JP2023500368A

JP2023500368A - 初代乳房上皮細胞培養培地、培養方法、及びその使用

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Publication number: JP2023500368A
Application number: JP2022526407A
Authority: JP
Inventors: 青松 ▲劉▼; ▲飛▼▲揚▼ ▲劉▼; ▲滬▼生梅; 文超王; 明 ▲趙▼; 宗儒 ▲蒋▼; 涛任; 黎王
Original assignee: 合肥中科普瑞昇生物医▲薬▼科技有限公司
Priority date: 2019-11-08
Filing date: 2019-11-18
Publication date: 2023-01-05
Anticipated expiration: 2039-11-18
Also published as: CN112779209B; WO2021088119A1; EP4056685A1; US20220389379A1; EP4056685A4; CN112779209A; JP7373872B2

Abstract

初代乳房上皮細胞を培養するためのアンフィレグリンを含む培養培地、及び該培地の使用を含む培養方法が提供される。培養方法において、細胞外マトリックスゲルでコーティングされた培養容器上で培養培地を使用することによって初代細胞を培養することで、初代細胞は、細胞外マトリックスゲルでコーティングされた培養容器上で成長し、初代細胞培養培地中に含まれる栄養因子と細胞外マトリックスとの組合せ作用下に迅速に増殖する。初代細胞培養培地及び初代細胞培養方法によって得られた細胞モデルを、薬物の有効性の評価及び薬物のスクリーニングに使用することができる。【選択図】図１

Description

本発明は、医学の技術分野、特にｉｎｖｉｔｒｏで初代乳房上皮細胞を培養又は増幅する培養培地及び培養方法、並びに薬効の評価及び薬物のスクリーニングにおける培養細胞の使用に関する。

乳癌は、女性の健康に影響を及ぼす主要な悪性腫瘍の１つである。最新の統計結果によると、世界では、乳癌の発生率及び死亡率は、女性の悪性腫瘍の発生率と死亡率とにおいてそれぞれ１位と２位とに位置づけられている。近年、乳癌の分子タイピング及び病因に関する研究において多くの進歩が見られているが、乳癌の現在の標準的な薬物治療は依然としてホルモン及び細胞傷害性薬物が優位を占めており、これらは個別化された精密投薬指導に欠けている。乳癌分類の多様性及び複雑さ、並びに高い不均一性のため、機能的試験なしで分子診断又は遺伝子診断のみに基づいて臨床薬の有効性を実質的に予測することは困難である（非特許文献１）。

機能的試験とは、癌患者の細胞に対する抗腫瘍薬の感受性を検出するｉｎｖｉｔｒｏ法を指す。このアプローチを適用する鍵となるのは、短い成長周期を有し、乳癌患者の生物学的特徴を表し得る腫瘍細胞モデルを開発することである。さらに、癌患者に適時に精密投薬指導を与えるには、この細胞モデルは、臨床投薬の有効性を迅速かつ効率的に予測する操作が容易であるべきである。しかしながら、癌患者の初代腫瘍細胞からの細胞モデルのｉｎｖｉｔｒｏでの樹立の成功率が通常低いこと、成長周期が長いこと、及び間葉系細胞（例えば、線維芽細胞等）の過剰増殖等の問題は全て、この分野における開発を制限する。現在、腫瘍細胞の機能的試験の分野において比較的成熟している初代上皮／幹細胞を培養する技術は２つ存在する。一方は、照射されたフィーダー細胞及びＲＯＣＫキナーゼ阻害剤Ｙ２７６３２を使用して初代上皮細胞の成長を促進し、個別の患者における薬物感受性を調査することであり、つまり、条件付き細胞リプログラミング技術である（非特許文献２）。もう一方の技術は、成体幹細胞をｉｎｖｉｔｒｏで３Ｄ培養して、組織及び器官に類似したオルガノイドを得ることである（非特許文献３）。

しかしながら、どちらの技術にも或る特定の制限がある。細胞リプログラミングは、患者の自己初代上皮細胞をマウス由来のフィーダー細胞と共培養する技術であるが、これらのマウス由来の細胞の存在は、患者の初代細胞に対する薬物感受性試験の間に、患者の自己初代細胞の薬物感受性試験の結果に干渉する可能性があり、一方で、マウス由来のフィーダー細胞がノックアウトされると、患者の自己初代細胞がリプログラミング環境から外れる可能性があり、細胞増殖速度及び細胞内シグナル伝達経路が大幅に変化する可能性があることから（非特許文献４、非特許文献５）、薬物に対する患者の自己初代細胞の奏効が大きく影響されるという結果がもたらされる。オルガノイド技術は、３Ｄｉｎｖｉｔｒｏ培養用の細胞外マトリックス内に患者の自己初代上皮細胞を埋め込むフィーダー細胞を必要としない技術であるため、マウス由来のフィーダー細胞の干渉の問題はない。しかしながら、オルガノイド技術の培地には、様々な特定の成長因子を加える必要があることから、これは高価であり、臨床における広範な使用には適していない。さらに、培養過程全体を通して、オルガノイドは細胞外マトリックスゲル内に埋め込まれている必要があり、細胞接種、継代、及び薬物感受性試験の播種工程は、２Ｄ培養操作と比較して面倒で時間がかかる。さらに、この技術によって形成されるオルガノイドのサイズを制御することは困難であり、一部のオルガノイドは大きくなりすぎて内部壊死を引き起こす可能性がある。したがって、オルガノイド技術は２Ｄ培養技術よりも操作性及び適用性に劣っている。これには専門の技術者が操作する必要があるため、臨床におけるｉｎｖｉｔｒｏでの薬物感受性試験のための広範囲かつ幅広い使用には適していない（非特許文献６）。

Adam A. Friedman et al., Nat Rev Cancer, 15(12): 747-56, 2015 Liu et al., Am J Pathol, 180: 599-607, 2012 Hans Clevers et al., Cell, 11; 172(1-2): 373-386, 2018 Liu et al., Am J Pathol, 183(6): 1862-1870, 2013 Liu et al., Cell Death Dis., 9(7): 750, 2018 Nick Barker, Nat Cell Biol, 18(3): 246-54, 2016

上記の技術の制限に鑑みて、外因性細胞からの干渉なしに、短い培養期間、抑制可能なコスト、簡便な操作をもたらし得る、臨床における初代乳房上皮細胞用の培養技術を開発することが必要とされている。この技術を適用して初代乳房腫瘍細胞モデルを構築すると、培養乳房腫瘍細胞は、乳癌患者の生物学的特徴を表し得る。個別の癌患者に由来する細胞モデルにおいて抗腫瘍薬の感受性をｉｎｖｉｔｒｏで評価することにより、抗腫瘍薬の奏効率を臨床において改善することができ、不適切な薬物によって患者に引き起こされる痛み及び医療資源の浪費を減らすことができる。

従来技術の不足に鑑みて、本発明は、初代乳房上皮細胞を培養する初代乳房上皮細胞培養培地、及び該培養培地を使用して初代乳房上皮細胞を培養する方法を提供することを意図している。本発明の初代乳房上皮細胞培養培地及び培養方法は、ｉｎｖｉｔｒｏでの培養期間が短く、コストを抑制可能であり、操作が簡便であり、外因性細胞からの干渉がないという目標を達成することができる。この技術を適用して初代乳房腫瘍細胞モデルを構築すると、乳癌患者の生物学的特徴を有する初代乳房腫瘍細胞を得ることができ、これらを新薬スクリーニング及びｉｎｖｉｔｒｏでの薬物感受性試験において適用することができる。

本発明の一態様は、初代乳房上皮細胞を培養する初代細胞培養培地であって、アンフィレグリンを含み、アンフィレグリンの含有量が１０ｎｇ／ｍｌ以上であり、コストの観点から、好ましくは１０ｎｇ／ｍｌ～１００ｎｇ／ｍｌである、初代細胞培養培地を提供することである。

本発明の初代細胞培養培地は、好ましくは、以下の、上皮成長因子（ＥＧＦ）、インスリン、Ｂ２７、ＲＯＣＫキナーゼ阻害剤Ｙ２７６３２、ニューレグリン１、線維芽細胞成長因子７（ＦＧＦ７）、ＴＧＦβタイプＩ受容体阻害剤Ａ８３０１、及びＰ３８／ＭＡＰＫ阻害剤ＳＢ２０２１９０の１つ以上又は全てを更に含む。好ましくは、ＥＧＦの含有量は２．５ｎｇ／ｍｌ～２０ｎｇ／ｍｌであり、インスリンの含有量は１μｇ／ｍｌ～１０μｇ／ｍｌであり、Ｂ２７は１：２５～１：１００の最終濃度で希釈され、Ｙ２７６３２の含有量は５μＭ～１５μＭであり、ニューレグリン１の含有量は５ｎＭ～２０ｎＭであり、ＦＧＦ７の含有量は２．５ｎｇ／ｍｌ～２０ｎｇ／ｍｌであり、Ａ８３０１の含有量は１００ｎＭ～５００ｎＭであり、ＳＢ２０２１９０の含有量は１００ｎＭ～５００ｎＭである。

条件付き細胞リプログラミング培地及び乳房上皮細胞オルガノイド培地と比較して、この培地の組成にはアンフィレグリンが補充されているが、血清、ウシ脳下垂体抽出物等の不確定成分、Ｗｎｔアゴニスト、Ｒ－スポンジンファミリータンパク質、ＢＭＰ阻害剤等のオルガノイド培養に必要とされるニッチ因子は含まれず、そしてまた線維芽細胞成長因子１０（ＦＧＦ１０）、ニコチンアミド、及びＮ－アセチルシステインも含まれないため、培地のコストが大幅に削減され、培地を調製する操作方法が簡易化され、抑制可能なコスト及び簡便な操作で初代乳房上皮細胞のｉｎｖｉｔｒｏでの培養が実現される。

本発明においては、初代乳房上皮細胞は、乳房腫瘍細胞、正常乳房上皮細胞、及び乳房上皮幹細胞から選択され得る。

本発明の一態様は、以下の工程を含む、初代乳房上皮細胞を培養する方法を提供することである：

（１）本発明の初代細胞培養培地を上記組成に従って調製する工程。

（２）培養容器を細胞外マトリックスゲル希釈剤でコーティングする工程。

ここで、細胞外マトリックスゲルとしては、低成長因子型の細胞外マトリックスゲルを使用することができ、例えば、市販のＭａｔｒｉｇｅｌ（Corning：３５４２３０）又はＢＭＥ（Trevigen：３５３３－０１０－０２）を使用することができる。より詳細には、細胞外マトリックスゲルは、本発明の初代細胞培養培地又はＤＭＥＭ／Ｆ１２（Corning：Ｒ１０－０９２－ＣＶ）であり得る無血清培地で希釈される。細胞外マトリックスゲルの希釈比は、１：５０～４００、好ましくは１：１００～２００である。コーティング法は、希釈された細胞外マトリックスゲルを培養容器に加えて、培養容器の底部を完全に覆い、３０分間以上放置し、好ましくはコーティングを３７℃で３０分間～６０分間放置することを含む。コーティングが完了した後に、余分な細胞外マトリックスゲル希釈剤を廃棄することで、培養容器は後続使用の準備が整う。

（３）初代乳房上皮細胞を乳房組織から分離する工程。

初代乳房上皮細胞は、例えば、乳癌組織試料及び傍癌組織試料から取得され得る。例えば、乳癌組織試料は、説明を受けた上で同意した乳房腫瘍患者の癌組織から外科的切除によって取得され、傍癌組織試料は、乳癌組織から少なくとも５ｃｍ離れた乳房組織から採集される。上述の組織試料の採集は、外科的摘除又は生検から３０分以内に行われる。より詳細には、滅菌環境において、非壊死部位からの組織試料を０．５ｃｍ^３を超える体積で切り取った後に、組織試料を予冷した１０ｍＬ～５０ｍＬのＤＭＥＭ／Ｆ１２培地中に入れ、これを蓋付きのプラスチック製滅菌遠心分離チューブ内に入れて、氷上で研究室に輸送する。ここで、ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地は、５０Ｕ／ｍＬ～２００Ｕ／ｍＬ（例えば、１００Ｕ／ｍＬ）のペニシリン及び５０Ｕ／ｍＬ～２００Ｕ／ｍＬ（例えば、１００Ｕ／ｍＬ）のストレプトマイシンを含む（以下、輸送液と呼ぶ）。

生物学的安全キャビネット内で、組織試料を細胞培養ディッシュに移した後に、これを輸送液ですすぎ、組織試料の表面上の血球を洗い流し、組織試料の表面上の皮膚及び筋膜等の不要な組織を取り除く。

すすいだ組織試料を別の新しい培養ディッシュに移し、５ｍＬ～２５ｍＬの輸送液を加え、滅菌メス刃及び鉗子を使用して組織試料を直径１ｍｍ^３未満の組織片に分ける。

組織試料片を遠心分離チューブに移し、これを卓上遠心分離機において１０００ｒｐｍ以上で３分間～１０分間遠心分離し、上清を遠心分離チューブからピペットで慎重に除去した後に、これをコラゲナーゼＩＩ（０．５ｍｇ／ｍＬ～５ｍｇ／ｍＬ、例えば１ｍｇ／ｍＬ）及びコラゲナーゼＩＶ（０．５ｍｇ／ｍＬ～５ｍｇ／ｍＬ、例えば１ｍｇ／ｍＬ）を含む５ｍＬ～２５ｍＬの無血清ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地を使用して再懸濁し、３７℃の一定温度のシェーカーにおいて少なくとも１時間振盪消化を行い（消化時間は試料サイズに依存する；試料が１ｇより大きければ、消化時間を１．５時間～２時間に増やす）、次に、これを卓上遠心分離機において３００ｇ／分以上で３分間～１０分間遠心分離し、上清を廃棄した後に、消化された組織細胞を、例えば１０％ウシ胎児血清を含む５ｍＬ～２５ｍＬのＤＭＥＭ／Ｆ１２培地で再懸濁し、次いで、破砕して、例えば１００μｍの細胞シーブ孔径で篩別し、篩別された細胞懸濁液を遠心分離チューブに収集し、細胞を血球計算盤で計数する。

次に、細胞懸濁液を遠心分離機において３００ｇ／分以上で３分間～１０分間遠心分離し、上清を廃棄した後に、これを本発明の初代細胞培養培地中に再懸濁する。

（４）工程（３）において分離された初代乳房上皮細胞をコーティングされた培養容器において接種する工程。

より詳細には、初代乳房腫瘍細胞を、Ｔ１２．５培養フラスコにおいて１ｍＬ当たり１×１０^３個～１×１０^５個の細胞（例えば、１ｍＬ当たり１×１０^４個の細胞）の密度で接種し、１ｍＬ～１０ｍＬの初代上皮細胞培養培地を添加した後に、細胞インキュベーターにおいて、例えば３７℃、５％のＣＯ_２の条件下にて、正常酸素濃度（１５％～２０％の酸素濃度）又は低酸素濃度（０．５％～４％の酸素濃度）のいずれかで８日間～１０日間培養し、培養の間に４日ごとに培地交換するために新たな初代細胞培養培地を使用し、初代乳房上皮細胞が培養フラスコの底部面積の約８０％～９０％を占める細胞密度まで成長したときに消化及び継代を行う。

この接種工程はフィーダー細胞の使用を必要とせず、条件付き細胞リプログラミング技術と比較して、フィーダー細胞を培養及び照射する操作工程が省略される。オルガノイド技術と比較して、この工程は、初代細胞とマトリックスゲルとを氷上で均一に混合して、ゲル液滴を形成し、ゲル液滴の固化を待ってから培地を添加することを必要としない。事前にコーティングされた培養容器を、初代細胞の接種に直接的に使用することができる。さらに、培養容器をコーティングするのに少量の希釈された細胞外マトリックスゲルしか必要とされないため、オルガノイド技術と比較して、高価な細胞外マトリックスゲルの節約となるとともに、操作工程の簡素化がもたらされる。

（５）任意に、接種した初代乳房上皮細胞を４日間～１０日間培養した後に、培養フラスコにおいて形成された細胞クローンの最大直径が５００μｍに達したときに、上清を廃棄し、１ｍＬ～２ｍＬの０．０５％トリプシン（Thermo Fisher：２５３０００６２）を添加して細胞消化を行い、次に、これを室温で５分間～２０分間インキュベートする工程。消化された細胞を、例えば１０％（容量／容量）のウシ胎児血清、１００Ｕ／ｍＬのペニシリン、及び１００Ｕ／ｍＬのストレプトマイシンを含む１ｍＬ～１０ｍＬの培地中に再懸濁し、３００ｇ／分以上で３分間～１０分間遠心分離する。消化された単一細胞を、本発明の初代細胞培養培地を使用して再懸濁し、得られた細胞懸濁液を、細胞外マトリックスゲルでコーティングされたＴ２５細胞培養フラスコに入れて連続培養する。Ｔ２５細胞培養フラスコのコーティング操作は、工程（２）における操作と同じである。

増殖した乳房上皮細胞は２Ｄで成長することから、オルガノイド技術を使用した増殖において起こり得る、不均一なサイズのオルガノイド及び過剰成長したオルガノイドの内部壊死が回避される。

さらに、本発明の初代乳房上皮細胞の培養方法によって培養した乳房上皮細胞、特に乳房腫瘍細胞を、以下の工程を含む薬効評価及び薬物スクリーニングに使用することができる：

（１）初代乳房上皮細胞を得て、より好ましくは、乳癌患者に由来する癌組織試料又は生検癌組織試料を得て、初代乳房上皮細胞を分離し、上記の方法に従って初代乳房上皮細胞（特に初代乳房腫瘍細胞）を少なくとも１０^５個の大きさ、好ましくは少なくとも１０^６個の大きさの細胞数まで培養して増殖させる工程。

（２）試験する薬物を選択する工程。

（３）基準として薬物の最大血漿濃度Ｃｍａｘに基づき、初期濃度としてＣｍａｘの２倍～５倍を取り、薬物を種々の濃度勾配、例えば５個～１０個の薬物濃度勾配、好ましくは６個～８個の薬物濃度勾配へと希釈する工程。

（４）工程（１）において培養した乳房上皮細胞を消化して単一細胞懸濁液にし、血球計算盤で細胞数を計数し、細胞外マトリックスゲルを含む本発明の初代細胞培養培地で単一細胞懸濁液を希釈し、希釈された細胞懸濁液を１ウェル当たり１０００個～１００００個の細胞の密度でマルチウェルプレートに一様に、例えば１ウェル当たり５０μＬの細胞希釈液で加え、一晩付着させる工程。

この工程により、フィーダー細胞の存在が初代細胞の計数及びその後の初代細胞生存率アッセイに干渉し得るという細胞リプログラミング技術の問題が避けられ、オルガノイド技術でのようなマトリックスゲルを含む細胞懸濁液を氷上で混合し、埋め込み、その後に播種するという面倒な工程の必要性が排除されることから、操作法が大幅に簡易化され、技術の操作性及び実用性が向上する。接種される細胞はオルガノイドのような３Ｄ構造ではなく単一細胞懸濁液であるため、この技術では、オルガノイド技術と比較して、播種細胞数がより均一になり、ウェル間の細胞数の変動がより小さくなり得ることから、その後の高スループット薬物スクリーニング操作により適したものとなる。

（５）高スループット自動ワークステーションを使用して、工程（４）において得られた付着細胞に、従来の化学療法薬、標的薬、抗体薬、又はそれらの組合せ等の選択された候補薬物を勾配希釈で添加する工程。

（６）薬物を添加した数時間後、例えば７２時間後に、Ｃｅｌｌ－ＴｉｔｅｒＧｌｏ発光細胞生存率検出キット（Promega：Ｇ７５７３）を使用して乳房上皮細胞の生存率を検出して、薬物活性をスクリーニングする工程。

詳細には、各ウェルに、例えば５０μＬのＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ試薬（Promega：Ｇ７５７３）を加え、均一に振盪した後に、蛍光マイクロプレートリーダーを用いて各ウェルの化学発光強度を測定する。横軸として薬物濃度を取り、縦軸として蛍光強度を取ることで、ＧｒａｐｈＰａｄＰｒｉｓｍ７．０ソフトウェアを使用して、測定値に基づいて薬物用量－効果曲線を作成し、試験された細胞の増殖に対する薬物の阻害強度を計算する。

本発明の初代乳房腫瘍細胞を薬物スクリーニング及びｉｎｖｉｔｒｏでの薬物感受性試験において使用する場合に、これは細胞共培養システムではないため、細胞リプログラミング技術におけるフィーダー細胞が試験結果に干渉するという現象が起こることはない。細胞の２Ｄ成長のため、薬物との相互作用もオルガノイド技術における薬物試験時間より迅速である（オルガノイド技術における平均投与時間は６日である）。

本発明の有益な効果としては、以下のことも挙げられる：

（１）初代乳房上皮細胞の培養の成功率は、９０％超の成功率で改善され得る。

（２）ｉｎｖｉｔｒｏで初代培養した乳房上皮細胞は、初代細胞の由来患者の病理学的表現型及び不均一性を再現することを確実にし得る。

（３）培養される初代乳房上皮細胞は、線維芽細胞及び脂肪細胞等の間葉系細胞によって干渉されない純粋な乳房上皮細胞である。

（４）培地の組成には血清が含まれていないため、様々なバッチからの血清の質及び量によって影響されない。

（５）乳房上皮細胞は高効率で増殖することができ、ここで、１０^４個レベルの開始細胞数から約２週間以内に１０^６個の規模の乳房上皮細胞の増殖に成功し、増殖した乳房上皮細胞は継続的な継代能力を有する。

（６）氷上で操作する必要がなく、継代工程においてマトリックスゲルを解離させる必要がなく、細胞の消化及び継代を１０分～１５分以内に完了することができる。

（７）初代乳癌培地は、高価なＷｎｔアゴニスト、Ｒ－スポンジンファミリータンパク質、ＢＭＰ阻害剤、ＦＧＦ１０等の因子を必要としないため、培養するコストを抑制可能であり、したがって、これは初代乳房上皮細胞用の既存のオルガノイド培養培地の簡易化及び改善となり、細胞接種には、初代細胞と混合してゲル液滴を形成するのにより高濃度の細胞外マトリックスを使用する必要がなく、その代わりに少量の細胞外マトリックスゲル希釈液しか必要とされないことから、コストのかかる細胞外マトリックスの量が節約される。

（８）操作が簡便である：条件付きリプログラミング技術と比較して、本技術はフィーダー細胞を培養又は照射する必要がないことから、様々なバッチからのフィーダー細胞の質及び量が初代細胞培養の効率に影響を与え得るという問題が回避され、薬物スクリーニングにおける播種及び試験の対象は初代乳房上皮細胞だけであり、条件付き細胞リプログラミング技術において記載されるような共培養システムにおけるフィーダー細胞の干渉はなく、オルガノイド技術と比較して、本発明において採用される細胞外マトリックスゲルをコーティングする方法において、培養容器を事前に準備することができ、オルガノイド技術でのようにマトリックスゲル内に細胞を埋め込む必要がなく、操作工程は簡単かつ容易である。

（９）本技術は、乳房上皮細胞を大量に培養して高い均一性で提供することができることから、新しい候補化合物の高スループットスクリーニング及び患者に対するｉｎｖｉｔｒｏでの高スループット薬物感受性機能的試験に適している。

この実施形態の細胞培養培地を使用して、乳房腫瘍細胞、正常乳房上皮細胞、乳房上皮幹細胞、又はこれらの細胞の少なくともいずれかを含む組織を含む、ヒト又は他の哺乳動物に由来する乳房上皮細胞を培養することができる。

さらに、細胞及び組織の少なくとも１つからオルガノイドを形成することもできる。

さらに、この実施形態の培養方法により得られた細胞を、再生医療、乳房上皮細胞の基礎医学研究、薬物奏効のスクリーニング、及び乳房疾患に関する新薬の開発等において使用することができる。

本発明の初代細胞培養方法を使用して、臨床乳房組織試料から分離された細胞を培養することによって得られた初代乳房上皮細胞の倒立位相差顕微鏡下での写真である。細胞外マトリックスゲルでコーティングされた培養プレート及びコーティングを一切有しない培養プレートにおける２つの異なる乳癌臨床組織試料（ＨＭＦＬ－ＸＮ３０、ＨＭＦＬ－ＸＮ２２）から分離された初代乳房腫瘍細胞を接種して培養することによって得られた細胞の顕微鏡下での写真である。初代乳房腫瘍細胞の増殖に対するアンフィレグリンの効果を説明するグラフである。条件付き細胞リプログラミング技術、本発明の技術、及びオルガノイド技術をそれぞれ使用して、２つの乳癌臨床組織試料（ＨＭＦＬ－ＸＮ１２、ＨＭＦＬ－ＸＮ２１）から分離された細胞を培養することによって得られた細胞成長曲線の比較、並びに２７日目まで培養したＨＭＦＬ－ＸＮ２１の顕微鏡下での写真である。乳癌臨床組織試料（ＨＭＦＬ－ＸＮ１２）から分離され、本発明の技術を使用して９日目及び２２日目まで培養した乳房腫瘍細胞の倒立顕微鏡下での写真である。外科的切除された乳癌試料（ＨＭＦＬ－ＸＮ７）から分離され、本発明の技術によって培養した乳房腫瘍細胞の免疫蛍光染色の結果と、組織試料の当初の組織切片の免疫組織学的な結果との比較を示す図である。本発明の技術を使用して２症例の乳癌外科的切除試料から分離された細胞を培養することによって得られた異なる継代の乳房腫瘍細胞の遺伝子突然変異一致性分析（gene mutation consistency analysis）、及び１症例の染色体核型分析の結果を示す図である。本発明の技術を使用して病理学的に診断された２症例のトリプルネガティブ乳癌患者の癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞を培養することによって得られたマウスにおける乳房腫瘍細胞の腫瘍形成性を示す図である。様々な化学療法薬及び標的薬に対する本発明の技術によって培養した初代乳房腫瘍細胞の用量－応答曲線、並びに計算された半阻害率（half-inhibition rate）を示すグラフである。

［実施例１］
ヒト初代乳房上皮細胞の分離及び初代乳房上皮細胞培養培地の最適化
（１）ヒト初代乳房上皮細胞の分離
説明を受けた上で同意した５人の乳房腫瘍患者の癌組織から、外科的切除によって乳癌組織試料を得た（すなわちＨＭＦＬ－ＸＮ１、ＨＭＦＬ－ＸＮ３、ＨＭＦＬ－ＸＮ４、ＨＭＦＬ－ＸＮ６、及びＨＭＦＬ－ＸＮ８）。試料の１つ（ＨＭＦＬ－ＸＮ１）を以下に説明する。上述の組織試料を、外科的摘除又は生検後の３０分以内に採集した。より詳細には、滅菌環境において、非壊死部位からの組織試料を０．５ｃｍ^３を超える体積で切り取り、予冷した２０ｍＬのＤＭＥＭ／Ｆ１２培地（Corning Inc.製）中に入れた。この培地を蓋付きの５０ｍＬのプラスチック製滅菌遠心分離チューブ内に入れて、氷上で研究室に輸送した。ここで、ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地は、１００Ｕ／ｍＬのペニシリン及び１００Ｕ／ｍＬのストレプトマイシンを含有していた（以下、輸送液と呼ぶ）。

生物学的安全キャビネット内で、組織試料（ＨＭＦＬ－ＸＮ１）を１００ｍｍの細胞培養ディッシュに移した。この組織試料を輸送液ですすいだ。組織試料の表面上の血球を洗い流した。組織試料の表面上の皮膚及び筋膜等の不要な組織を取り除いた。

すすいだ組織試料を別の新しい１００ｍｍの培養ディッシュに移し、１０ｍＬの輸送液を加え、滅菌メス刃及び鉗子を使用して、組織試料を直径１ｍｍ^３未満の組織片に分けた。

組織試料片を５０ｍＬの遠心分離チューブに移し、卓上遠心分離機を使用して１２００ｒｐｍで５分間遠心分離し、上清を遠心分離チューブからピペットで慎重に除去した後に、残りをコラゲナーゼＩＩ（１ｍｇ／ｍＬ）及びコラゲナーゼＩＶ（１ｍｇ／ｍＬ）を含む１０ｍＬの無血清ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地中で再懸濁した。これを３７℃の一定温度のシェーカーに置いて１時間振盪消化を行った後に、卓上遠心分離機において３５０ｇ／分で５分間遠心分離した。上清を廃棄した後に、消化された組織細胞を、１０％ウシ胎児血清を含む１０ｍＬのＤＭＥＭ／Ｆ１２培地中に再懸濁した後に、これを破砕して、１００μｍの細胞シーブ孔径で篩別し、篩別された細胞懸濁液を５０ｍＬの遠心分離チューブ内に収集し、細胞を血球計算盤で計数した。

次に、細胞懸濁液を遠心分離機において３５０ｇ／分で５分間遠心分離し、上清を廃棄した後に、これを本発明の初代細胞培養培地中に再懸濁した。

他の４つの乳房腫瘍組織試料も上記と同様にして分離した。

（２）初代乳房上皮細胞培養培地の最適化
Ｍａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）（BD Biosciences製）を無血清ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地中に１：１００で希釈して、細胞外マトリックス希釈液を調製し、これを４８ウェル培養プレートに１ウェル当たり２００μｌで加えて、培養プレートのウェルの底部を完全に覆った。得られたものを３７℃のインキュベーター内で１時間放置した。１時間後に、細胞外マトリックス希釈液を除去して、Ｍａｔｒｉｇｅｌでコーティングされたプレートを得た。

最初に、基礎培地を調製した。市販のＤＭＥＭ／Ｆ－１２培地に、ＧｌｕｔａＭＡＸ－Ｉ（Thermo Fisher SCIENTIFIC製）を指定の濃度で添加し（１：１００希釈）、ヒトインスリン（Sigma製）を１０μｇ／ｍｌの最終濃度で添加し、ＲＯＣＫキナーゼ阻害剤Ｙ２７６３２（Sigma製）を１０μＭの最終濃度で添加し、ペニシリン－ストレプトマイシン（Thermo Fisher SCIENTIFIC製）を１：１００の希釈比で添加して、基礎培地を得る。

次に、様々な種類の添加剤（表１に示される）を基礎培地に添加して、様々な補充成分を含む乳房上皮細胞培養培地を調製し、様々な成分を含む培地を１ウェル当たり５００μｌの容量で、細胞外マトリックスゲル（Ｍａｔｒｉｇｅｌ）でコーティングされた４８ウェルプレートに加えた。この実施例の工程（１）において乳癌組織から分離された乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１）を、Ｍａｔｒｉｇｅｌでコーティングされた４８ウェル培養プレートにおいて１ウェル当たり１×１０^４個の細胞の細胞密度で接種し、等しい数の新たに分離された乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１）を、３７℃にて、５％のＣＯ_２濃度及び２０％の酸素濃度で様々な培地処方の下で培養した。培養開始後、培地を４日ごとに一新した。培養１０日後に、細胞計数を行った。実験コントロールとして、添加剤を一切含まない基礎培地を使用した。残りの４つの乳癌組織試料から分離された乳房腫瘍細胞を、上記と同様にして培養して計数した。実験結果を表１に示す。

［実施例２］
ヒト初代乳房上皮細胞の培養
（１）初代乳房上皮細胞培養培地の調製
最初に、実施例１の工程（２）と同様にして基礎培地を調製した。基礎培地に、ヒトアンフィレグリン（R&D Systems製）を２０ｎｇ／ｍｌの最終濃度で添加し、ＥＧＦ（Peprotech製）を１０ｎｇ／ｍｌの最終濃度で添加し、Ｂ２７（Thermo Fisher SCIENTIFIC製）を１：５０の希釈比で添加し、ヒトニューレグリン１（Peprotech製）を１０ｎＭの最終濃度で添加し、ＦＧＦ７（R&D Systems製）を１０ｎｇ／ｍｌの最終濃度で添加し、ＴＧＦβ１阻害剤Ａ８３０１（MCE製）を５００ｎＭの最終濃度で添加し、Ｐ３８／ＭＡＰＫ阻害剤ＳＢ２０２１９０（MCE製）を５００ｎＭの最終濃度で添加して、初代乳房上皮細胞培養培地を調製した。

（２）乳癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞及び傍癌組織に由来する正常乳房上皮細胞の培養
実施例１の工程（１）と同じ方法を使用して、癌組織に由来する乳房上皮細胞及び傍癌組織に由来する乳房上皮細胞を、それぞれ同じ乳癌患者の癌組織及び傍癌乳房組織から分離した。傍癌乳房組織試料を、乳癌組織から少なくとも５ｃｍ離れた乳房組織から採集した。次に、癌組織に由来する乳房腫瘍細胞を血球計算盤で計数した後に、Ｍａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）（BD Biosciences製）でコーティングされた１２ウェルプレートへと１ウェル当たり４×１０^４個の細胞の密度で接種した。２ｍＬの調製された初代乳房上皮細胞培養培地を１２ウェルプレートに加え、これを３７℃にて５％のＣＯ_２濃度、及び２０％の酸素濃度の条件下で培養した。

図１（Ａ）は、外科的切除された乳房腫瘍試料から分離され、接種後７日目まで培養した乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１１）の顕微鏡画像（５０倍の倒立位相差顕微鏡下）を示している。顕微鏡観察は、癌組織に由来する培養される初代乳房腫瘍細胞が高純度であり、線維芽細胞等の間質細胞を含まなかったことを示している。図１（Ｂ）は、ＨＭＦＬ－ＸＮ１１と同じ患者の傍癌組織試料から分離され、Ｍａｔｒｉｇｅｌでコーティングされた１２ウェルプレートへと１ウェル当たり４×１０^４個の細胞の密度で接種され、接種後７日目まで培養された初代乳房正常上皮細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１１－Ｎ）の顕微鏡画像（５０倍の倒立位相差顕微鏡下）を示している。図１（Ａ）及び図１（Ｂ）は、本発明の初代乳房上皮細胞培養培地及び培養方法を使用することで、乳癌組織に由来する乳房腫瘍細胞及び傍癌組織に由来する正常乳房上皮細胞の両方についてｉｎｖｉｔｒｏで効率的な培養が達成され得ることを示している。培養される初代細胞は、線維芽細胞等の間質細胞を含まない。

図１（Ｃ）及び図１（Ｄ）は、それぞれ接種後４日目まで培養した及び接種後１０日目まで培養した初代乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１５）の顕微鏡画像（１００倍の倒立位相差顕微鏡下）の比較であり、ここで、初代乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１５）は、外科的切除された別の乳癌組織試料から分離され、Ｍａｔｒｉｇｅｌでコーティングされた１２ウェルプレートへと１ウェル当たり４×１０^４個の細胞の密度で接種された。図１（Ｄ）は、乳腺を構成する２つの異なる細胞亜集団、すなわち内腔細胞及び筋上皮細胞を、本発明の初代細胞培養培地及び培養方法を使用することによって培養することができ、したがって腫瘍組織の不均一性を維持し得るｉｎｖｉｔｒｏ培養が達成されることを示している。図１（Ｃ）及び図１（Ｄ）を比較すると、本発明の培地及び培養方法を使用して乳癌組織試料を分離し、接種し、培養した結果、接種及び培養後４日目に明らかな乳房上皮細胞クローンが形成され、培養１０日目に細胞数が指数関数的に拡大することが確認され得ることから、本発明の技術がｉｎｖｉｔｒｏで乳房上皮細胞を増殖させるのに効率的な技術であることが示唆される。

（３）正常酸素条件及び低酸素条件下での初代乳房上皮細胞の培養
乳癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ３０）を、実施例１の工程（１）と同じ方法を使用して乳癌患者の癌組織から分離した。次に、等しい細胞数（１ウェル当たり４×１０^４個の細胞）の初代乳房腫瘍細胞ＨＭＦＬ－ＸＮ３０を、Ｍａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）（BD Biosciences製）でコーティングされた１２ウェルプレートへと接種した。２ｍＬの調製された初代乳房上皮細胞培養培地を１２ウェルプレートに加え、等しい数の乳房腫瘍細胞を、それぞれ２０％の酸素濃度の条件（正常酸素条件）及び２％の酸素濃度の条件（低酸素条件）下で培養した。７日目まで培養した後に、顕微鏡写真（１００倍の倒立位相差顕微鏡下）を撮影した。図１（Ｅ）及び図１（Ｆ）は、それぞれ正常酸素条件及び低酸素条件下で癌組織に由来する乳房上皮細胞を培養することによって得られた細胞の比較である。図１（Ｅ）及び図１（Ｆ）から、本発明の培養培地及び培養方法を使用した場合に、癌組織に由来する初代乳房上皮細胞の高効率培養が正常酸素条件（２０％の酸素濃度）及び低酸素条件（２％の酸素）の両方で達成され得ることを確認することができる。

（４）細胞外マトリックスゲルのコーティングを有する条件及び有しない条件下での乳癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞の培養結果の比較
癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ３０、ＨＭＦＬ－ＸＮ２２）を、実施例１の工程（１）と同じ方法を使用して２人の乳癌患者の癌組織から分離した。次に、等しい数（１ウェル当たり４×１０^４個の細胞）の初代乳房腫瘍細胞ＨＭＦＬ－ＸＮ３０を、それぞれＭａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）（BD Biosciences製）でコーティングされた１２ウェルプレート及び何の処理もなされていない１２ウェルプレートへと接種した。２ｍＬの調製された初代乳房上皮細胞培養培地を１２ウェルプレートに加え、等しい数の初代乳房腫瘍細胞を２０％の酸素濃度の条件下で培養した。１０日目まで培養した後に写真を撮影した。ＨＭＦＬ－ＸＮ２２（Ｐ３）は、分離後にそれぞれＭａｔｒｉｇｅｌでコーティングされた条件及びＭａｔｒｉｇｅｌでコーティングされていない条件下で３回目の継代まで連続培養した乳房腫瘍細胞ＨＭＦＬ－ＸＮ２２であった。残りの工程は、ＨＭＦＬ－ＸＮ３０の工程と同じである。

図２は、それぞれＭａｔｒｉｇｅｌでコーティングされた条件及びＭａｔｒｉｇｅｌでコーティングされていない条件下で１０日目まで培養した乳癌組織由来の初代乳房腫瘍細胞ＨＭＦＬ－ＸＮ３０及びＨＭＦＬ－ＸＮ２２（Ｐ３）の顕微鏡画像である。図２によれば、Ｍａｔｒｉｇｅｌでコーティングされた培養プレートが、何の処理もなされていない培養プレートよりも乳房腫瘍細胞の増殖に有利であることを確認することができる。

［実施例３］
乳癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞に対するアンフィレグリンの増殖効果
（１）初代乳房上皮細胞培養培地を、実施例２の工程（１）と同様にして調製した。さらに、アンフィレグリンを含まない別の初代培地を、初代乳房上皮細胞培養培地の処方からアンフィレグリンを除くことによって調製した。

（２）実施例１の工程（１）と同じ方法を使用することにより、２人の異なる乳癌患者の外科的切除された癌組織試料に由来する初代乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ２、ＨＭＦＬ－ＸＮ１２）及び乳癌患者の穿刺試料に由来する初代乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１３）を得た。

外科的切除された癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ２）を、Ｍａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）（BD Biosciences製）でコーティングされた１２ウェルプレートへと同じ密度（１ウェル当たり５×１０^４個の細胞）で接種した。アンフィレグリンを含む本発明の初代乳房上皮細胞培地及びアンフィレグリンを含まない初代培地において１群当たり２つの反復実験ウェルで、３７℃及び２０％の酸素濃度にて細胞を培養した。図３（Ａ）は、アンフィレグリンを含まない初代培養培地及びアンフィレグリンを含む初代培養培地において６日目まで培養した後に形成された腫瘍細胞クローンの顕微鏡画像（１００倍の倒立位相差顕微鏡下）を示しており、ここで、培養される細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ２）は、同じ乳癌患者から分離され、同じ細胞数（１ウェル当たり５×１０^４個の細胞）で接種された。

図３（Ｂ）は、それぞれアンフィレグリンを含まない初代培養培地及びアンフィレグリンを含む初代培養培地において、各群に２つの反復実験ウェルで１０日目まで培養した後の、３症例の乳癌組織由来の乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ２、ＨＭＦＬ－ＸＮ－１２、及びＨＭＦＬ－ＸＮ１３）についての細胞計数の結果を示している。図３（Ｂ）から、アンフィレグリンを含まない培養培地において培養した細胞の群をコントロールとすると、アンフィレグリンを添加することにより初代乳房上皮細胞の増殖が促進され、それにより初代乳房上皮細胞の増殖が少なくとも５０％から最大２５０％まで促進され得ることが分かる。

［実施例４］
乳癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞の連続培養及びそれについての成長曲線の作成
（１）初代乳房上皮細胞培養培地を、実施例２の工程（１）と同様にして調製した。コントロールとして、条件付き細胞リプログラミング技術用の別の培養培地（以下、「条件付き細胞リプログラミング培地」とも呼ぶ）を調製した。調製工程については、Liu et al., Nat Protoc., 12(2): 439-451, 2017を参照のこと。培養培地の処方を表２に示す。さらに、別のコントロールとして、乳腺オルガノイド用の培養培地（以下、「オルガノイド培地」とも呼ぶ）を調製した。調製工程については、非特許文献３を参照のこと。培養培地の処方を表３に示す。

（２）実施例１の工程（１）と同じ方法を使用することにより、２症例の乳癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１２及びＨＭＦＬ－ＸＮ２１）を得た。次に、ＨＭＦＬ－ＸＮ１２及びＨＭＦＬ－ＸＮ２１を、同じ密度（１ウェル当たり４×１０^４個の細胞）で以下の３つの培養条件下にて培養した：
Ａ．本発明の技術：初代乳房腫瘍細胞を、Ｍａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）（BD Biosciences製）でコーティングされた１２ウェルプレートへと１ウェル当たり４×１０^４個の細胞の密度で接種し、２ｍＬの本発明の初代乳房上皮細胞培養培地を使用して培養した；
Ｂ．条件付き細胞リプログラミング技術：初代乳房腫瘍細胞を、γ線照射されたマウス線維芽細胞系統Ｊ２細胞（Kerafastから購入）へと１ウェル当たり４×１０^４個の細胞の密度で接種し、１２ウェルプレートにおいて条件付き細胞リプログラミング培地（詳細な手順は、非特許文献４を参照）を使用して培養した；
Ｃ．初代乳房腫瘍細胞を、Ｍａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）（BD Biosciences製）でコーティングされた１２ウェルプレートへと１ウェル当たり４×１０^４個の細胞の密度で接種し、１２ウェルプレートにおいて２ｍＬのオルガノイド培地を使用して培養した。

上記の３つの培養において、３つの培養条件下で培地を４日ごとに一新して細胞を培養した。

（３）本発明の技術により培養した初代乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１２及びＨＭＦＬ－ＸＮ２１）については、培養プレートにおける細胞の成長がプレートの底部面積の約８０％を覆ったときに、１２ウェルプレートにおける培養培地の上清を廃棄し、１ｍＬの０．０５％トリプシン（Thermo Fisher：２５３０００６２）を添加して細胞を消化し、３７℃で１５分間インキュベートした後に、消化された細胞を１０％（容量／容量）のウシ胎児血清、１００Ｕ／ｍＬのペニシリン、及び１００Ｕ／ｍＬのストレプトマイシンを含む５ｍＬのＤＭＥＭ／Ｆ１２培地中に再懸濁し、得られたものを遠心分離チューブ内に収集して３５０ｇ／分で５分間遠心分離し、遠心分離された細胞沈降物を本発明の培養培地中に再懸濁し、細胞を血球計算盤で計数し、細胞を細胞外マトリックスゲルでコーティングされた別の１２ウェル培養プレートへと１ウェル当たり４×１０^４個の細胞の密度で接種して、更に培養した。

他の２つの培養条件下で培養した細胞を、上記と同様にして消化し、継代し、計数し、細胞をそれぞれ実施例４の工程（２）に記載される工程Ｂ又は工程Ｃに従って接種した。

継代した細胞が培養プレートにおいて成長してプレートの底部面積の約８０％を再び覆ったときに、培養細胞を上記の操作方法に従って消化し、収集し、計数した。細胞を再び１ウェル当たり４×１０^４個の細胞の密度で接種し、連続培養した。

以下は、様々な培養条件下での初代乳房上皮細胞の細胞集団の倍加数を計算する式である：
細胞集団の倍加数＝［ｌｏｇ（Ｎ／Ｘ_０）］／ｌｏｇ２
（式中、Ｎは継代する細胞数であり、Ｘ_０は最初の接種時の細胞数である）（Greenwood et al., Environ Mol Mutagen 2004, 43(1): 36-44を参照）。

図４（Ａ）及び図４（Ｂ）は、ＧｒａｐｈｐａｄＰｒｉｓｍ７．０ソフトウェアによって作成された３つの異なる培養条件下での２症例の細胞の成長曲線であり、横軸として培養日数を取り、縦軸として細胞集団の倍加数を取っている。図４（Ａ）及び図４（Ｂ）から、本発明の技術により培養した乳房上皮細胞の増殖速度が、条件付き細胞リプログラミング技術の増殖速度よりも高く、オルガノイド培養技術の増殖速度と同等であることを確認することができる。

図４（Ｃ）における細胞の写真は、３つの異なる培養条件下で３回目の継代（２７日目）まで培養したＨＭＦＬ－ＸＮ２１の顕微鏡画像（５０倍の倒立位相差顕微鏡下）である。

図５は、本発明の培養培地を用いて９日目及び２２日目まで培養したＨＭＦＬ－ＸＮ１２の顕微鏡画像（１００倍の倒立位相差顕微鏡下）の比較である。図５から、本発明の技術が、初代乳房上皮細胞を連続培養することができ、多数の継代及び連続培養後の細胞の形態が、継代前の形態と比較して大きく変化しないことを確認することができる。

［実施例５］
腫瘍組織由来の初代乳房腫瘍細胞の免疫マーカーの特定
（１）初代乳房腫瘍細胞培養培地を、実施例２の工程（１）と同様にして調製した。

（２）乳癌患者の外科的切除試料からほぼ大豆大の癌組織を採取し、１０ｍＬの４％パラホルムアルデヒド中に浸した。乳房上皮細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ７）を、残りの癌組織から実施例１の工程（１）と同様にして得た。ＨＭＦＬ－ＸＮ７を、実施例４の工程（３）に記載したのと同じ方法を使用して３回目の継代まで連続培養した。

（３）免疫蛍光アッセイを使用して、ヒト乳房腫瘍細胞上の重要な癌関連バイオマーカーの発現を検出した。使用した一次抗体は、ＣＫ８（Abcam製）、ＣＫ１４（Abcam製）、ＥＲ（Cell Signaling Technology製）、ＰＲ（Cell Signaling Technology製）、ＨＥＲ２（Cell Signaling Technology製）、及びＫｉ６７（Cell Signaling Technology製）であった。使用した二次抗体は、抗ウサギＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ），Ｆ（ａｂ’）２フラグメント（ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ（商標）４８８コンジュゲート）（Cell Signaling Technology製）、抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ），Ｆ（ａｂ’）２フラグメント（ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ（商標）５９４コンジュゲート）（Cell Signaling Technology製）であった。ＥＲ及びＰＲは、患者が内分泌療法を受け入れることができるかどうかを予測するのに重要な指標であり、ＨＥＲ２は、患者が抗ＨＥＲ２標的療法を受け入れることができるかどうかを予測するのに重要な指標であり、Ｋｉ６７は、乳癌の悪性度及び予後を判断する指標であり、ＣＫ８及びＣＫ１４は、乳癌の特定及び診断にも使用される上皮細胞用のバイオマーカーである。

本発明の技術に従って３回目の継代まで培養した乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ７）を、Ｍａｔｒｉｇｅｌでコーティングされたスライドガラス上に接種した。コーティング方法は、実施例１の工程（２）と同じであった。本発明の初代乳房上皮細胞培養培地を使用することによって細胞を培養し、スライドガラス上で細胞を成長させた。ＰＢＳバッファーで２回すすいだ後に、細胞を４％パラホルムアルデヒドで１５分間固定し、次にＴＢＳＴ（ＴＢＳ＋０．１％のＴｗｅｅｎ２０）中の１％のＢＳＡ、１％のＴｒｉｔｏｎＸ－１００とともに室温で１時間インキュベートした。細胞をＰＢＳバッファーにより毎回３分間で３回すすいだ。ＰＢＳ溶液を除去し、５０μＬの一次抗体希釈剤（抗体の使用説明書に従って調製）をスライド上に滴下し、細胞を室温で６０分間インキュベートし、次にＰＢＳにより毎回３分間で３回すすぎ、二次抗体希釈剤（抗体の使用説明書に従って調製）を滴加し、細胞を室温で６０分間インキュベートし、次にＰＢＳにより毎回３分間で３回すすいだ。細胞を１μｇ／ｍＬのＤＡＰＩ色素（Sigma製）とともに１０分間インキュベートした後に、ＰＢＳで１回すすいだ。１滴の封入剤（Thermo Fisher Scientific製）でカバースリップを密封した後に、細胞上の乳癌関連バイオマーカーＥＲ、ＰＲ、ＨＥＲ２、ＣＫ８、ＣＫ１４、及びＫｉ６７の発現を（４００倍の蛍光顕微鏡下で）写真撮影した。結果を図６（Ａ）に示した。免疫蛍光染色の結果は、本発明の技術により３回目の継代まで培養した乳房上皮細胞におけるＥＲ（＋）、ＰＲ（＋）、ＨＥＲ２（－）、及びＫｉ６７陽性細胞の数が約２０％であったことを示している。

（４）ＨＭＦＬ－ＸＮ７細胞の由来元の組織における乳癌に関連する重要なバイオマーカーの発現を、免疫組織化学によって検出した。組織を４％パラホルムアルデヒドで固定し、パラフィン中に包埋し、ミクロトームで４μｍの厚さの組織切片に切断した。次に、定型的な免疫組織化学的検出を行った（詳細な工程については、Yu et al., Science, 345(6193): 216-220, 2014を参照）。使用した一次抗体は、免疫蛍光で使用した一次抗体と同じであった。細胞上の癌関連バイオマーカーＥＲ、ＰＲ、ＨＥＲ２、ＣＫ８、ＣＫ１４、及びＫｉ６７の発現を（２００倍の生物学的顕微鏡下で）写真撮影し、結果を図６（Ｂ）に示す。患者に関する免疫組織化学の結果は、ＥＲ（＋）、ＰＲ（＋）、ＨＥＲ２（－）、及びＫｉ６７陽性細胞数が約２０％であったことを示している。

図６（Ａ）及び図６（Ｂ）により、本発明の技術によって乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ７）から３回目の継代まで培養した細胞上での乳癌関連バイオマーカーの発現が、細胞の由来元の組織切片上のマーカーの発現と一致していたことが確認される。これは、本発明の技術によって培養した細胞が、乳癌患者の癌組織の元の病理学的特徴を維持していることを示唆している。

［実施例６］
癌組織に由来する初代乳房腫瘍細胞の遺伝子突然変異及び核型分析
（１）遺伝子突然変異分析：乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１０、ＨＭＦＬ－ＸＮ１２）を、実施例４の工程（３）に従って本発明の方法によって連続培養し、３回目の継代までｉｎｖｉｔｒｏで培養した乳房腫瘍細胞（Ｐ３）及び乳癌患者に直接由来する継代されていない癌腫瘍細胞（Ｐ０）を遠心分離によって収集し、細胞のゲノムＤＮＡをＤＮｅａｓｙ血液・組織キット（DNeasy blood & tissue kit）（QIAGEN製）を使用して抽出した。細胞を提供した患者から２ｍＬの末梢血を収集し、同じ方法によってバックグラウンドコントロールとしてゲノムＤＮＡを抽出した。引き続き、細胞及び血液試料のゲノムＤＮＡに対して全エクソームシーケンシングを行い（詳細な手順については、非特許文献３を参照）、シーケンシングの結果を腫瘍の高頻度突然変異遺伝子について分析した。ＭｕＳｉＣソフトウェアを使用して、腫瘍の高頻度突然変異を分析した。ＭｕＳｉＣは、腫瘍試料を提供する患者の末梢血の遺伝子突然変異をバックグラウンドとして、遺伝子上の各突然変異型について統計的検定を行い、バックグラウンドよりも有意に高い突然変異率を有する遺伝子を検出した。分析結果は図７（Ａ）に示されている。図７（Ａ）のベン図は、本発明の技術を使用することによって培養した異なる継代の乳房腫瘍細胞が有する高頻度突然変異遺伝子の数のアラインメントを示している。ＨＭＦＬ－ＸＮ１０（Ｐ３）は、本発明の培養方法によって３回目の継代まで培養した乳癌患者からの乳房腫瘍細胞の高頻度突然変異分析を表し、ＨＭＦＬ－ＸＮ１０（Ｐ０）は、同じ乳癌患者に由来する最初に分離された継代されていない乳房腫瘍細胞の分析を表している。上記の分析結果は、https://bioinfogp.cnb.csic.es/tools/venny/index.htmlで利用可能なソフトウェアを使用して作成された。腫瘍の高頻度突然変異分析の結果は、２つの群の高頻度突然変異遺伝子が実質的に同じであったことを示している。ＨＭＦＬ－ＸＮ１２細胞及びＨＭＦＬ－ＸＮ１０細胞は、同じ方法を使用して並行して操作されていた。図７（Ａ）により、本発明の技術によって培養した癌組織由来の乳房腫瘍細胞が、患者の癌組織の元の遺伝子突然変異特徴を維持し得ることが確認される。

（２）染色体核型分析：乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１０）を、実施例４の工程（３）に従って本発明の同じ方法を使用して３回目の継代（Ｐ３）まで連続培養した。細胞を収集する１日前に、０．１μｇ／ｍＬのコルカミン（Gibco製）を培養培地に添加し、１６時間後に、細胞を消化し、収集し、７５ｍＭの低透過性ＫＣｌで処理し、次に３：１のメタノール：氷酢酸溶液で３０分間固定した。固定した細胞をスライドガラス上に均一に滴下して乾燥させ、細胞核を５ｍｇ／ｍｌのＤＡＰＩ（Sigma製）で１５分間染色し、共焦点レーザー顕微鏡（Leicaから購入）を使用して細胞中期を写真撮影し、染色体を対で整列させた。

図７（Ｂ）は、ＨＭＦＬ－ＸＮ１０について本発明の技術を使用することによって３回目の継代まで培養した乳房腫瘍細胞の染色体形態及び数が正常であり、倍数性又は低倍数性が現れないことを示しているが、核内の染色体は２回複製され、幾つかの染色体は互いに接近していて、腫瘍細胞の核型と一致していることから、細胞が異常な染色体を有し、腫瘍細胞の特徴を有することが示唆される。図７（Ｂ）により、本発明の培養方法によって培養した癌組織由来の乳房腫瘍細胞が、乳癌患者の染色体核型特徴を維持し得ることが確認される。

［実施例７］
マウスにおける癌組織由来の初代乳房腫瘍細胞の異種移植腫瘍形成実験
乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ５、ＨＭＦＬ－ＸＮ２９）を、実施例１における工程（１）と同じ方法を使用することによって、２症例の病理学的に診断されたトリプルネガティブ乳癌患者の癌組織から分離して得た。ＨＭＦＬ－ＸＮ５及びＨＭＦＬ－ＸＮ２９を、それぞれ実施例２の工程（２）の方法に従って培養し、乳房腫瘍細胞の数が１×１０^７個に達したとき、乳房腫瘍細胞を消化し、実施例４の工程（３）に記載されるように本発明の同じ方法を使用して収集した。本発明の乳房腫瘍細胞培養培地及びＭａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）（BD Biosciences製）を１：１の比率で混合し、Ｍａｔｒｉｇｅｌと混合した１００μＬの培養培地を使用して５×１０^６個の乳房腫瘍細胞を再懸濁し、得られたものを６週齢の雌の高度免疫不全マウス（ＮＣＧ）（南京モデル動物研究センター（Nanjing Model Animal Research Center）から購入）の乳房脂肪パッド及び右前肢の腋窩にそれぞれ注射した。乳房腫瘍細胞から生成されたマウスにおける腫瘍の体積及び成長速度を３日ごとに観察して写真撮影した。

図８により、腫瘍細胞接種後１３日目にマウスの２つの腫瘍細胞接種部位において腫瘍形成が観察され得ることが確認される。１３日目から２２日目まで、マウスにおける腫瘍増殖は明らかであった。これは、本発明の培養方法により培養した癌組織由来の乳房腫瘍細胞がマウスにおいて腫瘍形成性を有することを示している。

［実施例８］
癌組織由来の乳房腫瘍細胞の薬物感受性機能的試験
乳癌患者の外科的切除試料を例に取ると、患者由来の乳房腫瘍試料から培養した乳房腫瘍細胞を使用して、様々な薬物に対する患者の腫瘍細胞の感受性を試験することができることが確認される。

１．初代乳房腫瘍細胞の播種：実施例４の工程（３）に従って本発明の同じ方法によって得られた乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ５、ＨＭＦＬ－ＸＮ７、ＨＭＦＬ－ＸＮ１０、ＨＭＦＬ－ＸＮ１２、及びＨＭＦＬ－ＸＮ２９）の単一細胞懸濁液を、３８４ウェルプレートにおいて１ウェル当たり３０００個～５０００個の細胞の密度で接種し、細胞を一晩付着させた。

２．薬物勾配実験：
（１）薬物貯蔵プレートを勾配希釈法によって調製した：１０μＬの試験される薬物ストック溶液（薬物ストック溶液の濃度は、人体における薬物の最大血中濃度Ｃｍａｘの２倍に基づいて決定された）をそれぞれ取り、２０μＬのＤＭＳＯを含む０．５ｍＬのＥＰチューブに加え、上記のＥＰチューブからの１０μＬの溶液を、２０μＬのＤＭＳＯを入れた２つ目の０．５ｍＬのＥＰチューブへとピペットで移した。つまり、薬物を１：３の比率で希釈した。上記の方法を繰り返して段階的に希釈し、投薬に必要とされる７個の濃度を得た。異なる濃度の薬物を３８４ウェルの薬物貯蔵プレートに加えた。等容量のＤＭＳＯを、コントロールとして溶剤コントロール群の各ウェルに加えた。この実施例において、試験される薬物は、エピルビシン（MCE製）、ラパチニブ（MCE製）、ドセタキセル（MCE製）、及びタモキシフェン（MCE製）であった。

（２）高スループット自動ワークステーション（Perkin Elmerから購入）を使用して、３８４ウェルの薬物貯蔵プレートにおける様々な濃度の薬物及び溶剤コントロールを、乳房腫瘍細胞が播種された３８４ウェルの細胞培養プレートに加えた。薬物群及び溶剤コントロール群を、それぞれ３つの反復実験ウェルで配置した。各ウェルに加えた薬物の容量は１００ｎＬであった。

（３）細胞生存率の試験：投与７２時間後に、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏアッセイキット（Promega製）を使用して、薬物投与後の培養細胞の化学発光値を検出した。化学発光値の大きさは、細胞生存率及び細胞生存率に対する薬物の効果を反映している。調製されたＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ検出液を各ウェルに加え、マイクロプレートリーダーを使用して、混合後に化学発光値を検出した。

ＧｒａｐｈｐａｄＰｒｉｓｍ７．０ソフトウェアを使用してグラフを作成し、半阻害率ＩＣ_５０を計算した。

（４）薬物感受性試験の結果を図９に示す。

図９（Ａ）～図９（Ｄ）はそれぞれ、５人の異なる乳癌患者の外科的切除された癌組織試料から培養した乳房腫瘍細胞の、２つの化学療法薬のエピルビシン及びドセタキセル、内分泌療法薬のタモキシフェン、並びに標的薬のラパチニブに対する感受性を表している。これらの結果は、同じ患者からの細胞が異なる薬物に対して異なる感受性を有し、異なる患者からの細胞も同じ薬物に対して異なる感受性を有することを示している。

詳細には、ホルモン受容体陽性でＨＥＲ２受容体陰性の乳癌患者に由来する乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ７）は、他の患者よりも内分泌療法薬のタモキシフェンに対して感受性が高く、０．９８μＭの半阻害率を有するが、ＨＥＲ２標的薬のラパチニブに対する感受性はより低く、２．５μＭの半阻害率を有していた。ＨＥＲ２陽性の乳癌患者に由来する乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ１２）の試験結果は、この細胞が他の患者よりも抗ＨＥＲ２標的薬のラパチニブに対して感受性が高く、０．９２μＭの半阻害量を有することを示している。さらに、トリプルネガティブ乳癌患者に由来する乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ２９）は、他の患者からの乳房腫瘍細胞よりも内分泌療法薬のタモキシフェン及び抗ＨＥＲ２標的薬のラパチニブに対する感受性が低かった。一方で、別のトリプルネガティブ乳癌患者からの乳房腫瘍細胞（ＨＭＦＬ－ＸＮ５）は、４つの試験薬物のいずれに対しても感受性がなかった。

図９によれば、本発明によって乳癌患者の癌組織から培養した乳房腫瘍細胞の化学療法薬及び標的薬に対する感受性試験の結果が、患者の臨床病理学的分子タイピングと一致したことが確認されることから、本発明の技術によって培養した乳房腫瘍細胞が、乳癌患者の臨床的有効性の予測において潜在的な用途を有することが示唆される。

本発明を一般的な説明及び特定の実施形態により上記で詳細に記載してきたが、本発明に基づいて、幾つかの変更又は改善を行うことができ、これらは当業者には明らかである。したがって、本発明の趣旨から逸脱せずに行われるこれらの変更又は改善は、本発明の保護範囲内にあるべきである。

本発明は、ｉｎｖｉｔｒｏで初代乳房上皮細胞を培養又は増殖させる培養培地及び培養方法を提供する。本発明の初代乳房上皮細胞の培養培地及び培養方法から得られた細胞モデルを使用して、乳房疾患を治療する薬物を評価又はスクリーニングすることができる。

Claims

初代乳房上皮細胞を培養する初代細胞培養培地であって、前記培地がアンフィレグリンを含むことを特徴とする、初代細胞培養培地。
前記アンフィレグリンの含有量は、１０ｎｇ／ｍｌ～１００ｎｇ／ｍｌであることを特徴とする、請求項１に記載の初代細胞培養培地。
前記培地は、上皮成長因子、インスリン、Ｂ２７、ＲＯＣＫキナーゼ阻害剤Ｙ２７６３２、ニューレグリン１、線維芽細胞成長因子７、ＴＧＦβタイプＩ受容体阻害剤Ａ８３０１、及びＰ３８／ＭＡＰＫ阻害剤ＳＢ２０２１９０の１つ以上又は全てを更に含むことを特徴とする、請求項１に記載の初代細胞培養培地。
上皮成長因子の含有量は、２．５ｎｇ／ｍｌ以上、好ましくは２．５ｎｇ／ｍｌ～２０ｎｇ／ｍｌであり、
インスリンの含有量は、１μｇ／ｍｌ～１０μｇ／ｍｌであり、
Ｂ２７は、１：２５～１：１００の最終濃度で希釈され、
Ｙ２７６３２の含有量は、５μＭ～１５μＭであり、
ニューレグリン１の含有量は、５ｎＭ～２０ｎＭであり、
線維芽細胞成長因子７の含有量は、２．５ｎｇ／ｍｌ～２０ｎｇ／ｍｌであり、
Ａ８３０１の含有量は、１００ｎＭ～５００ｎＭであり、
ＳＢ２０２１９０の含有量は、１００ｎＭ～５００ｎＭであることを特徴とする、請求項３に記載の初代細胞培養培地。
前記培地は、血清、ウシ脳下垂体抽出物、Ｗｎｔアゴニスト、Ｒ－スポンジンファミリータンパク質、ＢＭＰ阻害剤、線維芽細胞成長因子１０、ニコチンアミド、及びＮ－アセチルシステインを含まないことを特徴とする、請求項１に記載の初代細胞培養培地。
前記初代乳房上皮細胞は、乳房腫瘍細胞、正常乳房上皮細胞、又は乳房上皮幹細胞であることを特徴とする、請求項１～５のいずれか一項に記載の初代細胞培養培地。
初代乳房上皮細胞の培養方法であって、以下の工程：
（１）請求項１～６のいずれか一項に記載の初代細胞培養培地を調製する工程と、
（２）培養容器を細胞外マトリックスゲル希釈剤でコーティングする工程と、
（３）コーティングされた前記培養容器において初代乳房上皮細胞を接種し、前記細胞を、正常酸素条件又は低酸素条件下で前記初代細胞培養培地を使用することによって培養し、前記初代乳房上皮細胞が前記培養容器の底部面積の８０％～９０％を占める細胞密度まで成長したときに前記細胞を消化して継代する工程と、
を含むことを特徴とする、培養方法。
前記細胞外マトリックスゲルは、低成長因子型のものであり、
前記細胞外マトリックスゲルは、無血清培地で希釈され、前記細胞外マトリックスゲルの希釈比は、１：５０～１：４００であり、
前記コーティングする工程は、希釈された前記細胞外マトリックスゲルを前記培養容器へと加えて、前記培養容器の底部を完全に覆い、３０分間以上放置することを含むことを特徴とする、請求項７に記載の培養方法。
乳房疾患を治療する薬物の有効性を評価する方法であって、以下の工程：
（１）請求項７又は８に記載の培養方法を使用することによって乳房上皮細胞を培養する工程と、
（２）試験する薬物を選択する工程と、
（３）基準として前記薬物の最大血漿濃度Ｃｍａｘに基づき、初期濃度としてＣｍａｘの２倍～５倍を取り、前記薬物を種々の薬物濃度勾配へと希釈する工程と、
（４）工程（１）において培養した前記乳房上皮細胞を消化して単一細胞懸濁液にし、細胞外マトリックスゲルを含む請求項１～６のいずれか一項に記載の初代細胞培養培地で前記単一細胞懸濁液を希釈し、希釈された前記細胞懸濁液を１ウェル当たり１０００個～１００００個の細胞の密度でマルチウェルプレートに加え、一晩付着させる工程と、
（５）工程（４）において得られた付着細胞に前記薬物を勾配希釈で添加する工程と、
（６）細胞生存率を検出する工程と、
を含むことを特徴とする、方法。
細胞生存率の検出において、細胞生存率検出試薬を各ウェルに加え、均一に振盪した後に、蛍光マイクロプレートリーダーを用いて各ウェルの化学発光強度を測定し、測定値に基づいて薬物用量－効果曲線をプロットし、細胞の増殖に対する各薬物の阻害強度を計算することを特徴とする、請求項９に記載の方法。