JP2023160814A - 標的物質の検出方法および試薬 - Google Patents
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Abstract
Description
分離した前記標識物質を含む部分を、遠心力によって、管状路内に充填された液体中を移動させ、
前記管状路内に照射された光を前記標識物質を含む部分が散乱する散乱光により、前記標識物質を含む部分を検出することを含む、標的物質の検出方法を提供する。
前記複合体から前記標識物質を含む部分を分離する前に、前記複合体が前記管状路への流入を抑止された状態で前記複合体を洗浄する洗浄処理を実施する。
回転可能に形成されたデバイスに、前記洗浄液を貯留する第1の貯留室と、前記チャンバと、前記チャンバから流出する液体を貯留する第2の貯留室とを、この順で前記デバイスの回転中心側から外方側に向けて配置し、前記第1の貯留室と前記チャンバを開閉自在な流路で連通し、前記チャンバと前記第2の貯留室を前記管状路で連通し、
前記デバイスを回転させることにより、前記洗浄液を前記第1の貯留室から前記チャンバに給液した後、前記管状路を経由して前記第2の貯留室へ排出させて前記洗浄処理を実施することを含む。
前記デバイスの前記チャンバよりも回転中心側に、前記複合体から前記標識物質を含む部分を分離する試薬を含む液体を貯留する第3の貯留室を配置し、前記第3の貯留室と前記チャンバを開閉自在な流路で連通し、
前記デバイスを回転させることにより、前記洗浄処理の後、前記チャンバに前記試薬を含む液体を給液して、前記標識物質を含む部分を分離した後、分離した前記標識物質を含む部分を前記管状路内に移動させることを含む。
本発明の他の好ましい実施形態によれば、前記標識物質は、金属、セラミックス、ガラス及び樹脂からなる群より選ばれた1つを主たる構成成分とする微粒子である。
本発明の他の好ましい実施形態によれば、前記標識物質は金属コロイド粒子である。
本発明の他の好ましい実施形態によれば、前記固相は、前記複合体を形成する際に使用される容器内側の構造体である。
本発明の他の好ましい実施形態によれば、上記本発明の試薬は、pH調整剤、変性剤、還元剤、酸化剤、酵素、及び競合剤からなる群より選ばれた少なくとも1つを含む。
本発明の他の好ましい実施形態によれば、上記本発明の試薬は、pH調整剤を含む。
本発明の検出方法では、複合体から分離した標識物質を含む部分を、遠心力によって管状路内に充填された液体中を移動させるため、標識物質を含む部分は、管状路内に充填された液体中に断続的に供給される。そして、その管状路に照射される照射光が該標識物質を含む部分によって散乱されることで生じる散乱光により標識物質を含む部分を検出する。複合体は、標識物質に結合した第1の捕捉物質と、固相に固定された第2の捕捉物質との間に標的物質をサンドイッチすることにより形成される。このため、複合体から分離した標識物質を含む部分を検出することで標的物質を検出することができる。
また、粒子の半径r2、粒子密度ρp、液体密度ρlとすれば、その粒子に働く遠心力Fcは下記式(2)で表される。
ストークスの抵抗法則によれば、粘度ηの液体中を速度vsで移動する半径r2の球体が受ける抵抗Frは下記式(3)で表される。
FcとFrは粒子の終端速度において釣り合うので、下記式(4)で表され、式(4)の粒子半径r2を、直径Dpを用いて置き換えると、粒子の移動速度vsは下記式(5)で表される。
つまり、遠心力が作用すると、粒子の直径(Dp:cm)、粒子の密度(ρp:g・cm-3)、液体の密度(ρl:g・cm-3)、溶液の粘度(η:poise;g・cm-1・s-1)などが関係して、粒子の移動速度(vs:cm/sec)、が定まる。換言すれば、同じ液体中であれば、粒子の密度、粒子径が大きい粒子は、液体中をより早く移動することとなる。予め密度と粒径が既知である粒子については、式(5)に基づいて、移動速度や所定位置までの移動時間を推定することができる。
更に、検出対象は、管状路を移動するものであるので、その散乱光は、間欠的な信号となる。このため継続して発生している散乱光は、何らかの要因によるバックグランドノイズとして識別でき、検出対象の散乱光を特異的に検出できることとなる。
また、かかる所定時間に断続的に発生する散乱光については発生回数をカウントすることができる。このカウントに基づき、管状路に供給された標識物質を含む部分の数、即ち標的物質の数を定量評価することができる。特に、試料中の標的物質の数が少ない微量分析の場合には、定量性に優れたものとなる。
本発明の測定方法において分析対象となる標的物質は、特定の生体分子に結合するものであり、生化学的な反応によって特定の生体分子に結合するものでもよい。例えば、免疫学的又は遺伝子学的に検出できるものであり、特に限定されるものではない。標的物質として、具体的には、例えば、細菌やウイルスなどの病原体、タンパク質、ペプチド、DNA、RNA、アプタマーなどの核酸、エクソソーム、糖鎖などの各種化合物等が例示される。更には、ホルモンなどの生理活性物質や、そのアゴニスト、アンタゴニスト、アルカロイドなどが例示される。
本発明の第1の捕捉物質は、第2の捕捉物質に捕捉された標的物質に結合し、固相に固定された第2の捕捉物質との間で標的物質をサンドイッチして、固相に固定された複合体、すなわち、固相-第2の捕捉物質-標的物質-第1の捕捉物質(標識物質に結合した第1の捕捉物質)の順に結合した複合体を形成する。標的物質が抗原である場合は、第1の捕捉物質は、標的物質に対して特異的に反応する抗体が使用される。一方で標的物質が抗体である場合は、第1の捕捉物質としては、当該抗体が特異的に結合する抗原を用いてもよく、また当該抗体に結合する抗体であって第2の捕捉物質とは別の抗体であってよく、更に当該抗体を産生する宿主とは別の宿主で作製された抗体を使用してもよい。このため、標的物質が抗体である場合には、固相-抗原(第2の捕捉物質)-標的物質-抗原(第1の捕捉物質)または抗体(第1の捕捉物質)となる複合体や、固相-抗体(第2の捕捉物質)-標的物質-抗原(第1の捕捉物質)または抗体(第1の捕捉物質)となる複合体が形成される。
本発明の第2の捕捉物質は、標的物質を固相上に捕捉する機能を有するものであり、固相上に固定して使用され、例えば、標的物質が抗原である場合は、標的物質に対して特異的に反応する抗体が使用され、標的物質が抗体である場合は、該抗体が特異的に反応する抗原又は抗体が使用される。
なお、標識物質の立体障害によって、第1の捕捉物質が固相上に捕捉された標的物質にアクセスすることに大きな影響が出る場合には、固相上の第2の捕捉物質の分布がまばら、つまり疎密となるように、第2の捕捉物質を固相に結合する際に、その濃度等を適宜調整してもよい。
標識物質は第1の捕捉物質を標識するものであり、散乱光を生じさせるものであれば特に制限されない。例えば、ガラス、セラミックス、金属などの無機物や、蛍光物質又は樹脂などを主たる構成成分とする微粒子が挙げられる。樹脂の粒子としては、ポリスチレンラテックスなどの合成ラテックス、天然ゴムラテックスなどのラテックスや、ポリスチレン等に代表される合成樹脂などの粒子が例示される。また、標識物質は、単一素材で構成されたものであっても、複数素材で構成されたものであってもよい。更に、無機-有機の異種材料が組み合わされたものであってもよい。異種材料の組合せとしては、例えば、樹脂粒子やセラミックス粒子に金属粒子が担持された複合粒子や、樹脂粒子に金属が被覆された複合粒子であってもよい。また、樹脂粒子に蛍光物質が担持されたものであってもよいが、これらに限られない。
本発明の検出方法では、反応場で、固相上に第2の捕捉物質-標的物質-第1の捕捉物質(標識物質に結合した第1の捕捉物質)の複合体が形成された後、この複合体から標識物質を含む部分を切り出し(分離させ)、固相から液中に遊離させる。この切り出し及び分離は、複合体が液体に含侵された状態で行われる。管状路が液体で充填されていることに加え、反応場にも液体が貯留されて固相が液体に浸漬されている状態にすると、管状路と反応場とが液体で連通する。切り出しによって固相から分離された反応場の液中の標識物質を含む部分は、遠心力によって管状路内に充填された液体中に断続的に供給される。上記したように、この分離部分は、標識物質を含んでいればよく、標識物質を含む第1の捕捉物質そのままの状態である必要はない。つまり標識物質または標識物質を含む部分が分離される限りにおいて、複合体内のいずれの結合が切断されても良い。
固相は、第2の捕捉物質が結合する不溶性の固体である。反応場に留置できる形態、形状、大きさに加工されている。
かかる固相は、好適には、粒状体、繊維状体、織布、不織布が用いられ、より好適には、粒状体、繊維状体が用いられ、更に好適には粒状体が用いられる。
本実施形態において標的物質の検出方法は、第2の捕捉物質が予め固定化された固相を有する反応場に試料を導入し、固相上の第2の捕捉物質と試料中の標的物質を反応させた後に第1の捕捉物質を導入して、標的物質をサンドイッチした複合体を形成する。その後、余剰の第1の捕捉物質を反応系外へ排出する。そして、上述したように、複合体の結合を切断して、標識物質を含む部分を分離させる。この標識物質を含む部分を分離させるまでの工程が反応場で行われる。固定される第2の捕捉物質の固相上の面密度は予め調整することができる。このため、このように第2の捕捉物質に標的物質を反応させた後第1の捕捉物質を導入することで、検体に含まれる標的物質の濃度が低濃度から高濃度の広い範囲において、検出の定量性を向上させることができる。
つまり、複合体を形成する工程としては、上述のように固相に固定された第2の捕捉物質に標的物質を反応させた後、標識物質に結合した第1の捕捉物質を反応させて複合体を形成するものに限定されない。例えば、標識物質に結合した第1の捕捉物質に標的物質を反応させた後、固相に固定された第2の捕捉物質を反応させて複合体を形成してもよく、標識物質に結合した第1の捕捉物質と、標的物質と、固相に固定された第2の捕捉物質を同時に反応させて複合体を形成してもよい。
検出場(第2の反応場)は、反応場(第1の反応場)で分離された標識物質を含む部分が導入され、その標識物質を含む部分に起因する散乱光を検出する場である。この検出場には、標識物質を含む部分が移動する管状路が配置され、この管状路に向かって照射光を照射する光源と、管状路の標識物質から放射される散乱光を検出する受光素子とが設けられる。
なお、管状路の断面が楕円形や長方形などの異方形である場合には、断面短手方向が管状路の流路高さとされ、長手方向が流路幅となるように形成される。そして、高さ方向が上記の内径となるように管状路は設計される。
また、照射光が入射する界面においてノイズとなる反射光が生じるが、光源および受光素子のそれぞれの位置、角度を調整することにより、反射光のノイズを低減し、標識物質からの散乱光を適切に検出することができる。
これを移動速度vについて解くと下記の数式で表される。
Uは流速(m/s)、Qは流量(m3/s)、Aは流路断面積(m2)、dHは水力直径(m)、ρは流体の密度(kg/m3)、ωは角速度(rad/s)、r1は流路中の液の平均の回転半径(m)、Δrは流路出入口の回転半径差、ηは流体の粘度(kg/m・s)、Lは流路長さ(m)である。
デバイスは、バイオディスクやマイクロリアクタとも称されるものであり、複合体を保持し、必要に応じて反応を行うための反応チャンバ(上述の反応場に対応する)と、検出対象を移動させる管状路(上述の検出場に対応する)とを少なくとも備え、必要に応じ、液体が流通する微小径の流路や、試薬や液体を貯留する貯留室が形成され、生物試料の分析に使用されるものとなっている。また、本デバイスは、遠心力を付与するため回転可能に形成されている。
洗浄液貯留室に貯留される洗浄液で管状路を充填する場合において、排液貯留室は、例えば少なくとも一部が管状路に対して回転中心側に配設されるときは、管状路に連通していない側の端部が管状路の回転中心側の開放端(上記一方の開放端)と回転中心から等距離またはそれよりも短い距離に位置するように配設すればよい。そして、排液貯留槽及び管状路において少なくとも管状路の回転中心側の開放端に達する容量の洗浄液を洗浄貯留室に貯留すればよい。排液貯留室の全部が管状路に対して外方側に配設される場合には、排液貯留室と管状路との総内容量を超え、排液貯留室と管状路と反応チャンバとの総内容量に満たない量の洗浄液を洗浄液貯留室に貯留すればよい。このような量の洗浄液を貯留することで、洗浄後、管状路が洗浄液で充填され、反応チャンバにも液体が貯留されると共に、反応チャンバの残りの空間に標識物質を含む部分の切断試薬を受容できることとなる。
散乱光検出を行うために検出場に配置される各装置は、情報処理装置によって電気的に制御される。また、受光した散乱光に基づき信号処理が実施され、散乱光をシグナルとして標識物質(標識物質を含む部分)が検出される。
本発明の検出方法においては、デバイスを回転させて発生する遠心力によって検出対象たる標識物質を管状路内において移動させる。その移動速度は、標識物質、管状路に充填する液体、付与する遠心力が既知であれば求めることができる。また、回転数とレーザ光源のスポット径とから許容される標識物質の移動速度も算出できる(上記式(7))。これらに基づき、回転速度の設定可能範囲を導出することができる。
受光素子は、所定の回転半径の位置からの散乱光を検知する。言い換えれば所定の回転半径の位置にレーザ光源からの照射光が照射され、そのスポット径が検出領域となる。受光素子は、検出領域からの散乱光を検出する位置に配設される。受光素子としては、例えば、フォトダイオード、アバランシェフォトダイオード、光電子増倍管、CMOS、CCDが例示できるが、これに限られるものではない。
本実施形態にかかる標的物質(抗体)の例示的な検出方法1について説明する。本検出方法は、図1を用いて説明した検出方法の概要を抗体検査に具体化したものである。本法では、まず、標的物質に対する抗原(第2の補足物質)を常法に従いポリスチレンビーズ(固相)表面に固定化する。次いで、ブロッキングを行ってから、所定容量の容器にポリスチレンビーズ(固相に固定された第2の補足物質)を導入する。ポリスチレンビーズは、バッファーに分散させた状態で導入し、次いで、ろ過や遠心分離などを適宜実施して溶媒を除去する。その後、標的物質(抗体)を含む血清などの試料を加えて、一定時間ビーズと接触させて反応させた後、必要な場合はバッファーによって洗浄し、次いで二次抗体溶液(標識物質に結合した第1の捕捉物質)を加えて、一定時間反応させる。なお、ここでは、標識物質は金属コロイド粒子とする。これにより、ビーズ上に、抗原-抗体-二次抗体のサンドイッチ様式の免疫複合体が形成される。バッファーで洗浄した後、pH0~4又は、pH10~14となるように切断試薬(pH調整剤)を導入して、金属コロイド粒子を含む部分を固相上に形成された免疫複合体から遊離させる。
本実施形態にかかる標的物質(抗原)の例示的な検出方法2について説明する。本検出方法は、図1において概要を説明したサンドイッチ方式と称される免疫測定法について更に具体化したものである。本法では、まず、リン酸緩衝生理食塩水(以下、PBSと称する)または緩衝液を用いて標的物質に対する抗体(第2の捕捉物質)を適切な濃度に希釈し、常法に従いポリスチレンビーズ(固相)表面に抗体を固定化する。次いで、ブロッキングを行ってから、所定容量の容器に所定容量のポリスチレンビーズ(固相に固定された第2の捕捉物質)を充填する。標的物質(抗原)を含む血清などの試料を加えて、一定時間ビーズと接触させて反応させた後、バッファーによって洗浄し、続いて金属コロイド粒子で標識された一次抗体(標識物質に結合した第1の捕捉物質)を加えて抗原と結合させる。これによりスチレンビーズ上に、抗体-抗原-抗体のサンドイッチ様式の免疫複合体が形成される。
本ディスク1は、洗浄回数を1回とする構成であるが、洗浄回数が複数になる場合は、洗浄液貯留室13は複数に区画して設けられ、それぞれに流路が設けられる。そして、各流路は、反応チャンバ10に接続される。また、それぞれの流路は流路16が開通するよりも低い回転数で且つ異なる回転数でそれぞれ開通するように設計される。
標識物質に結合した第1の捕捉物質に標的物質が捕捉されて形成された複合体と、標的物質を捕捉していない前記第1の捕捉物質が混在する試料に、前記第1の捕捉物質に特異的に結合する結合剤を接触させて、標的物質を捕捉していない前記第1の捕捉物質を前記結合剤に結合させることと、前記結合剤を試料が貯留されるチャンバに留置することと、遠心力を付与し、前記複合体を前記チャンバから導出して液体が充填された管状路を移動させ、前記管状路を移動する前記複合体が照射光を散乱して生じる散乱光により、前記複合体を検出する標的物質の検出方法が示される。
結合剤は、第1の捕捉物質と特異的に結合するものであり、好適には抗原が例示される。また、抗原は、直接的に内壁や固体などの固相に担持されてもよく、抗体等を介して間接的に固相に固定されてもよい。また、例えば、結合剤に抗原を用いる場合に、この抗原にビオチンなどのタグを付加しておき、固相の方にアビジンを結合させておけば、ビオチンーアビジンの結合によって結合剤を固相に固定化することができる、
使用するガラス器具をすべて王水にて洗浄した。390mLの超純水をフラスコに入れて沸騰させ、この沸騰水に塩化金酸水溶液(水溶液1リットル当たり金として1g、片山化学工業株式会社製)30mLを加え、その後、1重量%クエン酸ナトリウム水溶液60mLを添加した。クエン酸ナトリウム水溶液の添加後に、塩化白金酸水溶液(水溶液1リットル当たり白金として1g、和光純薬工業株式会社製)数十mLを加えた。さらにその5分後に、1重量%クエン酸ナトリウム水溶液60mLを加え、4時間還流を行い、白金-金コロイド懸濁液を得た。なお、標識物質を含む部分を的確に検出できるよう、適宜、試薬や還元剤を添加してコロイドの粒径が100nm以上となるように調整した。
市販のSARS-CoV-2 ヌクレオカプシドタンパク質(以下、単に「SARS-CoV-2NP」と称す)(CUSABIO社)を免疫用抗原として、常法に従い抗SARS-CoV-2NPモノクローナル抗体(以下、単に「抗NP抗体」と称す)を取得した。
塩化金酸水溶液(水溶液1リットル当たり金として1g、片山化学工業株式会社製)を原料とし常法に従い金コロイド粒子を調整した。具体的には、加熱によって沸騰させた純水99mlに、1%(v/w)塩化金酸水溶液1mlを加え、さらに、その1分後に1%(v/w)クエン酸ナトリウム水溶液1.5mlを加えて加熱し5分間沸騰させた後、室温に放置して冷却した。次いで、この溶液に200mM炭酸カリウム水溶液を加えてpH9.0に調製し、これに超純水を加えて全量を100mlとして金コロイド粒子が懸濁する金コロイド懸濁液を得た。なお、所望の粒径が得られなかった場合には、塩化金酸に対する還元剤の添加量等を適宜調整し、必要な粒径の金コロイド粒子を作製した。
(1)白金-金コロイド標識抗体溶液の調製
参考例2で取得した抗NP抗体から選択した1の抗NP抗体に対して、以下の手順で白金-金コロイド標識を行った。抗NP抗体のタンパク質換算重量1μg(以下、タンパク換算重量を示すときは、その精製タンパク質の重量分析による重量数値で示す)と参考例1で調製した粒径120nmの白金-金コロイド懸濁液1mLを混合し、2分間室温で静置することで白金-金コロイド粒子の表面に抗NP抗体を結合させた。その後、全体液量に対して最終濃度が1、0%となるように10%ウシ血清アルブミン(以下、「BSA」と記す)水溶液を加え、白金-金コロイド粒子の残余表面をBSAでブロッキングすることで、白金-金コロイド標識抗NP抗体溶液を調製した。その後、この溶液を遠心分離(600×g、25分間)し、白金-金コロイド標識抗NP抗体を沈殿させ、上清を除去することで白金-金コロイド標識抗NP抗体を取得した。取得した白金-金コロイド標識抗NP抗体を10%サッカロース・1%BSA・0.5%Triton-X100(商品名)を含有する50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4)に懸濁することで白金-金コロイド標識抗体溶液とした。
参考例2で取得した抗NP抗体のうち、前述の白金-金コロイド標識抗NP抗体に用いた抗NP抗体とは別の抗体をトリス塩酸緩衝液にて20μg/mLに調整した抗体希釈液を作製し、96ウェルマイクロプレートの各ウェルに当該抗体希釈液100μLを加え15-18時間静置して抗体を固相化した。その後、ブロッキング処理を施してから、10ng/mLに調整されたSARS-CoV-2NP溶液50μLと、白金-金コロイド標識抗体溶液50μLとを加え、37℃で10分間静置した。続いて、TBS-T(Tris Buffered Saline with Tween 20)で洗浄し、洗浄液を排出した後にpHの異なる各種の試薬を100μL加え、室温で2分間静置した後、ウェル内の溶液を回収した。用いた試薬の種類およびpH値を表1に示す。pH値はpHメーター(LAQUA 堀場社製)を用いて測定した。
上記の操作によって回収した溶液について、含有する白金-金コロイド粒子量を測定した。具体的には、試料セルに回収した溶液を導入し、試料セルに対し650nmのレーザ光を照射して得られる散乱光を、所定位置にセットしたフォトダイオードで測定した。
実施例1の結果、水酸化ナトリウム溶液の切断能力が特に良好であったため、固相に結合する複合体(固相-抗NP抗体-SARS-CoV-2NP-白金-金コロイド標識抗NP抗体)からの標識物質を含む部分の切断性能を、水酸化ナトリウムの濃度を変更し、更に評価を行った。
図6からもわかるように、10mM以上の濃度で、水酸化ナトリウムは、免疫複合体の白金-金コロイド粒子を含む部分を、分離(遊離)させることが明らかとなった。なお、10mMの水酸化ナトリウム溶液のpHは、11.87であった。
実施例1と同様の方法で抗NP抗体を固相化しブロッキング処理を施したウェルを備えたマイクロプレートを準備した。そして、
このマイクロプレートのウェルを固相として形成した複合体(固相-抗NP抗体-SARS-CoV-2NP-白金-金コロイド標識抗NP抗体)に対し、pH調整剤に代えて変性剤を作用させた以外、実施例1と同様に、ウェルの溶液を回収し、実施例1(3)と同様に白金-金コロイド粒子量の測定を行った。なお、変性剤には8M尿素、6Mグアニジン塩酸、又は1%SDSを用いた。結果を図7に示す。なお、比較のため、1M-NaOHを用いて同様に処理を行った結果を、あわせて図7に示す。
参考例3で調整した金コロイド粒子懸濁液(粒径約12nm)を純水にて4.36nMの 濃度に調整し、その2μLを1M NaOH100μLに加えて混合した。この1M NaOHでの処理は、複合体に対するpH調整剤での切断処理を模式的に行ったものである。そこに1M HClを100μL加えて中和した。この中和液6.35μLを10mM Walpole buffer(pH2.0)972μLと12.1M塩化金酸液1.65μLの混合液に加え、さらに375mM塩酸ヒドロキシルアミン20μLを加えて混合し、室温で10分間静置して増感反応を行った。この後、遠心して溶液中の金コロイド粒子を沈降させ、上清を除去し、超純水で洗浄した。これにより得た金コロイド粒子分散液の1μLを、カーボンテープを貼った試料ホルダ上に滴下、脱大気し、電子顕微鏡TM4000Plus(日立製作所社製)で撮影した。加圧電圧は15kv、倍率は1000とした。5視野以上を撮影し、画像を解析することで平均粒径と標準偏差を計算した。なお、4.36nM金コロイド粒子分散液に代えて、金コロイド粒子を含まない超純水を用いて同様の増感処理を行ったものを比較対象に用いた。結果を図8に示す。
このことから、微小な金コロイド粒子を増感反応によって大径化ができること、更にその増感後の金(コロイド)粒子を光学的に十分に検出できることが示された。
(1)各種粒径の金コロイド粒子および白金コロイド粒子の準備
参考例1によって粒径120nmの白金-金コロイド粒子を準備した。また、参考例3によって、粒径12nm及び200nmの金コロイド粒子を準備し、粒径500nm及び1000nmの金(コロイド)粒子は市販のもの(NANOPARTz,A11-500-CIT-DIH-1-50, A11-1000-NPC-DIH-1-100)を入手した。それぞれの粒子は溶液に分散された状態のものを準備した。
上記にて準備した各粒径の金コロイド粒子分散液は、散乱光が測定できる範囲の濃度に希釈し、実施例1と同じ手法にて散乱光の測定を実施した。得られた散乱光強度の値を濃度で割り、1nMにおける散乱光強度を算出した。その結果、金コロイド粒子の粒径の増加に応じて散乱光強度は増加することが分かった。結果を図9に示す。
実施例1で固相化に用いた抗NP抗体を、トリス塩酸緩衝液にて20μg/mLに調整し、抗体希釈液を作製した。これを、磁性粒子(JSRライフサイエンス社製)と混合し、化学結合にて磁性粒子に抗NP抗体を固相化した。そして、磁性粒子に固相化された抗NP抗体と、10、100、1000、10000pg/mL濃度に調整したSARS-CoV-2NP溶液のそれぞれと、実施例1で調整した白金-金コロイド標識抗NP抗体とを37℃で30分間反応させた。反応後の各溶液から、それぞれ0.45μm遠心式フィルター(メルク社)で遠心ろ過して磁性粒子を回収し、TBS-Tにて5回洗浄した。その後、磁性粒子に1M-NaOHを加え、磁性粒子に結合する複合体(磁性粒子-抗NP抗体-SARS-CoV-2NP-白金-金コロイド標識抗NP抗体)に対して切断処理(溶出)を行い、回収した溶出液の散乱光強度を測定した。測定結果を図10に示す。なお、実施例において溶出とは、複合体からその一部である標識物質を含む部分が切断され、その結果、その一部分が固相から分離されて液中に放出されれば足り、分離された一部分が液中に溶解することに限定解釈されるものではない。
(1)金コロイド粒子の流出性評価実験
本実施例は、金コロイド粒子の流出性を実験的に評価するものである。この実験のため、円板の中心側に区画されたチャンバと、チャンバに連通し、円板の半径方向外側に向かって延設された流路とを備えたディスクを準備した。このディスクは、チャンバと流路とが凹設された円板の上面に、50μm厚さのポリプロピレンシート(以下、「PPシート」と略す。)が粘着層を介して密着されており、該PPシートによってチャンバと流路の上面が形成されている。
次に、生体材料が共存する場合における標識物質の散乱光検出を行った。夾雑物として模式的にBSAを用いた。金コロイド粒子は参考例3と同様に作製した粒径200nmの金コロイド粒子が分散した分散液を使用した。10%のBSA溶液(オリエンタル酵母社製、Cat 47408903)または水を準備し、それぞれを溶媒として、2pMの金コロイド粒子分散液を、2fMに希釈した。希釈した金コロイド粒子分散液と10%BSA溶液を、それぞれ300μLキュベットに添加して、実施例1で用いた散乱光検出装置で散乱光強度を測定した。
(1)金コロイド標識抗体溶液の調製
標識物質として、白金-金コロイド粒子に代えて参考例3で調製した粒径200nmの金コロイド粒子を用いた以外は、実施例1の白金-金コロイド標識抗体の作製と同様の手順で金コロイド標識抗NP抗体を作製した。作製した金コロイド標識抗NP抗体は検体抽出液に懸濁して金コロイド標識抗体溶液とした。
参考例2で調製した抗NP抗体のうち、前述の金コロイド標識抗NP抗体に用いた抗NP抗体とは別の抗体を選択し、マレイミド法によってポリスチレンビーズ(Micromod社製 粒径20μm 25mg/ml 水系分散)に結合させてポリスチレンビーズ固相化抗NP抗体を調製した。
抗原として、SARS-CoV-2NPを用い、抗原、上記金コロイド標識抗体溶液、上記ポリスチレンビーズ固相化抗NP抗体のそれぞれを、所定濃度になるように検体抽出液で調整した。そして、これらを混合し、室温でで10分間反応させて、抗体-抗原-抗体のサンドイッチ様式の免疫複合体を生成させた。
図2bと同様の反応チャンバ、流路、管状路、排液貯留室、洗浄液貯留室及び試薬貯蔵室(切断試薬貯留室を備え、ユニット1つが独立して形成されているチップ型デバイスを準備した。
洗浄処理後、切断試薬として1M NaOHを反応チャンバに注入した。そして、このチップ型デバイスを2000rpmで3分間回転させて金コロイド粒子(金コロイド粒子を含む部分)を複合体から分離、即ち、反応チャンバに貯留される液中へ溶出させた。反応チャンバ内の液中に溶出された金コロイド粒子は、遠心力によって管状路を通過し、その際、照射光が照射されることによって発生する散乱光を検出する。検出された散乱光は、電気信号に変換され電圧値として取得される。抗体濃度が0.5pg/mLとなるように調整して免疫複合体を形成した場合の散乱光検出結果を図13a及び図13bに示す。
また、同じポジションで持続的に検出されるシグナル(図13a、図14aにおいては、時間軸に沿って同じ強度で出力されるため線状の画像で表示されている。)は、管状路を移動していないものに由来する散乱光であるので、管状路内の傷などに基づくノイズと判断できる。
更に、金コロイド粒子のみをチップ型デバイスの管状路に流して散乱光を検出し、得られた画像データから金コロイド粒子の散乱光を示すシグナルの形状を確認したところ、図13a~図14bにおいて、略円形の微小なスポットが金コロイド粒子のシグナルに該当することがわかった。これにより、図14aにおいて認められる異方形や、やや大きめの点状のスポットは、金コロイド粒子に由来するシグナルとは形状が異なるので、異物に基づく散乱光(ノイズ)と判断できる。よってこれらのノイズシグナルは検出結果から除外することができる。
更には、図13b、図14bに示すように、金コロイド粒子に対応するスポットは明瞭に確認できる。つまり、個々の金コロイド粒子の散乱光に基づくシグナルは、カウント可能であり、金コロイド粒子の定量評価を実現し得ることが示された。
2 ユニット
10 反応チャンバ
11 管状路
12 排液貯留室
13 洗浄液貯留室
14 切断試薬貯蔵室
Claims (22)
- 標識物質に結合した第1の捕捉物質と、固相に固定された第2の捕捉物質との間に標的物質をサンドイッチすることにより複合体を形成し、形成された前記複合体から標識物質を含む部分を分離した後、
分離した前記標識物質を含む部分を、遠心力によって、管状路内に充填された液体中を移動させ、
前記管状路内に照射された光を前記標識物質を含む部分が散乱する散乱光により、前記標識物質を含む部分を検出することを含む、標的物質の検出方法。 - 前記複合体から前記標識物質を含む部分を分離する前に、前記複合体が前記管状路への流入を抑止された状態で前記複合体を洗浄する洗浄処理を実施することを含む請求項1に記載の標的物質の検出方法。
- 前記洗浄処理を実施すると、洗浄に使用した洗浄液で前記管状路が満たされる請求項2に記載の標的物質の検出方法。
- 前記洗浄処理に使用した洗浄液を前記管状路よりも下流側に貯留する請求項2に記載の標的物質の検出方法。
- 前記複合体を所定のチャンバに保持することにより前記複合体が前記管状路への流入を抑止する請求項2に記載の標的物質の検出方法。
- 回転可能に形成されたデバイスに、前記洗浄液を貯留する第1の貯留室と、前記チャンバと、前記チャンバから流出する液体を貯留する第2の貯留室とを、この順で前記デバイスの回転中心側から外方側に向けて配置し、前記第1の貯留室と前記チャンバを開閉自在な流路で連通し、前記チャンバと前記第2の貯留室を前記管状路で連通し、
前記デバイスを回転させることにより、前記洗浄液を前記第1の貯留室から前記チャンバに給液した後、前記管状路を経由して前記第2の貯留室へ排出させて前記洗浄処理を実施することを含む、
請求項5に記載の標的物質の検出方法。 - 前記第1の貯留室と前記チャンバを開放可能な流路で連通する請求項6に記載の標的物質の検出方法。
- 前記洗浄処理は、前記第2の貯留室と前記管状路が前記洗浄液で満たされるまで行われる、請求項6に記載の標的物質の検出方法。
- 前記デバイスの前記チャンバよりも回転中心側に、前記複合体から前記標識物質を含む部分を分離する試薬を含む液体を貯留する第3の貯留室を配置し、前記第3の貯留室と前記チャンバを開閉自在な流路で連通し、
前記デバイスを回転させることにより、前記洗浄処理の後、前記チャンバに前記試薬を含む液体を給液して、前記標識物質を含む部分を分離した後、分離した前記標識物質を含む部分を前記管状路内に移動させることを含む、請求項8に記載の標的物質の検出方法。 - 前記第3の貯留室と前記チャンバを開放可能な流路で連通する請求項9に記載の標的物質の検出方法。
- 前記管状路から所定時間内に断続的に発生する散乱光を検出する請求項1から10のいずれか1項に記載の標的物質の検出方法。
- 前記標識物質は、前記管状路に満たされる液体よりも比重の大きい物質である請求項1から10のいずれか1項に記載の標的物質の検出方法。
- 前記標識物質は、金属、セラミックス、ガラス及び樹脂からなる群より選ばれた1つを主たる構成成分とする微粒子である請求項12に記載の標的物質の検出方法。
- 前記標識物質は金属コロイド粒子である請求項13に記載の標的物質の検出方法。
- 前記固相は、ガラス粒子、セラミックス粒子、磁性粒子、及び樹脂粒子からなる群より選ばれた少なくとも1つの粒状体である、請求項1から10のいずれか1項に記載の標的物質の検出方法。
- 前記固相は、前記複合体を形成する際に使用される容器内側の構造体である、請求項1から10のいずれか1項に記載の標的物質の検出方法。
- 前記複合体からの前記標識物質を含む部分の分離は、加熱処理、pH調整処理、変性処理、酸化処理、還元処理、酵素処理及び競合反応処理からなる群より選ばれた少なくとも1つの処理により行われる、請求項1から10のいずれか1項に記載の標的物質の検出方法。
- 前記第1の捕捉物質が、標的物質と特異的に結合する抗体、抗体フラグメント、改変抗体、抗原、アプタマー及び核酸からなる群より選ばれた少なくとも1つである、請求項1から10のいずれか1項に記載の標的物質の検出方法。
- 前記第2の捕捉物質が、標的物質と特異的に結合する抗体、抗体フラグメント、改変抗体、抗原、アプタマー及び核酸からなる群より選ばれた少なくとも1つである、請求項1から10のいずれか1項に記載の標的物質の検出方法。
- 請求項1の標的物質の検出方法において用いられる試薬であって、前記複合体から前記標識物質を含む部分を分離する作用を有する試薬。
- pH調整剤、変性剤、還元剤、酸化剤、酵素、及び競合剤からなる群より選ばれた少なくとも1つを含む、請求項20に記載の試薬。
- pH調整剤を含む、請求項21に記載の試薬。
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