生される。
（ａ）臍帯から細胞を単離する、
（ｂ）単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種する、
（ｃ）培養培地を細胞培養容器に添加する、および
（ｄ）細胞を培養し、それにより細胞由来ＥＣＭを産生する、および
（ｅ）必要に応じて細胞由来ＥＣＭを脱細胞化する。
一部の実施形態では、臍帯から単離された細胞は臍帯血および／またはＷｈａｒｔｏｎのゼリーからのものである。
別の実施形態では、周産期細胞由来ＥＣＭは以下のプロセスによってｉｎ ｖｉｔｒｏで産生される。
（ａ）胎盤組織から細胞を単離する、
（ｂ）単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種する、
（ｃ）培養培地を細胞培養容器に添加する、および
（ｄ）細胞を培養し、それにより細胞由来ＥＣＭを産生する、および
（ｅ）必要に応じて細胞由来ＥＣＭを脱細胞化する。
一部の実施形態では、胎盤組織から単離された細胞は、膜シート（羊膜および／または絨毛膜）、絨毛、および／または血液からのものである。
本発明の一態様では、臍帯から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られた細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）が開示される。一部の実施形態では、臍帯から単離された細胞は、臍帯血および／またはＷｈａｒｔｏｎのゼリーからのものである。
本発明の別の態様では、胎盤組織から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られた細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）が開示される。一部の実施形態では、胎盤組織から単離された細胞は、膜シート（羊膜および／または絨毛膜）、絨毛、および／または血液からのものである。
Ｂ．接着細胞を拡大／増殖する方法
接着細胞を拡大／増殖する方法は、接着細胞を得て、これを本発明の羊水細胞由来ＥＣＭの存在下で培養するステップを含む。一部の実施形態では、接着細胞は哺乳動物の接着細胞である。細胞が直ちにまたは培養のある期間の後にコンフルエントな単層を形成することを可能にする任意の播種密度を用いてよい。一部の実施形態では、播種密度は約１０細胞／ｃｍ２～約１００，０００細胞／ｃｍ２、または約１００細胞／ｃｍ２～約７５，０００細胞／ｃｍ２、または約５００細胞／ｃｍ２～約５０，０００細胞／ｃｍ２、または約５００細胞／ｃｍ２～約１０，０００細胞／ｃｍ２、または約５００細胞／ｃｍ２～約５，０００細胞／ｃｍ２、または約５００細胞／ｃｍ２～約２，５００細胞／ｃｍ２、または約１，０００細胞／ｃｍ２～約２５，０００細胞／ｃｍ２、または約２，０００細胞／ｃｍ２～約１０，０００細胞／ｃｍ２、または約３，０００細胞／ｃｍ２～約５，０００細胞／ｃｍ２である。種々の実施形態では、接着細胞は幹細胞、体細胞、前駆細胞、成熟細胞、および／または複数の胚葉由来の細胞である。
一部の実施形態では、接着細胞は幹細胞である。一部の実施形態では、幹細胞は多能性幹細胞（ＰＳＣ）または間葉系幹細胞（ＭＳＣ）である。多能性幹細胞（ＰＳＣ）は自己再生して３つの胚葉、即ち外胚葉、内胚葉、および中胚葉のいずれかに分化することができ、これらから全ての組織および臓器が発育する。胚性幹細胞（ＥＳ）は、現在のところ唯一の公知の天然の多能性幹細胞である。人工多能性幹（ｉＰＳＣ）細胞もＰＳＣである。ｉＰＳＣは一般に成人組織または成人細胞から採取された細胞から誘導され、胚性幹細胞のレベルにまで再プログラミングされる。ｉＰＳＣを産生する方法は当技術で公知である。間葉系幹細胞（ＭＳＣ）は複能性間質細胞である。ＭＳＣは以下の非限定的な供給源、即ち骨髄、臍帯組織、たとえばＷｈａｒｔｏｎのゼリー、臍帯血、脂肪組織、および羊水から得ることができる。一部の実施形態では、幹細胞は未分化の状態で維持され、その幹細胞性を維持する。
一部の実施形態では、接着細胞は植物性細胞としても知られる体細胞であり、これらは生殖細胞、配偶子、胚細胞、生殖母細胞、または未分化の幹細胞以外の多細胞生物中の任意の生物学的細胞である。
一部の実施形態では、接着細胞は、外胚葉、内胚葉、および／または中胚葉からの細胞を含む複数の胚葉由来の細胞である。
一部の実施形態では、接着細胞は、内皮前駆細胞（ＥＰＣ）、血管芽細胞、膵前駆細胞、骨膜からの前駆細胞、および骨髄間質細胞を含むが、これらに限定されない前駆細胞である。
一部の実施形態では、接着細胞は、軟骨細胞および骨芽細胞を含むが、これらに限定されない成熟細胞である。
培養における接着細胞の増殖に好適な細胞培養技法は当技術で公知であり、それに従うことができる。細胞増殖のための好適な市販の培養培地は、Ｍｉｌｔｅｎｙｌ Ｂｉｏｔｅｃから入手可能なＳｔｅｍＭＡＣＳ（商標）ｉＰＳ－Ｂｒｅｗ ＸＦ、ウシ胎児血清、抗生剤－抗真菌剤（アンチ－アンチ）、および／またはＧｉｂｃｏから入手可能なＧｌｕｔａＭａｘ（商標）を補充してもよいアルファ最小必須培地（ａＭＥＭ）、ならびにウシ胎児血清、抗生剤－抗真菌剤（アンチ－アンチ）、ＧｌｕｔａＭａｘ、および／またはＥＧＦおよびＦＧＦ等の成長因子を補充してもよいＩｓｃｏｖｅの改変ダルベッコ培地（ＩＭＤＭ）を含むが、これらに限定されない。一部の実施形態では、Ｒｏｃｋ阻害剤は使用しない。細胞が（たとえば、明視野顕微鏡法によって判定して）コンフルエンスに近づき始めれば、大きなコロニーをより小さなコロニーに切断し、次いでこれらをディッシュから物理的に持ち上げて羊水細胞由来ＥＣＭの新たなプレートに配置して再播種することによって、細胞を手作業で継代することができる。この手順は無限に繰り返すことができる。一部の実施形態では、培養中の接着細胞を増殖させる方法が開示され、該方法は細胞を培養培地中で細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で培養してそれにより接着細胞を増殖させるステップを含み、細胞由来ＥＣＭは羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる。
上記の接着細胞を拡大／増殖する方法は、他の周産期細胞由来ＥＣＭの存在下における培養における拡大／増殖する接着細胞の使用にも適用される。一部の態様では、培養中の接着細胞を増殖させる方法が開示され、該方法は接着細胞を培養培地中で細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で培養してそれにより接着細胞を増殖させるステップを含み、細胞由来ＥＣＭは臍帯または胎盤組織から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる。一部の実施形態では、臍帯から単離される細胞は臍帯血および／またはＷｈａｒｔｏｎのゼリーからのものである。他の実施形態では、胎盤組織から単離される細胞は膜シート（羊膜および／または絨毛膜）、絨毛、および／または血液からのものである。Ｃ．幹細胞の分化を誘導する方法
幹細胞の分化細胞型への分化を誘導する方法が本明細書で開示され、該方法は分化培地中の細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で幹細胞を培養するステップを含み、細胞由来ＥＣＭ、即ち本発明の羊水細胞由来ＥＣＭは、羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む。一部の実施形態では、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）のアイソフォームは、アイソフォーム２である。一部の実施形態では、アグリンのアイソフォームは、アイソフォーム６である。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、デコリン、ペルレカン、またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない。一部の実施形態では、羊水から単離された細胞は、幹細胞を含む。一部の実施形態では、細胞由来のＥＣＭは、脱細胞化される。幹細胞は、人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）等の多能性幹細胞（ＰＳＣ）または胚性幹細胞（ＥＳ）であってよい。幹細胞は間葉系幹細胞（ＭＳＣ）であってよい。ＭＳＣは以下の非限定的な供給源、即ち骨髄、臍帯組織、たとえばＷｈａｒｔｏｎのゼリー、臍帯血、脂肪組織、および羊水から得ることができる。一部の実施形態では、ＭＳＣは骨髄から得られる。一部の実施形態では、分化した細胞型は脂肪細胞、骨芽細胞、軟骨細胞、または筋細胞であってよい。
幹細胞の分化細胞型への分化のための細胞培養技法は当技術で公知であり、それに従うことができる。種々の市販の分化培地が使用に適しており、特定の所望の分化細胞型に特異的であり得る。たとえば、脂肪生成性の分化培地は、ＦＢＳ、ＩＢＭＸ、デキサメタゾン、インスリン、および／またはインドメタシンを含むＤＭＥＭを含み得る。別の例は、デキサメタゾンおよび／またはＬ－アスコルビン酸－２－リン酸を補充した成長培地であってよい骨芽細胞分化培地である。
上記の幹細胞の分化を誘導する方法は、分化培地中の他の周産期細胞由来ＥＣＭの存在下で培養する幹細胞の使用にも適用される。一部の態様では、幹細胞の、分化した細胞型への分化を誘導する方法が開示され、該方法は幹細胞を分化培地中で細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で培養するステップを含み、細胞由来ＥＣＭは臍帯または胎盤組織から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる。一部の実施形態では、臍帯から単離される細胞は臍帯血および／またはＷｈａｒｔｏｎのゼリーからのものである。他の実施形態では、胎盤組織から単離される細胞は膜シート（羊膜および／または絨毛膜）、絨毛、および／または血液からのものである。
以下の実施例は、本発明のある非限定的な態様を実証するために含まれている。当業者であれば、以下の実施例で開示される技法は本発明の実施において良好に機能するように本出願人によって発見された技法を表していることが認識できよう。しかし、当業者には、本開示に照らして本発明の精神および範囲から逸脱することなく、開示した特定の実施形態において多くの変更が可能であり、同様または類似の結果が得られることが認識されよう。
（実施例１）羊水細胞由来ＥＣＭの産生
以下の手順を用いて、４種の羊水細胞由来ＥＣＭ（マトリックスＡ、マトリックスＢ、マトリックスＣ、およびマトリックスＤ）を作製した。４名のドナーの満期産（妊娠期間３７週より長い）から収集した羊水から無菌的に単離した細胞を、フィブロネクチンでコーティングした組織培養処理済みフラスコに播種し、完全培地中、３７℃、５％ＣＯ２および９０％のＲＨで、インキュベーター内で培養した。完全培地は、アルファ最小必須培地（ａＭＥＭ）プラス２ｍＭのＬ－グルタミンプラス抗生剤－抗真菌剤プラス１５％のウシ胎児血清であった。
３～４日目に、完全培地の半分をフラスコから吸引し、半分の新たな完全培地で置き換えた。フラスコを上記と同じ条件のインキュベーターに戻した。
７～８日目に、完全培地を培養フラスコから吸引し、誘導培地を補充した。フラスコを上記と同じ条件のインキュベーターに戻した。誘導培地は、完全培地プラス５０ｍＭのＬ－アスコルビン酸であった。
１０～１１日目に、誘導培地を培養フラスコから吸引し、フラスコ内で形成されたＥＣＭをリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で１回洗浄した。次いでＰＢＳをフラスコから吸引した。抽出緩衝液をフラスコに加え、室温で７～１０分インキュベートしてそれぞれのＥＣＭから細胞を除去し、次いで抽出緩衝液をフラスコから吸引した。抽出緩衝液は、０．５％（ｖ／ｖ）のＴＲＩＴＯＮ（登録商標）－Ｘ１００および２０ｍＭの水酸化アンモニウム（ＮＨ４ＯＨ）を含むＰＢＳであった。
細胞を除去したフラスコ中のＥＣＭのそれぞれをＰＢＳで３回、滅菌水で１回洗浄し、次いで滅菌水をフラスコから吸引した。細胞を除去したフラスコ中の４種のＥＣＭを室温で乾燥させ、次いで４℃で保存した。
１０倍の対物レンズを用いる倍率１００倍での羊水細胞由来ＥＣＭ（マトリックスＢ）の明視野画像の顕微鏡写真を図１に示す。トポグラフィー、接着、および剛性を示す羊水細胞由来ＥＣＭ（マトリックスＢ）および骨髄細胞由来ＥＣＭの３つの代表的な４０×４０ｕｍの切片の原子間力顕微鏡写真を図２に示す。骨髄細胞由来および羊水細胞由来のＥＣＭは構造的にも物理的にも区別できる。骨髄細胞由来および羊水細胞由来のＥＣＭの接着および剛性（弾性率）の定量により、図３ａ（接着）および図３ｂ（剛性）の散布図に示すように、骨髄ＥＣＭが羊水ＥＣＭより１０倍剛性で、３倍非接着性であることが示され、ここでＢＭは骨髄細胞由来のＥＣＭ、ＡＤは羊水細胞由来のＥＣＭ（マトリックスＢ）である。各点は独立した測定点を表す。
（実施例２）羊水細胞由来ＥＣＭの組成
実施例１で産生された羊水細胞由来ＥＣＭのそれぞれの組成を、質量分析によって決定した。成分をそのスペクトルカウントおよび分子量とともに表２に列挙する。
Figure 2024026851000002
Figure 2024026851000011
Figure 2024026851000014
Figure 2024026851000020
Figure 2024026851000030
Figure 2024026851000036
Figure 2024026851000060
Figure 2024026851000062
Figure 2024026851000070
Figure 2024026851000078
Figure 2024026851000084
Figure 2024026851000086
Figure 2024026851000094
Figure 2024026851000099
 （実施例３）羊水細胞由来ＥＣＭ上でのｉＰＳＣの増殖
人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）を、以下の手順を用いて実施例１の羊水細胞由来ＥＣＭ（マトリックスＢ）上で培養して増殖させた。凍結保存された市販のｉＰＳＣを、３７℃の水浴を用いて解凍した。細胞懸濁液を幹細胞増殖用の市販の培地（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ、ＭＡＣＳ ｉＰＳ Ｂｒｅｗ）の中に希釈し、培地２ｍＬ／ウェルを有する６ウェルプレート中のＥＣＭ上にほぼ１，０００細胞／ｃｍ２をを播種した。Ｒｏｃｋ阻害剤は使用しなかった。１日目に、培地の全体積を培養中の細胞から穏やかに吸引し、新鮮な培地で置き換えた。２４時間ごとに全培地を新鮮な培地で置き換えた。細胞が（明視野顕微鏡法によって判定して）コンフルエンスに近づき始めれば、無菌の針を用いて大きなコロニーをほぼ１００個のより小さなコロニーに切断し、次いでこれらを無菌の針でディッシュから物理的に持ち上げてＥＣＭの新たなプレートに配置して再播種することによって、細胞を手作業で継代した。この手順は無限に繰り返すことができる。
羊水細胞由来ＥＣＭおよび骨髄細胞由来ＥＣＭ上におけるｉＰＳＣの０日目および２日目の培養を示す顕微鏡写真を図４に示す。
羊水細胞由来ＥＣＭおよび骨髄細胞由来ＥＣＭの存在下で培養したｉＰＳＣのｉＰＳＣコロニー成長曲線のプロットを図５に示す。
図４および図５に見られるように、ｉＰＳＣは羊水細胞由来ＥＣＭの存在下での培養において増殖した一方、骨髄細胞由来ＥＣＭの存在下で培養したｉＰＳＣは成長しなかった。
別の研究で、ｉＰＳＣを羊水細胞由来ＥＣＭ（ＡＦＣ－ＥＣＭ）上に播種した。細胞を２回継代し、次いで遺伝子発現の解析のためにＲＮＡを収集した。定量ＰＣＲを用いて遺伝子発現を決定した。ＡＦＣ－ＥＣＭ上で成長したｉＰＳＣは実験の経過の間、多能性を維持し、図６に示すように、コア多能性転写因子ＰＯＵ５Ｆ１（ＯＣＴ４）、ＳＯＸ２、およびＮＡＮＯＧの発現を維持していた。これらの研究の結果、羊水細胞由来ＥＣＭは多能性幹細胞の自己再生および増殖を支持することが示唆される。
（実施例４）羊水細胞由来ＥＣＭ上における種々の細胞型の増殖
骨髄、内皮前駆細胞（ＥＰＣ）から得られた間葉系幹細胞（ＭＳＣ）、および軟骨細胞を、標準的な市販の培地中、等しい播種密度で、羊水細胞由来ＥＣＭ（ＡＦ－ＥＣＭ）上、骨髄細胞由来ＥＣＭ（ＢＭ－ＥＣＭ）上、および組織培養プラスチック（ＴＣＰ）上に播種した。ＭＳＣおよび軟骨細胞については、培地は１５体積％のウシ胎児血清、１％の抗生剤－抗真菌剤（アンチ－アンチ）、および１％のＧｌｕｔａＭａｘを補充したフェノールレッドを含まない改変されたアルファ最小必須培地（ａＭＥＭ）であった。ＥＰＣについては、培地は２０％のＦＢＳ、１％のアンチ－アンチ、１％のＧｌｕｔａＭａｘ、および成長因子（ＥＧＦおよびＦＧＦ）を補充したＩｓｃｏｖｅの改変ダルベッコ培地（ＩＭＤＭ）であった。ＴＣＰと比較して２つのＥＣＭ上で増加した増殖を示す顕微鏡写真を図７に示す。培養４日後の細胞の増殖を、図８ａ、図８ｂ、および図８ｃの棒グラフで定量する。驚くべきことに、羊水細胞由来ＥＣＭは、骨髄細胞由来ＥＣＭと比較して（骨髄によって産生された）ＭＳＣの増加した増殖を支持する。さらに、図９は、それぞれの基材上で４日間培養した後のフローサイトメトリーによって測定したＳＳＥＡ－４を発現するＭＳＣのパーセンテージを示す。ＳＳＥＡ－４の発現は、羊水細胞由来ＥＣＭ上での培養の後、他の基材と比較して上昇する。
（実施例５）羊水細胞由来ＥＣＭ上で培養したＭＳＣの分化
ヒト骨髄から得られた間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を羊水細胞由来ＥＣＭ（ＡＦＣ－ＥＣＭ）上に６×１０３細胞／ｃｍ２で播種し、成長培地中で１４日間培養した。
細胞の脂肪生成分化効率を評価するため、培養液を７日目に脂肪生成性培地（１０％のＦＢＳ、０．５ｍＭのＩＢＭＸ、１０－６Ｍのデキサメタゾン、１０μＭのインスリン、および２００μＭのインドメタシンを含むＤＭＥＭ）に移し、さらに１０日間維持し、１０％のホルマリンで室温で１時間固定し、次いでオイルレッドＯで染色した。脂肪生成は分化した細胞をオイルレッドＯで染色することによって検証される。オイルレッドＯは、培養中におけるＭＳＣの脂肪細胞への分化に続いて細胞内で形成される脂質液滴を染色（赤色染色）する。ＡＦＣ－ＥＣＭ上におけるＭＳＣの脂肪生成分化を示す顕微鏡写真を図１０に示す。
骨形成分化効率を評価するため、培養液を骨芽細胞分化培地（１０－７Ｍのデキサメタゾン（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）および１０－４ＭのＬ－アスコルビン酸－２－リン酸（Ｗａｋｏ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ、Ｒｉｃｈｍｏｎｄ、ＶＡ）を補充した成長培地）に移し、さらに２５日間維持し、１０％のホルマリンで室温で１時間固定し、次いで１％の硝酸銀で染色（Ｖｏｎ Ｋｏｓｓａ染色）した。骨形成は分化した細胞を１％の硝酸銀で染色することによって検証される。硝酸銀は、培養中におけるＭＳＣの骨芽細胞への分化に続いて沈着する無機物を染色（暗染色）する。ＡＦＣ－ＥＣＭ上におけるＭＳＣの骨形成分化を示す顕微鏡写真を図１１に示す。この研究は、羊水細胞由来ＥＣＭ上での培養において幹細胞を誘導して分化した細胞型に分化させることができることを実証している。
本発明は、例えば、以下の項目を提供する。
（項目１）
羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られた細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）。
（項目２）
ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、項目１に記載の細胞由来のＥＣＭ。
（項目３）
コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、項目２に記載の細胞由来のＥＣＭ。
（項目４）
フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、項目２または３のいずれか一項に記載の細胞由来のＥＣＭ。
（項目５）
デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、項目１から４のいずれか一項に記載の細胞由来のＥＣＭ。
（項目６）
羊水から単離された前記細胞が、幹細胞を含む、項目１から５のいずれか一項に記載の細胞由来のＥＣＭ。
（項目７）
脱細胞化されている、項目１から６のいずれか一項に記載の細胞由来のＥＣＭ。
（項目８）
培養中の接着細胞を増殖させる方法であって、前記接着細胞を培養培地中で細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で培養してそれにより前記接着細胞を増殖させるステップを含み、前記細胞由来のＥＣＭが、羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる、方法。
（項目９）
前記細胞由来のＥＣＭが、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、項目８に記載の方法。
（項目１０）
コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、項目９に記載の方法。
（項目１１）
前記細胞由来のＥＣＭが、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、項目９または１０のいずれか一項に記載の方法。
（項目１２）
前記細胞由来のＥＣＭが、デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、項目８から１１のいずれか一項に記載の方法。
（項目１３）
羊水から単離された前記細胞が、幹細胞を含む、項目８から１２のいずれか一項に記載の方法。
（項目１４）
前記細胞由来のＥＣＭが、前記接着幹細胞と接触する前に脱細胞化される、項目８から１３のいずれか一項に記載の方法。
（項目１５）
前記接着細胞が、哺乳動物の接着細胞を含む、項目８から１４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１６）
前記接着細胞が、幹細胞、体細胞、前駆細胞、成熟細胞、または複数の胚葉由来の細胞を含む、項目８から１５のいずれか一項に記載の方法。
（項目１７）
前記接着細胞が、幹細胞を含む、項目１６に記載の方法。
（項目１８）
前記幹細胞が、未分化の状態で維持されている、項目１７に記載の方法。
（項目１９）
前記幹細胞が、多能性幹細胞（ＰＳＣ）を含む、項目１７または１８のいずれか一項に記載の方法。
（項目２０）
前記ＰＳＣが、人工ＰＳＣ（ｉＰＳＣ）を含む、項目１９に記載の方法。
（項目２１）
前記ＰＳＣが、胚性幹細胞（ＥＳ）を含む、項目１９に記載の方法。
（項目２２）
前記幹細胞が、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を含む、項目１７または１８のいずれか一項に記載の方法。
（項目２３）
前記ＭＳＣが、骨髄から得られる、項目２２に記載の方法。
（項目２４）
前記接着細胞が、前駆細胞を含む、項目１６に記載の方法。
（項目２５）
前記前駆細胞が、内皮前駆細胞を含む、項目２４に記載の方法。
（項目２６）
前記接着細胞が、成熟細胞を含む、項目１６に記載の方法。
（項目２７）
前記成熟細胞が、軟骨細胞を含む、項目２６に記載の方法。
（項目２８）
幹細胞の分化細胞型への分化を誘導する方法であって、分化培地中の細胞由来細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の存在下で前記幹細胞を培養するステップを含み、前記細胞由来ＥＣＭが、羊水から単離された細胞からｉｎ ｖｉｔｒｏで得られる、方法。
（項目２９）
前記細胞由来のＥＣＭが、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、項目２８に記載の方法。
（項目３０）
コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、項目２９に記載の方法。
（項目３１）
前記細胞由来のＥＣＭが、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、項目２９または３０のいずれか一項に記載の方法。
（項目３２）
前記細胞由来のＥＣＭが、デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、項目２８から３１のいずれか一項に記載の方法。
（項目３３）
羊水から単離された前記細胞が、幹細胞を含む、項目２８から３２のいずれか一項に記載の方法。
（項目３４）
前記幹細胞が、多能性幹細胞（ＰＳＣ）を含む、項目２８から３３のいずれか一項に記載の方法。
（項目３５）
前記ＰＳＣが、人工ＰＳＣ（ｉＰＳＣ）を含む、項目３４に記載の方法。
（項目３６）
前記ＰＳＣが、胚性幹細胞（ＥＳ）を含む、項目３４に記載の方法。
（項目３７）
前記幹細胞が、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を含む、項目２８から３３のいずれか一項に記載の方法。
（項目３８）
前記ＭＳＣが、骨髄から得られる、項目２２に記載の方法。
（項目３９）
前記分化細胞型が、脂肪細胞、骨芽細胞、軟骨細胞、または筋細胞を含む、項目３７または３８のいずれか一項に記載の方法。
（項目４０）
細胞由来の細胞外マトリックス（ＥＣＭ）をｉｎ ｖｉｔｒｏで産生する方法であって、
（ａ）羊水から細胞を単離するステップ、
（ｂ）前記単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種するステップ、
（ｃ）培養培地を前記細胞培養容器に添加するステップ、および
（ｄ）前記細胞を培養し、それにより細胞由来のＥＣＭを産生するステップ、および
（ｅ）必要に応じて前記細胞由来のＥＣＭを脱細胞化するステップ
を含む方法。
（項目４１）
前記羊水からの前記単離された細胞が、幹細胞を含む、項目４０に記載の方法。
（項目４２）
前記基材が、フィブロネクチンである、項目４０または４１に記載の方法。
（項目４３）
前記細胞由来のＥＣＭが、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、項目４０から４２のいずれか一項に記載の方法。
（項目４４）
コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、項目４３に記載の方法。
（項目４５）
前記細胞由来のＥＣＭが、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、項目４３または４４のいずれか一項に記載の方法。
（項目４６）
前記細胞由来のＥＣＭが、デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、項目４０から４５のいずれか一項に記載の方法。
（項目４７）
羊水細胞由来細胞外マトリックス（ＡＦＣ－ＥＣＭ）であって、
（ａ）羊水から細胞を単離するステップ、
（ｂ）前記単離した細胞を、細胞培養容器または基材でコーティングした細胞培養容器に播種するステップ、
（ｃ）培養培地を前記細胞培養容器に添加するステップ、および
（ｄ）前記細胞を培養し、それにより前記ＡＦＣ－ＥＣＭを産生するステップ、および
（ｅ）必要に応じて前記ＡＦＣ－ＥＣＭを脱細胞化するステップ
を含む方法によってｉｎ ｖｉｔｒｏで産生されたＡＦＣ－ＥＣＭ。
（項目４８）
前記羊水からの前記単離された細胞が、幹細胞を含む、項目４７に記載の方法。
（項目４９）
前記基材が、フィブロネクチンである、項目４７または４８に記載の方法。
（項目５０）
前記細胞由来のＥＣＭが、ラミニン、コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）、基底膜特異的ヘパラン硫酸プロテオグリカンコアタンパク質、アグリン、ビメンチン、およびコラーゲンアルファ－２（ＩＶ）、ならびに／またはそれらのアイソフォームを含む、項目４７から４９のいずれか一項に記載の方法。
（項目５１）
コラーゲンアルファ－１（ＸＶＩＩＩ）の前記アイソフォームが、アイソフォーム２であり、および／またはアグリンの前記アイソフォームが、アイソフォーム６である、項目５０に記載の方法。
（項目５２）
前記細胞由来のＥＣＭが、フィブロネクチンおよび／またはそのアイソフォームをさらに含む、項目５０または５１のいずれか一項に記載の方法。
（項目５３）
前記細胞由来のＥＣＭが、デコリン、ペルレカン、および／またはコラーゲン（ＩＩＩ）を含まない、項目４７から５２のいずれか一項に記載の方法。

Claims (1)

  1. 明細書に記載の発明。
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