JP2023041649A - サイトカイン産生促進剤及び細胞傷害活性化剤 - Google Patents
サイトカイン産生促進剤及び細胞傷害活性化剤 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2023041649A JP2023041649A JP2022143578A JP2022143578A JP2023041649A JP 2023041649 A JP2023041649 A JP 2023041649A JP 2022143578 A JP2022143578 A JP 2022143578A JP 2022143578 A JP2022143578 A JP 2022143578A JP 2023041649 A JP2023041649 A JP 2023041649A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- food
- cytokine production
- drink
- production
- cells
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Non-Alcoholic Beverages (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Dairy Products (AREA)
Abstract
【課題】複数の種類のサイトカインの産生を強く誘導することができ、飲食品組成物として適用可能なサイトカイン産生促進剤、脾臓細胞やヒト末梢血単核球(PBMC)の細胞傷害活性を亢進する細胞傷害活性化剤、かかるサイトカイン産生促進剤(サイトカイン産生促進用飲食品組成物)や細胞傷害活性化剤(細胞傷害活性化用飲食品組成物)を含有する飲食品を提供する。【解決手段】独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌をサイトカイン産生促進剤(サイトカイン産生促進用飲食品組成物)や細胞傷害活性化剤(細胞傷害活性化用飲食品組成物)の有効成分として使用することにより上記課題を解決した。【選択図】図6
Description
本発明は、特定の乳酸菌を含有するサイトカイン産生促進剤、サイトカイン産生促進用飲食品組成物、かかるサイトカイン産生促進用飲食品組成物を含有するサイトカイン産生促進用飲食品に関する。
また、本発明は、特定の乳酸菌を含有する細胞傷害活性化剤、細胞傷害活性化用飲食品組成物、かかる細胞傷害活性化用飲食品組成物を含有する細胞傷害活性化用飲食品に関する。
また、本発明は、特定の乳酸菌を含有する細胞傷害活性化剤、細胞傷害活性化用飲食品組成物、かかる細胞傷害活性化用飲食品組成物を含有する細胞傷害活性化用飲食品に関する。
乳酸菌は古くから発酵食品に利用され、食品や医薬品、プロバイオティクスの生産に利用されている。乳酸菌にはグラム陽性、カタラーゼ陰性、内生胞子を形成しない、運動性がない、等の特徴がある。
乳酸菌の中には、免疫細胞を刺激しサイトカインの産生を誘導する性質があるものが知られている。かかる乳酸菌の中には、プロバイオティクスに利用されているものもある。
例えば、特許文献1には、ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・クレモリスFC(Lactococcus lactis subsp. cremoris FC)が、哺乳類の樹状細胞および脾臓細胞の少なくとも一方からインターロイキン10(IL-10)及びインターロイキン12(IL-12)の産生を誘導する能力を有することが記載されている。
特許文献2には、ラクトバチルス・カゼイYIT9029株等のラクトバチルス・カゼイグループに属する細菌が、IL-12産生誘導能を有することが記載されている。
特許文献3には、ラクトコッカス(Lactococcus)属、ロイコノストック(Leuconostoc)属、ぺディオコッカス(Pediococcus)属、ストレプトコッカス(Streptococcus)属等に属する乳酸菌が、プラズマサイトイド樹状細胞(pDC)を活性化し、pDCのインターフェロン(IFN)産生を促進し得ることが記載され、かかる乳酸菌の代表例として、Lactococcus lactis JCM5805が挙げられている。
特許文献4には、ラクトバチルス・デルブルエッキー・サブスピーシーズ・ブルガリクス(Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus)、ラクトバチルス・ガセリ(Lactobacillus gasseri)、ストレプトコッカス・サーモフィラス(Streptococcus thermophilus)、ラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)及びラクトバチルス・ジョンソニー(Lactobacillus johnsonii)等の乳酸菌を有効成分とするインターロイキン-23産生促進用組成物が記載され、ラクトバチルス・デルブルエッキー・サブスピーシーズ・ブルガリクスの例として、ラクトバチルス・デルブルッキー・サブスピーシーズ・ブルガリクスOLL1073R-1が挙げられている。
しかし、これらの先行技術では、サイトカインの産生誘導能力が必ずしも十分でないものもあり、また、産生を誘導できるサイトカインの種類も限られており、更なる改善の余地があった。
Suzuki T, et al. Effect of the Lactococcus lactis 11/19-B1 Strain on atopic dermatitis in a clinical test and mouse model. Nutrients 12:763, 2020.
本発明は上記背景技術に鑑みてなされたものであり、その課題は、複数の種類のサイトカインの産生を強く誘導することができ、飲食品組成物として適用可能なサイトカイン産生促進剤や、脾臓細胞、ヒト末梢血単核球(PBMC)等の細胞傷害活性を亢進する細胞傷害活性化剤を提供することにあり、また、かかるサイトカイン産生促進剤(サイトカイン産生促進用飲食品組成物)や細胞傷害活性化剤(細胞傷害活性化用飲食品組成物)を含有する飲食品を提供することにある。
本発明者は、上記の課題を解決すべく鋭意検討を重ねた結果、ラクトコッカス属に属する特定の乳酸菌が、複数の種類のサイトカインの産生を強く促進すること、及び、脾臓細胞やヒト末梢血単核球(PBMC)の細胞傷害活性を亢進することを見出して、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進剤を提供するものである。
また、本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進用飲食品組成物を提供するものである。
また、本発明は、前記のサイトカイン産生促進用飲食品組成物を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進用飲食品を提供するものである。
また、本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とする細胞傷害活性化剤を提供するものである。
また、本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とする細胞傷害活性化用飲食品組成物を提供するものである。
また、本発明は、前記の細胞傷害活性化用飲食品組成物を含有することを特徴とする細胞傷害活性化用飲食品を提供するものである。
本発明によれば、複数の種類のサイトカインの産生を強く誘導することができ、飲食品組成物として適用可能なサイトカイン産生促進剤や、脾臓細胞、ヒト末梢血単核球(PBMC)等の細胞傷害活性を亢進する細胞傷害活性化剤を提供することができる。また、本発明によれば、かかるサイトカイン産生促進剤(サイトカイン産生促進用飲食品組成物)や細胞傷害活性化剤(細胞傷害活性化用飲食品組成物)を含有する飲食品を提供することができる。
本発明のサイトカイン産生促進剤は、IL-12やインターフェロンα(IFN-α)といった主として自然免疫を活性化させるサイトカインと、炎症性サイトカインの過剰な産生を抑制するサイトカインであるIL-10の双方の産生を促進することができる。
以下、本発明について説明するが、本発明は以下の実施の形態に限定されるものではなく、任意に変形して実施することができる。
<サイトカイン産生促進剤>
本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進剤に関する。
本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進剤に関する。
本発明のサイトカイン産生促進剤が含有する上記乳酸菌(以下、「11/19-B1株」又は「11/19-B1」と記述する場合がある。)は、ラクトコッカス(Lactococcus)属のうち、ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス(Lactococcus lactis subsp. lactis)に分類される。
11/19-B1株は、千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8、独立行政法人製品評価技術基盤機構(National Institute of Technology and Evaluation、以下、「NITE」と略記する)の特許微生物寄託センター(NPMD)に国内寄託され、受託番号:NITE P-01694(寄託日:2013年8月20日)として受託された微生物である。
11/19-B1株は、その後、千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)に、原寄託申請書を提出して、国内寄託(原寄託日:2013年8月20日)から、ブダペスト条約に基づく寄託への移管申請を行い(移管日(国際寄託日):2014年10月15日)、生存が証明され、ブダペスト条約に基づく寄託(国際寄託)への移管申請が受領された結果、受託番号「NITE BP-01694」を付与された。
11/19-B1株は、その後、千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)に、原寄託申請書を提出して、国内寄託(原寄託日:2013年8月20日)から、ブダペスト条約に基づく寄託への移管申請を行い(移管日(国際寄託日):2014年10月15日)、生存が証明され、ブダペスト条約に基づく寄託(国際寄託)への移管申請が受領された結果、受託番号「NITE BP-01694」を付与された。
11/19-B1株についての詳細は、特許文献5に記載されている。11/19-B1株は、グラム陽性の乳酸球菌であり、カイコを用いた試験により優れた自然免疫活性化能を有することが特許文献5にて報告されている。
また、非特許文献1には、マウスを用いた試験により、11/19-B1株が、薬剤誘導性接触皮膚炎の症状緩和効果を有することが報告されている。
また、非特許文献1には、マウスを用いた試験により、11/19-B1株が、薬剤誘導性接触皮膚炎の症状緩和効果を有することが報告されている。
しかし、これらの文献には、11/19-B1株によるIL-10、IL-12、IFN-α等の産生に関して言及はない。
また、カイコのような昆虫類には、哺乳類と共通するサイトカインは存在しない。
また、カイコのような昆虫類には、哺乳類と共通するサイトカインは存在しない。
本発明のサイトカイン産生促進剤は、サイトカインの産生をin vitro及びin vivoで促進する。
本発明のサイトカイン産生促進剤が産生を促進するサイトカインの具体例としては、インターロイキン2(IL-2)、インターロイキン3(IL-3)、インターロイキン4(IL-4)、インターロイキン5(IL-5)、インターロイキン6(IL-6)、インターロイキン7(IL-7)、インターロイキン8(IL-8)、インターロイキン10(IL-10)、インターロイキン12(IL-12)、インターロイキン15(IL-15)、インターロイキン18(IL-18)、インターフェロンα(IFN-α)、インターフェロンβ(IFN-β)、インターフェロンγ(IFN-γ)、腫瘍壊死因子α(TNF-α)、上皮成長因子(EGF)、線維芽細胞成長因子(FGF)、血小板由来成長因子(PDGF)、肝細胞成長因子(HGF)、トランスフォーミング成長因子(TGF)等が挙げられる。
このうち、IL-12は、主に活性化されたマクロファージや樹状細胞等の自然免疫細胞により産生される。IL-12はNK細胞に作用し、増殖を促進するとともに細胞傷害活性を亢進することで、感染やがん細胞に対する初期防御応答を誘導する。また、IL-12は、ヘルパーT細胞の活性化を介し、獲得免疫系との連携にも重要な役割を担う。
また、インターフェロンα(IFN-α)、インターフェロンβ(IFN-β)、インターフェロンγ(IFN-γ)は、樹状細胞の一種であるプラズマサイトイド樹状細胞によって高産生され、ウイルス感染防御、増殖抑制に対し重要な役割を果たす。
IL-12、IFN-α、IFN-βといったサイトカインは、感染防御に重要であるものの、これらの過度な産生は炎症や自己免疫疾患に繋がる。このため、免疫系には過剰な免疫応答を抑制するための機構が備わっており、その代表的なサイトカインとしてIL-10が挙げられる。IL-10は、制御性T細胞、マクロファージ、樹状細胞等の免疫細胞により産生され、ヘルパーT細胞やマクロファージからのIFN-γ産生、マクロファージや樹状細胞からのIL-12等の炎症性サイトカインの過剰な産生を抑制する。
IFN-γは、主に活性化したナチュラルキラー細胞(NK細胞)やT細胞から分泌され、マクロファージや樹状細胞を活性化し、サイトカイン産生、貪食の亢進作用を持つ。
NK細胞は、高い細胞傷害活性を有する自然免疫系細胞であり、ウイルス感染及びがん細胞に対する宿主防御に重要な役割を果たしている。NK細胞は、血中や脾臓に多く存在しており、脾臓細胞やPBMCの細胞傷害活性はNK細胞による細胞傷害活性(NK活性)と考えられている。
TNF-αは、腫瘍壊死因子として見いだされ、近年は、免疫賦活や免疫調整因子として作用するサイトカインと認識されている。TNF-αは、主に単球やマクロファージから生産され、細胞膜表面のTNF受容体に結合して、炎症を起こした細胞の細胞死(アポトーシス)の誘発や細菌感染防御、ストレス応答、抗腫瘍活性、発熱誘導活性等多面的な作用を示す。
本発明のサイトカイン産生促進剤は、乳酸菌である11/19-B1株を有効成分として含有し、11/19-B1株を種々の状態で含むことができる。
本発明のサイトカイン産生促進剤は、11/19-B1株を、生菌の状態で含有してもよいし、死菌の状態で含有してもよい。
例えば、生菌体、湿潤菌、乾燥菌等が適宜使用可能である。また、加熱殺菌処理、放射線殺菌処理、破砕処理等を施した死菌も適宜使用可能である。
例えば、生菌体、湿潤菌、乾燥菌等が適宜使用可能である。また、加熱殺菌処理、放射線殺菌処理、破砕処理等を施した死菌も適宜使用可能である。
本発明のサイトカイン産生促進剤は、11/19-B1株の生菌又は死菌に、種々の処理を施した処理物を含有していてもよい。
かかる処理物としては、例えば、培養物;濃縮物;ペースト化物;噴霧乾燥物、凍結乾燥物、真空乾燥物、ドラム乾燥物等の乾燥物;液状化物;希釈物;破砕物;殺菌加工物;該培養物からの抽出物;等が挙げられる。
かかる処理物としては、例えば、培養物;濃縮物;ペースト化物;噴霧乾燥物、凍結乾燥物、真空乾燥物、ドラム乾燥物等の乾燥物;液状化物;希釈物;破砕物;殺菌加工物;該培養物からの抽出物;等が挙げられる。
本発明のサイトカイン産生促進剤における、11/19-B1株の含有量(生菌、死菌、処理物を合計した含有量)は、特に制限がなく、目的に応じて適宜選択することができるが、乾燥重量にして0.00001質量%以上であることが好ましく、0.00005質量%以上であることがより好ましく、0.0001質量%以上であることが特に好ましく、0.001質量%以上であることが更に好ましい。また、100質量%以下であることが好ましく、99質量%以下であることがより好ましく、95質量%以下であることが特に好ましく、90質量%以下であることが更に好ましい。
本発明のサイトカイン産生促進剤は、有効成分である11/19-B1株に加えて、「その他の成分」を含有することができる。
「その他の成分」としては、特に制限はなく、本発明の効果を損なわない範囲内で、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、凍結乾燥等の加工を行う際の添加剤、薬学的に許容され得る担体、等が挙げられる。
かかる担体としては、特に制限はなく、例えば、後述する剤型等に応じて適宜選択することができる。
「その他の成分」としては、特に制限はなく、本発明の効果を損なわない範囲内で、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、凍結乾燥等の加工を行う際の添加剤、薬学的に許容され得る担体、等が挙げられる。
かかる担体としては、特に制限はなく、例えば、後述する剤型等に応じて適宜選択することができる。
本発明のサイトカイン産生促進剤が含有する「その他の成分」には、意図的に添加する成分のみならず、11/19-B1株が産生することによって生じる成分も含まれる。かかる成分として、例えば、デキストランが挙げられる。
本発明のサイトカイン産生促進剤が含有する「その他の成分」の含有量に、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
本発明のサイトカイン産生促進剤の剤型としては、特に制限はなく、例えば、後述するような所望の投与方法に応じて適宜選択することができる。
具体的には、例えば、経口固形剤(錠剤、被覆錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤等)、経口液剤(内服液剤、シロップ剤、エリキシル剤等)、注射剤(溶剤、懸濁剤等)、軟膏剤、貼付剤、ゲル剤、クリーム剤、外用散剤、スプレー剤、吸入散布剤等が挙げられる。
具体的には、例えば、経口固形剤(錠剤、被覆錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤等)、経口液剤(内服液剤、シロップ剤、エリキシル剤等)、注射剤(溶剤、懸濁剤等)、軟膏剤、貼付剤、ゲル剤、クリーム剤、外用散剤、スプレー剤、吸入散布剤等が挙げられる。
前記経口固形剤としては、例えば、前記有効成分に、賦形剤、更には必要に応じて結合剤、崩壊剤、滑沢剤、着色剤、矯味・矯臭剤等の添加剤を加え、常法により製造することができる。
前記賦形剤としては、例えば、乳糖、白糖、塩化ナトリウム、ブドウ糖、デンプン、炭酸カルシウム、カオリン、微結晶セルロース、珪酸等が挙げられる。
前記結合剤としては、例えば、水、エタノール、プロパノール、単シロップ、ブドウ糖液、デンプン液、ゼラチン液、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルスターチ、メチルセルロース、エチルセルロース、シェラック、リン酸カルシウム、ポリビニルピロリドン等が挙げられる。
前記崩壊剤としては、例えば、乾燥デンプン、アルギン酸ナトリウム、カンテン末、炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸モノグリセリド、乳糖等が挙げられる。
前記滑沢剤としては、例えば、精製タルク、ステアリン酸塩、ホウ砂、ポリエチレングリコール等が挙げられる。
前記着色剤としては、例えば、酸化チタン、酸化鉄等が挙げられる。
前記矯味・矯臭剤としては、例えば、白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸等が挙げられる。
前記賦形剤としては、例えば、乳糖、白糖、塩化ナトリウム、ブドウ糖、デンプン、炭酸カルシウム、カオリン、微結晶セルロース、珪酸等が挙げられる。
前記結合剤としては、例えば、水、エタノール、プロパノール、単シロップ、ブドウ糖液、デンプン液、ゼラチン液、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルスターチ、メチルセルロース、エチルセルロース、シェラック、リン酸カルシウム、ポリビニルピロリドン等が挙げられる。
前記崩壊剤としては、例えば、乾燥デンプン、アルギン酸ナトリウム、カンテン末、炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸モノグリセリド、乳糖等が挙げられる。
前記滑沢剤としては、例えば、精製タルク、ステアリン酸塩、ホウ砂、ポリエチレングリコール等が挙げられる。
前記着色剤としては、例えば、酸化チタン、酸化鉄等が挙げられる。
前記矯味・矯臭剤としては、例えば、白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸等が挙げられる。
前記経口液剤としては、例えば、前記有効成分に、矯味・矯臭剤、緩衝剤、安定化剤等の添加剤を加え、常法により製造することができる。
前記矯味・矯臭剤としては、例えば、白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸等が挙げられる。
前記緩衝剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム等が挙げられる。
前記安定化剤としては、例えば、トラガント、アラビアゴム、ゼラチン等が挙げられる。
前記矯味・矯臭剤としては、例えば、白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸等が挙げられる。
前記緩衝剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム等が挙げられる。
前記安定化剤としては、例えば、トラガント、アラビアゴム、ゼラチン等が挙げられる。
前記注射剤としては、例えば、前記有効成分に、pH調節剤、緩衝剤、安定化剤、等張化剤、局所麻酔剤等を添加し、常法により皮下用、筋肉内用、静脈内用等の注射剤を製造することができる。
前記pH調節剤及び前記緩衝剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウム等が挙げられる。
前記安定化剤としては、例えば、ピロ亜硫酸ナトリウム、EDTA、チオグリコール酸、チオ乳酸等が挙げられる。
前記等張化剤としては、例えば、塩化ナトリウム、ブドウ糖等が挙げられる。
前記局所麻酔剤としては、例えば、塩酸プロカイン、塩酸リドカイン等が挙げられる。
前記pH調節剤及び前記緩衝剤としては、例えば、クエン酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウム等が挙げられる。
前記安定化剤としては、例えば、ピロ亜硫酸ナトリウム、EDTA、チオグリコール酸、チオ乳酸等が挙げられる。
前記等張化剤としては、例えば、塩化ナトリウム、ブドウ糖等が挙げられる。
前記局所麻酔剤としては、例えば、塩酸プロカイン、塩酸リドカイン等が挙げられる。
前記軟膏剤としては、例えば、前記有効成分に、公知の基剤、安定剤、湿潤剤、保存剤等を配合し、常法により混合し、製造することができる。
前記基剤としては、例えば、流動パラフィン、白色ワセリン、サラシミツロウ、オクチルドデシルアルコール、パラフィン等が挙げられる。
前記保存剤としては、例えば、パラオキシ安息香酸メチル、パラオキシ安息香酸エチル、パラオキシ安息香酸プロピル等が挙げられる。
前記基剤としては、例えば、流動パラフィン、白色ワセリン、サラシミツロウ、オクチルドデシルアルコール、パラフィン等が挙げられる。
前記保存剤としては、例えば、パラオキシ安息香酸メチル、パラオキシ安息香酸エチル、パラオキシ安息香酸プロピル等が挙げられる。
前記貼付剤としては、例えば、公知の支持体に前記軟膏剤としてのクリーム剤、ゲル剤、ペースト剤等を、常法により塗布し、製造することができる。
前記支持体としては、例えば、綿、スフ、化学繊維等からなる織布又は不織布;軟質塩化ビニル、ポリエチレン、ポリウレタン等のフィルム又は発泡体シート等が挙げられる。
前記支持体としては、例えば、綿、スフ、化学繊維等からなる織布又は不織布;軟質塩化ビニル、ポリエチレン、ポリウレタン等のフィルム又は発泡体シート等が挙げられる。
本発明のサイトカイン産生促進剤の投与対象としては、特に制限はないが、例えば、ヒト;マウス;ラット;サル;ウマ;ウシ、ブタ、ヤギ、ニワトリ等の家畜;ネコ、イヌ等のペット;等が挙げられる。
本発明のサイトカイン産生促進剤の投与方法としては、特に制限はなく、剤型等に応じ、適宜選択することができる。具体的には、経口投与、腹腔内投与、血液中への注射、腸内への注入等が挙げられる。
本発明のサイトカイン産生促進剤の投与量としては、特に制限はなく、投与対象である個体の年齢、体重、所望の効果の程度等に応じて適宜選択することができるが、例えば、成人への1日の投与量は、有効成分の乾燥重量として、0.0001mg以上であることが好ましく、0.001mg以上であることがより好ましく、0.01mg以上であることが特に好ましい。また、10g以下であることが好ましく、2g以下であることがより好ましく、0.5g以下であることが特に好ましい。
本発明のサイトカイン産生促進剤の投与時期としても、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、予防的に投与されてもよいし、治療的に投与されてもよい。
<サイトカイン産生促進用飲食品組成物>
本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進用飲食品組成物にも関する。
すなわち、前記した本発明のサイトカイン産生促進剤は、飲食品に添加する用途に使用することができる。
本発明のサイトカイン産生促進用飲食品組成物の詳細については、前記したサイトカイン産生促進剤と同様である。
本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進用飲食品組成物にも関する。
すなわち、前記した本発明のサイトカイン産生促進剤は、飲食品に添加する用途に使用することができる。
本発明のサイトカイン産生促進用飲食品組成物の詳細については、前記したサイトカイン産生促進剤と同様である。
<サイトカイン産生促進用飲食品>
本発明は、前記のサイトカイン産生促進用飲食品組成物を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進用飲食品にも関する。
本発明は、前記のサイトカイン産生促進用飲食品組成物を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進用飲食品にも関する。
本発明のサイトカイン産生促進用飲食品は、前記したサイトカイン産生促進用飲食品組成物に加えて、更に、「その他の成分」を含有することができる。
本発明のサイトカイン産生促進用飲食品における、前記「その他の成分」としては、特に制限はなく、本発明の効果を損なわない範囲内で目的に応じて適宜選択することができ、例えば、各種食品原料等が挙げられる。また、「その他の成分」の含有量は、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。
本発明のサイトカイン産生促進用飲食品は、チルド製品(0℃以上10℃以下の温度で保存される製品)であってもよいし、チルド製品以外(冷凍保存される製品、常温保存される製品等)であってもよい。
本発明のサイトカイン産生促進用飲食品の種類としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ゼリー、キャンディー、チョコレート、ビスケット、氷菓等の菓子類;緑茶、紅茶、コーヒー、清涼飲料等の嗜好飲料;発酵乳、ヨーグルト、乳酸菌飲料、プリン、アイスクリーム、アイスミルク、ラクトアイス等の乳製品;野菜飲料、果実飲料、ジャム類等の野菜・果実加工品;スープ等の液体食品;パン類、麺類等の穀物加工品;各種調味料;特定保健用食品;栄養機能食品等が挙げられる。
中でも、発酵乳、ヨーグルト、乳酸菌飲料等の乳製品が好ましい。
中でも、発酵乳、ヨーグルト、乳酸菌飲料等の乳製品が好ましい。
本発明のサイトカイン産生促進用飲食品は、例えば、錠剤、顆粒剤、カプセル剤等の経口固形剤や、内服液剤、シロップ剤等の経口液剤として製造されたものであってもよい。前記経口固形剤、前記経口液剤の製造方法は、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記した薬剤の経口固形剤、経口液剤の製造方法にならい、製造することができる。
本発明のサイトカイン産生促進用飲食品における11/19-B1株の含有量(生菌、死菌、処理物を合計した含有量)は、サイトカイン産生促進用飲食品100gあたり0.1μg以上であることが好ましく、1μg以上であることがより好ましく、5μg以上であることが特に好ましく、10μg以上であることが更に好ましい。また、100g以下であることが好ましく、10g以下であることがより好ましく、5g以下であることが特に好ましく、1g以下であることが更に好ましい。
<細胞傷害活性化剤>
本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とする細胞傷害活性化剤にも関する。
本発明の細胞傷害活性化剤は、前記した本発明のサイトカイン産生促進剤と同じく、乳酸菌である11/19-B1株を有効成分として含有する。
本発明の細胞傷害活性化剤におけるその他の成分(有効成分以外の成分)、剤型、投与対象、投与方法、投与量、投与時期等は、前記した本発明のサイトカイン産生促進剤におけるそれらと同様である。
本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とする細胞傷害活性化剤にも関する。
本発明の細胞傷害活性化剤は、前記した本発明のサイトカイン産生促進剤と同じく、乳酸菌である11/19-B1株を有効成分として含有する。
本発明の細胞傷害活性化剤におけるその他の成分(有効成分以外の成分)、剤型、投与対象、投与方法、投与量、投与時期等は、前記した本発明のサイトカイン産生促進剤におけるそれらと同様である。
本発明の細胞傷害活性化剤は、NK細胞の細胞傷害活性を向上させると考えられる。
<細胞傷害活性化用飲食品組成物>
本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とする細胞傷害活性化用飲食品組成物にも関する。
すなわち、前記した本発明の細胞傷害活性化剤は、飲食品に添加する用途に使用することができる。
本発明の細胞傷害活性化用飲食品組成物の詳細については、前記した細胞傷害活性化剤と同様である。
本発明は、独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とする細胞傷害活性化用飲食品組成物にも関する。
すなわち、前記した本発明の細胞傷害活性化剤は、飲食品に添加する用途に使用することができる。
本発明の細胞傷害活性化用飲食品組成物の詳細については、前記した細胞傷害活性化剤と同様である。
<細胞傷害活性化用飲食品>
本発明は、前記の細胞傷害活性化用飲食品組成物を含有することを特徴とする細胞傷害活性化用飲食品にも関する。
本発明は、前記の細胞傷害活性化用飲食品組成物を含有することを特徴とする細胞傷害活性化用飲食品にも関する。
本発明の細胞傷害活性化用飲食品は、前記したサイトカイン産生促進用飲食品と同様に、細胞傷害活性化用飲食品組成物に加えて、更に、「その他の成分」を含有することができる。
また、本発明の細胞傷害活性化用飲食品における11/19-B1株の含有量(生菌、死菌、処理物を合計した含有量)の好ましい範囲は、前記した本発明のサイトカイン産生促進用飲食品におけるそれと同様である。
また、本発明の細胞傷害活性化用飲食品における11/19-B1株の含有量(生菌、死菌、処理物を合計した含有量)の好ましい範囲は、前記した本発明のサイトカイン産生促進用飲食品におけるそれと同様である。
本発明の細胞傷害活性化用飲食品は、チルド製品(0℃以上10℃以下の温度で保存される製品)であってもよいし、チルド製品以外(冷凍保存される製品、常温保存される製品等)であってもよい。
本発明の細胞傷害活性化用飲食品の種類としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、ゼリー、キャンディー、チョコレート、ビスケット、氷菓等の菓子類;緑茶、紅茶、コーヒー、清涼飲料等の嗜好飲料;発酵乳、ヨーグルト、乳酸菌飲料、プリン、アイスクリーム、アイスミルク、ラクトアイス等の乳製品;野菜飲料、果実飲料、ジャム類等の野菜・果実加工品;スープ等の液体食品;パン類、麺類等の穀物加工品;各種調味料;特定保健用食品;栄養機能食品等が挙げられる。
中でも、発酵乳、ヨーグルト、乳酸菌飲料等の乳製品が好ましい。
中でも、発酵乳、ヨーグルト、乳酸菌飲料等の乳製品が好ましい。
本発明の細胞傷害活性化用飲食品は、例えば、錠剤、顆粒剤、カプセル剤等の経口固形剤や、内服液剤、シロップ剤等の経口液剤として製造されたものであってもよい。前記経口固形剤、前記経口液剤の製造方法は、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、前記した薬剤の経口固形剤、経口液剤の製造方法にならい、製造することができる。
以下に、実施例及び比較例を挙げて本発明を更に具体的に説明するが、本発明は、その要旨を超えない限りこれらの実施例に限定されるものではない。
[菌体粉末の調製]
11/19-B1、及び、表1及び表2に示す公知の乳酸菌株を使用し、各菌株の性質に合わせて培養した。
11/19-B1、及び、表1及び表2に示す公知の乳酸菌株を使用し、各菌株の性質に合わせて培養した。
Bifidobacterium animalis(LKM10114)は、嫌気条件下で培養するためにアネロパック(三菱ガス化学社製)を使用した。500mL三角フラスコに200mLの液体培地を作製し、寒天培地で培養しておいた各菌株のコロニーを液体培地に懸濁し200μL添加した後、48時間静置培養した。菌株毎に200mLを2本ずつ培養し、培養後2本をまとめて処理した。培養48時間後に培養液を回収し、4℃、3000×gで20分間遠心を行い、培地を除去し、菌体ペレットを30mLの滅菌水に懸濁した。4℃、2900×gで20分間遠心分離を行い、遠心後に上清を捨てて30mL生理食塩水に懸濁し、再度同条件で遠心分離を行うことで菌体の洗浄を行った。上清を捨てて10mLの滅菌水に懸濁後、沸騰水中に10分間浸漬することで加熱殺菌を行い、氷冷した後ディープフリーザーで凍結させ、その後凍結乾燥処理をすることで菌体粉末を得た。菌体粉末を秤量し、2mg/mLとなるようにDulbecco's phosphate buffered saline(D-PBS)に懸濁し、-80℃で保存した。
評価例1(脾臓細胞に対するIL-10産生誘導能の測定)
[脾臓細胞の採取及び調製]
雌性のC57BL/6Jマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、7週齢時に解剖し脾臓を採取した。採取した脾臓は、10%FBS(Fetal Bovine Serum、Hyclone社製)、10mMの4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid(HEPES、ナカライテスク社製)、50μMの2-メルカプトエタノール(Thermo Fisher Scientific社製)、抗生物質-抗真菌剤混合溶液(ナカライテスク社製)を含むRPMI(Roswell Park Memorial Institute)1640培地(以下、完全RPMI-1640培地)に0.5mg/mLのコラゲナーゼ(富士フイルム和光純薬社製)、0.125mg/mLのDNase I(Sigma-Aldrich社製)を添加した溶液に浸漬し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)内に静置した。
30分後に、脾臓を100μmナイロンメッシュに通過させることで単細胞懸濁液を得た。遠心分離後、上清を除き2mLの赤血球溶血液(Biolegend社製)に懸濁した後、氷上にて3分間処理し、遠心分離することにより赤血球画分を除去した脾臓細胞を調製し、試験に供した。
[脾臓細胞の採取及び調製]
雌性のC57BL/6Jマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、7週齢時に解剖し脾臓を採取した。採取した脾臓は、10%FBS(Fetal Bovine Serum、Hyclone社製)、10mMの4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid(HEPES、ナカライテスク社製)、50μMの2-メルカプトエタノール(Thermo Fisher Scientific社製)、抗生物質-抗真菌剤混合溶液(ナカライテスク社製)を含むRPMI(Roswell Park Memorial Institute)1640培地(以下、完全RPMI-1640培地)に0.5mg/mLのコラゲナーゼ(富士フイルム和光純薬社製)、0.125mg/mLのDNase I(Sigma-Aldrich社製)を添加した溶液に浸漬し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)内に静置した。
30分後に、脾臓を100μmナイロンメッシュに通過させることで単細胞懸濁液を得た。遠心分離後、上清を除き2mLの赤血球溶血液(Biolegend社製)に懸濁した後、氷上にて3分間処理し、遠心分離することにより赤血球画分を除去した脾臓細胞を調製し、試験に供した。
[菌体粉末による脾臓細胞の刺激]
完全RPMI-1640培地に脾臓細胞数が1×106cells/mL、各乳酸菌株の菌体粉末が10μg/mL(終濃度)となるように12ウェルプレートに1mL/well添加し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で24時間又は48時間培養した。
完全RPMI-1640培地に脾臓細胞数が1×106cells/mL、各乳酸菌株の菌体粉末が10μg/mL(終濃度)となるように12ウェルプレートに1mL/well添加し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で24時間又は48時間培養した。
[IL-10遺伝子発現の解析]
IL-10遺伝子の発現を検証するために、培養24時間後に細胞を回収しNucleoSpin RNA(タカラバイオ)を用いTotal RNAを抽出した。抽出したTotal RNAはPrimeScript RT reagent Kit(タカラバイオ)を用いて逆転写しcDNAを得た。リアルタイムPCRシステムStepOnePlus(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、SYBR Premix Ex TaqIIと表2に示すプライマーのセットにより定量PCRを実施し、リファレンス遺伝子としてRpl32を用いて相対的な発現量を算出した。
IL-10遺伝子の発現を検証するために、培養24時間後に細胞を回収しNucleoSpin RNA(タカラバイオ)を用いTotal RNAを抽出した。抽出したTotal RNAはPrimeScript RT reagent Kit(タカラバイオ)を用いて逆転写しcDNAを得た。リアルタイムPCRシステムStepOnePlus(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、SYBR Premix Ex TaqIIと表2に示すプライマーのセットにより定量PCRを実施し、リファレンス遺伝子としてRpl32を用いて相対的な発現量を算出した。
結果を図1に示す(Controlは、D-PBSのみ添加した無刺激の場合の発現量である)。
11/19-B1を含む複数の菌株において、無刺激(Control)と比較してIL-10遺伝子発現の亢進が認められた。
11/19-B1を含む複数の菌株において、無刺激(Control)と比較してIL-10遺伝子発現の亢進が認められた。
[IL-10産生量の測定]
培養48時間後に培養上清を回収し、IL-10測定キット(ELISA MAX Deluxe Set Mouse IL-10、Biolegend社製)を用いて培養上清中のIL-10の濃度を測定した。
培養48時間後に培養上清を回収し、IL-10測定キット(ELISA MAX Deluxe Set Mouse IL-10、Biolegend社製)を用いて培養上清中のIL-10の濃度を測定した。
結果を図2に示す(Controlは、無刺激の場合の濃度である)。
11/19-B1を含む複数の菌株において、無刺激(Control)と比較して培養上清中のIL-10濃度の上昇が認められた。
11/19-B1を含む複数の菌株において、無刺激(Control)と比較して培養上清中のIL-10濃度の上昇が認められた。
評価例2(腹腔マクロファージに対するIL-10産生誘導能の測定)
[腹腔マクロファージの採取及び調製]
雌性のC57BL/6Jマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、7-9週齢時に2mLの4%チオグリコレート培地を腹腔内投与し、3日後にD-PBSを用いてマウス腹腔内よりチオグリコレート誘導腹腔細胞を収集した。収集した腹腔マクロファージを完全RPMI-1640培地で洗浄した後、同培地に懸濁し、1匹分を100mm径の細胞培養ディッシュ2枚(15mL/枚)に等量ずつ播種した。細胞を播種した培養ディッシュは、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)内に静置した。
2時間後、上清を除去し、新たな培地でディッシュ表面を洗浄することで非接着細胞を除去し、接着している細胞を腹腔マクロファージとしてスクレーパーにて回収した。回収した細胞は完全RPMI-1640培地で洗浄し、同培地に2×106cells/mLとなるように再懸濁し、試験に供した。
[腹腔マクロファージの採取及び調製]
雌性のC57BL/6Jマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、7-9週齢時に2mLの4%チオグリコレート培地を腹腔内投与し、3日後にD-PBSを用いてマウス腹腔内よりチオグリコレート誘導腹腔細胞を収集した。収集した腹腔マクロファージを完全RPMI-1640培地で洗浄した後、同培地に懸濁し、1匹分を100mm径の細胞培養ディッシュ2枚(15mL/枚)に等量ずつ播種した。細胞を播種した培養ディッシュは、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)内に静置した。
2時間後、上清を除去し、新たな培地でディッシュ表面を洗浄することで非接着細胞を除去し、接着している細胞を腹腔マクロファージとしてスクレーパーにて回収した。回収した細胞は完全RPMI-1640培地で洗浄し、同培地に2×106cells/mLとなるように再懸濁し、試験に供した。
[菌体粉末による腹腔マクロファージの刺激]
24ウェルプレートに2×106cells/mLの腹腔マクロファージを完全RPMI-1640培地に懸濁し播種し(500μL/well)、そこに各菌体粉末液が10μg/mL(終濃度)となるように添加し37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で48時間培養した。11/19-B1については、濃度依存性を確認するために、1μg/mL、5μg/mL及び100μg/mLの試験区も設けた。
24ウェルプレートに2×106cells/mLの腹腔マクロファージを完全RPMI-1640培地に懸濁し播種し(500μL/well)、そこに各菌体粉末液が10μg/mL(終濃度)となるように添加し37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で48時間培養した。11/19-B1については、濃度依存性を確認するために、1μg/mL、5μg/mL及び100μg/mLの試験区も設けた。
[IL-10産生量の測定]
培養48時間後に上清を回収し、評価例1と同様の方法で培養上清中のIL-10の濃度を測定した。
培養48時間後に上清を回収し、評価例1と同様の方法で培養上清中のIL-10の濃度を測定した。
結果を図3及び図4に示す(Controlは、D-PBSのみ添加した無刺激の場合の濃度である)。
11/19-B1を含む複数の菌株において、IL-10の産生誘導能が認められた。11/19-B1は濃度依存的にIL-10産生を亢進することが認められ、菌体粉末濃度が5μg/mL以上でIL-10の産生誘導能を有することが確認された。
11/19-B1を含む複数の菌株において、IL-10の産生誘導能が認められた。11/19-B1は濃度依存的にIL-10産生を亢進することが認められ、菌体粉末濃度が5μg/mL以上でIL-10の産生誘導能を有することが確認された。
評価例3(骨髄由来マクロファージに対するIL-10産生誘導能の測定)
[骨髄由来マクロファージの分化及び調製]
雌性のC57BL/6Jマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、7週齢時に解剖し大腿骨と脛骨を採取した。これらより骨髄細胞を摘出し、2%FBS、抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むD-PBS溶液中で細胞をピペッティングにて分散させ、100μmメッシュを通し単細胞懸濁液を得た。遠心分離後、上清を除き2mLの赤血球溶血液に懸濁した後、氷上にて3分間処理し、遠心分離することにより赤血球画分を除去した骨髄細胞を調製した。骨髄細胞は1×106cells/mLとなるようにマウスMacrophage colony-stimulating Factor(M-CSF、BioLegend社製)を20ng/mLと含む完全RPMI-1640培地に懸濁し、1匹あたり100mm径の細胞培養ディッシュ2枚(15mL/枚)に播種し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)内で培養した。
培養3日後に、穏やかに培養ディッシュを揺らして非接着細胞を浮遊させてから培地を除去し、20ng/mLのM-CSFを含む新鮮な培地に交換した。更に3日間培養後(培養6日後)に接着細胞のみをスクレーパーにて回収して、骨髄由来マクロファージとして試験に供した。
[骨髄由来マクロファージの分化及び調製]
雌性のC57BL/6Jマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、7週齢時に解剖し大腿骨と脛骨を採取した。これらより骨髄細胞を摘出し、2%FBS、抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むD-PBS溶液中で細胞をピペッティングにて分散させ、100μmメッシュを通し単細胞懸濁液を得た。遠心分離後、上清を除き2mLの赤血球溶血液に懸濁した後、氷上にて3分間処理し、遠心分離することにより赤血球画分を除去した骨髄細胞を調製した。骨髄細胞は1×106cells/mLとなるようにマウスMacrophage colony-stimulating Factor(M-CSF、BioLegend社製)を20ng/mLと含む完全RPMI-1640培地に懸濁し、1匹あたり100mm径の細胞培養ディッシュ2枚(15mL/枚)に播種し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)内で培養した。
培養3日後に、穏やかに培養ディッシュを揺らして非接着細胞を浮遊させてから培地を除去し、20ng/mLのM-CSFを含む新鮮な培地に交換した。更に3日間培養後(培養6日後)に接着細胞のみをスクレーパーにて回収して、骨髄由来マクロファージとして試験に供した。
[菌体粉末による骨髄由来マクロファージの刺激]
完全RPMI-1640培地に骨髄由来マクロファージ数が1×106cells/mL、11/19-B1菌体粉末液を1μg/mL、10μg/mL及び100μg/mL(終濃度)となるように24ウェルプレートに500μL/well添加し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で48時間培養した。
完全RPMI-1640培地に骨髄由来マクロファージ数が1×106cells/mL、11/19-B1菌体粉末液を1μg/mL、10μg/mL及び100μg/mL(終濃度)となるように24ウェルプレートに500μL/well添加し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で48時間培養した。
[IL-10産生量の測定]
培養48時間後に上清を回収し、評価例1と同様の方法で培養上清中のIL-10の濃度を測定した。
培養48時間後に上清を回収し、評価例1と同様の方法で培養上清中のIL-10の濃度を測定した。
結果を図5に示す(Controlは、D-PBSのみ添加した無刺激の場合の濃度である)。
11/19-B1は濃度依存的にIL-10の産生を亢進することが認められ、菌体粉末濃度が10μg/mL以上でIL-10の産生誘導能を有することが確認された。
11/19-B1は濃度依存的にIL-10の産生を亢進することが認められ、菌体粉末濃度が10μg/mL以上でIL-10の産生誘導能を有することが確認された。
評価例4(腹腔マクロファージに対するIL-12産生誘導能の測定)
評価例2と同様にして、培養48時間後に培養上清を回収し、IL-12測定キット(ELISA MAX Deluxe Set Mouse IL-12、Biolegend社製)を用いて培養上清中のIL-12の濃度を測定した。
評価例2と同様にして、培養48時間後に培養上清を回収し、IL-12測定キット(ELISA MAX Deluxe Set Mouse IL-12、Biolegend社製)を用いて培養上清中のIL-12の濃度を測定した。
結果を図6及び図7に示す(Controlは、無刺激の場合の濃度である)。
11/19-B1は、無刺激(Control)や、他の乳酸菌株と比較して顕著なIL-12産生誘導能を有することが確認された。また、11/19-B1は1μg/mL、5μg/mL、10μg/mLの範囲で濃度依存的にIL-12の産生を亢進することが認められ、無刺激と比較すると、菌体粉末濃度が1μg/mLでも腹腔マクロファージに対するIL-12の産生誘導能を有することが確認された。
11/19-B1は、無刺激(Control)や、他の乳酸菌株と比較して顕著なIL-12産生誘導能を有することが確認された。また、11/19-B1は1μg/mL、5μg/mL、10μg/mLの範囲で濃度依存的にIL-12の産生を亢進することが認められ、無刺激と比較すると、菌体粉末濃度が1μg/mLでも腹腔マクロファージに対するIL-12の産生誘導能を有することが確認された。
評価例5(骨髄由来プラズマサイトイド樹状細胞に対するIFN-α産生誘導能の測定)
[骨髄細胞からのプラズマサイトイド樹状細胞の分化及び調製]
雌性のC57BL/6Jマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、7週齢時に解剖し大腿骨と脛骨を採取した。これらより骨髄細胞を摘出し、2%FBS、抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むD-PBS溶液中で細胞をピペッティングにて分散させ、100μmメッシュを通し単細胞懸濁液を得た。遠心分離後、上清を除き赤血球溶血液2mLに懸濁した後、氷上にて3分間処理し、遠心分離することにより赤血球画分を除去した骨髄細胞を調製した。骨髄細胞は5×105cells/mLとなるように10%FBS、1mMのSodium pyruvate(Thermo Fisher Scientific社製)、2.5mMのHEPES、50μMの2-ME、抗生物質-抗真菌剤混合溶液、及び100ng/mLのFMS-related tyrosine kinase 3 ligand(Flt-3L、R&D systems社製)を含むRPMI-1640培地に懸濁し200μLずつ96wellプレートに分注した後、7日間37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)内で培養することで、プラズマサイトイド樹状細胞へ分化させ試験に供した。
[骨髄細胞からのプラズマサイトイド樹状細胞の分化及び調製]
雌性のC57BL/6Jマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、7週齢時に解剖し大腿骨と脛骨を採取した。これらより骨髄細胞を摘出し、2%FBS、抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むD-PBS溶液中で細胞をピペッティングにて分散させ、100μmメッシュを通し単細胞懸濁液を得た。遠心分離後、上清を除き赤血球溶血液2mLに懸濁した後、氷上にて3分間処理し、遠心分離することにより赤血球画分を除去した骨髄細胞を調製した。骨髄細胞は5×105cells/mLとなるように10%FBS、1mMのSodium pyruvate(Thermo Fisher Scientific社製)、2.5mMのHEPES、50μMの2-ME、抗生物質-抗真菌剤混合溶液、及び100ng/mLのFMS-related tyrosine kinase 3 ligand(Flt-3L、R&D systems社製)を含むRPMI-1640培地に懸濁し200μLずつ96wellプレートに分注した後、7日間37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)内で培養することで、プラズマサイトイド樹状細胞へ分化させ試験に供した。
[菌体粉末による骨髄由来プラズマサイトイド樹状細胞の刺激]
培養7日後の各ウェルに各乳酸菌株の菌体粉末液を10μg/mL(終濃度)となるように添加した後、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で48時間培養した。
培養7日後の各ウェルに各乳酸菌株の菌体粉末液を10μg/mL(終濃度)となるように添加した後、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で48時間培養した。
[IFN-α産生量の測定]
培養48時間後に上清を回収し、IFN-α測定キット(VeriKine Interferon α ELISA Kit、PBL社製)を用いて培養上清中のIFN-αの濃度を測定した。
培養48時間後に上清を回収し、IFN-α測定キット(VeriKine Interferon α ELISA Kit、PBL社製)を用いて培養上清中のIFN-αの濃度を測定した。
結果を図8に示す(Controlは、無刺激の場合の濃度である)。
無刺激(Control)及び他の菌株と比較して、11/19-B1は顕著なIFN-α産生誘導能を有することが認められた。
無刺激(Control)及び他の菌株と比較して、11/19-B1は顕著なIFN-α産生誘導能を有することが認められた。
評価例6(ヒト末梢血単核球(PBMC)に対するIL-10産生誘導能の測定)
[正常ヒトPBMCの前培養及び調製]
正常ヒトPBMC(Precision for Medicine社:精製済、HLAタイプなし)凍結ストックを37℃のウォーターバスで融解し、10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁した。細胞懸濁液を遠心分離後に上清を除き、10%FBS、抗生物質-抗真菌剤混合溶液、及び0.1mg/mLのDNaseIを含むRPMI1640培地に懸濁し、室温で15分間静置した。培地を追加し、遠心分離後に上清を除き、10%FBSおよび抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地5mLに懸濁した。細胞懸濁液は60mm径の細胞培養ディッシュに全量播種し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で24時間前培養した。
前培養後に遠心分離し、10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に2×106cells/mLとなるように再懸濁し、試験に供した。
[正常ヒトPBMCの前培養及び調製]
正常ヒトPBMC(Precision for Medicine社:精製済、HLAタイプなし)凍結ストックを37℃のウォーターバスで融解し、10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁した。細胞懸濁液を遠心分離後に上清を除き、10%FBS、抗生物質-抗真菌剤混合溶液、及び0.1mg/mLのDNaseIを含むRPMI1640培地に懸濁し、室温で15分間静置した。培地を追加し、遠心分離後に上清を除き、10%FBSおよび抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地5mLに懸濁した。細胞懸濁液は60mm径の細胞培養ディッシュに全量播種し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で24時間前培養した。
前培養後に遠心分離し、10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に2×106cells/mLとなるように再懸濁し、試験に供した。
[菌体粉末によるPBMCの刺激]
24ウェルプレートに2×106cells/mLの細胞を播種し(500μL/well)、そこに各菌体粉末液が10μg/mL(終濃度)となるように添加し37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で48時間培養した。
24ウェルプレートに2×106cells/mLの細胞を播種し(500μL/well)、そこに各菌体粉末液が10μg/mL(終濃度)となるように添加し37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で48時間培養した。
[IL-10産生量の測定]
培養48時間後に上清を回収し、IL-10測定キット(ELISA MAX Deluxe Set Human IL-10、Biolegend社製)を用いて培養上清中のIL-10の濃度を測定した。
培養48時間後に上清を回収し、IL-10測定キット(ELISA MAX Deluxe Set Human IL-10、Biolegend社製)を用いて培養上清中のIL-10の濃度を測定した。
結果を図9に示す(Controlは、D-PBSのみ添加した無刺激の場合の濃度である)。
評価例7(ヒト末梢血単核球(PBMC)に対するIL-12産生誘導能の測定)
評価例6と同様にして、培養48時間後に上清を回収し、IL-12測定キット(ELISA MAX Deluxe Set Human IL-12、Biolegend社製)を用いて培養上清中のIL-12の濃度を測定した。
評価例6と同様にして、培養48時間後に上清を回収し、IL-12測定キット(ELISA MAX Deluxe Set Human IL-12、Biolegend社製)を用いて培養上清中のIL-12の濃度を測定した。
結果を図10に示す(Controlは、D-PBSのみ添加した無刺激の場合の濃度である)。
評価例8(ヒト末梢血単核球(PBMC)に対するIFN-γ産生誘導能の測定)
評価例6と同様にして、培養48時間後に上清を回収し、3人分の培養上清をプールし、roteome Profiler Human XL Cytokine Array Kit(R&D社製)を使用して上清中の相対濃度を測定した。解析にはHLImage++ Quick Spots Toolソフト(Western Vision Software社製)を用いた。
評価例6と同様にして、培養48時間後に上清を回収し、3人分の培養上清をプールし、roteome Profiler Human XL Cytokine Array Kit(R&D社製)を使用して上清中の相対濃度を測定した。解析にはHLImage++ Quick Spots Toolソフト(Western Vision Software社製)を用いた。
結果を図11に示す(D-PBSのみ添加した無刺激を1とした場合の相対比として算出した)。
評価例9(ヒト末梢血単核球(PBMC)に対するTNF-α産生誘導能の測定)
評価例6と同様にして、培養48時間後に培養上清を回収し、評価例8と同様の方法で測定・解析した。
評価例6と同様にして、培養48時間後に培養上清を回収し、評価例8と同様の方法で測定・解析した。
結果を図12に示す(D-PBSのみ添加した無刺激を1とした場合の相対比として算出した)。
評価例10(マウスへの経口投与による脾臓細胞の細胞傷害活性の亢進)
[マウス生体への11/19-B1菌体の投与]
雌性のBALB/cマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、8週齢時よりPBSに懸濁した11/19-B1菌体液200μL(生菌2×109cfu又はその加熱死菌体)を2週間毎日ゾンデにて経口投与した。コントロール群はPBSを同量投与した。
[マウス生体への11/19-B1菌体の投与]
雌性のBALB/cマウス(日本チャールス・リバー社)を用い、8週齢時よりPBSに懸濁した11/19-B1菌体液200μL(生菌2×109cfu又はその加熱死菌体)を2週間毎日ゾンデにて経口投与した。コントロール群はPBSを同量投与した。
[脾臓細胞の採取及び調製]
11/19-B1菌体液(又はPBS)の投与開始2週間後に、マウスを解剖し、評価例1と同様の方法で脾臓細胞を調製し、試験に供した。NK細胞を含む脾臓細胞をエフェクター細胞として用いた。
11/19-B1菌体液(又はPBS)の投与開始2週間後に、マウスを解剖し、評価例1と同様の方法で脾臓細胞を調製し、試験に供した。NK細胞を含む脾臓細胞をエフェクター細胞として用いた。
[染色液の調整及び細胞傷害活性検出の原理]
Calcein-AM(同人化学社製)を1μg/mL(終濃度)となるようにPBSに添加し、染色液とした。
Calcein-AM(同人化学社製)を1μg/mL(終濃度)となるようにPBSに添加し、染色液とした。
Calcein-AMは細胞膜透過性を有し蛍光を発しないが、細胞内のエステラーゼによりCalceinとなる。このCalceinは、膜不透過性の化合物で、強い黄緑色の蛍光を発する。Calceinで染色した細胞が傷害されると、細胞内からCalceinが漏出する。漏出したCalceinの蛍光を測定することで細胞傷害活性を測定することができる。
[ターゲット細胞YAC-1の培養及び調製]
マウスリンパ腫由来YAC-1細胞(理研バイオリソースセンターより分譲)を10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で培養した。培養したYAC-1細胞を遠心分離後、上清を除き、1×106cells/mLとなるようにCalcein-AM染色液に懸濁し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)に30分間静置した。遠心分離して上清を除き、PBSに懸濁後に再度遠心分離し、細胞を洗浄した。洗浄した細胞は、10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁し、NK活性測定のターゲット細胞として試験に供した。
マウスリンパ腫由来YAC-1細胞(理研バイオリソースセンターより分譲)を10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で培養した。培養したYAC-1細胞を遠心分離後、上清を除き、1×106cells/mLとなるようにCalcein-AM染色液に懸濁し、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)に30分間静置した。遠心分離して上清を除き、PBSに懸濁後に再度遠心分離し、細胞を洗浄した。洗浄した細胞は、10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁し、NK活性測定のターゲット細胞として試験に供した。
[細胞傷害活性の測定]
マウス脾臓細胞を5×106cells/mL、Calcein染色したYAC-1細胞を2×105cells/mL(エフェクター/ターゲット比=25:1)となるように10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁し、96ウェルプレートに播種し(200μL/well)、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で4時間共培養した。培養後に上清を回収し、プレートリーダーを用いて漏出したCalceinを測定した。NK活性はYAC-1のみを培養した上清をミニマムリリース、2%のTriton X-100でCalcein染色したYAC-1細胞を溶解させた上清をマキシマムリリースとして、細胞傷害活性の割合を算出した。
マウス脾臓細胞を5×106cells/mL、Calcein染色したYAC-1細胞を2×105cells/mL(エフェクター/ターゲット比=25:1)となるように10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁し、96ウェルプレートに播種し(200μL/well)、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で4時間共培養した。培養後に上清を回収し、プレートリーダーを用いて漏出したCalceinを測定した。NK活性はYAC-1のみを培養した上清をミニマムリリース、2%のTriton X-100でCalcein染色したYAC-1細胞を溶解させた上清をマキシマムリリースとして、細胞傷害活性の割合を算出した。
結果を図13に示す。
評価例11(マウスへの経口投与によるPBMCの細胞傷害活性の亢進)
[マウス末梢血単核球(PBMC)の採取及び調製]
評価例10と同様にして、マウスに11/19-B1菌体液(生菌若しくは加熱死菌体)又はPBSを、2週間毎日経口投与した。投与開始2週間後に、室温にしたHistopaque-1083(sigma-aldrich社製)2mLを5mL容量のラウンドボトムチューブに入れ、11/19-B1菌体液又はPBSを投与したマウスから採取した血液を生理食塩水で2倍希釈し、ゆっくり重層した。25℃、400×gで30分間遠心分離し、中間層を15mL容量チューブに回収した。10mLのRPMI1640を追加し、25℃、400×gで10分間遠心分離したのち、上清を除いた。1mLの赤血球溶血液に懸濁し、氷上にて3分間処理し、遠心分離することにより赤血球画分を除去したマウスPBMCを調製し、試験に供した。
[マウス末梢血単核球(PBMC)の採取及び調製]
評価例10と同様にして、マウスに11/19-B1菌体液(生菌若しくは加熱死菌体)又はPBSを、2週間毎日経口投与した。投与開始2週間後に、室温にしたHistopaque-1083(sigma-aldrich社製)2mLを5mL容量のラウンドボトムチューブに入れ、11/19-B1菌体液又はPBSを投与したマウスから採取した血液を生理食塩水で2倍希釈し、ゆっくり重層した。25℃、400×gで30分間遠心分離し、中間層を15mL容量チューブに回収した。10mLのRPMI1640を追加し、25℃、400×gで10分間遠心分離したのち、上清を除いた。1mLの赤血球溶血液に懸濁し、氷上にて3分間処理し、遠心分離することにより赤血球画分を除去したマウスPBMCを調製し、試験に供した。
[細胞傷害活性の測定]
マウスPBMCを5×106cells/mL、Calcein染色したYAC-1細胞2×105cells/mL(エフェクター/ターゲット比=25:1)となるように10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁し、96ウェルプレートに播種し(200μL/well)、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で4時間共培養した。漏出したCalceinの測定及び細胞傷害活性の算出は評価例10と同様に実施した。
マウスPBMCを5×106cells/mL、Calcein染色したYAC-1細胞2×105cells/mL(エフェクター/ターゲット比=25:1)となるように10%FBS及び抗生物質-抗真菌剤混合溶液を含むRPMI1640培地に懸濁し、96ウェルプレートに播種し(200μL/well)、37℃のインキュベーター(CO2濃度5%)で4時間共培養した。漏出したCalceinの測定及び細胞傷害活性の算出は評価例10と同様に実施した。
結果を図14に示す。
本発明の11/19-B1株を含有するサイトカイン産生促進剤(サイトカイン産生促進用飲食品組成物)は、複数の種類のサイトカインの産生を強く誘導することができる。また、本発明の11/19-B1株を含有する細胞傷害活性化剤(細胞傷害活性化用飲食品組成物)は、脾臓細胞やヒト末梢血単核球(PBMC)の細胞傷害活性を亢進することができる。
本発明のサイトカイン産生促進剤(サイトカイン産生促進用飲食品組成物)や細胞傷害活性化剤(細胞傷害活性化用飲食品組成物)は、発酵乳、ヨーグルト、プリン、乳酸菌飲料、アイスクリーム、アイスミルク、ラクトアイス等の乳製品;氷菓等の飲食品の生産等に広く利用されるものである。
本発明のサイトカイン産生促進剤(サイトカイン産生促進用飲食品組成物)や細胞傷害活性化剤(細胞傷害活性化用飲食品組成物)は、発酵乳、ヨーグルト、プリン、乳酸菌飲料、アイスクリーム、アイスミルク、ラクトアイス等の乳製品;氷菓等の飲食品の生産等に広く利用されるものである。
NITE BP-01694
Claims (24)
- 独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進剤。
- インターロイキン10の産生を促進する請求項1に記載のサイトカイン産生促進剤。
- インターロイキン12の産生を促進する請求項1に記載のサイトカイン産生促進剤。
- インターフェロンγの産生を促進する請求項1に記載のサイトカイン産生促進剤。
- 腫瘍壊死因子αの産生を促進する請求項1に記載のサイトカイン産生促進剤。
- インターフェロンα、並びに、インターロイキン10、インターロイキン12、インターフェロンγ及び腫瘍壊死因子αからなる1種以上のサイトカインの産生を促進する請求項1に記載のサイトカイン産生促進剤。
- 独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進用飲食品組成物。
- インターロイキン10の産生を促進する請求項7に記載のサイトカイン産生促進用飲食品組成物。
- インターロイキン12の産生を促進する請求項7に記載のサイトカイン産生促進用飲食品組成物。
- インターフェロンγの産生を促進する請求項7に記載のサイトカイン産生促進用飲食品組成物。
- 腫瘍壊死因子αの産生を促進する請求項7に記載のサイトカイン産生促進用飲食品組成物。
- インターフェロンα、並びに、インターロイキン10、インターロイキン12、インターフェロンγ及び腫瘍壊死因子αからなる1種以上のサイトカインの産生を促進する請求項7に記載のサイトカイン産生促進用飲食品組成物。
- 請求項7ないし請求項12の何れかの請求項に記載のサイトカイン産生促進用飲食品組成物を含有することを特徴とするサイトカイン産生促進用飲食品。
- チルド製品である請求項13に記載のサイトカイン産生促進用飲食品。
- 乳製品である請求項13に記載のサイトカイン産生促進用飲食品。
- 発酵乳である請求項15に記載のサイトカイン産生促進用飲食品。
- 乳酸菌飲料である請求項15に記載のサイトカイン産生促進用飲食品。
- 独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とする細胞傷害活性化剤。
- 独立行政法人製品評価技術基盤機構(NITE)の特許微生物寄託センター(NPMD)における受託番号がNITE BP-01694であるラクトコッカス(Lactococcus)属に属する乳酸菌を含有することを特徴とする細胞傷害活性化用飲食品組成物。
- 請求項19に記載の細胞傷害活性化用飲食品組成物を含有することを特徴とする細胞傷害活性化用飲食品。
- チルド製品である請求項20に記載の細胞傷害活性化用飲食品。
- 乳製品である請求項20に記載の細胞傷害活性化用飲食品。
- 発酵乳である請求項22に記載の細胞傷害活性化用飲食品。
- 乳酸菌飲料である請求項22に記載の細胞傷害活性化用飲食品。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2021148241 | 2021-09-13 | ||
JP2021148241 | 2021-09-13 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JP2023041649A true JP2023041649A (ja) | 2023-03-24 |
Family
ID=85641429
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2022143578A Pending JP2023041649A (ja) | 2021-09-13 | 2022-09-09 | サイトカイン産生促進剤及び細胞傷害活性化剤 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2023041649A (ja) |
-
2022
- 2022-09-09 JP JP2022143578A patent/JP2023041649A/ja active Pending
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR102285958B1 (ko) | 락토바실러스 파라카제이 균주 및 그 용도 | |
Gaudana et al. | Probiotic attributes of Lactobacillus strains isolated from food and of human origin | |
AU2009350208B2 (en) | Novel Lactobacillus plantarum and composition comprising same | |
EP2360237B1 (en) | Novel lactobacillus plantarum and composition containing the same | |
EP1796697B1 (en) | A composition having immunoregulating activities comprising lactobacillus pentosus | |
KR102024883B1 (ko) | 락토바실러스 퍼멘텀 kbl 375 균주 및 그 용도 | |
RU2606770C2 (ru) | Штамм lactobacillus mucosae для получения ферментированных пищевых продуктов | |
JP7183301B2 (ja) | バチルス・コアグランスによる免疫機能のモジュレーション | |
JP7057059B2 (ja) | ラクトバチルス・プランタラムの培養物の製造方法 | |
JP7358001B2 (ja) | 乳酸菌、インターロイキン-22産生誘導剤、皮膚バリア機能増強剤 | |
JP6821643B2 (ja) | 免疫疾患予防剤 | |
JP5610472B2 (ja) | 新規乳酸菌及び新規乳酸菌含有組成物 | |
TW201609120A (zh) | 含乳酸菌之腸道屏障功能促進劑 | |
JP2023041649A (ja) | サイトカイン産生促進剤及び細胞傷害活性化剤 | |
Kang et al. | Induction of Th1 cytokines by Leuconostoc mesenteroides subsp. mesenteroides (KCTC 3100) under Th2-type conditions and the requirement of NF-κB and p38/JNK | |
Choi et al. | Immunomodulatory effects of seven viable and sonicated Lactobacillus spp. and anti-bacterial activities of L. rhamnosus and L. helvetilus | |
JP2009112232A (ja) | 免疫賦活作用及び/又はアレルギー抑制作用を有し、且つ胃液耐性を有する新規乳酸菌 | |
WO2022050302A1 (ja) | Il-17の産生を抑制するビフィズス菌 | |
KR102606079B1 (ko) | 면역증강 활성을 갖는 신규한 리길락토바실러스 애니멀리스 va105 균주 및 이의 용도 | |
JP7013419B2 (ja) | 炎症性サイトカインの産生誘導活性は低いが抗炎症性サイトカインの産生誘導活性が高いビフィズス菌 | |
JP5481702B2 (ja) | 免疫賦活作用を有し、且つ胃液耐性を有する新規乳酸菌 | |
JP2012241009A (ja) | 呼吸器感染症の予防および/または治療剤 | |
WO2017175774A1 (ja) | インターフェロンλ産生促進用組成物及びその製造方法 | |
KR101518866B1 (ko) | 락토바실러스 플랜타룸 및 이의 용도 | |
WO2024090414A1 (ja) | 乳酸菌、該乳酸菌由来の自然免疫活性化剤及び該乳酸菌を含有する食品 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20220921 |