JP2023506015A - 細胞の調節されたアーマリングのための方法及び組成物 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年12月12日に出願された米国仮出願第62/947,427号及び2020年11月19日に出願された第63/116,103号の利益を主張し、これらのそれぞれは、あらゆる目的のためにその全体が参照により本明細書に援用される。
本出願には、EFS-Webを介して提出され、その全体が参照により本明細書に援用される配列表が含まれる。20XX年XX月XX日に作成された前記ASCIIコピーは、XXXXXUS_sequencelisting.txtと称され、サイズがX,XXX,XXXバイトである。
腫瘍は、免疫系による認識及びクリアランスを避けるために、様々な直接的及び間接的な抑制戦略を採用する。これらの回避戦略は、細胞治療を効果的にシャットダウンすることができる。非アーマー治療では固形腫瘍での有効性が低いため、エフェクターを組み合わせて発現させるコンビナトリアルアーマリング(Combinatorial armoring)は、がん免疫サイクル全体に影響を与え、細胞治療の活性を高めることができる。しかしながら、現在の細胞治療製品及び遺伝子治療製品は制御することができない。無秩序なアーマー治療は、対象に毒性を及ぼし得る。したがって、エフェクター分子の組み合わせの発現を制御及び調節する追加の方法が必要である。
一態様では、本明細書において、第1のプロモーターと、活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)をコードする第1の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第1の発現カセット(第1のプロモーターは、第1の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結されている);ならびにACP応答性プロモーターと、式:(L-E)Xを有する第2の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第2の発現カセットを含む操作された核酸を提供し、式中、Eは、エフェクター分子をコードするポリヌクレオチド配列を含み、Lは、リンカーポリヌクレオチド配列を含み、X=1~20であり、ACP応答性プロモーターは、第2の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、(L-E)ユニットの第1の反復では、Lは存在せず、ACPは、ACP応答性プロモーターへの結合によって第2の発現カセットの発現を誘導することができる。
EVQLVETGGGMVQPEGSLKLSCAASGFTFNKNAMNWVRQAPGKGLEWVARIRNKTNNYATYYADSVKARFTISRDDSQSMLYLQMNNLKIEDTAMYYCVAGNSFA YWGQGTLVTVSA(配列番号125)または
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFNKNAMNWVRQAPGKGLEWVGRIRNKTNNYATYYADSVKARFTISRDDSKNSLYLQMNSLKTEDTAVYYCVAGNSFAYWGQGTLVTVSA(配列番号126)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含む。
DIVMSQSPSSLVVSIGEKVTMTCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQSPKLLIYWASSRESGVPDRFTGSGSGTDFTLTISSVKAEDLAVYYCQQYYNYPLTFGAGTKLELK(配列番号127)、または
DIVMTQSPDSLAVSLGERATINCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQPPKLLIYWASSRESGVPDRFSGSGSGTDFTLTISSLQAEDVAVYYCQQYYNYPLTFGQGTKLEIK(配列番号128)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含む。
QVQLVESGGGTVQAGGSLKLACAASGLPRTYNVMGWFRQAPGKEREGVAIIYTTTGATYYRDSVKGRATISQDNAKKSVSLQMNSLRPEDTAIYYCVARQPNSGPWEYWGQGTQVTVSS(配列番号129)、または
QVKLEESGGGSVQAGGSLRLSCTTSGYTNSYKWMGWFRQAPGQEREGVAVIYTGNDRTYYSDSVKGRFTISRDNAKNMIYLDMTRLRPEDSAVYECAIGHDGAWRYWGQGTQVTVSS(配列番号130)
のアミノ酸配列を有する単一ドメインモノクローナル抗体の3つの相補性決定領域(CDR)を含む。
EVQLVETGGGMVQPEGSLKLSCAASGFTFNKNAMNWVRQAPGKGLEWVARIRNKTNNYATYYADSVKARFTISRDDSQSMLYLQMNNLKIEDTAMYYCVAGNSFA YWGQGTLVTVSA(配列番号125)、または
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFNKNAMNWVRQAPGKGLEWVGRIRNKTNNYATYYADSVKARFTISRDDSKNSLYLQMNSLKTEDTAVYYCVAGNSFAYWGQGTLVTVSA(配列番号126)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含む。
DIVMSQSPSSLVVSIGEKVTMTCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQSPKLLIYWASSRESGVPDRFTGSGSGTDFTLTISSVKAEDLAVYYCQQYYNYPLTFGAGTKLELK(配列番号127)、または
DIVMTQSPDSLAVSLGERATINCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQPPKLLIYWASSRESGVPDRFSGSGSGTDFTLTISSLQAEDVAVYYCQQYYNYPLTFGQGTKLEIK(配列番号128)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含む。
QVQLVESGGGTVQAGGSLKLACAASGLPRTYNVMGWFRQAPGKEREGVAIIYTTTGATYYRDSVKGRATISQDNAKKSVSLQMNSLRPEDTAIYYCVARQPNSGPWEYWGQGTQVTVSS(配列番号129)、または
QVKLEESGGGSVQAGGSLRLSCTTSGYTNSYKWMGWFRQAPGQEREGVAVIYTGNDRTYYSDSVKGRFTISRDNAKNMIYLDMTRLRPEDSAVYECAIGHDGAWRYWGQGTQVTVSS(配列番号130)
のアミノ酸配列を有する単一ドメインモノクローナル抗体の3つの相補性決定領域(CDR)を含む。
定義
請求項及び明細書で使用される用語は、特に明記しない限り、以下に記載するように定義する。
細胞治療における薬物発現の調節は、治療効果のウインドウを探り当てるために必要である。任意の望ましいエフェクター分子またはエフェクター分子の組み合わせの発現を駆動することができる調節性転写因子を使用するそのような方法が、本明細書に記載されている。この系は、例えば、ONまたはOFF構成を可能にするモジュラープロテアーゼ系を使用することにより、細胞内または膜結合タンパク質を調節できるため、用途が広い。FDAが承認したプロテアーゼスイッチ薬を使用することができ、良好な薬物動態特性で経口投与することができる。さらに、本明細書に記載の方法及び組成物は、例えば、細胞または遺伝子治療における調節された免疫調節エフェクター発現のために使用してもよい。調節可能な転写因子は、例えば、CAR T細胞、CAR NK細胞、TCR T細胞、TIL療法、ウイルス特異的T細胞、または他の適切な免疫細胞療法と組み合わせて使用することができる。
いくつかの実施形態では、ACPは、転写モジュレーターである。いくつかの実施形態では、ACPは、転写抑制因子である。いくつかの実施形態では、ACPは、転写活性化因子である。いくつかの実施形態では、ACPは、転写因子である。いくつかの実施形態では、ACPは、DNA結合ドメイン及び転写エフェクタードメインを含む。いくつかの実施形態では、転写因子は、ジンクフィンガー含有転写因子である。いくつかの実施形態では、ジンクフィンガー含有転写因子は、合成転写因子であってもよい。いくつかの実施形態では、ACPのDNA結合ドメインは、DNA結合ジンクフィンガータンパク質ドメイン(ZFタンパク質ドメイン)及びエフェクタードメインを含む。いくつかの実施形態では、DNA結合ドメインは、テトラサイクリン(またはその誘導体)リプレッサー(TetR)ドメインを含む。いくつかの実施形態では、ACPは、本開示の抗原認識受容体である。
いくつかの実施形態では、ZFタンパク質ドメインは、モジュール式の設計であり、ジンクフィンガーアレイ(ZFA)からなる。ジンクフィンガーアレイは、互いに連結された複数のジンクフィンガータンパク質モチーフを含む。各ジンクフィンガーモチーフは、異なる核酸モチーフに結合する。これにより、任意の所望の核酸配列に特異的なZFAが得られる。ZFモチーフは、互いに直接隣接させることも、柔軟なリンカー配列によって分離することもできる。いくつかの実施形態では、ZFAは、タンデムに配置されたZFモチーフのアレイ、ストリング、または鎖である。ZFAは、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、1、3、14、または15個のジンクフィンガーモチーフを有し得る。ZFAは、1~10、1~15、1~2、1~3、1~4、1~5、1~6、1~7、1~8、1~9、2~3、2~4、2~5、2~6、2~7、2~8、2~9、2~10、3~4、3~5、3~6、3~7、3~8、3~9、3~10、4~5、4~6、4~7、4~8、4~9、4~10、5~6、5~7、5~8、5~9、5~10、または5~15個のジンクフィンガーモチーフを有し得る。
ACPはまた、転写エフェクタードメインなどのエフェクタードメインをさらに含み得る。例えば、転写エフェクタードメインは、転写因子のエフェクタードメインまたは活性化ドメインであり得る。転写因子活性化ドメインは、トランス活性化ドメインとしても知られており、遺伝子の転写を活性化または抑制するように作用する転写共調節因子などのタンパク質の骨格ドメインとして機能する。任意の好適な転写エフェクタードメインは、単純ヘルペスウイルスタンパク質16(VP16)活性化ドメイン;VP16の4つのタンデムコピーからなる活性化ドメインであるVP64活性化ドメイン;NFκBのp65活性化ドメイン;エプスタイン・バーウイルスRトランス活性化因子(Rta)活性化ドメイン;VP64、p65、及びRta活性化ドメインを含むトリパータイト活性化因子(トリパータイト活性化因子は、VPR活性化ドメインとして知られる);ヒトE1A関連タンパク質p300のヒストンアセチルトランスフェラーゼ(HAT)コアドメイン(p300HATコア活性化ドメインとして知られる);Kruppel関連ボックス(KRAB)抑制ドメイン;短縮型Kruppel関連ボックス(KRAB)抑制ドメイン;リプレッサーエレメントサイレンシング転写因子(REST)抑制ドメイン;Hairy関連塩基性ヘリックス-ループ-ヘリックスリプレッサータンパク質のWRPWモチーフ(このモチーフはWRPW抑制ドメインとして知られる);DNA(シトシン-5)-メチルトランスフェラーゼ3B(DNMT3B)抑制ドメイン;及びHP1αクロモシャドウ抑制ドメイン、またはそれらの任意の組み合わせを含むがこれらに限定されないACPにおいて使用され得る。
いくつかの実施形態では、ACPは、小分子(例えば、薬物)誘導性ポリペプチドである。例えば、いくつかの実施形態では、ACPは、テトラサイクリン(またはその誘導体)によって誘導され得、TetRドメイン及びVP16エフェクタードメインを含む。いくつかの実施形態では、ACPは、タモキシフェン、またはその代謝産物、例えば、4-ヒドロキシタモキシフェン(4-OHT)によって誘導され得、ERT2などのエストロゲン受容体バリアントを含む。いくつかの実施形態では、ACPは、抑制性プロテアーゼ、及び抑制性プロテアーゼの1つ以上の同族切断部位を含む、小分子(例えば、薬物)誘導性ポリペプチドである。
式中、
は、以下からなる群から選択される1つ以上の環であり:
R1は、-CO2R10及び-CONR10SO2R6からなる群から選択され;R2は-CH=CH2であり;R3はC1-C6アルキルであり;R6はC3シクロアルキルであり;Yは、-OC(O)-からなる群から選択され;Zは直接結合であり;Mは、C1-C12アルキレン及びC2-C12アルケニレンからなる群から選択され、Mは、C1-C8アルキル及び=CH2からなる群から独立して選択される1~2個の置換基Fで置換され;Xは、-(CH2)0-3O-からなる群から選択され、存在する場合、
は-(CH2)0-3に結合され、各R10は、独立してHである。グラゾプレビル、エルバスビル、及びそれらの組み合わせは、米国特許第9,738,661号;第7,973,040号;及び第8,871,759号及び米国特許公開第US20160243128号に記載されており、それぞれがあらゆる目的のために参照により本明細書に援用される。
いくつかの実施形態では、ACPは、デグロンをさらに含み、デグロンは、作動可能にACPに連結されている。いくつかの実施形態では、デグロンは、抑制性プロテアーゼの5’、抑制性プロテアーゼの3’、DNA結合ドメインの5’、DNA結合ドメインの3’、エフェクタードメインの5’、またはエフェクタードメインの3’に局在している。
いくつかの実施形態では、本開示の操作された核酸は、活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)をコードする外来性ポリヌクレオチド配列に作動可能に連結された第1のプロモーターを含む第1の発現カセットを含む。いくつかの実施形態では、本開示の操作された核酸は、1つ以上のエフェクター分子をコードする第2の外来性ポリヌクレオチド配列に作動可能に連結されたACP応答性プロモーターを含む第2の発現カセットを含む。いくつかの実施形態では、第1の発現カセット及び第2の発現カセットはそれぞれ、本開示の別個の操作された核酸によってコードされる。他の実施形態では、第1の発現カセット及び第2の発現カセットは、本開示の同じ操作された核酸によってコードされる。
いくつかの実施形態では、操作された核酸を、複数のエフェクター分子を産生するように構成する。例えば、核酸を、2~20個の異なるエフェクター分子を産生するように構成してもよい。いくつかの実施形態では、核酸を、2~20、2~19、2~18、2~17、2~16、2~15、2~14、2~13、2~12、2~11、2~10、2~9、2~8、2~7、2~6、2~5、2~4、2~3、3~20、3~19、3~18、3~17、3~16、3~15、3~14、3~13、3~12、3~11、3~10、3~9、3~8、3~7、3~6、3~5、3~4、4~20、4~19、4~18、4~17、4~16、4~15、4~14、4~13、4~12、4~11、4~10、4~9、4~8、4~7、4~6、4~5、5~20、5~19、5~18、5~17、5~16、5~15、5~14、5~13、5~12、5~11、5~10、5~9、5~8、5~7、5~6、6~20、6~19、6~18、6~17、6~16、6~15、6~14、6~13、6~12、6~11、6~10、6~9、6~8、6~7、7~20、7~19、7~18、7~17、7~16、7~15、7~14、7~13、7~12、7~11、7~10、7~9、7~8、8~20、8~19、8~18、8~17、8~16、8~15、8~14、8~13、8~12、8~11、8~10、8~9、9~20、9~19、9~18、9~17、9~16、9~15、9~14、9~13、9~12、9~11、9~10、10~20、10~19、10~18、10~17、10~16、10~15、10~14、10~13、10~12、10~11、11~20、11~19、11~18、11~17、11~16、11~15、11~14、11~13、11~12、12~20、12~19、12~18、12~17、12~16、12~15、12~14、12~13、13~20、13~19、13~18、13~17、13~16、13~15、13~14、14~20、14~19、14~18、14~17、14~16、14~15、15~20、15~19、15~18、15~17、15~16、16~20、16~19、16~18、16~17、17~20、17~19、17~18、18~20、18~19、または19~20個のエフェクター分子を産生するように構成する。いくつかの実施形態では、核酸を、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、または20個のエフェクター分子を産生するように構成する。
当技術分野で公知の任意の好適なエフェクター分子が、操作された核酸によってコードされるか、または操作された細胞によって発現され得る。好適なエフェクター分子は、構造の類似性、配列の類似性、または機能に基づいて治療クラスにグループ化することができる。エフェクター分子の治療クラスには、サイトカイン、ケモカイン、ホーミング分子、成長因子、共活性化分子、腫瘍微小環境改変因子、受容体、リガンド、抗体、ポリヌクレオチド、ペプチド、及び酵素が含まれるが、これらに限定されない。
一般に、1つ以上のエフェクター分子は、エフェクター分子のN末端に分泌シグナルペプチド(シグナルペプチドまたはシグナル配列とも称される)を含み、分泌または膜挿入を目的とした新規合成タンパク質を適切なタンパク質プロセシング経路に向かわせる。2つ以上のエフェクター分子を有する実施形態において、各エフェクター分子に分泌シグナル(S)を含ませることができる。2つ以上のエフェクター分子を有する実施形態において、操作された細胞から各エフェクター分子が分泌されるように、各エフェクター分子に分泌シグナルを含ませることができる。実施形態において、(L-E)Xの1つ以上のユニットを含む第2の発現カセットは、分泌シグナルペプチド(S)をコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む。実施形態において、各Xについて、対応する分泌シグナルペプチドは、エフェクター分子と作動可能に関連している。実施形態において、第2の発現カセットは、ACP応答性プロモーターと、式:(L-S-E)Xを有する第2の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む。
本開示のある特定の態様は、抗原認識受容体を含む操作された核酸に関する。いくつかの実施形態では、本開示の操作された核酸は、抗原認識受容体をさらに含む第1の発現カセットを含む。いくつかの実施形態では、第1の発現カセットは、ACPをコードする第1の外来性ポリヌクレオチド配列及び第1のプロモーターに作動可能に連結された抗原認識受容体をコードするポリヌクレオチド配列を含む。エフェクター分子としての使用に好適な抗原認識受容体は、5T4、ADAM9、ADGRE2、AFP、AXL、B7-H3、B7-H4、B7-H6、C4.4、CA6、カドヘリン3、カドヘリン6、CCR1、CCR4、CD117、CD123、CD131、CD133、CD138、CD142、CD166、CD25、CD244、CD30、CD300LF、CD33、CD352、CD37、CD38、CD44、CD56、CD66e、CD70、CD71、CD74、CD79b、CD80、CD93、CEA、CEACAM5、クローディン18.2、CLEC12A、cMet、CSPG4、CTLA、DLK1、DLL3、DR5、EGFR、EMB、ENPP3、EpCAM、EphA2、エフリンA4、ETBR、FGFR2、FGFR3、FRアルファ、FRb、FLT3、GAPT、GCC、GD2、GFRa4、gpA33、GPC3、gpNBM、GPRC5、HER2、IL-1RAP、IL-13R、IL-13Ra、IL-13Ra2、IL-8、IL-15、IL1RAP、インテグリンaV、KIT、L1CAM、LAMP1、LAT2、ルイスY、LeY、LILRA2、LILRB2、LIV-1、LRRC、LY6E、MCSP、メソテリン(MSLN)、MLC1、MS4A3、MUC1、MUC16、MUC1C、MYADM、NaPi2B、ネクチン4、NKG2D、NOTCH3、NY ESO1、Ovarin、P-カドヘリン、汎Erb2、PIEZO1、PRAM1、PSCA、PSMA、PTK7、ROR1、S Aures、SCT、SLAMF7、SLC22A16、SLC17A9、SLITRK6、SPNS3、SSTR2、STEAP1、サバイビン、TDGF1、TIM1、TROP2、VSTM1、及びWT1、またはそれらの任意の組み合わせを含むがこれらに限定されない抗原を認識する。
DIVMSQSPSSLVVSIGEKVTMTCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQSPKLLIYWASSRESGVPDRFTGSGSGTDFTLTISSVKAEDLAVYYCQQYYNYPLTFGAGTKLELK(配列番号127)、または
DIVMTQSPDSLAVSLGERATINCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQPPKLLIYWASSRESGVPDRFSGSGSGTDFTLTISSLQAEDVAVYYCQQYYNYPLTFGQGTKLEIK(配列番号128)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を有するVL領域を含む。
QVQLVESGGGTVQAGGSLKLACAASGLPRTYNVMGWFRQAPGKEREGVAIIYTTTGATYYRDSVKGRATISQDNAKKSVSLQMNSLRPEDTAIYYCVARQPNSGPWEYWGQGTQVTVSS(配列番号129)、または
QVKLEESGGGSVQAGGSLRLSCTTSGYTNSYKWMGWFRQAPGQEREGVAVIYTGNDRTYYSDSVKGRFTISRDNAKNMIYLDMTRLRPEDSAVYECAIGHDGAWRYWGQGTQVTVSS(配列番号130)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を有する単一ドメイン結合ドメインを含む。いくつかの実施形態では、MSLNに結合する抗原結合ドメインは、アミノ酸配列
QVQLVESGGGTVQAGGSLKLACAASGLPRTYNVMGWFRQAPGKEREGVAIIYTTTGATYYRDSVKGRATISQDNAKKSVSLQMNSLRPEDTAIYYCVARQPNSGPWEYWGQGTQVTVSS(配列番号129)、または
QVKLEESGGGSVQAGGSLRLSCTTSGYTNSYKWMGWFRQAPGQEREGVAVIYTGNDRTYYSDSVKGRFTISRDNAKNMIYLDMTRLRPEDSAVYECAIGHDGAWRYWGQGTQVTVSS(配列番号130)
を有する単一ドメイン結合ドメイン由来のCDR配列のそれぞれを含む。いくつかの実施形態では、MSLNに結合する抗原結合ドメインは、アミノ酸配列
QVQLVESGGGTVQAGGSLKLACAASGLPRTYNVMGWFRQAPGKEREGVAIIYTTTGATYYRDSVKGRATISQDNAKKSVSLQMNSLRPEDTAIYYCVARQPNSGPWEYWGQGTQVTVSS(配列番号129)、または
QVKLEESGGGSVQAGGSLRLSCTTSGYTNSYKWMGWFRQAPGQEREGVAVIYTGNDRTYYSDSVKGRFTISRDNAKNMIYLDMTRLRPEDSAVYECAIGHDGAWRYWGQGTQVTVSS(配列番号130)
を有する単一ドメイン結合ドメイン由来の1つ以上のCDR配列を含む。
いくつかの実施形態では、本開示の操作された核酸は、転写後調節エレメント(PRE)を含む。PREは、三次RNA構造の安定性と3’末端形成を可能にすることで遺伝子発現を強化することができる。PREの非限定的な例として、B型肝炎ウイルスPRE(HPRE)及びウッドチャック肝炎ウイルスPRE(WPRE)が挙げられる。いくつかの実施形態では、転写後調節エレメントは、ウッドチャック肝炎ウイルス転写後調節エレメント(WPRE)である。いくつかの実施形態では、WPREは、WPREエレメントのα、β、及びγ成分を含む。いくつかの実施形態では、WPREは、WPREエレメントのα成分を含む。
本明細書ではまた、本開示の1つ以上の操作された核酸を含む細胞、及び細胞の産生方法も提供する。これらの細胞は、本明細書では「操作された細胞」と称される。一般的に1つ以上の操作された核酸を含むこれらの細胞は、自然界では発生しない。いくつかの実施形態では、細胞は、1つ以上の操作された核酸を組換え的に発現する単離された細胞である。いくつかの実施形態では、操作された1つ以上の核酸を、1つ以上のベクターまたは細胞のゲノム由来の選択された遺伝子座から発現させる。いくつかの実施形態では、細胞を、転写因子などの活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)、及び/または抗原認識受容体をコードするヌクレオチド配列に作動可能に連結されたプロモーターを含む第1の核酸を含むように操作する。いくつかの実施形態では、転写因子は、抑制性プロテアーゼ及び同族切断部位を含む。いくつかの実施形態では、転写因子はデグロンを含む。いくつかの実施形態では、ACPは抗原認識受容体である。
本開示の操作された細胞または単離された細胞は、ヒト細胞であり得る。操作された細胞または単離された細胞は、ヒト初代細胞であり得る。操作された初代細胞は、腫瘍浸潤性初代細胞であり得る。操作された初代細胞は、初代T細胞であり得る。操作された初代細胞は、造血幹細胞(HSC)であり得る。操作された初代細胞は、ナチュラルキラー細胞であり得る。操作された初代細胞は、任意の体細胞であり得る。操作された初代細胞は、MSCであり得る。いくつかの実施形態では、操作された細胞は、対象由来である。いくつかの実施形態では、操作された細胞は、対象に関して同種異系である。
本明細書ではまた、本明細書に記載の第1及び第2の発現カセットを含む任意の操作された核酸によってコードされる活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)及び1つ以上のエフェクター分子を生成するように細胞を操作するための組成物及び方法も提供する。
ウイルスベクターベースの送達プラットフォームを使用して、細胞を操作することができる。一般に、ウイルスベクターベースの送達プラットフォームは、宿主細胞に導入する(すなわち、送達する)ことによって細胞を操作する。例えば、ウイルスベクターベースの送達プラットフォームは、本明細書に記載の操作された核酸のいずれかを導入することによって細胞を操作することができる。ウイルスベクターベースの送達プラットフォームは核酸であり得、したがって、操作された核酸には、操作されたウイルス由来の核酸も包含され得る。そのような操作されたウイルス由来の核酸はまた、組換えウイルスまたは操作されたウイルスとも呼ばれ得る。
本開示の操作された核酸(例えば、本明細書に記載の操作された核酸のいずれか)は、脂質媒介送達系を使用して細胞に導入することができる。一般的に、脂質媒介送達系は、内部コンパートメントを包む外部脂質膜からなる構造を使用する。脂質ベースの構造体の例として、脂質ベースのナノ粒子、リポソーム、ミセル、エキソソーム、小胞、細胞外小胞、細胞、または組織が挙げられるが、これらに限定されない。脂質構造送達系は、in vitro、in vivo、またはex vivoで、カーゴ/ペイロード(例えば、本明細書に記載の操作された核酸のいずれか)を送達することができる。
ナノ材料を使用して、操作された核酸(例えば、本明細書に記載の操作された核酸のいずれか)を送達することができる。ナノ材料ビヒクルは、重要なことに、非免疫原性材料で作ることができ、一般的に、その送達ベクター自体に対する免疫を誘発することを回避することができる。これらの材料には、脂質(前述のとおり)、無機ナノ材料、及びその他の高分子材料が含まれるが、これらに限定されない。ナノ材料粒子は、Riley et al.(Recent Advances in Nanomaterials for Gene Delivery-A Review. Nanomaterials 2017,7(5),94)に詳細に記載されており、あらゆる目的のために参照により本明細書に援用される。
ゲノム編集系を使用して、操作された核酸、例えば、本開示の操作された核酸をコードするように宿主ゲノムを操作することができる。一般的に、「ゲノム編集系」は、外来性遺伝子を宿主細胞のゲノムに組み込むための任意の系を指す。ゲノム編集系には、トランスポゾン系、ヌクレアーゼゲノム編集系、及びウイルスベクターベースの送達プラットフォームが含まれるが、これらに限定されない。
操作された核酸(例えば、本明細書に記載の操作された核酸のいずれか)を細胞または他の標的レシピエント実体、例えば、本明細書に記載の脂質構造のいずれかに導入するための様々な追加の手段。
疾患の治療方法もまた、本開示に包含される。当該方法は、上記のように、治療有効量の操作された核酸、操作された細胞、または単離された細胞を投与することを含む。いくつかの態様では、本明細書において、治療を必要とする対象を治療する方法を提供し、方法は、本明細書に開示する治療有効量の操作された細胞、単離された細胞、または組成物のいずれかを投与することを含む。
本明細書で提供する方法はまた、本明細書に記載の操作された細胞を生成することができる(例えば、本明細書に記載の操作された核酸のいずれかをin vivoで細胞に送達することができる)組成物をin vivoで送達することを含む。そのような組成物は、ウイルス媒介送達プラットフォームのいずれか、脂質構造送達系のいずれか、ナノ粒子送達系のいずれか、ゲノム編集系のいずれか、または細胞をin vivoで操作することができる本明細書に記載の他の操作送達系のいずれかを含む。
操作された核酸または操作された細胞を、医薬組成物に製剤化することができる。これらの組成物は、1つ以上の操作された核酸または操作された細胞に加えて、薬学的に許容される賦形剤、担体、緩衝剤、安定剤、または当業者に周知の他の材料を含み得る。そのような材料は無毒性でなければならず、活性成分の有効性を妨げてはならない。担体または他の材料の正確な性質は、投与経路、例えば、経口、静脈内、経皮または皮下、経鼻、筋肉内、腹腔内経路に依存し得る。
本発明の特定の実施形態を説明する、列挙された実施形態を以下に示す。
a)第1のプロモーターと、活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)をコードする第1の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第1の発現カセットであって、
前記第1のプロモーターが、前記第1の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結されている、
前記第1の発現カセット、ならびに
b)ACP応答性プロモーターと、式:
(L-E)X
を有する第2の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第2の発現カセットであって、
式中、
Eが、エフェクター分子をコードするポリヌクレオチド配列を含み、
Lが、リンカーポリヌクレオチド配列を含み、
X=1~20であり、
前記ACP応答性プロモーターが、前記第2の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、前記(L-E)ユニットの第1の反復では、Lが存在しない、
前記第2の発現カセット
を含み、
前記ACPが、前記ACP応答性プロモーターに結合することによって、前記第2の発現カセットの発現を誘導することができる、
前記操作された核酸。
a)第1のプロモーターと、活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)及び抗原認識受容体をコードする第1の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第1の発現カセットであって、
前記第1のプロモーターが、前記第1の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結されている、
前記第1の発現カセット、ならびに
b)ACP応答性プロモーターと、式:
(L-E)X
を有する第2の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第2の発現カセットであって、
式中、
Eが、エフェクター分子をコードするポリヌクレオチド配列を含み、
Lが、リンカーポリヌクレオチド配列を含み、
X=1~20であり、
前記ACP応答性プロモーターが、前記第2の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、前記(L-E)ユニットの第1の反復では、Lが存在しない、
前記第2の発現カセット
を含み、
前記ACPが、前記ACP応答性プロモーターに結合することによって、前記第2の発現カセットの発現を誘導することができる、
前記操作された核酸。
a)第1のプロモーターと、抗原認識受容体をコードする第1の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第1の発現カセットであって、
前記第1のプロモーターが、前記第1の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結されている、
前記第1の発現カセット、ならびに
b)活性化条件付き制御ポリペプチド応答性(ACP応答性)プロモーターと、式:
(L-E)X
を有する第2の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第2の発現カセットであって、
式中、
Eが、エフェクター分子をコードするポリヌクレオチド配列を含み、
Lが、リンカーポリヌクレオチド配列を含み、
X=1~20であり、
前記ACP応答性プロモーターが、前記第2の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、
前記(L-E)ユニットの第1の反復では、Lが存在しない、
前記第2の発現カセット
を含む、前記操作された核酸。
前記VHが、
KNAMN(配列番号119)のアミノ酸配列を有する重鎖相補性決定領域1(CDR-H1)、
RIRNKTNNYATYYADSVKA(配列番号120)のアミノ酸配列を有する重鎖相補性決定領域2(CDR-H2)、及び
GNSFAY(配列番号121)のアミノ酸配列を有する重鎖相補性決定領域3(CDR-H3)を含み、ならびに
前記VLが、
KSSQSLLYSSNQKNYLA(配列番号122)のアミノ酸配列を有する軽鎖相補性決定領域1(CDR-L1)、
WASSRES(配列番号123)のアミノ酸配列を有する軽鎖相補性決定領域2(CDR-L2)、及び
QQYYNYPLT(配列番号124)のアミノ酸配列を有する軽鎖相補性決定領域3(CDR-L3)を含む、
実施形態53または実施形態55に記載の操作された核酸。
EVQLVETGGGMVQPEGSLKLSCAASGFTFNKNAMNWVRQAPGKGLEWVARIRNKTNNYATYYADSVKARFTISRDDSQSMLYLQMNNLKIEDTAMYYCVAGNSFA YWGQGTLVTVSA(配列番号125)または
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFNKNAMNWVRQAPGKGLEWVGRIRNKTNNYATYYADSVKARFTISRDDSKNSLYLQMNSLKTEDTAVYYCVAGNSFAYWGQGTLVTVSA(配列番号126)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、実施形態56に記載の操作された核酸。
DIVMSQSPSSLVVSIGEKVTMTCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQSPKLLIYWASSRESGVPDRFTGSGSGTDFTLTISSVKAEDLAVYYCQQYYNYPLTFGAGTKLELK(配列番号127)、または
DIVMTQSPDSLAVSLGERATINCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQPPKLLIYWASSRESGVPDRFSGSGSGTDFTLTISSLQAEDVAVYYCQQYYNYPLTFGQGTKLEIK(配列番号128)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、実施形態56または実施形態57に記載の操作された核酸。
QVQLVESGGGTVQAGGSLKLACAASGLPRTYNVMGWFRQAPGKEREGVAIIYTTTGATYYRDSVKGRATISQDNAKKSVSLQMNSLRPEDTAIYYCVARQPNSGPWEYWGQGTQVTVSS(配列番号129)、または
QVKLEESGGGSVQAGGSLRLSCTTSGYTNSYKWMGWFRQAPGQEREGVAVIYTGNDRTYYSDSVKGRFTISRDNAKNMIYLDMTRLRPEDSAVYECAIGHDGAWRYWGQGTQVTVSS(配列番号130)
のアミノ酸配列を有する単一ドメインモノクローナル抗体の3つの相補性決定領域(CDR)を含む、実施形態54または実施形態55に記載の操作された核酸。
FNVLMVHKRSHTGERPLQCEICGFTCRQKGNLLRHIKLHTGEKPFKCHLCNYACQRRDAL(配列番号131)
のアミノ酸配列を有するIKZF3/ZFP91/IKZF3キメラ融合産物である、実施形態97に記載の操作された核酸。
a)第1のプロモーターと、活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)をコードする第1の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第1の発現カセットであって、
前記第1のプロモーターが、前記第1の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結されている、
前記第1の発現カセット、ならびに
b)ACP応答性プロモーターと、式:
(L-E)X
を有する第2の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第2の発現カセットであって、
式中、
Eが、エフェクター分子をコードするポリヌクレオチド配列を含み、
Lが、リンカーポリヌクレオチド配列を含み、
X=1~20であり、
前記ACP応答性プロモーターが、前記第2の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、前記(L-E)ユニットの第1の反復では、Lが存在しない、
第2の発現カセット
を含み、
前記ACPが、前記ACP応答性プロモーターに結合することによって、前記第2の発現カセットの発現を誘導することができる、
前記操作された細胞。
a)第1のプロモーターと、活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)及び抗原認識受容体をコードする第1の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第1の発現カセットであって、
前記第1のプロモーターが、前記第1の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結されている、
前記第1の発現カセット、ならびに
b)ACP応答性プロモーターと、式:
(L-E)X
を有する第2の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第2の発現カセットであって、
式中、
Eが、エフェクター分子をコードするポリヌクレオチド配列を含み、
Lが、リンカーポリヌクレオチド配列を含み、
X=1~20であり、
前記ACP応答性プロモーターが、前記第2の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、前記(L-E)ユニットの第1の反復では、Lが存在しない、
第2の発現カセット
を含み、
前記ACPが、前記ACP応答性プロモーターに結合することによって、前記第2の発現カセットの発現を誘導することができる、
前記操作された細胞。
a)第1のプロモーターと、抗原認識受容体をコードする第1の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第1の発現カセットであって、
前記第1のプロモーターが、前記第1の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結されている、
前記第1の発現カセット、ならびに
b)活性化条件付き制御ポリペプチド応答性(ACP応答性)プロモーターと、式:
(L-E)X
を有する第2の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第2の発現カセットであって、
式中、
Eが、エフェクター分子をコードするポリヌクレオチド配列を含み、
Lが、リンカーポリヌクレオチド配列を含み、
X=1~20であり、
前記ACP応答性プロモーターが、前記第2の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、前記(L-E)ユニットの第1の反復では、Lが存在しない、
第2の発現カセット
を含む、前記操作された細胞。
前記VHが、
KNAMN(配列番号119)のアミノ酸配列を有する重鎖相補性決定領域1(CDR-H1)、
RIRNKTNNYATYYADSVKA(配列番号120)のアミノ酸配列を有する重鎖相補性決定領域2(CDR-H2)、及び
GNSFAY(配列番号121)のアミノ酸配列を有する重鎖相補性決定領域3(CDR-H3)
を含み、ならびに
前記VLが、
KSSQSLLYSSNQKNYLA(配列番号122)のアミノ酸配列を有する軽鎖相補性決定領域1(CDR-L1)、
WASSRES(配列番号123)のアミノ酸配列を有する軽鎖相補性決定領域2(CDR-L2)、及び
QQYYNYPLT(配列番号124)のアミノ酸配列を有する軽鎖相補性決定領域3(CDR-L3)を含む、
実施形態245または実施形態247に記載の操作された細胞。
EVQLVETGGGMVQPEGSLKLSCAASGFTFNKNAMNWVRQAPGKGLEWVARIRNKTNNYATYYADSVKARFTISRDDSQSMLYLQMNNLKIEDTAMYYCVAGNSFAYWGQGTLVTVSA(配列番号125)または
EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFNKNAMNWVRQAPGKGLEWVGRIRNKTNNYATYYADSVKARFTISRDDSKNSLYLQMNSLKTEDTAVYYCVAGNSFAYWGQGTLVTVSA(配列番号126)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、実施形態248に記載の操作された細胞。
DIVMSQSPSSLVVSIGEKVTMTCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQSPKLLIYWASSRESGVPDRFTGSGSGTDFTLTISSVKAEDLAVYYCQQYYNYPLTFGAGTKLELK(配列番号127)、または
DIVMTQSPDSLAVSLGERATINCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGQPPKLLIYWASSRESGVPDRFSGSGSGTDFTLTISSLQAEDVAVYYCQQYYNYPLTFGQGTKLEIK(配列番号128)
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、実施形態248または実施形態249に記載の操作された細胞。
QVQLVESGGGTVQAGGSLKLACAASGLPRTYNVMGWFRQAPGKEREGVAIIYTTTGATYYRDSVKGRATISQDNAKKSVSLQMNSLRPEDTAIYYCVARQPNSGPWEYWGQGTQVTVSS(配列番号129)、または
QVKLEESGGGSVQAGGSLRLSCTTSGYTNSYKWMGWFRQAPGQEREGVAVIYTGNDRTYYSDSVKGRFTISRDNAKNMIYLDMTRLRPEDSAVYECAIGHDGAWRYWGQGTQVTVSS(配列番号130)
のアミノ酸配列を有する単一ドメインモノクローナル抗体の3つの相補性決定領域(CDR)を含む、実施形態246または実施形態247に記載の操作された細胞。
FNVLMVHKRSHTGERPLQCEICGFTCRQKGNLLRHIKLHTGEKPFKCHLCNYACQRRDAL(配列番号131)
のアミノ酸配列を有するIKZF3/ZFP91/IKZF3キメラ融合産物である、実施形態289に記載の操作された細胞。
(L-E)X
を有する追加の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む追加の発現カセットをさらに含み、
式中、
Eが、エフェクター分子をコードするポリヌクレオチド配列を含み、
Lが、リンカーポリヌクレオチド配列を含み、
X=1~20であり、
前記追加のプロモーターが、前記追加の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、前記(L-E)ユニットの第1の反復では、Lが存在しない、
実施形態188~299のいずれか一項に記載の操作された細胞。
エフェクター遺伝子の発現を駆動するための抑制性プロテアーゼ及びプロテアーゼ切断部位を有する例示的なジンクフィンガー転写因子(調節性TF)を構築した。調節性TFは、NS3プロテアーゼ、NS3切断部位、及び転写因子の活性化ドメインに結合したジンクフィンガー(ZF)DNA結合ドメインである(図1A、ZFドメインは、上部パネルの図の左側に示されている円であり、NS3プロテアーゼは、上部パネルの図の中央に示されている部分的な円であり、活性化ドメインは上部パネルの図の右側に示されている正方形である)。図1Aに記載されている完全構築物は、活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)の例である。調節性TFの発現は、構成的SFFVプロモーターを介して駆動される。未処理の細胞(例えば、プロテアーゼ阻害剤の非存在下)では、調節性TFタンパク質が生成されるが、NS3プロテアーゼが、調節性TFタンパク質のZF DNA結合ドメインから活性化ドメインを自己切断し、これにより、TFタンパク質がエフェクター遺伝子の発現を誘導することが阻害される。しかしながら、アスナプレビル(ASV)などのプロテアーゼ阻害剤の存在下では、NS3プロテアーゼが阻害され、調節性TFタンパク質が安定化される。次いで、調節性TFが、ZF DNA結合ドメインを介してZF特異的プロモーター領域に結合し、エフェクター遺伝子の発現を促進する。ZF特異的DNA配列は、図1、2、3、4、及び5において、BD(結合ドメイン)と称されている。
T細胞を解凍し、10U/mLhrIL-2を含有するX-Vivo10(商標)(X Lonza)培地中で静置した(0日目)。1日目に、T細胞を、3:1比率のCD3/CD28 Dynabeads(Dynabeads T-activator)で活性化し、100U/mL hrIL-2を補充した。2日目に、各レンチウイルスについて、1×105GV(GoStix値)ユニットのレンチウイルスベクターを使用して、T細胞にACP TFベクター及びACP TF誘導性mCherryベクターを同時形質導入した。ダイナビーズを3日目に除去し、T細胞を、100U/mL hrIL-2の新鮮な培地中で1×106細胞/mlに希釈した。6日目に、T細胞を、100U/mL hrIL-2を含有する新鮮な培地X-vivo10中に、2.5μMアスナプレビル(ASV)の存在下または非存在下で継代した。T細胞をさらに2日間インキュベートし、8日目に回収してフローサイトメトリーでmCherryの発現を評価した。
両方のデュアルベクター系は、アスナプレビル添加時にT細胞内でmCherry発現の誘導を示した(図1B及び1D)。いずれの場合も高レベルのmCherryを発現している細胞は、調節性TFとmCherryベクターの両方を受け取った、同時形質導入された細胞を表している可能性が高い。形質導入されたがアスナプレビルで処理していない細胞が形質導入されていない細胞を上回るmCherry発現を示したことから、minCMVデュアルベクター系は、mCherryの漏出発現を示した可能性が高い(図1B)。対照的に、minYB_TATAデュアルベクター系は、形質導入されたがアスナプレビルで処理していない細胞が形質導入されていない細胞を上回るmCherry発現をほとんど示さなかったことから、漏出発現が最小限であることを示している(図1D)。アスナプレビルを添加して調節性TFの分解を阻害すると、mCherryが形質導入細胞内で発現したが、このことは、mCherryの発現が主に調節性TFにより誘導される転写によるものであることを示している。
単一ベクターのTF及びエフェクター遺伝子発現系を評価した。
図2A及び図3Aに示すように、2つの調節性TF及びエフェクター遺伝子発現カセットを構築した。図2Aでは、minTKプロモーター及び4×ZF結合配列(ZF-BD)を有するIL-10エフェクター遺伝子を、薬物誘導性プロモーター及び調節性TFの5’末端の上流に、3’から5’方向に配置した。図3Aでは、minTKプロモーター及び4×ZF結合配列(ZF-BD)を有するIL-12エフェクター遺伝子を、薬物誘導性プロモーター及び調節性TFの5’末端の上流に、3’から5’方向に配置した。
調節性TF誘導性IL-10単一ベクターで形質導入したT細胞は、アスナプレビルの非存在下で形質導入したT細胞と比較して、NS3プロテアーゼ活性を阻害するためにアスナプレビルの添加した後に、分泌IL-10レベルの6倍の増加を示した(図2B)。GFPベクターで形質導入された対照細胞は、IL-10を産生しなかった。したがって、単一ベクターの調節性TF系は、薬物によって調節されるサイトカイン産生が可能である。
追加のタンパク質の共発現を伴う単一ベクターの調節性TF及びエフェクター遺伝子発現系を評価した。
図4Aに示すように、調節性TF及びレポーター遺伝子発現カセットを構築した。調節性TF遺伝子を、調節性TF遺伝子の3’末端にある2Aリンカーを介してmycタグ付きキメラ抗原受容体(CAR)に連結した。minYB_TATAプロモーターと4×ZF結合配列(ZF-BD)を備えたmCherryレポーター遺伝子を、薬物誘導性プロモーター及び連結された調節性TF-CAR遺伝子の5’末端の上流に3’から5’の方向に配置した。
図4Bに示すように、mycタグ付きCARは、アスナプレビル処理細胞と未処理細胞の両方で同様のレベルで発現していたが、このことは、調節性TFがJurkat細胞内でCARと共発現できることを示している。調節性TFにおけるプロテアーゼの存在及び活性は、調節性TFに連結されたCARタンパク質の発現または安定性に影響を及ぼさなかった。このことは、調節性TF系がCAR-T細胞内で機能できることを示している。
CAR及びペイロード/サイトカインの発現は、「アーマリング」細胞用のCAR構築物及びエフェクター遺伝子発現系を同時形質導入した細胞で評価した。ペイロード/サイトカイン発現は、CAR構築物と共に、または伴わずにエフェクター遺伝子発現系を形質導入した細胞で評価した。
エフェクター遺伝子(例えば、目的のサイトカインペイロード)発現カセットを構築し、ウイルスベクターにクローニングし、次いでペイロードウイルスを産生するために使用した(表10を参照のこと)。肝臓癌で高度かつ特異的に発現するタンパク質であるGPC3を標的とするCAR構築物[Sun et al,Medical Science Monitor,2017]を、図6Aに示すように構築し(構築物「1106」)、ウイルスベクターにクローニングし、GPC3-CARウイルスを産生するために使用した。GPC3-CARをYFPレポーターに融合させて発現をモニタリングした。
CARの発現を、エフェクター分子(例えば、サイトカイン)ペイロードを発現するようにさらに操作した細胞で評価した。図6B及び図7(下部パネル)に示すように、GPC3-CARは、形質導入の4日後に、形質導入された細胞の25.0~58.2%で発現していた。図7(上部パネル)に示すように、YFP MFIによって評価されるGPC3-CAR発現レベルは、GPC3-CARウイルスのみ(「1106」)による形質導入と、試験した異なるペイロード構築物との間で一般的に同等であった。表11に示すように、生存率もまた、GPC3-CARウイルスのみ(「1106」)による形質導入と、試験した異なるペイロード構築物との間で一般的に同等であった。したがって、CARの発現及び生存率は、アーマリングエフェクター分子ペイロードを使用した操作によって有意に変化することはなかった。
CAR発現、ペイロード/サイトカイン発現、及び抗腫瘍活性を、「アーマリング」細胞用のCAR構築物及びエフェクター遺伝子発現系を同時形質導入した細胞で評価した。
エフェクター遺伝子(例えば、目的のサイトカインペイロード)発現カセットを構築し、ウイルスベクターにクローニングし、次いでペイロードウイルスを産生するために使用した(表12を参照のこと)。肝臓癌で高度かつ特異的に発現するタンパク質であるGPC3を標的とするCAR構築物(Sun et al,Medical Science Monitor,2017)を、図11Aに示すように構築し(構築物「1108」)、ウイルスベクターにクローニングし、GPC3-CARウイルスを産生するために使用した。GPC3-CARをYFPレポーターに融合させて発現をモニタリングした。
CARの発現を、アーマリングサイトカインペイロードを発現するようにさらに操作したT細胞で評価した。図11Bに示すように、GPC3-CARは、形質導入の4日後に、試験したすべての構築物の54%以上で、6つの構築物のうちの5つの構築物の99%以上で発現していた。次に、サイトカインのペイロード発現を評価した。表13に示すように、操作されたCAR T細胞は、それぞれのペイロードサイトカインを発現した。
ペイロードの発現を、調節性TF発現系を使用して評価した。
様々な調節性TF(薬物誘導型の活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)または「synTF」とも呼ばれる)及び発現カセットを、図17Aに示すように構築した。転写因子活性の調節は、ジンクフィンガー及びP65活性化モチーフ、ならびに調節性TF(「565」)のタモキシフェン制御核局在化を可能にするERT2配列を融合させることによって構築した。レポーターペイロード配列は、調節性TFとは別の構築物上の誘導性制御(YB-TATAプロモーターによって駆動されるmCherry及び4×ZF結合配列「ZFBD」)の下で、反対方向のSFFVプロモーターによって発現するGPC3-CAR-YFP構築物と共に(「2235」)または含めずに(「1066」)構築した。カセットをウイルスベクターにクローニングし、ウイルスを産生するために使用した。
ERT2の調節性TF系を、4-ヒドロキシタモキシフェン(4-OHT)、N-デスメチルタモキシフェン、またはエンドキシフェンを使用して評価した。図17Bに示すように、4-OHT処理は、単独での発現(左パネル)またはCAR構築物もコードする構築物からの発現(右パネル)のいずれにおいても、調節可能かつ滴定可能なレポーター発現をもたらした。図17Cに示すように、N-デスメチルタモキシフェン処理は、単独での発現(左パネル)及びCAR構築物もコードする構築物からの発現(右パネル)の両方で、薬物なしの対照と比較して、レポーターの発現をもたらさなかった。図17Dに示すように、エンドキシフェン処理は、単独での発現(左パネル)またはCAR構築物もコードする構築物からの発現(右パネル)のいずれにおいても、調節可能かつ滴定可能なレポーター発現をもたらした。結果の概要を図17Eに示す。図18及び図19に示すように、CARの発現が確認され、未処置のものから最高濃度の薬物を処置したものにわたって同等であった。したがって、結果は、T細胞をERT2調節性TF系で操作して、CAR T系を含め、4-OHTまたはエンドキシフェンを使用してペイロードの調節可能で滴定可能な発現を生成することができることを示している。
CAR及び調節性TF発現系のデュアル操作のための様々な戦略を評価した。
CAR及び調節性TF発現系のデュアル操作のための様々な戦略を図20及び図21に示し、試験した様々な方向、成分、及び2つのベクター構築物を記載する。
様々な方向、成分、及び2つのベクター構築物を試験して、CARの発現、特にペイロードベクター、調節性TFベクター上に、または単独でエンコードした場合にCARの発現が向上するかどうかを評価した。図22に示すように、図21に記載する様々な戦略を評価することにより、調節性TF(ACP)をコードするベクター上ではなく、レポーターペイロードを有するベクター上にコードされた場合にのみ、CAR発現が検出されたことが示された。図23A及び図23Bに示すように、1つのベクター上にペイロード及びCARをコードし、別のベクター上に調節性TFをコードする戦略により、CAR及びレポーターを発現する形質導入細胞が約50%得られ、その大部分が両方を共発現していた。図24A及び図24Bに示すように、1つのベクター上でペイロード及び調節性TFをコードし、別のベクター上にCARをコードする戦略により、CARとレポーターを共発現する形質導入細胞が約65%得られ、誘導後にレポーターを発現する形質導入細胞が全体として約35%得られた。したがって、この結果は、(1)ペイロードと同じベクター上にCARを、別のベクター上に調節性TFをコードすると、誘導(ペイロード/レポーター陽性)状態の細胞がより多く生成され、(2)ペイロードと調節性TFを1つのベクター上にコードし、CARを別のベクターにコードすると、より多くのCAR発現細胞が生成されたことを示している。
調節性TF発現系をin vitro及びin vivoの両方で評価した。
NS3/NS4プロテアーゼ切断部位及びVPR転写エフェクタードメイン(構築物「1845」)を使用する薬物誘導型のACP(「synTF」とも呼ばれる)、ならびにhIL-12エフェクター分子ペイロードを駆動する4xBS minYB-TATA ACP応答性プロモーターを使用する発現カセットの概略図を図25に示す。構成的SFFVプロモーターによって駆動されるhIL-12を有する構築物(構築物「171」)も評価した。構築物の関連する配列を表14に示す。
図26に示すように、NS3/NS4プロテアーゼ切断部位及びVPR転写エフェクタードメイン(構築物「1845」)を使用する、薬物誘導型のACPを有する調節性発現系(「synTF」とも呼ばれる)ならびにhIL-12エフェクター分子ペイロードを駆動する4×BS minYB-TATA ACP応答性プロモーターを使用する発現カセットは、GRZの量を増やして加えると、in vitroで滴定可能なhIL-12分泌をもたらし、薬物の非存在下では最小限のhIL-12が検出され、ウイルスの非存在下ではhIL-12は検出されなかった。
CAR-Tが標的細胞によって活性化された場合に転写をオンにするエンハンサーを評価する。
ライブラリー生成:最小プロモーター(後期Ade最小プロモーター)に連結した15,000種のエンハンサーのライブラリーを生成し、CAR-Tが標的細胞によって活性化された場合に転写をオンにするエンハンサーをスクリーニングした。活性化T細胞のATAC-seqで富化したエンハンサー(Gate et al. Nat Genet. Author manuscript;PMC 2019 Jan 9で入手可能;あらゆる目的で参照により本明細書に援用される)をライブラリー用に選択した(<400bpのすべてのエンハンサーを使用した)。ライブラリーメンバーの長さは199bpであるため、199bpより長いエンハンサーの場合、タイリングを使用して、各エンハンサーの2つの領域を可能な限りオーバーラップさせた。単一細胞RNAseqデータ(Xhangolli et al. Genomics Proteomics Bioinformatics. 2019 Apr;17(2):129-139. doi: 10.1016/j.gpb.2019.03.002;あらゆる目的のために参照により本明細書に援用される)における上位の上方制御された遺伝子を、ヒトエンハンサーのHACERデータベースで検索し、それらの遺伝子からエンハンサーを選択した。合成エンハンサーは、活性化T細胞で上方制御されることが文献から知られている転写因子のペアを使用して設計した。各TFの4つの結合部位を使用して、合成エンハンサー(aaaabbbbまたはababababのいずれか)を生成した。以下のTFのリストに由来する可能なすべてのペアが含められた:ATF2、ATF7、BACH1、BATF、Bcl-6、Blimp-1、BMI1、CBFB、CREB1、CREM、CTCF、E2F1、EBF1、EGR1、ETV6、FOS、FOXA1、FOXA2、GATA3、HIF1A、IKZF1、IKZF2、IRF4、JUN、JUNB、JUND、Lef1、NFAT、NFIA、NFIB、NFKB、NR2F1、Nur77、PU.1、RELA、RUNX3、SCRT1、SCRT2、SP1、STAT4、STAT5A、T-Bet、Tcf7、ZBED1、ZNF143、及びZNF217。
CAR-Tが標的細胞によって活性化された場合の転写の増強について、エンハンサーのライブラリー及び選択した候補をスクリーニングする。CAR-Tが標的細胞によって活性化された場合に転写をオンにするエンハンサーを評価する。
様々な調節性TF発現系戦略について、IL-12及び/またはIL-15ペイロードの発現をT細胞で評価した。戦略には、CAR構築物の共発現が含まれており、CAR活性を評価した。
in vitro評価のために、0日目に、CD4/CD8 T細胞(ドナー由来)を解凍し、24ウェルプレートに1e6細胞/mL/ウェルで播種し、完全T細胞培地(Optimizer+Supplements-Gibco+5%ヒト血清)+rhIL-2(100ユニット/ml;Peprotech)中で、抗CD3/CD28 Dynabeads(3:1 ビーズ対細胞)で活性化した。1日目に、0.5mlの培地を除去し、示された構築物ごとに3e5pgのウイルスを細胞に形質導入した(構築物の関連配列を表17に示す)。2日目に、1.5mLのOptimizer培地+100U/mL rhIL-2を加えた。4日目の細胞を計数し、1e6細胞/ウェルを最終容量8mLで24ウェルGrexプレートに移した。8日目に、6mLの培地をウェルから取り出し、細胞を計数し、グラゾプレビル(2、1、0.5、0.1、0.05、0.01μM、及び薬物なし)を含有する新鮮な培地に1e6細胞/mLの濃度で播種した。ペイロード誘導及びT細胞傷害を測定するために、2枚並列で細胞プレートに播種した。8日目に、フローサイトメトリーによって細胞のCAR発現も評価した。形質導入したT細胞をさらに2日間インキュベートし、IL-12及びIL-15の定量化のために遠心分離によって上清を回収した。IL-12及びIL-15について、Luminex(R&D IL12/IL15)によって上清を分析した。
様々な調節性TF発現系戦略及び構築物について、IL-12及び/またはIL-15ペイロードの発現をT細胞で評価した。NS3/NS4プロテアーゼ切断部位及びVPR転写エフェクタードメイン(SB01845)を使用した薬物誘導型ACP(「synTF」とも呼ばれる)、またはリンカーを短縮し、構築物のコドン全体を最適化したACPの修正バージョン(SB02110)を評価した。すべてのペイロード構築物(SB02661、SB02662、SB02664、SB02665)は、SFFVプロモーターによって駆動されるGPC3-CARをコードし、すべてのサイトカインペイロードには、A2インシュレーター、及びCARカセットとは反対方向に発現を駆動するプロモーターが含まれていた(例えば、図20中の構築物「2235」内のレポーター及びCARカセットを参照のこと)。誘導性synTFプロモーターは、YB-TATAプロモーター(SB02661、SB02662)またはminTK(SB02664、SB02665)のいずれかに由来した。系の概要を、図32に示すように評価した。それぞれSFFVによって駆動される構成的hIL-12及びIL-15をそれぞれコードするSB00171及びSB01335を対照として使用した。
様々な調節性TF発現系戦略について、IL-12ペイロードの発現をNK細胞で評価した。戦略には、CAR構築物の共発現が含まれており、CAR発現を評価した。
in vitro評価のために、0日目に開始し、NK細胞(健康なドナーのPBMCから単離したiCD3-CD56細胞)をmitoC WT K562細胞、500U/ml rhIL-2、及び10ng/ml rhIL-15の存在下で10日間増殖させた。10日目に、細胞を大量のPBSでスピンダウンし、血清またはサプリメントを含まない10e6/mL濃度のNK MACS培地(Miltenyi)に再懸濁した。次いで、細胞を1e6細胞(100ul)細胞+1ulの1:10 BX795(Tocris Bioscience カタログ番号4318)に48ウェルレトロネクチンコーティング非TC処理プレートに30分間播種し、MOI=25(IU)でウイルスを加え(示された各構築物の各ウイルスのMOI=12.5;構築物の関連する配列を表17に示す)、続いて200ulのNK MACS培地(血清/サプリメントなし)を加えた。次いで、細胞とウイルスをスピノキュレートした(32℃で800g 2時間、37℃インキュベーターで2時間プレートを静置し、完全NK MACS培地+500U/mLのrhIL-2の24ウェルGrexプレートに細胞を移す)。14日目に、培地を部分的に交換して5mlの培地を除去し、新鮮な培地+rhIL-2(500U/mL)を補充した。17日目に細胞を計数し、必要な数の細胞を新鮮な完全培地+500U/mL rhIL2でスピンダウンした。細胞を、漸増濃度のグラゾプレビル(1、0.1、0.01、0.01μM GRZ、薬物なし)中で、U底96ウェルプレートに0.2e6細胞/200ul/ウェルで播種した。12、19、及び21日目(それぞれ24、48、96時間)に、細胞をV底プレートに移し、スピンダウンし、Luminex(IL-12 Milliplexキット)を使用した分析のために上清を保存した。フローサイトメトリーによって細胞のCAR発現も評価した。
様々な調節性TF発現系戦略及び構築物について、IL-12ペイロードの発現をNK細胞で評価した。NS3/NS4プロテアーゼ切断部位及びVPR転写エフェクタードメイン(SB01845)を使用した薬物誘導型ACP(「synTF」とも呼ばれる)、またはリンカーを短縮し、構築物のコドン全体を最適化したACPの修正バージョン(SB02110)を評価した。ペイロード構築物SB02661は、SFFVプロモーターによって駆動されるGPC3-CARをコードし、IL-12サイトカインペイロードは、A2インシュレーター及びCARカセットとは反対方向に発現を駆動するYB-TATAプロモーターを含むカセットにコードした(例えば、図20中の構築物「2235」内のレポーター及びCARカセットを参照のこと)。
IL-12及び/またはIL-15ペイロード発現を、異なる転写活性化因子の評価及び別個にまたはマルチシストロン系でコードされるサイトカインの産生を含む、追加の様々な調節性TF発現系戦略について、T細胞で評価した。
in vitro評価のために、0日目に、CD4/CD8 T細胞(ドナー由来)を解凍し、24ウェルプレートに1e6細胞/mL/ウェルで播種し、完全T細胞培地(Optimizer+Supplements-Gibco+5%ヒト血清)+rhIL-2(100ユニット/ml;Peprotech)中で、抗CD3/CD28 Dynabeads(3:1 ビーズ対細胞)で活性化した。1日目に、0.5mlの培地を除去し、示された構築物ごとに3e5pgのウイルスを細胞に形質導入した(構築物の関連配列を表22に示す)。2日目に、1.5mLのOptimizer培地+100U/mL rhIL-2を加えた。4日目の細胞を計数し、1e6細胞/ウェルを最終容量8mLで24ウェルGrexプレートに移した。8日目に、6mLの培地をウェルから取り出し、細胞を計数し、グラゾプレビル(2、1、0.5、0.1、0.05、0.01μM、及び薬物なし)を含有する新鮮な培地に1e6細胞/mLの濃度で播種した。形質導入したT細胞をさらに2日間インキュベートし、IL-12及びIL-15の定量化のために遠心分離によって上清を回収した。IL-12及びIL-15について、Luminex(R&D IL12/IL15キット)によって上清を分析した。
様々な調節性TF発現系戦略及び構築物について、IL-12及び/またはIL-15ペイロードの発現をT細胞で評価した。NS3/NS4プロテアーゼ切断部位及びVPR転写エフェクタードメイン(構築物SB02667及びSB02668)またはp65転写エフェクタードメイン(構築物SB02670及びSB02671)のいずれかを使用する薬物誘導型ACP(「synTF」とも呼ばれる)を評価した。サイトカインペイロードをコードするすべての構築物は、A2インシュレーター及びACPカセットとは反対の方向に発現を駆動するYB-TATAプロモーターを含んでいた(例えば、図20中の構築物「1560」内のレポーター及びACP/synTFカセットの方向を参照のこと)。系の概要を、図38に示すように評価した。
様々なGrz投与及びT細胞注射レジメンを含む調節性TF発現系を、in vitro及びin vivoの両方で評価した。
in vivo評価のために、T細胞にSB01845及びSB02357(「誘導性IL-12」)を形質導入し、HEK細胞でのウイルス力価測定に基づいて、それぞれ推定MOIを5とした。対照T細胞(「構成的IL-12」)に、SFFVによって駆動される構成的hIL-12をコードする5MOIのSB00171を形質導入した。陰性対照は非形質導入T細胞であった。T細胞に組み込まれたレンチウイルスゲノムの数を、PCRによってまとめて分析した(コピー数アッセイ)。NSGマウスを-2日目に無作為化し、ビヒクルまたはグラゾプレビル(Grz)の投与を1日目の午後に開始した(ビヒクル:2.5%DMSO、30%PEG400、67.5%PBS)。グラゾプレビルカリウム塩を、DMSO、PEG400、及びPBSに順次溶解し、10mg/mLにした。すべてのGrz投与は腹腔内投与した。示されているように、マウスあたり20e6個のT細胞を尾静脈注射によって注射した。特定のGrz投与及びT細胞注射レジメンを以下の表に示す。Luminexアッセイを実行して、マウス血漿中のhIL-12のレベルを評価した。マウス血液中のヒトT細胞の存在をフローサイトメトリーで分析した。
表25に記載されているように、最初の一連のグラゾプレビル(Grz)投与レジメンを評価した。
CAR細胞が標的細胞によって活性化された場合に転写をオンにするプロモーターを評価する。
候補の選択:同族の標的細胞の存在下または非存在下で培養したCAR-T細胞の単一細胞RNA-seqデータ(Xhangolli et al. Genomics Proteomics Bioinformatics.2019 Apr;17(2):129-139. doi: 10.1016/j.gpb.2019.03.002、あらゆる目的のために参照により本明細書に援用される)を使用して、休止CAR-T細胞と比較して活性化CAR-T細胞で上方制御された上位遺伝子を同定し、同定したそれらの遺伝子の2kb上流から-100bpまでの領域を候補プロモーターとして選択した。
CAR-Tを標的細胞と共培養した場合、転写を増強するために候補をスクリーニングし、フローサイトメトリーの結果を、図51に示す24時間及び図52に示す48時間の標的細胞との培養について示した。5×NFAT BS min AdePro構築物(「2096」、配列番号154)は、24時間と48時間の両方で標的細胞と共に培養した場合、レポーター発現の増加を示したが、特に、この構築物は、標的細胞の非存在下で高いベースレベルのレポーター発現を有していた。24時間及び48時間の時点で、トリミングされたCCL3(「2935」)が、標的細胞と共に培養した場合にレポーター発現の増加を示し、特に、全般的に標的細胞の非存在下でのバックグラウンドと同等のレポーター発現を示すものとして同定された。24時間の時点では、トリミングされたCCL4(「2936」)もまた、標的細胞と共に培養した場合にレポーター発現の増加を示し、特に、全般的に標的細胞の非存在下でのバックグラウンドと同等のレポーター発現を示すものとして同定された。48時間の時点では、トリミングされたMT2a(「2942」)もまた、標的細胞と共に培養した場合にレポーター発現の増加を示し、標的細胞の非存在下でのバックグラウンドを約3倍上回るレポーター発現を示すものとして同定された。レポーター発現及びそれらの対照(HepG2標的なしで培養したCARのみ、HepG2標的とともに培養したCARのみ、HepG2標的なしで培養したCAR+プロモーター)を示す同定されたプロモーターのヒストグラムを図53に示し、MFIによって評価した倍率変化を表28に示す。同定したプロモーターの配列を表29に示す。データは、CAR細胞が標的細胞によって活性化される場合に転写をオンにするプロモーターが同定されたことを示した。
グラゾプレビルまたはグラゾプレビル/エルバスビルの組み合わせのいずれかを使用して、様々な調節性TF発現系戦略について、IL-12ペイロードの発現をT細胞で評価した。
in vitro評価のために、0日目に、CD4/CD8 T細胞(ドナー由来)を解凍し、24ウェルプレートに1e6細胞/mL/ウェルで播種し、完全T細胞培地(Optimizer+Supplements-Gibco+5%ヒト血清)+rhIL-2(100ユニット/ml;Peprotech)中で、抗CD3/CD28 Dynabeads(3:1 ビーズ対細胞)で活性化した。1日目に、0.5mlの培地を除去し、示された構築物ごとに3e5pgのウイルスを細胞に形質導入した(構築物の関連配列を表17に示す)。2日目に、1.5mLのOptimizer培地+100U/mL rhIL-2を加えた。7日目の細胞を、グラゾプレビル(2、1、0.5、0.1、0.05、0.01、005μM、及び薬物なし)で、Zepatier(登録商標)中の化合物の比率に合わせて、それぞれ2:1の比率でエルバスビルの存在下または非存在下で処理した。形質導入したT細胞をさらに2日間インキュベートし、IL-12の定量化のために遠心分離によって上清を回収し、Luminex(R&D IL12)で評価した。
様々な調節性TF発現系戦略及び構築物について、IL-12ペイロードの発現をT細胞で評価した。NS3/NS4プロテアーゼ切断部位及びVPR転写エフェクタードメイン(SB01845)を使用した薬物誘導型ACP(「synTF」とも呼ばれる)、またはリンカーを短縮し、構築物のコドン全体を最適化したACPの修正バージョン(SB02110)を評価した。ペイロード構築物SB02661は、SFFVプロモーターによって駆動されるGPC3-CARをコードし、IL-12サイトカインペイロードは、A2インシュレーター及びCARカセットとは反対方向に発現を駆動するYB-TATAプロモーターを含むカセットにコードした(例えば、図20中の構築物「2235」内のレポーター及びCARカセットを参照のこと)。対照T細胞に構成的IL-12構築物SB00171を形質導入した。図54に示し、表30に定量化されるように、上記で認められたものと一致して、NS3プロテアーゼ阻害剤グラゾプレビルを添加した後に、IL-12産生が濃度依存的に観察された。IL-12産生の速度は、エルバスビルの添加に関係なく、一般的に同等であった。したがって、エルバスビルは、薬物誘導型のACP TF発現系におけるIL-12の誘導におけるグラゾプレビルの有効性に影響を与えなかった。
Claims (15)
- (a)第1のプロモーターと、活性化条件付き制御ポリペプチド(ACP)をコードする第1の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第1の発現カセットであって、
前記第1のプロモーターが、前記第1の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結されている、
前記第1の発現カセット、
ならびに
(b)ACP応答性プロモーターと、式:
(L-E)X
を有する第2の外来性ポリヌクレオチド配列とを含む第2の発現カセットであって、
式中、
Eが、エフェクター分子をコードするポリヌクレオチド配列を含み、
Lが、リンカーポリヌクレオチド配列を含み、
X=1~20であり、
前記ACP応答性プロモーターが、前記第2の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、前記(L-E)ユニットの第1の反復では、Lが存在しない、
前記第2の発現カセット
を含む、操作された発現系であって、
前記ACPが、前記ACP応答性プロモーターに結合することによって前記第2の発現カセットの発現を誘導することができ、
任意選択で、前記第2の発現カセットが(L-E)Xの2つ以上のユニットを含む場合、各リンカーポリヌクレオチド配列は、別個のポリペプチドとしての各エフェクター分子の翻訳と作動可能に関連し、
任意選択で、(L-E)Xの1つ以上のユニットを含む前記第2の発現カセットが、各Xについて分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチド配列をさらに含み、
任意選択で、各Xについて対応する前記分泌シグナルペプチドが、前記エフェクター分子と作動可能に関連し、
任意選択で、各分泌シグナルペプチドが、対応する前記エフェクター分子にとって天然である天然分泌シグナルペプチドを含み、
任意選択で、各分泌シグナルペプチドが、対応する前記エフェクター分子にとって非天然である非天然分泌シグナルペプチドを含み、
任意選択で、各分泌シグナルペプチドが、対応する前記エフェクター分子にとって非天然である非天然分泌シグナルペプチドを含み、任意選択で、
前記非天然分泌シグナルペプチドが、IL12、IL2、最適化されたIL2、トリプシオンゲン-2、ガウシアルシフェラーゼ、CD5、CD8、ヒトIgKVII、マウスIgKVII、VSV-G、プロラクチン、血清アルブミンプレタンパク質、アズロシジンプレタンパク質、オステオネクチン、CD33、IL6、IL8、CCL2、TIMP2、VEGFB、オステオプロテゲリン、セルピンE1、GROα、GM-CSFR、GM-CSF、及びCXCL12からなる群から選択される分子の分泌シグナルペプチドであり、
任意選択で、前記第1の発現カセットが第1の核酸内に含まれ、前記第2の発現カセットが第2の核酸内に含まれるか、または前記第1の発現カセット及び前記第2の発現カセットが単一の核酸内に含まれる、
前記操作された発現系。 - 前記第1の発現カセットと前記第2の発現カセットとの間に局在するリンカーポリヌクレオチド配列をさらに含み、
任意選択で、前記リンカーポリヌクレオチド配列が、別個のポリペプチドとしての前記ACP及び各エフェクター分子の翻訳と作動可能に関連し、
任意選択で、前記リンカーポリヌクレオチド配列が、2Aリボソームスキッピングタグをコードし、任意選択で、前記2Aリボソームスキッピングタグが、P2A、T2A、E2A、及びF2Aからなる群から選択され、
任意選択で、前記リンカーポリヌクレオチド配列が、配列内リボソーム進入部位(IRES)をコードし、ならびに
任意選択で、前記リンカーポリヌクレオチド配列が、切断可能なポリペプチドをコードし、任意選択で、前記切断可能なポリペプチドが、フューリンポリペプチド配列を含む、
請求項1に記載の操作された発現系。 - (a)前記ACP応答性プロモーターが、ACP結合ドメイン配列及びプロモーター配列を含み、
任意選択で、前記プロモーター配列が、minP、NFkB応答エレメント、CREB応答エレメント、NFAT応答エレメント、SRF応答エレメント1、SRF応答エレメント2、AP1応答エレメント、TCF-LEF応答エレメントプロモーター融合体、低酸素応答エレメント、SMAD結合エレメント、STAT3結合部位、minCMV、YB_TATA、minTK、インデューサー分子応答性プロモーター、及びそれらのタンデムリピートからなる群から選択されるプロモーターに由来し、
任意選択で、前記ACP応答性プロモーターが、合成プロモーターを含み、
任意選択で、前記ACP応答性プロモーターが、最小プロモーターを含み、ならびに
任意選択で、前記ACP結合ドメインが、1つ以上の亜鉛フィンガー結合部位を含む、
(b)前記第1のプロモーターが、構成的プロモーター、誘導性プロモーター、または合成プロモーターを含み、
任意選択で、前記構成的プロモーターが、CMV、EFS、SFFV、SV40、MND、PGK、UbC、hEF1aV1、hCAGG、hEF1aV2、hACTb、heIF4A1、hGAPDH、hGRP78、hGRP94、hHSP70、hKINb、及びhUBIbからなる群から選択される、及び/または
(c)各エフェクター分子が、治療クラスから独立して選択され、前記治療クラスが、サイトカイン、ケモカイン、ホーミング分子、成長因子、共活性化分子、腫瘍微小環境改変因子、受容体、リガンド、抗体、ポリヌクレオチド、ペプチド、及び酵素からなる群から選択され、
任意選択で、前記サイトカインが、IL1-β、IL2、IL4、IL6、IL7、IL10、IL12、IL12p70融合タンパク質、IL15、IL17A、IL18、IL21、IL22、I型インターフェロン、インターフェロン-γ、及びTNF-αからなる群から選択され、
任意選択で、前記ケモカインが、CCL21a、CXCL10、CXCL11、CXCL13、CXCL10-CXCL11融合タンパク質、CCL19、CXCL9、及びXCL1からなる群から選択され、
任意選択で、前記ホーミング分子が、抗インテグリンα4β7、抗MAdCAM、CCR9、CXCR4、SDF1、MMP-2、CXCR1、CXCR7、CCR2、CCR4、及びGPR15からなる群から選択され、
任意選択で、前記成長因子が、FLT3L及びGM-CSFからなる群から選択され、
任意選択で、前記共活性化分子が、c-Jun、4-1BBL及びCD40Lからなる群から選択され、
任意選択で、前記腫瘍微小環境改変因子が、アデノシンデアミナーゼ、TGFβ阻害剤、免疫チェックポイント阻害剤、VEGF阻害剤、及びHPGE2からなる群から選択され、任意選択で、前記TGFβ阻害剤が、抗TGFβペプチド、抗TGFβ抗体、TGFb-TRAP、及びそれらの組み合わせからなる群から選択され、
任意選択で、前記免疫チェックポイント阻害剤が、抗PD-1抗体、抗PD-L1抗体、抗PD-L2抗体、抗CTLA-4抗体、抗LAG-3抗体、抗TIM-3抗体、抗TIGIT抗体、抗VISTA抗体、抗KIR抗体、抗B7-H3抗体、抗B7-H4抗体、抗HVEM抗体、抗BTLA抗体、抗GAL9抗体、抗A2AR抗体、抗ホスファチジルセリン抗体、抗CD27抗体、抗TNFa抗体、抗TREMI抗体、及び抗TREM2抗体からなる群から選択され、
任意選択で、前記VEGF阻害剤が、抗VEGF抗体、抗VEGFペプチド、またはそれらの組み合わせを含み、ならびに
任意選択で、各エフェクター分子がヒト由来のエフェクター分子である、
請求項1または2に記載の操作された発現系。 - (a)前記第1の発現カセット及び/または前記第2の発現カセットが、抗原認識受容体をコードする追加の外来性ポリヌクレオチド配列をさらに含むか、または
(b)前記操作された発現系が、追加のプロモーター及び抗原認識受容体をコードする追加の外来性ポリヌクレオチド配列を含む追加の発現カセットをさらに含み、
前記追加のプロモーターが、前記追加の外来性ポリヌクレオチドに作動可能に連結され、任意選択で、前記追加の外来性ポリヌクレオチド配列が、前記第1の発現カセットまたは前記第2の発現カセットと同じポリヌクレオチドによってコードされ、
任意選択で、前記抗原認識受容体が、GPC3を認識し、
任意選択で、前記抗原認識受容体が、抗原結合ドメインを含み、
任意選択で、GPC3に結合する前記抗原結合ドメインが、重鎖可変(VH)領域及び軽鎖可変(VL)領域を含み、
前記VHが、
KNAMN(配列番号119)のアミノ酸配列を有する重鎖相補性決定領域1(CDR-H1)、
RIRNKTNNYATYYADSVKA(配列番号120)のアミノ酸配列を有する重鎖相補性決定領域2(CDR-H2)、及び
GNSFAY(配列番号121)のアミノ酸配列を有する重鎖相補性決定領域3(CDR-H3)
を含み、ならびに
前記VLが、
KSSQSLLYSSNQKNYLA(配列番号122)のアミノ酸配列を有する軽鎖相補性決定領域1(CDR-L1)、
WASSRES(配列番号123)のアミノ酸配列を有する軽鎖相補性決定領域2(CDR-L2)、及び
QQYYNYPLT(配列番号124)のアミノ酸配列を有する軽鎖相補性決定領域3(CDR-L3)
を含み、
任意選択で、前記VH領域が、
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含み、
任意選択で、前記VL領域が、
のアミノ酸配列に対して、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%の同一性を有するアミノ酸配列を含み、
任意選択で、前記抗原結合ドメインが、抗体、抗体の抗原結合断片、F(ab)断片、F(ab’)断片、一本鎖可変断片(scFv)、または単一ドメイン抗体(sdAb)を含み、
任意選択で、前記VH及びVLが、ペプチドリンカーによって分離され、
任意選択で、前記抗原結合ドメインがscFvを含む場合、前記scFvが構造VH-L-VLまたはVL-L-VHを含み、VHが前記重鎖可変ドメインであり、Lがペプチドリンカーであり、VLが軽鎖可変ドメインであり、
任意選択で、前記抗原認識受容体が、キメラ抗原受容体(CAR)またはT細胞受容体(TCR)であり、
任意選択で、前記抗原認識受容体がCARである場合、前記CARが、1つ以上の細胞内シグナル伝達ドメインを含み、前記1つ以上の細胞内シグナル伝達ドメインのそれぞれが、CD3ζ鎖細胞内シグナル伝達ドメイン、CD97細胞内シグナル伝達ドメイン、CD11a-CD18細胞内シグナル伝達ドメイン、CD2細胞内シグナル伝達ドメイン、ICOS細胞内シグナル伝達ドメイン、CD27細胞内シグナル伝達ドメイン、CD154細胞内シグナル伝達ドメイン、CD8細胞内シグナル伝達ドメイン、OX40細胞内シグナル伝達ドメイン、4-1BB細胞内シグナル伝達ドメイン、CD28細胞内シグナル伝達ドメイン、ZAP40細胞内シグナル伝達ドメイン、CD30細胞内シグナル伝達ドメイン、GITR細胞内シグナル伝達ドメイン、HVEM細胞内シグナル伝達ドメイン、DAP10細胞内シグナル伝達ドメイン、DAP12細胞内シグナル伝達ドメイン、MyD88細胞内シグナル伝達ドメイン、2B4細胞内シグナル伝達ドメイン、CD16a細胞内シグナル伝達ドメイン、DNAM-1細胞内シグナル伝達ドメイン、KIR2DS1細胞内シグナル伝達ドメイン、KIR3DS1細胞内シグナル伝達ドメイン、NKp44細胞内シグナル伝達ドメイン、NKp46細胞内シグナル伝達ドメイン、FceRlg細胞内シグナル伝達ドメイン、NKG2D細胞内シグナル伝達ドメイン、及びEAT-2細胞内シグナル伝達ドメインからなる群から選択され、
任意選択で、前記CARが、膜貫通ドメインを含み、前記膜貫通ドメインが、CD8膜貫通ドメイン、CD28膜貫通ドメイン、CD3ζ鎖膜貫通ドメイン、CD4膜貫通ドメイン、4-1BB膜貫通ドメイン、OX40膜貫通ドメイン、ICOS膜貫通ドメイン、CTLA-4膜貫通ドメイン、PD-1膜貫通ドメイン、LAG-3膜貫通ドメイン、2B4膜貫通ドメイン、BTLA膜貫通ドメイン、OX40膜貫通ドメイン、DAP10膜貫通ドメイン、DAP12膜貫通ドメイン、CD16a膜貫通ドメイン、DNAM-1膜貫通ドメイン、KIR2DS1膜貫通ドメイン、KIR3DS1膜貫通ドメイン、NKp44膜貫通ドメイン、NKp46膜貫通ドメイン、FceRlg膜貫通ドメイン、及びNKG2D膜貫通ドメインからなる群から選択され、ならびに
任意選択で、前記CARが、前記抗原結合ドメインと前記膜貫通ドメインとの間にスペーサー領域を含む、
請求項1~3のいずれか一項に記載の操作された発現系。 - 前記ACPが転写モジュレーターであり、
任意選択で、前記ACPが転写抑制因子であるか、または前記ACPが転写活性化因子であり、
任意選択で、前記ACPが、抑制性プロテアーゼ、及び前記抑制性プロテアーゼの1つ以上の同族切断部位をさらに含み、
任意選択で、前記ACPが、エストロゲン受容体のホルモン結合ドメイン(ERT2ドメイン)をさらに含み、任意選択で、前記ERT2ドメインがタモキシフェンまたはその代謝産物に結合すると、前記ACPが核局在化を受けることができ、任意選択で、前記タモキシフェン代謝産物が、4-ヒドロキシタモキシフェン、N-デスメチルタモキシフェン、タモキシフェン-N-オキシド、及びエンドキシフェンからなる群から選択され、
任意選択で、前記ACPが転写因子であり、任意選択で、前記転写因子がジンクフィンガー含有転写因子であり、
任意選択で、前記ACPが、DNA結合ジンクフィンガータンパク質ドメイン(ZFタンパク質ドメイン)及び転写エフェクタードメインを含み、任意選択で、前記ZFタンパク質ドメインがモジュール式であり、ジンクフィンガーアレイ(ZFA)からなり、かつ任意選択で、前記ZFタンパク質ドメインが、1~10個のZFAを含み、
任意選択で、前記エフェクタードメインが、単純ヘルペスウイルスタンパク質16(VP16)活性化ドメイン;VP16の4つのタンデムコピーを含む活性化ドメインであるVP64活性化ドメイン;NFκBのp65活性化ドメイン;エプスタイン・バーウイルスRトランス活性化因子(Rta)活性化ドメイン;VP64、p65、及びRta活性化ドメインを含むトリパータイト活性化因子(VPR活性化ドメイン);ヒトE1A関連タンパク質p300のヒストンアセチルトランスフェラーゼ(HAT)コアドメイン(p300HATコア活性化ドメイン);Kruppel関連ボックス(KRAB)抑制ドメイン;短縮型Kruppel関連ボックス(KRAB)抑制ドメイン;リプレッサーエレメントサイレンシング転写因子(REST)抑制ドメイン;Hairy関連塩基性ヘリックス-ループ-ヘリックスリプレッサータンパク質のWRPWモチーフ(このモチーフはWRPW抑制ドメインとして知られる);DNA(シトシン-5)-メチルトランスフェラーゼ3B(DNMT3B)抑制ドメイン;及びHP1αクロモシャドウ抑制ドメインからなる群から選択され、
任意選択で、前記抑制性プロテアーゼの前記1つ以上の同族切断部位が、前記ZFタンパク質ドメインと前記エフェクタードメインの間に局在し、
任意選択で、前記抑制性プロテアーゼが、C型肝炎ウイルス(HCV)非構造タンパク質3(NS3)であり、
任意選択で、前記同族切断部位が、NS3プロテアーゼ切断部位を含み、
任意選択で、前記NS3プロテアーゼ切断部位が、NS3/NS4A、NS4A/NS4B、NS4B/NS5A、またはNS5A/NS5B接合点切断部位を含み、
任意選択で、前記NS3プロテアーゼが、プロテアーゼ阻害剤によって抑制され得、
任意選択で、前記プロテアーゼ阻害剤が、シメプレビル、ダノプレビル、アスナプレビル、シルプレビル、ボセプレビル、ソバプレビル、パリタプレビル、テラプレビル、グラゾプレビル、グレカプレビル、及びボキシロプレビルからなる群から選択されるか、または前記プロテアーゼ阻害剤がグラゾプレビルであるか、または前記プロテアーゼ阻害剤が、グラゾプレビル及びエルバスビルを含み、
任意選択で、前記グラゾプレビル及び前記エルバスビルが医薬組成物に共製剤化され、
任意選択で、前記医薬組成物が錠剤であり、
任意選択で、前記グラゾプレビルと前記エルバスビルが2対1の重量比であり、
任意選択で、前記グラゾプレビルが単位用量あたり100mgであり、前記エルバスビルが単位用量あたり50mgであり、
任意選択で、前記ACPがデグロンをさらに含み、前記デグロンが、前記ACPに作動可能に連結され、
任意選択で、前記デグロンが、HCV NS4デグロン、PEST(ヒトIκBαの残基277~307の2つのコピー)、GRR(ヒトp105の残基352~408)、DRR(酵母Cdc34の残基210~295)、SNS(SP2とNBのタンデムリピート(インフルエンザAまたはインフルエンザBのSP2-NB-SP2))、RPB(酵母RPBの残基1688~1702の4つのコピー)、SPmix(SP1とSP2のタンデムリピート(インフルエンザAウイルスM2タンパク質のSP2-SP1-SP2-SP1-SP2))、NS2(インフルエンザAウイルスNSタンパク質の残基79~93の3つのコピー)、ODC(オルニチンデカルボキシラーゼの残基106~142)、Nek2A、マウスODC(残基422~461)、マウスODC_DA(D433A及びD434A点変異を含むmODCの残基422~461)、APC/Cデグロン、COP1 E3リガーゼ結合デグロンモチーフ、CRL4-Cdt2結合PIPデグロン、アクチンフィリン結合デグロン、KEAP1結合デグロン、KLHL2及びKLHL3結合デグロン、MDM2結合モチーフ、N-デグロン、低酸素シグナル伝達におけるヒドロキシプロリン修飾、植物ホルモン依存性SCF-LRR結合デグロン、SCFユビキチンリガーゼ結合ホスホデグロン、植物ホルモン依存性SCF-LRR結合デグロン、DSGxxSリン依存性デグロン、Siah結合モチーフ、SPOP SBCドッキングモチーフ、及びPCNA結合PIPボックスからなる群から選択され、
任意選択で、前記デグロンが、免疫調節薬(IMiD)に応答してCRBNに結合可能なセレブロン(CRBN)ポリペプチド基質ドメインを含み、それによってユビキチン経路を介したACPの分解を促進し、
任意選択で、前記CRBNポリペプチド基質ドメインが、IKZF1、IKZF3、CKla、ZFP91、GSPT1、MEIS2、GSS E4F1、ZN276、ZN517、ZN582、ZN653、ZN654、ZN692、ZN787、及びZN827、またはCRBNの薬物誘導性結合が可能なそれらの断片からなる群から選択され、
任意選択で、前記CRBNポリペプチド基質ドメインが、天然CRBNポリペプチド配列のキメラ融合産物であり、
任意選択で、前記IMiDがFDA承認薬であり、
任意選択で、前記IMiDが、サリドマイド、レナリドマイド、及びポマリドマイドからなる群から選択され、ならびに
任意選択で、前記デグロンが、前記抑制性プロテアーゼの5’、前記抑制性プロテアーゼの3’、前記ZFタンパク質ドメインの5’、前記ZFタンパク質ドメインの3’、前記エフェクタードメインの5’、または前記エフェクタードメインの3’に局在している、
請求項1~4のいずれか一項に記載の操作された発現系。 - (a)前記操作された発現系がインシュレーターをさらに含み、任意選択で、前記インシュレーターが、前記第1の発現カセット、前記第2の発現カセット、及び/または存在する場合は追加の発現カセットの間に局在する、
(b)前記第1の発現カセットが、前記第2の発現カセットに対して同じ方向に局在化するか、または前記第1の発現カセットが、前記第2の発現カセットに対して反対の方向に局在化する、及び/または
(c)前記操作された発現系が、DNA、cDNA、RNA、mRNA、及びネイキッドプラスミドからなる群から選択される核酸である、
請求項1~5のいずれか一項に記載の操作された発現系。 - 請求項1~6のいずれか一項に記載の操作された発現系のいずれか1つの前記第1の発現カセット、前記第2の発現カセット、及び/または存在する場合は前記追加の発現カセットを含み、ならびに
任意選択で、(a)第1のベクターが、前記第1の発現カセット及び存在する場合は前記追加の発現カセットを含み、第2のベクターが、前記第2の発現カセットを含むか、(b)第1のベクターが、前記第1の発現カセットを含み、第2のベクターが、前記第2の発現カセット及び存在する場合は前記追加の発現カセットを含むか、(c)第1のベクターが、前記第1の発現カセット及び前記第2の発現カセットを含み、第2のベクターが、存在する場合は前記追加の発現カセットを含むか、または(d)ベクターが、前記第1の発現カセット、前記第2の発現カセット、及び存在する場合は前記追加の発現カセットを含む、
1つ以上の発現ベクター。 - 請求項1~6のいずれか一項に記載の操作された発現系、または請求項7に記載の1つ以上の発現ベクターを含む単離された細胞であって、
任意選択で、前記操作された発現系が組換え発現され、
任意選択で、前記操作された発現系が、1つ以上のベクターまたは前記細胞のゲノム由来の1つ以上の選択された遺伝子座から発現され、
任意選択で、前記細胞が、T細胞、CD8+T細胞、CD4+T細胞、ガンマデルタT細胞、細胞傷害性Tリンパ球(CTL)、制御性T細胞、ウイルス特異的T細胞、ナチュラルキラーT(NKT)細胞、ナチュラルキラー(NK)細胞、B細胞、腫瘍浸潤リンパ球(TIL)、自然リンパ球系細胞、肥満細胞、好酸球、好塩基球、好中球、骨髄細胞、マクロファージ、単球、樹状細胞、赤血球、血小板細胞、ヒト胚性幹細胞(ESC)、ESC由来細胞、多能性幹細胞、間葉系間質細胞(MSC)、人工多能性幹細胞(iPSC)、及びiPSC由来細胞からなる群から選択され、ならびに
任意選択で、前記細胞が自家であるか、または前記細胞が同種異系である、
前記単離された細胞。 - 請求項1~6のいずれか一項に記載の操作された発現系、請求項7に記載の1つ以上の発現ベクター、または請求項8に記載の単離された細胞、及び薬学的に許容される担体、薬学的に許容される賦形剤、またはそれらの組み合わせを含む、医薬組成物。
- 治療を必要とする対象を治療する方法であって、治療有効量の請求項8に記載の単離された細胞または請求項9に記載の組成物を投与することを含む、前記治療方法。
- 対象における腫瘍細胞に対する細胞性免疫応答を刺激する方法であって、腫瘍を有する対象に、治療有効量の請求項8に記載の単離された細胞または請求項9に記載の組成物を投与することを含む、前記刺激方法。
- 対象における抗腫瘍免疫を提供する方法であって、それを必要とする対象に、治療有効量の請求項8に記載の単離された細胞または請求項9に記載の組成物を投与することを含む、前記提供方法。
- 対象における腫瘍体積を低減する方法であって、請求項8に記載の単離された細胞を含む組成物または請求項9に記載の組成物を、腫瘍を有する対象に投与することを含む、前記低減方法。
- (a)前記投与が、全身投与または腫瘍内投与を含む、
(b)前記単離された細胞が、前記対象に由来するか、または前記単離された細胞が、前記対象に関して同種異系である、
(c)前記方法が、チェックポイント阻害剤を投与することをさらに含む、
(d)前記腫瘍が、腺癌、膀胱腫瘍、脳腫瘍、乳房腫瘍、頸部腫瘍、大腸腫瘍、食道腫瘍、神経膠腫、腎臓腫瘍、肝臓腫瘍、肺腫瘍、メラノーマ、中皮腫、卵巣腫瘍、膵臓腫瘍、胃腫瘍、精巣卵黄嚢腫瘍、前立腺腫瘍、皮膚腫瘍、甲状腺腫瘍、及び子宮腫瘍からなる群から選択される、
(e)前記方法が、プロテアーゼ阻害剤を投与することをさらに含み、
任意選択で、前記プロテアーゼ阻害剤が、抑制性プロテアーゼを抑制するのに十分な量で投与され、
任意選択で、前記プロテアーゼ阻害剤が、前記操作された細胞または前記操作された細胞を含む前記組成物の投与の前に、同時に、またはその後に投与され、
任意選択で、前記プロテアーゼ阻害剤が、シメプレビル、ダノプレビル、アスナプレビル、シルプレビル、ボセプレビル、ソバプレビル、パリタプレビル、テラプレビル、グラゾプレビル、グレカプレビル、及びボキシロプレビルからなる群から選択されるか、または前記プロテアーゼ阻害剤がグラゾプレビルであるか、または前記プロテアーゼ阻害剤が、グラゾプレビル及びエルバスビルを含み、
任意選択で、前記プロテアーゼ阻害剤がグラゾプレビル及びエルバスビルを含む場合、前記グラゾプレビル及び前記エルバスビルが、医薬組成物中に共製剤化され、
任意選択で、前記医薬組成物が錠剤であり、
任意選択で、前記グラゾプレビル及び前記エルバスビルが、2対1の重量比であり、ならびに
任意選択で、前記グラゾプレビルが単位用量あたり100mgであり、前記エルバスビルが単位用量あたり50mgである、ならびに/または
(f)前記方法が、タモキシフェンまたはその代謝産物を投与することをさらに含み、
任意選択で、前記タモキシフェン代謝産物が、4-ヒドロキシタモキシフェン、N-デスメチルタモキシフェン、タモキシフェン-N-オキシド、及びエンドキシフェンからなる群から選択される、
請求項10~13のいずれか一項に記載の方法。 - 請求項8に記載の単離された細胞または請求項9に記載の医薬組成物を含む、がんの治療及び/または予防用のキットであって、任意選択で、対象におけるがんを治療及び/または予防するために前記細胞または組成物を使用するための書面による説明書をさらに含む、前記キット。
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