JP2024016417A - ヒアルロン酸合成促進用医薬組成物、及びザクロ種子エキスを含有するヒアルロン酸合成促進用医薬組成物の製造方法 - Google Patents
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- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
Abstract
Description
本発明による組成物は、有効的な量のザクロ種子エキス、及び適当な投与形態の形で調製される。
ザクロ種子エキスの含有成分については、リノレン酸も含まれる成分であるため毒性は認められないと考えられている。
・BMP:Bone Morphogenetic Proteins
・CE:Cornified Envelope
・CSF:Colony-stimulating factors
・COL:Collagen
・COL1A1:Type I collagen α1 chain
・DEPC:Diethylpyrocarbonate
・DMSO:Dimethyl Sulfoxide
・ECM:Extracellular Matrix
・EGF:Epidermal Growth Factor
・ELN:Elastin
・FBS:Fetal Bovine Serum
・F1:PSE-Ethyl Acetate-Hexane-Fraction 1 画分
・F2:PSE-Ethyl Acetate-Hexane-Fraction 2 画分
・F3:PSE-Ethyl Acetate-Hexane-Fraction 3 画分
・F4:PSE-Ethyl Acetate-Hexane-Fraction 4 画分
・HA:Hyaluronic Acid
・HABP:Hyaluronic Acid Binding Protein
・HAS:Hyaluronic Acid Synthase
・HIF-1α:Hypoxia-inducible factor-1α
・HYAL:Hyaluronidase
・IL:Interleukins
・INV:Involcrin
・KGF:Keratinocyte Growth Factor
・LOR:Loricrin
・MAPK:Mitogen-activated protein kinase
・miRNA:micro RNA
・MMP:Matrix metalloproteinase
・NF-κB:Nuclear factor-kappa B
・NMF:Natural moisturizing factor
・Nrf-2:Nuclear factor erythroid 2-related factor 2
・PBS:Phosphate Buffered Saline
・PC:Positive Control
・PSE:Punica gtanatum Seed Ethanol extract(ザクロ種子エタノール抽出物)
・PSE-Bu-Me:PSE-Butanol-Methanol 画分
・PSE-EA:PSE-Ethyl Acetate 画分
・PSE-EA-H:PSE-Ethyl Acetate-Hexane 画分
・PSE-EA-Me:PSE-Ethyl Acetate-Methanol 画分
・PSE-W:PSE-Water 画分
・ROS:Reactive oxygen species
・RT-PCR:Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction
・SASP:Senescence-associated secretory phenotype
・TGF-β:Transforming Growth Factor-1
・TIMP:TISSUE INHIBITORS OF MMPS
・TGM:Transglutaminase
・TNF-α:Tumor Necrosis Factor-α
・UV:Ultraviolet
・VC:Vitamin C
まず、溶媒として、エタノールを用いて、ザクロ種子エキスの調製を試みた。ザクロ種子を粉砕し、100%エタノールで振とう抽出した。これらを濃縮乾固して再溶解し、ザクロ種子エタノール抽出物として実験に供した。さらに、エタノールで抽出したザクロ種子エタノール抽出物(以下、PSEともいう。)を、分液漏斗を用いて酢酸エチルと水で分配し、酢酸エチル層の溶媒をエバポレーターにより減圧濃縮し、酢酸エチル画分(PSE-EA)として、水層は溶媒を凍結乾燥し、水画分(PSE-W)とした場合、PSE-EA をヘキサンとメタノールで分配後、溶媒をそれぞれエバポレーターで減圧濃縮し、得られた画分を、酢酸エチル-ヘキサン画分(以下、PSE-EA-Hともいう。)及び酢酸エチル-メタノール画分(以下、PSE-EA-Meともいう。)とした。具体的には、以下の通りである。
乾燥ザクロ種子をミルサーで粉末化し、10 倍量 100% エタノール(和光純薬工業株式会社製)を加え、4℃、24 時間で低温振盪抽出を行った。24 時間後、室温、3,000 rpm で 20 分間遠心分離を行い、上清を回収した。上清を減圧濃縮して得られた濃縮物をザクロ種子エタノール抽出物(PSE : Punica granatum Seed Ethanol extract)とした。
PSE 2.00gを、分液漏斗を用いて酢酸エチル(100ml×3)とMiliQ 水(100 ml)で分配し、酢酸エチル層の溶媒をエバポレーターにより減圧濃縮し、酢酸エチル画分(PSE-EA)とした。水層は溶媒を凍結乾燥し、水画分(PSE-W)とした。さらにPSE-EAをヘキサン(100ml×3)とメタノール(100ml)で分配後、溶媒をそれぞれエバポレーターで減圧濃縮し、酢酸エチル-ヘキサン画分(PSE-EA-H)と酢酸エチル-メタノール画分(PSE-EA-Me)を得た。収量の多いPSE-EA-Hをヘキサン(100ml)、ヘキサンと酢酸エチルの混合物(ヘキサン:酢酸エチル=9:1の場合(ヘキサン90mL、酢酸エチル10mL)、ヘキサン:酢酸エチル=8:2の場合(ヘキサン80mL、酢酸エチル20mL)、ヘキサン:酢酸エチル=6:4の場合(ヘキサン40mL、酢酸エチル60mL))、酢酸エチル(100ml)、メタノール(100ml)の順でカラム(30φ×300mm)に流し、分配した。下記の式より、画分の収率を算出し、画分調製のフローチャートを図33に示した。
<試薬>
・D-MEM(High Glucose)with L-Glutamine, Phenol Red, and Sodium Pyruvate: 富士フイルム 和光純薬株式会社
・Penicillin-Streptomycin Solution(×100):和光純薬工業株式会社
・Phosphate Buffered Saline(PBS)
・Fetal Bovine Serum(FBS):シグマ・アルドリッチ・ジャパン合同会社
・0.25%(w/v)Trypsin/EDTA with Phenol Red:和光純薬工業株式会社
・0.4 w/v% Trypan Blue Solution:和光純薬工業株式会社
・Dimethyl Sulfoxide(DMSO):和光純薬工業株式会社
・1 mg/ml Insulin:Sigma-Aldrich
・4 mg/ml Transferrin:Sigma-Aldrich
・4 mM Ethanol Amine:和光純薬工業株式会社
・5 μM Sodium Selenite:和光純薬工業株式会社
・1 mg/ml Insulin
Insulinを100 mg秤量し、50mlのPBSに溶解した。この時、結晶を溶解するために濃塩酸を50μl添加した。0.22μmのフィルターでろ過滅菌し、1mlごとに分注し、冷凍保存したものを溶解し使用した。
Apo-transferrin humanを100mg秤量し、25mlの PBSで溶解した。0.22μmのフィルターでろ過滅菌し、1mlごとに分注し、冷凍保存したものを溶解し使用した。
2-Aminoethaolを蒸留水で250倍希釈し、さらに25倍希釈した。0.22μmのフィ ルターでろ過滅菌し、1mlごとに分注し、冷凍保存したものを溶解し使用した。
Sodium Seleniteを43.2mg秤量し、5mlの蒸留水で溶解し、50mM水溶液を調製した。その後、50mM水溶液を10,000倍希釈し、さらに100倍希釈した。その後0.22μmのフィルターでろ過滅菌し、1 mlごとに分注し、冷凍保存したものを溶解し使用した。
D-MEM培地(1%量のPenicillin-Streptomycin Solution 添加済)18.8mlにFBSを 400μl、1mg/ml Insulin(I)、4mg/ml Transferrin(T)、4mg/ml Ethanol Amine(E)、5μM Sodium Selenite(S)をそれぞれ200μl添加し、転倒混和により軽く攪拌した。
HaCaT細胞は1%量のPenicillin-Streptomycin Solutionを添加したD-MEMに10%量のFBSを添加した培養培地を用いて、37℃、5% CO2濃度条件下で培養を行った。
10cmの培養ディッシュに80~90%サブコンフルエント状態に増殖した細胞にPBS を添加・除去し、細胞を洗浄した。その後、0.25%(w/v)Trypsin/EDTAを添加し、37℃、5% CO2濃度条件のもと、5分間インキュベートした。FBSでTrypsin 反応を停 止させ、D-MEMを添加した後、ピペッティングにより単細胞浮遊液とし、15 ml遠心 管に回収した。1500rpmで5分間遠心分離を行い、上清を除去した。沈殿物にD-MEM を添加し、ピペッティングによる懸濁の後、10% FBS存在下で細胞播種を行った。
10cmの培養ディッシュに80~90%サブコンフルエント状態に増殖した細胞にPBS を添加・除去し、細胞を洗浄した。その後、0.25%(w/v)Trypsin/EDTAを添加し、37℃、5% CO2濃度条件のもと、5分間インキュベートした。FBSでTrypsin反応を停 止させ、D-MEMを添加した後、ピペッティングにより単細胞浮遊液とし、15 ml遠心 管に回収した。1,500rpmで5分間遠心分離を行い、上清を除去した。最終細胞密度が3.0×105cells/mlになるようにD-MEM(10%FBS)を添加し、ピペッティングにより懸濁した。6 well-plateに細胞懸濁液を1 mlずつ播種し、37℃、5% CO2濃度条件下で24時間前培養を行った。
PCR法はDNA配列上の特定の領域(目的のDNA領域)を1対のプライマーと耐熱性 DNAポリメラーゼを用いて増幅させる方法である。PCR法では「1.熱変性→2.アニ ーリング→3.伸長反応」という3段階の温度変化による反応を繰り返すことによって、理論的にはDNA量を指数関数的に増幅させることが出来る。PCR法を用いることで、微量のDNAから特定のDNA領域のみを迅速かつ簡便に増幅させることができる。 RNAを鋳型としてDNAを合成(逆転写)した後に、PCR法によりDNAを増幅させる操作である。
・ISOGENII:ニッポンジーン
・DEPC water
・2-Propanol:和光純薬工業株式会社
・75% Ethanol:関東化学株式会社
・ReverTra Ace:東洋紡株式会社
・25 mM Oligo dT primer:東洋紡株式会社
・Taq DNA polymerase:東洋紡株式会社
・KOD-plus-Ver.2:東洋紡株式会社
・Dimethyl Sulfoxide(DMSO):和光純薬株式会社
・MilliQ
・Agarose Basic:タカラバイオ株式会社
・エチジウムブロマイド溶液:ナカライテスク株式会社
・Gene Ladder 100(0.1-2 kbp):ニッポンジーン
・Boric Acid:和光純薬工業株式会社
・bromophenol blue:ナカライテスク株式会社
・キシレンシアノール:ナカライテスク株式会社
・Tris(hydroxymethyl)aminomethane:和光純薬工業株式会社
・Glycerol:和光純薬工業株式会社
・5×TBE buffer
Tris 27g、Boric Acid 13.75g、および 0.5M EDTA(pH8.0)10mlに蒸留水加え、全量を500mlとした。実験使用時は蒸留水にて1×TBEに希釈し利用した。
MillQ 49.4 mlに対して0.5M EDTA(pH8.0)100μlおよび1M Tris-HCl 500μlを添加し混合した。
bromophenol blue 15mg、キシレンシアノール 15mg、0.5M EDTA(pH8.0)1.2 ml、およびGlycerol 1.8mlに蒸留水を加え、全量を10mlとし、混合した。混合したものを1mlずつ分注し、-20℃で冷凍保存したものを溶解し利用した。
・GAPDH:ファスマック株式会社
・Loricrin:ファスマック株式会社
・Involcrin:ファスマック株式会社
・Transglutaminase-1:ファスマック株式会社
・Hyaluronic Acid Synthase-1:ファスマック株式会社
・Hyaluronic Acid Synthase-2:ファスマック株式会社
・Hyaluronic Acid Synthase-3:ファスマック株式会社
・Nano Drop 2000:Thermo
・Thermal Cycler(My Cycler):Bio Rad
・Thermal Cycler(Mini Amp Plus):Thermo
・Mupid-2 plus:タカラバイオ株式会社
・AE-6933FXCF:ATTO 株式会社
<Total RNA の抽出>
48時間及び96時間培養後、PBSを添加・除去し細胞を洗浄した。ISOGENIIを700μl/well添加した後、ピペッティングにより懸濁し1.5 mlチューブに回収した。DEPC waterを300μl加え、ボルテックスミキサーを用いて15秒間激しく攪拌した。室温15分間静置後、12,000×g、15分間遠心分離を行い、上清から500μlを新たな 1.5mlチューブに回収した。そこに同量(500μl)の2-Propanolと20 mgグリコーゲン溶液1μl加え転倒混和した。室温10分間静置後、12,000×g、15分間遠心分離を行い、上清を除去した。沈殿物に75% Ethanol 300μl/tubeを加え、転倒混和により洗浄した後、8,000×g、3分間遠心分離を行い、上清を除去した。この操作を2 回繰り返し、上清をできる限り除去した後、チューブ内の液体を揮発させるためにチューブ状にサランラップ(登録商標)をかけて20-30分間静置した。チューブを氷上へ移し、20 μl/tubeのDEPC waterを加え、ピペッティングにより沈殿物を溶解したものを Total RNA溶液とした。Nano Drop 2000を用いてTotal RNA溶液の濃度および純度を測定した。
0.2ml PCRチューブに各サンプルのTotal RNA 4μgと表2に示した溶液を加え、 液量全体が20μlになるように、DEPC waterを加え、Thermal Cyclerを用いて表3 の反応条件で逆転写反応を行った。表2は、逆転写反応液調製条件を示し、表3は、逆転写反応条件を示す。
TE bufferで5倍希釈した各サンプルのcDNA溶液を使用した。Primerは、TE bufferで20 pmol/mlに調製し使用した。0.2ml PCRチューブに反応溶液全量が25μlになるように、下記の表4に従いそれぞれの反応液を混合した。それらをThermal Cyclerを用いて、表5の反応条件でPCR反応を行った。Internal ControlとしてGAPDHを用いて補正を行った。表4は、各遺伝子のPCR反応液条件を示す。また、表5は、各遺伝子のPCR反応条件を示す。
Agarose Basic「TaKaRa」2gに1×TBE bufferを加え、電子レンジで加熱し溶解した。アガロース溶液をゲルメーカーに流し込み、室温で15分以上静置し2%アガロースゲルを作成した。各PCR産物:6×Loading Dye=5:1で混合し、ゲルのウェルにサンプルおよび Gene Ladderをアプライした。100V、30-40分間電気泳動を行い、ゲルをエチジウムブロマイドで染色した。染色したゲルはゲル撮影装置にて増幅産物を確認した。得られた増幅バンドの強度は画像解析ソフト(CS Analyzer 4)を用いて数値化した。Controlとサンプル添加群間との統計学的有意差は Dunnett’s Testにより検定し、*p<0.05として表した。
<試薬>
・ISOGENII:ニッポンジーン
・DEPC water
・2-Propanol:和光純薬工業株式会社
・75% Ethanol:関東化学株式会社
・ReverTra Ace:東洋紡株式会社
・25 mM Oligo dT primer:東洋紡株式会社
・THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix:東洋紡株式会社
・MilliQ
・β-actin:ファスマック株式会社
・Loricrin:ファスマック株式会社
・Involcrin:ファスマック株式会社
・Hyaluronic Acid Synthase-2:ファスマック株式会社
・Nano Drop 2000:Thermo
・CFX96TM Real-Time System:Bio Rad
<Total RNAの抽出>
48時間及び96時間培養後、PBSを添加・除去し細胞を洗浄した。ISOGENIIを700 μl/well添加した後、ピペッティングにより懸濁し 1.5mlチューブに回収した。DEPC water を300μl加え、ボルテックスミキサーを用いて15秒間激しく攪拌し た。室温15分間静置後、12,000×g、15分間遠心分離を行い、上清から500μlを 新たな1.5mlチューブに回収した。そこに同量(500μl)の2-Propanolと20mgグリコーゲン溶液1μl加え転倒混和した。室温10分間静置後、12,000×g、15分間遠心分離を行い、上清を除去した。沈殿物に75% Ethanol 300μl/tubeを加え、転倒混和により洗浄した後、8,000×g、3分間遠心分離を行い、上清を除去した。こ の操作を2回繰り返し、上清をできる限り除去した後、チューブ内の液体を揮発さ せるためにチューブ状にサランラップ(登録商標)をかけて20-30分間静置した。チューブを氷 上へ移し、20μl/tubeのDEPC waterを加え、ピペッティングにより沈殿物を溶解 したものをTotal RNA溶液とした。Nano Drop 2000を用いてTotal RNA溶液の濃度および純度を測定した。
0.2ml PCRチューブに各サンプルのTotal RNA 4μgと表1に示した溶液を加え、液量全体が20μlになるようにDEPC waterを加え、Thermal Cyclerを用いて表2 の反応条件で逆転写反応を行った。
TE bufferで5倍希釈した各サンプルのcDNA溶液を使用した。Primerは、TE bufferで20pmol/mlに調製し使用した。0.2ml PCRチューブに反応溶液全量が20μlになるように、下記の表7に従いそれぞれの反応液を混合した。それらを CFX96TM Real-Time Systemにセットし、表8の反応条件でPCR反応を行った。表7は、リアルタイムPCRの反応液条件を示す。また、表8は、リアルタイムPCRの反応条件を示す。
・Pfaffl 法=E目的遺伝子^(CtControl-CtSample)/EHK遺伝子^(CtControl-CtSample) E:1+(増幅 効率/100)
PSEおよびその分画であるPSE-W、PSE-EA-H、PSE-EA-MeをHaCaT細胞添加した後、48時間および96時間培養し、RT-PCRを行った結果を図1~図16に示した。RT-PCRにてPSEおよびその分画であるPSE-W、PSE-EA-H、PSE-EA-Meの添加培養により増加が確認された HAS-2、h-LOR、h-INV 遺伝子に関してはリアルタイム PCR を行い、RT-PCR 同様 48 時間および 96 時間培養後、測定を行った。PSEおよび その分画であるPSE-W、PSE-EA-H、PSE-EA-MeのリアルタイムPCRの結果を図17~図24に示した。PSEの添加培養により48時間でHAS-2遺伝子の顕著な発現増加が確認された。また、96 時間培養にてCE形成に関与するh-LORおよびh-INVの遺伝子発現の増加が見られた(図17、図18)。HAS-2は皮膚の水分保湿に関与するヒアルロン酸を合成する酵素であり、PSEはCEの形成を促進し皮膚のバリア機能を改善するだけでなく、ヒアルロン酸合成に寄与し、皮膚の水分保湿効果を改善する 可能性が示唆された(図17、図18)。PSE-W、PSE-EA-H、PSE-EA-Meの添加培養により48時間でHAS-2遺伝子の増加が認められた(図19、図21、図23)ことから、PSEには皮膚の水分保湿に寄与する成分が複数含まれていることが考えられる。また、96時間でh-LORおよび h-INVの遺伝子発現増加が促進された(図20、図22、図24)。今回、PSE-W、PSE-EA-MeにおいてもCE形成関連遺伝子の増加が確認されたことから、PSE-EA-Hは翻訳の過程およびTGM-1の活性に関与し、CEの形成を促進している可能性が示された。
Claims (9)
- ザクロ種子エキスを含有することを特徴とするヒアルロン酸合成促進用医薬組成物。
- 前記医薬組成物は、ヒアルロン酸合成酵素の発現増加によりヒアルロン酸合成を促進する医薬組成物であり、前記ヒアルロン酸合成酵素は、HAS-1、HAS-2又はHAS3であることを特徴とする請求項1記載の医薬組成物。
- さらに、前記医薬組成物は、角化膜形成関連遺伝子を増加することを特徴とする請求項1又は2に記載の医薬組成物。
- 前記角化膜形成関連遺伝子は、h-LOR遺伝子、又はh-INV遺伝子であることを特徴とする請求項1~3のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 請求項1~4のいずれか一項に記載の医薬組成物を有効成分とすることを特徴とする医薬部外品。
- ザクロ種子を粉砕して得た粉砕物を溶媒中に浸漬した後、上清を分取する工程と、前記上清を分取することによりザクロ種子エキスを得る工程と、得られたザクロ種子エキスを有効的な量に調整する工程と、を有することを特徴とするザクロ種子エキスを含有するヒアルロン酸合成促進用医薬組成物の製造方法。
- 溶媒が、酢酸エチル、酢酸エチル-ヘキサン、酢酸エチル-メタノール、エタノール、メタノール、ヘキサン、水からなる群から選択される少なくとも1種であることを特徴とする請求項6記載の方法。
- エタノールで抽出したザクロ種子エタノールエキスを、さらに、酢酸エチルと水で分配して、前記酢酸エチル層を減圧濃縮して、酢酸エチル画分としてザクロ種子エキスを得ることを特徴とする請求項6記載の方法。
- さらに、前記酢酸エチル画分を、ヘキサンとメタノールで分配して、酢酸エチル-ヘキサン画分及び酢酸エチル-メタノール画分として、ザクロ種子エキスを得る請求項8記載の方法。
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